Εμφανίζονται 1 - 20 Αποτελέσματα από 167 για την αναζήτηση '"ФАКТОРЫ ПАТОГЕННОСТИ"', χρόνος αναζήτησης: 0,89δλ Περιορισμός αποτελεσμάτων
  1. 1
  2. 2
    Academic Journal

    Πηγή: VII Пущинская конференция «Биохимия, физиология и биосферная роль микроорганизмов», шко- ла-конференция для молодых ученых, аспирантов и студентов «Генетические технологии в микробио- логии и микробное разнообразие».

  3. 3
    Academic Journal

    Πηγή: Russian Journal of Infection and Immunity; Vol 15, No 3 (2025); 575-581 ; Инфекция и иммунитет; Vol 15, No 3 (2025); 575-581 ; 2313-7398 ; 2220-7619

    Περιγραφή αρχείου: application/pdf

  4. 4
  5. 5
    Academic Journal

    Συνεισφορές: The study did not have sponsorship, Исследование не имело спонсорской поддержки

    Πηγή: Medical Herald of the South of Russia; Том 14, № 1 (2023); 66-74 ; Медицинский вестник Юга России; Том 14, № 1 (2023); 66-74 ; 2618-7876 ; 2219-8075 ; 10.21886/2219-8075-2023-14-1

    Περιγραφή αρχείου: application/pdf

    Relation: https://www.medicalherald.ru/jour/article/view/1632/947; Чеботарь И.В., Лазарева А.В., Масалов Я.К., Михайлович В.М., Маянский Н.А. Acinetobacter: микробиологические, патогенетические и резистентные свойства. Вестник Российской академии медицинских наук. 2014;69(9-10):39-50. https://doi.org/10.15690/vramn.v69i9-10.1130; Dijkshoorn L, van der Toorn J. Acinetobacter species: which do we mean? Clin Infect Dis. 1992;15(4):748-9. Erratum in: Clin Infect Dis. 1992;15(6):1075. PMID: 1420704. https://doi.org/10.1093/clind/15.4.748.; Wong D, Nielsen TB, Bonomo RA, Pantapalangkoor P, Luna B, Spellberg B. Clinical and Pathophysiological Overview of Acinetobacter Infections: a Century of Challenges. Clin Microbiol Rev. 2017;30(1):409-447. https://doi.org/10.1128/CMR.00058-16; Hamidian M, Maharjan RP, Farrugia DN, Delgado NN, Dinh H, et al. Genomic and phenotypic analyses of diverse non-clinical Acinetobacter baumannii strains reveals strainspecific virulence and resistance capacity. Microb Genom. 2022;8(2):000765. doi:10.1099/mgen.0.000765; Ramirez MS, Bonomo RA, Tolmasky ME. Carbapenemases: Transforming Acinetobacter baumannii into a Yet More Dangerous Menace. Biomolecules. 2020;10(5):720. https://doi.org/10.3390/biom10050720; Tacconelli E. Global Priority List of Antibiotic-Resistant Bacteria to Guide Research, Discovery, and Development. Infection Control Africa Network. South Africa; 2017. Accessed on June 6, 2022. https://policycommons.net/artifacts/1818147/globalpriority-list-of-antibiotic-resistant-bacteria-to-guideresearch-discovery-and-development/2555608/; Brady MF, Jamal Z, Pervin N. Acinetobacter. In: StatPearls [Internet]. Treasure Island (FL): StatPearls Publishing; 2022. PMID: 28613535.; Обухова О.В., Ларцева Л.В. Санитарно-экологическая значимость бактерий рода Acinetobacter, выделенных из воды и рыбы в дельте р. Волги. Вестник Астраханского государственного технического университета. Серия: Рыбное хозяйство. 2021;(2):29-40. https://doi.org/10.24143/2073-5529-2021-2-29-40; Antunes LC, Visca P, Towner KJ. Acinetobacter baumannii: evolution of a global pathogen. Pathog Dis. 2014;71(3):292-301. https://doi.org/10.1111/2049-632X.12125; Шагинян И.А., Чернуха М.Ю. Неферментирующие грамотрицательные бактерии в этиологии внутрибольничных инфекций: клинические, микробиологические и эпидемиологические особенности. Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия. 2005;7(3):271-285.; Горбич Ю.Л., Карпов И.А., Кречикова О.И. Инфекции, вызванные Acinetobacter baumannii: Факторы риска, Диагностика, лечение, подходы к профилактике. Медицинские новости. 2011;(5):31-39. eLIBRARY ID: 16852981; Peleg AY, Seifert H, Paterson DL. Acinetobacter baumannii: emergence of a successful pathogen. Clin Microbiol Rev. 2008;21(3):538-82. https://doi.org/10.1128/CMR.00058-07; Harding CM, Hennon SW, Feldman MF. Uncovering the mechanisms of Acinetobacter baumannii virulence. Nat Rev Microbiol. 2018;16(2):91-102. https://doi.org/10.1038/nrmicro.2017.148; Zarrilli R, Bagattini M, Migliaccio A, Esposito EP, Triassi M. Molecular epidemiology of carbapenem-resistant Acinetobacter baumannii in Italy. Ann Ig. 2021;33(5):401-409. https://doi.org/10.7416/ai.2020.2395; Носков А.К., Попова А.Ю., Водопьянов А.С., Писанов Р.В., Чемисова О.С., и др. Молекулярно-генетический анализ возбудителей бактериальных пневмоний, ассоциированных с COVID-19, в стационарах г. Ростова-наДону. Здоровье населения и среда обитания – ЗНиСО. 2021;1(12):64-71. https://doi.org/2219-5238/2021-29-12-64-71; Попова А.Ю., Ежлова Е.Б., Демина Ю.В., Носков А.К., Ковалев Е.В., и др. Этиология внебольничных пневмоний в период эпидемического распространения Covid-19 и оценка риска возникновения пневмоний, связанных с оказанием медицинской помощи. Здоровье населения и среда обитания – ЗНиСО. 2021;(7):67-75. https://doi.org/10.35627/2219-5238/2021-29-7-67-75; Lima WG, Brito JCM, da Cruz Nizer WS. Ventilatorassociated pneumonia (VAP) caused by carbapenem-resistant Acinetobacter baumannii in patients with COVID-19: Two problems, one solution? Med Hypotheses. 2020;144:110139. https://doi.org/10.1016/j.mehy.2020.110139; Giannouli M, Antunes LC, Marchetti V, Triassi M, Visca P, Zarrilli R. Virulence-related traits of epidemic Acinetobacter baumannii strains belonging to the international clonal lineages I-III and to the emerging genotypes ST25 and ST78. BMC Infect Dis. 2013;13:282. https://doi.org/10.1186/1471-2334-13-282; Piperaki ET, Tzouvelekis LS, Miriagou V, Daikos GL. Carbapenem-resistant Acinetobacter baumannii: in pursuit of an effective treatment. Clin Microbiol Infect. 2019;25(8):951-957. https://doi.org/10.1016/j.cmi.2019.03.014; Isler B, Doi Y, Bonomo RA, Paterson DL. New Treatment Options against Carbapenem-Resistant Acinetobacter baumannii Infections. Antimicrob Agents Chemother. 2018;63(1):e01110-18. https://doi.org/10.1128/AAC.01110-18; Шипицына И.В., Розова Л.В., Осипова Е.В. Клиническая значимость бактерий Acinetobacter spp., выделенных у больных хроническим остеомиелитом. Клиническая лабораторная диагностика. 2016;61(11):793-796. https://doi.org/10.18821/0869-2084-2016-61-11-793-796; Pavlova A, Hwang H, Lundquist K, Balusek C, Gumbart JC. Living on the edge: Simulations of bacterial outer-membrane proteins. Biochim Biophys Acta. 2016;1858(7 Pt B):1753-9. https://doi.org/10.1016/j.bbamem.2016.01.020; Захарова Н.Г., Вершинина В.И., Ильинская О.Н. Краткий курс по микробиологии, вирусологии и иммунологии. Казань; 2015.; Kwon SO, Gho YS, Lee JC, Kim SI. Proteome analysis of outer membrane vesicles from a clinical Acinetobacter baumannii isolate. FEMS Microbiol Lett. 2009;297(2):150-6. https://doi.org/10.1111/j.1574-6968.2009.01669.x; Nie D, Hu Y, Chen Z, Li M, Hou Z, et al. Outer membrane protein A (OmpA) as a potential therapeutic target for Acinetobacter baumannii infection. J Biomed Sci. 2020;27(1):26. https://doi.org/10.1186/s12929-020-0617-7; Jin JS, Kwon SO, Moon DC, Gurung M, Lee JH, et al. Acinetobacter baumannii secretes cytotoxic outer membrane protein A via outer membrane vesicles. PLoS One. 2011;6(2):e17027. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0017027; Smani Y, McConnell MJ, Pachón J. Role of fibronectin in the adhesion of Acinetobacter baumannii to host cells. PLoS One. 2012;7(4):e33073. https://doi.org/0.1371/journal.pone.0033073; del Mar Tomás M, Beceiro A, Pérez A, Velasco D, Moure R, et al. Cloning and functional analysis of the gene encoding the 33- to 36-kilodalton outer membrane protein associated with carbapenem resistance in Acinetobacter baumannii. Antimicrob Agents Chemother. 2005;49(12):5172-5. https://doi.org/10.1128/AAC.49.12.5172-5175.2005; Rumbo C, Tomás M, Fernández Moreira E, Soares NC, Carvajal M, et al. The Acinetobacter baumannii Omp33- 36 porin is a virulence factor that induces apoptosis and modulates autophagy in human cells. Infect Immun. 2014;82(11):4666-80. https://doi.org/10.1128/IAI.02034-14; Abdollahi S, Rasooli I, Mousavi Gargari SL. The role of TonBdependent copper receptor in virulence of Acinetobacter baumannii. Infect Genet Evol. 2018;60:181-190. https://doi.org/10.1016/j.meegid.2018.03.001; Piepenbrink KH, Lillehoj E, Harding CM, Labonte JW, Zuo X, et al. Structural Diversity in the Type IV Pili of Multidrug-resistant Acinetobacter. J Biol Chem. 2016;291(44):22924-22935. https://doi.org/10.1074/jbc.M116.751099; Pakharukova N, Tuittila M, Paavilainen S, Malmi H, Parilova O, et al. Structural basis for Acinetobacter baumannii biofilm formation. Proc Natl Acad Sci U S A. 2018;115(21):5558-5563. https://doi.org/10.1073/pnas.1800961115; Luke NR, Sauberan SL, Russo TA, Beanan JM, Olson R, et al. Identification and characterization of a glycosyltransferase involved in Acinetobacter baumannii lipopolysaccharide core biosynthesis. Infect Immun. 2010;78(5):2017-23. https://doi.org/10.1128/IAI.00016-10; Tiku V, Kew C, Kofoed EM, Peng Y, Dikic I, Tan MW. Acinetobacter baumannii Secretes a Bioactive Lipid That Triggers Inflammatory Signaling and Cell Death. Front Microbiol. 2022;13:870101. https://doi.org/10.3389/fmicb.2022.870101; Powers MJ, Trent MS. Expanding the paradigm for the outer membrane: Acinetobacter baumannii in the absence of endotoxin. Mol Microbiol. 2018;107(1):47-56. https://doi.org/10.1111/mmi.13872; Vinogradov E, Maclean L, Xu HH, Chen W. The structure of the polysaccharide isolated from Acinetobacter baumannii strain LAC-4. Carbohydr Res. 2014;390:42-5. https://doi.org/10.1016/j.carres.2014.03.001; Talyansky Y, Nielsen TB, Yan J, Carlino-Macdonald U, Di Venanzio G, et al. Capsule carbohydrate structure determines virulence in Acinetobacter baumannii. PLoS Pathog. 2021;17(2):e1009291. https://doi.org/10.1371/journal.ppat.1009291; Mao HB, He M, He SN. [Significance of Lipopolysaccharide Lipid A Gene Mutation of Extensively Drug-resistant Acinetobacter baumanii on Polymyxin Resistance and Its Influence on Treatment]. Sichuan Da Xue Xue Bao Yi Xue Ban. 2021;52(1):124-128. (In Chinese) https://doi.org/10.12182/20210160208; Whiteway C, Valcek A, Philippe C, Strazisar M, De Pooter T, et al. Scarless excision of an insertion sequence restores capsule production and virulence in Acinetobacter baumannii. ISME J. 2022;16(5):1473-1477. https://doi.org/10.1038/s41396-021-01179-3; Yang JL, Yang CJ, Chuang YC, Sheng WH, Chen YC, Chang SC. Association of capsular polysaccharide locus 2 with prognosis of Acinetobacter baumannii bacteraemia. Emerg Microbes Infect. 2022;11(1):83-90. https://doi.org/10.1080/22221751.2021.2011624; Tipton KA, Chin CY, Farokhyfar M, Weiss DS, Rather PN. Role of Capsule in Resistance to Disinfectants, Host Antimicrobials, and Desiccation in Acinetobacter baumannii. Antimicrob Agents Chemother. 2018;62(12):e01188-18. https://doi.org/10.1128/AAC.01188-18; Russo TA, Luke NR, Beanan JM, Olson R, Sauberan SL, et al. The K1 capsular polysaccharide of Acinetobacter baumannii strain 307-0294 is a major virulence factor. Infect Immun. 2010;78(9):3993-4000. https://doi.org/10.1128/IAI.00366-10; Conde-Pérez K, Vázquez-Ucha JC, Álvarez-Fraga L, Ageitos L, Rumbo-Feal S, et al. In-Depth Analysis of the Role of the Acinetobactin Cluster in the Virulence of Acinetobacter baumannii. Front Microbiol. 2021;12:752070. https://doi.org/10.3389/fmicb.2021.752070; McConnell MJ, Actis L, Pachón J. Acinetobacter baumannii: human infections, factors contributing to pathogenesis and animal models. FEMS Microbiol Rev. 2013;37(2):130-55. https://doi.org/10.1111/j.1574-6976.2012.00344.x; Liu H, Cao CY, Qiu FL, Huang HN, Xie H, et al. IronRich Conditions Induce OmpA and Virulence Changes of Acinetobacter baumannii. Front Microbiol. 2021;12:725194. https://doi.org/10.3389/fmicb.2021.725194; Kumar S, Anwer R, Azzi A. Virulence Potential and Treatment Options of Multidrug-Resistant (MDR) Acinetobacter baumannii. Microorganisms. 2021;9(10):2104. https://doi.org/10.3390/microorganisms9102104; Ayoub Moubareck C, Hammoudi Halat D. Insights into Acinetobacter baumannii: A Review of Microbiological, Virulence, and Resistance Traits in a Threatening Nosocomial Pathogen. Antibiotics (Basel). 2020;9(3):119. https://doi.org/10.3390/antibiotics9030119; Khan AU, Maryam L, Zarrilli R. Structure, Genetics and Worldwide Spread of New Delhi Metallo-β-lactamase (NDM): a threat to public health. BMC Microbiol. 2017;17(1):101. https://doi.org/10.1186/s12866-017-1012-8; Невежина А.В. Карбапенемазы как фактор устойчивости к антибактериальным препаратам. Acta Biomedica Scientifica. 2020;5(6):95-105. https://doi.org/10.29413/ABS.2020-5.6.11; Longo F, Vuotto C, Donelli G. Biofilm formation in Acinetobacter baumannii. New Microbiol. 2014;37(2):119-27. PMID: 24858639.; Соломенный А.П., Зубарева Н.А., Гончаров А.Е. Особенности генетического контроля биопленкообразования у бактерий рода Acinetobacter. Пермский медицинский журнал. 2016;33(4):65-72. eLIBRARY ID: 26685045; Roy S, Chowdhury G, Mukhopadhyay AK, Dutta S, Basu S. Convergence of Biofilm Formation and Antibiotic Resistance in Acinetobacter baumannii Infection. Front Med (Lausanne). 2022;9:793615. https://doi.org/10.3389/fmed.2022.793615; Johnson TL, Waack U, Smith S, Mobley H, Sandkvist M. Acinetobacter baumannii Is Dependent on the Type II Secretion System and Its Substrate LipA for Lipid Utilization and In Vivo Fitness. J Bacteriol. 2015;198(4):711-9. https://doi.org/10.1128/JB.00622-15; Carruthers MD, Nicholson PA, Tracy EN, Munson RS Jr. Acinetobacter baumannii utilizes a type VI secretion system for bacterial competition. PLoS One. 2013;8(3):e59388. Erratum in: PLoS One. 2013;8(12). https://doi.org/10.1371/journal.pone.0059388; Bentancor LV, Camacho-Peiro A, Bozkurt-Guzel C, Pier GB, Maira-Litrán T. Identification of Ata, a multifunctional trimeric autotransporter of Acinetobacter baumannii. J Bacteriol. 2012;194(15):3950-60. https://doi.org/10.1128/JB.06769-11; Weber BS, Kinsella RL, Harding CM, Feldman MF. The Secrets of Acinetobacter Secretion. Trends Microbiol. 2017;25(7):532-545. https://doi.org/10.1016/j.tim.2017.01.005; Kinsella RL, Lopez J, Palmer LD, Salinas ND, Skaar EP, et al. Defining the interaction of the protease CpaA with its type II secretion chaperone CpaB and its contribution to virulence in Acinetobacter species. J Biol Chem. 2017;292(48):19628-19638. https://doi.org/10.1074/jbc.M117.808394; Eijkelkamp BA, Stroeher UH, Hassan KA, Paulsen IT, Brown MH. Comparative analysis of surface-exposed virulence factors of Acinetobacter baumannii. BMC Genomics. 2014;15(1):1020. https://doi.org/10.1186/1471-2164-15-1020; Silverman JM, Austin LS, Hsu F, Hicks KG, Hood RD, Mougous JD. Separate inputs modulate phosphorylationdependent and -independent type VI secretion activation. Mol Microbiol. 2011;82(5):1277-90. https://doi.org/10.1111/j.1365-2958.2011.07889.x; https://www.medicalherald.ru/jour/article/view/1632

  6. 6
    Academic Journal

    Πηγή: Problems of Particularly Dangerous Infections; № 3 (2023); 99-107 ; Проблемы особо опасных инфекций; № 3 (2023); 99-107 ; 2658-719X ; 0370-1069

    Περιγραφή αρχείου: application/pdf

    Relation: https://journal.microbe.ru/jour/article/view/1861/1412; Sakib S.N., Reddi G., Almagro-Moreno S. Environmental role of pathogenic traits in Vibrio cholerae. J. Bacteriol. 2018; 200(15):e00795-17. DOI:10.1128/JB.00795-17.; Онищенко Г.Г., Ломов Ю.М., Москвитина Э.А., Подосинникова Л.С., Водяницкая С.Ю., Прометной В.И., Монахова Е.В., Водопьянов C.O., Телесманич Н.Р., Дудина Н.А. Холера, обусловленная Vibrio cholerae O1 ctxAB–tcpA+. Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2007; 1:23–9.; Титова С.В., Монахова Е.В., Алексеева Л.П., Писанов Р.В. Молекулярно-генетические основы биопленкообразования как составляющей персистенции Vibrio cholerae в водоемах Российской Федерации. Экологическая генетика. 2018; 16(4):23–32. DOI:10.17816/ecogen16423-32.; Крицкий А.А., Смирнова Н.И., Каляева Т.Б., Оброткина Н.Ф., Грачева И.В., Катышев А.Д., Кутырев В.В. Сравнительный анализ молекулярно-генетических свойств нетоксигенных штаммов Vibrio cholerae O1 биовара Эль Тор, изолированных в России и на эндемичных по холере территориях. Проблемы особо опасных инфекций. 2021; 3:72–82. DOI:10.21055/0370-1069-2021-3-72-82.; Носков А.К., Кругликов В.Д., Москвитина Э.А., Монахова Е.В., Миронова Л.В., Крицкий А.А., Лопатин А.А., Чемисова О.С., Соболева Е.Г., Иванова С.М., Водопьянов А.С., Стенина С.И., Писанов Р.В., Левченко Д.А., Подойницына О.А., Непомнящая Н.Б., Ежова М.И. Холера: тенденции развития эпидемического процесса в 2021 г., прогноз на 2022 г. Проблемы особо опасных инфекций. 2022; 1:24–34. DOI:10.21055/0370-069-2022-1-24-34.; Водопьянов А.С., Писанов Р.В., Водопьянов С.О., Мишанькин Б.Н., Олейников И.П., Кругликов В.Д., Титова С.В. Молекулярная эпидемиология Vibrio cholerae – разработка алгоритма анализа данных полногеномного секвенирования. Эпидемиология и инфекционные болезни. 2016; 21(3):146–52. DOI:10.18821/1560-9529-2016-21-3-146-152.; Fan F., Kan B. Survival and proliferation of the lysogenic bacteriophage CTXφ in Vibrio cholerae. Virol. Sin. 2015; 30(1):19–25. DOI:10.1007/s12250-014-3550-7.; Tam V.C., Serruto D., Dziejman M., Brieher W., Mekalanos J.J. A type III secretion system in Vibrio cholerae translocates a formin/spire hybrid-like actin nucleator to promote intestinal colonization. Cell Host Microbe. 2007; 1(2):95–107. DOI:10.1016/j.chom.2007.03.005.; Tam V.C., Suzuki M., Coughlin M., Saslowsky D., Biswas K., Lencer W.I., Faruque S.M., Mekalanos J.J. Functional analysis of VopF activity required for colonization in Vibrio cholerae. mBio. 2010; 1(5):e00289-10. DOI:10.1128/mBio.00289-10.; Alam A., Miller K.A., Chaand M., Butler J.S., Dziejman M. Identification of Vibrio cholerae type III secretion system effector proteins. Infect. Immun. 2011; 79(4):1728–40. DOI:10.1128/IAI.01194-10.; Shin O.S., Tam V.C., Suzuki M., Ritchie J.M., Bronson R.T., Waldor M.K., Mekalanos J.J. Type III secretion is essential for the rapidly fatal diarrheal disease caused by non-O1, non-O139 Vibrio cholerae. mBio. 2011; 2:e00106-11. DOI:10.1128/mBio.00106-11.; Dzeijman M., Serruto D., Tam V.C., Sturtevant D., Diraphat P., Faruque S.M., Rahman M.H., Heidelberg J.F., Decker J., Li L., Montgomery K.T., Grills G., Kucherlapati R., Mekalanos J.J. Genomic characterization of non-O1, non-O139 Vibrio cholerae reveals genes for a type III secretion system. Proc. Natl Acad. Sci. USA. 2005; 102(9):3465–70. DOI:10.1073/pnas.0409918102.; Zhou Y., Gu S., Li J., Ji P., Zhang Y., Wu C., Jiang Q., Gao X., Zhang X. Complete genome analysis of highly pathogenic non-O1/O139 Vibrio cholerae isolated from Macrobrachium rosenbergii reveals pathogenicity and antibiotic resistance-related genes. Front. Vet. Sci. 2022; 9:882885. DOI:10.3389/fvets.2022.882885.; Jermyn W.S., Boyd E.F. Characterization of a novel Vibrio pathogenicity island (VPI-2) encoding neuraminidase (nanH) among toxigenic Vibrio cholerae isolates. Microbiology. 2002; 148(Pt. 11):3681–93. DOI:10.1099/00221287-148-11-3681.; Almagro-Moreno S., Boyd E.F. Sialic acid catabolism confers a competitive advantage to pathogenic Vibrio cholerae in the mouse intestine. Infect. Immun. 2009; 77(9):3807–16. DOI:10.1128/IAI.00279-09.; Arteaga M., Velasco J., Rodriguez S., Vidal M., Arellano C., Silva F., Carreño L.J., Vidal R., Montero D.A. Genomic characterization of the non-O1/non-O139 Vibrio cholerae strain that caused a gastroenteritis outbreak in Santiago, Chile, 2018. Microb. Genom. 2020; 6(3):e000340. DOI:10.1099/mgen.0.000340.; Carpenter M.R., Kalburge S.S., Borowski J.D., Peters M.C., Colwell R.R., Boyd E.F. CRISPR-Cas and contact-dependent secretion systems present on excisable pathogenicity islands with conserved recombination modules. J. Bacteriol. 2017; 199(10):e00842-16. DOI:10.1128/JB.00842-16.; Silva A.J., Benitez J.A. Vibrio cholerae biofilms and cholera pathogenesis. PLoS Negl. Trop. Dis. 2016; 10(2):e0004330. DOI:10.1371/journal.pntd.0004330.; Lutz C., Erken M., Noorian P., Sun S., McDougald D. Environmental reservoirs and mechanisms of persistence of Vibrio cholerae. Front. Microbiol. 2013; 4:375. DOI:10.3389/fmicb.2013.00375.; Reguera G., Kolter R. Virulence and the environment: a novel role for Vibrio cholerae toxin-coregulated pili in biofilm formation on chitin. J. Bacteriol. 2005; 187(10):3551–5. DOI:10.1128/JB.187.10.3551-3555.2005.; Crisan C.V., Chande A.T., Williams K., Raghuram V., Rishishwar L., Steinbach G., Watve S.S., Yunker P., Jordan I.K., Hammer B.K. Analysis of Vibrio cholerae genomes identifies new type VI secretion system gene clusters. Gen. Biol. 2019; 20(1):163. DOI:10.1186/s13059-019-1765-5.; Заднова С.П., Плеханов Н.А., Кульшань Т.А., Швиденко И.Г., Крицкий А.А. Система секреции шестого типа Vibrio cholerae. Проблемы особо опасных инфекций. 2022; 2:27–35. DOI:10.21055/0370-1069-2022-2-27-35.; Mondal A., Tapader R., Chatterjee N.S., Ghosh A., Sinha R., Koley H., Saha D.R., Chakrabarti M.K., Wai S.N., Pal A. Cytotoxic and inflammatory responses induced by outer membrane vesicleassociated biologically active proteases from Vibrio cholerae. Infect. Immun. 2016; 84(5):1478–90. DOI:10.1128/IAI.01365-15.; Vaitkevicius K., Rompikuntal P.K., Lindmark B., Vaitkevicius R., Song T., Wai S.N. The metalloprotease PrtV from Vibrio cholerae. FEBS J. 2008; 275(12):3167–77. DOI:10.1111/j.1742-4658.2008.06470.x.; Селянская Н.А., Егиазарян Л.А., Ежова М.И., Пасюкова Н.И., Водопьянов С.О. Анализ устойчивости к антибактериальным препаратам холерных вибрионов, выделенных из объектов окружающей среды в России в 2019 г. Антибиотики и химиотерапия. 2021; 66(3-4):4–11. DOI:10.24411/0235-2990-2021-66-3-4-4-11.; Parvin I., Shahunja K.M., Khan S.H., Alam T., Shahrin L., Ackhter M.M., Sarmin M., Dash S., Rahman M.W., Shahid A.S.M.S.B., Golam Faruque A.S., Ahmed T., Chisti M.J. Changing susceptibility pattern of Vibrio cholerae O1 isolates to commonly used antibiotics in the largest diarrheal disease hospital in Bangladesh during 2000–2018. Am. J. Trop. Med. Hyg. 2020; 103(2):652–8. DOI:10.4269/ajtmh.20-0058.; Zhou H., Zhao X., Wu R., Cui Z., Diao B., Li J., Wang D., Kan B., Liang W. Population structural analysis of O1 El Tor Vibrio cholerae isolated in China among the seventh cholera pandemic on the basis of multilocus sequence typing and virulence gene profiles. Infect. Genet. Evol. 2014; 22:72–80. DOI:10.1016/j.meegid.2013.12.016.; Kirchberger P.C., Orata F.D., Barlow E.J., Kauffman K.M., Case R.J., Polz M.F., Boucher Y. A small number of phylogenetically distinct clonal complexes dominate a coastal Vibrio cholerae population. Appl. Environ. Microbiol. 2016; 82(18):5576–86. DOI:10.1128/AEM.01177-16.; Esteves K., Mosser T., Aujoulat F., Hervio-Heath D., Monfort P., Jumas-Bilak E. Highly diverse recombining populations of Vibrio cholerae and Vibrio parahaemolyticus in French Mediterranean coastal lagoons. Front. Microbiol. 2015; 6:708. DOI:10.3389/fmicb.2015.00708.; Pichel M., Rivas M., Chinen I., Martín F., Ibarra C., Binsztein N. Genetic diversity of Vibrio cholerae O1 in Argentina and emergence of a new variant. J. Clin. Microbiol. 2003. 41(1):124–34. DOI:10.1128/JCM.41.1.124-134.2003.; https://journal.microbe.ru/jour/article/view/1861

  7. 7
    Academic Journal

    Συνεισφορές: The study was done with the financial support of the Ministry of Health of Russia within the framework of the research work on the topic AAAA-A20-120031090079-6. The study was done in the frame of the Sectoral Program of Rospotrebnadzor., Исследование выполнено при финансовой поддержке Минздрава России в рамках научно-исследовательской работы по теме АААА-А20-120031090079-6. Исследование выполнено в рамках отраслевой программы Роспотребнадзора.

    Πηγή: Head and Neck Tumors; Vol 12, No 3 (2022); 71-85 ; Опухоли головы и шеи; Vol 12, No 3 (2022); 71-85 ; 2411-4634 ; 2222-1468

    Περιγραφή αρχείου: application/pdf

  8. 8
    Academic Journal

    Πηγή: Siberian journal of oncology; Том 21, № 3 (2022); 70-80 ; Сибирский онкологический журнал; Том 21, № 3 (2022); 70-80 ; 2312-3168 ; 1814-4861 ; 10.21294/1814-4861-2022-21-3

    Περιγραφή αρχείου: application/pdf

    Relation: https://www.siboncoj.ru/jour/article/view/2165/990; Alves J., Palma P., Azevedo D., Rello J. Candidemia in the patient with malignancy. Hosp Pract (1995). 2018; 46(5): 246–52. doi:10.1080/21548331.2018.1508290.; McCarthy M.W., Walsh T.J. Candidemia in the cancer patient: diagnosis, treatment, and future directions. Expert Rev Anti Infect Ther. 2018; 16(11): 849–54. doi:10.1080/14787210.2018.1536546.; Colombo A.L., Agnelli C., Kontoyiannis D.P. Knowledge gaps in candidaemia/invasive candidiasis in haematological cancer patients. J Antimicrob Chemother. 2021; 76(3): 543–6. doi:10.1093/jac/dkaa446.; Togano T., Suzuki Y., Nakamura F., Tse W., Kume H. Epidemiology of visceral mycoses in patients with acute leukemia and myelodysplastic syndrome: Analyzing the national autopsy database in Japan. Med Mycol. 2021; 59(1): 50–7. doi:10.1093/mmy/myaa029.; Kotey F., Dayie N., Tetteh-Uarcoo P.B., Donkor E.S. Candida Bloodstream Infections: Changes in Epidemiology and Increase in Drug Resistance. Infect Dis (Auckl). 2021; 14: 1–5. doi:10.1177/11786337211026927.; Risum M., Astvad K., Johansen H.K., Schønheyder H.C., Rosenvinge F., Knudsen J.D., Hare R.K., Datcu R., Røder B.L., Antsupova V.S., Kristensen L., Gertsen J.B., Møller J.K., Dzajic E., Søndergaard T.S., Arendrup M.C. Update 2016-2018 of the Nationwide Danish Fungaemia Surveillance Study: Epidemiologic Changes in a 15-Year Perspective. J Fungi (Basel). 2021; 7(6): 491. doi:10.3390/jof7060491.; Schroeder M., Weber T., Denker T., Winterland S., Wichmann D., Rohde H., Ozga A.K., Fischer M., Kluge S. Epidemiology, clinical characteristics, and outcome of candidemia in critically ill patients in Germany: a single-center retrospective 10-year analysis. Ann Intensive Care. 2020; 10(1): 142. doi:10.1186/s13613-020-00755-8.; Prasad R., Nair R., Banerjee A. Emerging Mechanisms of Drug Resistance in Candida albicans. Prog Mol Subcell Biol. 2019; 58: 135–53. doi:10.1007/978-3-030-13035-0_6.; Xu Y., Chen L., Li C. Susceptibility of clinical isolates of Candida species to fuconazole and detection of Candida albicans ERG11 mutations. J Antimicrob Chemother. 2008; 61(4): 798–804. doi:10.1093/jac/ dkn015.; Chowdhary A., Prakash A., Sharma C., Kordalewska M., Kumar A., Sarma S., Tarai B., Singh A., Upadhyaya G., Upadhyay S., Yadav P., Singh P.K., Khillan V., Sachdeva N., Perlin D.S., Meis J.F. A multicentre study of antifungal susceptibility patterns among 350 Candida auris isolates (2009-17) in India: role of the ERG11 and FKS1 genes in azole and echinocandin resistance. J Antimicrob Chemother. 2018; 73(4): 891–9. doi:10.1093/jac/dkx480.; Pais P., Galocha M., Teixeira M.C. Genome-Wide Response to Drugs and Stress in the Pathogenic Yeast Candida glabrata. Prog Mol Subcell Biol. 2019; 58: 155–93. doi:10.1007/978-3-030-13035-0_7.; Davari A., Haghani I., Hassanmoghadam F., Nabili M., Shokohi T., Hedayati M.T., Shabanzadeh S., Moazeni M. Echinocandin resistance in Candida parapsilosis sensu stricto: Role of alterations in CHS3, FKS1 and Rho gene expression. J Glob Antimicrob Resist. 2020; 22: 685–8. doi:10.1016/j.jgar.2020.06.025.; Беженар М.Б., Плахова К.И. Механизмы развития резистентности к противогрибковым препаратам грибов рода Candida при рецидивирующем течении урогенитального кандидоза. Молекулярная генетика, микробиология и вирусология. 2020; 38(1): 15–23.; Пчелин И.М., Рябинин И.А., Сташук А.А., Выборнова И.В., Чилина Г.А., Добродеева В.С., Насырова Р.Ф., Шагдилеева Е.В., Васильева Н.В., Тараскина А.Е. Генетический полиморфизм ERG11 клинических изолятов candida albicans: теоретические и практические аспекты. Проблемы медицинской микологии. 2020; 22(3): 36–42.; Thomaz D.Y., Melhem M.S.C., de Almeida Júnior J.N., Benard G., Del Negro G.M.B. Lack of efcacy of echinocandins against high metabolic activity bioflms of Candida parapsilosis clinical isolates. Braz J Microbiol. 2020; 51(3): 1129–33. doi:10.1007/s42770-019-00219-7.; Kumari A., Tripathi A.H., Gautam P., Gahtori R., Pande A., Singh Y., Madan T., Upadhyay S.K. Adhesins in the virulence of opportunistic fungal pathogens of human. Mycology. 2021; 12(4): 296–324. doi:10.1080/21501203.2021.1934176.; Rosiana S., Zhang L., Kim G.H., Revtovich A.V., Uthayakumar D., Sukumaran A., Geddes-McAlister J., Kirienko N.V., Shapiro R.S. Comprehensive genetic analysis of adhesin proteins and their role in virulence of Candida albicans. Genetics. 2021; 217(2). doi:10.1093/genetics/ iyab003.; Singh D.K., Németh T., Papp A., Tóth R., Lukácsi S., Heidingsfeld O., Dostal J., Vágvölgyi C., Bajtay Z., Józsi M., Gácser A. Functional Characterization of Secreted Aspartyl Proteases in Candida parapsilosis. mSphere. 2019; 4(4). doi:10.1128/mSphere.00484-19.; Rasheed M., Battu A., Kaur R. Aspartyl proteases in Candida glabrata are required for suppression of the host innate immune response. J Biol Chem. 2018; 293(17): 6410–33. doi:10.1074/jbc.M117.813741.; Frías-De-León M.G., Hernández-Castro R., Conde-Cuevas E., García-Coronel I.H., Vázquez-Aceituno V.A., Soriano-Ursúa M.A., Farfán-García E.D., Ocharán-Hernández E., Rodríguez-Cerdeira C., Arenas R., Robledo-Cayetano M., Ramírez-Lozada T., Meza-Meneses P., Pinto-Almazán R., Martínez-Herrera E. Candida glabrata Antifungal Resistance and Virulence Factors, a Perfect Pathogenic Combination. Pharmaceutics. 2021; 13(10): 1529. doi:10.3390/pharmaceutics13101529.; Мальчикова А.O., Клясова Г.А. Продукция биопленок среди возбудителей инвазивного кандидоза у больных опухолевыми заболеваниями системы крови и у больных без опухолевых заболеваний системы крови. Гематология и трансфузиология. 2020; 65(3): 281–90.; Bentz M.L., Sexton D.J., Welsh R.M., Litvintseva A.P. Phenotypic switching in newly emerged multidrug-resistant pathogen Candida auris. Med Mycol. 2018. doi:10.1093/mmy/myy100.; de Jong A.W., Hagen F. Attack, Defend and Persist: How the Fungal Pathogen Candida auris was Able to Emerge Globally in Healthcare Environments. Mycopathologia. 2019; 184(3): 353–65. doi:10.1007/ s11046-019-00351-w.; Kordalewska M., Lee A., Park S., Berrio I., Chowdhary A., Zhao Y., Perlin D.S. Understanding Echinocandin Resistance in the Emerging Pathogen Candida auris. Antimicrob Agents Chemother. 2018; 62(6). doi:10.1128/AAC.00238-18.; Shrief R., Sayed Zaki M.E., El-Sehsah E.M., Ghaleb S., Mofreh M. Study of Antifungal Susceptibility, Virulence Genes and Bioflm Formation in Candida albicans. Open Microbiol J. 2019; 13(1): 241–8. doi:10.2174/1874285801913010241.; Stehr F., Felk A., Gácser A., Kretschmar M., Mähnss B., Neuber K., Hube B., Schäfer W. Expression analysis of the Candida albicans lipase gene family during experimental infections and in patient samples. FEMS Yeast Res. 2004; 4(4–5): 401–8. doi:10.1016/S1567-1356(03)00205-8.; Kadry A.A., El-Ganiny A.M., El-Baz A.M. Relationship between Sap prevalence and bioflm formation among resistant clinical isolates of Candida albicans. Afr Health Sci. 2018; 18(4): 1166–74. doi:10.4314/ ahs.v18i4.37.; Kritikos A., Neofytos D., Khanna N., Schreiber P.W., Boggian K., Bille J., Schrenzel J., Mühlethaler K., Zbinden R., Bruderer T., Goldenberger D., Pfyffer G., Conen A., Van Delden C., Zimmerli S., Sanglard D., Bachmann D., Marchetti O., Lamoth F.; Fungal Infection Network of Switzerland (FUNGINOS). Accuracy of Sensititre YeastOne echinocandins epidemiological cut-of values for identifcation of FKS mutant Candida albicans and Candida glabrata: a ten year national survey of the Fungal Infection Network of Switzerland (FUNGINOS). Clin Microbiol Infect. 2018; 24(11). doi:10.1016/j.cmi.2018.05.012.; Sheng C., Zhang W. New lead structures in antifungal drug discovery. Curr Med Chem. 2011; 18(5): 733–66. doi:10.2174/092986711794480113.; Arendrup M.C., Friberg N., Mares M., Kahlmeter G., Meletiadis J., Guinea J.; Subcommittee on Antifungal Susceptibility Testing (AFST) of the ESCMID European Committee for Antimicrobial Susceptibility Testing (EUCAST). How to interpret MICs of antifungal compounds according to the revised clinical breakpoints v. 10.0 European committee on antimicrobial susceptibility testing (EUCAST). Clin Microbiol Infect. 2020; 26(11): 1464–72. doi:10.1016/j.cmi.2020.06.007.; Bhattacharya S., Sae-Tia S., Fries B.C. Candidiasis and Mechanisms of Antifungal Resistance. Antibiotics (Basel). 2020; 9(6): 312. doi:10.3390/antibiotics9060312.; https://www.siboncoj.ru/jour/article/view/2165

  9. 9
    Academic Journal

    Πηγή: Russian Journal of Infection and Immunity; Vol 12, No 6 (2022); 1156-1162 ; Инфекция и иммунитет; Vol 12, No 6 (2022); 1156-1162 ; 2313-7398 ; 2220-7619

    Περιγραφή αρχείου: application/pdf

  10. 10
    Academic Journal
  11. 11
    Academic Journal
  12. 12
  13. 13
  14. 14
  15. 15
  16. 16
    Academic Journal

    Συγγραφείς: E. B. Brusina

    Πηγή: Эпидемиология и вакцинопрофилактика, Vol 14, Iss 2, Pp 50-56 (2015)

  17. 17
    Academic Journal

    Πηγή: Medical Herald of the South of Russia; Том 9, № 4 (2018); 81-86 ; Медицинский вестник Юга России; Том 9, № 4 (2018); 81-86 ; 2618-7876 ; 2219-8075 ; 10.21886/2219-8075-2018-9-4

    Περιγραφή αρχείου: application/pdf

    Relation: https://www.medicalherald.ru/jour/article/view/769/491; https://www.medicalherald.ru/jour/article/downloadSuppFile/769/206; Rothenbacher D., Brenner H. Burden of H. pylori and diseases in developed countries; recent developments and future implications // Microb. Infect. – 2003. –Vol.8. – N 5. – P. 693–703.; Frenck. R., Clemens J. Helicobacter in the developing world // Microb. Infect. – 2003. – Vol.8.–N 5.–P. 705–713. doi:10.4103/1319-3767.54743; 3. Жебрун А.Б. Инфекция Helicobacter pylori. – СПб: Феникс; 2006.; Malaty H., Paykov V., Bykova O. Helicobacter pylori and socioeconomic factors in Russia // Helicobacter. – 1996. – N 1. – P. 82–87.; 5. Reshetnikov O., Haiva V., Granberg C. Seroprevalence of Helicobacter pylori in Siberia // Helicobacter. – 2001. – Vol.4. – N 6. – P. 331–336.; 6. Safonova N., Zhebrun A., Noskov F.Te role of helicobacteriosis in the gastro–enteropathology in Saint–Petersburg // Helicobacter pylori and the new concepts in gastro–duodenal disease. Charles University, Prague–Chechoslovaria. – 1992. – P.31. (In Russ.); Наумова Л.А., Майков В.Г., Черняева О.Е. Динамика частоты выявления H. pylori у детей // Гастроэнтерология Санкт–Петербурга. – 2002. – N. 2-3. 0 –C. 87.; Решетников О.В., Курилович С.А. Распространенность хеликобактериоза в некоторых районах Сибири по данным серологических исследований // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. – 2000. – N 3. – С. 32–34.; Березняк Е.А., Сорокин В.М., Карпова И.О., Ступина Н.А., Терентьев А.Н. Особенности генотипов штаммов Нelicobacter pylori, циркулирующих в Ростовской области // Эпидемиология и вакцинопрофилактика. – 2013. – Т. 71. – № 4. – С.30-33.; Дудникова Э.В., Гилис Э.В., Зазьян А.В., Зазьян В.Г., Бухтоярова М.В., Бадьян А.С., Азиева Н.У. Влияние факторов патогенности Helicobacter pylori cagA, vacA, dupA на формирование атрофических изменений слизистой оболочки желудка при заболеваниях верхнего отдела желудочно–кишечного тракта у детей // Медицинский вестник Юга России. – 2016. – № 2. – С. 51–53. doi:10.21886/2219–8075–2016–2–51–53; Cabir S. Detection of Helicobacter pylori in faces by culture, PCR and enzyme immunoassay // J.Med.Microbiol. – 2001. – Vol. 50. – P. 1021-1029.; Chattopadhyay R.P., Ramamurthy T., Chowdhury A., Santra A., Dhali G. K. Multiplex PCR Assay for Rapid Detection and Genotyping of Helicobacter pylori Directly from Biopsy Specimens // J.Clin.Microbiology. – 2004. – Vol .42. – No. 6. – P. 2821–2824. doi:10.1128/JCM.42.6.2821–2824.2004; Абдулхаков Р.А. Распространенность Helicobacter pylori // Казанский медицинский журнал. – 2002. – Т. – № 5. – С. 365-367.; Герман С.В., Зыкова И.Е., Модестова А.В., Ермаков Н.В. Распространенность инфекции H. pylori среди населения Москвы // Российский журнал гастроэнтерологии, гепатологии, колопроктологии. – 2010. – № 2. – С. 25-30.; Сварваль А.В., Ферман Р.С., Жебрун А.Б. Распространенность инфекции Helicobacter pylori среди населения Северо-Западного федерального округа Российской Федерации // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. – 2011. – № 4. – С. 84-88.; Вшивков В.А. Популяционная эпидемиология инфекции Helicobacter pylori. Состояние проблемы в Сибири// Забайкальский медицинский вестник. – 2014. – № 2. – С.126-133.; Жебрун А.Б., Сварваль А.В., Балабаш О.А. Ферман Р.С. Характеристика популяции Helicobacter pylori у пациентов с заболеваниями желудочно–кишечного тракта // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. – 2013. – № 2. – С.90-96; Ахтереева А.Р., Давидюк Ю.Н, Файзуллина Р.А., Ивановская К.А., Сафин А.Г., Сафина Д.Д., Абдулхаков С.Р. Распространённость генотипов Helicobacter pylori у пациентов с гастродуоденальной патологией в Казани // Казанский медицинский журнал. – 2017. – Т. 98. – №5. – С.723-728. doi:10.17750/KMJ2017–723; Сварваль А.В., Ферман Р.С., Жебрун А.Б. Изучение динамики превалентности инфекции, обусловленной Helicobacter pylori, среди различных возрастных групп населения Санкт–Петербурга в 2007-2011 гг. // Инфекция и иммунитет. – 2012. – Т. 2. – № 4.–С. 741-746.; Мишкина Т.В., Александрова В.А., Суворов А.Н. Влияние различных генотипов H. pylori на клинико-эндоскопические и морфологические проявления хронических гастродуоденальных заболеваний у детей и подростков // Педиатрия. – 2007. –Т. 86. – № 5. – С. 28-32.; Alarcon T., Martinez M., Urruzuno P. Prevalence of Cag A and Vac A antibodies in children with Helicobacter pyloriassociated peptic ulcer compared to prevalence in pediatric patients with active and non-active chronic gastritis // Clin. Diagn. Lab. Immunol. – 2000. – Vol. 7. – No. 5. – P. 842-844. doi:10.1128/CDLI.7.5.842-844.2000; https://www.medicalherald.ru/jour/article/view/769

  18. 18
  19. 19
    Academic Journal
  20. 20