Εμφανίζονται 1 - 13 Αποτελέσματα από 13 για την αναζήτηση '"Т-клеточный иммунитет"', χρόνος αναζήτησης: 0,79δλ Περιορισμός αποτελεσμάτων
  1. 1
    Academic Journal

    Συνεισφορές: The article was prepared based on the materials of studies carried out within the framework of the Grant of the Kazan State Medical University of the Ministry of Health of Russia No. 2/22–1 dated August 1, 2022 “Clinical and laboratory predictors of post-COVID conditions in different age groups”, Статья подготовлена по материалам исследований, выполненных в рамках гранта ФГБОУ ВО Казанского ГМУ Минздрава России № 2/22–1 от 1.08.2022 года «Клинико-лабораторные предикторы постковидных состояний в разных возрастных группах».

    Πηγή: Rossiyskiy Vestnik Perinatologii i Pediatrii (Russian Bulletin of Perinatology and Pediatrics); Том 68, № 5 (2023); 37-44 ; Российский вестник перинатологии и педиатрии; Том 68, № 5 (2023); 37-44 ; 2500-2228 ; 1027-4065

    Περιγραφή αρχείου: application/pdf

    Relation: https://www.ped-perinatology.ru/jour/article/view/1872/1411; Sehrawat S., Kumar D., Rouse B.T. Herpesviruses: Harmonious Pathogens but Relevant Cofactors in Other Diseases? Front Cell Infect Microbiol 2018; 25(8): 177. DOI:10.3389/fcimb.2018.00177; Barton E., White D., Cathelyn J., Brett-McClellan K.A., Engle M., Diamond M.S. et al. Herpesvirus latency confers symbiotic protection from bacterial infection. Nature 2007; 447: 326–329. DOI:10.1038/nature05762; Litjens N., van der Wagen L., Kuball J., Kwekkeboom J. Potential Beneficial Effects of Cytomegalovirus Infection after Transplantation. Front Immunol 2018; 1(9): 389. DOI:10.3389/fimmu.2018.00389; Paces J., Strizova Z., Smrz D., Cerny J. COVID-19 and the immune system. Physiol Res 2020; 69(3): 379–388. DOI:10.33549/physiolres.934492; Khairallah C., Déchanet-Merville J., Capone M. γδ T Cell-Mediated Immunity to Cytomegalovirus Infection. Front Immunol. 2017; 8: 105. DOI:10.3389/fimmu.2017.00105; Shafiee A., Teymouri Athar M.M., Amini M.J., Hajishah H., Siahvoshi S., Jalali M. et al. Reactivation of herpesviruses during COVID-19: A systematic review and meta-analysis. Rev Med Virol 2023; 33(3): e2437. DOI:10.1002/rmv.2437; Chen J., Song J., Dai L., Post S.R., Qin Z. SARS-CoV-2 infection and lytic reactivation of herpesviruses: A potential threat in the postpandemic era? J Med Virol 2022; 94(11): 5103–5111. DOI:10.1002/jmv.27994; Banko A., Miljanovic D., Cirkovic A. Systematic review with meta-analysis of active herpesvirus infections in patients with COVID-19: Old players on the new field. Int J Infect Dis 2023; 130: 108–125. DOI:10.1016/j.ijid.2023.01.036; Su Y., Yuan D., Chen D.G., Ng R.H., Wang K., Choi J. et al. Multiple early factors anticipate post-acute COVID-19 sequelae. Cell 2022; 185(5): 881–895.e20. DOI:10.1016/j.cell.2022.01.014; Хайдуков С.В., Байдун Л.В., Зурочка А.В., Тотолян А.А. Стандартизированная технология «исследование субпопуляционного состава лимфоцитов периферической крови с применением проточных цитофлюориметрованализаторов». Росcийский иммунологический журнал 2014; 8(17): 4: 974–992. DOI:10.15789/1563–0625–2012–3–255–268; Сологуб Т.В., Ледванов М.Ю., Малый В.П., Стукова Н.Ю., Романцов М.Г., Бизенкова М.Н., Полякова Т.Д. Иммунный ответ при вирусных инфекциях. Успехи современного естествознания 2009; 12: 29–33.; Sulik A., Oldak E., Kroten A., Lipska A., Radziwon P. Epstein–Barr virus effect on frequency of functionally distinct T cell subsets in children with infectious mononucleosis. Adv Med Sc. 2014; 59(2): 227–222. DOI:10.1016/j.advms.2014.04.003; Кашуба Э.А., Антонова М.В., Дроздова Т.Г., Рычкова О.А., Любимцева О.А., Ханипова Л.В. и др. Показатели клеточного и гуморального иммунитета дошкольников с инфекционным мононуклеозом при первичном инфицировании и реактивации Эпштейна–Барр вирусной инфекции. Инфекционные болезни: новости, мнения, обучение 2022; 11(2): 57–63. DOI:10.33029/2305–3496–2022–11–2–57–63; Moss P. The T cell immune response against SARSCoV-2. Nat Immunol 2022; 23:186–193. DOI:10.1038/s41590–021–01122-w; Lu X., Yamasaki S. Current understanding of T cell immunity against SARS-CoV-2. Inflamm Regener 2022; 42: 51. DOI:10.1186/s41232–022–00242–6

  2. 2
  3. 3
    Academic Journal

    Συνεισφορές: Авторы заявляют об отсутствии финансирования при проведении исследования

    Πηγή: Journal Infectology; Том 14, № 1 (2022); 96-104 ; Журнал инфектологии; Том 14, № 1 (2022); 96-104 ; 2072-6732 ; 10.22625/2072-6732-2022-14-1

    Περιγραφή αρχείου: application/pdf

    Relation: https://journal.niidi.ru/jofin/article/view/1313/958; Пшеничная, Н.Ю. COVID-19 – Новая глобальная угроза человечеству / Н.Ю. Пшеничная [и др.] // Эпидемиология и инфекционные болезни. Актуальные вопросы – 2020. – №1. – С. 6–13.; Щелканов, М.Ю. История изучения и современная классификация коронавирусов (nidovirales: coronaviridae) / М.Ю. Щелканов [и др.] // Инфекция и иммунитет. – 2020. – Т. 10, № 2. – С. 221–246.; Крюков, Е.В. Электронно-микроскопические изменения слизистой оболочки носоглотки у пациентов с COVID-19 в зависимости от клинической формы и периода заболевания / Е.В. Крюков [и др.] // Журнал инфектологии. – 2021. – Т. 13, №2. – С. 5–13.; Салухов, В.В. Актуальные вопросы диагностики, обследования и лечения больных с COVID-19-ассоциированной пневмонией в различных странах и континентах / В.В. Салухов [и др.] // Медицинский совет. – 2020. – № 21. – С. 96–102; Тришкин, Д.В. Стандарт диагностики и лечения новой коронавирусной инфекции (COVID-19) у военнослужащих Вооруженных Сил Российской Федерации / Д.В. Тришкин [и др.]. – М.: ГВМУ, 2020. – 54 c.; Ceylan Z. Estimation of COVID-19 prevalence in Italy, Spain, and France. / Z. Ceylan // Sci Total Environ. – 2020. – Vol. 729. – Р. 138817. doi:10.1016/j.scitotenv.2020.138817; She J. COVID-19 epidemic: Disease characteristics in children. / J. She, L. Liu, W. Liu [et al.] // J Med. Virol. – 2020. – Vol. 92. – №7. Р. 747-754 DOI 10.1002/jmv.25807; Ni L. Detection of SARS-CoV-2-Specific Humoral and Cellular Immunity in COVID-19 Convalescent Individuals / L. Ni, F. Ye, M.L Cheng [et al.] // Immunity. 2020. – Vol. 52. – №6. – P. 971-977.; Paces J. COVID-19 and the immune system / J. Paces, Z. Strizova, D. Smrz [et al.] // Physiol Res. – 2020. – Vol. 69. – №3. – P. 379-388.; Altmann D.M. What policy makers need to know about COVID-19 protective immunity / D.M. Altmann, D.C. Douek, R.J. Boyton // Lancet. 2020. – Vol. 395. – №10236. – P. 1527-1529.; Chowdhury M.A. Immune response in COVID-19: A review. / M.A. Chowdhury N. Hossain, M.A. Kashem [et al.] // J Infect Public Health. – 2020. – Vol. 13. – N11. – P. 1619-1629.; Ma H. Serum IgA, IgM, and IgG responses in COVID-19 / H. Ma, W. Zeng, H. He [et al.] // Cell Mol Immunol. – 2020. – Vol. 17. – №7. – P. 773-775.; Yang L. COVID-19: immunopathogenesis and Immunotherapeutics / L. Yang, S. Liu, J. Liu [et al.] // Signal Transduct Target Ther. – 2020. – Vol. 5. – №1. – Р.128. doi:10.1038/s41392-020-00243-2.; Leslie M. T cells found in coronavirus patients ‘bode well’ for long-term immunity / M. Leslie // Science. – 2020. – Vol. 6493. – №368. – Р. 809-810. doi:10.1126/science.368.6493.809.; DiPiazza A.T. T cell immunity to SARS-CoV-2 following natural infection and vaccination / A.T. DiPiazza, B.S. Graham, T.J. Ruckwardt // Biochem Biophys Res Commun. -2021. – №538. – Р. 211-217. doi:10.1016/j.bbrc.2020.10.060; Jarjour N.N. T Cell Memory: Understanding COVID-19 / N.N. Jarjour, D. Masopust, S.C. Jameson // Immunity. – 2021. – Vol. 54. – №1. – Р. 14-18. doi:10.1016/j.immuni.2020.12.009.; De Candia P. T Cells: Warriors of SARS-CoV-2 Infection. / P. De Candia, F. Prattichizzo, S. Garavelli [et al.] // Trends Immunol. – 2021. – Vol. 42. – №1. Р.18-30. doi:10.1016/j.it.2020.11.002.; Sette A. Pre-existing immunity to SARS-CoV-2: the knowns and unknowns / A. Sette, S. Crotty / Nat Rev Immunol. – 2020. – Vol. 20. – №8. – Р.457-458. doi:10.1038/s41577-020-0389-z.; Le Bert N. SARS-CoV-2-specific T cell immunity in cases of COVID-19 and SARS, and uninfected controls / N. Le Bert, A.T. Tan, K, Kunasegaran [et al.] // Nature. – 2020. – Vol. 7821. – №.584. – Р. 457-462. doi:10.1038/s41586-020-2550-z.; Shomuradova A.S. SARS-CoV-2 Epitopes Are Recognized by a Public and Diverse Repertoire of Human T Cell Receptors / A.S. Shomuradova, M.S. Vagida, S.A. Sheetikov [et al.] // Immunity. 2020. – Vol. 53. – №6. – Р. 1245-1257.e5. doi:10.1016/j.immuni.2020.11.004.; Peng Y. Broad and strong memory CD4+ and CD8+ T cells induced by SARS-CoV-2 in UK convalescent individuals following COVID-19 / Y. Peng, A.J. Mentzer, G, Liu [et al.] // Nat Immunol. – 2020. – Vol. 21. – №11. – Р. 1336-1345. doi:10.1038/s41590-020-0782-6.; Cassaniti I. SARS-CoV-2 specific T-cell immunity in COVID-19 convalescent patients and unexposed controls measured by ex vivo ELISpot assay / I. Cassaniti, E. Percivalle, F. Bergami [et al.] // Clin Microbiol Infect. – 2021. – Vol. 27. – №7. Р.1029-1034. doi:10.1016/j.cmi.2021.03.010.; Zhang J. One-year sustained cellular and humoral immunities of COVID-19 convalescents / J. Zhang, H. Lin, B. Ye [et al.] // Clin Infect Dis. – 2021. -ciab884. doi:10.1093/cid/ciab884.; Chen G. L. Safety and immunogenicity of the SARSCoV-2 ARCoV mRNA vaccine in Chinese adults: a randomised, double-blind, placebo-controlled, phase 1 trial / G.L. Chen, X.F. Li, X.H. Dai [et al.] // Lancet Microbe. – 2022. Online. doi:10.1016/S2666-5247(21)00280-9.; Folegatti P.M. Safety and immunogenicity of the ChAdOx1 nCoV-19 vaccine against SARS-CoV-2: a preliminary report of a phase 1/2, single-blind, randomised controlled trial / P.M. Folegatti, K.J. Ewer, P.K. Aley [et al.] // Lancet. – 2020. – Vol. 10249. – №396. – Р.467-478. doi:10.1016/S0140-6736(20)31604-4.; Logunov D.Y. Safety and efficacy of an rAd26 and rAd5 vector-based heterologous prime-boost COVID-19 vaccine: an interim analysis of a randomised controlled phase 3 trial in Russia / D.Y. Logunov, I.V. Dolzhikova, D.V. Shcheblyakov [et al.] // Lancet. 2021. – Vol. 10275. – №397. Р. 671-681. doi:10.1016/S0140-6736(21)00234-8.; Angyal A. T-cell and antibody responses to first BNT162b2 vaccine dose in previously infected and SARS-CoV2-naive UK health-care workers: a multicentre prospective cohort study / A. Angyal, S. Longet, S.C. Moore [et al.] // Lancet Microbe. – 2022. – Vol. 3. – №1. – Р.e21-e31. doi:10.1016/S2666-5247(21)00275-5.; Vályi-Nagy I. Comparison of antibody and T cell responses elicited by BBIBP-CorV (Sinopharm) and BNT162b2 (Pfizer-BioNTech) vaccines against SARS-CoV-2 in healthy adult humans / I. Vályi-Nagy, Z. Matula, M. Gönczi [et al.] // Geroscience. – 2021. – Vol. 43. – №5. – Р. 2321-2331. doi:10.1007/s11357-021-00471-6.; Dennehy K.M. Comparison of the Development of SARS-Coronavirus-2-Specific Cellular Immunity, and Central Memory CD4+ T-Cell Responses Following Infection versus Vaccination / K.M. Dennehy, E. Löll, C. Dhillon [et al.] // Vaccines (Basel). – 2021. – Vol. 9. – №12. – Р. 1439. doi:10.3390/vaccines9121439.; https://journal.niidi.ru/jofin/article/view/1313

  4. 4
  5. 5
  6. 6
  7. 7
    Academic Journal

    Πηγή: Medical Immunology (Russia); Том 12, № 4-5 (2010); 387-392 ; Медицинская иммунология; Том 12, № 4-5 (2010); 387-392 ; 2313-741X ; 1563-0625 ; 10.15789/1563-0625-2010-4-5

    Περιγραφή αρχείου: application/pdf

    Relation: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/209/211; Алешкова О.И. Лучевые и молекулярно-биологические критерии оценки эффективности неоадъювантной химиотерапии местнораспространенного рака шейки матки (IIB-IIIB стадий)//Вестн. РНЦРР МЗ РФ. -2006. -№ 7.; Воробьева Л.И., Федоренко З.П., Жилка Н.Я. Стан органiзацiї онкогiнекологiчної допомоги населенню України//Матер ХI з'їзду онкологiв України. -Судак, 2006. -№ 7. -С. 36.; Гадецкая Н.А., Андреева Л.Ю., Тупицын Н.Н. Клеточные показатели специфического гуморального иммунного ответа на антиген Lec у больных раком молочной железы//Аллергология и иммунология в педиатрии: материалы междунар. конгр. «Иммунитет и болезни: от теории к терапии». -2005. -Т. 6, № 5. -С. 169.; Дубовецкая О.Б. Диагностический алгоритм использования серологического опухолевого маркера SCC у больных раком шейки матки: Дис. канд. мед. наук. -М., 2005. -144 с.; Евстигнеева Л.А., Бахидзе Е.В., Семиглазов В.В. Иммунологический статус у больных карциномой in situ и инвазивным раком шейки матки//Материалы V съезда онкологов и радиологов СНГ (Ташкент, 14-16 мая 2008 г.). -Ташкент, 2008. -С. 93.; Рожкова Е.Б. Рак щитовидной железы: прогнозирование выживаемости и рецидивирования с помощью определения онкомаркеров и прогностического индекса//Тезисы работ участников открытого российского конкурса на лучшую научную работу студентов 2004 года по разделу «медицинские науки». -М., 2005. -С. 8-9.; Algarra I., Garcia-Lora A., Cabrera T. The selection of tumor variants with altered expression of classical and nonclassical MHC class I molecules: implications for tumor immune escape//Cancer Immunology and Immunotherapy. -2004. -Vol. 53. -P. 904-910.; Berg M., Wingender G., Djandji D. Cross-presentation of antigens from apoptotic tumor cells by liver sinusoidal endothelial cells leads to tumor-specific CD8+T cell tolerance//Europ. J. Immunol. -2006. -Vol. 36. -P. 2960-2970.; Borras G., Molina R., Xercavins J. SCC antigen in cervical cancer//Eur. Gynaecol. Oncol. -1999. -Vol. 13, № 5. -Р. 414-418.; Cataltepe S., Luke C., Silverman G. TD-10 SCC antigen workshop//Tumor Biol. -2002. -Vol. 23. -Р. 17.; Davelaar E.M., van de Lande J., von Mensdorff-Pouilly S. A combination of serum tumor markers identifies highrisk patients with early-stage squamous cervical cancer//Tumour. Biol. -2008. -Vol. 29, № 1. -P. 9-17.; Fontana X., Lagrange J., Francois E. Assesment of SCC antigen as a marker of epidermoid carcinoma of the anal canal//Dis-Colon-Recrum. -1991. -Vol. 34, №2. -Р. 126-131.; Kato H. Expression and function of SCC antigen//Anticancer Res. -1996. -Vol. 16, № 48. -Р. 2149-2153.; Koch T., Eiffert H., Spindler M. Relevance of the new tumor marker SCC for the diagnosis and follow-up control of sguamous epithelial carcinoma of the head and neck//HNO. -1999. -Vol. 37, № 11. -Р. 454-459.; Makrantonakis P., Pectasides D., Aggrouridakis C. SCC in sguamous cell cancer of head and neck//Am-J-Clin-Oncol. -1999. -Vol. 22, № 6. -Р. 542-549.; Martin G.S. Cell signaling and cancer//Cancer Cell. -2003. -Vol. 4. -P. 167-174.; Martinez F.O., Gordon S., Locati M., Mantovani A. Transcriptional profiling of the human monocyte-to-macrophage differentiation and polarization: new molecules and patterns of gene expression//J. Immunol. -2006. -Vol. 177. -P. 7303-7311.; Ogino I., Nakayama H., Okamoto N. The role of pretreatment squamous cell carcinoma antigen level in locally advanced squamous cell carcinoma of the uterine cervix treated by radiotherapy//Int. J. Gynecol. Cancer. -2006. -Vol. 16, № 3. -P. 1094-1100.; Roijer E., Kosinska U., Andersson J. Rearrangement of SCC antigen genes//Tumor Biol. -1998. -Vol. 1. -Р. 84.; Sanchez-de-Cos-Escuin J., Lopez-Parra S., Desdier-Vicente C. Diagnostic utility of CEA, NSE and SCC antigen in malignant pleural effusion//An-Med-Interna. -1996. -Vol. 13, № 8. -Р. 369-373.; Suminami Y., Kishi F., Sekiguchi K., Kato H. Squamous cell carcinoma antigen is a new member of the serine protease inhibitors//Biochem Biophys Res Commum. -1991. -Vol. 181, № 1. -Р. 51-58.; Thomas D.A., Massague J. TGF-beta directly targets cytotoxic T cell functions during tumor evasion of immune surveillance//Cancer Cell. -2005. -Vol. 8. -P. 369-380.; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/209

  8. 8
  9. 9
  10. 10
  11. 11
  12. 12
  13. 13