Genetic and spermatological aspects of acephalic sperm syndrome ; Генетические и сперматологические аспекты синдрома ацефалических сперматозоидов

Συγγραφείς: S. Sh. Khayat, E. E. Bragina, L. F. Kurilo, V. B. Chernykh, С. Ш. Хаят, Е. Е. Брагина, Л. Ф. Курило, В. Б. Черных

Συνεισφορές: The study was carried out within the framework of the state task of the Ministry of Science and Higher Education of the Russian Federation for Research Centre for Medical Genetics. Ultrastructural studies were carried out within the framework of the Moscow State University Development Program (PNR 5.13)., Работа выполнена в рамках государственного задания Министерства науки и высшего образования Российской Федерации для ФГБНУ «Медико-генетический научный центр им. акад. Н.П. Бочкова». Ультраструктурные исследования выполнялись в рамках программы развития Московского государственного университета (PNR 5.13).

Πηγή: Andrology and Genital Surgery; Том 24, № 4 (2023); 25-36 ; Андрология и генитальная хирургия; Том 24, № 4 (2023); 25-36 ; 2412-8902 ; 2070-9781

Θεματικοί όροι: мужские половые клетки, gene variants, teratozoospermia, acephalic spermatozoa syndrome, male germ cells, генные варианты, тератозооспермия, синдром ацефалических сперматозоидов

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://agx.abvpress.ru/jour/article/view/702/547; Андрология для урологов. Клинические рекомендации. Под ред. П.А. Щеплева. М.: Медконгресс, 2019. 424 с.; Курило Л.Ф., Штаут М.И. Генетические и эпигенетические механизмы регуляции, хронология и динамика сперматогенеза у млекопитающих. Андрология и генитальная хирургия 2015;16(1):31–40. DOI:10.17650/2070-9781-2015-1-31-40; Neto F.T., Bach P.V., Najari B.B. et al. Spermatogenesis in humans and its affecting factors. Semin Cell Dev Biol 2016;59:10–26. DOI:10.1016/j.semcdb.2016.04.009; Krausz C., Riera-Escamilla A. Genetics of male infertility. Nat Rev Urol 2018;15(6):369–84. DOI:10.1038/s41585-018-0003-3; Jiao S.Y., Yang Y.H., Chen S.R. Molecular genetics of infertility: loss-of-function mutations in humans and corresponding knockout/mutated mice. Hum Reprod Update 2021;27(1):154–89. DOI:10.1093/humupd/dmaa034; WHO laboratory manual for the examination and processing of human semen. 6th edn. Geneva: WHO, 2021.; Брагина Е.Е., Бочарова Е.Н. Количественное электронно микроскопическое исследование сперматозоидов при диагностике мужского бесплодия. Андрология и генитальная хирургия 2014;15(1):41–50. DOI:10.17650/2070-9781-2014-1-41-50; Брагина Е.Е., Сорокина Т.М., Арифулин Е.А., Курило Л.Ф. Генетически обусловленные формы патозооспермии. Обзор литературы и результаты исследований. Андрология и генитальная хирургия 2015;16(3):29–39. DOI:10.17650/2070-9781-2015-16-3-29-39; Sha Y., Liu W., Li L. et al. Pathogenic variants in ACTRT1 cause acephalic spermatozoa syndrome. Front Cell Dev Biol 2021;9:676246. DOI:10.3389/fcell.2021.676246; Zaneveld L.J., Polakoski K.L. Collection and physical examination of the ejaculate. In: Techniques of human andrology. Ed. by E.S. Hafez. Amsterdam: Elsevier/North-Holland Biomedical Press, 1977. Pp. 147–172.; Chemes H.E., Puigdomenech E.T., Carizza C. et al. Acephalic spermatozoa and abnormal development of the head-neck attachment: a human syndrome of genetic origin. Hum Reprod 1999;14(7):1811–8. DOI:10.1093/humrep/14.7.1811; Бочарова Е.Н. Генетически обусловленная ультраструктурная патология сперматозоидов. Вестник новых медицинских технологий 2008;15(1):52–5.; Perotti M.E., Giarola A., Gioria M. Ultrastructural study of the decapitated sperm defect in an infertile man. J Reprod Fertil 1981;63(2):543–9. DOI:10.1530/jrf.0.0630543; Baccetti B., Selmi M.G., Soldani P. Morphogenesis of “decapitated” spermatozoa in a man. J Reprod Fertil 1984;70(2):395–7. DOI:10.1530/jrf.0.0700395; Chemes H.E., Carizza C., Scarinci F. et al. Lack of a head in human spermatozoa from sterile patients: a syndrome associated with impaired fertilization. Fertil Steril 1987;47(2):310–6. DOI:10.1016/s0015-0282(16)50011-9; Baccetti B., Burrini A.G., Collodel G. et al. Morphogenesis of the decapitated and decaudated sperm defect in two brothers. Gamete Res 1989;23(2):181–8. DOI:10.1002/mrd.1120230205; Perotti M.E., Gioria M. Fine structure and morphogenesis of “headless” human spermatozoa associated with infertility. Cell Biol Int Rep 1981;5(2):113. DOI:10.1016/0309-1651(81)90018-7; De Kretser D.M. Ultrastructural features of human spermiogenesis. Z Zellforsch Mikrosk Anat 1969;98(4):477–505. DOI:10.1007/BF00347027; Узбеков Р.Э., Алиева И.Б. Центросома – загадка «клеточного процессора». Цитология 2008;(2):91–112.; Fishman E.L., Jo K., Nguyen Q.P.H. et al. A novel atypical sperm centriole is functional during human fertilization. Nat Commun 2018;9(1):2210. DOI:10.1038/s41467-018-04678-8; Avidor-Reiss T., Achinger L., Uzbekov R. The Centriole’s role in miscarriages. Front Cell Dev Biol 2022;10:864692. DOI:10.3389/fcell.2022.864692; Schatten H., Sun Q.-Y. The role of centrosomes in mammalian fertilization and its significance for ICSI. Mol Hum Reprod 2009;15(9):531–8. DOI:10.1093/molehr/gap049; Sathananthan A.H., Ratnam S.S., Ng S.C. et al. The sperm centriole: its inheritance, replication and perpetuation in early human embryos. Hum Reprod 1996;11(2):345–56. DOI:10.1093/hum-rep/11.2.345; Sathananthan A.H., Ratnasooriya W.D., de Silva P.K., Menezes J. Characterization of human gamete centrosomes for assisted reproduction. Ital J Anat Embryol 2001;106(2 Suppl 2):61–73.; Nakamura S., Terada Y., Horiuchi T. et al. Analysis of the human sperm centrosomal function and the oocyte activation ability in a case of globozoospermia, by ICSI into bovine oocytes. Hum Reprod 2002;17(11):2930–4. DOI:10.1093/humrep/17.11.2930; Garanina A.S., Alieva I.B., Bragina E.E. et al. The centriolar adjunct–appearance and disassembly in spermiogenesis and the potential impact on fertility. Cells 2019;8(2):180. DOI:10.3390/cells8020180; Nie H., Tang Y., Qin W. Beyond acephalic spermatozoa: the complexity of intracytoplasmic sperm injection outcomes. Biomed Res Int 2020;2020:6279795. DOI:10.1155/2020/6279795; Moretti E., Signorini C., Noto D. et al. The relevance of sperm morphology in male infertility. Front Reprod Health 2022;4:945351. DOI:10.3389/frph.2022.945351; Shang Y., Yan J., Tang W. et al. Mechanistic insights into acephalic spermatozoa syndrome-associated mutations in the human SUN5 gene. J Biol Chem 2018;293(7):2395–407. DOI:10.1074/jbc.RA117.000861; Le Lannou D. [Teratospermia consisting of the absence of the head of the spermatozoa because of a fault in the joint between the head and the neck of the sperm in man (In French)]. J Gynecol Obstet Biol Reprod (Paris) 1979;8(1):43–5.; Cazin C., Boumerdassi Y., Martinez G. et al. Identification and characterization of the most common genetic variant responsible for acephalic spermatozoa syndrome in men originating from North Africa. Int J Mol Sci 2021;22(4):2187. DOI:10.3390/ijms22042187; Jan S.Z., Vormer T.L., Jongejan A. et al. Unraveling transcriptome dynamics in human spermatogenesis. Development 2017;144(20):3659–73. DOI:10.1242/dev.152413; Beurois J., Cazin C., Kherraf Z.-E. et al. Genetics of teratozoospermia: back to the head. Best Pract Res Clin Endocrinol Metab 2020;34(6):101473. DOI:10.1016/j.beem.2020.101473; Sha Y., Wang X., Yuan J. et al. Loss-of-function mutations in centrosomal protein 112 is associated with human acephalic spermatozoa phenotype. Clin Genet 2020;97(2):321–8. DOI:10.1111/cge.13662; Crisp M., Liu Q., Roux K. et al. Coupling of the nucleus and cytoplasm: role of the LINC complex. J Cell Biol 2006;172(1):41–53. DOI:10.1083/jcb.200509124; Mazaheri Moghaddam M., Mazaheri Moghaddam M., Hamzeiy H. et al. Genetic basis of acephalic spermatozoa syndrome, and intracytoplasmic sperm injection outcomes in infertile men: a systematic scoping review. J Assist Reprod Genet 2021;38(3):573–86. DOI:10.1007/s10815-020-02008-w; Yassine S., Escoffier J., Abi Nahed R. et al. Dynamics of Sun5 localization during spermatogenesis in wild type and Dpy19l2 knockout mice indicates that Sun5 is not involved in acrosome attachment to the nuclear envelope. PLoS One 2015;10(3):e0118698. DOI:10.1371/journal.pone.0118698; Zhu F., Wang F., Yang X. et al. Biallelic SUN5 mutations cause autosomal-recessive acephalic spermatozoa syndrome. Am J Hum Genet 2016;99(4):942–9. DOI:10.1016/j.ajhg.2016.08.004; Zhu F., Liu C., Wang F. et al. Mutations in PMFBP1 cause acephalic spermatozoa syndrome. Am J Hum Genet 2018;103(2):188–99. DOI:10.1016/j.ajhg.2018.06.010; Shang Y., Zhu F., Wang L. et al. Essential role for SUN5 in anchoring sperm head to the tail. eLife 2017;6:e28199. DOI:10.7554/eLife.28199; Oji A., Noda T., Fujihara Y. et al. CRISPR/Cas9 mediated genome editing in ES cells and its application for chimeric analysis in mice. Sci Rep 2016;6:31666. DOI:10.1038/srep31666; Plaseski T., Noveski P., Popeska Z. et al. Association study of single-nucleotide polymorphisms in FASLG, JMJDIA, LOC203413, TEX15, BRDT, OR2W3, INSR, and TAS2R38 genes with male infertility. J Androl 2012;33(4):675–83. DOI:10.2164/jandrol.111.013995; Pivot-Pajot C., Caron C., Govin J. et al. Acetylation-dependent chromatin reorganization by BRDT, a testis-specific bromodomaincontaining protein. Mol Cell Biol 2003;23(15):5354–65. DOI:10.1128/mcb.23.15.5354-5365.2003; Berkovits B.D., Wolgemuth D.J. The role of the double bromodomain-containing BET genes during mammalian spermatogenesis. Curr Top Dev Biol 2013;102:293–326. DOI:10.1016/b978-0-12-416024-8.00011-8; Li L., Sha Y., Wang X. et al. Whole-exome sequencing identified a homozygous BRDT mutation in a patient with acephalic spermatozoa. Oncotarget 2017;8(12):19914–22. DOI:10.18632/oncotarget.15251; Bisgrove D.A., Mahmoudi T., Henklein P., Verdin E. Conserved P-TEFb-interacting domain of BRD4 inhibits HIV transcription. Proc Natl Acad Sci U S A 2007;104(34):13690–5. DOI:10.1073/pnas.0705053104; Liu G., Wang N., Zhang H. et al. Novel mutations in PMFBP1, TSGA10 and SUN5: expanding the spectrum of mutations that may cause acephalic spermatozoa. Clin Genet 2020;97(6):938–9. DOI:10.1111/cge.13747; Sha Y.W., Wang X., Xu X. et al. Biallelic mutations in PMFBP1 cause acephalic spermatozoa. Clin Genet 2019;95(2):277–86. DOI:10.1111/cge.13461; Lu M., Kong S., Xiang M. et al. A novel homozygous missense mutation of PMFBP1 causes acephalic spermatozoa syndrome. J Assist Reprod Genet 2021;38(4):949–55. DOI:10.1007/s10815-021-02075-7; Sha Y.W., Sha Y.K., Ji Z.Y. et al. TSGA10 is a novel candidate gene associated with acephalic spermatozoa. Clin Genet 2018;93(4):776–83. DOI:10.1111/cge.13140; Ye Y., Wei X., Sha Y. et al. Loss-of-function mutation in TSGA10 causes acephalic spermatozoa phenotype in human. Mol Genet Genomic Med 2020;8(7):e1284. DOI:10.1002/mgg3.1284; Luo G., Hou M., Wang B. et al. Tsga10 is essential for arrangement of mitochondrial sheath and male fertility in mice. Andrology 2021;9(1):368–75. DOI:10.1111/andr.12889; Gershoni M., Hauser R., Yogev L. et al. A familial study of azoospermic men identifies three novel causative mutations in three new human azoospermia genes. Genet Med 2017;19(9):998–1006. DOI:10.1038/gim.2016.225; Li L., Sha Y.W., Xu X. et al. DNAH6 is a novel candidate gene associated with sperm head anomaly. Andrologia 2018;50(4):e12953. DOI:10.1111/and.12953; Li Q., Wang K. InterVar: clinical interpretation of genetic variants by the 2015 ACMG-AMP guidelines. Am J Hum Genet 2017;100(2):267–80. DOI:10.1016/j.ajhg.2017.01.004; Chen H., Zhu Y., Zhu Z. et al. Detection of heterozygous mutation in hook microtubule-tethering protein 1 in three patients with decapitated and decaudated spermatozoa syndrome. J Med Genet 2018;55(3):150–7. DOI:10.1136/jmedgenet-2016-104404; Liu M., Ru Y., Gu Y. et al. Disruption of Ssp411 causes impaired sperm head formation and male sterility in mice. Biochim Biophys Acta Gen Subj 2018;1862(3):660–8. DOI:10.1016/j.bbagen.2017.12.005; Wang X., Jiang C., Dai S. et al. Identification of nonfunctional SPATA20 causing acephalic spermatozoa syndrome in humans. Clin Genet 2023;103(3):310–9. DOI:10.1111/cge.14268; Zhang X.Z., Wei L.L., Zhang X.H. et al. Loss of perinuclear theca ACTRT1 causes acrosome detachment and severe male subfertility in mice. Development 2022;149(12):dev200489. DOI:10.1242/dev.200489; Li Y.Z., Li N., Liu W.S. et al. Biallelic mutations in spermatogenesis and centriole-associated 1 like (SPATC1L) cause acephalic spermatozoa syndrome and male infertility. Asian J Androl 2022;24(1):67–72. DOI:10.4103/aja.aja_56_21; Porcu G., Mercier G., Boyer P. et al. Pregnancies after ICSI using sperm with abnormal head-tail junction from two brothers: case report. Hum Reprod 2003;18(3):562–7. DOI:10.1093/humrep/deg121; Wang Y., Xiang M.F., Zheng N. et al. Genetic pathogenesis of acephalic spermatozoa syndrome: past, present, and future. Asian J Androl 2022;24(3):231–7. DOI:10.4103/aja202198; https://agx.abvpress.ru/jour/article/view/702

Διαθεσιμότητα: https://agx.abvpress.ru/jour/article/view/702
https://doi.org/10.17650/2070-9781-2023-24-4-25-36

The use of DNA semen fragmentation in andrological practice ; Применение ДНК фрагментации спермы в андрологической практике

Συγγραφείς: N. E. Avadieva, Н. Э. Авадиева

Πηγή: Urology Herald; Том 7, № 1 (2019); 7-11 ; Вестник урологии; Том 7, № 1 (2019); 7-11 ; 2308-6424 ; 10.21886/2308-6424-2019-7-1

Θεματικοί όροι: конденсация хроматина, reproductive loss, impaired DNA semen fragmentation, paospermia, teratozoospermia, chromatin condensation, репродуктивные потери, нарушение ДНК фрагментации спермы, патоспермия, тератозооспермия

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://www.urovest.ru/jour/article/view/240/192; WHO Manual for the Standardized Investigation, Diagnosis and Management of the Infertile Ma le. Cambridge. Cambridge University Press; 2009.; A Jungwirth (Ed.), T Diemer, GR Dohle et al. Guidelines on Male Infertility. European Association of Urology; 2015.; Oumaima A, Tesnim A, Zohra H, Amira S, Ines Z, Sana C, In-tissar G, Lobna E, Ali J, Meriem M. Investigation on the origin of sperm morphological defects: oxidative attacks, chroma-ti n immaturity, and DNA fragmentation. Environ Sci Pollut Res Int. 2018;25(14): 13775-13786. DOI:10.1007/s11356-018-1417-4; Ибишев Х.С., Магомедов Г.А., Рябенченко Н.Н. Причастность папилломавирусной инфекции к нарушению мужской фертильности. Вопросы урологии и андрологии. 2018;6(3):22-27. DOI:10.20953/2307-6631-2018-3-22-27; Ибишев Х.С., Коган М.И., Магомедов Р.Г., Крайний П.А. Современный взгляд на патогенетические основы хронического рецидивирующего бактериального простатита. Эффективная фармакотерапия. 2017;42:6-10. eLIBRARY ID: 30798487; Nieschlag E, Behre HM, Nieschlag S (Ed). Andrology: Male Reproductive Health and Disfunction. 3rd. 2010.; Руководство по клинической андрологии. Под редакцией Виноградова И.В. 2018.; Eisenberg ML, Sapra KJ, Kim SD, Chen Z, Buck Louis GM. Semen quality and pregnancy loss in a contemporary cohort of couples recruited before conception: data from the Longitudinal Investigation of Fertility and the Environment (LIFE) Study. Fertil Steril. 2017;108(4):613-619. DOI:10.1016/j.fertnstert.2017.07.008.; Carlini T, Paoli D, Pelloni M, Faja F, Dal Lago A, Lombardo F, Lenzi A, Gandini L. Sperm DNA fragmentati on in Italian couples with recurrent pregnancy loss. Reprod Biomed Online. 2017;34(1):58-65. DOI:10.1016/j.rbmo.2016.09.014.; Bareh GM, Jacoby E, Binkley P, Chang TC, Schenken RS, Robinson RD. Sperm deoxyribonucleic acid fragmentation assessment in normozoospermic male partners of couples with unexplained recurrent pregnancy loss: a prospective study. Fertil Steril. 2016;105(2):329-36.e1. DOI:10.1016/j.fertnstert.2015.10.033; Agarwal A, Prabakaran S, Allamaneni SS. Relationship between oxidative stress, varicocele and inferti lity: a metaanalysis. Reprod Biomed Online. 2006;12(5):630-633. PMID: 16790111; Tesarik J, Mendoza C. Effects of exogenous LH administration during ovarian stimulation of pituitary down-regulated young oocyte donors on oocyte yield and developmental competence. Hum Reprod. 2002;17(12):3129-3137. PMID: 12456612; Benchaib M, Braun V, Lornage J, Hadj S, Salle B, Lejeune H, Guerin JF. Sperm DNA fragmentati on decreases the pregnancy rate in an assisted reproductive technique. Hum Re-prod. 2003;18(5):1023-1028. PMID: 12721180; Showell MG, Mackenzie-Proctor R, Brown J, Yazdani A, Stankiewicz MT, Hart RJ. Antioxidants for male subfertility. Cochrane Database Syst Rev. 2014;(12):CD007411. DOI:10.1002/14651858.CD007411.pub3; https://www.urovest.ru/jour/article/view/240

Διαθεσιμότητα: https://www.urovest.ru/jour/article/view/240
https://doi.org/10.21886/2308-6424-2019-7-1-7-11

Effect of the AndroDoz® nutritional supplement on spermogram values in men with idiopathic infertility in the form of oligospermia in combination with astheno- and/or teratozoospermia: data from an open randomized prospective multicenter study ; Влияние биологически активной добавки «АндроДоз»® на показатели спермограммы у мужчин с идиопатическим бесплодием в форме олигозооспермии в сочетании с астено- и/или тератозооспермией: данные открытого рандомизированного многоцентрового проспективного исследования

Συγγραφείς: V. A. Bozhedomov, A. A. Kamalov, G. E. Bozhedomova, V. I. Kozlova, R. A. Kamarina, E. A. Epanchintseva, В. А. Божедомов, А. А. Камалов, Г. Е. Божедомова, В. И. Козлова, Р. А. Камарина, Е. А. Епанчинцева

Συνεισφορές: STADA, company, ШТАДА, компания

Πηγή: Andrology and Genital Surgery; Том 20, № 1 (2019); 108-119 ; Андрология и генитальная хирургия; Том 20, № 1 (2019); 108-119 ; 2412-8902 ; 2070-9781 ; 10.17650/2070-9781-2019-20-1

Θεματικοί όροι: биологически активная добавка «АндроДоз», idiopathic infertility, oligospermia, asthenozoospermia, teratozoospermia, AndroDoz® nutritional supplement, идиопатическое бесплодие, олигозооспермия, астенозооспермия, тератозооспермия

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://agx.abvpress.ru/jour/article/view/343/313; Божедомов В.А., Громенко Д.С., Ушакова И.В. и др. Оксидативный стресс сперматозоидов в патогенезе мужского бесплодия. Урология 2009;(2):51—6.; Божедомов В.А. Мужской фактор бездетного брака — пути решения проблемы. Урология 2016;(1-S1):28—34.; Andrology: male reproductive health and dysfunction. Ed. by E. Nieschlag, H.M. Behre, Nieschlag S. 3rd edn. Berlin; Heidelberg: Springer-Verlag, 2010. 629 p.; Male infertility: contemporary clinical approaches, andrology, ART & antioxidants. Ed. by S.J. Parekattil, A. Agarwal. New York: Springer, 2012. 518 p.; EAU guidelines on male infertility. Ed. by A. Jungwirth. European Association of Urology. 2018. 42 p.; Empirical drug therapy for idiopathic male infertility: what is the new evidence? Urology 2015;86(6):1065—75. DOI:10.1016/j. urology.2015.07.030. PMID: 26255035.; Ahmadi S., Bashiri R., Ghadiri-Anari A., Nadjarzadeh A. Antioxidant supplements and semen parameters: an evidence based review. Int J Reprod Biomed (Yazd) 2016;14(12):729—36. DOI:10.29252/ijrm.14.12.729. PMID: 28066832.; Micic S., Latic N., Bojanic N. et al. Assessment of sperm motility in oligo- asthenospermic men, treated with metabolic and essential nutrients, in ran-domizd, double blind, placebo study. Abstracts of the 32nd Annual Meeting of the European Society of Human Reproduction & Embryology. Helsinki, 2016. Р. 151.; Calogero A.E., Condorelli R.A., Russo G.I., La Vignera S. Conservative nonhormonal options for the treatment of male infertility: antibiotics, antiinflammatory drugs, and antioxidants. Biomed Res Int 2017;2017:4650182. DOI:10.1155/2017/4650182. PMID: 28164122.; Cardoso J.P., Cocuzza M., Elterman D. Optimizing male fertility: oxidative stress and the use of antioxidants. World J Urol 2019. DOI:10.1007/s00345-019-02656-3. PMID: 30719570.; Clark J.Y. Empiric medical and nutritional therapy for idiopathic male infertility: how good is the evidence for what works and does not? Eur Urol 2019. DOI:10.1016/j.eururo.2019.01.024. PMID: 30711332.; Showell M.G., Mackenzie-Proctor R., Brown J. et al. Antioxidants for male subfertility. Cochrane Database Syst Rev 2014;(12):CD007411. DOI:10.1002/14651858.CD007411.pub3. PMID: 25504418.; Vaidya A., Ahmed A., Brunckhorst O. et al. Nutritional supplements in idiopathic male infertility: a systematic review. Eur Urol Suppl 2018;17(2);e222. DOI:10.1016/S1569-9056(18)31000-5.; WHO Manual for the standardized investigation, diagnosis and management of the infertile male. Cambridge: Cambridge University Press, 2000. 91 p.; WHO laboratory manual for the examination and processing of human semen. 5th edn. WHO, 2010. 271 p.; Agarwal A., Rana M., Qiu E. et al. Role of oxidative stress, infection and inflammation in male infertility. Andrologia 2018;50(11):e13126. DOI:10.1111/and.13126. PMID: 30569652.; Божедомов В.А., Камалов А.А., Божедомова Г.Е. и др. Применение комплекса нутриентов при идиопатическом мужском бесплодии в форме астено- и/или тератозооспермии: поиск предикторов эффективности лечения (предварительные результаты). Урология 2018;(5):53—9. DOI:10.18565/urology.2018.5.53-59.; https://agx.abvpress.ru/jour/article/view/343

Διαθεσιμότητα: https://agx.abvpress.ru/jour/article/view/343
https://doi.org/10.17650/2070-9781-2019-20-1-108-119

Анализ неудач консервативного лечения клинических форм мужской инфертильности ; Analysis of failures of conservative treatment of clinical forms of male Infertility

Συγγραφείς: Kamalov, A. A., Okhobotov, D. A., Dzitiyev, V. K., Karpov, V. K., Nizov, A. N., Камалов, А. А., Охоботов, Д. А., Дзитиев, В. К., Карпов, В. К., Низов, А. Н.

Θεματικοί όροι: MALE INFERTILITY, INFERTILITY, TREATMENT FAILURE, TERATOZOOSPERMIA, VRT (ECO-ICSI), МУЖСКОЕ БЕСПЛОДИЕ, ИНФЕРТИЛЬНОСТЬ, НЕУДАЧИ ЛЕЧЕНИЯ, ТЕРАТОЗООСПЕРМИЯ, ВРТ (ЭКО-ИКСИ)

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: Уральский медицинский журнал. 2018. Т. 164, № 9.; http://elib.usma.ru/handle/usma/12804

Διαθεσιμότητα: http://elib.usma.ru/handle/usma/12804

Віддалені наслідки аварії на Чорнобильській АЕС на якість сперми у мешканців з різних регіонів України ; Отдалённые последствия аварии на Чернобыльской АЭС на качество спермы у жителей с разных регионов Украины ; The remote consequences of Chornobyl NPS accident on the human sperm quality from the inhabitants of different regions of Ukraine

Συγγραφείς: Саковська, Л. В., Канюк, С. М., Трофіменко, О. В., Гавриш, І. Т., Андрейченко, С. В., Саковская, Л. В., Канюк, С. Н., Трофименко, Е. В., Гавриш, И. Т., Sakovska, L. V., Kanjuk, S. M., Trofimenko, O. V., Gavrysh, I. T., Andreychenko, S. V.

Θεματικοί όροι: сперма чоловіків, сперматозоїди, радіоактивне забруднення, олігозооспермія, астенозооспермія, тератозооспермія, сперма мужчин, сперматозоиды, радиоактивное загрязнение, олигозооспермия, астенозооспермия, тератозооспермия, sperm, spermatozoa, radiation pollution, oligozoospermia, asthenozoospermia, teratozoospermia, 612.616.2:616-001.28

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: Віддалені наслідки аварії на Чорнобильській АЕС на якість сперми у мешканців з різних регіонів України / Л. В. Саковська, С. М. Канюк, О. В. Трофіменко [та ін.] // Вісник проблем біології і медицини. – 2017. – Вип. 3, т. 1 (137). – С. 207–213.; https://repository.pdmu.edu.ua/handle/123456789/12339

Διαθεσιμότητα: https://repository.pdmu.edu.ua/handle/123456789/12339

Анализ неудач консервативного лечения клинических форм мужской инфертильности

Θεματικοί όροι: мужское бесплодие, тератозооспермия, инфертильность, неудачи лечения, VRT (ECO-ICSI), teratozoospermia, infertility, male infertility, 3. Good health, ВРТ (ЭКО-ИКСИ), treatment failure

Σύνδεσμος πρόσβασης: https://umj.usma.ru/jour/article/view/305

Experience in the use of docosahexaenoic acid (BrudiPlus) in patients with increased sperm DNA fragmentation index in Acad. V.I. Kulakov Research Center for Obstetrics, Gynecology and Perinatology ; Опыт применения докозагексаеновой кислоты (БрудиПлюс) у пациентов с повышенным индексом фрагментации ДНК сперматозоидов в Научном центре акушерства, гинекологии и перинатологии им. акад. В.И. Кулакова

Συγγραφείς: A. Yu. Popova, S. I. Gamidov, R. I. Ovchinnikov, I. V. Ushakova, O. N. Golubeva, А. Ю. Попова, С. И. Гамидов, Р. И. Овчинников, И. В. Ушакова, О. Н. Голубева

Πηγή: Andrology and Genital Surgery; Том 16, № 2 (2015); 51-55 ; Андрология и генитальная хирургия; Том 16, № 2 (2015); 51-55 ; 2412-8902 ; 2070-9781 ; 10.17650/2070-9781-2015-2

Θεματικοί όροι: олигоастенотератозооспермия, sperm DNA fragmentation, docosahexaenoic acid, spermogram, infertility treatment, fragmentation index, asthenozoospermia, asthenoteratozoospermia, teratozoospermia, oligoasthenozoospermia, oligoasthenoteratozoospermia, фрагментации ДНК спермы, докозагексаеновая кислота, спермограмма, лечение бесплодия, индекс фрагментации, астенозооспермия, астенотератозооспермия, тератозооспермия, олигоастенозооспермия

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://agx.abvpress.ru/jour/article/view/146/139; Guzick D.S., Overstreet J.W., FactorLitvak P. et al. Sperm morphology, motility, and concentration in fertile and infertile men. N Engl J Med 2004;345(19):1388–93.; Osman A., Alsomait H., Seshadri S. et al. The effect of sperm DNA fragmentation on live birth rate after IVF or ICSI: a systematic review and meta-analysis. Reprod Biomed Online 2015;30(2):120–7.; Gandini L., Lombardo F., Paoli D. et al. Study of apoptotic DNA fragmentation in human spermatozoa. Hum Reprod 2000;15(4):830–9.; Evenson D.P. Sperm chromatin structure assay (SCSA®). Methods Mol Biol 2013; 927:147–64.; Kumar K., Deka D., Singh A. et al. Predictive value of DNA integrity analysis in idiopathic recurrent pregnancy loss following spontaneous conception. J Assist Reprod Genet 2012;29(9):861–7.; Spano M., Bonde J.P., Hjøllund H.I. The treatment of obstructive azoospermia by intracytoplasmic sperm injection. Fertil Steril 2000;73(1):43–50.; Zini A., Libman J. Sperm DNA damage: importance in the era of assisted reproduction. Curr Open Urol 2006;16(6):428–34.; Zini A., Albert O., Robaire B. Assessing sperm chromatin and DNA damage: clinical importance and development of standards. Andrology 2014;2(3):322–5.; Nogales-Gadea G., Pinós T., Ruiz J.R. Are mitochondrial haplogroups associated with elite athletic status? A study on a Spanish cohort. Mitochondrion 2011;11(6):905–8.; Ahluwalia B., Holman R.T. Fatty acid composition of lipids of bull, boar, rabbit and human semen. J Reprod Fertil 1969;18(3):431–7.; Poulos A., White I.G. The phospholipid composition of human spermatozoa and seminal plasma. J Reprod Fertil 1973;35(2):265–72.; Lenzi A., Picardo M., Gandini L., Dondero F. Lipids of the sperm plasma membrane: from polyunsaturated fatty acids considered as markers of sperm function to possible scavenger therapy. Hum Reprod Update 1996;2(3):246–56.; Alvarez J.G., Storey B.T. Differential incorporation of fatty acids into and peroxidative loss of fatty acids from phospholipids of human spermatozoa. Mol Reprod Dev 1995;42(3):334–46.; Wang A.W., Zhang H., Ikemoto I. et al. Reactive oxygen species generation by seminal cells during cryopreservation. Urology 1997;49(6):921–5.; Alvarez J.G., Storey B.T. Evidence for increased lipid peroxidative damage and loss of superoxide dismutase activity as a mode of sublethal cryodamage to human sperm during cryopreservation. J Androl 1992;13(3): 232–41.; Lasso J.L., Noiles E.E., Alvarez J.G., Storey B.T. Mechanism of superoxide dismutase loss from human sperm cells during cryopreservation. J Androl 1994;15(3): 255–65.; Gadea J., Molla M., Selles E. et al. Reduced glutathione content in human sperm is decreased after cryopreservation: effect of the addition of reduced glutathione to the freezing and thawing extenders. Cryobiology 2011;62(1):40–6.; Agarwal A., Sekhon L.H. The role of antioxidant therapy in the treatment of male infertility. Hum Fertil (Camb) 2010;13(4):217–25.; Safarinejad M.R. Effect of omega-3 polyunsaturated fatty acid supplementation on semen profile and enzymatic anti-oxidant capacity of seminal plasma in infertile men with idiopathic oligoasthenoteratospermia: a double-blind, placebo-controlled, randomised study. Andrologia 2011;43(1):38–47.; Zini A., Al-Hathal N. Antioxidant therapy in male infertility: fact or fiction? Asian J Androl 2011;13(3):374–81.; Larson-Cook K.L., Brannian J.D., Hansen K.A. et al. Relationship between the outcomes of assisted reproductive techniques and sperm DNA fragmentation as measured by the sperm chromatin structure assay. Fertil Steril 2003;80(4):895–902.; https://agx.abvpress.ru/jour/article/view/146

Διαθεσιμότητα: https://agx.abvpress.ru/jour/article/view/146
https://doi.org/10.17650/2070-9781-2015-16-2-51-55

МАТЕМАТИЧЕСКОЕ МОДЕЛИРОВАНИЕ СНИЖЕНИЯ ФЕРТИЛЬНОСТИ ЭЯКУЛЯТА В УСЛОВИЯХ ЛЕЙКОЦИТОСПЕРМИИ

Συγγραφείς: КОНЬШИН И.И., БЕЛЫЙ Л.Е., СОЛОВЬЕВ Д.А.

Θεματικοί όροι: ХРОНИЧЕСКИЙ БАКТЕРИАЛЬНЫЙ ПРОСТАТИТ, МУЖСКАЯ ИНФЕРТИЛЬНОСТЬ, ЛЕЙКОЦИТОСПЕРМИЯ, ПРЕДСТАТЕЛЬНАЯ ЖЕЛЕЗА, МАТЕМАТИЧЕСКОЕ МОДЕЛИРОВАНИЕ, АСТЕНОЗООСПЕРМИЯ, ТЕРАТОЗООСПЕРМИЯ

Περιγραφή αρχείου: text/html

Διαθεσιμότητα: http://cyberleninka.ru/article/n/matematicheskoe-modelirovanie-snizheniya-fertilnosti-eyakulyata-v-usloviyah-leykotsitospermii
http://cyberleninka.ru/article_covers/15943341.png

ТАБАКОКУРЕНИЕ КАК НЕГАТИВНЫЙ ФАКТОР, ВЛИЯЮЩИЙ НА МУЖСКОЕ БЕСПЛОДИЕ

Θεματικοί όροι: олигозооспермия, мужское бесплодие, астенозооспермия, тератозооспермия, teratozoospermia, курение, smoking, male infertility, 3. Good health, asthenozoospermia, oligozoospermia

Математическое моделирование снижения фертильности эякулята в условиях лейкоцитоспермии

Πηγή: Современные проблемы науки и образования.

Θεματικοί όροι: ХРОНИЧЕСКИЙ БАКТЕРИАЛЬНЫЙ ПРОСТАТИТ, МУЖСКАЯ ИНФЕРТИЛЬНОСТЬ, ЛЕЙКОЦИТОСПЕРМИЯ, ПРЕДСТАТЕЛЬНАЯ ЖЕЛЕЗА, МАТЕМАТИЧЕСКОЕ МОДЕЛИРОВАНИЕ, АСТЕНОЗООСПЕРМИЯ, ТЕРАТОЗООСПЕРМИЯ, 3. Good health

Περιγραφή αρχείου: text/html

Σύνδεσμος πρόσβασης: http://cyberleninka.ru/article/n/matematicheskoe-modelirovanie-snizheniya-fertilnosti-eyakulyata-v-usloviyah-leykotsitospermii
http://cyberleninka.ru/article_covers/15943341.png

НАРУШЕНИЕ МУЖСКОЙ ФЕРТИЛЬНОСТИ В УСЛОВИЯХ ТЕХНОГЕННОГО НАПРЯЖЕНИЯ

Συγγραφείς: Потемина Т.Е., Агаджанян Н.А., Рыжаков Д.И.

Πηγή: Вестник восстановительной медицины

Θεματικοί όροι: репродуктивное здоровье, репротоксиканты, мужская инфертильность, спермограмма, сперматогенез, тератозооспермия, астенозооспермия, олигоспермия, андрогенный дефицит, детоксикация

Relation: https://repository.rudn.ru/records/article/record/117341/

Διαθεσιμότητα: https://repository.rudn.ru/records/article/record/117341/

Клиническое значение морфологии сперматозоидов в выборе метода лечения мужского бесплодия

Συγγραφείς: Олефир Ю.В., Монаков Д.М.

Πηγή: Экспериментальная и клиническая урология

Θεματικοί όροι: male infertility, sperm morphology, teratozoospermia, IUI, Ivf, ICSI, мужское бесплодие, морфология сперматозоидов, тератозооспермия, ВМИ, эко, ИКСИ

Relation: https://repository.rudn.ru/records/article/record/81133/

Διαθεσιμότητα: https://repository.rudn.ru/records/article/record/81133/

АССОЦИАЦИЯ ПОЛИМОРФИЗМОВ ГЕНА ГЛУТАТИОН-8-ТРАНСФЕРАЗЫ С РИСКОМ РАЗВИТИЯ МУЖСКОГО БЕСПЛОДИЯ В МОСКОВСКОМ РЕГИОНЕ

Συγγραφείς: Кульченко Н.Г., Мяндина Г.И., Альхеджой Х., Азова М.М., Тарасенко Е.В.

Πηγή: Urologiia (Moscow, Russia : 1999)

Θεματικοί όροι: GSTP1 gene, male infertility, pathospermia, polymorphism, teratospermia, oxidative stress, ген GSTP1, мужское бесплодие, патоспермия, полиморфизм, тератозооспермия, оксидативный стресс

Relation: https://repository.rudn.ru/records/article/record/79575/

Διαθεσιμότητα: https://repository.rudn.ru/records/article/record/79575/

Выбор метода ВРТ при мужском факторе бесплодия и высоком индексе фрагментации ДНК сперматозоидов

Συγγραφείς: Вартанян Э.В., Маркин А.В., Сэпп О.Н.

Πηγή: Женское здоровье и репродукция

Θεματικοί όροι: мужской фактор бесплодия, ВРТ, олиго-, астено-, тератозооспермия, азооспермия

Relation: https://repository.rudn.ru/records/article/record/150957/

Διαθεσιμότητα: https://repository.rudn.ru/records/article/record/150957/