-
1Academic Journal
Source: VII Пущинская конференция «Биохимия, физиология и биосферная роль микроорганизмов», шко- ла-конференция для молодых ученых, аспирантов и студентов «Генетические технологии в микробио- логии и микробное разнообразие».
Subject Terms: биогеохимический цикл серы, деструкция органических веществ, анаэробная метанотрофия, сульфидогенез, сульфатвосстанавливающие бактерии
-
2Academic Journal
Authors: T. G. Banzaraktsaeva, E. V. Lavrentyeva, V. B. Dambaev, I. D. Ulzetueva, V. V. Khakhinov, Т. Г. Банзаракцаева, Е. В. Лаврентьева, В. Б. Дамбаев, И. Д. Ульзетуева, В. В. Хахинов
Contributors: This work was financially supported by the Russian Science Foundation, No. 23-27-00131.
Source: Vavilov Journal of Genetics and Breeding; Том 29, № 2 (2025); 268-278 ; Вавиловский журнал генетики и селекции; Том 29, № 2 (2025); 268-278 ; 2500-3259 ; 10.18699/vjgb-25-20
Subject Terms: сульфатвосстанавливающие бактерии, microbial community diversity, microbial mat, bottom sediment, water, sulfur-oxidizing bacteria, sulfate-reducing bacteria, разнообразие микробных сообществ, микробный мат, донный осадок, вода, сероокисляющие бактерии
File Description: application/pdf
Relation: https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/4545/1934; Bates S.T., Berg-Lyons D., Caporaso J.G., Walters W.A., Knight R., Fierer N. Examining the global distribution of dominant archaeal populations in soil. ISME J. 2011;5(5):908-917. doi 10.1038/ismej. 2010.171; Borisenko I.M., Zamana L.V. Mineral Waters of Buryat ASSR. UlanUde: Buryat Publ., 1978 (in Russian); Callahan B.J., McMurdie P.J., Rosen M.J., Han A.W., Johnson A.J., Holmes S.P. DADA2: high-resolution sample inference from Illumina amplicon data. Nat Methods. 2016;13(7):581-583. doi 10.1038/nmeth.3869; Caporaso J.G., Kuczynski J., Stombaugh J., Bittinger K., Bushman F.D., Costello E.K., Fierer N., … Walters W.A., Widmann J., Yatsunenko T., Zaneveld J., Knight R. QIIME allows analysis of high-throughput community sequencing data. Nat Methods. 2010; 7(5):335-336. doi 10.1038/nmeth.f.303; Chao A., Gotelli N.J., Hsieh T.C., Sander E.L., Ma K.H., Colwell R.K., Ellison A.M. Rarefaction and extrapolation with Hill numbers: a framework for sampling and estimation in species diversity studies. Ecol Monogr. 2014;84(1):45-67. doi 10.1890/13-0133.1; Chao A., Ma K.H., Hsieh T.C. iNEXT (iNterpolation and EXTrapolation) Online: Software for Interpolation and Extrapolation of Species Diversity. 2016. Program and User’s Guide published at http://chao.stat.nthu.edu.tw/wordpress/software_download/; Chaudhary A., Haack S.K., Duris J.W., Marsh T.L. Bacterial and archaeal phylogenetic diversity of a cold sulfur-rich spring on the shoreline of Lake Erie, Michigan. Appl Environ Microbiol. 2009; 75(15):5025-5036. doi 10.1128/AEM.00112-09; Chernitsyna S.M., Elovskaya I.S., Bukin S.V., Bukin Y.S., Pogodaeva T.V., Kwon D.A., Zemskaya T.I. Genomic and morphological characterization of a new Thiothrix species from a sulfide hot spring of the Zmeinaya bay (Northern Baikal, Russia). Antonie van Leeuwenhoek. 2024;117(1):23. doi 10.1007/s10482-023-01918-w; Colangelo-Lillis J., Pelikan C., Herbold C.W., Altshuler I., Loy A., Whyte L.G., Wing B.A. Diversity decoupled from sulfur isotope fractionation in a sulfate-reducing microbial community. Geobiology. 2019;17(6):660-675. doi 10.1111/gbi.12356; Conklin K.Y., Stancheva R., Otten T.G., Fadness R., Boyer G.L., Read B., Zhang X., Sheath R.G. Molecular and morphological characterization of a novel dihydroanatoxin-a producing Microcoleus species (cyanobacteria) from the Russian River, California, USA. Harmful Algae. 2020;93:101767. doi 10.1016/j.hal.2020.101767; Dong X., Zhang C., Li W., Weng S., Song W., Li J., Wang Y. Functional diversity of microbial communities in inactive seafloor sulfide deposits. FEMS Microbiol Ecol. 2021;97(8):fiab108. doi 10.1093/femsec/fiab108; Douglas S., Douglas D.D. Structural and geomicrobiological characteristics of a microbial community from a cold sulfide spring. Geomicrobiol J. 2001;18(4):401-422. doi 10.1080/014904501753210567; Elshahed M.S., Senko J.M., Najar F.Z., Kenton S.M., Roe B.A., Dewers T.A., Spear J.R., Krumholz L.R. Bacterial diversity and sulfur cycling in a mesophilic sulfide-rich spring. Appl Environ Microbiol. 2003;69(9):5609-5621. doi 10.1128/AEM.69.9.5609-5621.2003; Engel A.S., Lee N., Porter M.L., Stern L.A., Bennett P.C., Wagner M. Filamentous “Epsilonproteobacteria” dominate microbial mats from sulfidic cave springs. Appl Environ Microbiol. 2003;69(9):5503- 5511. doi 10.1128/AEM.69.9.5503-5511.2003; Engel A.S., Porter M.L., Stern L.A., Quinlan S., Bennett P.C. Bacterial diversity and ecosystem function of filamentous microbial mats from aphotic (cave) sulfidic springs dominated by chemolithoautotrophic “Epsilonproteobacteria”. FEMS Microbiol Ecol. 2004;51(1):31-53. doi 10.1016/j.femsec.2004.07.004; Fliermans C.B. Ecology of Legionella: from data to knowledge with a little wisdom. Microb Ecol. 1996;32(2):203-228. doi 10.1007/BF00185888; Fomin G.S. Water. Control of Chemical, Bacterial and Radiation Safety According to International Standards. Encyclopedic reference book. Moscow: Protector Publ., 2000 (in Russian); Gorbunov M.Y., Khlopko Y.A., Kataev V.Y., Umanskaya M.V. Bacterial diversity in attached communities of a cold high-sulfide water body in European Russia. Microbiology. 2022;91:77-90. doi 10.1134/S0026261722010040; Gulecal-Pektas Y., Temel M. A window to the subsurface: microbial diversity in hot springs of a sulfidic cave (Kaklik, Turkey). Geomicrobiol J. 2016;34(4):374-384. doi 10.1080/01490451.2016.1204374; Hahn C.R., Farag I.F., Murphy C.L., Podar M., Elshahed M.S., Youssef N.H. Microbial diversity and sulfur cycling in an early earth analogue: from ancient novelty to modern commonality. mBio. 2022;13(2):e0001622. doi 10.1128/mbio.00016-22; Hamilton T.L., Jones D.S., Schaperdoth I., Macalady J.L. Metagenomic insights into S(0) precipitation in a terrestrial subsurface lithoautotrophic ecosystem. Front Microbiol. 2015;5:756. doi 10.3389/fmicb.2014.00756; Hammer Ø., Harper D.A.T., Ryan P.D. PAST: PAleontological STatistics software package for education and data analysis. Palaeontol Electronica. 2001;4(1):1-9 Headd B., Engel A.S. Biogeographic congruency among bacterial communities from terrestrial sulfidic springs. Front Microbiol. 2014;5: 473. doi 10.3389/fmicb.2014.00473; Howarth R., Unz R.F., Seviour E.M., Seviour R.J., Blackall L.L., Pickup R.W., Jones J.G., Yaguchi J., Head I.M. Phylogenetic relationships of filamentous sulfur bacteria (Thiothrix spp. and Eikelboom type 021N bacteria) isolated from wastewater-treatment plants and description of Thiothrix eikelboomii sp. nov., Thiothrix unzii sp. nov., Thiothrix fructosivorans sp. nov. and Thiothrix defluvii sp. nov. Int J Syst Bacteriol. 1999;49(Pt.4):1817-1827. doi 10.1099/00207713-49-4-1817; Inagaki F., Takai K., Nealson K.H., Horikoshi K. Sulfurovum lithotrophicum gen. nov., sp. nov., a novel sulfur-oxidizing chemolithoautotroph within the ε-Proteobacteria isolated from Okinawa Trough hydrothermal sediments. Int J Syst Evol Microbiol. 2004;54(Pt.5): 1477-1482. doi 10.1099/ijs.0.03042-0; Jiang F., Li W., Xiao M., Dai J., Kan W., Chen L., Li W., Fang C., Peng F. Luteolibacter luojiensis sp. nov., isolated from Arctic tundra soil, and emended description of the genus Luteolibacter. Int J Syst Evol Microbiol. 2012;62(Pt.9):2259-2263. doi 10.1099/ijs.0.037309-0; Karl D.M., Wirsen C.O., Jannasch H.W. Deep-sea primary production at the Galápagos hydrothermal vents. Science. 1980;207(4437):1345- 1347. doi 10.1126/science.207.4437.1345; Klatt J.M., Meyer S., Häusler S., Macalady J.L., de Beer D., Polerecky L. Structure and function of natural sulphide-oxidizing microbial mats under dynamic input of light and chemical energy. ISME J. 2016;10(4):921-933. doi 10.1038/ismej.2015.167; Knittel K., Kuever J., Meyerdierks A., Meinke R., Amann R., Brinkhoff T. Thiomicrospira arctica sp. nov. and Thiomicrospira psychrophila sp. nov., psychrophilic, obligately chemolithoautotrophic, sulfur-oxidizing bacteria isolated from marine Arctic sediments. Int J Syst Evol Microbiol. 2005;55(Pt.2):781-786. doi 10.1099/ijs. 0.63362-0; Kodama Y., Watanabe K. Sulfuricurvum kujiense gen. nov., sp. nov., a facultatively anaerobic, chemolithoautotrophic, sulfur-oxidizing bacterium isolated from an underground crude-oil storage cavity. Int J Syst Evol Microbiol. 2004;54(Pt.6):2297-2300. doi 10.1099/ijs.0.63243-0; Kojima H., Fukui M. Thiomicrorhabdus aquaedulcis sp. nov., a sulfuroxidizing bacterium isolated from lake water. Int J Syst Evol Microbiol. 2019;69(9):2849-2853. doi 10.1099/ijsem.0.003567; Kononov V.I. Geochemistry of Thermal Areas of Modern Volcanism (rift zones and island arcs). Moscow: Nauka Publ., 1983 (in Russian) Kuang B., Xiao R., Hu Y., Wang Y., Zhang L., Wei Z., Bai J., Zhang K., Acuña J.J., Jorquera M.A., Pan W. Metagenomics reveals biogeochemical processes carried out by sediment microbial communities in a shallow eutrophic freshwater lake. Front Microbiol. 2023;13: 1112669. doi 10.3389/fmicb.2022.1112669; Kumar R., Verma H., Haider S., Bajaj A., Sood U., Ponnusamy K., Nagar S., Shakarad M.N., Negi R.K., Singh Y., Khurana J.P., Gilbert J.A., Lal R. Comparative genomic analysis reveals habitat-specific genes and regulatory hubs within the genus Novosphingobium. mSystems. 2017;2(3):e00020-17. doi 10.1128/mSystems.00020-17; Kumar U., Panneerselvam P., Gupta V.V.S.R., Manjunath M., Priyadarshinee P., Sahoo A., Dash S.R., Kaviraj M., Annapurna K. Diversity of sulfur-oxidizing and sulfur-reducing microbes in diverse ecosystems. In: Advances in Soil Microbiology: Recent Trends and Future Prospects. Microorganisms for Sustainability. Vol. 3. Singapore: Springer, 2018;3:65-89. doi 10.1007/978-981-10-6178-3_4; Ma Y., Wang J., Liu Y., Wang X., Zhang B., Zhang W., Chen T., Liu G., Xue L., Cui X. Nocardioides: “specialists” for hard-to-degrade pollutants in the environment. Molecules. 2023;28(21):7433. doi 10.3390/molecules28217433; Magnuson E., Altshuler I., Freyria N.J., Leveille R.J., Whyte L.G. Sulfur-cycling chemolithoautotrophic microbial community dominates a cold, anoxic, hypersaline Arctic spring. Microbiome. 2023;11(1): 203. doi 10.1186/s40168-023-01628-5; McMurdie P.J., Holmes S. phyloseq: an R package for reproducible interactive analysis and graphics of microbiome census data. PLoS One. 2013;8(4):e61217. doi 10.1371/journal.pone.0061217; Mikhailov M.P., Tolstikhin N.I. Mineral Springs and Mud Lakes of Eastern Siberia, Their Hydrology, Balneochemistry and Balneological Significance. Irkutsk, 1946 (in Russian); Namsaraev B.B., Danilova E.V., Barkhutova D.D., Khakhinov V.V. Mineral Springs and Therapeutic Lakes of South Buryatia. UlanUde: Buryat State University Publ., 2005 (in Russian) Norris P.R., Davis-Belmar C.S., Brown C.F., Calvo-Bado L.A. Autotrophic, sulfur-oxidizing actinobacteria in acidic environments. Extremophiles. 2011;15(2):155-163. doi 10.1007/s00792-011-0358-3; Nosalova L., Fecskeova L.K., Piknova M., Bonova K., Pristas P. Unique populations of sulfur-oxidizing bacteria in natural cold sulfur springs in Slovakia. Geomicrobiol J. 2023a;40(4):315-324. doi 10.1080/01490451.2023.2167021; Nosalova L., Mekadim C., Mrazek J., Pristas P. Thiothrix and Sulfurovum genera dominate bacterial mats in Slovak cold sulfur springs. Environ Microbiome. 2023b;18(1):72. doi 10.1186/s40793-023-00527-4; Nosalova L., Piknova M., Kolesarova M., Pristas P. Cold sulfur springs-neglected niche for autotrophic sulfur-oxidizing bacteria. Microorganisms. 2023c;11(6):1436. doi 10.3390/microorganisms11061436; Nunoura T., Hirai M., Miyazaki M., Kazama H., Makita H., Hirayama H., Furushima Y., Yamamoto H., Imach H., Takai K. Isolation and characterization of a thermophilic, obligately anaerobic and heterotrophic marine Chloroflexi bacterium from a Chloroflexidominated microbial community associated with a Japanese shallow hydrothermal system, and proposal for Thermomarinilinea lacunofontalis gen. nov., sp. nov. Microbes Environ. 2013;28(2):228-235. doi 10.1264/jsme2.me12193; Pérez-Ibarra B.M., Flores M.E., García-Varela M. Isolation and characterization of Bacillus thioparus sp. nov., chemolithoautotrophic, thiosulfate-oxidizing bacterium. FEMS Microbiol Lett. 2007; 271(2):289-296. doi 10.1111/j.1574-6968.2007.00729.x; Perreault N.N., Greer C.W., Andersen D.T., Tille S., Lacrampe-Couloume G., Lollar B.S., Whyte L.G. Heterotrophic and autotrophic microbial populations in cold perennial springs of the high arctic. Appl Environ Microbiol. 2008;74(22):6898-6907. doi 10.1128/AEM.00359-08; Quast C., Pruesse E., Yilmaz P., Gerken J., Schweer T., Yarza P., Peplies J., Glöckner F.O. The SILVA ribosomal RNA gene database project: improved data processing and web-based tools. Nucleic Acids Res. 2013;41:D590-D596. doi 10.1093/nar/gks1219; Rudolph C., Moissl C., Henneberger R., Huber R. Ecology and microbial structures of archaeal/bacterial strings-of-pearls communities and archaeal relatives thriving in cold sulfidic springs. FEMS Microbiol Ecol. 2004;50:1-11. doi 10.1016/j.femsec.2004.05.006; Sapers H.M., Ronholm J., Raymond-Bouchard I., Comrey R., Osinski G.R., Whyte L.G. Biological characterization of microenvironments in a hypersaline cold spring Mars analog. Front Microbiol. 2017;8:2527. doi 10.3389/fmicb.2017.02527; Sarbu S.M., Kane T.C., Kinkle B.K. A chemoautotrophically based cave ecosystem. Science. 1996;272(5270):1953-1955. doi 10.1126/science.272.5270.1953; Song D., Chen X., Xu M. Characteristics and functional analysis of the secondary chromosome and plasmids in sphingomonad. Int Biodeterior Biodegrad. 2022;171:105402. doi 10.1016/j.ibiod.2022.105402; Tang D., Chen M., Huang X., Zhang G., Zeng L., Zhang G., Wu S., Wang Y. SRplot: a free online platform for data visualization and graphing. PLoS One. 2023;18(11):e0294236. doi 10.1371/journal.pone.0294236; Tkachuk V.G., Yasnitskaya N.V., Ankudinova G.A. Mineral Waters of the Buryat-Mongolian ASSR. Irkutsk, 1957 (in Russian) Tóth E., Szuróczki S., Kéki Z., Kosztik J., Makk J., Bóka K., Spröer C., Márialigeti K., Schumann P. Brevundimonas balnearis sp. nov., isolated from the well water of a thermal bath. Int J Syst Evol Microbiol. 2017;67(4):1033-1038. doi 10.1099/ijsem.0.001746; Watanabe M., Higashioka Y., Kojima H., Fukui M. Desulfosarcina widdelii sp. nov. and Desulfosarcina alkanivorans sp. nov., hydrocarbon-degrading sulfate-reducing bacteria isolated from marine sediment and emended description of the genus Desulfosarcina. Int J Syst Evol Microbiol. 2017;67(8):2994-2997. doi 10.1099/ijsem.0.002062; Weelink S.A., van Doesburg W., Saia F.T., Rijpstra W.I., Röling W.F., Smidt H., Stams A.J. A strictly anaerobic betaproteobacterium Georgfuchsia toluolica gen. nov., sp. nov. degrades aromatic compounds with Fe(III), Mn(IV) or nitrate as an electron acceptor. FEMS Microbiol Ecol. 2009;70(3):575-585. doi 10.1111/j.1574-6941.2009.00778.x; Wright K.E., Williamson C., Grasby S.E., Spear J.R., Templeton A.S. Metagenomic evidence for sulfur lithotrophy by Epsilonproteobacteria as the major energy source for primary productivity in a sub-aerial arctic glacial deposit, Borup Fiord Pass. Front Microbiol. 2013;4:63. doi 10.3389/fmicb.2013.00063; Yang L.L., Liu Q., Liu H.C., Zhou Y.G., Xin Y.H. Flavobacterium laiguense sp. nov., a psychrophilic bacterium isolated from Laigu glacier on the Tibetan Plateau. Int J Syst Evol Microbiol. 2019;69(6): 1821-1825. doi 10.1099/ijsem.0.003400; Yin X., Zhou G., Wang H., Han D., Maeke M., Richter-Heitmann T., Wunder L.C., Aromokeye D.A., Zhu Q.Z., Nimzyk R., Elvert M., Friedrich M.W. Unexpected carbon utilization activity of sulfatereducing microorganisms in temperate and permanently cold marine sediments. ISME J. 2024;18(1):wrad014. doi 10.1093/ismejo/wrad014; https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/4545
-
3Academic Journal
Subject Terms: сульфатредуцирующие микроорганизмы, пластовые воды, применение отходов, отходы переработки нефти и газа, воды нефтяных месторождений, сульфатвосстанавливающие бактерии, акарициды
File Description: application/pdf
Access URL: https://elib.belstu.by/handle/123456789/68367
-
4Academic Journal
Source: Химическая безопасность / Chemical Safety Science. 6:106-131
Subject Terms: функционализированные каликс[4]резорцины, свойства, биодеградация нефти, бактерициды, комплексы родия, антиоксиданты, нефтяные загрязнения, сульфатвосстанавливающие бактерии, биокоррозия
-
5Report
Authors: Туваков, Максат
Contributors: Максимова, Юлия Анатольевна
Subject Terms: сероводород, сероводородное заражение, коррозия, сульфатвосстанавливающие бактерии, обводненность, hydrogen sulfide, hydrogen sulfide contamination, corrosion, sulphate reducing bacteria, water cut, 21.03.01, 622.276:665.612
File Description: application/pdf
Relation: Туваков М. Особенности эксплуатации нефтепромысловых систем при добыче нефти в условиях образования сероводорода : бакалаврская работа / М. Туваков; Национальный исследовательский Томский политехнический университет (ТПУ), Инженерная школа природных ресурсов (ИШПР), Отделение нефтегазового дела (ОНД); науч. рук. Ю. А. Максимова. — Томск, 2021.; http://earchive.tpu.ru/handle/11683/66924
Availability: http://earchive.tpu.ru/handle/11683/66924
-
6Academic Journal
Authors: Раджабов, Ш. Х.
Subject Terms: воды нефтяных месторождений, пластовые воды, отходы переработки нефти и газа, применение отходов, сульфатвосстанавливающие бактерии, сульфатредуцирующие микроорганизмы, акарициды
File Description: application/pdf
Relation: https://elib.belstu.by/handle/123456789/68367; 661
Availability: https://elib.belstu.by/handle/123456789/68367
-
7Academic Journal
Source: Микробиология. 2017. Т. 86, № 2. С. 255-257
Subject Terms: кислые шахтные дренажные воды, прокариоты, сульфатредукция, микробные сообщества, золотодобыча, сульфатвосстанавливающие бактерии
File Description: application/pdf
-
8Academic Journal
Authors: Кузьмішина, С. В., Гнатуш, С. О., Баранов, В. І.
Source: Microbiology&Biotechnology; No. 4(28) (2014); 69-76 ; Микробиология и биотехнология; № 4(28) (2014); 69-76 ; Мікробіологія і біотехнологія; № 4(28) (2014); 69-76 ; 2307-4663 ; 2076-0558
Subject Terms: waste heaps microbiota, microscopic fungi, cellulose decomposing aerobic bacteria, oligonitrophilic bacteria, sulfur oxidizing bacteria, sulfur reducing bacteria, sulfate reducing bacteria, микробиота породных отвалов, микроскопические грибы, аэробные целлюлозоразрушающие бактерии, олигонитрофилы, сероокисляющие бактерии, серовосстанавливающие бактерии, сульфатвосстанавливающие бактерии, мікробіота породних відвалів, мікроскопічні гриби, бактерії, сірковідновлювальні бактерії, сульфатвідновлювальні бактерії
File Description: application/pdf
Availability: http://mbt.onu.edu.ua/article/view/48428
https://doi.org/10.18524/2307-4663.2014.4(28).48428 -
9Academic Journal
Authors: Кушкевич, І. В., Антоняк, Г. Л., Фафула, Р. В.
Source: Microbiology&Biotechnology; No. 4(28) (2014); 26-35 ; Микробиология и биотехнология; № 4(28) (2014); 26-35 ; Мікробіологія і біотехнологія; № 4(28) (2014); 26-35 ; 2307-4663 ; 2076-0558
Subject Terms: sulfate-reducing bacteria, superoxide dismutase activity, kinetic properties, сульфатвосстанавливающие бактерии, активность супероксиддисмутазы, кинетические свойства, сульфатвідновлювальні бактерії, активність супероксиддисмутази, кінетичні властивості
File Description: application/pdf
Availability: http://mbt.onu.edu.ua/article/view/48409
https://doi.org/10.18524/2307-4663.2014.4(28).48409 -
10Academic Journal
Authors: ЖУРАЕВ М.Р, ТУРСУНМЕТОВ Р.А., КУЛИЧКИНА М.А.
File Description: text/html
-
11Academic Journal
Authors: А. А. Сикачина
Subject Terms: алкенилфенолы, микробиологическая коррозия, сульфатвосстанавливающие бактерии, сталь Ст3, индексы реакционной способности, коэффициенты корреляции, Ab Initio, эффективные заряды, дипольный момент, энергии граничных орбиталей
File Description: text/html
-
12Academic Journal
Authors: СИКАЧИНА АНДРЕЙ АНАТОЛЬЕВИЧ
Subject Terms: фосфонаты, комплексоны, сульфатвосстанавливающие бактерии, водородное охрупчивание, наводороживание, адсорбция, потенциал образца, потенциал среды, сталь Ст3
File Description: text/html
-
13Academic Journal
Authors: Кушкевич, І. В.
Source: Microbiology&Biotechnology; No. 2(26) (2014); 54-63 ; Микробиология и биотехнология; № 2(26) (2014); 54-63 ; Мікробіологія і біотехнологія; № 2(26) (2014); 54-63 ; 2307-4663 ; 2076-0558
Subject Terms: activity of APS reductase, kinetic analysis, sulfate-reducing bacteria, intestinal microbiocenosis, inflammatory bowel diseases, ulcerative colitis, активность АПС-редуктазы, кинетический анализ, сульфатвосстанавливающие бактерии, кишечные микробиоценозы, воспалительные заболевания кишечника, язвенный колит, активність АПС-редуктази, кінетичний аналіз, сульфатвідновлювальні бактерії, кишкові мікробіоценози, запальні захворювання кишечника, виразковий коліт
File Description: application/pdf
Availability: http://mbt.onu.edu.ua/article/view/48259
https://doi.org/10.18524/2307-4663.2014.2(26).48259 -
14Academic Journal
Authors: Хлебникова, Т., Хамидуллина, И., Хусаинов, М., Леонтьева, С., Насырова, Л., Кантор, Е.
Subject Terms: БИОХИМИЧЕСКАЯ ОЧИСТКА СТОЧНЫХ ВОД, БИОХИМИЧЕСКАЯ СУЛЬФАТРЕДУКЦИЯ, 1-ОКСА-3-АЗАЦИКЛОАЛКАНЫ (1, 3-ОАЦА), СЕРОВОДОРОД, СИЛИЛОВЫЕ ЭФИРЫ АМИНОСПИРТОВ, СТИМУЛЯТОРЫ РОСТА, СУЛЬФАТВОССТАНАВЛИВАЮЩИЕ БАКТЕРИИ (СВБ), СУЛЬФАТЫ, ТРИЭТИЛСИЛАН, ТЯЖЕЛЫЕ МЕТАЛЛЫ, 1-OXA-3-AZA-CYCLOALKANES (1, 3-OAСA), SULFATE REDUCING BACTERIA (SRB)
File Description: text/html
-
15Academic Journal
Authors: Пляцук, Л. Д., Черныш, Е. Ю.
Subject Terms: сульфатвосстанавливающие бактерии, биогенный сероводород, тяжелые металлы, математическая модель, ацетат, биореактор, sulfate-reducing bacteria, biogenic hydrogen sulfide, sewage sludge, heavy metals, mathematical model
File Description: application/pdf
Relation: Пляцук Л. Д. Математическое моделирование процесса обезвреживания осадков сточных вод в биосульфидогенных условиях / Л. Д. Пляцук, Е. Ю. Черныш // Вестник Нац. техн. ун-та "ХПИ" : сб. науч. тр. Темат. вып. : Математическое моделирование в технике и технологиях. – Харьков : НТУ "ХПИ". – 2013. – № 37 (1010). – С. 148-160.; http://repository.kpi.kharkov.ua/handle/KhPI-Press/5524
Availability: http://repository.kpi.kharkov.ua/handle/KhPI-Press/5524
-
16Academic Journal
Authors: Рязанов, Алексей, Завершинский, Александр
Subject Terms: СЕРОВОДОРОДНАЯ КОРРОЗИЯ, МИКРОБИОЛОГИЧЕСКАЯ КОРРОЗИЯ, КАТОДНЫЙ ПРОЦЕСС, АНОДНЫЙ ПРОЦЕСС, СКОРОСТЬ КОРРОЗИИ, СУЛЬФАТВОССТАНАВЛИВАЮЩИЕ БАКТЕРИИ
File Description: text/html
-
17Academic Journal
Authors: Хлебникова, Т., Хамидуллина, И.
Subject Terms: БИОГЕННЫЙ СЕРОВОДОРОД, БИОХИМИЧЕСКАЯ ОЧИСТКА, ИОНЫ ТЯЖЕЛЫХ МЕТАЛЛОВ, СУЛЬФАТВОССТАНАВЛИВАЮЩИЕ БАКТЕРИИ
File Description: text/html
-
18Academic Journal
Subject Terms: ТРУБОПРОВОД, СТРУКТУРА, ЗОНА ТЕРМИЧЕСКОГО ВЛИЯНИЯ, БИОГЕННАЯ СУЛЬФАТРЕДУКЦИЯ, БИОКОРРОЗИЯ, СЕРОВОДОРОД, СУЛЬФАТВОССТАНАВЛИВАЮЩИЕ БАКТЕРИИ, КОРРОЗИОННОЕ РАЗРУШЕНИЕ
File Description: text/html
-
19Academic Journal
Authors: Нафикова, Е., Левашова, В., Дехтярь, Т., Спирихин, Л.
Subject Terms: БАКТЕРИЦИДЫ, ИНГИБИТОРЫ КОРРОЗИИ, СЕРОВОДОРОДНАЯ КОРРОЗИЯ, СУЛЬФАТВОССТАНАВЛИВАЮЩИЕ БАКТЕРИИ, ЧЕТВЕРТИЧНЫЕ АММОНИЙНЫЕ СОЛИ
File Description: text/html
-
20Academic Journal
Authors: Рахматуллин, Р., Левашова, В., Спирихин, Л.
Subject Terms: АЛКЕНИЛГАЛОГЕНИДЫ, БАКТЕРИЦИДЫ, ИНГИБИТОРЫ, СУЛЬФАТВОССТАНАВЛИВАЮЩИЕ БАКТЕРИИ, ЧЕТВЕРТИЧНЫЕ АММОНИЙНЫЕ СОЛИ, ЭТИЛЕНДИАМИН
File Description: text/html
