-
1Academic Journal
Συγγραφείς: S. A. Kryzhanovskii, G. V. Mokrov, I. B. Tsorin, E. O. Ionova, M. B. Vititnova, V. N. Stolyaruk, I. A. Miroshkina, A. V. Sorokina, A. D. Durnev, С. А. Крыжановский, Г. В. Мокров, И. Б. Цорин, Е. О. Ионова, М. Б. Вититнова, В. Н. Столярук, И. А. Мирошкина, А. В. Сорокина, А. Д. Дурнев
Πηγή: Pharmacokinetics and Pharmacodynamics; № 4 (2024); 39-48 ; Фармакокинетика и Фармакодинамика; № 4 (2024); 39-48 ; 2686-8830 ; 2587-7836
Θεματικοί όροι: крысы, Epac protein antagonists, compound ZMEI-3, cardiac arrhythmias, alcoholic cardiomyopathy, myocardial contractility, rats, антагонисты белков Ерас, соединение ZMEI-3, нарушения ритма сердца, алкогольная кардиомиопатия, сократимость миокарда
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Relation: https://www.pharmacokinetica.ru/jour/article/view/437/389; Walsh DA, Perkins JP, Krebs EG. An adenosine 3',5'-monophosphatedependant protein kinase from rabbit skeletal muscle. J Biol Chem. 1968 Jul 10; 243(13):3763-5.; Renström E, Eliasson L, Rorsman P. Protein kinase A-dependent and -independent stimulation of exocytosis by cAMP in mouse pancreatic B-cells. J Physiol. 1997 Jul 1;502 (Pt 1)(Pt 1):105-18. doi:10.1111/j.1469-7793.1997.105bl.x.; Anciaux K, Van Dommelen K, Nicolai S, et al. Cyclic AMP-mediated induction of the glial fibrillary acidic protein is independent of protein kinase A activation in rat C6 glioma. J Neurosci Res. 1997 May 15;48(4):324-33.; de Rooij J, Zwartkruis FJ, Verheijen MH, et al. Epac is a Rap1 guaninenucleotide-exchange factor directly activated by cyclic AMP. Nature. 1998 Dec 3;396(6710):474-7. doi:10.1038/24884.; Banerjee U, Cheng X. Exchange protein directly activated by cAMP encoded by the mammalian rapgef3 gene: Structure, function and therapeutics. Gene. 2015 Oct 10;570(2):157-67. doi:10.1016/j.gene.2015.06.063.; Aronoff DM, Canetti C, Serezani CH, et al. Cutting edge: macrophage inhibition by cyclic AMP (cAMP): differential roles of protein kinase A and exchange protein directly activated by cAMP-1. J Immunol. 2005 Jan 15; 174(2):595-9. doi:10.4049/jimmunol.174.2.595.; Cheng X, Ji Z, Tsalkova T, Mei F. Epac and PKA: a tale of two intracellular cAMP receptors. Acta Biochim Biophys Sin (Shanghai). 2008 Jul;40(7):651-62. doi:10.1111/j.1745-7270.2008.00438.x.; Muñoz-Llancao P, Henríquez DR, Wilson C, et al. Exchange Protein Directly Activated by cAMP (EPAC) Regulates Neuronal Polarization through Rap1B. J Neurosci. 2015 Aug 12;35(32):11315-29. doi:10.1523/JNEUROSCI.3645-14.2015.; Lin HB, Cadete VJ, Sra B, et al. Inhibition of MMP-2 expression with siRNA increases baseline cardiomyocyte contractility and protects against simulated ischemic reperfusion injury. Biomed Res Int. 2014;2014:810371. doi:10.1155/2014/810371.; Gong W, Ma Y, Li A, Shi H, Nie S. Trimetazidine suppresses oxidative stress, inhibits MMP-2 and MMP-9 expression, and prevents cardiac rupture in mice with myocardial infarction. Cardiovasc Ther. 2018 Oct;36(5):e12460. doi:10.1111/1755-5922.12460.; Dai ZL, Song YF, Tian Y, et al. Trimetazidine offers myocardial protection in elderly coronary artery disease patients undergoing non-cardiac surgery: a randomized, double-blind, placebo-controlled trial. BMC Cardiovasc Disord. 2021 Oct 1;21(1):473. doi:10.1186/s12872-021-02287-w.; Lee LC, Maurice DH, Baillie GS. Targeting protein-protein interactions within the cyclic AMP signaling system as a therapeutic strategy for cardiovascular disease. Future Med Chem. 2013 Mar;5(4):451-64. doi:10.4155/fmc.12.216.; Belacel-Ouari M, Zhang L, Hubert F, et al. Influence of cell confluence on the cAMP signalling pathway in vascular smooth muscle cells. Cell Signal. 2017 Jul;35:118-128. doi:10.1016/j.cellsig.2017.03.025.; Pereira L, Rehmann H, Lao DH, et al. Novel Epac fluorescent ligand reveals distinct Epac1 vs. Epac2 distribution and function in cardiomyocytes. Proc Natl Acad Sci U S A. 2015 Mar 31;112(13):3991-6. doi:10.1073/pnas.1416163112.; Ulucan C, Wang X, Baljinnyam E, et al. Developmental changes in gene expression of Epac and its upregulation in myocardial hypertrophy. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 2007 Sep;293(3):H1662-72. doi:10.1152/ajpheart.00159.2007.; Cazorla O, Lucas A, Poirier F, et al. The cAMP binding protein Epac regulates cardiac myofilament function. Proc Natl Acad Sci U S A. 2009 Aug 18;106(33):14144-9. doi:10.1073/pnas.0812536106.; Pereira L, Ruiz-Hurtado G, Morel E, et al. Epac enhances excitationtranscription coupling in cardiac myocytes. J Mol Cell Cardiol. 2012 Jan;52(1):283-91. doi:10.1016/j.yjmcc.2011.10.016.; Wu XM, Ou QY, Zhao W, et al. The GLP-1 analogue liraglutide protects cardiomyocytes from high glucose-induced apoptosis by activating the Epac-1/Akt pathway. Exp Clin Endocrinol Diabetes. 2014 Nov;122(10):608-14. doi:10.1055/s-0034-1384584.; Fazal L, Laudette M, Paula-Gomes S, et al. Multifunctional Mitochondrial Epac1 Controls Myocardial Cell Death. Circ Res. 2017 Feb 17;120(4):645-657. doi:10.1161/CIRCRESAHA.116.309859.; Métrich M, Lucas A, Gastineau M, et al. Epac mediates betaadrenergic receptor-induced cardiomyocyte hypertrophy. Circ Res. 2008 Apr 25;102(8):959-65. doi:10.1161/CIRCRESAHA.107.164947.; Berthouze-Duquesnes M, Lucas A, Saulière A, et al. Specific interactions between Epac1, β-arrestin2 and PDE4D5 regulate β-adrenergic receptor subtype differential effects on cardiac hypertrophic signaling. Cell Signal. 2013 Apr;25(4):970-80. doi:10.1016/j.cellsig.2012.12.007.; Chen C, Du J, Feng W, et al. β-Adrenergic receptors stimulate interleukin-6 production through Epac-dependent activation of PKCδ/p38 MAPK signalling in neonatal mouse cardiac fibroblasts. Br J Pharmacol. 2012 May;166(2):676-88. doi:10.1111/j.1476-5381.2011.01785.x.; Neef S, Heijman J, Otte K, et al. Chronic loss of inhibitor-1 diminishes cardiac RyR2 phosphorylation despite exaggerated CaMKII activity. Naunyn Schmiedebergs Arch Pharmacol. 2017 Aug;390(8):857-862. doi:10.1007/s00210-017-1376-1.; Lezcano N, Mariángelo JIE, Vittone L, et al. Early effects of Epac depend on the fine-tuning of the sarcoplasmic reticulum Ca2+ handling in cardiomyocytes. J Mol Cell Cardiol. 2018 Jan;114:1-9. doi:10.1016/j.yjmcc.2017.10.005.; Pereira L, Cheng H, Lao DH, et al. Epac2 mediates cardiac β1-adrenergicdependent sarcoplasmic reticulum Ca2+ leak and arrhythmia. Circulation. 2013 Feb 26;127(8):913-22. doi:10.1161/CIRCULATIONAHA.12.148619.; Yang Z, Kirton HM, Al-Owais M, et al. Epac2-Rap1 Signaling Regulates Reactive Oxygen Species Production and Susceptibility to Cardiac Arrhythmias. Antioxid Redox Signal. 2017 Jul 20;27(3):117-132. doi:10.1089/ars.2015.6485.; Tan YQ, Li J, Chen HW. Epac, a positive or negative signaling molecule in cardiovascular diseases. Biomed Pharmacother. 2022 Apr;148:112726. doi:10.1016/j.biopha.2022.112726.; Slika H, Mansour H, Nasser SA, et al. Epac as a tractable therapeutic target. Eur J Pharmacol. 2023 Apr 15;945:175645. doi:10.1016/j.ejphar.2023.175645.; Мокров Г.В., Крыжановский С.А., Воробьева Т.Ю. и др. Производные пиридинов со свойствами Ерас-ингибиторов. Заявка на патент РФ № 2023131685. Дата приоритета: 04.12.2023.; Kryzhanovskii SA, Kolik LG, Tsorin IB, et al. Alcoholic Cardiomyopathy: Translation Model. Bull Exp Biol Med. 2017 Sep;163(5):627-631. doi:10.1007/s10517-017-3865-0.; Teichholz LE, Kreulen T, Herman MV, Gorlin R. Problems in echocardiographic volume determinations: echocardiographic-angiographic correlations in the presence of absence of asynergy. Am J Cardiol. 1976 Jan;37(1):7-11. doi:10.1016/0002-9149(76)90491-4.; Lang RM, Bierig M, Devereux RB, et al. Recommendations for chamber quantification: a report from the American Society of Echocardiography's Guidelines and Standards Committee and the Chamber Quantification Writing Group, developed in conjunction with the European Association of Echocardiography, a branch of the European Society of Cardiology. J Am Soc Echocardiogr. 2005 Dec;18(12):1440-63. doi:10.1016/j.echo.2005.10.005.; Ruiz-Hurtado G, Morel E, Domínguez-Rodríguez A, et al. Epac in cardiac calcium signaling. J Mol Cell Cardiol. 2013 May;58:162-71. doi:10.1016/j.yjmcc.2012.11.021.; Pereira L, Bare DJ, Galice S, et al. β-Adrenergic induced SR Ca2+ leak is mediated by an Epac-NOS pathway. J Mol Cell Cardiol. 2017 Jul;108:8-16. doi:10.1016/j.yjmcc.2017.04.005.; Крыжановский С.А., Никифорова Т.Д., Вититнова М.Б., Дурнев А.Д. Роль регуляторных белков Ерас в физиологии и патологии сердечно-сосудистой системы. Часть II. Роль белков Ерас в физиологии и патологии сердца. Физиология человека. 2020; 46(4):111-134.; Mattiazzi A, Argenziano M, Aguilar-Sanchez Y, et al. Ca2+ Sparks and Ca2+ waves are the subcellular events underlying Ca2+ overload during ischemia and reperfusion in perfused intact hearts. J Mol Cell Cardiol. 2015 Feb;79:69-78. doi:10.1016/j.yjmcc.2014.10.011.; Драпкина О.М., Ашихмин Я.И., Ивашкин В.Т. Проблема алкогольной кардиомиопатии. Врач. 2005;8:48-50.; Ерохин Ю.А., Хритинин Д.Ф. Поражение сердца при хронической алкогольной интоксикации. Вестник новых медицинских технологий. 2003;10(4):19-20.; Laudette M, Coluccia A, Sainte-Marie Y, et al. Identification of a pharmacological inhibitor of Epac1 that protects the heart against acute and chronic models of cardiac stress. Cardiovasc Res. 2019 Oct 1;115(12):1766-1777. doi:10.1093/cvr/cvz076.; Insel PA, Murray F, Yokoyama U, et al. cAMP and Epac in the regulation of tissue fibrosis. Br J Pharmacol. 2012 May;166(2):447-56. doi:10.1111/j.1476-5381.2012.01847.x.; Cai W, Fujita T, Hidaka Y, et al. Disruption of Epac1 protects the heart from adenylyl cyclase type 5-mediated cardiac dysfunction. Biochem Biophys Res Commun. 2016 Jun 17;475(1):1-7. doi:10.1016/j.bbrc.2016.04.123.; https://www.pharmacokinetica.ru/jour/article/view/437
-
2Academic Journal
Συγγραφείς: V. A. Prikhodko, T. M. Matuzok, A. Yu. Grishina, V. E. Kovanskov, Yu. I. Sysoev, M. V. Titova, E. V. Popova, A. M. Nosov, D. Yu. Ivkin, S. V. Okovityi, В. А. Приходько, Т. М. Матузок, А. Ю. Гришина, В. Е. Ковансков, Ю. И. Сысоев, М. В. Титова, Е. В. Попова, А. М. Носов, Д. Ю. Ивкин, С. В. Оковитый
Συνεισφορές: The results of this work were obtained using the equipment of the Center for Collective Use “Analytical Center of the Saint-Petersburg Chemical Pharmaceutical University” (agreement No. 075-15-2021-685) with financial support from the Ministry of Science and Higher Education of the Russian Federation (MSHE RF), as part of State Program SP-47 “Scientific and Technological Development of the Russian Federation” (2019–2030) (project 0113-2019-0006), and Project 95445054 of the Saint Petersburg State University. Cell cultures were obtained and maintained using the equipment of the large-scale research facility “All-Russian Collection of Cell Cultures of Higher Plants” of the IPPRAS (ARCCC HP IPPRAS) and supported by the State Project 122042700045-3 of the MSHE RF. Bioreactor cultivation of plant cell suspensions and biomass production were carried out using the equipment of the large-scale research facility “Experimental Biotechnological Facility” of the IPPRAS (EBF IPPRAS) and supported by the State Project 122042600086-7 of the MSHE RF., Работа выполнена с использованием оборудования ЦКП «Аналитический центр ФГБОУ ВО СПХФУ Минздрава России» в рамках соглашения №075-15-2021-685 от 26 июля 2021 года при финансовой поддержке Минобрнауки России, в рамках госпрограммы ГП-47 «Научно-технологическое развитие Российской Федерации» (2019–2030) (тема № 0113-2019-0006) и проекта № 95445054 Санкт-Петербургского государственного университета. Культуры клеток были получены и поддерживались с использованием оборудования УНУ «Всероссийская коллекция культур клеток высших растений» при поддержке государственного задания Министерства науки и высшего образования РФ № 122042700045-3. Выращивание культур клеток в биореакторах и получение биомассы проводили с использованием оборудований УНУ «Опытный биотехнологический комплекс ИФР РАН» при поддержке государственного задания Министерства науки и высшего образования РФ № 122042600086-7.
Πηγή: Drug development & registration; Том 14, № 1 (2025); 332-348 ; Разработка и регистрация лекарственных средств; Том 14, № 1 (2025); 332-348 ; 2658-5049 ; 2305-2066
Θεματικοί όροι: культуры клеток растений, electroneuromyography, muscle contractility, myotropic agents, type II diabetes mellitus, obesity, db/db mice, plant cell cultures, электронейромиография, сократимость мышц, миотропные препараты, сахарный диабет II типа, ожирение, мыши db/db
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Relation: https://www.pharmjournal.ru/jour/article/view/2010/1364; https://www.pharmjournal.ru/jour/article/downloadSuppFile/2010/2686; Сахарный диабет 2 типа у взрослых. Клинические рекомендации. М.: Общественная организация «Российская ассоциация эндокринологов»; 2022. 251 с.; Ye J., Wu Y., Yang S., Zhu D., Chen F., Chen J., Ji X., Hou K. The global, regional and national burden of type 2 diabetes mellitus in the past, present and future: a systematic analysis of the Global Burden of Disease Study 2019. Frontiers in Endocrinology. 2023;14:1192629. DOI:10.3389/fendo.2023.1192629.; Khan M. A. B., Hashim M. J., King J. K., Govender R. D., Mustafa H., Al Kaabi J. Epidemiology of Type 2 Diabetes – Global Burden of Disease and Forecasted Trends. Journal of Epidemiology and Global Health. 2020;10(1):107–111. DOI:10.2991/jegh.k.191028.001.; Chen H., Huang X., Dong M., Wen S., Zhou L., Yuan X. The Association Between Sarcopenia and Diabetes: From Pathophysiology Mechanism to Therapeutic Strategy. Diabetes, Metabolic Syndrome and Obesity. 2023;16:1541–1554. DOI:10.2147/DMSO.S410834.; Suriano F., Vieira-Silva S., Falony G., Roumain M., Paquot A., Pelicaen R., Regnier M., Delzenne N. M., Raes J., Muccioli G. G., Hul M. V., Cain P. D. Novel insights into the genetically obese (ob/ob) and diabetic (db/db) mice: two sides of the same coin. Microbiome. 2021;9(1):147. DOI:10.1186/s40168-021-01097-8.; Sima A. A., Robertson D. M. Peripheral neuropathy in mutant diabetic mouse [C57BL/Ks (db/db)]. Acta Neuropathologica. 1978;41(2):85–89. DOI:10.1007/BF00689757.; Sima A. A., Robertson D. M. Peripheral neuropathy in the diabetic mutant mouse. An ultrastructural study. Laboratory Investigation. 1979;40(6):627–632.; Lin-Shiau S.-Y., Liu S.-H., Lin M.-J. Use of ion channel blockers in the exploration of possible mechanisms involved in the myopathy of diabetic mice. Naunyn-Schmiedeberg's Archives of Pharmacology. 1993;348(3):311–318. DOI:10.1007/BF00169161.; Zenker J., Poirot O., de Preux Charles A. S., Arnaud E., Médard J.-J., Lacroix C., Kuntzer T., Chrast R. Altered distribution of juxtaparanodal K v 1.2 subunits mediates peripheral nerve hyperexcitability in type 2 diabetes mellitus. The Journal of Neuroscience. 2012;32(22):7493–7498. DOI:10.1523/JNEUROSCI.0719-12.2012.; Eshima H., Tamura Y., Kakehi S., Nakamura K., Kurebayashi N., Murayama T., Kakigi R., Sakurai T., Kawamori R., Watada H. Dysfunction of muscle contraction with impaired intracellular Ca 2+ handling in skeletal muscle and the effect of exercise training in male db/db mice. Journal of Applied Physiology. 2019;126(1):170-182. DOI:10.1152/japplphysiol.00048.2018.; Bayley J. S., Pedersen T. H., Nielsen O. B. Skeletal muscle dysfunction in the db/db mouse model of type 2 diabetes. Muscle & Nerve. 2016;54(3):460–468. DOI:10.1002/mus.25064.; Nguyen M.-H., Cheng M., Koh T. J. Impaired muscle regeneration in ob/ob and db/db mice. The Scientific World JOURNAL. 2011;11:1525–1535. DOI:10.1100/tsw.2011.137.; Wang X., Hu Z., Hu J., Du J., Mitch W. E. Insulin resistance accelerates muscle protein degradation: Activation of the ubiquitin-proteasome pathway by defects in muscle cell signaling. Endocrinology. 2006;147(9):4160–4168. DOI:10.1210/en.2006-0251.; Kim K. W., Baek M.-O., Choi J.-Y., Son K. H., Yoon M.-S. Analysis of the Molecular Signaling Signatures of Muscle Protein Wasting Between the Intercostal Muscles and the Gastrocnemius Muscles in db/db Mice. International Journal of Molecular Sciences. 2019;20(23):6062. DOI:10.3390/ijms20236062.; Wang M., Pu D., Zhao Y., Chen J., Zhu S., Lu A., Liao Z., Sun Y., Xiao Q. Sulforaphane protects against skeletal muscle dysfunction in spontaneous type 2 diabetic db/db mice. Life Sciences. 2020;255:117823. DOI:10.1016/j.lfs.2020.117823.; Yu J., Loh K., Yang H.-Q., Du M.-R., Wu Y.-X., Liao Z.-Y., Guo A., Yang Y.-F., Chen B., Zhao Y.-X., Chen J.-L., Zhou J., Sun Y., Xiao Q. The Whole-transcriptome Landscape of Diabetes-related Sarcopenia Reveals the Specific Function of Novel lncRNA Gm20743. Communications Biology. 2022;5(1):774. DOI:10.1038/s42003-022-03728-8.; Pollari E., Prior R., Robberecht W., Van Damme P., Van Den Bosch L. In Vivo Electrophysiological Measurement of Compound Muscle Action Potential from the Forelimbs in Mouse Models of Motor Neuron Degeneration. Journal of Visualized Experiments. 2018;(136):57741. DOI:10.3791/57741.; Rutkove S. B., Chen Z.-Z., Pandeya S., Callegari S., Mourey T., Nagy J. A., Nath A. K. Surface Electrical Impedance Myography Detects Skeletal Muscle Atrophy in Aged Wildtype Zebrafish and Aged gpr27 Knockout Zebrafish. Biomedicines. 2023;11(7):1938. DOI:10.3390/biomedicines11071938.; Chugh D., Iyer C. C., Wang X., Bobbili P., Rich M. M., Arnold W. D. Neuromuscular junction transmission failure is a late phenotype in aging mice. Neurobiology of Aging. 2020;86:182–190. DOI:10.1016/j.neurobiolaging.2019.10.022.; Padilla C. J., Harrigan M. E., Harris H., Schwab J. M., Rutkove S. B., Rich M. M., Clark B. C., Arnold W. D. Profiling age-related muscle weakness and wasting: neuromuscular junction transmission as a driver of age-related physical decline. GeroScience. 2021;43(3):1265–1281. DOI:10.1007/s11357-021-00369-3.; Приходько В. А., Матузок Т. М., Оковитый С. В. Нарушения нейромышечной передачи у лептинрезистентных мышей. Биомедицина. 2023;19(3):77–81. DOI:10.33647/2074-5982-19-3-77-81.; Gregory N. S., Gibson-Corley K., Frey-Law L., Sluka K. A. Fatigue-enhanced hyperalgesia in response to muscle insult: induction and development occur in a sex-dependent manner. Pain. 2013;154(12):2668–2676. DOI:10.1016/j.pain.2013.07.047.; Gregory N. S., Brito R. G., Oliveira Fusaro M. C. G., Sluka K. A. ASIC3 Is Required for Development of Fatigue-Induced Hyperalgesia. Molecular Neurobiology. 2016;53(2):1020–1030. DOI:10.1007/s12035-014-9055-4.; Lesnak J. B., Inoue S., Lima L., Rasmussen L., Sluka K. A. Testosterone protects against the development of widespread muscle pain in mice. Pain. 2020;161(12):2898–2908. DOI:10.1097/j.pain.0000000000001985.; Воронков А. В., Поздняков Д. И., Руковицина В. М., Оганесян Э. Т. Влияние новых производных хромон-3-альдегида на развитие мышечной дисфункции в условиях эксперимента. Крымский терапевтический журнал. 2018;4:67–71.; Maurissen J. P. J., Marable B. R., Andrus A. K., Stebbins K. E. Factors affecting grip strength testing. Neurotoxicology and Teratology. 2003;25(5):543–553. DOI:10.1016/s0892-0362(03)00073-4.; Baker C., Retzik-Stahr C., Singh V., Plomondon R., Anderson V., Rasouli N. Should metformin remain the first-line therapy for treatment of type 2 diabetes? Therapeutic Advances in Endocrinology and Metabolism. 2021;12:2042018820980225. DOI:10.1177/2042018820980225.; Lyu Q., Wen Y., He B., Zhang X., Chen J., Sun Y., Zhao Y., Xu L., Xiao Q., Deng H. The ameliorating effects of metformin on disarrangement ongoing in gastrocnemius muscle of sarcopenic and obese sarcopenic mice. Biochimica et Biophysica Acta (BBA) – Molecular Basis of Disease. 2022;1868(11):166508. DOI:10.1016/j.bbadis.2022.166508.; Petrocelli J. J., McKenzie A. I., de Hart N. M. M. P., Reidy P. T., Mahmassani Z. S., Keeble A. R., Kaput K. L., Wahl M. P., Rondina M. T., Marcus R. L., Welt C. K., Holland W. L., Funai K., Fry C. S., Drummond M. J. Disuse-induced muscle fibrosis, cellular senescence, and senescence-associated secretory phenotype in older adults are alleviated during re-ambulation with metformin pre-treatment. Aging Cell. 2023;22(11):e13936. DOI:10.1111/acel.13936.; Бажанова Е. Д., Оковитый С. В., Белых М. А. Влияние 4,4'-(пропандиамидо)дибензоата натрия и метформина на динамику апоптоза и пролиферации гепатоцитов у мышей с сахарным диабетом и ожирением. Экспериментальная и клиническая фармакология. 2018;81(5):17–20. DOI:10.30906/0869-2092-2018-81-5-17-20.; Белых М. А. Влияние 4,4'-(пропандиамидо)дибензоата натрия на проявления экспериментального неалкогольного стеатогепатита. Биомедицина. 2021;17(3):95–99. DOI:10.33647/2074-5982-17-3-95-99.; Li Z., Ji G. E. Ginseng and obesity. Journal of Ginseng Research. 2018;42(1):1–8. DOI:10.1016/j.jgr.2016.12.005.; Povydysh M. N., Titova M. V., Ivanov I. M., Klushin A. G., Kochkin D. V., Galishev B. A., Popova E. V., Ivkin D. Y., Luzhanin V. G., Krasnova M. V., Demakova N. V., Nosov A. M. Effect of phytopreparations based on bioreactor-grown cell biomass of Dioscorea deltoidea, Tribulus terrestris and Panax japonicus on carbohydrate and lipid metabolism in type 2 diabetes mellitus. Nutrients. 2021;13(11):3811. DOI:10.3390/nu13113811.; Povydysh M. N., Titova M. V., Ivkin D. Y., Krasnova M. V., Vasilevskaya E. R., Fedulova L. V., Ivanov I. M., Klushin A. G., Popova E. V., Nosov A. M. The hypoglycemic and hypocholesterolemic activity of Dioscorea deltoidea, Tribulus terrestris and Panax japonicus cell culture biomass in rats with high-fat diet-induced obesity. Nutrients. 2023;15(3):656. DOI:10.3390/nu15030656.; Titova M. V., Popova E. V., Ivanov I. M., Fomenkov A A., Nebera E. A., Vasilevskaya E. R., Tolmacheva G. S., Kotenkova E. A., Klychnikov O. I., Metalnikov P. S., Tyurina T. M., Paek K.-Y. Toxicological evaluation of ginsenoside-rich cell culture biomass of Panax japonicus produced in a large-scale bioreactor system. Industrial Crops and Products. 2024;208:117761. DOI:10.1016/j.indcrop.2023.117761.; Spruss A., Kanuri G., Stahl C., Bischoff S. C., Bergheim I. Metformin protects against the development of fructose-induced steatosis in mice: role of the intestinal barrier function. Lab Invest. 2012;92(7):1020–1032. DOI:10.1038/labinvest.2012.75.; Белых М. А., Оковитый С. В. Оценка эффективности нового производного малоновой кислоты в качестве антистеатозного средства при высокожировой диете у мышей. Экспериментальная и клиническая фармакология. 2018;81(S):28–29.; Attele A. S., Zhou Y.-P., Xie J.-T., Wu J. A., Zhang L., Dey L., Pugh W., Rue P. A., Polonsky K. S., Yuan C.-S. Antidiabetic effects of Panax ginseng berry extract and the identification of an effective component. Diabetes. 2002;51(6):1851–1858. DOI:10.2337/diabetes.51.6.1851.; Приходько В. А., Алексеева Ю. С., Захлевная Д. А., Болотова В. Ц. Влияние экстракта живучки туркестанской на восстановление сократимости мышц после электростимуляционного утомления у мышей. В сб.: Пути и формы совершенствования фармацевтического образования. Актуальные вопросы разработки и исследования новых лекарственных средств: Сборник трудов IХ Международной научно-методической конференции «Фармобразование-2023». 28–29 сентября 2023. Воронеж. Воронеж: Воронежский государственный университет; 2023. С. 619–623. DOI:10.17308/978-5-9273-3827-6-2023-619-623.; Inamura N., Fujisige A., Miyake S., Ono A., Tsuchiya T. The effects of temperature on the mechanical performance in fatigued single muscle fibers of the frog induced by twitch and tetanus. The Japanese Journal of Physiology. 2000;50(1):49–57. DOI:10.2170/jjphysiol.50.49.; Fitch S., McComas A. Influence of human muscle length on fatigue. The Journal of Physiology. 1985;362(1):205–213. DOI:10.1113/jphysiol.1985.sp015671.; Bruton J., Pinniger G. J., Lännergren J., Westerblad H. The effects of the myosin-II inhibitor N-benzyl-p-toluene sulphonamide on fatigue in mouse single intact toe muscle fibres. Acta Physiologica. 2006;186(1):59–66. DOI:10.1111/j.1748-1716.2005.01499.x.; Allen D. G., Lamb G. D., Westerblad H. Skeletal muscle fatigue: cellular mechanisms. Physiological Reviews. 2008;88(1):287–332. DOI:10.1152/physrev.00015.2007.; Wan J.-J., Qin Z., Wang P.-Y., Sun Y., Liu X. Muscle fatigue: general understanding and treatment. Experimental & Molecular Medicine. 2017;49(10):e384. DOI:10.1038/emm.2017.194.; Germinario E., Esposito A., Midrio M., Peron S., Palade P. T., Betto R., Danieli-Betto D. High-frequency fatigue of skeletal muscle: role of extracellular Ca 2+ . European Journal of Applied Physiology. 2008;104(3):445–453. DOI:10.1007/s00421-008-0796-5.; Khairullin A. E., Teplov A. Y., Grishin S. N., Farkhutdinov A. M., Ziganshin A. U. The thermal sensitivity of purinergic modulation of contractile activity of locomotor and respiratory muscles in mice. Biophysics. 2019;64(5):812–817. DOI:10.1134/S0006350919050075.; Vesga-Castro C., Aldazabal J., Vallejo-Illarramendi A., Paredes J. Contractile force assessment methods for in vitro skeletal muscle tissues. eLife. 2022;11:e77204. DOI:10.7554/eLife.77204.; Wineinger M. A., Walsh S. A., Abresch T. Muscle fatigue in animal models of neuromuscular disease. American Journal of Physical Medicine & Rehabilitation. 2002;81(11):S81–S98. DOI:10.1097/00002060-200211001-00010.; Yamada T., Ashida Y., Tamai K., Kimura I., Yamauchi N., Naito A., Tokuda N., Westerblad H., Andersson D. C., Himori K. Improved skeletal muscle fatigue resistance in experimental autoimmune myositis mice following high-intensity interval training. Arthritis Research & Therapy. 2022;24(1):156. DOI:10.1186/s13075-022-02846-2.; Lindqvist J., Pénisson-Besnier I., Iwamoto H., Li M., Yagi N., Ochala J. A myopathy-related actin mutation increases contractile function. Acta Neuropathologica. 2012;123(5):739–746. DOI:10.1007/s00401-012-0962-z.; Gineste C., De Winter J. M., Kohl C., Witt C. C., Giannesini B., Brohm K., Le Fur Y., Gretz N., Vilmen C., Pecchi E., Jubeau M., Cozzone P. J., Stienen G. J. M., Granzier H., Labeit S., Ottenheijm C. A. C., Bendahan D., Gondin J. In vivo and in vitro investigations of heterozygous nebulin knock-out mice disclose a mild skeletal muscle phenotype. Neuromuscular Disorders. 2013;23(4):357–369. DOI:10.1016/j.nmd.2012.12.011.; Gineste C., Ottenheijm C., Le Fur Y., Banzet S., Pecchi E., Vilmen C., Cozzone P. J. , Koulmann N., Hardeman E. C., Bendahan D., Gondin J. Alterations at the cross-bridge level are associated with a paradoxical gain of muscle function in vivo in a mouse model of nemaline myopathy. PLoS ONE. 2014;9(9):e109066. DOI:10.1371/journal.pone.0109066.; Williams J. H., Ward C. W., Klug G. A. Fatigue-induced alterations in Ca2+ and caffeine sensitivities of skinned muscle fibers. Journal of Applied Physiology. 1993;75(2):586–593. DOI:10.1152/jappl.1993.75.2.586.; Moldovan M., Krarup C. Evaluation of Na + /K + pump function following repetitive activity in mouse peripheral nerve. Journal of Neuroscience Methods. 2006;155(2):161–171. DOI:10.1016/j.jneumeth.2005.12.015.; Hwang J. H., Kang S. Y., Jung H. W. Effects of American wild ginseng and Korean cultivated wild ginseng pharmacopuncture extracts on the regulation of C2C12 myoblasts differentiation through AMPK and PI3K/Akt/mTOR signaling pathway. Molecular Medicine Reports. 2022;25(6):192. DOI:10.3892/mmr.2022.12708.; Kim A., Park S.-M., Kim N. S., Lee H. Ginsenoside Rc, an Active Component of Panax ginseng, Alleviates Oxidative Stress-Induced Muscle Atrophy via Improvement of Mitochondrial Biogenesis. Antioxidants. 2023;12(8):1576. DOI:10.3390/antiox12081576.; Estaki M., Noble E. G. North American ginseng protects against muscle damage and reduces neutrophil infiltration after an acute bout of downhill running in rats. Applied Physiology, Nutrition, and Metabolism. 2014;40(2):116–121. DOI:10.1139/apnm-2014-0331.; Cristina-Souza G., Santos-Mariano A. C., Lima-Silva A. E., Costa P. L., Domingos P. R., Silva S. F., Abreu W. C., De-Oliveira F. R., Osiecki R. Panax ginseng Supplementation Increases Muscle Recruitment, Attenuates Perceived Effort, and Accelerates Muscle Force Recovery After an Eccentric-Based Exercise in Athletes. Journal of Strength and Conditioning Research. 2022;36(4):991–997. DOI:10.1519/JSC.0000000000003555.; Zhang H., Zhao C., Hou J., Su P., Yang Y., Xia B., Zhao X., He R., Wang L., Cao C., Liu T., Tian J. Red ginseng extract improves skeletal muscle energy metabolism and mitochondrial function in chronic fatigue mice. Frontiers in Pharmacology. 2022;13:1077249. DOI:10.3389/fphar.2022.1077249.; Ahmad S. S., Chun H. J., Ahmad K., Choi I. Therapeutic applications of ginseng for skeletal muscle-related disorder management. Journal of Ginseng Research. 2024;48(1):12–19. DOI:10.1016/j.jgr.2023.06.003.; Van Le T. H., Lee G. J., Long Vu H. K., Know S. W., Nguyen N. K., Park J. H., Nguyen M. D. Ginseng Saponins in Different Parts of Panax vietnamensis. Chemical and Pharmaceutical Bulletin. 2015;63(11):950–954. DOI:10.1248/cpb.c15-00369.; Jeong J.-J., Van Le T. H., Lee S.-Y., Eun S.-H., Nguyen M. D., Park J. H., Kim D.-H. Anti-inflammatory effects of vina-ginsenoside R2 and majonoside R2 isolated from Panax vietnamensis and their metabolites in lipopolysaccharide-stimulated macrophages. International Immunopharmacology. 2015;28(1):700–706. DOI:10.1016/j.intimp.2015.07.025.; Tran Q. L., Adnyana I. K., Tezuka Y., Harimaya Y., Saiki I., Kurashige Y., Tran Q. K., Kadota S. Hepatoprotective effect of majonoside R2, the major saponin from Vietnamese ginseng (Panax vietnamensis). Planta Medica. 2002;68(5):402–406. DOI:10.1055/s-2002-32069.; Thu V. T., Yen N. T. H., Tung N. H., Bich P. T., Han J., Kim H. K. Majonoside-R2 extracted from Vietnamese ginseng protects H9C2 cells against hypoxia/reoxygenation injury via modulating mitochondrial function and biogenesis. Bioorganic & Medicinal Chemistry Letters. 2021;36:127814. DOI:10.1016/j.bmcl.2021.127814.; Chan H.-H., Hwang T.-L., Bhaskar Reddy M. V., Li D.-T., Qian K., Bastow K. F., Lee K.-H., Wu T.-S. Bioactive constituents from the roots of Panax japonicus var. major and development of a LC-MS/MS method for distinguishing between natural and artifactual compounds. Journal of Natural Products. 2011;74(4):796–802. DOI:10.1021/np100851s.; Yousuf Y., Datu A., Barnes B., Amini-Nik S., Jeschke M. G. Metformin alleviates muscle wasting post-thermal injury by increasing Pax7-positive muscle progenitor cells. Stem Cell Research & Therapy. 2020;11(1):18. DOI:10.1186/s13287-019-1480-x.; Kang M. J., Moon J. W., Lee J. O., Kim J. H., Jung E. J., Kim S. J., Oh J. Y., Wu S. W., Lee P. R., Park S. H., Kim H. S. Metformin induces muscle atrophy by transcriptional regulation of myostatin via HDAC6 and FoxO3a. Journal of Cachexia, Sarcopenia and Muscle. 2021;13(1):605–620. DOI:10.1002/jcsm.12833.; Walton R. G., Dungan C. M., Long D. E., Tuggle S. C., Kosmac K., Peck B. D., Bush H. M., Villasante Tezanos A. G., McGwin G., Windham S. T., Ovalle F., Bamman M. M., Kern P. A., Peterson C. A. Metformin blunts muscle hypertrophy in response to progressive resistance exercise training in older adults: A randomized, double-blind, placebo-controlled, multicenter trial: The MASTERS trial. Aging Cell. 2019;18(6):e13039. DOI:10.1111/acel.13039.; Соколова А. В., Климова А. В., Драгунов Д. О., Артюнов Г. П. Оценка влияния терапии метформином на величину мышечной массы и мышечной силы у больных с и без сахарного диабета. Метаанализ 15 исследований. Российский кардиологический журнал. 2021;26(3):4331. DOI:10.15829/1560-4071-2021-4331.; Deacon R. M. J. Measuring the strength of mice. Journal of Visualized Experiments. 2013;(76):2610. DOI:10.3791/2610.; Sharma A. N., Elased K. M., Garrett T. L., Lucot J. B. Neurobehavioral deficits in db/db diabetic mice. Physiology & Behavior. 2010;101(3):381–388. DOI:10.1016/j.physbeh.2010.07.002.; Prikhodko V. A., Matuzok T. M., Okovityi S. V. Cognitive and behavioural dysfunction in leptin-resistant mice. In: Proceedings of the 29th International Annual ISBS “Stress and Behavior” Neuroscience and Biological Psychiatry Conference. 18-19 May 2023. Saint Petersburg. 2023. P. 18.; De Gregorio C., Contador D., Campero M., Ezquer M., Ezquer F. Characterization of diabetic neuropathy progression in a mouse model of type 2 diabetes mellitus. Biology Open. 2018;7(9):bio036830. DOI:10.1242/bio.036830.; Roberts T. J., Gabaldón A. M. Interpreting muscle function from EMG: lessons learned from direct measurements of muscle force. Integrative and Comparative Biology. 2008;48(2):312–320. DOI:10.1093/icb/icn056.; Ingalls C. P., Warren G. L., Lowe D. A., Boorstein D. B., Armstrong R. B. Differential effects of anesthetics on in vivo skeletal muscle contractile function in the mouse. Journal of Applied Physiology. 1996;80(1):332–340. DOI:10.1152/jappl.1996.80.1.332.; Coelho Nepomuceno A., Landucci Politani E., Landucci Politani da Silva E., Salomone R., Losso Longo M. V., Grassi Salles A., Marques de Faria J. C., Gemperli R. Tibial and fibular nerves evaluation using intraoperative electromyography in rats. Acta Cirurgica Brasileira. 2016;31(8):542–548. DOI:10.1590/S0102-865020160080000007.; Hershenson M., Brouillette R. T., Olsen E., Hunt C. E. The effect of chloral hydrate on genioglossus and diaphragmatic activity. Pediatric Research. 1984;18(6):516–519. DOI:10.1203/00006450-198406000-00006.; Zealear D., Li Y., Huang S. An Implantable System For Chronic In Vivo Electromyography. Journal of Visualized Experiments. 2020;21;(158):10.3791/60345. DOI:10.3791/60345.; https://www.pharmjournal.ru/jour/article/view/2010
-
3Academic Journal
Συγγραφείς: V. V. Chestukhin, F. A. Blyakhman, В. В. Честухин, Ф. А. Бляхман
Συνεισφορές: Грант РНФ № 22-71-10071 «Гемореологическое моделирование течений в коронарных артериях для нужд персонифицированной диагностики и лечения ишемической болезни сердца»
Πηγή: Russian Journal of Transplantology and Artificial Organs; Том 24, № 4 (2022); 145-151 ; Вестник трансплантологии и искусственных органов; Том 24, № 4 (2022); 145-151 ; 1995-1191
Θεματικοί όροι: коронарный кровоток, left ventricle, coronary arteries, myocardial contractility, arterial compression, coronary circulation, левый желудочек, коронарные артерии, сократимость миокарда, компрессия артерий
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Relation: https://journal.transpl.ru/vtio/article/view/1558/1397; https://journal.transpl.ru/vtio/article/view/1558/1432; https://journal.transpl.ru/vtio/article/downloadSuppFile/1558/1214; https://journal.transpl.ru/vtio/article/downloadSuppFile/1558/1215; https://journal.transpl.ru/vtio/article/downloadSuppFile/1558/1216; https://journal.transpl.ru/vtio/article/downloadSuppFile/1558/1217; Scaramucci J. De motu cordis, theorema sextum. Theoremata familiaria de physico-medicis lucubrationibus iucta leges mecanicas. 1695: 70–81.; Anrep GV, Cruickshank EW, Downing AC, Subba RA. The coronary circulation in relation to the cardiac cycle. Heart. 1927; 14: 111–133.; Gregg DE, Green HD. Registration and interpretation of normal phasic inflow into the left coronary artery by an improved differential manometric method. Am J Physiol. 1940; 130: 114–125.; Gregg DE, Sabiston DC. Effect of cardiac contraction on coronary blood flow. Circulation. 1957; 15: 14–20.; Westerhof N, Boer C, Lamberts RR, Sipkema P. Crosstalk between cardiac muscle and coronary vasculature. Physiol Rev. 2006; 86: 1263–1308. doi:10.1152/physrev.00029.2005.; Duncer DJ, Koller A, Mercus D, Canty Jr JМ. Regulation of coronary blood flow in health and ischemic heart disease. Progress in Cardiovascular Disease. 2015; 57 (5): 409–422. doi:10.1016/j.pcad.2014.12.002.; Goodwill AG, Dick GM, Kiel AM, Tune JD. Regulation of coronary blood flow. Compr Physiol. 2017; 7: 321–382. doi:10.1002/cphy.c160016.; Duncker DJ. Regulation of Coronary Blood Flow. ETP. https://www.escardio.org/static-file/Escardio/education/live-events/courses/education-resource/101-Duncker.pdf.; Murtaza G, Mukherjee D, Gharacholou SM, Nanjundappa A, Lavie CJ, Khan AA et al. An updated review on myocardial bridging. Cardiovascular Revascularization Medicine. 2020; 21 (9): 1169–1179. https://doi.org/10.1016/j.carrev.2020.02.014.; Rizzoni D, De Ciuceis C, Salvetti M, Paini A, Rossini C, Agabiti-Rosei C, Muiesan ML. Interactions between macro- and micro-circulation: are they relevant? High Blood Press. Cardiovasc Prev. 2015; 22: 119–128. doi:10.1007/s40292-015-0086-3.; Motwani M, Kidambi A, Uddin A, Sourbron S, Greenwood JP, Plein S. Quantification of myocardial blood with cardiovascular magnetic resonance throughout the cardiac cycle. Journal of Cardiovascular Magnetic Resonance. 2015; 17 (1): 4. doi:10.1186/s12968-015-0107-3.; Kuhl JT, George RT, Merha VC, Lind JJ, Chen M, Arai AE et al. Endocardial – epicardial distribution of myocardial perfusion reserve assessed by multidetector computer tomography in symptomatic patients without significant coronary artery disease: insights from the CORES320 multicentre study. European Heart Journal Cardivascular Imaging. 2016; 17 (7): 779–787. doi:10.1093/ehjci/jev206.; Westerhof N, Sipkema P, Vist M. How cardiac contraction affects the coronary vasculature. Adv Exp Med Biol. 1997; 430: 111–121. doi:10.1007/978-1-4615-5959-7_10.; Downey JM, Kirk ES. Inhibition of coronary blood flow by a vascular waterfall mechanism. Circ Res. 1975; 36: 753–760. doi:10.1161/01.res.36.6.753.; Spaan JA, Breuls NP, Laird JD. Diastolic-systolic coronary flow differences are caused by intramyocardial pump action in the anesthetized dog. Circ Res. 1981; 49: 584–593. doi:10.1161/01.res.49.3.584.; Spaan JA, Breuls NP, Laird JD. Forward coronary flow normally seen in systole is the result of both forward and concealed back flow. Basic Res Cardiol. 1981; 76: 582–586. doi:10.1007/BF01908365.; Krams R, van Haelst AC, Sipkema P, Westerhof N. Сan coronary systolic-diastolic flow differences be predicted by left ventricular pressure or time-varying intramyocardial elastanse? Basic Res Cardiol. 1989; 84: 149–159. doi:10.1007/BF01907924.; Van Winkle DM, Swafford Jr AN, Downey JM. Subendocardial coronary compression in beating dog hearts is independent of pressure in the ventricular lumen. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 1991; 261 (2 Pt 2): H500–H505. doi:10.1152/ajpheart.1991.261.2.H500.; Suga H, Sagawa K, Shoukas AA. Load independence of the instantaneous pressure-volume ratio of the canine left ventricle and effects of epinephrine and heart rate on the ratio. Circ Res. 1973; 32: 314–322. https://doi.org/10.1161/01.res.32.3.314.; Krams R, Sipkema P, Zegers J, Westerhof N. Contractility is the main determinant of coronary systolic flow impediment. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 1989; 257: H1936–H1944. https://doi.org/10.1152/ajpheart.1989.257.6.H1936.; Willemsen MJ, Duncker DJ, Krams R, Dijkman MA, Lamberts RR, Sipkema P, Westerhof N. Decrease in coronary vasculare volume in systole augments cardiac contraction. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 2001; 281: 731–737. doi:10.1152/ajpheart.2001.281.2.H731.; Fibich G, Lanir Y, Liron N, Abovsky M. Modeling of coronary capillary flow. Adv Exp Ved Biol. 1993; 346: 137–150. doi:10.1007/978-1-4615-2946-0_13.; Chilian WM, Eastham CL, Marcus ML. Microvascular distribution of coronary vascular resistance in beating left ventricle. Am J Physiol. 1986; 251 (4): H779–H788. https://doi.org/10.1152/ajpheart.1986.251.4.H779.; Starodumov IO, Sokolov SY, Alexandrov DV, Zubarev AY, Bessonov IS, Chestukhin VV, Blyakhman FA. Modelling of hemodynamics in bifurcation lesions of coronary arteries before and after myocardial revascularization. Phil Trans R Soc A. 2022; 380: 20200303. https://doi.org/10.1098/rsta.2020.0303.; Forte E, Punzo B, Gentile F, Salvatore M, Cavaliere C, Cademartiri F. Normal patterns of left ventricle rest myocardial perfusion assessed by third-generation cardiac computed tomography. Clin Physiol Funct Imaging, 2020; 40: 30–36. doi:10.1111/cpf.12598.; Namani R, Lee LC, Lanir Y, Kaimovitz B, Shavik SM, Kassab GS. Effects of myocardial function and systemic circulation on regional coronary perfusion. J Appl Physiol. 2020; 128: 1106–1122. doi:10.1152/japplphysiol.00450.2019.; Davies JE, Whinnett ZI, Francis DP, Manisty CH, Aguado-Sierra J, Willson K et al. Evidence of a dominant backward-propagating «Suction» wave responsible for diastolic coronary filling in humans, attenuated in left ventricular hypertrophy. Circulation. 2006; 113: 1768–1778. https://doi.org/10.1161/circulationaha.105.603050.; Ladwiniec A, White PA, Sukhjinder S. Diastolic backward-traveling decompression (Suction) wave correlates with simultaneously acquired indices of diastolic function and is reduced in left ventricular stunning. Circ Cardiovasc Interv. 2016; 9 (9): 1–9. doi:10.1161/circinterventions.116.003779.; Sabbah HN, Marzzilli M, Liu ZL, Stein PD. Coronary extravascular compression influence systolic coronary blood flow. Heart Vessels. 1986; 2: 140–146. doi:10.1007/BF02128139.; Jacob M, Chahhell D, Becker BF. Regulation of blood flow and volume exchange across the microcirculation. Crit Care. 2016; 20 (1): 319. https://doi.org/10.1186/s13054-016-1485-0.; Schubert T, Santini F, Stalder AF, Bock J, Meckel S, Bonati L et al. Dampening of blood-flow pulsatility along the carotid siphon: does form follow function? AJNR Am J Neuroradiol. 2011; 32 (6): 1107–1112. doi:10.3174/ajnr.A2426.; Blyakhman F. Left ventricular inhomogeneity and the heart’s functional reserve. The cardiac pumping and perfusion engineering. Ghista D, Ng E, eds. Singapore: World Scientific Press, 2007: 17–56. doi:10.1142/9789812775597_0002.; https://journal.transpl.ru/vtio/article/view/1558
-
4Academic Journal
Συγγραφείς: G. N. Antipov, A. S. Postol, S. N. Kotov, M. O. Makarova, Yu. A. Schneider, Г. Н. Антипов, А. С. Постол, С. Н. Котов, М. О. Макарова, Ю. А. Шнейдер
Πηγή: Complex Issues of Cardiovascular Diseases; Том 11, № 3 (2022); 29-39 ; Комплексные проблемы сердечно-сосудистых заболеваний; Том 11, № 3 (2022); 29-39 ; 2587-9537 ; 2306-1278
Θεματικοί όροι: сократимость предсердий, sinus rhythm, “Maze” procedure, atrial contractility, синусовый ритм, операция «Лабиринт»
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Relation: https://www.nii-kpssz.com/jour/article/view/1143/693; Бокерия Л.А., Бокерия О.Л., Биниашвили М.Б. Случай успешного хирургического лечения фибрилляции предсердий с помощью криомодификации операции «Лабиринт». Бюллетень медицинских интернет-конференций, 2013; 3 (3): 490–494.; Cox J.L., Malaisrie S.C., Kislitsina O.N., McCarthy P.M. The electrophysiologic basis for lesions of the contemporary Maze operation. J Thorac Cardiovasc Surg. 2019 Feb;157(2):584-590. doi:10.1016/j.jtcvs.2018.08.007.; Kislitsina O.N., Cox J.L., Shah S.J., Malaisrie S.C., Kruse J., Liu M., Andrei A.C., McCarthy P.M. Preoperative left atrial strain abnormalities are associated with the development of postoperative atrial fibrillation following isolated coronary artery bypass surgery. J Thorac Cardiovasc Surg. ;164(3):917-924. doi:10.1016/j.jtcvs.2020.09.130.; Tinetti M., Costello R., Cardenas C., Piazza A., Iglesias R., Baranchuk A. Persistent atrial fibrillation is associated with inability to recover atrial contractility after MAZE IV surgery in rheumatic disease. Pacing Clin Electrophysiol. 2012;35(8):999-1004. doi:10.1111/j.1540-8159.2012.03458.x.; Nitta T., Ishii Y., Fujii M., Miyagi Y., Sakamoto S., Hiromoto A., Imura H. Restoration of sinus rhythm and atrial transport function after the maze procedure: U lesion set versus box lesion set. J Thorac Cardiovasc Surg. 2016;151(4):1062-9. doi:10.1016/j.jtcvs.2015.10.108.; Loardi C., Alamanni F., Galli C., Naliato M., Veglia F., Zanobini M., Pepi M. Surgical Treatment of Concomitant Atrial Fibrillation: Focus onto Atrial Contractility. Biomed Res Int. 2015;2015:274817. doi:10.1155/2015/274817.; Бокерия Л.А., Турдубаев А.К., Макаренко В.Н., Меликулов А.Х., Мироненко М.Ю., Сергеев А.В. Оценка ремоделирования предсердий у пациентов после операции «лабиринт». Анналы аритмологии, 2017, Т.14 №3, с.136-141. DOI:10.15275/annaritmol.2017.3.2; Buber J., Luria D., Sternik L., Kuperstein R., Grupper A., Goldenberg I., Raanani E., Feinberg M.S., Nof E., Eldar M., Glikson M. Morphological features of the P-waves at surface electrocardiogram as surrogate to mechanical function of the left atrium following a successful modified maze procedure. Europace. 2014;16(4):578-86. doi:10.1093/europace/eut248.; Cameli M., Mondillo S., Galderisi M., Mandoli G.E., Ballo P., Nistri S., Capo V., D'Ascenzi F., D'Andrea A., Esposito R., Gallina S., Montisci R., Novo G., Rossi A., Mele D., Agricola E. L’ecocardiografia speckle tracking: roadmap per la misurazione e l’utilizzo clinico [Speckle tracking echocardiography: a practical guide]. G Ital Cardiol (Rome). 2017;18(4):253-269. Italian. doi:10.1714/2683.27469.; Pathan F., D'Elia N., Nolan M.T., Marwick T.H., Negishi K. Normal Ranges of Left Atrial Strain by Speckle-Tracking Echocardiography: A Systematic Review and Meta-Analysis. J Am Soc Echocardiogr. 2017;30(1):59-70.e8. doi:10.1016/j.echo.2016.09.007.; Luis S.A., Pellikka P.A. Is Speckle Tracking Imaging Ready for Prime Time in Current Echo Clinical Practice? Prog Cardiovasc Dis. 2018;61(5-6):437-445. doi:10.1016/j.pcad.2018.11.001.; Mandoli G.E., Pastore M.C., Vasilijevaite K., Cameli P., D'Ascenzi F., Focardi M., Mondillo S., Cameli M. Speckle tracking stress echocardiography:Avaluable diagnostic technique or a burden for everyday practice? Echocardiography. 2020;37(12):2123-2129. doi:10.1111/echo.14894.; Cameli M., Mandoli G.E., Loiacono F., Sparla S., Iardino E., Mondillo S. Left atrial strain: A useful index in atrial fibrillation. Int J Cardiol. 2016;220:208-13. doi:10.1016/j.ijcard.2016.06.197.; Сторожаков Г.И., Верещагина Г.С., Малышева Н.В., Бугова Е.А. Оценка состояния предсердий по данным ЭКГ высокого разрешения и эхокардиографии у больных с пароксизмальной мерцательной аритмией. Российский кардиологический журнал. 2001; 3 (29):14-19.; Атьков О. Ю., Балахонова Т. В., Горохова С. Г.; под ред. О. Ю. Атькова. Ультразвуковое исследование сердца и сосудов.М.: Эксмо, 2009. 400 c.; Арутюнян В.Б., Чрагян В.А., Осетрова О.А. Непосредственные и отдаленные результаты операции левопредсердного «лабиринта» у пациентов с ишемической болезнью сердца и патологией митрального клапана. Пермский медицинский журнал.2017;34(1): 19-25.; January C.T., Wann L.S., Calkins H., Chen L.Y., Cigarroa J.E., Cleveland J.C. Jr, Ellinor P.T., Ezekowitz M.D., Field M.E., Furie K.L., Heidenreich P.A., Murray K.T., Shea J.B., Tracy C.M., Yancy C.W. 2019 AHA/ACC/HRS Focused Update of the 2014 AHA/ACC/HRS Guideline for the Management of Patients With Atrial Fibrillation:A Report of theAmerican College of Cardiology/ American Heart Association Task Force on Clinical Practice Guidelines and the Heart Rhythm Society in Collaboration With the Society of Thoracic Surgeons. Circulation. 2019;140(2):e125-e151. doi:10.1161/CIR.0000000000000665.; Антипов Г. Н., Постол А. С., Котов С. Н., Макарова М. О., Шнейдер Ю. А. Сравнение биатриальной и левопредсердной процедур «лабиринт» при сочетанных операциях на сердце. Кардиология и сердечно-сосудистая хирургия. 2020;13(1):17-23. doi:10.17116/kardio20201301117; Бокерия Л.А., Бокерия О.Л., Фатулаев З.Ф., Климчук И.Я., М.Ю. Мироненко, Диасамидзе К.Э., Санакоев М.К., Шварц В.А. Методика операции «лабиринт IIIб» в хирургии фибрилляции предсердий, осложненной аритмогенной митральной недостаточностью. Анналы аритмологии. 2020;17(2):.68-83. doi:10.15275/annaritmol.2020.2.1; Cox J.L., Churyla A., Malaisrie S.C., Kruse J., Pham D.T., Kislitsina O.N., McCarthy P.M. When Is a Maze Procedure a Maze Procedure? Can J Cardiol. 2018;34(11):1482-1491. doi:10.1016/j.cjca.2018.05.008.; Lönnerholm S., Blomström P., Nilsson L., Blomström-Lundqvist C. Long-term effects of the maze procedure on atrial size and mechanical function. Ann Thorac Surg. 2008;85(3):916-20. doi:10.1016/j.athoracsur.2007.10.090.; Jin Y., Wang H.S., Han J.S., Zhang J., Zhang Y.J., Xin F.R., Yu Y., Zhao Y. Recovery of atrial contractile function after cut-and-sew maze for long-standing persistent valvular atrial fibrillation. Int J Cardiol. 2021;324:84-89. doi:10.1016/j.ijcard.2020.09.010.; Sie H.T., Beukema W.P., Ramdat Misier A.R., Elvan A., Ennema J.J., Wellens H.J. The radiofrequency modified maze procedure. A less invasive surgical approach to atrial fibrillation during open-heart surgery. Eur J Cardiothorac Surg. 2001;19(4):443-7. doi:10.1016/s1010-7940(01)00595-4.; Gaynor S.L., Diodato M.D., Prasad S.M., Ishii Y., Schuessler R.B., Bailey M.S., Damiano N.R., Bloch J.B., Moon M.R., Damiano R.J. Jr. A prospective, single-center clinical trial of a modified Cox maze procedure with bipolar radiofrequency ablation. J Thorac Cardiovasc Surg. 2004;128(4):535-42. doi:10.1016/j.jtcvs.2004.02.044.; Cox J.L., Churyla A., Malaisrie S.C., Pham D.T., Kruse J., Kislitsina O.N., McCarthy P.M. A Hybrid Maze Procedure for Long-Standing Persistent Atrial Fibrillation. Ann Thorac Surg. 2019 ;107(2):610-618. doi:10.1016/j.athoracsur.2018.06.064.; Одаренко Ю.Н., Рутковская Н.В., Горбунова Е.В., Хоменко Е.А., Кокорин С.Г., Барбараш Л.С. Применение биопротезов в хирургии митральных пороков: возможности отказа от антикоагулянтной терапии. Комплексные проблемы сердечно-сосудистых заболеваний. 2018;7(3):72-82. https://doi. org/10.17802/2306-1278-2018-7-3-72-82.; Reyes G., Benedicto A., Bustamante J., Sarraj A., Nuche J.M., Alvarez P., Duarte J. Restoration of atrial contractility after surgical cryoablation: clinical, electrical and mechanical results. Interact Cardiovasc Thorac Surg. 2009;9(4):609-12. doi:10.1510/icvts.2009.208173.
-
5Academic Journal
Συγγραφείς: Samanta, Abir, Mukherjee, Sabyasachi
Πηγή: Physical Education Theory and Methodology; Vol. 21 No. 3 (2021); 253-263 ; Теория и методика физического воспитания; Том 21 № 3 (2021); 253-263 ; Теорія та методика фізичного виховання; Том 21 № 3 (2021); 253-263 ; 1993-7997 ; 1993-7989 ; 10.17309/tmfv.2021.3
Θεματικοί όροι: Myoelectric Signals, Heterogeneity, Agonist-Antagonist Co-Contraction, Discriminant analysis, Principal Component Analysis, миоэлектрические сигналы, неоднородность, сократимость агонистов и антагонистов, дискриминантный анализ, анализ главных компонентов, міоелектричні сигнали, неоднорідність, скорочуваність агоністів і антагоністів, дискримінантний аналіз, аналіз головних компонент
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
-
6Academic Journal
Συγγραφείς: Krainichuk (Shelepalo), H., Akopyan, A., Andreieva, Yu.
Πηγή: Bulletin of Donetsk National University. Series A: Natural Sciences; №1-2 (2018); 33-48 ; Вестник Донецкого национального университета. Серия А: Естественные науки; №1-2 (2018); 33-48 ; Вісник Донецького національного університету. Серія А: Природничі науки; №1-2 (2018); 33-48 ; 1817-2237 ; 10.31558/1817-2237.2018.1-2
Θεματικοί όροι: quasigroup, parastrophe, identity, functional equation, parastrophically primary equivalence, reduciblity, cancellability, квазигруппа, парастроф, тождество, функциональное уравнение, парастрофно-первичная эквивалентность, сводимость, сократимость, квазiгрупа, тотожнiсть, функцiйне рiвняння, парастрофно-первинна рiвносильнiсть, звiдiсть, скоротнiсть
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
-
7Academic Journal
Συγγραφείς: Mazurov, V.D., Gilеv, D.V.
Πηγή: Bulletin of the South Ural State University. Ser. Computer Technologies, Automatic Control & Radioelectronics. 16:5-14
Θεματικοί όροι: метод комитетов, 5. Gender equality, quality, УДК 519.7, несовместность, качество, incompatibility, Committees method contractility, 10. No inequality, 7. Clean energy, сократимость
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Σύνδεσμος πρόσβασης: https://vestnik.susu.ru/ctcr/article/download/5428/4713
https://vestnik.susu.ru/ctcr/article/download/5428/4713
https://cyberleninka.ru/article/n/o-sokratimosti-komiteta-sistemy-lineynyh-neravenstv
https://vestnik.susu.ru/ctcr/article/view/5428/4713
http://dspace.susu.ru/xmlui/handle/0001.74/26612 -
8Academic Journal
Συγγραφείς: D. A. Shvets, S. V. Povetkin, Д. А. Швец, С. В. Поветкин
Πηγή: The Russian Archives of Internal Medicine; Том 7, № 6 (2017); 438-449 ; Архивъ внутренней медицины; Том 7, № 6 (2017); 438-449 ; 2411-6564 ; 2226-6704 ; 10.20514/2226-6704-2017-7-6
Θεματικοί όροι: сегментарная сократимость, Tissue Doppler Imaging, segmental contractility, тканевая допплерография
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Relation: https://www.medarhive.ru/jour/article/view/719/618; Бойцов С.А., Самородская И.В. Факторы, влияющие на показатели смертности и ожидаемую продолжительность жизни. Аналитический вестник. 2015; 44: 19-42. Bojcov S.A., Samorodskaya I.V. Factors affecting mortality rates and life expectancy. Analytical Bulletin. 2015; 44: 19-42 [in Russian].; Браунвальд Е. Болезни сердца. М.: Логосфера. 2013; 3: 1753с. Braunwald E. Heart Disease. М.: Logosfera. 2013; 3: 1753 р. [in Russian].; Рыбакова М.К., Алехин М.Н., Митьков В.В. Практическое руководство по ультразвуковой диагностике М: Видар. 2008; 500 с. Rybakova M.K., Alyokhin M.N., Mit’kov V.V. A practical guide to ultrasound diagnostics. M.: Vidar. 2008; 500 р. [in Russian].; Lang R.M., Badano L.P., Mor-Avi V. еt al. Recommendations for cardiac chamber quantification by echocardiography in adults: an update from the American Society of Echocardiography and the European Association of Cardiovascular Imaging. Journal of the American Society of Echocardiography. 2015; 28(1): 1—39. doi:10.1093/ehjci/jev014; Otto C. The Practice of Clinical Echocardiography: Philadelphia. 2002; 880 р.; Алехин М.Н. Ультразвуковые методы оценки деформации миокарда и их клиническое значение. М.: Видар. 2012; 86 с Alyokhin M.N. Ultrasonic methods of assessing myocardial deformation and their clinical significance. M.: Vidar. 2012; 86 р. [in Russian].; Nagueh S.F., Smiseth O.A., Appleton C.P. Recommendations for the Evaluation of Left Ventricular Diastolic Function by Echocardiography: An Update from the American Society of Echocardiography and the European Association of Cardiovascular Imaging. Journal of the American Society of Echocardiography. 2016; 29: 277-314. http://dx.doi.org/10.1016/j.echo.2016.01.011; Флакскампф А. Практическая эхокардиография. М.: МЕДпрессинформ. 2013; 870 с. Flakskampf A. Practical echocardiography. M.: MEDpress-inform. 2013; 870 р. [in Russian].; https://www.medarhive.ru/jour/article/view/719
-
9Academic Journal
Συγγραφείς: Abdurakhmanova, E. R., Dorofeyeva, N. O., Lukashuk, O. I., Holovchenko, O. V., Brovarets, V. S.
Πηγή: Journal of Organic and Pharmaceutical Chemistry; Vol. 14 No. 1(53) (2016); 74-77 ; Журнал органической и фармацевтической химии; Том 14 № 1(53) (2016); 74-77 ; Журнал органічної та фармацевтичної хімії; Том 14 № 1(53) (2016); 74-77 ; 2518-1548 ; 2308-8303
Θεματικοί όροι: heart, contractility, 4-phosphorylated 5-amino-1, 3-oxazoles, phosphonopeptidomimetics, amino alcohols, UDC 547.787 547.79, 57.083.3, сердце, сократимость, 4-фосфорилированные 5-амино-1, 3-оксазолы, фосфонопептидомиметики, аминоспирты, УДК 547.787 547.79, серце, скоротливість, 4-фосфорильовані 5-аміно-1, 3-оксазоли, фосфонопептидоміметики, аміноспирти
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Relation: https://ophcj.nuph.edu.ua/article/view/ophcj.16.882/85594; https://ophcj.nuph.edu.ua/article/view/ophcj.16.882
-
10Academic Journal
Συγγραφείς: Хаертдинов Наиль Назимович, Ситдикова Гузель Фаритовна, Лифанова Анастасия Сергеевна, Гаязова Эльвира Ирековна
Συνεισφορές: Институт фундаментальной медицины и биологии, Казанский федеральный университет
Θεματικοί όροι: миокард, сократимость, газомедиаторы, сероводород, К-каналы
Relation: Рецепторы и внутриклеточная сигнализация; http://rour.neicon.ru:80/xmlui/bitstream/rour/192531/1/nora.pdf; https://openrepository.ru/article?id=192531
Διαθεσιμότητα: https://openrepository.ru/article?id=192531
-
11Academic Journal
Συγγραφείς: S. E. Mamchur, S. V. Berdnikov, I. N. Mamchur, E. A. Khomenko, N. S. Bokhan, D. A. Scherbinina, С. Е. Мамчур, С. В. Бердников, И. Н. Мамчур, Е. А. Хоменко, Н. С. Бохан, Д. А. Щербинина
Πηγή: Complex Issues of Cardiovascular Diseases; № 1 (2014); 47-51 ; Комплексные проблемы сердечно-сосудистых заболеваний; № 1 (2014); 47-51 ; 2587-9537 ; 2306-1278 ; 10.17802/2306-1278-2014-1
Θεματικοί όροι: сократимость предсердий, atrial contractility
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Relation: https://www.nii-kpssz.com/jour/article/view/25/29; Shiels H. A., White E. The Frank-Starling mechanism in vertebrate cardiac myocytes // J. ExP. Biol. 2008. Vol. 211. P. 2005–2013.; Starling E. H., Visscher M. B. The regulation of the energy output of the heart // J. Physiol. 1926. Vol. 62. P. 243–261.; Steele L., Webster N. R. Altered cardiac function // J. R. Coll. Surg. Edinb. 2001. Vol. 46. P. 29–34.; Covell J. W., Ross Jr. J. Systolic and diastolic function (mechanics) of the intact heart / eds. E. Page, H. Fozzard, R. J. Solaro // Handbook of physiology. Section 2: The cardiovascular system. N. Y., 2002. P. 741–785.; Gordon A. M., Huxley A. F., Julian F. J. The variation in isometric tension with sarcomere length in vertebrate muscle fibres // J. Physiol. 1966. Vol. 184. P. 170–192.; Stelzer J. E., Moss R. L. Contributions of stretch activation to length-dependent contraction in murine myocardium // J. Gen. Physiol. 2006. Vol. 128. P. 461–471.; Mechanical function of the left atrium / P. S. Pagel [et al.] // Anesthesiology. 2003. Vol. 98. P. 975–994.; Instantaneous pressure-volume relation of the ejecting / J. Alexander [et al.] // Circulation Research. 1987. Vol. 61. P. 209–219.; Tucci P. J., Maciel R. E., Ribeiro M. C. The absence of the descending limb of the Frank-Starling curve of the depressed guinea pig whole ventricle // Braz. J. Med. Biol. Res. 1984. Vol. 17. P. 129–133.; The control of myocardial contraction with skeletal fast muscle troponin C / A. Babu [et al.] // J. Biol. Chem. 1987. Vol. 262. P. 5815–5822.; Troponin and titin coordinately regulate lengthdependent activation in skinned porcine ventricular muscle / T. Terui [et al.] // J. Gen. Physiol. 2008. Vol. 131. P. 275–283.
-
12Academic Journal
Συγγραφείς: Леушина, Алина, Нуруллин, Лениз, Петухова, Елена, Зефиров, Андрей, Мухамедьяров, Марат
Θεματικοί όροι: БОЛЕЗНЬ АЛЬЦГЕЙМЕРА, СОКРАТИМОСТЬ МИОКАРДА, АДРЕНОРЕЦЕПТОРЫ, НОРАДРЕНАЛИН, ТРАНСГЕННЫЕ ЖИВОТНЫЕ, ИММУНОГИСТОХИМИЯ, ALZHEIMER'S DISEASE
Περιγραφή αρχείου: text/html
-
13Academic Journal
Συγγραφείς: Бодров Александр Владимирович, Маркосян Тигран Григорьевич, Корчажкина Наталья Борисована
Θεματικοί όροι: нейрогенные расстройства мочеиспускания, хронический простатит, сократимость мышц промежности, игольчатая миография промежности, кортикоспинальный тракт, neurogenic disorders of urination, chronic prostatitis, contractility of perineal muscles, pelvical needle elektromiografy, corticospinal tract
Περιγραφή αρχείου: text/html
-
14Academic Journal
Συγγραφείς: Хаертдинов Наиль Назимович, Шафигуллин Марат Ульфатович, Ситдикова Гузель Фаритовна, Сабируллина Гулия Ильнатовна, Зефиров Андрей Львович
Συνεισφορές: Институт фундаментальной медицины и биологии, Казанский федеральный университет
Θεματικοί όροι: Сероводород, гладкомышечные клетки, калиевые каналы, сократимость
Relation: Вестник науки Сибири; http://rour.neicon.ru:80/xmlui/bitstream/rour/154973/1/nora.pdf; https://openrepository.ru/article?id=154973
Διαθεσιμότητα: https://openrepository.ru/article?id=154973
-
15Academic Journal
Συγγραφείς: Циркин, Виктор, Коротаева, Юлия
Θεματικοί όροι: ГИСТИДИН, ТРИПТОФАН, ТИРОЗИН, СОКРАТИМОСТЬ МИОКАРДА, БЕТА-АДРЕНОРЕЦЕПТОРЫ
Περιγραφή αρχείου: text/html
-
16Academic Journal
Συγγραφείς: ЛИФАНОВА А.С., ХАЕРТДИНОВ Н.Н., ЗАХАРОВ А.В., ГИЗЗАТУЛЛИН А.Р., СИТДИКОВА Г.Ф.
Θεματικοί όροι: СЕРОВОДОРОД, СОКРАТИМОСТЬ МИОКАРДА, АТФ-ЗАВИСИМЫЕ КАЛИЕВЫЕ КАНАЛЫ, ПОТЕНЦИАЛ-ЗАВИСИ-МЫЕ КАЛИЕВЫЕ КАНАЛЫ, КАЛЬЦИЙ-АКТИВИРУЕМЫЕ КАЛИЕВЫЕ КАНАЛЫ, L-ЦИСТЕИН
Περιγραφή αρχείου: text/html
-
17Academic Journal
Συγγραφείς: Мамчур, С., Бердников, С., Мамчур, И., Хоменко, Е., Бохан, Н., Щербинина, Д.
Θεματικοί όροι: ЗАКОН ФРАНКА-СТАРЛИНГА, СОКРАТИМОСТЬ ПРЕДСЕРДИЙ
Περιγραφή αρχείου: text/html
-
18Academic Journal
Συγγραφείς: Abdurakhmanova, E. R., Dorofeyeva, N. O., Lukashuk, O. I., Holovchenko, O. V., Brovarets, V. S.
Πηγή: Журнал органічної та фармацевтичної хімії; Том 14, № 1(53) (2016): Журнал органічної та фармацевтичної хімії; 74-77
Žurnal organìčnoï ta farmacevtičnoï hìmìï; Том 14, № 1(53) (2016): Žurnal organìčnoï ta farmacevtičnoï hìmìï; 74-77
Журнал органической и фармацевтической химии; Том 14, № 1(53) (2016): Журнал органической и фармацевтической химии; 74-77Θεματικοί όροι: УДК 547.787 + 547.79: 57.083.3, heart, contractility, 4-phosphorylated 5-amino-1,3-oxazoles, phosphonopeptidomimetics, amino alcohols, сердце, сократимость, 4-фосфорилированные 5-амино-1,3-оксазолы, фосфонопептидомиметики, аминоспирты, серце, скоротливість, 4-фосфорильовані 5-аміно-1,3-оксазоли, фосфонопептидоміметики, аміноспирти, UDC 547.787 + 547.79: 57.083.3
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Σύνδεσμος πρόσβασης: http://ophcj.nuph.edu.ua/article/view/ophcj.16.882
-
19Academic Journal
Συγγραφείς: Фомин, Лев
Θεματικοί όροι: ЛИСТ, ПАРЕНХИМА, КЛЕТКИ, КЛЕТОЧНАЯ ОБОЛОЧКА, ФОРМА, ПОЛЯРНОСТЬ, СОКРАТИМОСТЬ, ВОДНЫЙ РЕЖИМ, РЕГУЛЯЦИЯ, ФАКТОРЫ
Περιγραφή αρχείου: text/html
-
20Academic Journal
Συγγραφείς: Сабирьянов, Артур, Сабирьянова, Елена, Подзолко, Татьяна
Περιγραφή αρχείου: text/html
