Showing 1 - 20 results of 29 for search '"РОМАНОВСКАЯ ПОРОДА"', query time: 0.77s Refine Results
  1. 1
  2. 2
    Academic Journal

    Contributors: Исследование выполнено за счет гранта Российского научного фонда (проект № 24-26-00136).

    Source: Bulletin of NSAU (Novosibirsk State Agrarian University); № 3 (2024); 196-204 ; Вестник НГАУ (Новосибирский государственный аграрный университет); № 3 (2024); 196-204 ; 2072-6724

    File Description: application/pdf

    Relation: https://vestngau.elpub.ru/jour/article/view/2372/1046; G1 point mutation in growth diferentiation factor 9 gene afects litter size in Sudanese desert sheep / A.Z. Abdelgadir, L.M.A. Musa, K.I. Jawasreh [et al.] // Vet. World. – 2021. – №. 14(1). – P. 104–112. – DOI:10.14202/vetworld.2021.104-112.; Ерохин А.И., Карасев Е.А., Ерохин С.А.Состояние, динамика и тенденции в развитии овцеводства в мире и в России // Овцы, козы, шерстяное дело. – 2019. – № 3. – С. 3–6.; Современные методы генетического контроля селекционных процессов и сертификация племенного материала в животноводстве / Н.А. Зиновьева, П.М. Кленовицкий, Е.А. Гладырь [и др.]. – М.: РУДН, 2008. – 329 с.; Шевхужев А.Ф., Скорых Л.Н., Суховеева А.В. Полиморфизмы гена GH и LEP, ассоциированные с признаками роста в популяции мясного скота калмыцкой породы // Вестник РГАУ им. П.А. Костычева. – 2023. – № 3. – С. 61–68. – DOI:10.36508/RSATU.2023.60.53.009.; Взаимосвязь полиморфизма генов липидного обмена (LEP, TG5) с молочной продуктивностью крупного рогатого скота / Ф.Ф. Зиннатов, А.Р. Шамсова, Ф.Ф. Зиннатова [и др.] // Ученые записки КГАВМ им. Н.Э. Баумана. – 2017. – № 3. – С. 72–75.; Бобрышова Г.Т., Суржикова Е.С., Чудновец А.И. Полиморфизм гена гормона роста и (GH) его взаимосвязь с продуктивными качествами у коров ярославской породы // Главный зоотехник. – 2019. – № 12. – С. 31–77.; Молочная продуктивность и качество молока коров с разными генотипами тиреоглобулина / С.В. Тюлькин, Х.Х. Гильманов, И.В. Ржанова [и др.] // Ученые записки КГАВМ им. Н.Э. Баумана. – 2019. – № 4. – С. 187–190. – DOI:10.31588/2413-4201-1883-240-4-187-191.; Скорых Л.Н., Фоминова И.О., Коваленко Д.В. Полиморфизм гена соматотропина и его взаимосвязь с показателями роста у мясо-шерстных овец // Зоотехния. – 2020. – № 10. – С. 6–8. – DOI:10.25708/ZT.2020.33.80.002.; Денискова Т.Е., Доцев А.В., Зиновьева Н.А. Идентификация генов-кандидатов, ассоциированных с экономически значимыми признаками, на основе анализа островков гомозиготности в геноме пород овец, разводимых в России // Достижения науки и техники АПК. – 2023. – Т. 37. – № 9. – С. 80–86.; PSXII-6 evaluation of the infuence of BGH gene polymorphism on elemental composition of blood serum and beef productivity of black spotted bulls / M. Adamovich, R. Khabibullin, I.V. Mironova [et al.] // Journal of animal science. –2022. – №. 100. – P. 209–210. – DOI:10.1093/jas/skac247.381.; Влияние мутаций в гене FGF-5 на показатели шерсти у овец / Е.А. Климанова, Д.А. Александрова, О.И. Себежко [и др.] // Вестник НГАУ (Новосибирский государственный аграрный университет). – 2023. – № 3. – С. 225–235. – DOI:10.31677/2072-6724-2023-68-3-225-235.; Биология, генетика и селекция овцы / А.В. Кушнир, В.И. Глазко, В.А. Петухов [и др.]. – Новосибирск: НГАУ, 2010. – 524 с.; Identifcation of polymorphisms in the oocyte-derived growth diferentiation growth factor 9 (GDF9) gene associated with litter size in New Zealand sheep (Ovisaries) breeds / H.A. Najafabadi, M. Khansefd, G.G. Mahmoud [et al.] // Reprod. Domest. Anim. – 2020. – № 55(11). – P. 1585–1591. – DOI:10.1111/rda.13813.; Отработка оптимального способа выделения ДНК из крови животных для проведения ПЦРПДРФ анализа аллельного полиморфизма гена BOLA-DRB3 / З.А. Латыпова, Ш.Т. Сарбаканова, Л.С. Аубекерова [и др.] // Международный журнал прикладных и фундаментальных исследований. – 2016. – № 1–4. – С. 555–557.; Single nucleotide polymorphism in dairy cattle populations of West Siberia / O.S. Korotkevich, M.P. Lyukhanov, V.L. Petukhov [et al.] // Conference: 10th world congress of genetics applied to livestock Production, 2014. – Vancuver, 2014. – DOI:10.13140/2.1.1987.0084.; Проблемы селекции сельскохозяйственных животных / Б.Л. Панов, В.Л. Петухов, Л.К. Эрнст [и др.]. – Новосибирск: Наука, 1997. – 283 с.; Полиморфизм белков сыворотки крови свиней сибирской северной породы / Е.В. Камалдинов, О.С. Короткевич, В.Л. Петухов [и др.] // Докл. Рос. акад. с.-х. наук. – 2010. – С. 49–51.; Камалдинов Е.В., Короткевич О.С., Петухов В.Л. Фонд эритроцитарных антигенов и хромосомная нестабильность у якутского скота // Сельскохозяйственная биология. – 2011. – № 2. – С. 51–56.; Иммуногенетические системы сывороточных белков крови свиней / В.Л. Петухов, А.И. Желтиков, М.Л. Кочнева [и др.] // Докл. Рос. акад. с.-х. наук. – 2003. – С. 38–40.; Петухов В.Л., Желтиков А.И., Камалдинов Е.В. Генетическая структура кемеровской и крупной белой пород свиней по системам групп крови // Сельскохозяйственная биология. – 2004. – С. 43–49.; Ассоциация генотипов β-лактоглобулина с некоторыми биохимическими показателями крови овец романовской породы / Е.А. Климанова, Т.В. Коновалова, В.А. Андреева [и др.] // Вестник НГАУ (Новосибирский государственный аграрный университет). – 2020. – № 4(57). – С. 82–87. – DOI:10.31677/2072-6724-2020-57-4-82-87.; Ассоциация генотипов β-лактоглобулина у овец романовской породы с гематологическими показателями крови / Е.А. Климанова, З.Т. Поповский, Т.В. Коновалова [и др.] // Вестник НГАУ (Новосибирский государственный аграрный университет). – 2021. – № 4(61). – С. 126–136. – DOI:10.31677/2072-6724-2021-61-4-126-136.; Климанова Е.А., Коновалова Т.В. Полиморфизм локуса ВМР-15 у овец романовской породы в условиях Западной Сибири // Вестник НГАУ (Новосибирский государственный аграрный университет). – 2023. – № 2(67). – С. 197–204. – DOI:10.31677/2072-6724-2023-67-2-197-204.; Growth diferentiation factor-9 improves development, mitochondrial activity and meiotic resumption of sheep oocytes after in vitro culture of secondary follicles / A.P.O. Monte, J.M. Santos, V.G. Menezes [et al.] // Reprod. Domest. Anim. – 2019. – № 54(9). – P. 1169–1176. – DOI:10.1111/rda.13485.; Involvement of phosphorylated Akt and FOXO3a in the efects of growth and diferentiation factor-9 (GDF-9) on inhibition of follicular apoptosis and induction of granulosacell proliferation after In vitro culture of sheep ovarian tissue / A.P.O. Monte, M.É.S. Bezerra, V.G. Menezes [et al.] // Reproductive sciences. – 2021. – Vol. 28. – P. 2174–2185. – DOI:10.1007/s43032-020-00409-x.; Колосов Ю.А., Гетманцева Л.В., Широкова Н.В. Полиморфизм гена (GDF9) у овец cальской породы // Ветеринарная патология. – 2014. – № 3–4. – С. 78–81.; Ecological and biochemical evaluation of elements contents in soils and fodder grasses of the agricultural lands of Siberia / A.I. Syso, M.A. Lebedeva, A.S. Cherevko [et al.] / J. Pharm. Sci. and Res. – 2017. – Vol. 9 (4). – P. 368–374.; Особенности полиморфизма генов GH/Hae III, GDF9/BstHH I у молодняка овец дагестанской горной породы / А.И. Суров, З.К. Гаджиев, Е.С. Суржикова [и др.] // Аграрный научный журнал. – 2022. – № 10. – С. 89–92. – DOI:10.28983/asj.y2022i10pp89-92.; Генетическая структура овец западно-сибирской мясной и кулундинской тонкорунной пород по генам CAST, GDF9 иKRT1.2 / О.Л. Халина, С.Н. Магер, Г.М. Гончаренко [и др.] // Известия Тимирязевской сельскохозяйственной академии. – 2022. – № 4. – С. 103–116.; Mutations in the genes for oocyte derived growth factors GDF9 and BMP15 are associated with both increased ovulation rate and sterility in Cambridge and Belclare sheep (Ovisaries) / J.P. Hanrahan, S.M. Gregan, P. Mulsant [et al.] // Biol. Reprod. – 2004. – № 70(4). – P. 900–909. – DOI:10.1095/biolreprod.103.023093.; Mullen M.P., Hanrahan J.P. Direct evidence on the contribution of a missense mutation in GDF9 to variation in ovulation rate of Finn sheep // PLoS One. – 2014. – № 9. – P. 95251. – DOI:10.1371/journal.pone.0095251.; Homozygosity for a single base-pair mutation in the oocyte-specifc GDF9 gene results in sterility in Thoka sheep / L. Nicol, S.C. Bishop, R. Pong-Wong [et al.] // Reproduction. – 2009. – № 138. – P. 921–933. – DOI:10.1530/REP-09-0193.; Гончаренко Г.М., Халина О.Л. Полиморфизм гена дифференциального фактора роста (GDF 9) у овец западно-сибирской и кулундинской тонкорунной пород // Аграрная наука – сельскому хозяйству: cб. мат-лов XVII Междунар. науч.-практ. конф. – Барнаул, 2022. – С. 111–112.; Полиморфизм генов CAST, GH, GDF9 овец горно-алтайской породы / М.И. Селионова, Л.Н. Чижова, Е.С. Суржикова [и др.] // Сибирский вестник сельскохозяйственной науки. – 2020. – Т. 50, № 1. – С. 92–100. – DOI:10.26898/0370-8799-2020-1-11.; Полиморфизм генов CAST, GH, GDF9 овец дагестанской горной породы / А.А. Оздемиров, Л.Н. Чижова, А.А. Хожоков [и др.] // Юг России: экология, развитие. – 2021. – Т. 16, № 2. – C. 39–44. – DOI:10.18470/1992-1098-2021-2-39-44.; Петухова Д.Д. Характеристика аллельного спектра генов GDF9, PRL, Β-LG овец породы лакон // Сельскохозяйственный журнал. – 2020. –№ 5 (13). – С. 73–79.; Полиморфизм генов кальпастатина (CAST), соматотропина (GH), дифференциального фактора роста (GDF 9) у овец породы российский мясной меринос от межлинейного спаривания баранов линии МЕ-50 и овцематок линии АС-30 / Н.А. Резун, Е.Н. Чернобай, Д.Д. Евлагина [и др.] // Аграрный вестник Северного Кавказа. – 2023. – № 2(50). – С. 30–34. – DOI:10.31279/222-9345-2023-13-50-30-34.; https://vestngau.elpub.ru/jour/article/view/2372

  3. 3
  4. 4
    Academic Journal

    Source: Bulletin of NSAU (Novosibirsk State Agrarian University); № 2 (2023); 197-204 ; Вестник НГАУ (Новосибирский государственный аграрный университет); № 2 (2023); 197-204 ; 2072-6724

    File Description: application/pdf

    Relation: https://vestngau.elpub.ru/jour/article/view/2032/902; Santos-Silva J., Portugal A.V. The effect of weight on carcass and meat quality of Serra de Estrela and Merino Branco lambs fattened with dehydrated lucern // Animal Research. – 2001. – N 50. – P. 289–298.; Novel variants in GDF9 gene affect promoter activity and litter size in Mongolia sheep / B. Tong, J.P. Wang, Z.X. Cheng [et al.] // Genes. – 2020. – N 11 (4). – P. 375.; Mutations in BMPR-IB and BMP-15 genes are associated with litter size in Small Tailed Han sheep (Ovis aries) / M.X. Chu, Z.H. Liu, Y.Q. He [et al.] // J. Anim. Sci. – 2007. – № 85. – P. 598–603.; The novel T755C mutation in BMP15 is associated with the litter size of Iranian Afshari, Ghezel, and Shal breeds / H.R. Amini, A. Ajaki, M. Farahi [et al.] // Arch Anim Breed. – 2018. – N 61 (1). – P. 153–160.; The identification of mutation in BMP15 gene associated with litter size in Xinjiang Cele black sheep / Z.G. Niu, J. Qin, Y. Jiang [et al.] // Animals. – 2021. – N 11 (3) – P. 668.; Ali M.A., Kadhim A.H., Al-Thuwaini T.M. Genetic variants of the bone morphogenetic protein gene and its association with estrogen and progesterone levels with litter size in Awassi ewes // Iraqi Journal of Veterinary Sciences. – 2022. – Vol. 36. – N 4. – P. 1017–1022. – DOI:10.33899/ijvs.2022.132903.2143.; Genetic polymorphism of candidate genes for fecundity traits in Egyptian sheep breeds / I.A.H. Barakat, L.M. Salem, N.M. Daoud [et al.] // Biomedical Research. – 2017. – Vol. 28, N 2. – P. 851–857.; Influence of season, rainfall and air temperature on the reproductive efficiency in Romanov sheep in Croatia / D. Duricic, M. Benic, I.Z. Zaja [et al.] // International Journal of Biometeorology. – 2019. – Vol. 63. – P. 817–824.; The Romanov breed of sheep in Siberia / O.I. Sebezhko, E.V. Kamaldinov, Y.I. Fedyaev [et al.] / Proceeding The 2nd World Conference on Sheep. – 2018. – Р. 11–12.; Содержание и изменчивость тестостерона у взрослых и молодых баранов романовской породы / Е.И. Тарасенко, Т.В. Коновалова, О. С. Короткевич [и др.] // Вестник НГАУ (Новосибирский государственный аграрный университет). – 2022. – № 4 (65). – С. 213–224. – DOI:10.31677/2072-6724-2022-65-4-213-224.; Климанова Е.А. Влияние полиморфизмов генов BMP-15 и BMPR-IB на скорость овуляции у овец // Роль аграрной науки в устойчивом развитии сельских территорий: сб. IV Всерос. (нац.) науч. конф., Новосибирск, 20 дек. 2019 г. – Новосибирск: ИЦ НГАУ «Золотой колос», 2019. – С. 81–84.; Климанова Е.А., Коновалова Т.В., Андреева В.А. Генотипы β-лактоктоглобулина и количество эритроцитов крови у овец романовской породы // Пища. Экология. Качество: тр. XVII Междунар. науч.-практ. конф., Новосибирск, 18–19 нояб. 2020 г. – Екатеринбург: Урал. гос. экон. ун-т, 2020. – С. 290–292.; Ерохин А.И., Карасев Е.А. Романовская порода овец. – М.: МГУП, 2001. – 119 с.; Климанова Е.А. Влияние полиморфизма β-лактоглобулина на молочную продуктивность овец // Актуальные проблемы агропромышленного комплекса: сб. тр. науч.-практ. конф. преподавателей, аспирантов, магистрантов и студентов Новосиб. ГАУ, Новосибирск, 21–22 окт. 2020 г. – Новосибирск: ИЦ НГАУ «Золотой колос», 2020. – Вып. 5. – С. 14–15.; Проблемы селекции сельскохозяйственных животных / Б.Л. Панов, В.Л. Петухов, Л.К. Эрнст [и др.]. – Новосибирск: Наука, 1997. – 283 с.; Макро- и микроэлементы в почвах и кормовых травах прифермерских полей Барнаульского Приобья / А.И. Сысо, М.А. Лебедева, С.А. Худяев [и др.] // Вестник НГАУ (Новосибирский государственный аграрный университет). – 2017. – № 3 (44). – С. 54–61.; Genetic polymorphisms of fecundity genes in Watish Sudanese desert sheep / S.E.I. Mohamed, R.M. Ahmed, K.I.Z. Jawasreh [et al.] // Veterinary World. – 2019. – N 13 (4). – Р. 614–621. – DOI:10.14202/vetworld.2020.614-621.; Moradband F., Rahimi G., Gholi M. Association of polymorphisms in fecundity genes of GDF9, BMP15 and BMP15-1B with litter size in Iranian Baluchi sheep // Asian-Australasian J Anim Sci. – 2011. – N 24. – Р. 1179–1183.; Investigation of the Booroola (FecB) and Inverdale (FecXI) mutations in 21 prolific breeds and strains of sheep sampled in 13 countries / G.H. Davis, L. Balakrishnan, I.K. Ross [et al.] // Anim Reprod Sci. – 2006. – № 92. – P. 87–96.; Polymorphism of FecB gene in nine sheep breeds or strains and its effects on litter size, lamb growth and development / F. Guan, L. Shou-ren, G.Q. Shi [et al.] // Anim Reprod Sci. – 2007. – N 99. – P. 44–52.; Ассоциация генотипов β-лактоглобулина с некоторыми биохимическими показателями крови овец романовской породы / Е.А. Климанова, Т.В. Коновалова, В.А. Андреева [и др.] // Вестник НГАУ (Новосибирский государственный аграрный университет). – 2020. – N 4 (57). – С. 82–87.; Ассоциация генотипов β-лактоглобулина у овец романовской породы с гематологическими показателями крови / Е.А. Климанова, З.Т. Поповский, Т.В. Коновалова [и др.] // Вестник НГАУ (Новосибирский государственный аграрный университет). – 2021. – N 4 (61). – С. 126–136. – DOI:10.31677/2072-6724-2021-61-4-126-136.; https://vestngau.elpub.ru/jour/article/view/2032

  5. 5
    Academic Journal

    Source: Proceedings of the National Academy of Sciences of Belarus. Agrarian Series; Том 59, № 1 (2021); 71-80 ; Известия Национальной академии наук Беларуси. Серия аграрных наук; Том 59, № 1 (2021); 71-80 ; 1817-7239 ; 1817-7204 ; 10.29235/1817-7204-2021-59-1

    File Description: application/pdf

    Relation: https://vestiagr.belnauka.by/jour/article/view/542/513; Genomic selection and its application in animal breeding / F. Ibtisham [et al.] // Thai J. of Veterinary Medicine. – 2017. – Vol. 47, N 3. – P. 301–310.; Georges, M. Harnessing genomic information for livestock improvement / M. Georges, C. Charlier, B. Hayes // Nature Rev. Genetics. – 2019. – Vol. 20, N 3. – P. 135–156. https://doi.org/10.1038/s41576-018-0082-2; Meuwissen, T. Genomic selection: A paradigm shift in animal breeding / T. Meuwissen, B. Hayes, M. Goddard // Animal Frontiers. – 2016. – Vol. 6, N 1. – P. 6–14. https://doi.org/10.2527/af.2016-0002; Advances in genomic strategies to improve growth and meat production traits in sheep: an overview / A.R. Sahu [et al.] // Ind. J. of Small Ruminants. – 2017. – Vol. 23, N 2. – P. 139–147. https://doi.org/10.5958/0973-9718.2017.00052.6; Genome-wide association study to identify genomic regions affecting prolificacy in Lori-Bakhtiari sheep / R. Abdoli [et al.] // Animal Genetics. – 2018. – Vol. 49, N 5. – P. 488–491. – https://doi.org/10.1111/age.12700; Benavides, M.V. How efficiently Genome-Wide Association Studies (GWAS) identify prolificity-determining genes in sheep / M. V. Benavides, C.J. H. Souza, J.C. F. Moraes // Genetics a. Molecular Research. – 2018. – Vol. 17, N 2. – P. 9–14. https://doi.org/10.4238/gmr16039909; Miller, J. M. Genomic analysis of morphometric traits in bighorn sheep using the Ovine Infinium® HD SNP BeadChip / J.M. Miller, M. Festa-Bianchet, D.W. Coltman // PeerJ. – 2018. – Vol. 6, N 2. – P. e4364. https://doi.org/10.7717/peerj.4364; Combined GWAS and ‘guilt by association’-based prioritization analysis identifies functional candidate genes for body size in sheep / A. Kominakis [et al.] // Genetics Selection Evolution. – 2017. – Vol. 49, N 41. – Art. 41. https://doi.org/10.1186/s12711-017-0316-3; Мильчевский, В.Д. Подбор пар родителей в овцеводстве [Электронный ресурс] / В.Д. Мильчевский // Аэкономика: экономика и сел. хоз-во. – 2018. – Т. 27, № 3. – Режим доступа: https://aeconomy.ru/news/agro/podborpar-roditeley-v-ovtsevodstve.html. – Дата доступа: 11.01.2020.; Genomic selection in dairy cattle simulated populations / L. O. Seno [et al.] // J. of Dairy Research. – 2018. – Vol. 85, N 2. – P. 125–132. https://doi.org/10.1017/S0022029918000304; Weller, J.I. Invited review: A perspective on the future of genomic selection in dairy cattle / J.I. Weller, E. Ezra, M. Ron // J. of Dairy Science. – 2017. – Vol. 100, N 11. – P. 8633–8644. https://doi.org/10.3168/jds.2017-12879; The effects of the myostatin g+6723G>A mutation on carcass and meat quality of lamb / M. Hope [et al.] // Meat Science. – 2013. – Vol. 95, N 1. – P. 118–122. https://doi.org/10.1016/j.meatsci.2013.03.029; Single nucleotide polymorphisms in an intron of the ovine calpastatin gene / B.R. Palmer [et al.] // Animal Biotechnology. – 2000. – Vol. 11, N 1. – P. 63–67. https://doi.org/10.1080/10495390009525948; Van der Werf, J. H. J. Marker-assisted aelection in aheep and goats / J. H. J. Van der Werf // Marker-assisted selection: current status and future perspectives in crops, livestock, forestry and fish / ed.: E. Guimaraes [et al.]; FAO. – Rome, 2007. – Chap. 13. – P. 229–247.; Evidence for multiple alleles effecting muscling and fatness at the Ovine GDF8 locus / J.W. Kijas [et al.] // BMC Genetics. – 2007. – Vol. 8, N 1. – Art. 80. https://doi.org/10.1186/1471-2156-8-80; Gholizadeh, M. Genomewide association study of body weight traits in Baluchi sheep / M. Gholizadeh, G. RahimiMianji, A. Nejati-Javaremi // J. of Genetics. – 2015. – Vol. 94, N 1. – P. 143–146. https://doi.org/10.1007/s12041-015-0469-1; Ценный мировой генофонд овец – романовская порода / М.М. Коренев [и др.] // Овцы, козы, шерстяное дело. – 2017. – № 3. – С. 2–5.; Состояние и перспективы романовского овцеводства в России / Н.С. Фураева [и др.] // Овцы, козы, шерстяное дело. – 2015. – № 1. – С. 6–9.; PLINK: a tool set for whole-genome association and population-based linkage analyses / S. Purcell [et al.] // Amer. J. of Human Genetics. – 2007. – Vol. 81, N 3. – P. 559–575. https://doi.org/10.1086/519795; Latent TGF-β-binding proteins / I.B. Robertson [et al.] // Matrix Biology. – 2015. – Vol. 47. – P. 44–53. https://doi.org/10.1016/j.matbio.2015.05.005; Transcriptional profiling of the human fibrillin/LTBP gene family, key regulators of mesenchymal cell functions / M.R. Davis [et al.] // Molecular Genetics a. Metabolism. – 2014. – Vol. 112, N 1. – P. 73–83. https://doi.org/10.1016/j.ymgme.2013.12.006; Satuluri, V. S. A. K. A quantitative structure-activity relationship study on some series of potassium channel blockers / V. S. A. K. Satuluri, J. Seelam, S. P. Gupta // Medicinal Chemistry. – 2009. – Vol. 5, N 1. – P. 87–92. https://doi.org/10.2174/157340609787049244; LIM homeobox transcription factors integrate signaling events that control three-dimensional limb patterning and growth / I. Tzchori [et al.] // Development. – 2009. – Vol. 136, N 8. – P. 1375–1385. https://doi.org/10.1242/dev.026476; Sequence and structural analysis of BTB domain proteins / P.J. Stogios [et al.] // Genome Biology. – 2005. – Vol. 6, N 10. – P. R82. https://doi.org/10.1186/gb-2005-6-10-r82; Jiang, B. The functions of the mammalian methionine sulfoxide reductase system and related diseases / B. Jiang, J. Moskovitz // Antioxidants. – 2018. – Vol. 7, N 9. – Art. 122. – https://doi.org/10.3390/antiox7090122; Celi, P. The role of oxidative stress in small ruminants’ health and production / P. Celi // Rev. Brasileira de Zootecnia. – 2010. – Vol. 39, suppl. spec. – P. 348–363. https://doi.org/10.1590/S1516-35982010001300038; The use of oxidative stress biomarkers in live animals (in vivo) to predict meat quality deterioration postmortem (in vitro) caused by changes in muscle biochemical components / E. N. Ponnampalam [et al.] // J. of Animal Science. – 2017. – Vol. 95, N 7. – P. 3012–3024. – https://doi.org/10.2527/jas.2016.0887; Mizumoto, S. Molecular interactions between chondroitin-dermatan sulfate and growth factors/receptors/matrix proteins / S. Mizumoto, S. Yamada, K. Sugahara // Current Opinion in Structural Biology. – 2015. – Vol. 34. – P. 35–42. https://doi.org/10.1016/j.sbi.2015.06.004; Phosphotyrosine recognition domains: the typical, the atypical and the versatile / T. Kaneko [et al.] // Cell Communication a. Signaling. – 2012. – Vol. 10, N 1. – Art. 32. https://doi.org/10.1186/1478-811X-10-32; Delta/Notch-Like EGF-Related Receptor (DNER) is not a notch ligand / M. Greene [et al.] // PLoS ONE. – 2016. – Vol. 11, N 9. – P. e0161157. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0161157; https://vestiagr.belnauka.by/jour/article/view/542

  6. 6
  7. 7
    Academic Journal

    Source: Agricultural Science Euro-North-East; № 3 (2018); 75-80 ; Аграрная наука Евро-Северо-Востока; № 3 (2018); 75-80 ; 2500-1396 ; 2072-9081

    File Description: application/pdf

    Relation: https://www.agronauka-sv.ru/jour/article/view/225/225; Справочник пород и типов сельскохозяйственных животных, разводимых в Российской Федерации. Словарь терминов по разведению, генетике, селекции и биотехнологии размножения сельскохозяйственных животных. Перечень российских и международных организаций в сфере животноводства / Дунин И.М., Данкверт А.Г. [и др.]. М.: ВНИИплем, 2013. 551 с.; Эрнст Л.K., Дмитриев Н.Г., Паронян И.А. Генетические ресурсы сельскохозяйственных животных в России и сопредельных странах. СПб.: Изд-во ВНИИГРЖ, 1994. 469 с.; Shackelford S.D., Ley master K.A., Wheeler T.L., Koohmaraie M. Effects of breed of sire on carcass composition and sensory traits of lamb. J Anim Sсi. 2012. Vol. 90.no. 11. P. 4131.; Денискова T.E., Соловьева А.Д., Костюнина О.В., Зиновьева H.A. Динамика аллелофонда овец романовской породы на основании анализа микросателлитов // Овцы, козы, шерстяное дело. 2017. № 3. С. 5-6.; Peakall R., Smouse P.E. GenAlEx 6.5: genetic analysis in Excel. Population genetic software for teaching and research-an update. Bioinformatics. 2012. Vol. 28. P. 2537-2539.; Huson D.H., Bryant D. Application of Phylogenetic Networks in Evolutionary Studies. Molecular Biology and Evolution. 2006. Vol. 23. no. 2. P. 254-267.; Pritchard J. K., Stephens M., Donnelly P. Inference of population structure using multilocus genotype data. Genetics. 2000. Vol. 155. P. 945-959.; Tapio M., Таріо I., Grislis Z., Holm L-E., Jeppsson S., Kantanen J., Miceikiene I., Olsaker I., Viinalass H., Eythorsdottir E. Native breeds demonstrate high contributions to the molecular variation in northern European sheep. Mol Ecol. 2005. no. 14. P. 3951-3963.; Ferrando A., Goyache F., Parés P.-М., Carrion С. Genetic relationships between six eastern Pyrenean sheep breeds assessed using microsatellites. Spanish Journal of Agricultural Research. 2014. Vol. 12. no. 4. P. 1029-1037.; Beynon S.E., Slavov G.T., Fane М., Sunduimijid B., Waddams K., Davies B., Haresign W., Kijas J., MacLeod I.M., Newbold C.J., Davies L., Larkin D.M. Population structure and history of the Welsh sheep breeds determined by whole genome genotyping. BMC Genet. 2015. № 16. P. 65.; Nei M. Genetic distance between populations. American Naturalist. 1972. no. 106. P. 283-392.; Tapio M., Ozerov M., Viinalass H., Kiseliova T., Kantanen Yu. Molecular genetic variation in sheep of central Volga area inhabited by Finno-Ugric peoples. Agr. Food Sсi. 2007. no. 16. P. 157-169.; Zinovieva N.A., Selionova M.I., Gladyr E.A., Petrovic M.P., Petrovic V.C., Muslik D.R., Petrovic M.M. Investigation of gene pool and genealogical links between sheep breeds of southern Russia by blood groups and DNA microsatellites. Genetika. 2015. Vol. 47. no. 2. P. 395-404.; Nesteruk L.V., Makarova N.N., Svishcheva G.R., Stolpovsky Yu. A. Estimation of genetic diversity of Romanov sheep by the coefficient of genetic originality based on ISSR-fingerprinting data. Russian Journal of Genetics. 2015. V. 51. P. 725-729.; Макарова H.H., Нестерук Jl.B., Столповский Ю.А., Москаленко Л.П., Николаева Е.А. Перспективы использования мультилокусных маркеров ДНК при сохранении и разведении генофонда романовской породы овец // Вестник АПК Верхневолжья. 2013. Т.2. № 22. С. 75-80.

  8. 8
  9. 9
  10. 10
  11. 11
  12. 12
  13. 13
  14. 14
  15. 15
  16. 16
  17. 17
  18. 18
  19. 19
  20. 20