Εμφανίζονται 1 - 20 Αποτελέσματα από 23 για την αναζήτηση '"РЕСПИРАТОРНЫЙ ВЗРЫВ"', χρόνος αναζήτησης: 0,55δλ Περιορισμός αποτελεσμάτων
  1. 1
  2. 2
  3. 3
    Academic Journal

    Πηγή: PULMONOLOGIYA; Том 29, № 2 (2019); 167-174 ; Пульмонология; Том 29, № 2 (2019); 167-174 ; 2541-9617 ; 0869-0189 ; 10.18093/0869-0189-2019-29-2

    Περιγραφή αρχείου: application/pdf

    Relation: https://journal.pulmonology.ru/pulm/article/view/1142/906; Колосов В.П., Кочегарова Е.Ю., Нарышкина С.В. Внебольничная пневмония (клиническое течение, прогнозирование исходов). Благовещенск: АГМА; 2012.; Чучалин А.Г., ред. Пульмонология. Национальное руководство. М.: ГЭОТАР-Медиа; 2016.; Cataudella E., Giraffa C.M., Di Marca S. et al. Neutrophil-to-lymphocyte ratio: an emerging marker predicting prognosis in elderly adults with community-acquired pneumonia. J. Am. Geriatr. Soc. 2017; 65 (8): 1796–1801. DOI:10.1111/jgs.14894.; Kartal O., Kartal A.T. Value of neutrophil to lymphocyte and platelet to lymphocyte ratios in pneumonia. Bratisl. Lek. Listy. 2017; 118 (9): 513–516. DOI:10.4149/BLL_2017_099.; Parenti A., Indorato B., Paccosi S. Minocycline affects human neutrophil respiratory burst and transendothelial migration. Inflamm. Res. 2017; 66 (2): 107–109. DOI:10.1007/s00011-016-0999-x.; Stålhammar M.E., Douhan Håkansson L., Sindelar R. Bacterial N-formyl peptides reduce PMA- and Escherichia coli-induced neutrophil respiratory burst in term neonates and adults. Scand. J. Immunol. 2017; 85 (5): 365–371. DOI:10.1111/sji.12537.; Владимиров Ю.А., Проскурнина Е.В. Свободные радикалы и клеточная хемилюминесценция. Успехи биологической химии. 2009; 49: 341–388.; Beutler B. Innate immunity: an overview. Mol. Immunol. 2004; 40: 845–859. DOI:10.1016/j.molimm.2003.10.005.; Соодаева С.К., Климанов И.А., Никитина Л.Ю. Нитрозивный и оксидативный стресс при заболеваниях органов дыхания. Пульмонология. 2017; 27 (2): 262–273. DOI:10.18093/0869-0189-2017-27-2-262-273.; Савченко А.А., Здзитовецкий Д.Э., Борисов А.Г., Лузан Н.А. Хемилюминесцентная и энзиматическая активность нейтрофильных гранулоцитов у больных распространенным гнойным перитонитом в зависимости от исхода заболевания. Вестник РАМН. 2014; 69 (5-6): 23–28. DOI:10.15690/vramn.v69i5-6.1039.; Walmsley S.R., Whyte M.K. Neutrophil energetics and oxygen sensing. Blood. 2014; 123 (18): 2753–2754. DOI:10.1182/blood-2014-03-560409.; Чучалин А.Г., Синопальников А.И., Козлов Р.С. и др. Российское респираторное общество (РРО) Межрегиональная ассоциация по клинической микробиологии и антимикробной химиотерапии (МАКМАХ) Клинические рекомендации по диагностике, лечению и профилактике тяжелой внебольничной пневмонии у взрослых. Пульмонология. 2014; (4): 13–48. DOI:10.18093/0869-0189-2014-0-4-13-48.; Чучалин А.Г., Синопальников А.И., Козлов Р.С. и др. Клинические рекомендации по диагностике, лечению и профилактике тяжелой внебольничной пневмонии у взрослых. Клиническая микробиология антимикробная химиотерапия. 2015; 17 (2): 84–126.; Дворецкий Л.И. Внебольничная пневмония: взгляд терапевта. Consilium Medicum. 2008; 10 (3): 34–40.; Савченко А.А. Определение активности NAD(P)-зависимых дегидрогеназ в нейтрофильных гранулоцитах биолюминесцентным методом. Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 2015; 159 (5) 656–660. DOI:10.1007/s10517-015-3049-8.; Nguyen G.T., Green E.R., Mecsas J. Neutrophils to the ROScue: Mechanisms of NADPH oxidase activation and bacterial resistance. Front. Cell. Infect. Microbiol. 2017; 7: 373. DOI:10.3389/fcimb.2017.00373.; Zhang L., Wu J., Duan X. et al. NADPH oxidase: A potential target for treatment of stroke. Oxid. Med. Cell. Longev. 2016; 2016: 5026984. DOI:10.1155/2016/5026984.; Kőszegi T., Sali N., Raknić M. et al. A novel luminol-based enhanced chemiluminescence antioxidant capacity microplate assay for use in different biological matrices. J. Pharmacol. Toxicol. Methods. 2017; 88 (Pt 2): 153–159. DOI:10.1016/j.vascn.2017.09.256.; Bao Y., Ledderose C., Graf A.F. et al. mTOR and differential activation of mitochondria orchestrate neutrophil chemotaxis. J. Cell Biol. 2015; 210 (7): 1153–1164. DOI:10.1083/jcb.201503066.; Milot E., Filep J.G. Regulation of neutrophil survival /apoptosis by Mcl-1. Sci. World J. 2011; 11: 1948–1962. DOI:10.1100/2011/131539.; Lu L., Wang M., Liao X. et al. Manganese influences the expression of fatty acid synthase and malic enzyme in cultured primary chicken hepatocytes. Br. J. Nutr. 2017; 118 (11): 881–888. DOI:10.1017/S0007114517002987.; Cai T., Kuang Y., Zhang C. et al. Glucose-6-phosphate dehydrogenase and NADPH oxidase 4 control STAT3 activity in melanoma cells through a pathway involving reactive oxygen species, c-SRC and SHP2. Am. J. Cancer Res. 2015; 5 (5): 1610–1620.; https://journal.pulmonology.ru/pulm/article/view/1142

  4. 4
    Academic Journal

    Πηγή: Medical Immunology (Russia); Том 20, № 4 (2018); 551-560 ; Медицинская иммунология; Том 20, № 4 (2018); 551-560 ; 2313-741X ; 1563-0625 ; 10.15789/1563-0625-2018-4

    Περιγραφή αρχείου: application/pdf

    Relation: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/1563/1050; Багненко С.Ф., Толстой А.Д., Краснорогов В.Б., Курыгин А.А., Гринев М.В., Лапшин В.Н., Гольцов В.Р. Острый панкреатит (Протоколы диагностики и лечение) // Анналы хирургической гепатологии, 2006. Т. 11, № 1. С. 60-66. [Bagnenko S.F., Tolstoy A.D., Krasnorogov V.B., Kurygin A.A., Grinev M.V., Lapshin V.N., Goltsov V.R. Acute pancreatitis (diagnostic protocols and treatment). Annaly khirurgicheskoy gepatologii = Annals of Surgical Hepatology, 2006, Vol. 11, no. 1, pp. 60-66. (In Russ.)]; Дарвин В.В., Онищенко С.В., Краснов Е.А., Васильев В.В., Лысак М.М., Климова Н.В. Острый деструктивный панкреатит: современное хирургическое лечение // Анналы хирургической гепатологии, 2014. Т. 19, № 4. С. 76-82. [Darvin V.V., Onishhenko S.V., Krasnov E.A., Vasilyev V.V., Lysak M.M., Klimova N.V. Acute destructive pancreatitis: current surgical treatment. Annaly khirurgicheskoy gepatologii = Annals of Surgical Hepatology, 2014, Vol. 19, no. 4, pp. 76-82. (In Russ.)]; Мазуров Д.В., Пинегин Б.В. Применение проточной цитометрии для оценки поглотительной и бактерицидной функций гранулоцитов и моноцитов периферической крови // Аллергия, астма и клиническая иммунология, 1999. № 9. С. 154-156. [Mazurov D.V., Pinegin B.V. Application of flow cytometry for evaluating the absorbency and the antibacterial functions of granulocytes and monocytes of peripheral blood. Allergiya, astma i klinicheskaya immunologiya = Allergy, Asthma and Clinical Immunology, 1999, no. 9, pp. 154-156. (In Russ.)]; Савченко А.А., Здзитовецкий Д.Э., Борисов А.Г., Лузан Н.А. Хемилюминесцентная активность нейтрофильных гранулоцитов и уровни концентрации цитокинов у больных распространенным гнойным перитонитом // Цитокины и воспаление, 2013. Т. 12, № 1-2. С. 115-119. [Savchenko A.A., Zdzitovetskiy D.E., Borisov A.G., Luzan N.A. Neutrophil chemiluminescent activity and cytokine concentration levels in patients with extensive purulent peritonitis. Tsitokiny i vospalenie = Cytokines and Inflammation, 2013, Vol. 12, no. 1-2, pp. 115-119. (In Russ.)]; Шкапова Е.А., Куртасова Л.М., Савченко А.А. Показатели люцигенин- и люминол-зависимой хемилюминесценции нейтрофилов крови у больных раком почки // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины, 2010. Т. 149, № 2. С. 201-203. [Shkapova E.A., Kurtasova L.M., Savchenko A.A. The indicatoуrs of the lucigenin- and luminol-dependent chemiluminescence of blood neutrophils by the patients with kidney cancer. Byulleten eksperimental`noy biologii i meditsiny = Bulletin of Experimental Biology and Medicine, Vol. 149, no. 2, pp. 201-203. (In Russ.)]; Andreassen S.M., Berg L.C., Nielsen S.S., Kristensen A.T., Jacobsen S. mRNA expression of genes involved in inflammation and haemostasis in equine fibroblast-like synoviocytes following exposure to lipopolysaccharide, fibrinogen and thrombin. BMC Vet. Res., 2015, Vol. 11, p. 141.; Bone R.S., Balk R.A., Cerra F.B., Dellinger R.P., Fein A.M., Knaus W.A., Schein R.M., Sibbald W.J. American college of Chest Physicians. Society of Critical Care Medicine Consensus Conference: Definitions for sepsis and organ failure and guide lines for the use of innovative therapies in sepsis. Crit. Care Med., 1992, Vol. 20, no. 6, pp. 864-874.; Dick J.F. 3rd, Gardner T.B., Merrens E.J. Acute pancreatitis: New developments and strategies for the hospitalist. J. Hosp. Med., 2016, Vol. 11, no. 10, pp. 724-729.; El-Benna J., Hurtado-Nedelec M., Marzaioli V., Marie J.C., Gougerot-Pocidalo M.A., Dang P.M. Priming of the neutrophil respiratory burst: role in host defense and inflammation. Immunol. Rev., 2016, Vol. 273, no. 1, pp. 180-193.; Hoppe B. Fibrinogen and factor XIII at the intersection of coagulation, fibrinolysis and inflammation. Thromb. Haemost., 2014, Vol. 112, no. 4, pp. 649-658.; Iba T., Gando S., Saitoh D., Wada H., Di Nisio M., Thachil J. Antithrombin supplementation and risk of bleeding in patients with sepsis-associated disseminated intravascular coagulation. Thromb. Res., 2016, Vol. 145, pp. 46-50.; Kovács I., Horváth M., Kovács T., Somogyi K., Tretter L., Geiszt M., Petheő G.L. Comparison of proton channel, phagocyte oxidase, and respiratory burst levels between human eosinophil and neutrophil granulocytes. Free Radic. Res., 2014, Vol. 48, no. 10, pp. 1190-1199.; le Gall J.-R., Lemeshow S., Saulnier F. A new Simplified Acute Physiology Score (SAPS II) based on a European/North American multicenter study. JAMA, 1993, Vol. 270, pp. 2957-2963.; Lisman T., Porte R.J. Activation and regulation of hemostasis in acute liver failure and acute pancreatitis. Semin. Thromb. Hemost., 2010, Vol. 36, no. 4, pp. 437-443.; Maheshwari R., Subramanian R.M. Severe acute pancreatitis and necrotizing pancreatitis. Crit. Care Clin., 2016, Vol. 32, no. 2, pp. 279-290.; Okamura D., Starr M.E., Lee E.Y., Stromberg A.J., Evers B.M., Saito H. Age-dependent vulnerability to experimental acute pancreatitis is associated with increased systemic inflammation and thrombosis. Aging Cell, 2012, Vol. 11, no. 5, pp. 760-769.; Singh P., Garg P.K. Pathophysiological mechanisms in acute pancreatitis: Current understanding. Indian J. Gastroenterol., 2016, Vol. 35, no. 3, pp. 153-166.; Trujillo M. Analysis of the immunity-related oxidative bursts by a luminol-based assay. Methods Mol. Biol., 2016, Vol. 1398, pp. 323-329.; van Bijnen S.T., Wouters D., van Mierlo G.J., Muus P., Zeerleder S. Neutrophil activation and nucleosomes as markers of systemic inflammation in paroxysmal nocturnal hemoglobinuria: effects of eculizumab. J. Thromb. Haemost., 2015, Vol. 13, no. 11, pp. 2004-2011.; Vincent J.L., Moreno R., Takala J., Willatts S., De Mendonca A., Bruining H., Reinhart C.K., Suter P.M., Thijs L.G. The SOFA (Sepsis-related Organ Failure Assessment) score to describe organ dysfunction/failure. On behalf of the Working Group on Sepsis-Related Problems of the European Society of Intensive Care Medicine. Intensive Care Med., 1996, Vol. 22, no. 7, pp. 707-710.; Vinokurov M.M., Saveliev V.V., Gogolev N.M., Yalynskya T.V. Immunomodulation and treatment of acute destructive pancreatitis in a multidisciplinary surgical hospital. Wiad. Lek., 2015, Vol. 68, no. 4, pp. 582-586.; Yasuda N., Goto K., Ohchi Y., Abe T., Koga H., Kitano T. The efficacy and safety of antithrombin and recombinant human thrombomodulin combination therapy in patients with severe sepsis and disseminated intravascular coagulation. J. Crit. Care., 2016, Vol. 36, pp. 29-34.; Zonneveld R., Molema G., Plötz F.B. Measurement of functional and morphodynamic neutrophil phenotypes in systemic inflammation and sepsis. Crit. Care., 2016, Vol. 20, p. 235.; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/1563

  5. 5
    Academic Journal

    Πηγή: Vestnik Moskovskogo universiteta. Seriya 16. Biologiya; Том 73, № 4 (2018); 242-246 ; Вестник Московского университета. Серия 16. Биология; Том 73, № 4 (2018); 242-246 ; 0137-0952

    Περιγραφή αρχείου: application/pdf

    Relation: https://vestnik-bio-msu.elpub.ru/jour/article/view/657/447; Feniouk B.A., Skul achev V.P. Cellular and molecular mechanisms of action of mitochondria-targeted antioxidants // Curr. Aging Sci. 2017. Vol. 10. N 1. P. 41–48.; Holmstrom K.M., Fin kel T. Cellular mechanisms and physiological consequences of redox-dependent signaling // Nat. Rev. Mol. Cell Bio. 2014. Vol. 15. N 6. P. 411–421.; Kalinina E.V., Chernov N.N., Novichkova M.D. Role of glutathione, glutathione transferase, and glutaredoxin in regulation of redox-dependent processes // Biochemistry (Mosc). 2014. Vol. 79. N 13. P. 1562–1583.; Medzhitov R. Origin and physiological roles of inflammation // Nature. 2008. Vol. 454. N 7203. Р. 428–435.; Mittal M., Siddiqui M.R., Tran K., Reddy S.P., Malik A.B. Reactive oxygen species in inflammation and tissue injury // Antioxid. Redox Sign. 2008. Vol. 20. N 7. Р. 1126–1167.; Laurila J.P., Laatikainen L.E., Castellone M.D., Laukkanen M.O. SOD3 reduces inflammatory cell migration by regulating adhesion molecule and cytokine expression // PLoS One. 2009. Vol. 4. N 6:e5786.; Niethammer P., Grabher C., Look A.T., Mitchison T.J. A tissue-scale gradient of hydrogen peroxide mediates rapid wound detection in zebrafish // Nature. 2009. Vol. 459. N 7249. Р. 996–999.; Hurd T.R., DeGennaro M., Lehmann R. Redox regulation of cell migration and adhesion // Trends Cell Biol. 2012. Vol. 22. N2. Р. 107–115.; Hattori H., Subramanian K.K., Sakai J., et al. Smallmolecule screen identifies reactive oxygen species as key regulators of neutrophil chemotaxis // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2010. Vol. 107. N 8. P. 3546–3551.; Blasig I.E., Bellmann C., Cording J., Del Vecchio G., Zwanziger D., Huber O., Haseloff R.F. Occludin protein family: oxidative stress and reducing conditions // Antioxid. Redox Sign. 2011. Vol. 15. N 5. Р. 1195–1219.; Monaghan-Benson E., Burridge K. The regulation of vascular endothelial growth factor-induced microvascular permeability requires Rac and reactive oxygen species // Biol. Chem. 2009. Vol. 284. N 38. Р. 25602–25611.; Segal A.W. The function of the NADPH oxidase of phagocytes and its relationship to other NOXs in plants, invertebrates, and mammals // Int. J. Biochem. Cell B. 2008. Vol. 40. N 4–3. Р. 604–618.; Warnatsch A., Tsourouktsoglou T.D., Branzk N., Wang Q., Reincke S., Herbst S., Gutierrez M., Papayannopoulos V. Reactive oxygen species localization programs inflammation to clear microbes of different size // Immunity. 2017. Vol. 46. N 3. Р. 421–432.; Khan M.A., Palaniyar N. Trans criptional firing helps to drive NETosis // Sci. Rep. 2017. Vol. 7:41749.; Ikeda S., Yamaoka-Tojo M., Hilenski L., Patrushev N.A., Anwar G.M., Quinn M.T., Ushio-Fukai M. IQGAP1 regulates reactive oxygen species-dependent endothelial cell migration through interacting with Nox2 // Arterioscler. Thromb. Vasc. Biol. 2005. Vol. 25. N. 11. Р. 2295–2300.; Wang Y., Zang Q.S., Liu Z., Wu Q., Maass D., Dulan G., Shaul P.W., Melito L., Frantz D.E., Kilgore J.A., Williams N.S., Terada L.S., Nwariaku F.E. Regulation of VEGF-induced endothelial cell migration by mitochondrial reactive oxygen species // Am. J. Physiol. Cell Physiol. 2011. Vol. 301. N 3. Р. C695–C704.; Lopes F., Coelho F.M., Costa V.V ., Vieira É.L., Sousa L.P., Silva T.A., Vieira L.Q., Teixeira M.M., Pinho V. Resolution of neutrophilic inflammation by H2O2 in antigen-induced arthritis //Arthritis Rheum. 2011. Vol. 63. N 9. Р. 2651–2660.; Kuchler L., Giegerich A.K., Sha L .K., Knape T., Wong M.S., Schröder K., Brandes R.P., Heide H., Wittig I., Brüne B., von Knethen A. SYNCRIP-dependent Nox2 mRNA destabilization impairs ROS formation in M2-polarized macrophages // Antioxid. Redox Sign. 2014. Vol. 21. N 18. Р. 2483–2497.; Zhang Y., Choksi S., Chen K., Pobezinskaya Y., Linnoila I., Liu Z.G. ROS play a critical role in the differentiation of alternatively activated macrophages and the occurrence of tumor-associated macrophages // Cell Res. 2013. Vol. 23. N 7. Р. 898–914.; Tan H.Y., Wang N., Li S., Hong M., Wang X., Feng Y. The reactive oxygen species in macrophage polarization: reflecting its dual role in progression and treatment of human diseases // Oxid. Med. Cell. Longev. 2016. Vol. 2016: 2795090.; Morgan M.J., Liu Z.G. Crosstalk of reactive oxygen species and NF-κB signaling // Cell Res. 2011. Vol. 21. N 1. P. 103–115.; Wagener F.A., Carels C.E., Lundvig D.M. Targeting the redox balance in inflammatory skin conditions// Int. J. Mol. Sci. 2013. Vol. 14. N 5. P. 9126–9167.; Dalle-Donne I., Rossi R., Colombo R., Giustarini D., Milzani A. Biomarkers of oxidative damage in human disease // Clin. Chem. 2006. Vol. 52. N 4. P. 601–623.; Liu Z., Ren Z., Zhang J., Chuang C.C., Kandaswamy E., Zhou T., Zuo L. Role of ROS and nutritional antioxidants in human diseases // Front. Physiol. 2018. Vol. 9:477.; Oyewole A.O., Birch-Machin M.A. Mitochondriatargeted antioxidants // FASEB J. 2015. Vol. 29. N 12. P. 4766–4771.

  6. 6
    Academic Journal
  7. 7
    Academic Journal

    Πηγή: Medical Immunology (Russia); Том 18, № 5 (2016); 475-482 ; Медицинская иммунология; Том 18, № 5 (2016); 475-482 ; 2313-741X ; 1563-0625 ; 10.15789/1563-0625-2016-5

    Περιγραφή αρχείου: application/pdf

    Relation: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/1073/883; Кетлинский С.А., Симбирцев А.С. Цитокины. СПб.: Фолиант, 2008. 552 с. [Ketlinsky S.A., Simbirtsev A.S. Cytokines]. St. Petersburg: Foliant, 2008. 552 p.; Савельев В.С., Филимонов М.И., Гельфанд Б.Р., Подачин П.В., Бурневич С.З., Гиткович В.Е., Гайнулин Ш.М. Программируемый перитонеальный лаваж в лечении распространенного перитонита // Анналы хирургии, 1996. № 3. С. 25-29. [Savelyev V.S., Filimonov M.I., Gelfand B.R., Podachin P.V., Burnevich S.Z., Gitkovich V.E., Gaynulin Sh.M. Programmable peritoneal lavage in the treatment of widespread peritonitis. Annaly khirurgii =Annals of Surgery, 1996, no. 3, pp. 25-29. (In Russ.)]; Савченко А.А., Здзитовецкий А.Г., Борисов А.Г., Лузан Н.А. Хемилюминесцентная и энзиматическая активность нейтрофильных гранулоцитов у больных распространенным гнойным перитонитом в зависимости от исхода заболевания // Вестник РАМН, 2014. № 5-6. С. 23-28. [Savchenko A.A., Zdzitovetskiy D.E., Borisov A.G., Luzan N.A. Chemiluminescent and enzyme activity of neutrophils in patients with widespread purulent peritonitis depending on the outcome of disease. Vestnik RAMN = Bulletin of the Russian Academy of Medical Sciences, 2014, no. 5-6, pp. 23-28. (In Russ.)]; Савченко А.А., Здзитовецкий Д.Э., Борисов А.Г. Иммунометаболические нарушения при распространенном гнойном перитоните. Новосибирск: Наука, 2013. 142 с.[Savchenko A.A., Zdzitovetskiy D.E., Borisov A.G. Immune and Metabolic Disorders by the Widespread Purulent Peritonitis]. Novosibirsk: Science, 2013. 142 p.; Савченко А.А., Здзитовецкий Д.Э., Борисов А.Г., Лузан Н.А. Хемилюминесцентная активность нейтрофильных гранулоцитов и уровни концентрации цитокинов у больных распространенным гнойным перитонитом // Цитокины и воспаление, 2013. Т. 12, № 1-2. С. 115-119. [ Savchenko A.A., Zdzitovetskiy D.E., Borisov A.G., Luzan N.A. Neutrophil chemiluminescent activity and cytokine concentration levels in patients with extensive purulent peritonitis. Tsitokiny i vospalenie = Cytokines and Inflammation, 2013, Vol. 12, no. 1-2, pp. 115-119. (In Russ.)]; Bone R.S., Balk R.A.B., Cerra F.B. American college of Chest Physicians. Society of Critical Care Medicine Consensus Conference: Definitions for sepsis and organ failure and guide lines for the use of innovative therapies in sepsis. Crit. Care Med., 1992, Vol. 20, no. 6, pp. 864-874.; Braga P.C., Lattuada N., Greco V., Sibilia V., Falchi M., Bianchi T., Dal Sasso M. Diclofenac-Choline Antioxidant Activity Investigated by means of Luminol Amplified Chemiluminescence of Human Neutrophil Bursts and Electron Paramagnetic Resonance Spectroscopy. Drug Res. (Stuttg.), 2015, Vol. 65, no. 5, pp. 244-251.; Chen X.H., Deng Y.C., Zhong B.Y., Hao F. Aspergillus fumigatus diffusates suppress polymorphonuclear neutrophil phagocytic functions and respiratory burst levels in hematopoietic stem cell transplantation patients. Genet. Mol. Res., 2015, Vol. 14, no. 3, pp. 9233-9243.; De Bruin A.M., Libregts S.F., Valkhof M., Boon L., Touw I.P., Nolte M.A. IFNγ induces monopoiesis and inhibits neutrophil development during inflammation. Blood, 2012, Vol. 119, no. 6, pp. 153-155.; Hajishengallis G., Chavakis T., Hajishengallis E., Lambris J.D. Neutrophil homeostasis and inflammation: novel paradigms from studying periodontitis. J. Leukoc. Biol., 2015, Vol. 98, no. 4, pp. 539-548.; Kolaczkowska E., Kubes P. Neutrophil recruitment and function in health and inflammation. Nat. Rev. Immunol., 2013, Vol. 13, no. 3, pp. 159-175.; Kovács I., Horváth M., Kovács T., Somogyi K., Tretter L., Geiszt M., Petheő G.L. Comparison of proton channel, phagocyte oxidase, and respiratory burst levels between human eosinophil and neutrophil granulocytes. Free Radic. Res., 2014, Vol. 48, no. 10, pp. 1190-1199.; Kuribayashi F., Tsuruta S., Yamazaki T., Nunoi H., Imajoh-Ohmi S., Kanegasaki S., Nakamura M. Cell adhesion markedly increases lucigenin-enhanced chemiluminescence of the phagocyte NADPH oxidase. Genes Cells, 2008, Vol. 13, no. 12, pp. 1249-1256.; Pliyev B.K. Anti-adhesive proteins and resolution of neutrophil-mediated inflammation. Immunobiology, 2013, Vol. 218, no. 8, pp. 1085-1092.; Vincent J.L., Moreno R., Takala J., Willatts S., De Mendonça A., Bruining H., Reinhart C.K., Suter P.M., Thijs L.G. The SOFA (Sepsis-related Organ Failure Assessment) score to describe organ dysfunction/failure. On behalf of the Working Group on Sepsis-Related Problems of the European Society of Intensive Care Medicine. Intensive Care Med., 1996, Vol. 22, no. 7. pp. 707-710.; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/1073

  8. 8
  9. 9
  10. 10
  11. 11
  12. 12
  13. 13
  14. 14
    Dissertation/ Thesis

    Συνεισφορές: Коленчукова, Оксана Александровна, Институт фундаментальной биологии и биотехнологии, Кафедра биофизики

    Relation: Халджанова, Зарема Эльбрускызы. Хемилюминесцентная и биолюминесцентная активность нейтрофильных гранулоцитов у больных раком мочевого пузыря [Электронный ресурс] : магистерская диссертация : 06.04.01 / З. Э. Халджанова. — Красноярск : СФУ, 2023.

    Διαθεσιμότητα: https://elib.sfu-kras.ru/handle/2311/151957

  15. 15
  16. 16
  17. 17
  18. 18
  19. 19
  20. 20