Эволюционное происхождение генов ненасыщенной хондроитин дисахарид-гидролазы семейства GH88 у бактерий Sphaerochaetaceae

Πηγή: VIII Пущинская конференция «Биохимия, физиология и биосферная роль микроорганизмов».

Θεματικοί όροι: МЕТАНОХОНДРОИТИН, РЕЗИСТЕНТНОСТЬ К АНТИБИОТИКАМ, ЭВОЛЮЦИЯ ГЕНОМОВ, МЕТАНОСАРЦИНА, ГИДРОЛАЗА, СРАВНИТЕЛЬНАЯ ГЕНОМИКА

ФАГОТЕРАПИЯ В КОМПЛЕКСНОМ ЛЕЧЕНИИ ПЕРИТОНИТА

Θεματικοί όροι: polyvalent bacteriophages, антимикробная терапия, antibiotic resistance, phage therapy, поливалентные бактериофаги, резистентность к антибиотикам, возбудители хирургических инфекций, surgical pathogens, antimicrobial therapy, 3. Good health, фаготерапия

Using antibiotics on various surgeries

Συγγραφείς: Mekhaeel M.S., Khelifi Ibrahim, Amine A.A., Rizk M.G.

Πηγή: Spravočnik vrača obŝej praktiki (Journal of Family Medicine). :46-50

Θεματικοί όροι: 0301 basic medicine, antibiotic prophylaxis, медицинская хирургия, 3. Good health, антибиотикопрофилактика, 03 medical and health sciences, 0302 clinical medicine, Medical surgery, antibiotic, resistance to antibiotics, антибиотик, резистентность к антибиотикам

МИКРОБИОЛОГИЧЕСКИЕ ПОКАЗАТЕЛИ ПАЦИЕНТОВ С ПОДТВЕРЖДЕННОЙ ИНФЕКЦИЕЙ COVID-19: MICROBIOLOGICAL INDICATORS OF PATIENTS WITH CONFIRMED INFECTION COVID-19

Πηγή: Наука и здравоохранение. :5-10

Θεματικοί όροι: бактериальные инфекции, antibiotic resistance, микробиологиялық мониторинг, резистентность к антибиотикам, microbiologic monitoring, bacterial infection, бактериялардың тұрақтылығы, микробиологический мониторинг, бактериалдық инфекциялар, 3. Good health

Analysis of Non-fermenting Gram-Negative Bacteria Spreading and Their Resistance to Antimicrobial Agents

Πηγή: Клиническая инфектология и паразитология. :151-160

Θεματικοί όροι: 03 medical and health sciences, Acinetobacter spp, non-fermenting gram-negative bacterias, 0302 clinical medicine, P. aeruginosa, antibiotic resistance, неферментирующие грамотрицательные бактерии, резистентность к антибиотикам, 3. Good health

ИСПОЛЬЗОВАНИЕ АНТИБИОТИКОВ В СЕЛЬСКОМ ХОЗЯЙСТВЕ НА ПРИМЕРЕ ОРГАНИЗАЦИИ «ЗЕЛЕНАЯ ДОЛИНА» В РАМКАХ КОМПЛЕКСНОГО ЛЕЧЕНИЯ ПНЕВМОНИИ И ДИАРЕИ У КОРОВ

Θεματικοί όροι: pharmacology, antibiotic resistance, pneumonia in cows, animal treatment, антибиотики, фармакология, diarrhea in cows, antibiotics, veterinary medicine, сельское хозяйство, резистентность к антибиотикам, лечение животных, ветеринария, пневмония у коров, диарея у коров, agriculture

Evolution of Haemophilus influenzae infection during the vaccination period: literature review ; Эволюция гемофильной инфекции в вакцинальный период: обзор литературы

Συγγραφείς: A. V. Krasivskiy, O. B. Kovalev, O. Yu. Borisova, O. V. Shamsheva, A. V. Krasivskaya, O. V. Molochkova, I. Е. Turina, А. В. Красивский, О. Б. Ковалев, О. Ю. Борисова, О. В. Шамшева, А. В. Красивская, О. В. Молочкова, И. Е. Турина

Πηγή: CHILDREN INFECTIONS; Том 22, № 4 (2023); 48-57 ; ДЕТСКИЕ ИНФЕКЦИИ; Том 22, № 4 (2023); 48-57 ; 2618-8139 ; 2072-8107

Θεματικοί όροι: чувствительность к антибиотикам, serotype, vaccine prevention, antibiotic resistance, antibiotic sensitivity, гемофильная палочка, серотип, вакцинопрофилактика, резистентность к антибиотикам

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://detinf.elpub.ru/jour/article/view/888/643; LaCross N.C., Marrs C.F. and Gilsdorf J.R. Population structure in nontypeable haemophilus influenzae. Infection, Genetics and Evolution. 2013; 14: 125— 136. doi:10.1016/j.meegid.2012.11.023; Гайворонская А.Г. Гемофильная инфекция у детей. Педиатрическая фармакология. 2007; 4(6):22—27.; Tsang R.S.W., Ulanova M. The changing epidemiology of invasive haemophilus influenzae disease: Emergence and global presence of serotype a strains that may require a new vaccine for control. Vaccine. 2017; 35(33):4270— 4275. doi:10.1016/j.vaccine.2017.06.001; Зенкова Т.В., Копытова О.А., Ткачук С.П., Бельтикова А.А., & Кожевникова Л.А. Особенности клинического течения менингитов у детей в возрасте от 0 до 3 лет. Российский вестник перинатологии и педиатрии. 2021; 66(4), 211—211.; World Health Organization. Meningitis 2023. Available at: https://www.who.int/ru/news-room/fact-sheets/detail/meningitis; Королёва М.А., Грицай М.И., Королева И.С., Акимкин В.Г., Мельникова А.А. Гнойные бактериальные менингиты в Российской Федерации: Эпидемиология и вакцинопрофилактика. Здоровье населения и среда обитания. 2022; 30(12):73—80. doi.org/10.35627/2219-5238/2022-30-12-73-80; Nørskov-Lauritsen N. Classification, identification, and clinical significance of haemophilus and aggregatibacter species with host specificity for humans. Clinical Microbiology Reviews. 2014. 27(2):214—240. doi:10.1128/cmr.00103-13; Ситкина Е.Л., Антонова Т.В., Иванова Р.А., Лиознов Д.А. Клинико-лабораторная характеристика гемофильной инфекции типа b с поражением центральной нервной системы у детей младшего возраста. Ученые записки СПбГМУ им. И.П. Павлова. 2022; 29(3):118—124. DOI:10.24884/1607-4181-2022-29-3-118-124; Харченко Г.А., Кимирилова О.Г. Гемофильная инфекция у детей при спорадической заболеваемости: клинические случаи с разным (благоприятным или летальным) исходом. Вопросы современной педиатрии. 2017; 16(3):241—245. doi:10.15690/vsp.v16i3.1735; Салимова Е.Л., Конон А.Д., Трухин В.П., Красильников И.В. Мировые тенденции в изоляции, идентификации и характеристике Haemophilus influenzae тип b—возбудителя гемофильной инфекции. Вестник Воронежского государственного университета. Серия: Химия. Биология. Фармация. 2019; 1:87—95.; Абрамцева М.В., Тарасов А.П., Немировская Т.И., Ковтун В.П., Волков В.А., Мовсесянц А.А. Гемофильная инфекция типа b. заболеваемость и вакцинопрофилактика. БИОпрепараты. Профилактика, диагностика, лечение. 2017; 17(2):78—86.; Баранов А.А., Намазова-Баранова Л.С., Брико Н.И., Горелов А.В., Лобзин Ю.В., Ковтун О.П., Козлов Р.С., [и др.] Вакцинопрофилактика гемофильной инфекции типа b: Клинические рекомендации. Педиатръ. 2020; 1:15—21.; Meyler K., Meehan M., Bennett D., Mulhall R., Harrison O., Gavin P., Drew R.J., Cunney R. Spontaneous capsule loss in Haemophilus influenzae serotype b associated with Hib conjugate vaccine failure and invasive disease. Eur J Clin Microbiol Infect Dis. 2019; 25(3):390—391.; McElligott M., Meyler K., Bennett D., Mulhall R., Drew R. J., Cunney R. Epidemiology of Haemophilus influenzae in the Republic of Ireland, 2010— 2018. European Journal of Clinical Microbiology & Infectious Diseases. 2020; 39(12):2335—2344. doi.org/10.1007/s10096-020-03971-z; Tønnessen R., García I., Debech N., Lindstrøm J.C., Wester A.L., Skaare D. Molecular epidemiology and antibiotic resistance profiles of invasive haemophilus influenzae from Norway 2017—2021. Frontiers in Microbiology. 2022; 13. doi.org/10.3389/fmicb.2022.973257; McNeil J.C., Sommer L.M., Dunn J.J., Hulten K.G., Kaplan S.L., Vallejo J.G. Molecular epidemiology of contemporary invasive haemophilus influenzae isolates in Texas children. Pediatric Infectious Disease Journal. 2021; 40(9): 852—855. doi.org/10.1097/inf.0000000000003188; Zulz T., Huang G., Rudolph K., DeByle C., Tsang R., Desai S., Massey S., Bruce M.G. Epidemiology of invasive haemophilus influenzae serotype a disease in the North American arctic, 2006—2017. International Journal of Circumpolar Health. 2022; 81(1). doi.org/10.1080/22423982.2022.2150382; Efron A., Nápoli D., Neyro S., Juárez M. del Moscoloni M., Eluchans N.S., Regueira M., Lavayén S., Faccone D., Santos M. Laboratory surveillance of invasive haemophilus influenzae disease in Argentina, 2011—2019. Revista Argentina de Microbiología. 2023; 55(2):133—142. doi.org/10.1016/j.ram.2022.08.002; Bajanca-Lavado M.P., Cavaco L., Fernandes M., Touret T., Candeias C., Simões A.S., Sá-Leão R. Haemophilus influenzae carriage among healthy children in Portugal, 2015—2019. Microorganisms. 2022; 10(10):1964. doi.org/10.3390/microorganisms10101964; Hachisu Y., Tamura K., Murakami K., Fujita J., Watanabe H., Tanabe Y., Kuronuma K., Kubota T., Oshima K., Maruyama T., Kasahara K., Nishi J., Abe S., Nakamura M., Kubota M., Hirai S., Ishioka T., Ikenoue C., Fukusumi M., Kanatani J. Invasive haemophilus influenzae disease among adults in Japan during 2014—2018. Infection. 2022; 51(2):355—364. doi.org/10.1007/s15010-022-01885-w; Van Eldere J., Slack M.P., Ladhani S., Cripps A.W. Non-typeable Haemophilus influenzae, an under-recognised pathogen. The Lancet Infectious Diseases. 2014; 14(12):1281—1292. doi.org/10.1016/s1473-3099(14)70734-0; Adam H.J., Richardson S.E., Jamieson F.B., Rawte P., Low D.E., Fisman D.N. Changing epidemiology of invasive haemophilus influenzae in Ontario, Canada: Evidence for herd effects and strain replacement due to Hib Vaccination. Vaccine. 2010; 28(24):4073—4078. doi.org/10.1016/j.vaccine.2010.03.075; Park J.J., Narayanan S., Tiefenbach J., Lukšić I., Ale B.M., Adeloye D., Rudan I. Estimating the global and regional burden of meningitis in children caused by haemophilus influenzae type B: A systematic review and metaanalysis. Journal of Global Health. 2022; 12. doi.org/10.7189/jogh.12.04014; Dabernat H., Delmas C., Seguy M., Pelissier R., Faucon G., Bennamani S., Pasquier C. Diversity of β-lactam resistance-conferring amino acid substitutions in penicillin-binding protein 3 of haemophilus influenzae. Antimicrobial Agents and Chemotherapy. 2002; 46(7):2208—2218. doi.org/10.1128/aac.46.7.2208-2218.2002; Puig C., Tirado-Vélez J.M., Calatayud L., Tubau F., Garmendia J., Ardanuy C., Marti S., de la Campa A.G., Liñares J. Molecular characterization of fluoroquinolone resistance in nontypeable haemophilus influenzae clinical isolates. Antimicrobial Agents and Chemotherapy. 2015; 59(1):461—466. doi.org/10.1128/aac.04005-14; Hirakata Y., Ohmori K., Mikuriya M., Saika T., Matsuzaki K., Hasegawa M., Hatta M., Yamamoto N., Kunishima H., Yano H., Kitagawa M., Arai K., Kawakami K., Kobayashi I., Jones R.N., Kohno S., Yamaguchi K., Kaku M. Antimicrobial activities of Piperacillin-tazobactam against haemophilus influenzae isolates, including β-lactamase-negative ampicillin-resistant and β-lactamase-positive amoxicillin-clavulanate-resistant isolates, and mutations in their quinolone resistance-determining regions. Antimicrobial Agents and Chemotherapy. 2009; 53(10):4225—4230. doi.org/10.1128/aac.00192-09; Zhou M., Fu P., Fang C., Shang S., Hua C., Jing C., Xu H., Chen Y., Deng J., Zhang H., Zhang T., Wang S., Lin A., Huang W., Cao Q., Wang C., Yu H., Cao S., Deng H., Hao J. Antimicrobial resistance of haemophilus influenzae isolates from pediatric hospitals in Mainland China: Report from the ISPED program, 2017—2019. Indian Journal of Medical Microbiology. 2021; 39(4:434—438. doi.org/10.1016/j.ijmmb.2021.09.001; Kiedrowska M., Foryś W.J., Gołębiewska A., Waśko I., Ronkiewicz P., Kuch A., Wróbel-Pawelczyk I., Wroczyński M., Hryniewicz W., Skoczyńska A. Antimicrobial resistance among haemophilus influenzae isolates responsible for lower respiratory tract infections in Poland, 2005—2019. European Journal of Clinical Microbiology & Infectious Diseases. 2022; 41(6): 961—969. doi.org/10.1007/s10096-022-04457-w; Whittaker R., Economopoulou A., Dias J.G., Bancroft E., Ramliden M., Celentano L.P. Epidemiology of invasivehaemophilus influenzaedisease, Europe, 2007—2014. Emerging Infectious Diseases. 2017; 23(3):396— 404. doi.org/10.3201/eid2303.161552; Hu Y.-L., Lee P.-I., Hsueh P.-R., Lu C.-Y., Chang L.-Y., Huang L.-M., Chang T.-H., Chen J.-M. Predominant role of haemophilus influenzae in the association of conjunctivitis, acute otitis media and acute bacterial paranasal sinusitis in children. Scientific Reports. 2021; 11(1). doi.org/10.1038/s41598-020-79680-6; Butler D.F., Myers A.L. Changing epidemiology of haemophilus influenzae in children. Infectious Disease Clinics of North America. 2018; 32(1):119— 128. doi.org/10.1016/j.idc.2017.10.005; Kwok M., Sheikh W., Lima F.V., Russell R. A rare case of haemophilus influenzae serotype f endocarditis complicated by concurrent cardiogenic and septic shock: A case of challenging management. Journal of Cardiovascular Development and Disease. 2022; 9(11):384. doi.org/10.3390/jcdd9110384; Россина А.Л., С.Б. Чуелов, А.А. Корсунский, О.А. Кащенко, М.В. Попова, О.Ю. Брунова, Т.С. Трифонова, Е.С. Тарасова, М.К. Астамиров, С.А. Башарин, А.В. Ступина, И.В. Гируцкая, О.В. Шамшева. Сепсис, вызванный Haemophilus influenza. Детские инфекции. 2018; 17(2):58— 65. doi.org/10.22627/2072-8107-2018-17-2-58-65; Вильниц А.А., Скрипченко Н.В., Вожик А.А., Кузьмин О.В., Иоффе М.Я., Конев А.И., Марченко Н.В., Каленчук А.А. Церебральный инсульт у ребенка с инвазивной формой гемофильной инфекции. Педиатрия. Журнал им. Г. Н. Сперанского. 2019; 98 (1):254—258.; Cevik M., Moncayo-Nieto O.L., Evans M.J. Non-typeable Haemophilus influenzae-associated early pregnancy loss: An emerging neonatal and maternal pathogen. Infection. 2019; 48(2):285—288. doi:10.1007/s15010-019-01359-6; Xiao J., Su L., Huang S., Liu L., Ali K., Chen Z. Epidemic trends and biofilm formation mechanisms of haemophilus influenzae: Insights into clinical implications and prevention strategies. Infection and Drug Resistance. 2023; 16:5359—5373. doi.org/10.2147/idr.s424468; Wilkinson T.M.A., Schembri S., Brightling C., Bakerly N.D., Lewis K., MacNee W., Rombo L., Hedner J., Allen M., Walker P.P., De Ryck I., Tasciotti A., Casula D., Moris P., Testa M., Arora A.K. Non-typeable Haemophilus influenzae protein vaccine in adults with COPD: A phase 2 clinical trial. Vaccine. 2019; 37(41):6102—6111. doi.org/10.1016/j.vaccine.2019.07.100; Andreas S., Testa M., Boyer L., Brusselle G., Janssens W., Kerwin E., Papi A., Pek B., Puente-Maestu L., Saralaya D., Watz H., Wilkinson T.M., Casula D., Di Maro G., Lattanzi M., Moraschini L., Schoonbroodt S., Tasciotti A., Arora A.K. Non-typeable Haemophilus influenzae-Moraxella catarrhalis vaccine for the prevention of exacerbations in chronic obstructive pulmonary disease: A multicentre, randomised, placebo-controlled, observer-blinded, proofof-concept, phase 2B trial. The Lancet Respiratory Medicine. 2022; 10(5):435—446. doi.org/10.1016/s2213-2600(21)00502-6; Ferrés I., Iraola G. MLSTar: Automatic multilocus sequence typing of bacterial genomes in R. PeerJ. 2018; 6. doi.org/10.7717/peerj.5098; Jolley K.A., Bray J.E., Maiden M.C. Open-access bacterial population genomics: Bigsdb software, the pubmlst.org website and their applications. Wellcome Open Research. 2018; 3:124. doi.org/10.12688/wellcomeopenres.14826.1; Pereira R.F., Guarnieri J.P., da Silva C.F., Bernardes B.G., Lancellotti M. Whole-genome analysis of haemophilus influenzae invasive strains isolated from Campinas State University Hospital an epidemiological approach 2012—2019 and ancestor strains. The Brazilian Journal of Infectious Diseases. 2022; 26(1):101667. doi.org/10.1016/j.bjid.2021.101667; https://detinf.elpub.ru/jour/article/view/888

Διαθεσιμότητα: https://detinf.elpub.ru/jour/article/view/888
https://doi.org/10.22627/2072-8107-2023-22-4-48-57

Analysis of bacteriological diagnosis of complicated pneumonia in children and antibiotic resistance in isolated pathogens

Πηγή: Сучасна педіатрія. Україна; № 5(125) (2022): Сучасна педіатрія. Україна; 43-49
Modern Pediatrics. Ukraine; No. 5(125) (2022): Modern pediatrics. Ukraine; 43-49
Modern Pediatrics. Ukraine; № 5(125) (2022): Modern pediatrics. Ukraine; 43-49

Θεματικοί όροι: осложненная пневмония, antibiotic resistance, children, complicated pneumonia, бактериологические исследования, резистентность к антибиотикам, бактеріологічна діагностика, діти, дети, ускладнена пневмонія, резистентність до антибіотиків, bacteriological diagnosis, 3. Good health

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Σύνδεσμος πρόσβασης: http://mpu.med-expert.com.ua/article/view/265908

Prevalence of Different Types of Integrative Conjugative Element SXT/R391 Encoding Multiple Antibiotic Resistance Among Clinical Strains of Cholera Agent ; Распространенность разных типов интегративного конъюгативного элемента SXT/R391, кодирующего множественную резистентость к антибиотикам, среди клинических штаммов возбудителя холеры

Συγγραφείς: D. A. Rybal’chenko, E. Yu. Shchelkanova, Yu. V. Lozovsky, A. V. Fedorov, N. I. Smirnova, Д. А. Рыбальченко, Е. Ю. Щелканова, Ю. В. Лозовский, А. В. Федоров, Н. И. Смирнова

Πηγή: Problems of Particularly Dangerous Infections; № 1 (2022); 137-147 ; Проблемы особо опасных инфекций; № 1 (2022); 137-147 ; 2658-719X ; 0370-1069

Θεματικοί όροι: филогенетические связи, SXT element, antibiotic resistance genes, SNP analysis, phylogenetic relations, SXT-элемент, гены резистентность к антибиотикам, SNP-анализ

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://journal.microbe.ru/jour/article/view/1669/1286; Kaper J.B., Morris J.G., Levine M.M. Cholera. Clin. Microbiol. Rev. 1995; 8(1):48–86. DOI:10.1128/CMR.8.1.48.; Носков А.К., Кругликов В.Д., Москвитина Э.А., Монахова Е.В., Левченко Д.А., Янович Е.Г., Водопьянов А.С., Писанов Р.В., Непомнящая Н.Б., Ежова М.И., Подойницына О.А. Характеристика эпидемиологической ситуации по холере в мире и в Российской Федерации в 2020 г. и прогноз на 2021 г. Проблемы особо опасных инфекций. 2021; 1:43–51. DOI:10.21055/0370-1069-2021-1-43-51.; Mutreja A., Kim D.W., Thomson N.R., Connor T.R., Lee J.H., Kariuki S., Croucher N.J., Choi S.Y., Harris S.R., Lebens M., Niyogi S.K., Kim E.J., Ramamurthy T., Chun J., Wood J.L., Clemens J.D., Czerkinsky C., Nair G.B., Holmgren J., Parkhill J., Dougan G. Evidence for several waves of global transmission in the seventh cholera pandemic. Nature. 2011; 477:462–5. DOI:10.1038/nature10392.; Kitaoka M., Miyata S.T., Unterweger D., Pukatzki S. Antibio­ tic resistance mechanisms of Vibrio cholerae. J. Med. Microbiol. 2011; 60(Pt. 4):397–407. DOI:10.1099/jmm.0.023051-0.; Waldor M.K., Tschäpe H., Mekalanos J.J. A new type of conjugative transposon encodes resistance to sulfamethoxazole, trimethoprim, and streptomycin in Vibrio cholerae O139. J. Bacteriol. 1996; 178(14):4157–65. DOI:10.1128/jb.178.14.4157-4165.1996.; Hochhut B., Waldor M.K. Site-specific integration of the conjugal Vibrio cholerae SXT element into prfC. Mol. Microbiol. 1999; 32(1):99–110. DOI:10.1046/j.1365-2958.1999.01330.x.; Смирнова Н.И., Заднова С.П., Агафонов Д.А., Шашкова А.В., Челдышова Н.Б., Черкасов А.В. Сравнительный молекулярно-генетический анализ мобильных элементов природных штаммов возбудителя холеры. Генетика. 2013; 49(9):1036–47. DOI:10.7868/S0016675813090087.; Pant A., Bag S., Saha B., Verma J., Kumar P., Banerjee S., Kumar B., Kumar Y., Desigamani A., Maiti S., Maiti T.K., Banerjee S.K., Bhadra R.K., Koley H., Dutta S., Nair G.B., Ramamurthy T., Das B. Molecular insights into the genome dynamics and interactions between core and acquired genomes of Vibrio cholerae. Proc. Natl Acad. Sci. USA. 2020; 117(38):23762–73. DOI:10.1073/pnas.2006283117.; Beaber J.W., Hochhut B., Waldor M.K. Genomic and functional analyses of SXT, an integrating antibiotic resistance gene transfer element derived from Vibrio cholerae. J. Bacteriol. 2002; 184(15):4259–69. DOI:10.1128/JB.184.15.4259–4269.2002.; Spagnoletti M., Ceccarelli D., Rieux A., Fondi M., Taviani E., Fani R., Colombo M.M., Colwell R.R., Balloux F. Acquisition and evolution of SXT-R391 integrative conjugative elements in the seventh-pandemic Vibrio cholerae lineage. mBio. 2014; 5(4):e0135614. DOI:10.1128/mBio.01356-14.; Wozniak R.A.F., Fouts D.E., Spagnoletti M., Colombo M.M., Ceccarelli D., Garriss G., Déry C., Burrus V., Waldor M.K. Comparative ICE genomics: insights into the evolution of the SXT/R391 family of ICEs. PLoS Genet. 2009; 5(12):e1000786. DOI:10.1371/journal.pgen.1000786.; Burrus V., Quezada-Calvillo R., Marrero J., Waldor M.K. SXT-related integrating conjugative element in New World Vibrio cholerae. Appl. Environ. Microbiol. 2006; 72(4):3054–7. DOI:10.1128/AEM.72.4.3054-3057.2006.; Wang R., Yu D., Yue J., Kan B. Variations in SXT elements in epidemic Vibrio cholerae O1 El Tor strains in China. Sci. Rep. 2016; 6:22733. DOI:10.1038/srep22733.; Подшивалова М.В., Кузютина Ю.А., Захарова И.Б., Лопастейская Я.А., Викторов Д.В. Характеристика антибиотикорезистентных штаммов Vibrio cholerae, несущих интегративные конъюгативные элементы SXT-типа. Эпидемиология и инфекционные болезни. 2014; 19(3):34–9.; Водопьянов С.О., Водопьянов А.С., Олейников И.П., Титова С.В. Распространенность ICE элементов различных типов у V. cholerae. Здоровье населения и среда обитания. 2018; 1:33–5.; Gladkikh A.S., Feranchuk S.I., Ponomareva A.S., Bochalgin N.O., Mironova L.V. Antibiotic resistance in Vibrio cholerae El Tor strains isolated during cholera complications in Siberia and the Far East of Russia. Infect. Genet. Evol. 2020; 78:104096. DOI:10.1016/j.meegid.2019.104096.; Онищенко Г.Г., Беляев Е.Н., Москвитина Э.А., Резайкин В.И., Ломов Ю.М., Мединский Г.М. Холера в Дагестане: прошлое и настоящее. Ростов н/Д: Полиграф; 1995. 120 с.; Миронова Л.В., Пономарева А.С., Хунхеева Ж.Ю. Гладких А.С., Балахонов С.В. Генетическое разнообразие Vibrio cholerae О1 El Tor при эпидемических осложнениях в Сибирском и Дальневосточном регионах. Молекулярная генетика, микробиология и вирусология. 2019; 37(4):165–72. DOI:10.17116/molgen201937041165.; Москвитина Э.А., Мазрухо А.Б., Адаменко О.Л., Кругликов В.Д. Холера в начале XXI века. Прогноз на глобальном уровне. Проблемы особо опасных инфекций. 2012; 1:11–6. DOI:10.21055/0370-1069-2012-1(111)-11-16.; Sarkar A., Morita D., Ghosh A., Chowdhury G., Mukhopadhyay A.K., Okamoto K., Ramamurthy T. Altered integrative and conjugative elements (ICEs) in recent Vibrio cholerae O1 isolated from cholera cases, Kolkata, India. Front. Microbiol. 2019; 10:2072. DOI:10.3389/fmicb.2019.02072.; Baddam R., Sarker N., Ahmed D., Mazumder R., Abdullah A., Morshed R., Hussain A., Begum S., Shahrin L., Khan A.I., Islam M.S., Ahmed T., Alam M., Clemens J.D., Ahmed N. Genome dynamics of Vibrio cholerae isolates linked to seasonal outbreaks of Cholera in Dhaka, Bangladesh. mBio. 2020; 11(1):e03339-19. DOI:10.1128/mBio.03339-19.; Weill F.X., Domman D., Njamkepo E., Almesbahi A.A., Naji M., Nasher S.S., Rakesh A., Assiri A.M., Sharma N.C., Kariuki S., Pourshafie M.R., Rauzier J., Abubakar A., Carter J.Y., Wamala J.F., Seguin C., Bouchier C., Malliavin T., Bakhshi B., Abulmaali H.H.N., Kumar D., Njoroge S.M., Malik M.R., Kiiru J., Luquero F.J., Azman A.S., Ramamurthy T., Thomson N.R., Quilici M.L. Genomic insights into the 2016–2017 cholera epidemic in Yemen. Nature. 2019; 565:230–233. DOI:10.1038/s41586-018-0818-3.; Weill F.X., Domman D., Njamkepo E., Tarr C., Rauzier J., Fawal N., Keddy K.H., Salje H., Moore S., Mukhopadhyay A.K., Bercion R., Luquero F.J., Ngandjio A., Dosso M., Monakhova E., Garin B., Bouchier C., Pazzani C., Mutreja A., Grunow R., Sidikou F., Bonte L., Breurec S., Damian M., Njanpop-Lafourcade B.M., Sapriel G., Page A.L., Hamze M., Henkens M., Chowdhury G., Mengel M., Koeck J.L., Fournier J.M., Dougan G., Grimont P.A.D., Parkhill J., Holt K.E., Piarroux R., Ramamurthy T., Quilici M.L., Thomson N.R. Genomic history of the seventh pandemic of cholera in Africa. Science. 2017; 358:785–89. DOI:10.1126/science.aad5901.; https://journal.microbe.ru/jour/article/view/1669

Διαθεσιμότητα: https://journal.microbe.ru/jour/article/view/1669
https://doi.org/10.21055/0370-1069-2022-1-137-147

АНТРОПОГЕННЫЕ АСПЕКТЫ РАЗВИТИЯ РЕЗИСТЕНТНОСТИ К АНТИБАКТЕРИАЛЬНЫМ ПРЕПАРАТАМ В ПЕРИОД ПАНДЕМИИ COVID-19

Θεματικοί όροι: adequate antibacterial therapy, antibiotic resistance, метафилактика, эпидемиология, COVID-19, организация здравоохранения, anthropogenic factors, healthcare organization, 3. Good health, metaphylaxis, резистентность к антибиотикам, адекватная антибактериальная терапия, epidemiology, антропогенные факторы

The gut microbiota resistome provides development of drug resistance in causative agents of human infectious diseases

Πηγή: Nauchno-prakticheskii zhurnal «Patogenez». :20-32

Θεματικοί όροι: 0301 basic medicine, 0303 health sciences, resistance potential, резистом, микробиота, 3. Good health, 03 medical and health sciences, resistance to antibiotics, потенциал резистентности, microbiota, антибактериальные препараты, resistome, antibacterial drugs, Ключевые словa: резистентность к антибиотикам

The Susceptibility of Meningococci to the Antimicrobial Agents in Moscow 2006 - 2015

Συγγραφείς: M. A. Koroleva, I. S. Koroleva, I. M. Zakroeva, I. M. Gruber

Πηγή: Эпидемиология и вакцинопрофилактика, Vol 15, Iss 3, Pp 7-14 (2016)

Θεματικοί όροι: meningococcal disease, 0301 basic medicine, 0303 health sciences, 03 medical and health sciences, antibiotic resistance, менингококковая инфекция, менингококк, meningococcus, резистентность к антибиотикам, BD143-237, Epistemology. Theory of knowledge, 3. Good health

Σύνδεσμος πρόσβασης: https://www.epidemvac.ru/jour/article/download/159/160
https://doaj.org/article/9dcb76f1ca334bd2a125c88137101226
https://www.epidemvac.ru/jour/article/download/159/160
https://cyberleninka.ru/article/n/dinamika-chuvstvitelnosti-k-antibakterialnym-preparatam-moskovskih-invazivnyh-shtammov-neisseria-meningitidis-v-2006-2015-godah
https://cyberleninka.ru/article/n/dinamika-chuvstvitelnosti-k-antibakterialnym-preparatam-moskovskih-invazivnyh-shtammov-neisseria-meningitidis-v-2006-2015-godah/pdf
https://www.epidemvac.ru/jour/article/view/159

ANTIBIOTIC RESISTANCE SURVEILLANCE IN A PEDIATRIC CARDIAC SURGERY: ИССЛЕДОВАНИЕ РЕЗИСТЕНТНОСТИ К АНТИБИОТИКАМ В ОТДЕЛЕНИИ ДЕТСКОЙ КАРДИОХИРУРГИИ

Συγγραφείς: Bissenova, N.M., Yergaliyeva, A.S.

Πηγή: Наука и здравоохранение.

Θεματικοί όροι: antibiotic resistance, бактериальные инфекции, микробиологиялық мониторинг, microbiologic monitoring, резистентность к антибиотикам, bacterial infection, бактериялардың тұрақтылығы, микробиологический мониторинг, бактериалдық инфекциялар, 3. Good health

ROLE OF GRAM-NEGATIVE ANAEROBIC COCCI BELONGING TO THE GENUS VEILLONELLA IN INFECTIOUS COMPLICATIONS IN CANCER PATIENTS ; МЕСТО АНАЭРОБНЫХ МИКРООРГАНИЗМОВ РОДА VEILLONELLA В ИНФЕКЦИОННЫХ ОСЛОЖНЕНИЯХ У ОНКОЛОГИЧЕСКИХ БОЛЬНЫХ

Συγγραφείς: I. V. Tereshchenko, Z. V. Grigorievskaya, I. N. Petukhova, I. I. Shilnikova, Е. D. Grigorievsky, О. V. Tereshchenko, V. V. Aginova, N. V. Dmitrieva, И. В. Терещенко, З. В. Григорьевская, И. Н. Петухова, И. И. Шильникова, Е. Д. Григорьевский, О. В. Терещенко, В. В. Агинова, Н. В. Дмитриева

Πηγή: Siberian journal of oncology; Том 17, № 1 (2018); 11-18 ; Сибирский онкологический журнал; Том 17, № 1 (2018); 11-18 ; 2312-3168 ; 1814-4861 ; 10.21294/1814-4861-2018-17-1

Θεματικοί όροι: онкологические больные, anaerobic Infections, MALDI-TOF MS, antimicrobial susceptibility, cancer patients, грамотрицательные кокки, анаэробные инфекции, резистентность к антибиотикам

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://www.siboncoj.ru/jour/article/view/665/502; Finegold S.M., George W.L. Anaerobic infections in humans. Academic Press, New York, 1989.; Давыдов М.И., Дмитриева Н.В. Инфекции в онкологии. М.: Практическая медицина, 2009. 55–86.; Григорьевская З.В. Стратегия лечения нозокомиальных инфекций, вызванных резистентными микроорганизмами, в онкологической клинике [Дис. доктора мед.наук]. [Москва]; 2015. 252.; Fisher R.G., Denison M.R. Veillonella parvula bacteremia without underlying source. J Clin Microbiol. 1996 Dec; 34 (12): 3235–6.; Liu J.W., Wu J.J., Wang L.R., Teng L.J., Huang T.C. Two fatal cases of Veillonella bacteremia. Eur J Clin Microbiol Infect Dis. 1998 Jan; 17 (1): 62–4.; Strach M., Siedlar M., Kowalczyk D., Zembala M., Grodzicki T. Sepsis caused by Veillonella parvula infection in a 17-yearold patient with X-linked agammaglobulinemia (Bruton’s disease). J Clin Microbiol. 2006 Jul; 44 (7): 2655–6.; Boo T.W., Cryan B., O’Donnell A., Fahy G. Prosthetic valve endocarditis caused Veillonella parvula. J Infect. 2005 Jan; 50 (1): 81–3.; Marriott D., Stark D., Harkness J. Veillonella parvula discitis and secondary bacteremia: a rare infection complicating endoscopy and colonoscopy? J Clin Microbiol. 2007 Feb; 45 (2): 672–4.; Bhatti M.A., Frank M.O. Veillonella parvula meningitis: case report and review of Veillonella infections. Clin Infect Dis. 2000 Sep; 31 (3): 839–40.; Shah A., Panjabi C., Nair V., Chaudhry R., Thukral S.S. Veillonella as a cause of chronic anaerobic pneumonitis. Int J Infect Dis. 2008 Nov; 12 (6): e115–7. doi:10.1016/j.ijid.2008.03.018.; Marchandin H., Teyssier C., de Buochberg M.S., Jean-Pierre H., Carriere C., Jumas-Bilak E. Intra-chromosomal heterogeneity between the four 16S rRNA gene copies in the genus Veillonella: implications for phylogeny and taxonomy. Microbiology. 2003, 149: 1493–1501.; Mashima I., Nakazawa F. Identification of Veillonella to be tsuensis in tongue biofilm by using a species-specific primer pair. Anaerobe. 2013 Aug; 22: 77–81. doi:10.1016/j.anaerobe.2013.04.015; Kostrzewa M. MALDI-TOF mass spectrometry in microbiology. Caister Academic Press, 2016. 200.; Justesen U.S., Holm A., Knudsen E., Andersen L.B., Jensen T.G., Kemp M., Skov M.N., Gahrn-Hansen B., Møller J.K. Species identification of clinical isolates of anaerobic bacteria: a comparison of two matrix assisted laser desorption ionization-time of flight mass spectrometry systems. J Clin Microbiol. 2011 Dec; 49 (12): 4314–8. doi:10.1128/JCM.05788-11.; Fournier R., Wallet F., Grandbastien B., Dubreuil L., Courcol R., Neut C., Dessein R. Chemical extraction versus direct smear for MALDITOF mass spectrometryidentification of anaerobic bacteria. Anaerobe. 2012, 18: 294–297. doi:10.1016/j.anaerobe.2012.03.008.; Barreau M., Pagnier I., La Scola B. Improving the identification of anaerobes in the clinical microbiology laboratory through MALDITOF mass spectrometry. Anaerobe. 2013 Aug; 22: 123–5. doi:10.1016/j.anaerobe.2013.04.011.; Fedorko D.P., Drake S.K., Stock F., Murray P.R. Identification of clinical isolates of anaerobic bacteria using matrix-assisted laser desorption ionization-time of flight mass spectrometry. Eur J Clin Microbiol Infect Dis. 2012 Sep; 31 (9): 2257–62. doi:10.1007/s10096-012-1563-4.; Schmitt B.H., Cunningham S.A., Dailey A.L., Gustafson D.R., Patel R. Identification of anaerobic bacteria by Bruker Biotyper matrixassisted laser desorption ionizationtime of flight mass spectrometry with on-plate formic acid preparation. J Clin Microbiol. 2013 Mar; 51 (3): 782–6. doi:10.1128/JCM.02420-12.; Veloo A.C., Elgersma P.E., Friedrich A.W., Nagy E., van Winkelhoff A.J. The influence of incubation time, sample preparation and exposure to oxygen on the quality of theMALDI-TOF MS spectrum of anaerobic bacteria. Clin Microbiol Infect. 2014 Dec; 20 (12): O1091–7. doi:10.1111/1469-0691.12644.; Определитель бактерий Берджи. В 2 т. М.: Мир, 1997. Т. 1. 432.; Brook I. Veillonella infections in children. J Clin Microbiol. 1996 May; 34 (5): 1283–5.; Reig M., Mir N., Baquero F. Penicillin resistancein Veillonella. Antimicrob Agents Chemother. 1997 May; 41 (5): 1210.; Nyfors S., Könönen E., Bryk A., Syrjänen R., Jousimies-Somer H. Age-related frequency of penicillin resistance of oral Veillonella. Diagn Microbiol Infect Dis. 2003 Aug; 46 (4): 279–83.; Ready D., Bedi R., Mullany P., Wilson M. Penicillin and amoxicillin resistance in oral Veillonella spp. Int J Antimicrob Agents. 2012 Aug; 40 (2): 188–9. doi:10.1016/j.ijantimicag.2012.04.007.; https://www.siboncoj.ru/jour/article/view/665

Διαθεσιμότητα: https://www.siboncoj.ru/jour/article/view/665
https://doi.org/10.21294/1814-4861-2018-17-1-11-18

INFLUENCE OF POLYMYXIN B ON THE FORMATION OF BIOFILMS BY BACTERIUM Methylophilus quaylei ON POLYPROPYLENE AND TEFLON ; ВЛИЯНИЕ ПОЛИМИКСИНА В НА ФОРМИРОВАНИЕ БИОПЛЕНКИ БАКТЕРИЕЙ Methylophilus quaylei НА ПОЛИПРОПИЛЕНЕ И ТЕФЛОНЕ

Συγγραφείς: A. M. Mohamed, D. N. Amzaeva, A. B. Pshenichnikova, V. I. Shvets, А. М. Мохамед, Д. Н. Амзаева, А. Б. Пшеничникова, В. И. Швец

Πηγή: Fine Chemical Technologies; Vol 13, No 2 (2018); 31-39 ; Тонкие химические технологии; Vol 13, No 2 (2018); 31-39 ; 2686-7575 ; 2410-6593 ; 10.32362/2410-6593-2018-13-2

Θεματικοί όροι: метилотрофные бактерии, polymyxin, resistance to antibiotics, methylotrophic bacteria, полимиксин, резистентность к антибиотикам

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://www.finechem-mirea.ru/jour/article/view/139/140; Costerton J.W. Overview of microbial biofilms // J. Ind. Microbiol. 1995. V. 15. P. 137-140.; Flemming H.C., Wingender J., Szewzyk U., Steinberg P., Rice S.A., Kjelleberg S. Biofilms: An emergent form of bacterial life // Nat. Rev. Microbiol. 2016. V. 14. № 9. P. 563-575.; Flemming H.C., Wingender J. The biofilm matrix // Nat. Rev. Microbiol. 2010. V. 8. Р. 623-633.; Zhurina M.V., Gannesen A.V., Zdorovenko E.L., Plakunov V.K. Composition and functions of the extracellular polymer matrix of bacterial biofilms // Microbiology. 2014. V. 83. № 6. P. 713-722.; Jiao Y., Cody G.D., Harding A.K., Wilmes P., Schrenk M., Wheeler K.E., Banfield J.F., Thelen M.P. Characterization of extracellular polymeric substances from acidophilic microbial biofilms // Appl. Environ. Microbiol. 2010. V. 76. № 9. P. 2916-2922.; Stewart P.S., Costerton J.W. Antibiotic resistance of bacteria in biofilms // Lancet. 2001. V. 358. P. 135-138.; Плакунов В.К., Мартьянов С.В., Тетенева Н.А., Журина М.В. Управление формированием микробных биопленок: анти- и пробиопленочные агенты // Микробиология. 2017. Т. 86. № 4. С. 402-420.; Costerton J.W., Stewart P.S., Greenberg E.P. Bacterial biofilms: A common cause of persistent infections // Science. 1999. V. 284. Issue 5418. P. 1318-1322.; Rabin N., Zheng Y., Opoku-Temeng C., Du Y., Bonsu E., Sintim H.O. Agents that inhibit bacterial biofilm formation // Future Med. Chem. 2015. V. 7. № 5. P. 647-671.; Petrova O.E., Sauer K. Escaping the biofilm in more than one way: Desorption, detachment or dispersion // Curr. Opin. Microbiol. 2016. V. 30. Р. 67-78.; Estrela A.B., Abraham W.R. Combining biofilmcompounds and controlling antibiotics as a promising new way to control biofilm infections // Pharmaceuticals. 2010. V. 3. Р. 1374-1393.; Koo H., Allan R.N., Howlin R.P., Stoodley P., Stoodley L.H. Targeting microbial biofilms: Current and prospective therapeutic strategies // Nature Rev. Microbiol. 2017. V. 15. № 12. P. 740-755.; Стрелкова Е.А., Журина М.В., Плакунов В.К., Беляев С.С. Стимуляция антибиотиками процесса формирования бактериальных биопленок // Микробиология. 2012. Т. 81. № 2. С. 282-285.; Wu S., Li X., Gunawardana M., Maguire K., Guerrero-Given D., Schaudinn C., Wang C., Baum M.M., Webster P. Beta-lactam antibiotics stimulate biofilm formation in non-typeable haemophilus influenzae by up-regulating carbohydrate metabolism // PLoS ONE. 2014. V. 9. Iss. 7. e99204.; Kaplan J.B. Antibiotic-induced biofilm formation // Int. J. Artif. Organs. 2011. V. 34. № 9. P.737-751.; Velkov T., Thompson P. E., Nation R. L., Li J. Structure-activity relationships of polymyxin antibiotics // J. Med. Chem. 2010. V. 53. № 5. P. 1898-1916.; Rabanal F., Cajal Y. Recent advances and perspectives in the design and development of polymyxins // Nat. Prod. Rep. 2017. V. 6. № 7. P. 886-908.; Velkov T., Roberts K.D., Nation R.L., Thompson P.E., Li J. Pharmacology of polymyxins: New insights into an ‘old’ class of antibiotics // Future Microbiol. 2013. V. 8. № 6. Р. 711-724.; Kaye K.S., Pogue J.M., Tran T.B., Nation R.L., Li J. Agents of last resort: Polymyxin resistance // Infect. Dis. Clin. North. Am. 2016. V. 30. № 2. P. 391-414.; Srinivas P., Rivard K. Polymyxin resistance in Gram-negative pathogens // Curr. Infect. Dis. Rep. 2017. V. 19. № 11. P. 38.; Jeannot K., Bolard A., Plesiat P. Resistance to polymyxins in Gram-negative organisms // Int. J. Antimicrob. Agents. 2017. V. 49. № 5. P. 526-535.; Brown P., Dawson M.J. Development of new polymyxin derivatives for multi-drug resistant Gramnegative infections // J. Antibiot. (Tokyo). 2017. V. 70. № 4. P. 386-394.; Pye C.C., Yu A.A., Weese J.S. Evaluation of biofilm production by Pseudomonas aeruginosa from canine ears and the impact of on antimicrobial susceptibility in vitro // Vet. Dermatol. 2013. V. 24. № 4. P. 446-449. e98-9.; Doronina N., Ivanova E., Trotsenko Y., Pshenichnikova A., Kalinina E., Shvets V. Methylophilus quaylei sp. nov., a new aerobic obligately methylotrophic bacterium // System. Appl. Microbiol. 2005. V. 28. P. 303-309.; Пшеничникова А.Б., Гаврилова Е.С., Швец В.И. Влияние физико-химических свойств клеточной поверхности грамотрицательных бактерий на резистентность к стрептомицину // Вестник МИТХТ. 2011. Т. 6. № 2. С. 43-50.; Отман С.А.М., Пшеничникова А.Б., Швец В.И. Влияние экзогенных жирных кислот на рост и продукцию экзополисахарида облигатной метилотрофной бактерии Methylophilus quaylei // Прикл. биохимия и микробиология. 2012. Т. 48. № 2. С. 226-231.; ОФС.1.7.2.0008.15. Определение концентрации микробных клеток. Государственная фармакопея Российской Федерации. XIII издание. Т.II. Москва, 2015. OFS.1.7.2.0008.15.; Rosenberg M., Gutniek D., Rosenberg E. Adherence of bacteria to hydrocarbons: a simple method for measuring cell surface hydrophobicity // FEMS Microbiol. Lett. 1980. V. 9. P. 29-33.; Anesti V., McDonald I.R., Ramaswamy M., Wade W.G., Kelly D.P., Wood A.P. Isolation and molecular detection of methylotrophic bacteria occurring in the human mouth // Environmen. Microbiol. 2005. V. 7. № 8. P. 1227-1238.; Gogleva A.A., Kaparullina E.N., Doronina N.V., Trotsenko Y.A. Methylophilus flavus sp. nov., and Methylophilus luteus sp. nov., aerobic, methylotrophic bacteria associated with plants // Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2010. V. 60. P. 2623-2628.; Cerca N., Pier G. B., Vilanova M., Oliveira R., Azeredo J. Quantitative analysis of adhesion and biofilm formation on hydrophilic and hydrophobic surfaces of clinical isolates of Staphylococcus epidermidis // Res. Microbiology. 2005. V. 156. № 4. P. 506-514.; Oliveira R., Azeredo J., Fonseca A.P. The role of hydrophobicity in bacterial adhesion // Hydrophobicity and Adhesion. 2001. P. 11-22.; Maitz M.F. Applications of synthetic polymers in clinical medicine // Biosurface and Biotribology. 2015. V. 1. Р. 161-176.; Lenhard J.R., Nation R.L., Tsuji B.T. Synergistic combinations of polymyxins // Int. J. Antimicrob. Agents. 2016. V. 48. № 6. Р. 607-613.

Διαθεσιμότητα: https://www.finechem-mirea.ru/jour/article/view/139
https://doi.org/10.32362/2410-6593-2018-13-2-31-39

Eradication of Helicobacter Pylori

Συγγραφείς: V. V. Tsukanov, E. V. Kasparov, A. V. Vasyutin, Y. L. Tonkikh

Πηγή: Медицинский совет, Vol 0, Iss 13, Pp 26-29 (2015)

Θεματικοί όροι: эрадикация, helicobacter pylori, резистентность к антибиотикам, ингибиторы протонной помпы, Medicine

Περιγραφή αρχείου: electronic resource

Relation: https://www.med-sovet.pro/jour/article/view/331; https://doaj.org/toc/2079-701X; https://doaj.org/toc/2658-5790

Σύνδεσμος πρόσβασης: https://doaj.org/article/0f9d740187814b7fae8299c0f8854926

Monitoring of resistance of bacterial microflora to antibacterial drugs in children with acute respiratory infections

Συγγραφείς: Melnyk, Kh.V., Mateyko, G.B.

Πηγή: Aktualʹnaâ Infektologiâ, Vol 6, Iss 5, Pp 230-233 (2018)
ACTUAL INFECTOLOGY; Том 6, № 5 (2018); 230-233
Актуальная инфектология-Aktualʹnaâ Infektologiâ; Том 6, № 5 (2018); 230-233
Актуальна інфектологія-Aktualʹnaâ Infektologiâ; Том 6, № 5 (2018); 230-233

Θεματικοί όροι: acute respiratory infections, острые респираторные заболевания, бактериальная микрофлора, дети, ротоглотка, резистентность к антибиотикам, bacterial microflora, гострі респіраторні захворювання, бактеріальна мікрофлора, діти, резистентність до антибіотиків, children, resistance to antibiotics, oropharynx, Infectious and parasitic diseases, RC109-216, 3. Good health

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Σύνδεσμος πρόσβασης: https://doaj.org/article/eaf5fd918d7f4954aa59db7a39ba90d4
http://ai.zaslavsky.com.ua/article/view/146771

НОВЫЕ ПОДХОДЫ К АНТИБИОТИКОТЕРАПИИ С ПРИМЕНЕНИЕМ НОВЫХ КЛАССОВ АНТИБАКТЕРИАЛЬНЫХ ПРЕПАРАТОВ

Θεματικοί όροι: new classes of antibiotics, механизмы борьбы с антибиотикорезистентностью, antibiotic resistance, резистентность к антибиотикам, mechanisms for combating antibiotic resistance, новые классы антибиотиков, 3. Good health

BACTERIAL AND FUNGAL PATHOGENS IN THE TRANSPLANTATION AND DIALYSIS CENTER. ANALYSIS FOR EIGHTEEN YEARS (1998–2015) ; ВОЗБУДИТЕЛИ БАКТЕРИАЛЬНОЙ И ГРИБКОВОЙ ИНФЕКЦИЙ В ЦЕНТРЕ ТРАНСПЛАНТОЛОГИИ И ДИАЛИЗА. АНАЛИЗ ДИНАМИКИ ЗА ВОСЕМНАДЦАТЬ ЛЕТ (1998–2015)

Συγγραφείς: A. V. Vatazin, A. B. Zulkarnaev, E. V. Rusanova, N. E. Budnikova, А. В. Ватазин, А. Б. Зулькарнаев, Е. В. Русанова, Н. Е. Будникова

Πηγή: Russian Journal of Transplantology and Artificial Organs; Том 18, № 2 (2016); 56-64 ; Вестник трансплантологии и искусственных органов; Том 18, № 2 (2016); 56-64 ; 1995-1191 ; 10.15825/1995-1191-2016-2

Θεματικοί όροι: кандида, bacteria, infection, antibiotic resistance, bacterial fl ora, Candida, бактерии, инфекция, резистентность к антибиотикам, бактериальная флора

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://journal.transpl.ru/vtio/article/view/639/540; Shakya R, Amatya R, Karki BM, Mandal PK, Shrestha KK. Spectrum of bacterial pathogens and their antibiogram from cases of urinary tract infection among renal disorder patients. Nepal Med Coll J. 2014; 16 (1): 75–79.; Wu YJ, Veale JL, Gritsch HA. Urological complications of renal transplant in patients with prolonged anuria. Transplantation. 2008; 86 (9): 1196–1198. doi:10.1097/ TP.0b013e318187bd37.; Hauser AB, Stinghen AE, Gonçalves SM, Bucharles S, Pecoits-Filho R. A gut feeling on endotoxemia: causes and consequences in chronic kidney disease. Nephron Clin Pract. 2011; 118 (2): c165–172. doi:10.1159/000321438.; Sackett DD, Singh P, Lallas CD. Urological involvement in renal transplantation. Int J Urol. 2011; 18 (3): 185– 193. doi:10.1111/j.1442-2042.2010.02707.x.; Tinelli M, Cataldo MA., Mantengoli E, Cadeddu C, Cunietti E, Luzzaro F et al. Epidemiology and genetic characteristics of extended-spectrum β-lactamase-producing Gram-negative bacteria causing urinary tract infections in long-term care facilities. J Antimicrob Chemother. 2012; 67 (12): 2982–2987. doi:10.1093/jac/dks300.; Bikbov BT, Tomilina NA. Renal replacement therapy for ESRD patients in Russian Federation, 1998–2011 Report of Russian RRT Registry. Part 1. Nefrologiya i dializ. 2014; 16 (1): 11–127 [In Russ].; Bikbov BT, Tomilina NA. Renal replacement therapy for ESRD patients in Russian Federation, 1998–2011 Report of Russian RRT Registry. Part 2. Nefrologiya i dializ. 2014; 16 (2): 192–227 [In Russ].; Prokopenko EI, Vatazin AV, Shcherbakova EO. Infektsionnye oslozhneniya posle transplantatsii pochki. M.: IPO «U Nikitskikh vorot», 2010: 296 [In Russ].; Flores-Mireles AL, Walker JN, Caparon M, Hultgren SJ. Urinary tract infections: epidemiology, mechanisms of infection and treatment options. Nat Rev Microbiol. 2015; 13 (5): 269–284. doi:10.1038/nrmicro3432.; Vélez Echeverri C, Serna-Higuita LM, Serrano AK, Ochoa-García C, Rojas Rosas L, María Bedoya A et al. Resistance profile for pathogens causing urinary tract infection in a pediatric population, and antibiotic treatment response at a university hospital, 2010–2011. Colomb Med (Cali). 2014; 45 (1): 39–44.; Vatazin AV, Rusanova EV, Zul’karnaev AB, Palienko AV, Krstich M. Bacterial infections in recipients of renal allograft. Vestnik transplantologii i iskusstvennykh organov. 2012; 14 (3): 54–59 [In Russ].; Koningstein M, van der Bij AK, de Kraker ME, Monen JC, Muilwijk J, de Greeff SC et al. Recommendations for the empirical treatment of complicated urinary tract infections using surveillance data on antimicrobial resistance in the Netherlands. PLoS One. 2014; 9 (1): e86634. doi:10.1371/journal.pone.0086634.; Zilberberg MD, Shorr AF. Secular trends in gramnegative resistance among urinary tract infection hospitalizations in the United States, 2000–2009. Infect Control Hosp Epidemiol. 2013; 34 (9): 940–946. doi:10.1086/671740.; Cantón R, Loza E, Aznar J, Calvo J, Cercenado E, Cisterna R. Antimicrobial susceptibility of Gram-negative organisms from intraabdominal infections and evolution of isolates with extended spectrum β-lactamases in the SMART study in Spain (2002–2010). Rev EspQuimioter. 2011; 24 (4): 223–232.; https://journal.transpl.ru/vtio/article/view/639

Διαθεσιμότητα: https://journal.transpl.ru/vtio/article/view/639
https://doi.org/10.15825/1995-1191-2016-2-56-64

PROPHYLACTIC AND THERAPEUTIC EFFICACY OF THE POLYVALENT PYOBACTERIOPHAGE IN THE TREATMENT OF ACUTE DESTRUCTIVE PANCREATITIS ; ПРОФИЛАКТИЧЕСКАЯ И ЛЕЧЕБНАЯ ЭФФЕКТИВНОСТЬ ПОЛИВАЛЕНТНОГО ПИОБАКТЕРИОФАГА В КОМПЛЕКСНОЙ ТЕРАПИИ ОСТРОГО ДЕСТРУКТИВНОГО ПАНКРЕАТИТА

Συγγραφείς: V. P. Nikulina, Z. M. Ozova, M. A. Godkov, В. П. Никулина, З. М. Озова, М. А. Годков

Πηγή: Russian Sklifosovsky Journal "Emergency Medical Care"; № 3 (2016); 35-41 ; Журнал им. Н.В. Склифосовского «Неотложная медицинская помощь»; № 3 (2016); 35-41 ; 2541-8017 ; 2223-9022 ; undefined

Θεματικοί όροι: бактериофаги, pancreatic necrosis, resistance to antibiotics, bacteriophages, панкреонекроз, резистентность к антибиотикам

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://www.jnmp.ru/jour/article/view/293/358; Агапов К.В. Диагностика и лечение панкреонекроза. Экономическое обоснование рациональной хирургической тактики: автореф. дис. … д-ра мед. наук. – М., 2012. – 54 с.; Савельев В.С.Филимонов М.И., Гельфанд Б.Р. и др. Острый панкреатит как проблема ургентной хирургии и интенсивной терапии // Consilium Medicum. – 2000. – № 9. – С. 367–373.; Johnson C.D., Imrie C.W. Pancreatic Diseases. Protocols and Clinical Research. – London: Springer, 2010. – 136 p.; Beger H.G., Bittner R., Block S., Buchler M. Bacterial contamination of pancreatic necrosis. A prospective clinical study // Castroenterology. – 1986. – Vol. 91, N. 2. – P. 433–438.; Боровкова Н.В., Ермолов А.С., Хватов В.Б. Характеристика индуктивной фазы иммунного ответа у пациентов с тяжелым острым панкреатитом // Иммунология. – 2009. – № 4. – С. 209–212.; Rau B., Uhl W., Buchler R., Beger H.G. Surgical treatment of infected necrosis // World J. Surg. – 1997. – Vol. 21, N. 2. – P. 155–161.; Захаров Ю.А. Сравнительная оценка чувствительности микроорганизмов, выделенных у больных с гнойно-септическими инфекциями, к антибиотикам и бактериофагам: Актуальные вопросы вакцино — сывороточного дела в ХХI веке: материалы Всерос. конф. – Пермь, 2003. – С. 251–254.; Козлова Ю.Н. Строение печени, селезенки и лимфатических узлов при введении специфического бактериофага для коррекции пневмонии, вызванной Pseudomonos aeruginosa: дис. … канд. биол. наук. – Новосибирск, 2014. – 185 с.; Бактериофаги. Биология и практическое применение: пер. с англ. / под ред. Э. Каттер, А. Сулаквелидзе. – М.: Научный Мир, 2012. – 640 с.; Красильников И.В., Лобастова А.К., Лыско К.А. Некоторые аспекты современного состояния и перспективных направлений развития производства и применения лечебно-профилактических препаратов бактериофагов // Биопрепараты. Диагностика. Лечение. Профилактика. – 2010. – № 2. – С. 10–13.; Inal J.M. Phage Therapy: a Reappraisal of Bacteriophages as Antibiotics // Arch. Immunol. Ther. Exp. (Warsz.) – 2003. – Vol. 51, N. 4. – P. 237–244.; Субботин А.В., Функер Е.В., Урман М.Г. и др. Применение Секстафага в комплексной антибактериальной терапии инфицированного панкреонекроза: материалы междунар. науч.-практ. конф. – Пермь, 2006. – С. 191–197.; https://www.jnmp.ru/jour/article/view/293; undefined

Διαθεσιμότητα: https://www.jnmp.ru/jour/article/view/293