-
1Academic Journal
Authors: T. L. Nekhaeva, A. B. Danilova, E. I. Fedoros, N. A. Efremova, N. V. Emelyanova, M. L. Blokhina, M. N. Yurova, M. L. Tyndyk, I. A. Baldueva, Т. Л. Нехаева, А. Б. Данилова, Е. И. Федорос, Н. А. Ефремова, Н. В. Емельянова, М. Л. Блохина, М. Н. Юрова, М. Л. Тындык, И. А. Балдуева
Contributors: This study was supported fnancially by the Russian Science Foundation within the scientifc project № 22- 25-00723 (Agreement № 22-25-00723 of 29.12.2021), Работа выполнена при финансовой поддержке РНФ в рамках научного проекта № 22-25-00723 (Соглашение №22-25-00723 от 29.12.2021)
Source: Siberian journal of oncology; Том 22, № 1 (2023); 82-94 ; Сибирский онкологический журнал; Том 22, № 1 (2023); 82-94 ; 2312-3168 ; 1814-4861
Subject Terms: xCELLigence, quality parameters, cancer testicular antigens, dendritic cells, antigen-specific T-lymphocytes, laboratory model, параметры качества, раково-тестикулярные антигены, дендритные клетки, антиген-специфические Т-лимфоциты, лабораторная модель
File Description: application/pdf
Relation: https://www.siboncoj.ru/jour/article/view/2434/1079; Мельникова Е.В., Меркулова О.В., Чапленко А.А., Меркулов В.А. Дизайн доклинических исследований биомедицинских клеточных продуктов: особенности, ключевые принципы и требования. БИОпрепараты. Профилактика, диагностика, лечение. 2017; 17(3): 133–44.; Тихомирова А.В., Горячев Д.В., Меркулов В.А., Лысикова И.В., Губенко А.И., Зебрев А.И., Соловьева А.П., Ромодановский Д.П., Мельникова Д.В. Доклинические и клинические аспекты разработки биомедицинских клеточных продуктов. Ведомости Научного центра экспертизы средств медицинского применения. 2018; 8(1): 23–35. doi:10.30895/1991-29192018-8-1-23-35.; Seyhan A.A. Lost in translation: the valley of death across preclinical and clinical divide – identification of problems and overcoming obstacles. Transl Med Comm. 2019; 4(1). doi:10.1186/s41231-019-0050-7.; Avdonkina N.A., Danilova A.B., Misyurin V.A., Prosekina E.A., Girdyuk D.V., Emelyanova N.V., Nekhaeva T.L., Gafton G.I., Baldueva I.A. Biological features of tissue and bone sarcomas investigated using an in vitro model of clonal selection. Pathology Res Pract. 2021 Jan; 217: 153214. doi:10.1016/j.prp.2020.153214.; de Wolf C., van de Bovenkamp M., Hoefnagel M. Regulatory perspective on in vitro potency assays for human dendritic cells used in anti-tumor immunotherapy. Cytotherapy. 2018; 20(11): 1289–308. doi:10.1016/j.jcyt.2018.07.006.; Buchholz M., Knauer J., Lehmann J., Hass M., Gargosky S. Qualification of the COSTIM assay to determine potency and use in clinical trials. Cytotherapy. 2013; 15(4). doi:10.1016/j.jcyt.2013.01.197.; Lamano J.B., Ampie L., Choy W., Kesavabhotla K., DiDomenico J.D., Oyon D.E., Parsa A.T., Bloch O. Immunomonitoring in glioma immunotherapy: current status and future perspectives. J Neurooncol. 2016; 127(1): 1–13. doi:10.1007/s11060-015-2018-4.; Park Y.S., Shin C., Hwang H.S., Zenke M., Han D.W., Kang Y.S., Ko K., Do Y., Ko K. In vitro generation of functional dendritic cells differentiated from CD34 negative cells isolated from human umbilical cord blood. Cell Biol Int. 2015; 39(9): 1080–6. doi:10.1002/cbin.10490.; Нехаева Т.Л. Оптимизация аутологичных дендритно-клеточных вакцин для лечения больных злокачественными новообразованиями. Сибирский онкологический журнал. 2013; 3: 52–6.; Балдуева И.А., Данилова А.Б., Нехаева Т.Л., Авдонкина Н.А., Емельянова Н.В., Беляев А.М. Клеточный продукт для нагрузки и активации дендритных клеток человека. Патент РФ № 2714208. Опубл. 13.02.2020.; Freshney R.I. Culture of Animal Cells: A Manual of Basic Technique and Specialized Applications. John Wiley and Sons, 2015. 736 p.; Chiu C.H., Lei K.F., Yeh W.L., Chen P., Chan Y.S., Hsu K.Y., Chen A.C. Comparison between xCELLigence biosensor technology and conventional cell culture system for real-time monitoring human tenocytes proliferation and drugs cytotoxicity screening. J Orthop Surg Res. 2017; 12(1): 149. doi:10.1186/s13018-017-0652-6.; Lewis D.M., Park K.M., Tang V., Xu Y., Pak K., Eisinger-Mathason T.S., Simon M.C., Gerecht S. Intratumoral oxygen gradients mediate sarcoma cell invasion. Proc Natl Acad Sci USA. 2016; 113(33): 9292–7. doi:10.1073/pnas.1605317113.; Нехаева Т.Л., Емельянова Н.В., Осипчук А.В., Блохина М.Л., Семёнов А.Л., Скачкова О.В., Данилова А.Б., Новик А.В., Авдонкина Н.А., Просекина Е.А., Пипиа Н.П., Зозуля А.Ю., Водолажский Д.И., Балдуева И.А. Адаптация метода оценки Т-клеточной пролиферации при изучении специфического противоопухолевого иммунного ответа на дендритно-клеточную вакцину на основе раково-тестикулярных антигенов in vitro. Материалы VI Петербургского международного онкологического форума «Белые ночи 2020». СПб., Вопросы онкологии. С. 143.; Нехаева Т.Л., Карпов А.Е., Пипиа Н.П. Поиск иммунотерапевтических мишеней в онкологии при формировании иммунологического синапса. Вопросы онкологии. 2021; 67(3): 344–9. doi:10.37469/0507-3758-2021-673-344-349.; Cunningham S., Hackstein H. Recent Advances in Good Manufacturing Practice-Grade Generation of Dendritic Cells. Transfus Med Hemother. 2020; 47(6): 454–63. doi:10.1159/000512451.; Tai Y., Wang Q., Korner H., Zhang L., Wei W. Molecular Mechanisms of T Cells Activation by Dendritic Cells in Autoimmune Diseases. Front Pharmacol. 2018; 9: 642. doi:10.3389/fphar.2018.00642.; Binnewies M., Mujal A.M., Pollack J.L., Combes A.J., Hardison E.A., Barry K.C., Tsui J., Ruhland M.K., Kersten K., Abushawish M.A., Spasic M., Giurintano J.P., Chan V., Daud A.I., Ha P., Ye C.J., Roberts E.W., Krummel M.F. Unleashing Type-2 Dendritic Cells to Drive Protective Antitumor CD4+ T Cell Immunity. Cell. 2019; 177(3): 556–71. doi:10.1016/j.cell.2019.02.005.; Passeri L., Marta F., Bassi V., Gregori S. Tolerogenic Dendritic Cell-Based Approaches in Autoimmunity. Int J Mol Sci. 2021; 22(16): 8415. doi:10.3390/ijms22168415.; Данилова А.Б., Нехаева Т.Л., Ефремова Н.А., Новик А.В., Зозуля А.Ю., Гафтон Г.И., Балдуева И.А. Оценка эффективности использования тумороидов для индивидуального подбора лекарственной терапии солидных опухолей. Вопросы онкологии. 2021; 67(6): 815–28. doi:10.37469/0507-3758-2021-67-6-815-828.; Danilova A.B., Efremova N.A., Murashkina A.A., NekhaevaT.L., Maydin M.A., Artemyeva E.S., Artemyeva A.S., Baldueva I.A. Evolution of the Solid Human Tumor Cells Properties in Various Experimental Systems in Vitro. J Hematol Oncol Res. 2022; 4(2): 9–29. doi:10.14302/issn.2372-6601.jhor-22-4061.; Pham P.V., Le H.T., Vu B.T., Pham V.Q., Le P.M., Phan N.L., Trinh N.V., Nguyen H.T., Nguyen S.T., Nguyen T.L., Phan N.K. Targeting breast cancer stem cells by dendritic cell vaccination in humanized mice with breast tumor: preliminary results. Onco Targets Ther. 2016; 9: 4441–51. doi:10.2147/OTT.S105239.; Ya G., Ren W., Qin R., He J., Zhao S. Role of myeloid-derived suppressor cells in the formation of pre-metastatic niche. Front Oncol. 2022; 12. doi:10.3389/fonc.2022.975261.; Riegel K., Yurugi H., Schlöder J., Jonuleit H., Kaulich M., Kirschner F., Arnold-Schild D., Tenzer S., Schild H., Rajalingam K. ERK5 modulates IL-6 secretion and contributes to tumor-induced immune suppression. Cell Death Dis. 2021; 12(11): 969. doi:10.1038/s41419-021-04257-8.; Binnewies M., Roberts E.W., Kersten K., Chan V., Fearon D.F., Merad M., Coussens L.M., Gabrilovich D.I., Ostrand-Rosenberg S., Hedrick C.C., Vonderheide R.H., Pittet M.J., Jain R.K., Zou W., Howcroft T.K., Woodhouse E.C., Weinberg R.A., Krummel M.F. Understanding the tumor immune microenvironment (TIME) for effective therapy. Nat Med. 2018; 24(5): 541–50. doi:10.1038/s41591-018-0014-x.; Lippitz B.E., Harris R.A. Cytokine patterns in cancer patients: A review of the correlation between interleukin 6 and prognosis. Oncoimmunology. 2016; 5(5). doi:10.1080/2162402X.2015.1093722.; Schupp J., Krebs F.K., Zimmer N., Trzeciak E., Schuppan D., Tuettenberg A. Targeting myeloid cells in the tumor sustaining microenvironment. Cell Immunol. 2019; 343. doi:10.1016/j.cellimm.2017.10.013.; Stephen B., Hajjar J. Overview of Basic Immunology for Clinical Investigators. Adv Exp Med Biol. 2017; 995: 1–31. doi:10.1007/978-3319-53156-4_1.; Belli C., Trapani D., Viale G., D’Amico P., Duso B.A., Della Vigna P., Orsi F., Curigliano G. Targeting the microenvironment in solid tumors. Cancer Treat Rev. 2018; 65: 22–32. doi:10.1016/j.ctrv.2018.02.004.; Stakheyeva M., Patysheva M., Kaigorodova E., Zavyalova M., Tarabanovskaya N., Choynzonov E., Cherdyntseva N. Tumor Properties Mediate the Relationship between Peripheral Blood Monocytes and Tumor-Associated Macrophages in Breast Cancer. Cancer Invest. 2022; 40(5): 442–56. doi:10.1080/07357907.2021.2016803.; Данилова А.Б., Новик А.В., Нехаева Т.Л., Балдуева И.А. Роль факторов иммуносупрессии в прогнозе эффективности клеточной иммунотерапии у пациентов с солидными опухолями. Эффективная фармакотерапия. 2022; 18(17): 8–17. doi:10.33978/2307-3586-2022-18-17-8-17.; Fridman W.H., Zitvogel L., Sautès-Fridman C., Kroemer G. The immune contexture in cancer prognosis and treatment. Nat Rev Clin Oncol. 2017; 14(12): 717–34. doi:10.1038/nrclinonc.2017.101.; Cassioli C., Baldari C.T. The Expanding Arsenal of Cytotoxic T Cells. Front Immunol. 2022; 13. doi:10.3389/fimmu.2022.883010.; Voskoboinik I., Whisstock J.C., Trapani J.A. Perforin and granzymes: function, dysfunction and human pathology. Nat Rev Immunol. 2015; 15(6): 388–400. doi:10.1038/nri3839.; https://www.siboncoj.ru/jour/article/view/2434
-
2Academic Journal
Authors: D. S. Kutilin, O. I. Kit, Д. С. Кутилин, О. И. Кит
Source: Siberian journal of oncology; Том 21, № 1 (2022); 37-46 ; Сибирский онкологический журнал; Том 21, № 1 (2022); 37-46 ; 2312-3168 ; 1814-4861 ; 10.21294/1814-4861-2022-21-1
Subject Terms: выживаемость, cancer-testis antigens, expression, metastases, survival, раково-тестикулярные антигены, экспрессия, метастазы
File Description: application/pdf
Relation: https://www.siboncoj.ru/jour/article/view/2026/949; Кутилин Д.С., Кошелева Н.Г., Гусарева М.А., Харагезов Д.А., Донцов В.А., Полуэктов С.И., Зема Т.В., Лиман Н.А., Шляхова О.В., Удаленкова И.А. Влияние транскрипционной активности генов, регулирующих репарацию ДНК, на эффективность лучевой терапии опухолей прямой кишки. Современные проблемы науки и образования. 2019; 6: 142.; Солдатова К.И., Колесников Е.Н., Габричидзе П.Н. Особенности транскрипционной активности раково-тестикулярных антигенов у больных метастатическим и неметастатическим колоректальным раком. Современные проблемы науки и образования. 2018; 5: 108.; Кит О.И., Солдатова К.И., Кутилин Д.С., Водолажский Д.И. Раково-тестикулярные антигены в диагностике опухолей толстой кишки. Современные проблемы науки и образования. 2018; 2: 10.; Chi Soh J.E., Abu N., Jamal R. The potential immune-eliciting cancer testis antigens in colorectal cancer. Immunotherapy. 2018 Sep; 10(12): 1093–1104. doi:10.2217/imt-2018-0044.; Голышко П.В., Новиков Д.В., Ананьев С.В., Барышников К.А., Новиков В.В. Раково-тестикулярные гены в крови и опухоли больных колоректальным раком. Российский биотерапевтический журнал. 2015; 14(1): 19–24.; Sammut J., Wakeman J.A., Stuart N., McFarlane R.J. Cancer/ Testis Antigens and Colorectal Cancer. J Genet Syndr Gene Ther. 2013; 4: 149.; Кутилин Д.С., Никитин И.С., Кит О.И. Особенности экспрессии генов некоторых транскрипционных факторов при малигнизации тканей тела матки. Успехи молекулярной онкологии. 2019; 6(1): 57–62.; Водолажский Д.И., Кутилин Д.С., Солдатова К.И. Изучение стабильности экспрессии референсных генетических локусов при малигнизации тканей толстой кишки. Сборник материалов 5-й итоговой научной сессии молодых учёных РостГМУ. 2018: 33–34.; Водолажский Д.И., Кутилин Д.С., Могушкова Х.А., Кит О.И. Транскрипционный профиль раково-тестикулярных антигенов у больных раком молочной железы. Медицинская иммунология. 2018; 20(3): 38390.; Кутилин Д.С., Димитриади С.Н., Водолажский Д.И., Франциянц Е.М., Кит О.И. Влияние тепловой ишемии-реперфузии на экспрессию апоптоз-регулирующих генов в почечной ткани больных с почечно-клеточным раком. Нефрология. 2017; 21(1): 80–6.; Shantha Kumara H.M., Grieco M.J., Caballero O.L., Su T., Ahmed A., Ritter E., Gnjatic S., Cekic V., Old L.J., Simpson A.J., Cordon- Cardo C., Whelan R.L. MAGE-A3 is highly expressed in a subset of colorectal cancer patients. Cancer Immun. 2012; 12: 16.; Li M., Yuan Y.H., Han Y., Liu Y.X., Yan L., Wang Y., Gu J. Expression profile of cancer-testis genes in 121 human colorectal cancer tissue and adjacent normal tissue. Clin Cancer Res. 2005 Mar 1; 11(5): 1809–14. doi:10.1158/1078-0432.CCR-04-1365.; Wei X., Chen F., Xin K., Wang Q., Yu L., Liu B., Liu Q. Cancer- Testis Antigen Peptide Vaccine for Cancer Immunotherapy: Progress and Prospects. Transl Oncol. 2019 May; 12(5): 733–8. doi:10.1016/j.tranon.2019.02.008.; Salmaninejad A., Zamani M.R., Pourvahedi M., Golchehre Z., Hosseini Bereshneh A., Rezaei N. Cancer/Testis Antigens: Expression, Regulation, Tumor Invasion, and Use in Immunotherapy of Cancers. Immunol Invest. 2016 Oct; 45(7): 619–40. doi:10.1080/08820139.2016.1197241.; https://www.siboncoj.ru/jour/article/view/2026
-
3Academic Journal
Authors: T. L. Nekhaeva, A. B. Danilova, I. A. Baldueva, Т. Л. Нехаева, А. Б. Данилова, И. А. Балдуева
Source: Siberian journal of oncology; Том 17, № 4 (2018); 14-23 ; Сибирский онкологический журнал; Том 17, № 4 (2018); 14-23 ; 2312-3168 ; 1814-4861 ; 10.21294/1814-4861-2018-17-4
Subject Terms: Cell-IQ, migration, immunosuppressive factors, cancer testis antigens, миграция, иммуносупрессивные факторы, раково-тестикулярные антигены
File Description: application/pdf
Relation: https://www.siboncoj.ru/jour/article/view/810/548; Hargadon K.M., Bishop J.D., Brandt J.P., Hand Z.C., Ararso Y.T., Forrest O.A. Melanoma-derived factors alter the maturation and activation of differentiated tissue- resident dendritic cells. Immunol Cell Biol. 2016 Jan; 94(1): 24–38. doi:10.1038/icb.2015.58.; Saenz R., Souza Cda S., Huang C.T., Larsson M., Esener S., Messmer D. HMGB1- derived peptide acts as adjuvant inducing immune responses to peptide and protein antigen. Vaccine. 2010 Nov 3; 28(47): 7556–62. doi:10.1016/j.vaccine.2010.08.054.; Shurin M.R., Shurin G.V., Lokshin A., Yurkovetsky Z.R., Gutkin D.W., Chatta G., Zhong H., Han B., Ferris R.L. Intratumoral cytokines/chemokines/ growth factors and tumor infiltrating dendritic cells: friends or enemies? Cancer Metastasis Rev. 2006 Sep; 25(3): 333–56. doi:10.1007/s10555-006-9010-6.; Ma Y., Shurin G.V., Peiyuan Z., Shurin M.R. Dendritic cells in the cancer microenvironment. J Cancer. 2013; 4(1): 36–44. doi:10.7150/jca.5046.; Manicassamy S., Pulendran B. Dendritic cell control of tolerogenic responses. Immunol Rev. 2011 May; 241(1): 206–27. doi:10.1111/j.1600-065X.2011.01015.x.; Shurin G.V., Ma Y., Shurin M.R. Immunosuppressive mechanisms of regulatory dendritic cells in cancer. Cancer Microenviron. 2013 Aug; 6(2): 159–67. doi:10.1007/s12307-013-0133-3.; Hu Z. Q., Xue H., Long J. H., Wang Y., Jia Y., Qiu W., Zeng Z. Biophysical properties and motility of human mature dendritic cells deteriorated by vascular endothelial growth factor through cytoskeleton remodelling. Int J Mol Sci. 2016 Nov; 17(11): 1756. doi:10.3390/ijms17111756.; Zong J., Keskinov A.A., Shurin G.V., Shurin M.R. Tumor-derived factors modulating dendritic cell function. Cancer Immunol Immunother. 2016 Jul; 65(7): 821–33. doi:10.1007/s00262-016-1820-y.; Shurin M.R., Naiditch H., Zhong H., Shurin G.V. Regulatory dendritic cells: new targets for cancer immunotherapy. Cancer Biol Ther 2011; 11(11): 988–992.; Tang M., Diao J., Cattral M.S. Molecular mechanisms involved in dendritic cell dysfunction in cancer. Cell Mol Life Sci. 2017 Mar; 74(5): 761–776. doi:10.1007/s00018-016-2317-8.; Xu X., Liu X., Long J., Hu Z., Zheng Q., Zhang C., Li L., Wang Y., Jia Y., Qiu W., Zhou J., Yao W., Zeng Z. Interleukin-10 reorganizes the cytoskeleton of mature dendritic cells leading to their impaired biophysical properties and motilities. PLoS One. 2017 Feb 24; 12(2): e0172523. doi:10.1371/journal.pone.0172523.; Nehaeva T.L. Autologous Dendritic Cell Vaccine Optimization for Therapy of Patients with Disseminated Malignant Ne. Siberian journal of oncology. 2013; 3: 52–56.; Freshney R.I. Culture of animal cells: A manual of basic technique. N.-Y.-Chichester: Wiley&Sons, 2000. 553.; Lang Т.А., Cesic M. How to describe statistics in medicine. American College of Physicians. 2006. 490.; Verglia F., Gabrilovich D. Dendritic cells in cancer: the role revisited. Curr Opin Immunol. 2017 Apr; 45: 43‑51. doi:10.1016/j.coi.2017.01.002.; Harimoto H., Shimizu M., Nakagawa Y., Nakatsuka K., Wakabayashi A., Sakamoto C., Takahashi H. Inactivation of tumor-specific CD8(+) CTLs by tumor-infiltrating tolerogenic dendritic cells. Immunol Cell Biol. 2013 Oct; 91(9): 545‑55. doi:10.1038/icb.2013.38.; Watkins SK, Zhu Z, Riboldi E et al. FOXO3 programs tumorassociated DCs to become tolerogenic in human and murine prostate cancer. Clin Hemorheol Microcirc. 2010; 46(4): 265–73. doi:10.3233/CH-2010-1334.; Krempski J., Karyampudi L., Behrens M.D., Erskine C.L., Hartmann L., Dong H., Goode E.L., Kalli K.R., Knutson K.L. Tumor-infiltrating programmed death receptor-1+ dendritic cells mediate immune suppression in ovarian cancer. J Immunol. 2011 Jun 15; 186(12): 6905–13. doi:10.4049/jimmunol.1100274.; Nguyen V.A., Ebner S., Fürhapter C., Romani N., Kölle D., Fritsch P., Sepp N. Adhesion of dendritic cells derived from CD34+ progenitors to resting human dermal microvascular endothelial cells is down-regulated upon maturation and partially depends on CD11a-CD18, CD11b-CD18 and CD36. Eur J Immunol. 2002 Dec; 32(12): 3638–50. doi:10.1002/1521-4141(200212)32:123.0.CO;2-C.; van Helden S.F., Krooshoop D.J., Broers K.C., Raymakers R.A., Figdor C.G., van Leeuwen F.N. A critical role for prostaglandin E2 in podosome dissolution and induction of high-speed migration during dendritic cell maturation. J Immunol 2006; 177(3): 1567–1574.; Michielsen A.J., Hogan A.E., Marry J., Tosetto M., Cox F., Hyland J.M., Sheahan K.D., O’Donoghue D.P., Mulcahy H.E., Ryan E.J., O’Sullivan J.N. Tumour tissue microenvironment can inhibit dendritic cell maturation in colorectal cancer. PLoS One. 2011; 6(11): e27944. doi:10.1371/journal.pone.0027944.; Wang X., Chen D., Zhang X., Jia B., Xie L., Sun D., Ka W., Yao W., Wen Z.Y. Biorheological changes of dendritic cells at the different differentiation stages. Clin Hemorheol Microcirc. 2010; 46(4): 265–273.; Zeng Z., Liu X., Jiang Y., Wang G., Zhan J., Guo J., Yao W., Sun D., Ka W., Tang Y., Tang J., Wen Z., Chien S. Biophysical studies on the differentiation of human CD14+ monocytes into dendritic cells. Cell Biochem Biophys 2006; 45(1): 19–30. doi:10.1385/CBB:45:1:19.; Spary L.K., Salimu J., Webber J.P., Clayton A., Mason M.D., Tabi Z. Tumor stroma- derived factors skew monocyte to dendritic cell differentiation toward a suppressive CD14+ PD-L1+ phenotype in prostate cancer. Oncoimmunology. 2014 Dec 13; 3(9): e955331. doi:10.4161/21624011.2014.955331.; Heuzé M.L., Vargas P., Chabaud M., Le Berre M., Liu Y.J., Collin O., Solanes P., Voituriez R., Piel M., Lennon-Duménil A.M. Migration of dendritic cells: physical principles, molecular mechanisms, and functional implications. Immunol Rev. 2013 Nov; 256(1): 240–54. doi:10.1111/imr.12108.; Xie H., Pallero M.A., Gupta K., Chang P., Ware M.F., Witke W., Kwiatkowski D.J., Lauffenburger D.A., Murphy-Ullrich J.E., Wells A. EGF receptor regulation of cell motility: EGF induces disassembly of focal adhesions independently of the motility- associated PLCg signaling pathway. J Cell Science 1998; 111: 615–624.; Hübel J., Hieronymus T. HGF/Met-signaling contributes to immune regulation by modulating tolerogenic and motogenic properties of dendritic cells. Biomedicines. 2015 Mar 3; 3(1): 138–148. doi:10.3390/biomedicines3010138.; Baek J.H., Birchmeier C., Zenke M., Hieronymus T. The HGF receptor/Met tyrosine kinase is a key regulator of dendritic cell migration in skin immunity. J Immunol. 2012 Aug 15; 189(4): 1699–707. doi:10.4049/jimmunol.1200729.; Prendergast G.C., Jaffee E.M. Cancer immunotherapy. Immune suppression and tumor growth. San Diego: Academic Press Elsevier. 2013. 635.; De Vries I.J., Krooshoop D.J., Scharenborg N.M., Lesterhuis W.J., Diepstra J.H., Van Muijen G.N., Strijk S.P., Ruers T.J., Boerman O.C., Oyen W.J., Adema G.J., Punt C.J., Figdor C.G. Effective migration of antigen-pulsed dendritic cells to lymph nodes in melanoma patients is determined by their maturation state. Cancer Res 2003; 63(1): 12–17.; https://www.siboncoj.ru/jour/article/view/810
-
4Academic Journal
Authors: D. I. Vodolazhskiy, D. S. Kutilin, Kh. A. Mogushkova, O. I. Kit, Д. И. Водолажский, Д. С. Кутилин, Х. А. Могушкова, О. И. Кит
Source: Medical Immunology (Russia); Том 20, № 3 (2018); 383-390 ; Медицинская иммунология; Том 20, № 3 (2018); 383-390 ; 2313-741X ; 1563-0625 ; 10.15789/1563-0625-2018-3
Subject Terms: иммунотерапия, real-time qPCR, cancer-testicular antigens (CTA), breast cancer, immunotherapy, раково-тестикулярные антигены, рак молочной железы
File Description: application/pdf
Relation: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/1542/1039; Водолажский Д.И., Кутилин Д.С., Могушкова Х.А., Ващенко Л.Н., Никитина В.П., Кит О.И. Транскрипционная активность раково-тестикулярных антигенов у больных раком молочной железы люминальных подтипов А и В // Современные проблемы науки и образования, 2017. № 4.; Каприн А.Д., Старинский В.В., Петрова Г.В. Состояние онкологической помощи населению России в 2013 году. М.: ФГБУ «МНИОИ им. П.А. Герцена» Минздравсоцразвития России, 2014. 236 с.; Кутилин Д.С., Димитриади С.Н., Водолажский Д.И., Франциянц Е.М., Кит О.И. Влияние тепловой ишемииреперфузии на экспрессию апоптоз-регулирующих генов в почечной ткани больных с почечно-клеточным раком // Нефрология, 2017. № 21 (1). C. 80-86.; Пак Д.Д., Усов Ф.Н., Фетисова Е.Ю., Волченко А.А., Ефанов В.В. Современные подходы к лечению больных с карциномой in situ молочной железы // Онкология, 2013. № 4. С. 34-39.; Пржедецкий Ю.В., Водолажский Д.И., Шатова Ю.С., Комова Е.А., Двадненко К.В. ВRCA-мутации у больных с клиническими признаками наследственного рака молочной железы в Южном федеральном округе // Злокачественные опухоли, 2015. Т. 16, № 4-2. С.196-197.; Стенина М.Б., Фролова М.А. Рак молочной железы: наиболее важные научные события и выводы последних лет // Практическая онкология, 2011. № 12 (1). С. 6-11.; Ahmad A. Pathways to breast cancer recurrence. ISRN Oncol., 2013, pp. 1-16.; Aoki M., Ueda S., Nishikawa H., Kitano S., Hirayama M., Ikeda H., Toyoda H., Tanaka K., Kanai M., Takabayashi A., Imai H., Shiraishi T., Sato E., Wada H., Nakayama E., Takei Y., Katayama N., Shiku H., Kageyama S. Antibody responses against NY-ESO-1 and HER2 antigens in patients vaccinated with combinations of cholesteryl pullulan (CHP)-NY-ESO-1 and CHPHER2 with OK-432. Vaccine, 2009, no. 49, pp. 6854-6861.; Bandic D., Juretic A., Sarcevic B., Separovic V., Kujundzic-Tiljak M., Hudolin T., Spagnoli G.C., Covic D., Samija M. Expression and possible prognostic role of MAGE-A4, NY-ESO-1, and HER-2 antigens in women with relapsing invasive ductal breast cancer: retrospective immunohistochemical study. Croat. Med. J., 2006, no. 1, pp. 32-41.; Chomczynski P, Sacchi N.The single-step method of RNA isolation by acid guanidinium thiocyanate-phenol-chloroform extraction: twenty-something years on. Nature Protocols, 2006, no. 2, pp. 581-585.; Curigliano G., Locatelli M., Fumagalli L., Goldhirsch A. Immunizing against breast cancer: a new swing for an old sword. Breast, 2009, no. 18, pp. 951-954.; Grigoriadis A., Caballero O.L., Hoek K.S., da Silva L., Chen Y.T., Shin S.J., Jungbluth A.A., Miller L.D., Clouston D., Cebon J., Old L.J., Lakhani S.R., Simpson A.J., Neville A.M. CT-X antigen expression in human breast cancer. Proc. Nat. Acad. Sci. USA, 2009, no. 32, pp. 13493-113498.; Hamai A., Duperrier-Amouriaux K., Pignon P., Raimbaud I., Memeo L., Colarossi C., Canzonieri V., Perin T., Classe J.M., Campone M., Jezequel P., Campion L., Ayyoub M., Valmori D. Antibody responses to NY-ESO-1 in primary breast cancer identify a subtype target for immunotherapy. PLoS ONE, 2011, no. 6, e21129. doi:10.1371/journal.pone.0021129.; Kavalar R., Sarcevic B., Spagnoli G.C., Separovic V., Samija M., Terracciano L., Heberer M., Juretic A. Expression of MAGE tumour-associated antigens is inversely correlated with tumour differentiation in invasive ductal breast cancers: an immunohistochemical study. Virchows Arch., 2001, Vol. 439, no. 2, pp. 127-131.; Kruger S., Ola V., Feller A.C., Fischer D., Friedrich M. Expression of cancer-testis antigen CT7 (MAGE-C1) in breast cancer: an immunohistochemical study with emphasis on prognostic utility. Pathol. Oncol. Res., 2007, no. 2, pp. 91-96.; Matkovic B., Juretic A., Spagnoli G.C., Separovic V., Gamulin M., Separovic R., Saric N., Basic-Koretic M., Novosel I., Kruslin B. Expression of MAGE-A and NY-ESO-1 cancer/testis antigens in medullary breast cancer: retrospective immunohistochemical study. Croat. Med. J., 2011, no. 2, pp. 171-177.; Schmittgen T.D., Livak K.J. Analyzing real-time PCR data by the comparative CT method. Nature Protocols, 2008, no. 3, pp. 1101-1108.; Sugita Y., Wada H., Fujita S., Nakata T., Sato S., Noguchi Y., Jungbluth A.A., Yamaguchi M., Chen Y.T., Stockert E., Gnjatic S., Williamson B., Scanlan M.J., Ono T., Sakita I., Yasui M., Miyoshi Y., Tamaki Y., Matsuura N., Noguchi S., Old L.J., Nakayama E., Monden M. NY-ESO-1 expression and immunogenicity in malignant and benign breast tumors. Cancer Research, 2004, no. 6, pp. 2199-2204.; Theurillat J.P., Ingold F., Frei C., Zippelius A., Varga Z., Seifert B., Chen Y.T., Jager D., Knuth A., Moch H. NY-ESO-1 protein expression in primary breast carcinoma and metastases: correlation with CD8+ T-cell and CD79a+ plasmacytic/B-cell infiltration. Int. J. Cancer, 2007, no. 11, pp. 2411-2417.; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/1542
-
5Academic Journal
Authors: Михайлова, И., Ковалевский, Д., Бурова, О., Голубева, В., Морозова, Л., Воронина, Е., Утяшев, И., Аллахвердян, Г., Субраманиан, С., Кондратьева, Т., Черемушкин, Е., Киселев, С., Демидов, Л., Барышников, А., Бибилашвили, Р.
Subject Terms: РАКОВО-ТЕСТИКУЛЯРНЫЕ АНТИГЕНЫ, ДИФФЕРЕНЦИРОВКА КЛЕТОК, МЕЛАНОМА
File Description: text/html
-
6Academic Journal
Authors: Михайлова, Ирина, Ковалевский, Дмитрий, Вишневская, Яна, Утяшев, Игорь, Голубева, Валентина, Черемушкин, Евгений, Субраманиан, Сомасундарам, Кондратьева, Татьяна, Киселев, Сергей, Демидов, Лев, Барышников, Анатолий, Бибилашвили, Роберт
Subject Terms: раково-тестикулярные антигены, митотический индекс, ВЫЖИВАЕМОСТЬ, прогноз заболевания, МЕЛАНОМА, Cancer/testis antigen genes
File Description: text/html
-
7Academic Journal
Source: Вестник РОНЦ им. Н. Н. Блохина РАМН.
Subject Terms: 03 medical and health sciences, 0302 clinical medicine, 3. Good health, раково-тестикулярные антигены, митотический индекс, ВЫЖИВАЕМОСТЬ, прогноз заболевания, МЕЛАНОМА, Cancer/testis antigen genes
File Description: text/html
-
8Academic Journal
Source: Сибирский онкологический журнал.
File Description: text/html
-
9Academic Journal
Authors: Сальникова С.В., Славянская Т.А., Сепиашвили Р.И.
Source: Аллергология и иммунология
Subject Terms: уротелиальная карцинома, раково-тестикулярные антигены, противоопухолевые вакцины, кариотип, культуры клеточных линий
Availability: https://repository.rudn.ru/records/article/record/144708/
