-
1Academic Journal
Source: Высшая школа: научные исследования.
Subject Terms: поражение легких, иерсиниоз, псевдотуберкулез, дети, взрослые. клинические и эксперементальные исследования
-
2Academic Journal
Authors: M. G. Meloyan, A. S. Vodop’yanov, E. A. Voskresenskaya, R. V. Pisanov, M. V. Chesnokova, V. T. Klimov, G. I. Kokorina, E. A. Bogumil’chik, N. P. Peretolchina, A. L. Trukhachev, М. Г. Мелоян, А. С. Водопьянов, Е. А. Воскресенская, Р. В. Писанов, М. В. Чеснокова, В. Т. Климов, Г. И. Кокорина, Е. А. Богумильчик, Н. П. Перетолчина, А. Л. Трухачев
Source: Problems of Particularly Dangerous Infections; № 4 (2024); 107-114 ; Проблемы особо опасных инфекций; № 4 (2024); 107-114 ; 2658-719X ; 0370-1069
Subject Terms: MLST, pseudotuberculosis, genotyping, псевдотуберкулез, генотипирование
File Description: application/pdf
Relation: https://journal.microbe.ru/jour/article/view/2085/1531; О состоянии санитарно-эпидемиологического благополучия населения в Российской Федерации в 2022 году: Государственный доклад. М.: Федеральная служба по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека; 2023. 256 с.; Duan R., Liang J., Shi G., Cui Z., Hai R., Wang P., Xiao Y., Li K., Qiu H., Gu W., Du X., Jing H., Wang X. Homology analysis of pathogenic Yersinia species Yersinia enterocolitica, Yersinia pseudo-tuberculosis, and Yersinia pestis based on multilocus sequence typing. J. Clin. Microbiol. 2014; 52(1):20–9. DOI:10.1128/JCM.02185-13.; Laukkanen-Ninios R., Didelot X., Jolley K.A., Morelli G., Sangal V., Kristo P., Brehony C., Imori P.F., Fukushima H., Siitonen A., Tseneva G., Voskressenskaya E., Falcao J.P., Korkeala H., Maiden M.C., Mazzoni C., Carniel E., Skurnik M., Achtman M. Population structure of the Yersinia pseudotuberculosis complex according to multilocus sequence typing. Environ. Microbiol. 2011; 13(12):3114–27. DOI:10.1111/j.1462-2920.2011.02588.x.; Трухачев А.Л., Мелоян М.Г., Воскресенская Е.А., Водопьянов А.С., Водопьянов С.О., Подладчикова О.Н., Писанов Р.В., Чеснокова М.В., Рыкова В.А., Кузнецова Д.А., Климов В.Т., Кокорина Г.И., Богумильчик Е.А. INDEL-типирование штаммов Yersinia pseudotuberculosis. Проблемы особо опасных инфекций. 2022; 4:102–9. DOI:10.21055/0370-1069-2022-4-102-109.; Водопьянов А.С., Трухачев А.Л., Подладчикова О.Н., Писанов Р.В. ContigSearcher – программа для анализа результатов полногеномного секвенирования, определения наличия последовательностей различных генов в контигах, полученных при секвенировании, выявления INDEL-мутаций. Свидетельство о государственной регистрации программы для ЭВМ № 2018611348 от 01.02.2018.; Bogdanovich T., Carniel E., Fukushima H., Skurnik M. Use of O-antigen gene cluster-specific PCRs for the identification and O-genotyping of Yersinia pseudotuberculosis and Yersinia pestis. J. Clin. Microbiol. 2003; 41(11):5103–12. DOI:10.1128/JCM.41.11.5103-5112.2003.; Platonov M.E., Blouin Y., Evseeva V.V., Afanas’ev M.V., Pourcel C., Balakhonov S.V., Vergnaud G., Anisimov A.P. Draft genome sequences of five Yersinia pseudotuberculosis ST19 isolates and one isolate variant. Genome Announc. 2013; 1(2):e00122-13. DOI:10.1128/genomeA.00122-13.; Blouin Y., Platonov M.E., Pourcel C., Evseeva V.V., Afanas’ev M.V., Balakhonov S.V., Anisimov A.P., Vergnaud G. Draft genome sequences of two Yersinia pseudotuberculosis ST43 (O:1b) strains, B-7194 and B-7195. Genome Announc. 2013; 1(4):e00510-13. DOI:10.1128/genomeA.00510-13.; Тимченко Н.Ф., Ермолаева С.А., Адгамов Р.Р., Кузнецова Н.А., Шубин Ф.Н. Возбудитель дальневосточной скарлатиноподобной лихорадки – клон Yersinia pseudotuberculosis. Национальные приоритеты России. 2011; 2:176.; Сомова Л.М., Тимченко Н.Ф., Ляпун И.Н., Дробот Е.И. Основные итоги изучения дальневосточной скарлатиноподобной лихорадки как особого клинико-эпидемического проявления псевдотуберкулеза (Обзор комплексных исследований). Здоровье населения и среда обитания – ЗНиСО. 2021; 5:39–45. DOI:10.35627/2219-5238/2021-338-5-39-45.; Timchenko N.F., Adgamov R.R., Popov A.F., Psareva E.K., Sobyanin K.A., Gintsburg A.L., Ermolaeva S.A. Far East scarlet-like fever caused by a few related genotypes of Yersinia pseudotuberculosis, Russia. Emerg. Infect. Dis. 2016; 22(3):503–6. DOI:10.3201/eid2203.150552.; Трухачёв А.Л., Иванова В.С., Арсеньева Т.Е., Лебедева С.А., Гончаренко Е.В. Поиск праймеров на основе хромосомной ДНК Yersinia pestis для эффективной ПЦР-идентификации типичных и атипичных штаммов возбудителя чумы. Клиническая лабораторная диагностика. 2008; 12:49–52.; Chen G., Lyu Y., Wang D., Zhu L. Cao S., Pan C., Feng E., Zhang W., Liu X., Cui Y., Wang H. Obtaining specific sequence tags for Yersinia pestis and visually detecting them was using the CRISPR-Cas12a system. Pathogens. 2021; 10(5):562. DOI:10.3390/pathogens10050562.; https://journal.microbe.ru/jour/article/view/2085
-
3Academic Journal
Authors: A. L. Trukhachev, M. G. Meloyan, E. A. Voskresenskaya, A. S. Vodop’yanov, S. O. Vodop’yanov, O. N. Podladchikova, R. V. Pisanov, M. V. Chesnokova, V. A. Rykova, D. A. Kuznetsova, V. T. Klimov, G. I. Kokorina, E. A. Bogumil’chik, А. Л. Трухачев, М. Г. Мелоян, Е. А. Воскресенская, А. С. Водопьянов, С. О. Водопьянов, О. Н. Подладчикова, Р. В. Писанов, М. В. Чеснокова, В. А. Рыкова, Д. А. Кузнецова, В. Т. Климов, Г. И. Кокорина, Е. А. Богумильчик
Source: Problems of Particularly Dangerous Infections; № 4 (2022); 102-109 ; Проблемы особо опасных инфекций; № 4 (2022); 102-109 ; 2658-719X ; 0370-1069
Subject Terms: INDEL-маркеры, Y. pseudotuberculosis, pseudotuberculosis, INDEL-markers, псевдотуберкулез
File Description: application/pdf
Relation: https://journal.microbe.ru/jour/article/view/1768/1353; European Food Safety Authority, European Centre for Disease Prevention and Control. The European Union summary report on trends and sources of zoonoses, zoonotic agents and foodborne outbreaks in 2015. EFSA J. 2016; 14(12):4634. DOI:10.2903/j.efsa.2016.4634.; О состоянии санитарно-эпидемиологического благополучия населения в Российской Федерации в 2020 году: Государственный доклад. М.: Федеральная служба по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека; 2021. 256 с.; Воскресенская Е.А., Бургасова О.А. Методы генетического типирования Yersinia pseudotuberculosis. Инфекционные болезни. 2011; 9(2):81–8.; Каримова Т.В., Климов В.Т., Чеснокова М.В. Молекулярно-биологическая характеристика Yersinia pseudotuberculosis и Yersinia enterocolitica, выделенных в Сибири и на Дальнем Востоке. Бюллетень Восточно-Сибирского научного центра Сибирского отделения Российской академии медицинских наук. 2016; 1(3-1):60–4.; Voskressenskaya E., Leclercq A., Tseneva G., Carniel E. Evaluation of ribotyping as a tool for molecular typing of Yersinia pseudotuberculosis strains of worldwide origin. J. Clin. Microbiol. 2005; 43(12):6155–60. DOI:10.1128/JCM.43.12.6155-6160.2005.; Torrea G., Chenal-Francisque V., Leclercq A., Carniel E. Efficient tracing of global isolates of Yersinia pestis by restriction fragment length polymorphism analysis using three insertion sequences as probes. J. Clin. Microbiol. 2006; 44(6):2084–92. DOI:10.1128/JCM.02618-05.; Voskresenskaya E., Savin C., Leclercq A., Tseneva G., Carniel E. Typing and clustering of Yersinia pseudotuberculosis isolates by restriction fragment length polymorphism analysis using insertion sequences. J. Clin. Microbiol. 2014; 52(6):1978–89. DOI:10.1128/JCM.00397-14.; Halkilahti J., Haukka K., Siitonen A. Genotyping of outbreak-associated and sporadic Yersinia pseudotuberculosis strains by novel multilocus variable-number tandem repeat analysis (MLVA). J. Microbiol. Methods. 2013; 95(2):245–50. DOI:10.1016/j.mimet.2013.09.007.; Евсеева В.В., Платонов М.Е., Дентовская С.В., Анисимов А.П. Типирование Yersinia pseudotuberculosis с помощью мультилокусного анализа вариабельного числа тандемных повторов. Проблемы особо опасных инфекций. 2015; 4:55–7. DOI:10.21055/0370-1069-2015-4-55-57.; Zhgenti E., Hu P., Chanturia G., Tsereteli D., Kekelidze M., Chubinidze S., Zangaladze E., Imnadze P., Andersen G., Torok T. Investigation of Yersinia pestis and Yersinia pseudotuberculosis strains from Georgia and neighboring countries in the Caucasus by high-density SNP microarray. Arch. Microbiol. 2018; 200(9):1345–55. DOI:10.1007/s00203-018-1545-8.; Джапарова А.К., Ерошенко Г.А., Никифоров К.А., Куклева Л.М., Альхова Ж.В., Бердиев С.К., Кутырев В.В. Характеристика и филогенетический анализ штаммов Yersinia pseudotuberculosis из Сарыджазского высокогорного очага в Тянь-Шане. Проблемы особо опасных инфекций. 2021; 2:87–93. DOI:10.21055/0370-1069-2021-2-87-93.; Seecharran T., Kalin-Manttari L., Koskela K., Nikkari S., Dickins B., Corander J., Skurnik M., McNally A. Phylogeographic separation and formation of sexually discrete lineages in a global population of Yersinia pseudotuberculosis. Microb. Genom. 2017; 3(10):e000133. DOI:10.1099/mgen.0.000133.; Перетолчина Н.П., Климов В.Т., Воскресенская Е.А., Кокорина Г.И., Богумильчик Е.А., Трухачев А.Л., Игумнова С.В., Джиоев Ю.П., Злобин В.И. Локусный состав CRISPR-CAS системы Yersinia pseudotuberculosis различных генетических вариантов. Эпидемиология и вакцинопрофилактика. 2020; 19(2):31–9. DOI:10.31631/2073-3046-2020-19-2-31-39.; Hall M., Chattaway M.A., Reuter S., Savin C., Strauch E., Carniel E., Connor T., Van Damme I., Rajakaruna L., Rajendram D., Jenkins C., Thomson N.R., McNally A. Use of whole-genus genome sequence data to develop a multilocus sequence typing tool that accurately identifies Yersinia isolates to the species and subspecies levels. J. Clin. Microbiol. 2015; 53(1):35–42. DOI:10.1128/JCM.02395-14.; Duan R., Liang J., Shi G., Cui Z., Hai R., Wang P., Xiao Y., Li K., Qiu H., Gu W., Du X., Jing H., Wang X. Homology analysis of pathogenic Yersinia species Yersinia enterocolitica, Yersinia pseudotuberculosis, and Yersinia pestis based on multilocus sequence typing. J. Clin. Microbiol. 2014; 52(1):20–9. DOI:10.1128/JCM.02185-13.; https://journal.microbe.ru/jour/article/view/1768
-
4Academic Journal
Authors: A. N. Sorokin, M. V. Solovyov, K. P. Raevsky, E. A. Voskresenskaya, G. L. Kokorina, E. A. Bogumilchik, А. Н. Сорокин, М. В. Соловьев, К. П. Раевский, Е. А. Воскресенская, Г. И. Кокорина, Е. А. Богумильчик
Source: Epidemiology and Vaccinal Prevention; Том 22, № 3 (2023); 36-43 ; Эпидемиология и Вакцинопрофилактика; Том 22, № 3 (2023); 36-43 ; 2619-0494 ; 2073-3046
Subject Terms: иммуноблот, ulcerative colitis, Crohn's disease, intestinal yersiniosis, pseudotuberculosis, immunoblotting, язвенный колит, болезнь Крона, кишечный иерсиниоз, псевдотуберкулез
File Description: application/pdf
Relation: https://www.epidemvac.ru/jour/article/view/1822/940; Авандук К. Гастроэнтерология. М.: Практика; 2013. Никонов Е.Л.; Аксёнов В. А., Скворцова Т. А. и др. Иммунотерапия воспалительных заболеваний кишечника. Доктор.Ру. 2019. Т.10, №165. С.31–37.; Федулова Э. Н., Тутина О. А., Федорова О. В. и др. Язвенный колит и болезнь Крона у детей: новые подходы к лечению. Медицинский альманах. 2008. № 5. С.160–163.; Bonovas S., Nikolopoulos G.K., Lytras T., et al. Comparative safety of systemic and low-bioavailability steroids in inflammatory bowel disease: Systematic review and network meta-analysis. Br. J. Clin. Pharmacol. 2018. Vol. 84, N2. P. 239–251.; Бакулин И. Г., Скалинская М. И., Маев И. В., и др. Фармакотерапия воспалительных заболеваний кишечника: управление эффективностью и безопасностью. Терапевтический архив. 2021. Т. 93, №8. C.841–852.; Turner D., Ruemmele F.M., Orlanski-Meyer E., et al. Part 2: Acute Severe Colitis-An Evidence-based Consensus Guideline From the European Crohn’s and Colitis Organization and the European Society of Paediatric Gastroenterology, Hepatology and Nutrition // J. Pediatr. Gastroenterol. Nutr. 2018. Vol. 67, N2. P. 292–310.; Белоусова Е. А. Язвенный колит и болезнь Крона. Тверь: Триада; 2002.; Маев И. В., Шелыгин Ю. А., Скалинская М. И. и др. Патоморфоз воспалительных заболеваний кишечника // Вестник РАМН. 2020. Т.75, №1. С.27–35.; Шапина М. В., Халиф И. Л. Применение препаратов 5-аминосалициловой кислоты для лечения язвенного колита в различных режимах дозирования // Медицинский Совет. 2017. №15. C.44–50.; Щукина О.Б. Препараты 5-АСК в терапии воспалительных заболеваний кишечника. Эффективная фармакотерапия. 2010. №6. С.16–23.; Волынец Г. В., Хавкин А. И. Воспалительные заболевания кишечника и лекарственно индуцированное поражение печени. Экспериментальная и клиническая гастроэнтерология. 2021. №10. С.138–146.; Халиф И. Л., Нанаева Б. А., Головенко А. О. и др. Отдаленные результаты консервативного лечения больных с тяжелым обострением язвенного колита. Терапевтический архив. 2015. Т.87, №2. С.34–38.; Ardizzone S., Maconi G., Russo A., et al. Randomised controlled trial of azathioprine and 5-aminosalicylic acid for treatment of steroid dependent ulcerative colitis . Gut. 2006. Vol. 55, N1. P.47–53.; Faubion W.A., Loftus E.V., Harmsen W.S., et al. The natural history of corticosteroid therapy for inflammatory bowel disease: a population-based study // Gastroenterology. 2001. T.121, №2. P.255–260.; Yoon J.Y., Cheon J.H., Park J.J., et al. Clinical outcomes and factors for response prediction after the first course of corticosteroid therapy in patients with active ulcerative colitis. J. Gastroenterol Hepatol. 2011. Vol.26, N7. P.1114–1122.; Munkholm P., Langholz E., Davidsen M., et al. Frequency of glucocorticoid resistance and dependency in Crohn’s disease. Gut. 1994. Vol.35, N3. P.360–362.; Wei B., Huang T., Dalwadi H., et al. Pseudomonas fluorescens Encodes the Crohn’s Disease-Associated 12 Sequence and T-Cell Superantigen. Infect Immun. 2002. Vol. 70, N12. P.6567–6575.; Rhodes J.M. The role of Escherichia coli in inflammatory bowel disease // Gut. 2007. Vol.56, N5. P. 610–612.; Payne M., Girdwood A.H., Roost R.W., et al. Yersinia enterocolitica and Crohn’s disease. A case report. South Afr Med J. 1987. Vol.72, N1. P.53–55.; De Berardis B., Torresini G., Brucchi M., et al. Yersinia enterocolitica intestinal infection with ileum perforation: report of a clinical observation // Acta Biomed. 2004. Vol.75, N1. P.77–81.; Van Vliet M.J., Harmsen H.J., de Bont E.S., et al. The Role of Intestinal Microbiota in the Development and Severity of Chemotherapy–Induced Mucositis // Journal PLoS Pathog. 2010. Vol. 6, N5. P.1045–1060.; Назаров В. Е., Воскресенская Е. А., Ценева Г. Я. и др. Иерсиниозы – новые «терапевтические» инфекции в гастроэнтерологической практике? Клинические перспективы гастроэнтерологии, гепатологии 2015; (6):16–24.; Сагынбаева В. Э., Голованова Е.В., Лазебник Л. Б. и др. Иерсиниоз – причина развития внекишечных воспалительных заболеваний кишечника или признак реактивации оппортунистических инфекций на фоне биологической терапии? Экспериментальная и клиническая гастроэнтерология. 2018. №5. С.78–85.; Ивашкин В. Т., Шелыгин Ю. А., Абдулганиев Д. И. и др. Рекомендации Российской гастроэнтерологической ассоциации и Ассоциации колопроктологов России по диагностике и лечению взрослых больных язвенным колитом. Российский журнал гастроэнтерологии, гепатологии, колопроктологии. 2015. Т.16, №1. С.48–65.; https://www.epidemvac.ru/jour/article/view/1822
-
5Academic Journal
Authors: T. Yu. Zagoskina, E. Yu. Markov, N. M. Andreevskaya, V. T. Klimov, V. B. Nikolaev, T. M. Dolgova, O. B. Kolesnikova, O. V. Gavrilova, A. V. Kryukova, Yu. O. Popova, O. A. Starikova, A. A. Doroshchenko, M. V. Chesnokova, S. V. Balakhonov, Т. Ю. Загоскина, Е. Ю. Марков, Н. М. Андреевская, В. Т. Климов, В. Б. Николаев, Т. М. Долгова, О. Б. Колесникова, О. В. Гаврилова, А. В. Крюкова, Ю. О. Попова, О. А. Старикова, А. А. Дорощенко, М. В. Чеснокова, С. В. Балахонов
Source: Acta Biomedica Scientifica; Том 8, № 1 (2023); 51-57 ; 2587-9596 ; 2541-9420
Subject Terms: дотиммуноанализ, pseudotuberculosis, specific hyperimmune serum, colloidal silver nanoparticles, dot immunoassay, псевдотуберкулёз, специфическая гипериммунная сыворотка, наночастицы коллоидного серебра
File Description: application/pdf
Relation: https://www.actabiomedica.ru/jour/article/view/3987/2497; https://www.actabiomedica.ru/jour/article/view/3987/2549; Шестакова И.В., Ющук Н.Д. Инфекционные болезни. Заболеваемость и смертность.В:Ющук Н.Д., Венгеров Ю.Я. (ред.). Инфекционные болезни: национальное руководство; 3-е изд. М.: ГЭОТАР-Медиа; 2021: 21-31.; Литвин В.Ю., Сомов Г.П., Пушкарева В.И. Сапронозы как природно-очаговые болезни. Эпидемиология и вакцинопрофилактика. 2010; (1): 10-16.; Махнев М.В. Антропургические очаги псевдотуберкулеза: механизмы формирования в воинских коллективах. Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2006; (2): 11-17.; Galindo CL, Rosenzweig JA, Kirtley ML, Chopra AK. Pathogenesis of Y. enterocolitica and Y. pseudotuberculosis in human yersiniosis. J Pathog. 2011; 2011: 182051. doi:10.4061/2011/182051; Vasala M, Hallanvuo S, Ruuska P, Suokas R, Siitonen A, Hakala M. High frequency of reactive arthritis in adults after Yersinia pseudotuberculosis O:1 outbreak caused by contaminated grated carrots. Ann Rheum Dis. 2014; 73(10): 1793-1796. doi:10.1136/annrheumdis-2013-203431; Pärn T, Hallanvuo S, Salmenlinna S, Pihlajasaari A, Heikkinen S, Telkki-Nykänen H, et al. Outbreak of Yersinia pseudotuberculosis O:1 infection associated with raw milk consumption, Finland, spring 2014. Euro Surveill. 2015; 20(40): 30033. doi:10.2807/1560-7917.ES.2015.20.40.30033; Keto-Timonen R, Pontinen A, Aalto-Araneda M, Korkeala H. Growth of Yersinia pseudotuberculosis strains at different temperatures, pH values, and NaCl and ethanol concentrations. J Food Prot. 2018; 81(1): 142-149. doi:10.4315/0362-028X.JFP-17-223; Тимченко Н.Ф., Персиянова Е.В. Роль растений в экологии Yersinia pseudotuberculosis. Фундаментальные исследования. 2013; (6): 1442-1448.; Пушкарева В.И., Литвин В.Ю., Дробященко М.А., Поляков В.Ю., Мухачев А.Я. Эпидемиологическая опасность формирования биопленок в условиях пищевого производства. Эпидемиология и вакцинопрофилактика. 2011. (2): 17-23.; The European Union summary report on trends and sources of zoonoses, zoonotic agents and food-borne outbreaks in 2017. EFSAJ. 2018; 16(12): e05500. doi:10.2903/j.efsa.2018.5500; Чеснокова М.В., Климов В.Т., Никитин А.Я., Ярыгина М.Б., Иннокентьева Т.И., Балахонов С.В. Анализ эпидемиологической ситуации по псевдотуберкулезу и кишечному иерсиниозу в России и прогноз заболеваемости на среднесрочную перспективу. Здоровье населения и среда обитания. 2018; (9): 59-64. doi:10.35627/2219-5238/2018-306-9-59-64; Бренёва Н.В., Балахонов С.В., Никитин А.Я., Мельцов И.В., Шаракшанов М.Б., Кузьменков В.В., и др. Выявление и прогнозирование рисков распространения природно-очаговых инфекций на пострадавших от паводка территориях Иркутской области. Анализ риска здоровью. 2021; (2): 94-104. doi:10.21668/health.risk/2021.2.09; Онищенко Г.Г., Кутырев В.В. (ред.). Специфическая индикация патогенных биологических агентов: практическое руководство; 2-е изд., перераб. и доп. Саратов: ООО ПКФ «Буква» (Ижевск); 2014.; Загоскина Т.Ю., Балахонов С.В., Марков Е.Ю., Николаев В.Б., Субычева Е.Н., Чапоргина Е.А., и др. Апробация диагностических тест-систем с использованием наночастиц серебра в качестве маркеров специфических антител для скрининга исследуемого материала на наличие антигенов возбудителей чумы, бруцеллеза, туляремии и ботулотоксина в дот-иммуноанализе. Эпидемиология и вакцинопрофилактика. 2014; 23(4): 61-64.; Загоскина Т.Ю., Марков Е.Ю., Андреевская Н.М., Климов В.Т., Николаев В.Б., Крюкова А.В., и др. Получение гипериммунных псевдотуберкулезных сывороток. Acta biomedica scientifica. 2021; 6(3): 86-94. doi:10.29413/ABS.2021-6.3.9; McKinney MM, Parkinson A. A simple, non-chromatographic procedure to purify immunoglobulins from serum and ascites fluid. J Immunol Meth. 1987; 96(2): 271-278. doi:10.1016/0022-1759(87)90324-3; Загоскина Т.Ю., Чеснокова М.В., Климов В.Т., Попова Ю.О., Марков Е.Ю., Старикова О.А. Конструирование тест-системы с наночастицами коллоидного серебра для обнаружения возбудителей псевдотуберкулеза и кишечного иерсиниоза в дотиммуноанализе. Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2017; (1): 55-61. doi:10.36233/0372-9311-2017-1-55-61; Полтавченко А.Г., Яковченко А.М., Кривенчук Н.А., Карпышев Н.Н. Многопрофильная серодиагностика инфекционных заболеваний. 3. Визуализация результатов анализа. Биотехнология. 2007; (2): 63-71.; Бургасова О.А., Кожевникова Г.М., Чеснокова М.В., Климов В.Т., Тетова В.Б., Королюк А.М., и др. Иерсиниозы: псевдо туберкулез и кишечный иерсиниоз. М.: Российский университет дружбы народов; 2021.; https://www.actabiomedica.ru/jour/article/view/3987
-
6Academic Journal
Authors: Kryukova A.V., Markov E.Y., Nikolaev V.B., Popova Y.O., Klimov V.T., Igumnova S.V., Andreevskaya N.M., Ulanskaya A.V., Zagoskina T.Y., Chesnokova M.V.
Source: Russian Journal of Infection and Immunity; Vol 12, No 4 (2022); 659-667 ; Инфекция и иммунитет; Vol 12, No 4 (2022); 659-667 ; 2313-7398 ; 2220-7619
Subject Terms: Yersinia pseudotuberculosis, diagnostics, antigens, antibodies, hyperimmunization, urea, pseudotuberculosis, диагностика, антигены, антитела, гипериммунизация, мочевина, псевдотуберкулез
File Description: application/pdf
Relation: https://iimmun.ru/iimm/article/view/1602/1403; https://iimmun.ru/iimm/article/view/1602/1548; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/1602/5914; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/1602/5915; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/1602/5916; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/1602/5917; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/1602/5918; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/1602/5919; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/1602/5920; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/1602/5921; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/1602/5922; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/1602/5923; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/1602/5924; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/1602/5925; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/1602/5926; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/1602/7672; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/1602/8760; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/1602/8761; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/1602/8762; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/1602/8763; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/1602/8764; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/1602/8765; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/1602/8766; https://iimmun.ru/iimm/article/view/1602
-
7Academic Journal
Authors: Ya. A. Bogvilene, G. P. Martynova, M. A. Stroganovа, A. A. Lapteva, Я. А. Богвилене, Г. П. Мартынова, М. А. Строганова, А. А. Лаптева
Source: CHILDREN INFECTIONS; Том 21, № 3 (2022); 65-67 ; ДЕТСКИЕ ИНФЕКЦИИ; Том 21, № 3 (2022); 65-67 ; 2618-8139 ; 2072-8107 ; 10.22627/2072-8107-2022-21-3
Subject Terms: гемодиафильтрация, pseudotuberculosis, acute renal failure, hemodiafiltration, псевдотуберкулез, острая почечная недостаточность
File Description: application/pdf
Relation: https://detinf.elpub.ru/jour/article/view/757/577; Бондаренко А.Л., С.В. Аббасова, Е.А. Мирзоева. Клинико-эпидемиологическая характеристика иерсиниозной инфекции на севере Волго-Вятского региона. Журнал инфектологии. 2015; 7(4):64—69.; Сомова Л.М., Б.Г. Андрюков, Н.Ф. Тимченко, Е.К. Псарева. Псевдотуберкулез как персистентная инфекция: этиопатогенетические предпосылки. Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2019; 2:110—119.; Филиппенко А.В., И.А. Иванова, И.В. Морозова, Н.Д. Омельченко, Н.И. Пасюкова, А.Л. Трухачев, И.А. Беспалова. Псевдотуберкулез и кишечный иерсиниоз: совершенствование неспецифической профилактики и лечения. Медицинский вестник Юга России. 2017; 8(1):28—31.; Вълкова Е.Д, И.Т. Тодоров, М.Д. Господинова. Редкий случай смешанной инфекции у ребенка: иерсиниозно-астровирусный энтерит. Российский вестник перинатологии и педиатрии. 2018; 63(5):98—102.; Бондаренко А.Л., Ю.Н. Хорошун, С.В. Барамзина, Ю.С. Завражных, Т.В. Ренжина. Особенности клинического течения микст-инфекции иерсиниоза с острым вирусным гепатитом А и Е. Журнал инфектологии. 2018; 10(4):78—81.; Сагынбаева В.Э., Голованова Е.В., Лазебник Л.Б., Бойцов С.А. Иерсиниоз — причина развития внекишечных воспалительных заболеваний кишечника или признак реактивации оппортунистических инфекций на фоне биологической терапии? Клиническая гастроэнтерология. 2018; 5:78—85.; Ye Kyung Kim, Myung Hyun Cho, Hye Sun Hyun, Eujin Park, II-Soo Ha, Hae II Cheong, Hee Gyung Kang. Acute kidney injury associated with Yersinia pseudotuberculosis infection: Forgotten but not gone. Kidney Res Clin Pract. 2019; 38(3):347—355. https://doi.org/10.23876/j.krcp.19.001; https://detinf.elpub.ru/jour/article/view/757
-
8Academic Journal
Authors: A. P. Pomogaeva, O. L. Nosareva, E. A. Stepovaya, T. V. Zhavoronok, E. V. Shakhristova, E. I. Krasnova, A. V. Vasyunin, А. П. Помогаева, О. Л. Носарева, Е. А. Степовая, Т. В. Жаворонок, Е. В. Шахристова, Е. И. Краснова, А. В. Васюнин
Source: Journal Infectology; Том 12, № 5 (2020); 130-137 ; Журнал инфектологии; Том 12, № 5 (2020); 130-137 ; 2072-6732 ; 10.22625/2072-6732-2020-12-5
Subject Terms: эритроциты, pseudotuberculosis, oxidative stress, lipid peroxidation, antioxidant system, glutathione system, erythrocytes, псевдотуберкулез, окислительный стресс, перекисное окисление липидов, антиоксидантная система, система глутатиона
File Description: application/pdf
Relation: https://journal.niidi.ru/jofin/article/view/1154/859; Bruneteau, M. Lipopolysaccharides of bacterial pathogens from the genus Yersinia: a mini-review / M. Bruneteau, S. Minka // Biochimie. – 2003. – V. 85, № 1-2. – Р. 145-152.; Учайкин, В.Ф. Иерсиниозы у детей / В.Ф. Учайкин, А.В. Гордеец, С.Н. Бениова. – М.: ГЭОТАР-Медиа, 2005. – 141 с.; Шестакова, И.В. Иерсиниоз / И.В. Шестакова, Н.Д. Ющук // Инфекционные болезни. – 2006. – Т. 4, № 3. – С. 78–86.; YopN Is Required for Efficient Effector Translocation and Virulence in Yersinia pseudotuberculosis / S. Bamyaci, S. Ekestubbe, R. Nordfelth et al. // Infect Immun. – 2018. – V. 86, № 8. – e957-e1017.; Окислительный стресс. Патологические состояния и заболевания / Е.Б. Меньщикова [и др.]. – Новосибирск: Сибирское университетское издательство, 2017. – 284 с.; Yersinia Pseudotuberculosis Modulates Regulatory T Cell Stability via Injection of Yersinia Outer Proteins in a Type III Secretion System-Dependent Manner / A. Elfiky, A. Bonifacius, J. Pezoldt et al. // Eur. J. Microbiol. Immunol. (Bp). – 2018. – V. 8, № 4. – Р. 101-106.; Pathogenetic role of Yersinia pseudotuberculosis endotoxin in hemostasis and microcirculation disturbances / T.A. Kuznetsova, L.M. Somova, N.G. Plekhova, E.I. Drobot // Bull. Exp. Biol. Med. – 2011. – V. 150, № 5. –Р. 619-623.; Дубинина, Е.Е. Продукты метаболизма кислорода в функциональной активности клеток (жизнь и смерть, созидание и разрушение). Физиологические и клинико-биохимические аспекты / Е.Е. Дубинина. – СПб.: Медицинская пресса, 2006. – 400 с.; Höhn, A. Pathophysiological importance of aggregated damaged proteins // A. Höhn, Т. Jung, Т. Grune // Free Radic. Biol. Med. – 2014. – V. 71. – Р. 70-89.; 4-Hydroxy-2-nonenal: a critical target in oxidative stress? / M. Breitzig, C. Bhimineni, R. Lockey, N. Kolliputi // Am. J. Physiol. Cell Physiol. – 2016. – V. 311, № 4. – Р. С537-C543.; Eaton, J.W. Catalases and peroxidase and glutatione and hydrogen peroxide: mysteries of the bestiary / J.W. Eaton // J. Lab. and Clin. Med. – 1991. – V. 118, № 1. – P. 3-4.; Носарева, О.Л. Роль редокс-статуса и окислительной модификации белков в реализации апоптоза лимфоцитов крови человека в норме и при экспериментальном окислительном стрессе / О.Л. Носарева [и др.] // Российский физиологический журнал им. И.М. Сеченова. – 2019. – Т. 105, № 3. – С. 327–338.; Кулинский, В.И. Система глутатиона. I. Синтез, транспорт, глутатионтрансферазы, глутатионпероксидазы / В.И. Кулинский, Л.С. Колесниченко // Биомедицинская химия. – 2009. – Т. 55, № 3. – С. 255–277.; Современные представления об антиоксидантной роли глутатиона и глутатионзависимых ферментов / Е.В. Калинина [и др.] // Вестник РАМН. – 2010. – № 3. – С. 46–54.; Couto, N. The role of glutathione reductase and related enzymes on cellular redox homoeostasis network / N. Couto, J. Wood, J. Barber // Free Radic. Biol. Med. – 2016. – V. 95. – Р. 27-42.; Antioxidants Maintain Cellular Redox Homeostasis by Elimination of Reactive Oxygen Species / L. He, Т. He, S. Farrar et al. // Cell. Physiol. Biochem. – 2017. – V. 44, № 2. – Р. 532-553.; Ющук, Н.Д. Особенности течения и отдаленные исходы генерализованной и вторично-очаговой формы иерсиниозной инфекции / Н.Д. Ющук // Лечащий врач. – 2009. – № 11. – С. 82–86.; Шестакова, И.В. Иерсиниоз: расширяя традиционные представления о диагностике, лечении и диспансеризации больных / И.В. Шестакова, Н.Д. Ющук // Лечащий врач. – 2010. – № 10. – С. 26–33.; Гаврилов, В.Б. Спектрофотометрическое определение содержания гидроперекисей липидов / В.Б. Гаврилов, М.И. Мишкорудная // Лабораторное дело. – 1983. – № 3. – С. 33-36.; Владимиров, Ю.А. Перекисное окисление липидов в биологических мембранах / Ю.А. Владимиров, А.К. Арчаков. – М.: Наука, 1972. – 226 с.; Медицинские лабораторные технологии: в 2 т. / под ред. А.И. Карпищенко. – СПб.: Интермедика, 1998. – Т. 2. – 656 c.; Гланц, С. Медико-биологическая статистика / С. Гланц. – М.: Практика, 1999. – 459 с.; Роль процессов свободнорадикального окисления в патогенезе инфекционных болезней / А.П. Шепелев [и др.] // Вопросы медицинской химии. – 2000. – Т. 46, № 2. – С. 110–116.; Сварваль, А.В. Липополисахарид иерсиний и его биологическая активность / А.В. Сварваль, Г.Я. Ценева, О.А. Шендерович // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. – 2006. – № 3. – С. 100–104.; El-Benna, J. Priming of the neutrophil respiratory burst: role in host defense and inflammation / J. El-Benna, M. Hurtado-Nedelec, V. Marzaioli et al. // Immunol Rev. – 2016. – V. 273, № 1. – Р. 180-193.; Кузнецов, В.Г. Определение липазной активности кишечных иерсиний / В.Г. Кузнецов, В.Н. Багрянцев // Клиническая лабораторная диагностика. – 1992. – № 9–10. – С. 57–59.; Dubinina, E.E. Role of 4-hydroxy-trans-2-nonenal in cell functions / E.E. Dubinina, V.A. Dadali // Biochemistry (Mosc). – 2010. – V. 75, № 9. – Р. 1069–1087.; https://journal.niidi.ru/jofin/article/view/1154
-
9Academic Journal
Authors: СОМОВА Л.М., АНДРЮКОВ Б.Г., ТИМЧЕНКО Н.Ф., ПСАРЕВА Е.К.
Subject Terms: ПСЕВДОТУБЕРКУЛЕЗ, YERSINIA PSEUDOTUBERCULOSIS, РЕЦИДИВИРОВАНИЕ, ПЕРСИСТЕНТНАЯ ИНФЕКЦИЯ, ЭТИОПАТОГЕНЕТИЧЕСКИЕ ПРЕДПОСЫЛКИ, ЦИТОТОКСИЧЕСКИЙ НЕКРОТИЗИРУЮЩИЙ ФАКТОР (CNFY), PSEUDOTUBERCULOSIS, RECURRENCE, PERSISTENT INFECTION, ETIOPATHOGENETIC PRECONDITIONS, CYTOTOXIC NECROTIZING FACTOR (CNFY)
Relation: https://zenodo.org/records/3484080; oai:zenodo.org:3484080; https://doi.org/10.5281/zenodo.3484080
-
10Academic Journal
Authors: N. P. Peretolchina, Yu. P. Dzhioev, A. Yu. Borisenko, L. A. Stepanenko, E. A. Voskresenskaya, V. T. Klimov, O. N. Reva, V. I. Zlobin, Н. П. Перетолчина, Ю. П. Джиоев, А. Ю. Борисенко, Л. А. Степаненко, Е. А. Воскресенская, В. Т. Климов, О. Н. Рева, В. И. Злобин
Source: Journal Infectology; Том 11, № 2 (2019); 80-87 ; Журнал инфектологии; Том 11, № 2 (2019); 80-87 ; 2072-6732 ; 10.22625/2072-6732-2019-11-2
Subject Terms: псевдотуберкулез, Y. pseudotuberculosis, pseudotuberculosis
File Description: application/pdf
Relation: https://journal.niidi.ru/jofin/article/view/887/708; Сомова, Л. М. Дальневосточная скарлатиноподобная лихорадка: формирование представлений о патоморфогенезе «новой» болезни / Л.М. Сомова //Здоровье. Медицинская экология. Наука. – 2017. – № 3 (70).; Каттер, Э. Бактериофаги. Биология и практическое применение / Э. Каттер, А. Сулаквелидзе. – 2012.; Перетолчина Н.П. Биоинформационный анализ CRISPR/CaS системы штамма Yersinia pseudotuberculosis IP32953 / Н.П. Перетолчина [и др.] // Бюллетень ВосточноСибирского научного центра Сибирского отделения Российской академии медицинских наук. – 2016. – Т. 1. – № 5 (111).; Arndt, D., Grant, J. R., Marcu, A., Sajed, T., Pon, A., Liang, Y., & Wishart, D. S. (2016). PHASTER: a better, faster version of the PHAST phage search tool. Nucleic acids research, 44(W1), W16-W21.; Barrangou, R., & Marraffini, L. A. (2014). CRISPR-Cas systems: prokaryotes upgrade to adaptive immunity. Molecular cell, 54(2), 234-244.; Biswas, A., Gagnon, J. N., Brouns, S. J., Fineran, P. C., & Brown, C. M. (2013). CRISPRTarget: bioinformatic prediction and analysis of crRNA targets. RNA biology, 10(5), 817-827.; Biswas, A., Staals, R. H., Morales, S. E., Fineran, P. C., & Brown, C. M. (2016). CRISPRDetect: a flexible algorithm to define CRISPR arrays. BMC genomics, 17(1), 356.; Datsenko, K. A., Pougach, K., Tikhonov, A., Wanner, B. L., Severinov, K., & Semenova, E. (2012). Molecular memory of prior infections activates the CRISPR/Cas adaptive bacterial immunity system. Nature communications, 3, 945.; Eppinger, M., Rosovitz, M. J., Fricke, W. F., Rasko, D. A., Kokorina, G., Fayolle, C., & Ravel, J. (2007). The complete genome sequence of Yersinia pseudotuberculosis IP31758, the causative agent of Far East scarlet-like fever. PLoS Genet, 3(8), e142.; Fukushima H, Matsuda Y, Seki R, Tsubokura M, Takeda N, Shubin F.N., Paik IK, Zheng XB. (2001). Geographical heterogeneity between Far Eastern and Western countries in prevalence of the virulence plasmid, the superantigen Yersinia pseudotuberculosis-derived mitogen, and the high-pathogenicity island among Yersinia pseudotuberculosis strains. Journal of Clinical Microbiology, 39(10), 3541-3547.; Hille, F., Richter, H., Wong, S. P., Bratovič, M., Ressel, S., & Charpentier, E. (2018). The Biology of CRISPR-Cas: Backward and Forward. Cell, 172(6), 1239-1259.; Koonin, E. V., Makarova, K. S., & Zhang, F. (2017). Diversity, classification and evolution of CRISPR-Cas systems. Current opinion in microbiology, 37, 67-78.; Koskela, K. A., Mattinen, L., Kalin Mänttäri, L., Vergnaud, G., Gorgé, O., Nikkari, S., & Skurnik, M. (2015). Generation of a CRISPR database for Yersinia pseudotuberculosis complex and role of CRISPR based immunity in conjugation. Environmental microbiology, 17(11), 4306-4321.; Makarova, K. S., Wolf, Y. I., Alkhnbashi, O. S., Costa, F., Shah, S. A., Saunders, S. J., & Horvath, P. (2015). An updated evolutionary classification of CRISPR–Cas systems. Nature Reviews Microbiology, 13(11), 722.; Medina-Aparicio, L., Dávila, S., Rebollar-Flores, J. E., Calva, E., & Hernández-Lucas, I. (2018). The CRISPR-Cas system in Enterobacteriaceae. Pathogens and disease.; Nörenberg, D., Wieser, A., Magistro, G., Hoffmann, C., Meyer, C., Messerer, M., & Schubert, S. (2013). Molecular analysis of a novel Toll/interleukin-1 receptor (TIR)-domain containing virulence protein of Y. pseudotuberculosis among Far East scarlet-like fever serotype I strains. International Journal of Medical Microbiology, 303(8), 583-594.; Pougach, K., Semenova, E., Bogdanova, E., Datsenko, K. A., Djordjevic, M., Wanner, B. L., & Severinov, K. (2010). Transcription, processing and function of CRISPR cassettes in Escherichia coli. Molecular microbiology, 77(6), 1367-1379.; Seecharran, T., Kalin-Manttari, L., Koskela, K., Nikkari, S., Dickins, B., Corander, J., Skurnik M., & McNally, A. (2017). Phylogeographic separation and formation of sexually discrete lineages in a global population of Yersinia pseudotuberculosis. Microbial genomics, 3(10).; Westra, E. R., Buckling, A., & Fineran, P. C. (2014). CRISPR-Cas systems: beyond adaptive immunity. Nature reviews Microbiology, 12(5), 317-326.; Zhang, Q., & Ye, Y. (2017). Not all predicted CRISPR– Cas systems are equal: isolated cas genes and classes of CRISPR like elements. BMC bioinformatics, 18(1), 92.; https://journal.niidi.ru/jofin/article/view/887
-
11Academic Journal
Authors: Somova L.M., Shubin F.N., Drobot E.I., Lyapun I.N., Plekhova N.G.
Source: Russian Journal of Infection and Immunity; Vol 9, No 2 (2019); 369-374 ; Инфекция и иммунитет; Vol 9, No 2 (2019); 369-374 ; 2313-7398 ; 2220-7619 ; 10.15789/2220-7619-2019-2
Subject Terms: pseudotuberculosis infection, Far Eastern scarlet-like fever (FESLF), Yersinia pseudotuberculosis, plasmid types, inflammation, innate immunity cells, immunosuppression, псевдотуберкулез, дальневосточная скарлатиноподобная лихорадка, плазмидные типы, воспаление, клетки врожденного иммунитета, иммуносупрессия
File Description: application/pdf
-
12Academic Journal
Subject Terms: ETIOPATHOGENETIC PRECONDITIONS, ПЕРСИСТЕНТНАЯ ИНФЕКЦИЯ, ПСЕВДОТУБЕРКУЛЕЗ, РЕЦИДИВИРОВАНИЕ, PSEUDOTUBERCULOSIS, CYTOTOXIC NECROTIZING FACTOR (CNFY), RECURRENCE, YERSINIA PSEUDOTUBERCULOSIS, ЦИТОТОКСИЧЕСКИЙ НЕКРОТИЗИРУЮЩИЙ ФАКТОР (CNFY), PERSISTENT INFECTION, ЭТИОПАТОГЕНЕТИЧЕСКИЕ ПРЕДПОСЫЛКИ
-
13Academic Journal
Authors: N. P. Peretolchina, A. Y. Borisenko, Yu. P. Dzhioev, V. I. Zlobin, Н. П. Перетолчина, А. Ю. Борисенко, Ю. П. Джиоев, В. И. Злобин
Source: Acta Biomedica Scientifica; Том 3, № 5 (2018); 54-59 ; 2587-9596 ; 2541-9420
Subject Terms: псевдотуберкулёз, Y. pseudotuberculosis
File Description: application/pdf
Relation: https://www.actabiomedica.ru/jour/article/view/707/668; Перетолчина Н.П., Джиоев Ю.П., Борисенко А.Ю., Воскресенская Е.А., Парамонов А.И., Степаненко Л.А., Колбасеева О.В., Злобин В.И. Биоинформационный анализ CRISPR/Cas системы штамма Yersinia pseudotuberculosis IP32953 // Acta biomedica scientifica. – 2016. – Т. 1, № 5. – С. 64–67. DOI:10.12737/23384; Arndt D, Grant JR, Marcu A, Sajed T, Pon A, Liang Y, Wishart DS. (2016). PHASTER: a better, faster version of the PHAST phage search tool. Nucleic Acids Res, 44 (W1), W16-W21. DOI:10.1093/nar/gkw387; Biswas A, Gagnon JN, Brouns SJ, Fineran PC, Brown CM. (2013). CRISPRTarget: bioinformatic prediction and analysis of crRNA targets. RNA Biol, 10 (5), 817-827. DOI:10.4161/rna.24046; Biswas A, Staals RH, Morales SE, Fineran PC, Brown CM. (2016). CRISPRDetect: a flexible algorithm to define CRISPR arrays. BMC genomics, 17 (1), 356. DOI:10.1186/s12864-016-2627-0; Datsenko KA, Pougach K, Tikhonov A, Wanner BL, Severinov K, Semenova E. (2012). Molecular memory of prior infections activates the CRISPR/Cas adaptive bacterial immunity system. Nature Commun, 3, 945. DOI:10.1038/ncomms1937; Eppinger M, Rosovitz MJ, Fricke WF, Rasko DA, Kokorina G, Fayolle C, Ravel J. (2007). The complete genome sequence of Yersinia pseudotuberculosis IP31758, the causative agent of Far East scarlet-like fever. PLoS Genet, 3 (8), e142. DOI:10.1371/journal.pgen.0030142; Hille F, Richter H, Wong SP, Bratovič M, Ressel S, Charpentier E. (2018). The biology of CRISPR-Cas: backward and forward. Cell, 172 (6), 1239-1259. DOI:10.1016/j.cell.2017.11.032; Koskela KA, Mattinen L, Kalin-Mänttäri L, Vergnaud G, Gorgé O, Nikkari S, Skurnik M. (2015). Generation of a CRISPR database for Yersinia pseudotuberculosis complex and role of CRISPR-based immunity in conjugation. Environ Microbiol, 17 (11), 4306-4321. DOI:10.1111/1462-2920.12816; Medina-Aparicio L, Dávila S, Rebollar-Flores JE, Calva E, Hernández-Lucas I. (2018). The CRISPR-Cas system in Enterobacteriaceae. Pathogens Dis, 76 (1), fty002. DOI:10.1093/femspd/fty002; Nörenberg D, Wieser A, Magistro G, Hoffmann C, Meyer C, Messerer M, Schubert S. (2013). Molecular analysis of a novel Toll/interleukin-1 receptor (TIR)-domain containing virulence protein of Y. pseudotuberculosis among Far East scarlet-like fever serotype I strains. Int J Med Microbiol, 303 (8), 583-594. DOI:10.1016/j.ijmm.2013.08.002; Pougach K, Semenova E, Bogdanova E, Datsenko KA, Djordjevic M, Wanner BL, Severinov K. (2010). Transcription, processing and function of CRISPR cassettes in Escherichia coli. Mol Microbiol, 77 (6), 1367-1379. DOI:10.1111/j.1365-2958.2010.07265.x; Seecharran T, Kalin-Manttari L, Koskela K, Nikkari S, Dickins B, Corander J, Skurnik M, McNally A. (2017). Phylogeographic separation and formation of sexually discrete lineages in a global population of Yersinia pseudotuberculosis. Microb Genom, 3 (10). DOI:10.1099/mgen.0.000133; Westra ER, Buckling A, Fineran PC. (2014). CRISPR-Cas systems: beyond adaptive immunity. Nature Rev Microbiol, 12 (5), 317-326. DOI:10.1038/nrmicro3241; Zhang Q, Ye Y. (2017). Not all predicted CRISPR-Cas systems are equal: isolated cas genes and classes of CRISPR like elements. BMC Bioinformatics, 18 (1), 92. DOI:10.1186/s12859-017-1512-4; https://www.actabiomedica.ru/jour/article/view/707
-
14Academic Journal
Source: Бюллетень сибирской медицины, Vol 5, Iss 4, Pp 103-110 (2006)
Subject Terms: pseudotuberculosis, phagocytosis, нейтрофилы, дети, 3. Good health, 03 medical and health sciences, 0302 clinical medicine, children, neutrophils, псевдотуберкулез, Medicine, моноциты, monocytes, фагоцитоз
-
15Academic Journal
-
16Academic Journal
Authors: Мефодьев, Владимир, Перминова, Ксенья, Дубинина, Ольга
Subject Terms: ЭПИДЕМИЧЕСКИЙ ПРОЦЕСС, ПСЕВДОТУБЕРКУЛЕЗ, ДИНАМИКА, ФАКТОРЫ РИСКА
File Description: text/html
-
17Academic Journal
Authors: Перминова, Ксенья, Мефодьев, Владимир, Дубинина, Ольга, Шарухо, Галина, Орлов, Михаил, Иванова, Галина, Климов, Валерий, Афанасьев, Максим, Чеснокова, Маргарита
Subject Terms: ПСЕВДОТУБЕРКУЛЕЗ, ЭПИДЕМИОЛОГИЯ, КЛИНИКА, СПОРАДИЧЕСКАЯ ЗАБОЛЕВАЕМОСТЬ, ВСПЫШКИ, ФАКТОРЫ ПАТОГЕННОСТИ, VNTR-ТИПИРОВАНИЕ
File Description: text/html
-
18Academic Journal
Authors: Андрюков, Борис
Subject Terms: ПСЕВДОТУБЕРКУЛЕЗ, СИСТЕМНЫЙ АНАЛИЗ, ПОЛИМОРФИЗМ, МЕХАНИЗМЫ ПАТОГЕНЕЗА
File Description: text/html
-
19Academic Journal
Authors: Бамматов, Д.
Subject Terms: СОЧЕТАННЫЕ ПРИРОДНЫЕ ОЧАГИ, ВОЗБУДИТЕЛИ ИНФЕКЦИЙ, ЧУМА, ТУЛЯРЕМИЯ, СИБИРСКАЯ ЯЗВА, ПСЕВДОТУБЕРКУЛЁЗ, ЛЕПТОСПИРОЗЫ, ЛИСТЕРИОЗ, САЛЬМОНЕЛЛЁЗЫ, ПАСТЕРЕЛЛЁЗ, ЭРИЗИПЕЛОИД, КРЫМСКАЯ ГЕМОРРАГИЧЕСКАЯ ЛИХОРАДКА, БЕШЕНСТВО, РЕСПУБЛИКА ДАГЕСТАН., REPUBLIC OF DAGESTAN
File Description: text/html
-
20Academic Journal
Subject Terms: ИЕРСИНИОЗЫ, ПСЕВДОТУБЕРКУЛЕЗ, ДЕТИ, ИСХОД
File Description: text/html
