-
1Academic Journal
Συγγραφείς: G. M. Bashko, Yu. V. Kornoushenko, A. V. Tuzikov, A. M. Andrianov, Г. М. Башко, Ю. В. Корноушенко, А. В. Тузиков, А. М. Андрианов
Συνεισφορές: This work was supported by grants from the BRFFR (project Ф24-КИТГ-016), the International Scientific and Technical Center (ISTC, project PR150) and the Consortium and the Drug Resistant Tuberculosis Portal Program (https://tbportals.niaid.nih.gov), Работа выполнена при поддержке грантов БРФФИ (проект Ф24-КИТГ-016), Международного научно-технического центра (МНТЦ, проект PR150) и Консорциума и Портала программы «Лекарственноустойчивый туберкулез» (https://tbportals.niaid.nih.gov)
Πηγή: Doklady of the National Academy of Sciences of Belarus; Том 69, № 5 (2025); 367-375 ; Доклады Национальной академии наук Беларуси; Том 69, № 5 (2025); 367-375 ; 2524-2431 ; 1561-8323 ; 10.29235/1561-8323-2025-69-5
Θεματικοί όροι: противотуберкулезные препараты, machine learning, boosting, molecular docking, virtual screening, Mycobacterium tuberculosis, MmpL3, anti-tuberculosis drugs, машинное обучение, бустинг, молекулярный докинг, виртуальный скрининг
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Relation: https://doklady.belnauka.by/jour/article/view/1270/1272; The stages of drug discovery and development process / A. B. Deore, J. R. Dhumane, R. Wagh, R. Sonawane // Asian Journal of Pharmaceutical Research and Development. – 2019. – Vol. 7, N 6. – P. 62–67. https://doi.org/10.22270/ajprd.v7i6.616; Berdigaliyev, N. An overview of drug discovery and development / N. Berdigaliyev, M. Aljofan // Future Medicinal Chemistry. – 2020. – Vol. 12, N 10. – P. 939–947. https://doi.org/10.4155/fmc-2019-0307; Roney, M. The importance of in-silico studies in drug discovery / M. Roney, M. F. F. Mohd Aluwi // Intelligent Pharmacy. – 2024. – Vol. 2, N 4. – P. 578–579. https://doi.org/10.1016/j.ipha.2024.01.010; In silico methods and tools for drug discovery / B. Shaker, S. Ahmad, J. Lee [et al.] // Computers in Biology and Medicine. – 2021. – Vol. 137. – Art. 104851. https://doi.org/10.1016/j.compbiomed.2021.104851; Advances in de novo drug design: from conventional to machine learning methods / V. D. Mouchlis, A. Afantitis, A. Serra [et al.] // International Journal of Molecular Sciences. – 2021. – Vol. 22, N 4. – Art. 1676. https://doi.org/10.3390/ijms22041676; Khawbung, J. L. Drug resistant tuberculosis: a review / J. L. Khawbung, D. Nath, S. Chakraborty // Comparative Immunology, Microbiology and Infectious Diseases. – 2021. – Vol. 74. – Art. 101574. https://doi.org/10.1016/j.cimid.2020.101574; A deep learning approach to antibiotic discovery / J. M. Stokes, K. Yang, K. Swanson [et al.] // Cell. – 2020. – Vol. 180, N 4. – P. 688–702. https://doi.org/10.1016/j.cell.2020.01.021; Identification of new Mycobacterium tuberculosis proteasome inhibitors using a knowledge-based computational screening approach / T. M. Almeleebia, M. A. Shahrani, M. Y. Alshahrani [et al.] // Molecules. – 2021. – Vol. 26, N 8. – Art. 2326. https://doi.org/10.3390/molecules26082326; Machine learning-enabled virtual screening indicates the anti-tuberculosis activity of aldoxorubicin and quarfloxin with verification by molecular docking, molecular dynamics simulations, and biological evaluations / S. Zheng, Ya. Gu, Yu. Gu [et al.] // Briefings in Bioinformatics. – 2024. – Vol. 26, N 1. – Art. bbae696. https://doi.org/10.1093/bib/bbae696; Перспективы и препятствия для клинического применения ингибиторов эффлюксных помп Mycobacterium tuberculosis / И. Г. Фелькер, Е. И. Гордеева, Н. В. Ставицкая [и др.] // Биологические мембраны. – 2021. – Т. 38, № 5. – С. 317–339.; MmpL3 inhibition as a promising approach to develop novel therapies against tuberculosis: a spotlight on SQ109, clinical studies, and patents literature / M. Imran, M. K. Arora, A. Chaudhary [et al.] // Biomedicines. – 2022. – Vol. 10, N 11. – Art. 2793. https://doi.org/10.3390/biomedicines10112793; Specifically targeting Mtb cell-wall and TMM transporter: the development of MmpL3 inhibitors / Q. Luo, H. Duan, H. Yan [et al.] // Current Protein and Peptide Science. – 2021. – Vol. 22, N 4. – P. 290–303. https://doi.org/10.2174/1389203722666210421105733; Mycobacterium smegmatis: the vanguard of mycobacterial research / I. L. Sparks, K. M. Derbyshire, W. R. Jr. Jacobs, Ya. S. Morita // Journal of Bacteriology. – 2023. – Vol. 205, N 1. – Art. e00337-22. https://doi.org/10.1128/jb.00337-22; Experimental and computational approaches to estimate solubility and permeability in drug discovery and development settings / C. A. Lipinski, F. Lombardo, B. W. Dominy, P. J. Feeney // Advanced Drug Delivery Reviews. – 2001. – Vol. 46, N 1–3. – P. 3–26. https://doi.org/10.1016/S0169-409X(00)00129-0; Sterling, T. ZINC 15 – ligand discovery for everyone / T. Sterling, J. J. Irwin // Journal of Chemical Information and Modeling. – 2015. – Vol. 55, N 11. – P. 2324–2337. https://doi.org/10.1021/acs.jcim.5b00559; https://doklady.belnauka.by/jour/article/view/1270
-
2Academic Journal
Συγγραφείς: Гюльбала ГАДЖИЕВ, Эмилия АБДУЛЛАЕВА, Назиля МУРГУЗОВА
Πηγή: Buletinul Academiei de Ştiinţe a Moldovei: Ştiinţe Medicale, Vol 79, Iss 2 (2025)
Θεματικοί όροι: Противотуберкулезные препараты, побочные реакции, широкая лекарственная устойчивость, эффективность лечения, Medicine (General), R5-920, Internal medicine, RC31-1245, Other systems of medicine, RZ201-999, Public aspects of medicine, RA1-1270
Relation: https://bulmed.md/bulmed/article/view/3663; https://doaj.org/toc/1857-0011; https://doaj.org/article/c67b5528946b44ada0add8190ba898b4
-
3Academic Journal
Συγγραφείς: E. A. Borodulina, M. V. Uraksina, E. P. Еremenko, T. M. Larionova, A. N. Gerasimov, Е. А. Бородулина, М. В. Ураксина, Е. П. Еременко, Т. М. Ларионова, А. Н. Герасимов
Πηγή: Siberian Journal of Clinical and Experimental Medicine; Том 39, № 4 (2024); 100-106 ; Сибирский журнал клинической и экспериментальной медицины; Том 39, № 4 (2024); 100-106 ; 2713-265X ; 2713-2927
Θεματικοί όροι: противотуберкулезные препараты, mycobacterium tuberculosis, drug resistance, микобактерия туберкулеза, лекарственная устойчивость
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Relation: https://www.sibjcem.ru/jour/article/view/2467/1025; Singh N., Singh P.K., Singh U., Garg R., Jain A. Fluroquinolone drug resistance among MDR-TB patients increases the risk of unfavourable interim microbiological treatment outcome: An observational study. J. Glob. Antimicrob. Resist. 2021;24:40–44. DOI:10.1016/j.jgar.2020.11.011.; Singh V., Chibale K. Strategies to Combat Multi-Drug Resistance in Tuberculosis. Acc. Chem. Res. 2021;54(10):2361–2376. DOI:10.1021/acs.accounts.0c00878.; Chakaya J., Petersen E., Nantanda R., Mungai B.N., Migliori G.B., Amanullah F et al. The WHO Global Tuberculosis 2021 Report – not so good news and turning the tide back to End TB. Int. J. Infect. Dis. 2022;124 Suppl. 1:S26–S29. DOI:10.1016/j.ijid.2022.03.011.; Багиров М.А, Лепеха Л.Н., Садовникова С.С., Ерохина М.В., Карпина Н.Л., Красникова Е.В. Показания к хирургическому лечению туберкулем легких в современных условиях. Туберкулез и социально значимые заболевания. 2018;(2):43–81.; Яблонский П.К., Старшинова А.А., Назаренко М.М., Беляева Е.Н., Чижов А.Л., Алексеев Д.Ю. и др. Повышение эффективности лечения больных туберкулезом легких с применением новых схем терапии. Вестник современной клинической медицины. 2022:15(2):67–75. DOI:10.20969/VSKM.2022.15(2).67-75.; Espinosa-Pereiro J., Sánchez-Montalvá A., Aznar M.L., Espiau M. MDR tuberculosis treatment. Medicina. 2022;58(2):188. DOI:10.3390/medicina58020188.; Gao M., Gao J., Xie L., Wu G., Chen W., Chen Y. et al. Early outcome and safety of bedaquiline-containing regimens for treatment of MDR- and XDR-TB in China: a multicentre study. Clin. Microbiol. Infect. 2021;27(4):597–602. DOI:10.1016/j.cmi.2020.06.004.; Lecai J., Mijiti P., Chuangyue H., Mingzhen L., Qian G., Weiguo T. et al. Predictors and Trends of MDR/RR-TB in Shenzhen China: A Retrospective 2012– 2020 Period Analysis. Infect. Drug Resist. 2021;14:4481–4491. DOI:10.2147/IDR.S335329.; Быков И.А. Социально-демографические факторы, способствующие распространению туберкулеза с множественной лекарственной устойчивостью в Российской Федерации: систематический обзор. Туберкулез и болезни легких. 2022;100(6):59–65. DOI:10.21292/2075-1230-2022-100-6-59-65.; Бородулина Е.А., Рогожкин П.В., Олефиров А.С., Колесник А.В., Ураксина М.В. Лекарственная устойчивость микобактерий туберкулеза, полученных из операционного материала у больных туберкулезом легких. Медицинский альянс. 2021;9(1):6–10. DOI:10.36422/23076348-2021-9-1-6-10.; https://www.sibjcem.ru/jour/article/view/2467
-
4Academic Journal
Συγγραφείς: BACINSCHI, Nicolae, GUTSU, Ina, RAKOVSKAIA, Tatiana, SPÎNOSU, Galina
Πηγή: Bulletin of the Academy of Sciences of Moldova. Medical Sciences; Vol. 77 No. 3 (2023): Medical Sciences; 216-220 ; Buletinul Academiei de Științe a Moldovei. Științe medicale; Vol. 77 Nr. 3 (2023): Ştiinţe medicale; 216-220 ; Вестник Академии Наук Молдовы. Медицина; Том 77 № 3 (2023): Медицина; 216-220 ; 1857-0011
Θεματικοί όροι: туберкулез, противотуберкулезные препараты, взаимодействие, пища, tuberculoză, tuberculosis, antituberculosis drugs, interaction, food
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Relation: https://bulmed.md/bulmed/article/view/3599/3598; https://bulmed.md/bulmed/article/view/3599
-
5Academic Journal
Συγγραφείς: ȚURCAN, Lucia, PODGURSCHI, Lilia, RAKOVSKAIA, Tatiana, SAITOV, Artur
Πηγή: Bulletin of the Academy of Sciences of Moldova. Medical Sciences; Vol. 77 No. 3 (2023): Medical Sciences; 221-227 ; Buletinul Academiei de Științe a Moldovei. Științe medicale; Vol. 77 Nr. 3 (2023): Ştiinţe medicale; 221-227 ; Вестник Академии Наук Молдовы. Медицина; Том 77 № 3 (2023): Медицина; 221-227 ; 1857-0011
Θεματικοί όροι: противотуберкулезные препараты, побочные эффекты, гепатотоксичность, нейротоксичность, изониазид, рифампицин, линезолид, preparate antituberculoase, reacții adverse medicamentoase, epatotoxicitate, neurotoxicitate, isoniazida, rifampicina, linezolid, antituberculosis drugs, side effects, hepatotoxicity, neurotoxicity, isoniazid, rifampicin
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Relation: https://bulmed.md/bulmed/article/view/3600/3599; https://bulmed.md/bulmed/article/view/3600
-
6Academic Journal
Συγγραφείς: BACINSCHI, Nicolae, DONICA, Anna, TUDOR, Elena
Πηγή: Bulletin of the Academy of Sciences of Moldova. Medical Sciences; Vol. 77 No. 3 (2023): Medical Sciences; 209-215 ; Buletinul Academiei de Științe a Moldovei. Științe medicale; Vol. 77 Nr. 3 (2023): Ştiinţe medicale; 209-215 ; Вестник Академии Наук Молдовы. Медицина; Том 77 № 3 (2023): Медицина; 209-215 ; 1857-0011
Θεματικοί όροι: гематологические побочные реакции, свертываемость, противотуберкулезные препараты, reacții adverse hematologice, coagulabilitate, preparate antituberculoase, hematological adverse reactions, coagulability, antituberculosis preparations
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Relation: https://bulmed.md/bulmed/article/view/3598/3597; https://bulmed.md/bulmed/article/view/3598
-
7Academic Journal
Συγγραφείς: CORLOTEANU, Andrei
Πηγή: Bulletin of the Academy of Sciences of Moldova. Medical Sciences; Vol. 77 No. 3 (2023): Medical Sciences; 78-84 ; Buletinul Academiei de Științe a Moldovei. Științe medicale; Vol. 77 Nr. 3 (2023): Ştiinţe medicale; 78-84 ; Вестник Академии Наук Молдовы. Медицина; Том 77 № 3 (2023): Медицина; 78-84 ; 1857-0011
Θεματικοί όροι: туберкулез, бытовой очаг, идекс случай, вторичный случай туберкулеза, противотуберкулезные препараты, лечение, tuberculoză, focar intradomiciliar, caz index, caz secundar de tuberculoză, preparate antituberculoase, tratament, tuberculosis, domestic outbreak, index case, secondary case of tuberculosis, antituberculosis preparations, treatment
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Relation: https://bulmed.md/bulmed/article/view/3548/3551; https://bulmed.md/bulmed/article/view/3548
-
8Academic Journal
Συγγραφείς: O. D. Baronova, V. A. Aksenova, N. I. Klevno, S. V. Smerdin, О. Д. Баронова, В. А. Аксенова, Н. И. Клевно, С. В. Смердин
Πηγή: Tuberculosis and Lung Diseases; Том 101, № 6 (2023); 66-72 ; Туберкулез и болезни легких; Том 101, № 6 (2023); 66-72 ; 2542-1506 ; 2075-1230
Θεματικοί όροι: группы риска, tuberculosis infection, fixed-dose combinations of anti-tuberculosis drugs, preventive treatment, risk groups, туберкулезная инфекция, комбинированные противотуберкулезные препараты, превентивное лечение
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Relation: https://www.tibl-journal.com/jour/article/view/1781/1790; Аксенова В.А., Клевно Н.И., Казаков А.В., Гордина А.В., Фатыхова Р.Х. Превентивная химиотерапия у детей из очагов туберкулеза с множественной лекарственной устойчивостью возбудителя // Туберкулез и болезни легких. – 2019. – Т. 97, № 6. – С. 36–43.; Зуев А.П., Мохирева Л.В., Юрченко Н.И., Мишин В.Ю., Стерликов В.А., Русских О.Е. Фтизоэтам В6 и фтизопирам В6 при лечении впервые выявленных больных туберкулезом легких с выделением микобактерий туберкулеза // Туберкулез и болезни легких. – 2012. – № 5. – С. 44–52.; Клевно Н.И., Аксенова В.А., Пахлавонова А.Д., Казаков А.В. Комбинированные противотуберкулезные препараты как мировая тенденция химиотерапии больных туберкулезом детей //Туберкулез и социально значимые заболевания. – 2017. – № 4. – С. 74–79.; Куликов А.Ю., Сороковиков И.В., Мохирева Л.В., Мохирев A.B. Фармакоэкономическое исследование применения комбинированного противотуберкулезного препарата с фиксированными дозами Фтизоэтам В6 при комплексном лечении больных туберкулезом // Туберкулез и болезни легких. – 2012. – № 10. – С. 41-46.; Многоцентровое наблюдательное неинтервенционное исследование применения комбинированных противотуберкулезных препаратов при лечении больных туберкулезом легких / Т. Е. Тюлькова, Л. В. Мохирева, А. А. Старшинова, О. Д. Баронова [и др.] // Туберкулез и болезни легких. – 2020. – Т. 98, № 8. – С. 46–57.; Мохирева Л.В., Хоеева E.H., Каркач О.О., Мохирев A.B., Джура П.И., Морозова Т.Е. Фармакоэпидемиологическое исследование воспроизводимых комбинированных противотуберкулезных препаратов и приверженности к ним врачей-фтизиатров в широкой клинической практике // Биомедицина. – 2011. – № 3. – С. 141–148.; Овчинникова Ю.Э., Старшинова А.А., Довгалюк И.Ф. Эффективность применения комбинированного препарата изониазид 150 мг + пиразинамид 375 мг + рифампицин 150 мг в терапии туберкулеза органов дыхания у детей // Туберкулёз и болезни лёгких. – 2017. – Т.95, № 7. – С. 48–53.; Пахлавонова А.Д., Казаков А.В., Аксенова В.А. Особенности фармакокинетики рифампицина и изониазида, входящих в состав комбинированного препарата для лечения детей с туберкулезом органов дыхания // Современные проблемы науки и образования. – 2020. – № 6. – С. 119.; Практический справочник ВОЗ по туберкулезу. Модуль 1. Профилактика: профилактическое лечение туберкулеза. Женева: Всемирная организация здравоохранения; 2021 URL: https://apps.who.int/iris/bitstream/handle/10665/331525/9789240032743-rus.pdf?sequence=23&isAllowed=y (Дата обращения: 12.09.2020); Приказ Министерства здравоохранения РФ от 29.12.2014 № 951 «Об утверждении методических рекомендаций по совершенствованию диагностики и лечения туберкулеза органов дыхания»: [сайт Консультант-Плюс]. – URL: http://www.consultant.ru/document/cons_doc_LAW (дата обращения: 13.05.2017). – Текст: электронный.; Старшинова А.А. Комбинированные противотуберкулезные препараты: отечественный и международный опыт применения //Эпидемиология и инфекционные заболевания. Актуальные вопросы. – 2017. – № 6. – С. 69-77.; Федеральные клинические рекомендации по диагностике и лечению латентной туберкулезной инфекции у детей. – Москва: РООИ «Здоровье человека», 2015. – 36 с.; Active screening at entry for tuberculosis among new immigrants: a systematic review and meta-analysis / S. Arshad, L. Bavan, K. Gajari [et al.] // Eur. Respir. J. – 2010. – Vol. 35. – P. 1336–1345.; Epidemiological impact of mass tuberculosis screening: a 2-year follow-up after a national prevalence survey / K. Okada, I. Onozaki, N. Yamada [et al.] // Int. J. Tuberc. Lung Dis. – 2012. – Vol. 16. – P. 1619–1624.; Factors associated with treatment adherence in a randomised trial of latent tuberculosis infection treatment / А. Trajman, R. Long, D. Zylberberg [et al.] // Int. J. Tuberc. Lung Dis. – 2010. – Vol. 14, № 5. – P. 551–559.; Monedero I., Caminero I.A. Evidence for promoting fixed-dose combination drugs in tuberculosis treatment and control: a review. Int. J. Tuberc. Lung Dis. – 2011. – Vol. 15, № 4. – P. 9–433.; Schwoebel V, Koura KG, Adjobimey M, et al. Tuberculosis contact investigation and short-course preventive therapy among young children in Africa. Int. J. Tuberc. Lung Dis. – 2020. – Vol. 24, № 4. – P. 452–460.
-
9Academic Journal
Συγγραφείς: A. V. Kukurika, E. I. Veselova, A. B. Peregudova, А. В. Кукурика, Е. И. Веселова, А. Б. Перегудова
Πηγή: Tuberculosis and Lung Diseases; Том 101, № 4 (2023); 87-93 ; Туберкулез и болезни легких; Том 101, № 4 (2023); 87-93 ; 2542-1506 ; 2075-1230
Θεματικοί όροι: мутации, mycobacterium tuberculosis, anti-tuberculosis drugs, mutations, микобактерия туберкулеза, противотуберкулезные препараты
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Relation: https://www.tibl-journal.com/jour/article/view/1738/1747; Васильева И. А., Самойлова А. Г., Зимина В. Н., Ловачева О. В., Абрамченко А.В. Химиотерапия туберкулеза в России - история продолжается // Туберкулёз и болезни лёгких. - 2023. - Т. 101, № 2. - С. 8-12. https://doi.org/10.58838/2075-1230-2023-101-2-8-12; Гайда А. И., Абрамченко А. В., Романова М. И., Тоичкина Т. В., Бурыхин В. С., Борисов С. Е., Филиппов А. В., Кузнецова Т. А., Перхин Д. В., Свешникова О. М., Лехляйдер М. В., Пантелеев А. М., Тоинова С. В., Масленникова Т. И., Галахова Д. О., Популяшина Л. Н., Саенко Г. И., Анисимова Е. С., Свичарская А. К., Сосова Н. А., Ловачева О. В., Марьяндышев А. О., Самойлова А. Г. Обоснование длительности химиотерапии больных туберкулезом с множественной и преширокой лекарственной устойчивостью возбудителя в Российской Федерации // Туберкулёз и болезни лёгких. - 2022. Т. 100, № 12. - С. 44-53. https://doi.org/10.21292/2075-1230-2022-100-12-44-53; Almeida D., Ioerger T., Tyagi S. et al. Mutations in pepQ confer low-level resistance to bedaquiline and clofazimine in Mycobacterium tuberculosis // Antimicrob Agents Chemother. - 2016. - № 60. - Р. 4590-9.; Andries K., Villellas C., Coeck N., Thys K., Gevers T., Vranckx L., Andries K., Villellas C., Coeck N., Thys K., Gevers T., Vranckx L. et al. Acquired resistance of Mycobacterium tuberculosis to bedaquiline // PLoS One. - 2014. - № 9. Р. e102135.; Battaglia S., Spitaleri A., Cabibbe A. M., Meehan C. J., Utpatel C., Ismail N., Tahseen S., Skrahina A., Alikhanova N., Mostofa Kamal S.M., Barbova A., Niemann S., Groenheit R., Dean A. S., Zignol M., Rigouts L., Cirillo D. M. Characterization of Genomic Variants Associated with Resistance to Bedaquiline and Delamanid in Naive Mycobacterium tuberculosis Clinical Strains. J. Clin. Microbiol., 2020, vol. 58, no. 11, pp. e01304-20.; Beckert P., Hillemann D., Kohl T. A. et al. RplC T460C identified as a dominant mutation in linezolid-resistantMycobacteriumtuberculosis strains. Antimicrob. Agents Chemother., 2012, no. 56, pp. 2743-5.; Castro R. A. D., Borrell S., Gagneux S. The within-host evolution of antimicrobial resistance in Mycobacterium tuberculosis. FEMS Microbiology Reviews, 2020, fuaa 071, pp. 1-27.; Catalogue of mutations in Mycobacterium tuberculosis complex and their association with drug resistance. Geneva, World Health Organization, 2021.; De Vos M., Ley S., Derendinger B., Dippenaar A., Grobbelaar M., Reuter A., et al. Emergence of bedaquiline resistance after completion of bedaquiline-based drug resistant TB treatment: a case study from South Africa. Russ. J. Infect. Immun., 2018, no. 8, pp. 566.; Dookie N., Rambaran S., Padayatchi N., Mahomed S., Naidoo K. Evolution of drug resistance in Mycobacterium tuberculosis: a review on the molecular determinants of resistance and implications for personalized care. J. Antimicrob. Chemother., 2018, vol. 73, pp. 1138-1151.; Feuerriegel S., Köser C. U., Bau D., Rusch-Gerdes S., Summers D. K., Archer J. A., Marti-Renom M. A., Niemann S. Impact of Fgd1 and ddn diversity in Mycobacterium tuberculosis complex on in vitro susceptibility to PA-824. Antimicrob. Agents Chemother., 2011, no. 55, pp. 5718-5722.; Ghajavand H., Kamakoli M. K., Khanipour S., Dizaji P. S., Masoumi M., Jamnani R. F., Fateh A., Siadat S. D., Vaziri F. High Prevalence of Bedaquiline Resistance in Treatment-Naive Tuberculosis Patients and Verapamil Effectiveness. Antimicrob. Agents Chemother., 2019, no. 63, pp. e02530-18.; Ghodousi A., Rizvi A. H., Baloch A. Q., Ghafoor A., Khanzada F. M., Qadir M., Borroni E., Trovato A., Tahseen S., Cirillo D. M. Acquisition of Cross-Resistance to Bedaquiline and Clofazimine following Treatment for Tuberculosis in Pakistan. Antimicrobial. Agents Chemother., 2019, no. 63, pp. e00915-19.; Hartkoorn R. C., Uplekar S., Cole S. T. Cross-resistance between clofazimine and bedaquiline through upregulation of MmpL5 in Mycobacterium tuberculosis. Antimicrob. Agents Chemother., 2014, no. 58, pp. 2979-81.; Haver H. L., Chua A., Ghode P. et al. Mutations in genes for the F420 biosynthetic pathway and a nitroreductase enzyme are the primary resistance determinants in spontaneous in vitro-selected PA-824-resistant mutants of Mycobacterium tuberculosis. Antimicrob. Agents Chemother., 2015, no. 59, pp. 5316-23.; Hoffmann H., Kohl T. A., Hofmann-Thiel S., et al. Delamanid and bedaquiline resistance in Mycobacterium tuberculosis ancestral Beijing genotype causing extensively drug-resistant tuberculosis in a Tibetan refugee. Am. J. Respir. Crit. Care Med., 2016, no. 193, pp. 337-40.; Hu M., Fu L., Wang B., Xu J., Guo S., Zhao J., Li Y., Chen X., Lu Y. Genetic and Virulence Characteristics of Linezolid and Pretomanid Dual Drug-Resistant Strains Induced from Mycobacterium tuberculosis in vitro. Infect. Drug Resist., 2020, no. 13, pp. 1751-176.; Ismail N., Ismail N. A., Omar S. V., Peters R. P. H. Study of Stepwise Acquisition of of rv0678 and atpE Mutations Conferring Bedaquiline Resistance. Antimicrob. Agents Chemother., 2019, no. 63, pp. e00292-19.; Ismail N., Omar S. V., Ismail N. A., Peters R. P. H. Collated data of mutation frequencies and associated genetic variants of bedaquiline, clofazimine and linezolid resistance in Mycobacterium tuberculosis. Data in Brief, 2018, vol. 20, pp. 1975-1983.; Ismail N., Omar S. V., Ismail N. A., Peters R. P. H. In vitro approaches for generation of Mycobacterium tuberculosis mutants resistant to bedaquiline, clofazimine or linezolid and identification of associated genetic variants. J. Microbiol. Methods, 2018, no. 153, pp. 1-9.; Ismail N., Omar S. V., Joseph L., Govender N., Blows L., Ismail F., Koornhof H., Dreyer A. W., Kaniga K., Ndjeka N. Defining bedaquiline susceptibility, resistance, cross-resistance and associated genetic determinants: a retrospective Cohort study. EBioMedicine, 2018, no. 28, pp. 136-142.; Ismail N., Peters R. P. H., Ismail N. A., et al. Clofazimine exposure in vitro selects efflux pump mutants and bedaquiline resistance. Antimicrob. Agents Chemother., 2019, no. 63, pp. e02141-18.; Kabahita J. M., Kabugo J., Kakooza F., Adam I., Guido O., Byabajungu H., Namutebi J., Namaganda M. M., Lutaaya P., Otim J., Kakembo F. E., Kanyerezi S., Nabisubi P., Sserwadda I., Kasule G.W., Nakato H., Musisi K., Oola D., Joloba M. L., Mboowa G. First report of whole-genome analysis of an extensively drug-resistant Mycobacterium tuberculosis clinical isolate with bedaquiline, linezolid and clofazimine resistance from Uganda // Antimicrob. Resist. Infect. Control. - 2022. - Vol. 11, № 1. - Р. 68. https://doi.org/10.1186/s13756-022-01101-2; Kadura S., King N., Nakhoul M., Zhu H., Theron G., Köser C. U., Farhat M. Systematic review of mutations associated with resistance to the new and repurposed Mycobacterium tuberculosis drugs bedaquiline, clofazimine, linezolid, delamanid and pretomanid // J. Antimicrob. Chemother. - 2020. - Vol. 75. - P. 2031-2043.; Kaniga K., Hasan R., Jou R., Vasiliauskienė E., Chuchottaworn C., Ismail N., Metchock B., Miliauskas S., Viet Nhung N., Rodrigues C., Shin S., Simsek H., Smithtikarn S., Ngoc ALT, Boonyasopun J., Kazi M., Kim S., Kamolwat P., Musteikiene G., Sacopon C. A., Tahseen S., Vasiliauskaite L., Wu M. H., Vally Omar S. Bedaquiline Drug Resistance Emergence Assessment in Multidrug-Resistant Tuberculosis (MDR-TB): a 5-Year Prospective In Vitro Surveillance Study of Bedaquiline and Other Second-Line Drug Susceptibility Testing in MDR-TB Isolates // J. Clin. Microbiol. - 2022. - Vol. 60. - № 1. - Р. e0291920. https://doi.org/10.1128/JCM.02919-20; Karmakar M., Rodrigues C. H. M., Holt K. E., Dunstan S. J., Denholm J., Ascher D. B. Empirical ways to identify novel Bedaquiline resistance mutations in AtpE // PLoS ONE. - 2019. - № 14. - Р. e0217169.; Köser C. U., Maurer F. P., Kranzer K. ‘Those who cannot remember the past are condemned to repeat it': drug-susceptibility testing for bedaquiline and delamanid // Int. J. Infect. Dis. - 2019. - 80S. - S32-S35.; Lee B. M., Harold L. K., Almeida D. V., Afriat-Jurnou L., Aung H. L., Forde B. M., Hards K., Pidot S. J., Ahmed F. H., Mohamed A. E., Taylor M. C., West N. P., Stinear T. P., Greening C., Beatson S. A., Nuermberger E. L., Cook G. M., Jackson C. J. Predicting nitroimidazole antibiotic resistance mutations in Mycobacterium tuberculosis with protein engineering // PLoS Pathog. - 2020. - № 16. - Р. e1008287.; Liu Y., Gao J., Du J., Shu W., Wang L., Wang Yu., Xue Z. , Li L., Xu S., Pang Yu. Acquisition of clofazimine resistance following bedaquiline treatment for multidrug-resistant tuberculosis // Int. J. of Inf. Diseases. - 2021. - Vol. 102 - P. 392-3.; Makafe G. G., Cao Y., Tan Y. et al. Role of the Cys154Arg substitution in ribosomal protein L3 in oxazolidinone resistance in Mycobacterium tuberculosis // Antimicrob. Agents. Chemother. - 2016. - № 60. - Р. 3202-6.; Manjunatha U. H., Boshoff H., Dowd C. S. et al. Identification of a nitroimidazo-oxazine-specific protein involved in PA-824 resistance in Mycobacteriumtuberculosis // Proc. Natl. Acad. Sci USA. - 2006. - № 103. - Р. 431-6.; Mansjö M., Karlsson Lindsjö O., Grönfors Seeth C., Groenheit R., Werngren J. The ddn Trp20Stop Mutation and Its Association with Lineage 4.5 and Resistance to Delamanid and Pretomanid in Mycobacterium tuberculosis // Antimicrob. Agents. Chemother. - 2022. - Vol. 66, № 12. - Р. e0102622. https://doi.org/10.1128/aac.01026-22; Martinez E., Hennessy D., Jelfs P., Crighton T., Chen S. C. A., Sintchenko V. Mutations associated with in vitro resistance to bedaquiline in Mycobacterium tuberculosis isolates in Australia // Tuberculosis. - 2018. - № 111. - Р. 31-34.; McNeil M. B., Dennison D. D., Shelton C. D. et al. In vitro isolation and characterization of oxazolidinone-resistant Mycobacterium tuberculosis // Antimicrob. Agents. Chemother. - 2017. - № 61. - Р. e01296-17.; Merker M., Kohl T. A., Barilar I. et al. Phylogenetically informative mutations in genes implicated in antibiotic resistance in Mycobacterium tuberculosis complex // Genome Med. - 2020. - № 12. - Р. 27.; Mokrousov I., Akhmedova G., Polev D., Molchanov V., Vyazovaya A. Acquisition of bedaquiline resistance by extensively drug-resistant Mycobacterium tuberculosis strain of Central Asian Outbreak clade // Clinical Microbiology and Infection. - 2019. - Vol. 25. - P. 1295-1297.; Omar S. V., Joseph L., Said H. M. et al. Whole genome sequencing for drug resistance determination in Mycobacterium tuberculosis // Afr. J. Lab. Med. - 2019. - Vol. 8, № 1. - P. a801.; Pang Y., Zong Z., Huo F. et al. In vitro drug susceptibility of bedaquiline, delamanid, linezolid, clofazimine, moxifloxacin, and gatifloxacin against extensively drug-resistant tuberculosis in Beijing, China // Antimicrob. Agents. Chemother. - 2017. - № 61. - Р. e00900-17.; Park S., Jung J., Kim J., Han S. B., Ryoo S. Investigation of Clofazimine Resistance and Genetic Mutations in Drug-Resistant Mycobacterium tuberculosis Isolates // J. Clin. Med. - 2022. - Vol. 11, № 7. - Р. 1927. https://doi.org/10.3390/jcm11071927; Ramirez N., Vargas Q., Diaz G. Whole Genome Sequencing for the Analysis of Drug Resistant Strains of Mycobacterium tuberculosis: A Systematic Review for Bedaquiline and Delamanid // Antibiotics. - 2020. - Vol. 9. - P. 133.; Reichmuth M. L., Homke R., Zurcher K., Sander P., Avihingsanon A., Collantes J., Loiseau C., Borrell S., Reinhard M., Wilkinson R. J., Yotebieng M., Fenner L., Bottger E. C., Gagneux S., Egger M., Keller P. M., on behalf of the International epidemiology Databases to Evaluate AIDS (IeDEA). Natural polymorphisms in Mycobacterium tuberculosis conferring resistance to delamanid in drugnaive patients // Antimicrob. Agents. Chemother. - 2020. - № 64.- Р. 00513-20.; Richter E., Rüsch-Gerdes S., Hillemann D. First linezolid-resistant clinical isolates of Mycobacterium tuberculosis // Antimicrob. Agents. Chemother. - 2007. - № 51. - Р. 1534-6.; Rifat D., Li S-Y., Ioerger T, Lanoix J.-P., Lee J., Bashiri G., Sacchettini J., Nuermberger E. Mutations in Rv2983 as a novel determinant of resistance to nitroimidazole drugs in Mycobacterium tuberculosis. - bioRxiv, 2018.; Rifat D., Li S. Y., Ioerger T., Shah K., Lanoix J. P., Lee J., Bashiri G., Sacchettini J., Nuermberger E. Mutations in fbiD (Rv2983) as a Novel Determinant of Resistance to Pretomanid and Delamanid in Mycobacterium tuberculosis // Antimicrob. Agents. Chemother. - 2020. - Vol. 65, № 1. - P. e01948-20.; Schena E., Nedialkova L., Borroni E., Battaglia S., Cabibbe A. M., Niemann S., et al. Delamanid susceptibility testing of Mycobacterium tuberculosis using the resazurin microtiter assay and the BACTECTM MGITTM 960 system // J. Antimicrob. Chemother. - 2016. - № 71. - Р. 1532-9.; Somoskovi A., Bruderer V., Homke R. et al. A mutation associated with clofazimine and bedaquiline cross-resistance in MDR-TB following bedaquiline treatment // Eur. Respir. J. - 2015. - № 45. - Р. 554-7.; Swain S. S., Sharma D., Hussain T., Pati S. Molecular mechanisms of underlying genetic factors and associated mutations for drug resistance in Mycobacterium tuberculosis // Emerging Microbes & Infections. - 2020. - Vol. 9, № 1. - P. 1651-1663.; Tiberi S., Cabibbe A. M., Tomlins J., Cirillo D. M., Migliori G. B. Bedaquiline Phenotypic and Genotypic Susceptibility Testing,Work in Progress! // EBioMedicine. - 2018. - № 29. - Р. 11-12.; Veziris N., Bernard C., Guglielmetti L. et al. Rapid emergence of Mycobacterium tuberculosis bedaquiline resistance: lessons to avoid repeating past errors // Eur. Respir. J. - 2017. - № 49. - Р. 1601719.; Villellas C., Coeck N., Meehan C. J. et al. Unexpected high prevalence of resistance-associated Rv0678 variants in MDR-TB patients without documented prior use of clofazimine or bedaquiline // J. Antimicrob. Chemother. - 2017. - № 72. - Р. 684-90.; Walker T. M., Miotto P., Koser C. U., Fowler P. W., Knaggs J., Iqbal Z., Hunt M., Chindelevitch L., Farhat M., Cirillo D. M., Comas I., Posey J., Omar S. V., Peto T. E., Suresh A., Uplekar S., Laurent S., Colman R. E., Nathanson C. M., Zignol M., Walker A. S.; CRyPTIC Consortium; Seq&Treat Consortium; Crook D. W., Ismail N., Rodwell T. C. The 2021 WHO catalogue of Mycobacterium tuberculosis complex mutations associated with drug resistance: A genotypic analysis // Lancet Microbe. -2022. - Vol. 3, № 4. - Р. e265-e273. https://doi.org/10.1016/S2666-5247(21)00301-3; Xu J., Wang B., Hu M. et al. Primary clofazimine and bedaquiline resistance among isolates from patients with multidrug-resistant tuberculosis // Antimicrob. Agents. Chemother. - 2017. - 61. - Р. e00239-17.; Yang J. S., Kim K. J., Choi H., Lee S. H. Delamanid, Bedaquiline, and Linezolid Minimum Inhibitory Concentration Distributions and Resistance-related Gene Mutations in Multidrug-resistant and Extensively Drug-resistant Tuberculosis in Korea // Ann. Lab. Med. - 2018. - Vol. 38. - P. 563-568.; Zhang S., Chen J., Cui P. et al. Identification of novel mutations associated with clofazimine resistance in Mycobacterium tuberculosis // J. Antimicrob. Chemother. - 2015. - № 70. - Р. 2507-10.; Zhang S., Chen J., Cui P. et al. Mycobacterium tuberculosis mutations associated with reduced susceptibility to linezolid // Antimicrob. Agents. Chemother. - 2016. - № 60. - Р. 2542-4.; Zhang Z., Pang Y., Wang Y. et al. Beijing genotype of Mycobacterium tuberculosis is significantly associated with linezolid resistance in multidrugresistant and extensively drug-resistant tuberculosis in China // Int. J. Antimicrob. Agents. - 2014. - № 43. - Р. 231-5.; Zimenkov D. V., Nosova E. Y., Kulagina E. V. et al. Examination of bedaquiline and linezolid-resistant Mycobacterium tuberculosis isolates from the Moscow region // J. Antimicrob. Chemother. - 2017. - № 72. - Р. 1901-6.
-
10Academic Journal
Συγγραφείς: O. G. Komissarova, R. Yu. Abdullaev, S. V. Aleshina, О. Г. Комиссарова, Р. Ю. Абдуллаев, С. В. Алёшина
Πηγή: Tuberculosis and Lung Diseases; Том 101, № 5 (2023); 31-35 ; Туберкулез и болезни легких; Том 101, № 5 (2023); 31-35 ; 2542-1506 ; 2075-1230
Θεματικοί όροι: химиотерапия, diabetes mellitus, complications of diabetes mellitus, adverse reactions to anti-tuberculosis drugs, chemotherapy, сахарный диабет, осложнения сахарного диабета, нежелательные реакции на противотуберкулезные препараты
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Relation: https://www.tibl-journal.com/jour/article/view/1765/1774; Комиссарова О.Г., Абдуллаев Р.Ю., Михайловский А.М. Сахарный диабет как фактор риска развития туберкулеза: патофизиологические аспекты //Медицинский альянс. – 2017. – №3. – С.28-34.; Комиссарова О.Г., Абдуллаев Р.Ю., Коняева О.О., Бережная О.О., Михайловский А.М. Распространенность, клинические проявления и эффективность лечения туберкулеза у больных сахарным диабетом // Врач. – 2017. – №2. – C.24-28.; Global tuberculosis report 2022. Geneva: World Health Organization; 2022. Licence: CC BY-NC-SA 3.0 IGO. Available at: https://www.who.int/teams/global-tuberculosis-programme/tb-reports/global-tuberculosis-report-2022 [Accessed Sep 26, 2023]; IDF Diabetes Atlas, 9th edn. Brussels: International Diabetes Federation (IDF); 2019. Available at: https://www.diabetesatlas.org [Accessed Sep 20, 2023].; Noubiap J.J., Nansseu J.R., Nyaga U.F., Nkeck J.R., Endomba F.T., Kaze A.D., et al. Global prevalence of diabetes in active tuberculosis: a systematic review and meta-analysis of data from 2.3 million patients with tuberculosis // Lancet Glob Health. – 2019. – № 7. – Р.e448–60 Available at: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/30819531 [Accessed Sep 16, 2023].; Workneh M.H., Bjune G.A., Yimer S.A. Prevalence and associated factors of tuberculosis and diabetes mellitus comorbidity: A systematic review // PLoS One – 2017. – Vol.12, № 4. Р. 0175925. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0175925
-
11Academic Journal
Συγγραφείς: Bryukhacheva, E. O., Kholodov, A. A., Pyanzova, T. V., Брюхачева, Е. О., Холодов, А. А., Пьянзова, Т. В.
Θεματικοί όροι: ADVERSE REACTIONS, TUBERCULOSIS, CHILDREN AND ADOLESCENTS, ANTI-TB DRUGS, ПОБОЧНЫЕ РЕАКЦИИ, ТУБЕРКУЛЕЗ, ДЕТИ И ПОДРОСТКИ, ПРОТИВОТУБЕРКУЛЕЗНЫЕ ПРЕПАРАТЫ
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Relation: Уральский медицинский журнал. 2022. T. 21, № 6.; http://elib.usma.ru/handle/usma/16162
Διαθεσιμότητα: http://elib.usma.ru/handle/usma/16162
-
12Academic Journal
Συγγραφείς: T. E. Tyulkova, Т. Е. Тюлькова
Πηγή: Tuberculosis and Lung Diseases; Том 100, № 6 (2022); 66-72 ; Туберкулез и болезни легких; Том 100, № 6 (2022); 66-72 ; 2542-1506 ; 2075-1230
Θεματικοί όροι: нервная система, vitamin B6, tuberculosis, therapy, anti-tuberculosis drugs, isonicotinic acid hydrazide, nervous system, витамин В6, туберкулез, терапия, противотуберкулезные препараты, гидразид изоникотиновой кислоты
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Relation: https://www.tibl-journal.com/jour/article/view/1653/1662; Аюпов Р. Х., Акберова Н. И., Тарасов Д. С. Докинг производных пиридоксина в активном центре холинэстераз // Ученые записки Казанского университета. Серия Естественные науки. – 2012. – Т. 153. – кн. 3. – С. 107-118.; Баласанянц Г. С., Сухинин Д. С. Побочные действия противотуберкулезных препаратов и методы их устранения. ‒ Изд. 3-е дополненное, СПб. ‒ С. 64.; Березовский В. М. Химия витаминов. ‒ Изд. 2-е, М.: Пищевая промышленность, 1973. ‒ 632 с.; Громова О. А., Торшин И. Ю., Калачева А. Г., Семенов В. А., Рудаков К. В. Мекси В 6 как результат фортификации этилметилгидроксипиридинасукцината магнием и пиридоксином: протеомные эффекты // Neurology, neuropsychiatry, psychosomatics. –2016. – Т. 8, № 4. – С. 38–44.; Громова О. А., Торшин И. Ю., Кошелева Н. Г. Молекулярные синергисты йода: новые подходы к эффективной профилактике и терапии йод-дефицитных заболеваний у беременных // РМЖ. – 2011. – Т. 19, № 1. – С. 51-58.; Громова О. А., Торшин И. Ю., Назаренко А. Г., Калачева А. Г. Дефицит магния и пиридоксина как фактор риска развития ишемической болезни сердца // Кардиология. – 2016. – Т. 56, № 10. – С. 55-62.; Иванов А. К., Сакра А. А., Нечаев В. В., Назаров В. Ю., Шевырева Е. В. Сочетанная инфекция: вирусные гепатиты и туберкулез // ВИЧ-инфекция и иммуносупрессия. ‒ 2013. ‒ Т. 5 (31). ‒ С. 86-89.; Иванова Д. А. Нежелательные побочные реакции при лечении больных туберкулезом // Туб. и болезни легких. ‒ 2011. ‒ № 6. ‒ С. 60-69.; Иванова Д. А., Борисов С. Е. Спектр и факторы риска нежелательных побочных реакций при лечении впервые выявленных больных туберкулезом // Туб. и болезни легких. – 2017. – Т. 95, № 6. – С. 22-29.; Иванова Д. А., Борисов С. Е., Рыжов А. М., Иванушкина Т. Н. Частота и характер лекарственно-индуцированного поражения печени при лечении впервые выявленных больных туберкулезом // Туб. и болезни легких. ‒ 2013. ‒ № 11. ‒ С. 25-31.; Компанцева Е. В., Овчаренко Л. П., Халата А. В., Кулешова С. А., Благоразумная Н. В., Дуккардт Л. Н., Граханцева Л. М. Фармакокинетическая и общетоксическая оценка гранул изониазида и пиридоксина гидрохлорида // Экология человека. – 2007. – № 02. – С. 7-10.; Костюк С. С., Бусенко А. Т. Влияние пиридоксина на электролиты крови кроликов в условиях гамма-облучения // Ученые Записки УО ВГАВМ. 2014. – Т. 50, вып. 2. – ч. 1. – С. 158-161.; Маслаускене Т. П., Николаева С. В. Побочное действие противотуберкулезных препаратов // Сибирский медицинский журнал (Иркутск). – 2005. – Т. 52, № 3. – С. 13-19.; Методические рекомендации Минздрава РФ от 19 марта 2004 г. № 2004/46 «Непрерывное совершенствование лечебно-диагностического процесса в условиях индустриальной модели управления качеством медицинской помощи в стационаре».; Можокина Г. Н., Елистратова Н. А., Способ снижения нейротоксичности изониазида в эксперименте. Патент на изобретение 15.12.14, номер заявки: 2014150465/15.; Новиков В. И., Новиков К. Ю. Бенфотиамин и пиридоксин: новые горизонты в терапии осложнений сахарного диабета // РМЖ. – 2013. – № 5. – С. 290-294.; Павлов В. А., Котомцев В. В., Медвинский И. Д., Кравченко М. А., Сабадаш Е. В. Роль особенностей метаболизма железа и серы в межвидовой устойчивости к туберкулезу // Международный журнал экспериментального образования. – 2016. – № 3-2. – С. 264-268.; Павлов В. А., Котомцев В. В., Сабадаш Е. В., Медвинский И. Д. Роль особенностей метаболизма соединительной ткани в межвидовой устойчивости к туберкулезу // Международный журнал прикладных и фундаментальных исследований. – 2017. – № 9. – С. 105-109.; Павлов В. А., Сабадаш Е. В. Аминокислоты в механизмах защиты при туберкулезе // Вестник уральской медицинской академической науки. – 2012. – № 4 (41). – С. 143.; Письмо Минздрава РФ от 28 декабря 2000 г. № 2510/14329-32 «О мерах по усилению контроля за назначением лекарств». 21. Северин Е. С. Биохимия, Учебник для вузов. ‒ М.: Гэотар -Медиз, 2007. ‒ 35 с.; Соколова Г. Б., Тюляев И. И., Зуев А. П., Можокина Г. Н., Елистратова Н. А. Новые отечественные комбинированные противотуберкулезные препараты. Тезисы докладов XI Российского национального конгресса «Человек и Лекарство». – 19-23 апреля 2004. – С. 837.; Строев Е. А. Биологическая химия. – М., 1986. – 479 с., ил. 24. Усов В. И., Юшков Г. Г., Гущин А. А., Гущин А. С. Токсикологическая оценка изониазида и изовита в условиях эксперимента // Бюллетень ВСНЦ СО РАМН. – 2010. – № 5 (75). – С. 205-208.; Челяпина М. В, Шарова Е. В., Зайцев О. С., Коротаева М. В., Лифшиц М. Ю. Сравнительный анализ влияния ипидакрина и пиридоксина на функциональную активность мозга здорового человека (двойное слепое исследование на двух испытуемых) // Асимметрия. – 2008. – Т. 2, № 1. – С. 55-62.; Яремко О. В. Обмен белков у телят молочного периода выращивания за действия пиридоксина гидрохлорида // Науковий вiсник ЛНУВМБТ iменi С.З. Гжицького. – 2015. ‒ Т. 17, № 1 (61) часть 3. – С. 299-304.; Almeida M. R., Venancio V. P., Aissa A. F., Darin J. D., Pires Bianchi M. L., Antunes L. M. Effects of maternal vitamin B 6deficiency and over-supplementation on DNA damage and oxidative stress in rat dams and their offspring // Food Chem. Toxicol. – 2015. – Jun. 80. – Р. 201-205. doi:10.1016/j.fct.2015.03.015. Epub 2015 Mar 25.; Bacharach R., Lowden M., Ahmed A. Pyridoxine toxicity small fiber neuropathy with dysautonomia: a case report // J. Clin. Neuromuscull. Dis. – 2017. – Vol. 19, № 1. – Р. 43-46. doi:10.1097/CND.0000000000000172.; Badrinath M., John S. Isoniazid Toxicity. 2021 Jul 19. In: StatPearls [Internet]. Treasure Island (FL): StatPearls Publishing; 2022 Jan. 30. Bird R. P. The Emerging role of vitamin B6 in inflammation and carcinogenesis // Adv. Food Nutr. Res. ‒ 2018. – № 83. – Р. 151-194. doi:10.1016/bs.afnr.2017.11.004. Epub 2018 Feb 1.; Brewer C. T., Yang L., Edwards A., Lu Y., Low J., Wu J., Lee R. E., Chen T. The isoniazid metabolites hydrazine and pyridoxal isonicotinoyl hydrazone modulate heme biosynthesis // Toxic. Sci. – 2019. ‒ Vol. 168, № 1. ‒ Р. 209-224.; DeRitis F., Coltori M., Guishi G. Serum transaminase activities in liver disease // Lancet. – 1972. – Vol. 1. – P. 685.; Echaniz-Laguna A., Mourot-Cottet R., Noel E., Chanson J. B. Regressive pyridoxine-induced sensory neuronopathy in a patient with homocystinuria // BMJ Case Rep. – 2018. – Jun 28. – Р. 2018. pii:bcr-2018-225059. doi:10.1136/bcr-2018-225059.; Guerra C., Johal K., Morris D. Control of Mycobacterium tuberculosis growth by glutathione enhanced natural killer cells // Clin. Immun. – 2012. – Vol. 168,№ 1. – P. 148-152.; Ha С., Miller L. T., Kerkvliet N. I. The effect of vitamin B 6 deficiency on cytotoxic immune responses of T cells, antibodies, and natural killer cells, and phagocytosis by macrophages // Cell. Immun. ‒ 1984. ‒ Vol. 85, Iss. 2. ‒ P. 318-329.; Hadtstein F., Vrolijk M. Vitamin B-6-Induced Neuropathy: Exploring the Mechanisms of Pyridoxine Toxicity, Advances in Nutrition, Volume 12, Issue 5, September 2021, P. 1911-1929.; Hemminger A., Wills B. K. Vitamin B6 Toxicity. 2022 Jan 10. In: StatPearls [Internet]. Treasure Island (FL): StatPearls Publishing; 2022 Jan. 38. Martinez M., Cuskelly G. J., Williamson J. et al. Vitamin B6 deficiency in rats reduces hepatic serine hydroxymethyltransferase and cystathionine beta-synthase activities and rates of in vivo protein turnover, homocysteine remethylation and transsulfuration // J. Nutr. – 2000. – 130, № 5. – Р. 1115-1123.; Moriguchi S., Kishino Y. Phagocytosis of alveolar macrophages of pyridoxine-deficient rats // J. Nutrition. ‒ May 1984. ‒ Vol. 114, Iss. 5. ‒ P. 888-893.; Pellock J. M., Howell J., Kendig E. L. Jr., Baker H. Pyridoxine deficiency in children treated with isoniazid // Chest. ‒ 1985. ‒ Vol. 87, № 5. ‒ Р. 658-661. doi:10.1378/chest.87.5.658.; Robbins S. L., Cotram R. S., Kumar V. The Pathologic Basis of Disease, 8th edition. ‒ Philadelphia: Saunders Elsevier, 2010. ‒ 1464 р.; Rodà D., Rozas L., Fortuny C., Sierra C., Noguera-Julian A. Impact of the increased recommended dosage of isoniazid on pyridoxine levels in children and adolescents // Pediatr. Infect. Dis. J. ‒ 2016. – Vol. 35, № 5. ‒ Р. 586-589. doi:10.1097/INF.0000000000001084. PMID: 26862674.; Romero J. A., Kuczler F. J. Jr. Isoniazid overdose: recognition and management // Am. Fam. Physician. ‒ 1998. – Vol. 57, № 4. ‒ Р. 749-752.; Shen J., Lai C. Q., Mattei J. et al. Association of vitamin B6 status with inflammation, oxidative stress, and chronic inflammatory conditions: the Boston Puerto Rican Health Study // Am. J. Clin. Nutr. – 2010. – Vol. 91, № 2. – Р. 337–342.; Snider D. E. Jr. Pyridoxine supplementation during isoniazid therapy // Tubercle. ‒ 1980. ‒ Vol. 61, № 4. ‒ Р. 191-196. doi:10.1016/0041-3879(80)90038-0.; Vrolijk M. F., Opperhuizen A., Jansen E. H. J. M., Hageman G. J., Bast A., Haenen G. R. M. M. The vitamin B 6 paradox: Supplementation with high concentrations of pyridoxine leads to decreased vitamin B6 function // Toxicol In Vitro. ‒ 2017. ‒ № 44. ‒ Р. 206-212. doi:10.1016/j.tiv.2017.07.009.; Zhong J., Karlsson O., Wang G., Li J., Guo Y., Lin X., Zemplenyi M., Sanchez-Guerra M., Trevisi L., Urch B., Speck M., Liang., Coull B.A., Koutrakis P., Silverman F., Gold D. R., Wu T., Baccarelli A. A. B vitamins attenuate the epigenetic effects of ambient fine particles in a pilot human intervention trial // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. – 2017. – Vol. 114, № 13. – P. 3503-3508 doi:10.1073/pnas.1618545114.
-
13Academic Journal
Συγγραφείς: E. O. Peretsmanas, V. S. Zubikov, A. E. Panova, A. N. Gracheva, A. A. Kazyulina, I. A. Gerasimov, Е. О. Перецманас, В. С. Зубиков, А. Е. Панова, А. Н. Грачева, А. А. Казюлина, И. А. Герасимов
Πηγή: Tuberculosis and Lung Diseases; Том 100, № 9 (2022); 27-33 ; Туберкулез и болезни легких; Том 100, № 9 (2022); 27-33 ; 2542-1506 ; 2075-1230
Θεματικοί όροι: антимикобактериальная активность, anti-tuberculosis drugs, elution, strength characteristics, antimycobacterial activity, противотуберкулезные препараты, элюция, прочностные характеристики
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Relation: https://www.tibl-journal.com/jour/article/view/1674/1683; Перецманас Е. О., Артюхов А. А., Штильман М. И., Есин И. В., Зубиков В. С., Герасимов И. А. Исследование элюционных характеристик противотуберкулезных препаратов, смешанных с костным цементом // Туб. и болезни легких. ‒ 2021. ‒ Т. 99, № 4. ‒ С. 30-35. https://doi.org/10.21292/2075-1230-2021-99-4-30-35.; Anagnostakos K., Meyer C. Antibiotic elution from hip and knee acrylic bone cement spacers: a systematic review // Biomed. Res. Int. ‒ 2017. ‒ № 4657874. doi:10.1155/2017/4657874. [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar].; Anis H. K., Sodhi N., Faour M., Klika A. K., Mont M. A., Barsoum W. K. et al. Effect of antibiotic-impregnated bone cement in primary total knee arthroplasty // J. Arthroplasty. ‒ 2019. ‒ Vol. 34. ‒ Р. 2091-2095. doi:10.1016/j.arth.2019.04.033. [PubMed] [Google Scholar].; Atici T., Sahin N., Cavun S., Ozakin C., Kaleli T. Antibiotic release and antibacterial efficacy in cement spacers and cement beads impregnated with different techniques: in vitro study // Eklem Hastalik Cerrahisi. ‒ 2018. ‒ № 29. ‒ Р. 71-78. doi:10.5606/ehc.2018.59021. [PubMed] [Google Scholar].; Buyuk A. F., Sofu H., Camurcu I. Y., Ucpunar H., Kaygusuz M. A., Sahin V. Can teicoplanin be an effective choice for antibiotic-impregnated cement spacer in two-stage revision total knee arthroplasty? // J. Knee Surg. ‒ 2017. ‒ № 30. ‒ Р. 283-288. doi:10.1055/s-0036-1584535. [PubMed] [Google Scholar].; Chang C. H., Hu C. C., Chang Y., Hsieh P. H., Shih H. N., Ueng S. W. N. Two-stage revision arthroplasty for Mycobacterium tuberculosis periprosthetic joint infection: An outcome analysis // PloS one. ‒ 2018. ‒ Vol. 13, № 9. ‒ Р. e0203585.; Gandomkarzadeh M., Mahboubi A., Moghimi H. R. Release behavior, mechanical properties, and antibacterial activity of ciprofloxacin-loaded acrylic bone cement: a mechanistic study // Drug Devel. Industr. Pharmacy. – 2020. – Vol. 46, № 8. – С. 1209-1218.; Han C. D., Oh T., Cho S. N., Yang J. H., Park K. K. Isoniazid could be used for antibiotic-loaded bone cement for musculoskeletal tuberculosis: an in vitro study // Clin. Orthop. Rel. Res®. ‒ 2013. ‒ Vol. 471, № 7. ‒ Р. 2400-2406.; Jameson S. S., Asaad A., Diament M., Kasim A., Bigirumurame T., Baker P. et al. Antibiotic-loaded bone cement is associated with a lower risk of revision following primary cemented total knee arthroplasty: an analysis of 731 214 cases using national joint registry data // Bone Joint J. ‒ 2019. ‒ Vol. 101B. ‒ Р. 1331-1347. doi:10.1302/0301-620x.101b11.Bjj-2019-0196.R1. [PubMed] [Google Scholar].; Kummer A., Tafin U. F., Borens O. Effect of sonication on the elution of antibiotics from polymethyl methacrylate (PMMA) // J. Bone Joint Infect. ‒ 2017. ‒ № 2. ‒ Р. 208-212. doi:10.7150/jbji.22443. [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]].; Lee J. H., Han C. D., Cho S. N., Yang I. H., Lee W. S., Baek S. H. How long does antimycobacterial antibiotic-loaded bone cement have in vitro activity for musculoskeletal tuberculosis? // Clin. Orthop. Relat. Res®. ‒ 2017. ‒ Vol. 475, № 11. ‒ Р. 2795-2804.; Lee J. H., Shin S. J., Cho S. N., Baek S. H., Park K. K. Does the effectiveness and mechanical strength of kanamycin-loaded bone cement in musculoskeletal tuberculosis compare to vancomycin-loaded bone cement // J. Arthroplasty. ‒ 2020. ‒ Vol. 35, № 3. ‒ Р. 864-869.; Morejón Alonso L., Fernández Torres I., Zayas Tamayo Á. M., Ledea Lozano O. E., Durán Ramos I., Delgado García-Menocal J. Á., Rios-Donato N., Mendizábal E. Antibacterial effect of acrylic bone cements loaded with drugs of different action's mechanism // J. Infect. Dev. Ctries. ‒ 2019. ‒ Vol. 13, № 6. ‒ Р. 487-495. doi:10.3855/jidc.10716. PMID: 32058983.; Parra-Ruiz F. J., Gonzalez-Gomez A., Fernandez-Gutierrez M., Parra J., Garcia-Garcia J., Azuara G. et al. Development of advanced biantibiotic loaded bone cement spacers for arthroplasty associated infections // Int. J. Pharm. ‒ 2017. ‒ № 522. ‒ Р. 11–20. doi:10.1016/j.ijpharm.2017.02.066. [PubMed] [Google Scholar].; Xu Y. M., Peng H. M., Feng B., Weng X. S. Progress of antibiotic-loaded bone cement in joint arthroplasty // Chin. Med. J. (Engl). ‒ 2020. ‒ Vol. 133, № 20. ‒ Р. 2486-2494. doi:10.1097/CM9.0000000000001093.; Yuenyongviwat V., Ingviya N., Pathaburee P., Tangtrakulwanich B. Inhibitory effects of vancomycin and fosfomycin on methicillin-resistant Staphylococcus aureus from antibiotic-impregnated articulating cement spacers // Bone Joint. Res. ‒ 2017. ‒ № 6. ‒ Р. 132-136. doi:10.1302/2046-3758.63.2000639. [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar].; Zilberman M., Elsner J. J. Antibiotic-eluting medical devices for various applications // J. Control Release. ‒ 2008. ‒ Vol. 130, № 3. ‒ Р. 202-215.
-
14Academic Journal
Συγγραφείς: G. N. Mozhokina, A. G. Samoylova, I. A. Vasilyeva, A. E. Russkikh, Г. Н. Можокина, А. Г. Самойлова, И. А. Васильева, А. Е. Русских
Πηγή: Tuberculosis and Lung Diseases; Том 100, № 8 (2022); 54-64 ; Туберкулез и болезни легких; Том 100, № 8 (2022); 54-64 ; 2542-1506 ; 2075-1230
Θεματικοί όροι: терапия хозяина, multiple drug resistance, short-course treatment regimens, anti-tuberculosis drugs, host therapy, множественная лекарственная устойчивость, краткосрочные схемы лечения, противотуберкулезные препараты
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Relation: https://www.tibl-journal.com/jour/article/view/1669/1678; Васильева И. А., Самойлова А. Г., Рудакова А. В., Ловачева О. В., Глебов К. А., Черноусова Л. Н. Экономическое обоснование применения новых схем химиотерапии для лечения больных туберкулезом с широкой лекарственной устойчивостью // Туб. и болезни легких. – 2018. – Т. 96, № 6. – С. 7-14. DOI:10.21292/2075-1230-2018-96-6-7-14.; Иванова Д. А., Борисов С. Е., Родина О. В., Филиппов А. В., Иванушкина Т. Н., Литвинова Н. В. Безопасность режимов лечения больных туберкулезом с множественной лекарственной устойчивостью возбудителя согласно новым рекомендациям ВОЗ 2019 г. // Туб. и болезни легких. ‒ 2020. ‒ Т. 98, № 1. ‒ С. 5-15.; Кубанов А. А., Карамова А. Э., Воронцова А. А., Калинина П. А. Фармакотерапия лепры // Вестник дерматологии и венерологии. ‒ 2016. ‒ № 4. ‒ С. 12-19.; Можокина Г. Н., Самойлова А. Г. Клофазимин: история и перспективы // Туб. и болезни легких. – 2021. – Т. 99, № 5. – С. 64-70. http://doi.org/10.21292/2075-1230-2021-99-5-64-70.; Можокина Г. Н., Самойлова А. Г., Васильева И. А. Проблема нейротоксичности лекарственных препаратов при лечении больных туберкулезом // Туб. и болезни легких. – 2020. – Т. 98, № 10. – С. 58-63. http://doi.org/10.21292/2075-1230-2020-98-10-58-63.; Русских А. Е., Кутузова Д. М., Ловачева О. В., Самойлова А. Г., Васильева И. А. Краткосрочные схемы лечения больных туберкулезом с множественной лекарственной устойчивостью. Современная ситуация и дальнейшие перспективы// Туб. и болезни легких. – 2020. – Т. 98, № 12. С. 57-66. http://doi.org/10.21292/2075-1230-2020-98-12-57-66.; Туберкулез у взрослых. Клинические рекомендации. 2020. [Electronic resource]. URL: https://cr.minzdrav.gov.ru/recomend/16_1 (accessed: 27.09.2021)].; Adikesavalu H., Gopalaswamy R., Kumar A., Ranganathan U. D., Shanmugam S. Autophagy induction as a host-directed therapeutic strategy against Mycobacterium tuberculosis infection // Medicina (Kaunas). ‒ 2021. ‒ Vol. 57, № 6. ‒ Р. 522.; Agyeman A. A., Ofori-Asenso R. Efficacy and safety profile of linezolid in the treatment of multidrug-resistant (MDR) and extensively drug-resistant (XDR) tuberculosis: a systematic review and meta-analysis // Ann. Clin. Microbiol. Antimicrob. – 2016. ‒ Vol. 15, № 1. – Р. 1-17.; Ahmad S., Bhattacharya D., Gupta N., Rawat V., Tousif S., Van Kaer L., Das G. Clofazimine enhances the efficacy of BCG revaccination via stem cell-like memory T cells // PLoS Pathog. ‒ 2020. ‒ Vol. 16, № 5. ‒ Р. e1008356.; Andries K., Verhasselt P., Guillemont J., Göhlmann H. W., Neefs J. M., Winkler H., Van Gestel J., Timmerman P., Zhu M., Lee E., Williams P., de Chaffoy D., Huitric E., Hoffner S., Cambau E., Truffot-Pernot C., Lounis N., Jarlier V. A diarylquinoline drug active on the ATP synthase of Mycobacterium tuberculosis // Science. ‒ 2005. ‒ Vol. 307 (5707). ‒ Р. 223-227.; Apodaca A. A., Rakita R. M. Linezolid-induced lactic acidosis // N. Engl. J. Med. ‒ 2003. ‒ Vol. 348. ‒ Р. 86-87.; Avaliani T., Sereda Y., Davtyan H., Tukvadze N., Togonidze T., Kiria N., Denisiuk O., Gozalov O., Ahmedov S, Hovhannesyan A. Effectiveness and safety of fully oral modified shorter treatment regimen for multidrug-resistant tuberculosis in Georgia, 2019-2020 // Monaldi Arch. Chest Dis. ‒ 2021. ‒ Vol. 91, № 1.; Belosludtsev K. N., Belosludtseva N. V., Talanov E. Y., Tenkov K. S., Starinets V. S., Agafonov A. V., Pavlik L. L., Dubinin M. V. Effect of bedaquiline on the functions of rat liver mitochondria // Biochim. Biophys. Acta Biomembr. 2019. ‒ Vol. 1861, № 1. ‒ Р. 288-297.; Bernstein W. B., Trotta R. F., Rector J. T., Tjaden J. A., Barile A. J. Mechanisms for linezolid-induced anemia and thrombocytopenia // Ann. Pharmacother. 2003. ‒ Vol. 37, № 4. ‒ Р. 517-520.; Bezerra E. L., Vilar M. J., da Trindade Neto P. B., Sato E. I. Double-blind, randomized, controlled clinical trial of clofazimine compared with chloroquine in patients with systemic lupus erythematosus // Arthritis Rheum. ‒ 2005. Vol. 52, № 10. ‒ Р. 3073-3078.; Blair H. A., Scott L. J. Delamanid: a review of its use in patients with multidrug-resistant tuberculosis // Drugs. ‒ 2015. ‒ Vol. 75, № 1. ‒ Р. 91‐100.; Borisov S. E., Dheda K., Enwerem M., Romero Leyet R., Migliori G. B. Effectiveness and safety of bedaquiline-containing regimens in the treatment of MDR- and XDR-TB: a multicentre study // Eur. Respir J. ‒ 2017. ‒ Vol. 49, № 5. ‒ Р. 1700387.; Bressler A. M., Zimmer S. M., Gilmore J. L., Somani J. Peripheral neuropathy associated with prolonged use of linezolid // Lancet Infect. Dis. ‒ 2004. ‒ Vol. 4, № 8. ‒ Р. 528-531.; Cahill C., Phelan J. J., Keane J. Understanding and exploiting the effect of tuberculosis antimicrobials on host mitochondrial function and bioenergetics // Front. Cell. Infect. Microbiol. ‒ 2020. ‒ Vol. 10. ‒ Р. 493.; Chandra P., He L., Zimmerman M., Yang G., Köster S., Ouimet M., Wang H., Moore K. J., Dartois V., Schilling J. D., Philips J. A. Inhibition of fatty acid oxidation promotes macrophage control of Mycobacterium tuberculosis // mBio. 2020. ‒ Vol. 11, № 4. ‒ Р. e01139-20.; Chen M., Gan, H., Remold, H. G. A mechanism of virulence: virulent Mycobacterium tuberculosis strain H37Rv, but not attenuated H37Ra, causes significant mitochondrial inner membrane disruption in macrophages leading to necrosis // J. Immunol. ‒ 2006. ‒ Vol. 176. ‒ Р. 3707-3716.; Chiang C. Y., Lin C. J. Principles of chemotherapy for tuberculosis in national tuberculosis programmes of low- and middle-income countries // Indian J. Tuberc. ‒ 2020. ‒ Vol. 67 (4S). ‒ Р. S16-S22.; Collaborative group for the meta-analysis of individual patient data in MDR-TB treatment–2017, Ahmad N., Ahuja S. D., Menzies D. et al. Treatment correlates of successful outcomes in pulmonary multidrug-resistant tuberculosis: an individual patient data meta-analysis // Lancet. ‒ 2018. ‒ Vol. 392 (10150). ‒ Р. 821-834.; Cox D. J., Coleman A. M., Gogan K. M., Phelan J. J., Ó Maoldomhnaigh C., Dunne P. J., Basdeo S. A., Keane J. Inhibiting histone deacetylases in human macrophages promotes glycolysis, IL-1β, and T helper cell responses to Mycobacterium tuberculosis // Front Immunol. ‒ 2020. ‒ Vol. 11. ‒ Р. 1609.; Cox H., Ford N. Linezolid for the treatment of complicated drug-resistant tuberculosis: a systematic review and meta-analysis // Int. J. Tuberc. Lung Dis. – 2012. ‒ Vol. 16, № 4. – Р. 447-454.; Cox V., Furin J. World Health Organization recommendations for multidrug-resistant tuberculosis: should different standards be applied? // Int. J. Tuberc. Lung Dis. ‒ 2017. ‒ Vol. 21, № 12. ‒ Р. 1211-1213.; Cumming B. M., Addicott K. W., Adamson J. H., Steyn A. J. Mycobacterium tuberculosis induces decelerated bioenergetic metabolism in human macrophages // Elife. ‒ 2018. ‒ Vol. 7. ‒ Р. e39169.; De Vriese A. S., Van Coster R., Smet J., Seneca S., Lovering A., Van Haute L., Boelaert J. R. Linezolid-induced inhibition of mitochondrial protein synthesis // Clin. Infect. Dis. ‒ 2006. ‒ Vol. 42. ‒ Р. 1111-1117.; Dheda K., Cox H., Esmail A., Wasserman S., Chang K. C., Lange C. Recent controversies about MDR and XDR-TB: Global implementation of the WHO shorter MDR-TB regimen and bedaquiline for all with MDR-TB? // Respirology. ‒ 2018. ‒ Vol. 23, № 1. ‒ Р. 36-45.; Diacon A. H., Dawson R., Hanekom M., Narunsky K., Venter A., Hittel N., Geiter L. J., Wells C. D., Paccaly A. J., Donald P. R. Early bactericidal activity of delamanid (OPC-67683) in smear-positive pulmonary tuberculosis patients // Int. J. Tuberc. Lung Dis. – 2011. ‒ Vol. 15, № 7. – Р. 949-954.; Diacon A. H., Pym A., Grobusch M. P., de los Rios J. M., Gotuzzo E., Vasilyeva I., Leimane V., Andries K., Bakare N., De Marez T., Haxaire-Theeuwes M., Lounis N., Meyvisch P., De Paepe E., van Heeswijk R. P., Dannemann B. TMC207-C208 Study Group. Multidrug-resistant tuberculosis and culture conversion with bedaquiline // N. Engl. J. Med. ‒ 2014. ‒ Vol. 371, № 8. ‒ Р. 723-732.; Doan T. N., Cao P., Emeto T. I., McCaw J. M., McBryde E. S. Predicting the outcomes of new short-course regimens for multidrug-resistant tuberculosis using intrahost and pharmacokinetic-pharmacodynamic modeling // Antimicrob. Agents. Chemother. ‒ 2018. ‒ Vol. 62, № 12. ‒ Р. e01487-18.; Duan H., Chen X., Li Z., Pang Y., Jing W., Liu P., Wu T., Cai C., Chu N., Xu S. et al. Clofazimine improves clinical outcomes in multidrug-resistant tuberculosis: a randomized controlled trial // Clin. Microbiol. Infect. ‒ Vol. 25, № 2. ‒ Р. 190-195.; Dubey R. K. Assuming the role of mitochondria in mycobacterial infection // Int. J. Mycobacteriol. ‒ 2016. ‒ Vol. 5. ‒ Р. 379-383.; Duewelhenke N., Krut O., Eysel P. Influence on mitochondria and cytotoxicity of different antibiotics administered in high concentrations on primary human osteoblasts and cell lines // Antimicrob. Agents Chemother. ‒ 2007. ‒ Vol. 51, № 1. ‒ Р. 54-63.; du Preez I., Loots D. T. New sputum metabolite markers implicating adaptations of the host to Mycobacterium tuberculosis, and vice versa // Tuberculosis (Edinb). ‒ 2013. ‒ Vol. 93, № 3. ‒ Р. 330-337.; Fine-Coulson K., Giguère S., Quinn F. D., Reaves B. J. Infection of A5A49 human type II epithelial cells with Mycobacterium tuberculosis induces changes in mitochondrial morphology, distribution and mass that are dependent on the early secreted antigen, ESAT-6 // Microb. Infect. ‒ 2015. ‒ Vol. 17. ‒ Р. 689-697.; Fiorillo M., Lamb R., Tanowitz H. B., Cappello A. R., Martinez-Outschoorn U. E., Sotgia F., Lisanti M. P. Bedaquiline, an FDA-approved antibiotic, inhibits mitochondrial function and potently blocks the proliferative expansion of stem-like cancer cells (CSCs) // Aging (Albany NY). ‒ 2016. ‒ Vol. 8, № 8. ‒ Р. 1593-1607.; Frippiat F., Bergiers C., Michel C., Dujardin J. P., Derue G. Severe bilateral optic neuritis associated with prolonged linezolid therapy // J. Antimicrob. Chemother. ‒ 2004. ‒ Vol. 53, № 6. ‒ 1114-1115.; Fujiwara M., Kawasaki M., Hariguchi N., Liu Y., Matsumoto M. Mechanisms of resistance to delamanid, a drug for Mycobacterium tuberculosis // Tuberculosis (Edinb). ‒ 2018. ‒ Vol. 108. ‒ Р. 186-194.; Fukutomi Y., Maeda Y., Makino M. Apoptosis-inducing activity of clofazimine in macrophages // Antimicrob. Agents. Chemother. ‒ 2011. ‒ Vol. 55, № 9. ‒ Р. 4000-4005.; Garrabou G., Soriano À., Pinós T., Casanova-Mollà J., Pacheu-Grau D., Morén C., Cardellach F. et al. Influence of mitochondrial genetics on the mitochondrial toxicity of linezolid in blood cells and skin nerve fibers // Antimicrob. Agents Chemother. ‒ 2017. ‒ Vol. 61, № 9. ‒ Р. e00542-17.; Genestet C., Bernard-Barret F., Hodille E., Ginevra C., Ader F., Goutelle S., Lina G., Dumitrescu O. Lyon TB study group. Antituberculous drugs modulate bacterial phagolysosome avoidance and autophagy in Mycobacterium tuberculosis-infected macrophages //Tuberculosis (Edinb). ‒ 2018. ‒ Vol. 111. ‒ Р. 67-70.; Giraud-Gatineau A., Coya J. M., Maure A., Biton A., Thomson M., Bernard E. M., Marrec J., Gutierrez M. G., Larrouy-Maumus G., Brosch R., Gicquel B., Tailleux L. The antibiotic bedaquiline activates host macrophage innate immune resistance to bacterial infection // Elife. ‒ 2020. ‒ Vol. 9. ‒ Р. e55692.; Gleeson L. E., Sheedy F. J., Palsson-McDermott E. M., Triglia D., O'Leary S. M., O'Sullivan M. P., O'Neill L. A., Keane J. Cutting edge: Mycobacterium tuberculosis induces aerobic glycolysis in human alveolar macrophages that is required for control of intracellular bacillary replication // J. Immunol. ‒ 2016. ‒ Vol. 196, № 6. ‒ Р. 2444-2449.; Gler M. T., Skripconoka V., Sanchez-Garavito E., Xiao H., Cabrera-Rivero J. L., Vargas-Vasquez D. E., Wells C. D. et al. Delamanid for multidrug-resistant pulmonary tuberculosis // N. Engl. J. Med. ‒ 2012. ‒ Vol. 366, № 23. Р. 2151-2160. doi:10.1056/NEJMoa1112433.; Global tuberculosis report 2020. Geneva: World Health Organization; 2020. Licence: CC BY-NC-SA 3.0 IGO.; Han W. M., Mahikul W., Pouplin T., Lawpoolsri S., White L. J., Pan-Ngum W. Assessing the impacts of short-course multidrug-resistant tuberculosis treatment in the Southeast Asia Region using a mathematical modeling approach // PLoS One. ‒ 2021. ‒ Vol. 16, № 3. ‒ Р. e0248846.; Highlights of prescribing information [Electronic resource]. URL: https://www.accessdata.fda.gov/drugsatfda_docs/label/2016/019500s013lbl.pdf (accessed: 02.09.2021).; Horter S., Stringer B., Gray N., Parpieva N., Safaev K., Tigay Z., Singh J., Achar J. Person-centred care in practice: Perspectives from a short course regimen for multi-drug resistant tuberculosis in Karakalpakstan, Uzbekistan // BMC Infect. Dis. ‒ 2020. ‒ Vol. 20. ‒ Р. 675.; Huang L., Nazarova E. V., Russell D. G. Mycobacterium tuberculosis: bacterial fitness within the host macrophage // Microbiol. Spectr. ‒ 2019. ‒ Vol. 7, № 2. Р. 10. 1128.; Ibrahim M., Andries K., Lounis N., Chauffour A., Truffot-Pernot C., Jarlier V., Veziris N. Synergistic activity of R207910 combined with pyrazinamide against murine tuberculosis // Antimicrob. Agents Chemother. ‒ 2007. ‒ Vol. 51. Р. 1011-1015.; Kalghatgi S., Spina C. S., Costello J. C., Liesa M., Morones-Ramirez J. R., Slomovic S., Molina A., Shirihai O. S., Collins J. J. Bactericidal antibiotics induce mitochondrial dysfunction and oxidative damage in Mammalian cells // Sci. Transl. Med. ‒ 2013. ‒ Vol. 5, № 192. ‒ Р. 192ra85.; Kaufmann S. H. E., Dorhoi A., Hotchkiss R. S., Bartenschlager R. Host-directed therapies for bacterial and viral infections // Nat. Rev. Drug. Discov. ‒ 2018. Vol. 17, № 1. ‒ Р. 35-56.; Khoshnood S., Taki E., Sadeghifard N., Kaviar V. H., Haddadi M. H., Farshadzadeh Z., Kouhsari E., Goudarzi M., Heidary M. Mechanism of action, resistance, synergism, and clinical implications of delamanid against multidrug-resistant Mycobacterium tuberculosis // Front. Microbiol. ‒ 2021. Vol. 12. ‒ Р. 717045.; Kilinc G., Saris A., Ottenhoff T. H. M., Haks M. C. Host-directed therapy to combat mycobacterial infections // Immunol. Rev. ‒ 2021. ‒ Vol. 301, № 1. Р. 62-83.; Kim Y.-R., Yang C.-S. Host-Directed therapeutics as a novel approach for tuberculosis treatment // J. Microbiol. Biotechnol. ‒ 2017. ‒ Vol. 27, № 9. Р. 1549-1558.; Kiran D., Podell B. K., Chambers M., Basaraba R. J. Host-directed therapy targeting the Mycobacterium tuberculosis granuloma: a review // Semin. Immunopathol. ‒ 2016. ‒ Vol. 38, № 2. ‒ Р. 167-183.; Koul A., Dendouga N., Vergauwen K., Molenberghs B., Vranckx L., Willebrords R., Ristic Z., Lill H., Dorange I., Guillemont J., Bald D., Andries K. Diarylquinolines target subunit c of mycobacterial ATP synthase // Nat. Chem. Biol. ‒ 2007. ‒ Vol. 3, № 6. ‒ Р. 323-324.; Lamprecht D. A., Finin P. M., Rahman M. A., Cumming B. M., Russell S. L., Jonnala S. R., Adamson J. H., Steyn A. J. Turning the respiratory flexibility of Mycobacterium tuberculosis against itself // Nat. Commun. ‒ 2016. ‒ Vol. 7. Р. 12393.; Lifan Z., Sainan B., Feng S., Siyan Z., Xiaoqing L. Linezolid for the treatment of extensively drug-resistant tuberculosis: a systematic review and meta-analysis // Int. J. Tuberc. Lung Dis. ‒ 2019. ‒ Vol. 23, № 12. ‒ Р. 1293-1307.; Liu Y., Matsumoto M., Ishida H., Ohguro K., Yoshitake M., Gupta R., Geiter L., Hafkin J. Delamanid: from discovery to its use for pulmonary multidrug-resistant tuberculosis (MDR-TB) // Tuberculosis (Edinb). ‒ 2018. Vol. 111. ‒ Р. 20-30.; Lounis N., Veziris N., Chauffour A., Truffot-Pernot C., Andries K., Jarlier V. Combinations of R207910 with drugs used to treat multidrug-resistant tuberculosis have the potential to shorten treatment duration // Antimicrob. Agents Chemother. ‒ 2006. ‒ Vol. 50, № 11. ‒ Р. 3543-3547.; Masuku S. D., Berhanu R., Van Rensburg C., Ndjeka N., Rosen S., Long L., Evans D., Nichols B. E. Managing multidrug-resistant tuberculosis in South Africa: a budget impact analysis // Int. J. Tuberc. Lung Dis. ‒ 2020. ‒ Vol. 24, № 4. ‒ Р. 376-382.; Mirnejad R., Asadi A., Khoshnood S., Mirzaei H., Heidary M., Fattorini L., Ghodousi A., Darban-Sarokhalil D. Clofazimine: A useful antibiotic for drug-resistant tuberculosis // Biomed. Pharmacother. ‒ 2018. ‒ Vol. 105. Р. 1353-1359.; Mpobela Agnarson A., Williams A., Kambili C., Mattson G., Metz L. The cost-effectiveness of a bedaquiline-containing short-course regimen for the treatment of multidrug-resistant tuberculosis in South Africa // Expert. Rev. Anti-Infect. Ther. ‒ 2020. ‒ Vol. 18, № 5. ‒ Р. 475-483.; Narita M., Tsuji B. T., Yu V. L. Linezolid-associated peripheral and optic neuropathy, lactic acidosis, and serotonin syndrome // Pharmacotherapy. 2007. ‒ Vol. 27, № 8. ‒ Р. 1189-1197.; Nunn A. J., Phillips P. P. J., Meredith S. K., Chiang C. Y., Conradie F., Dalai D., van Deun A., Rusen I. D. STREAM Study Collaborators. A trial of a shorter regimen for rifampin-resistant tuberculosis // N. Engl. J. Med. ‒ 2019. ‒ Vol. 380, № 13. ‒ Р. 1201-1213.; Padayatchi N., Gopal M., Naidoo R., Werner L., Naidoo K., Master I., O'Donnell M. R. Clofazimine in the treatment of extensively drug-resistant tuberculosis with HIV coinfection in South Africa: a retrospective cohort study // J. Antimicrob. Chemother. ‒ 2014. ‒ Vol. 69, № 11. ‒ Р. 3103-3107.; Paik S., Kim J. K., Chung C., Jo E. K. Autophagy: A new strategy for host-directed therapy of tuberculosis // Virulence. ‒ 2019. ‒ Vol. 10, № 1. ‒ Р. 448-459.; Park H. E., Lee W., Shin M. K., Shin S. J. Understanding the reciprocal interplay between antibiotics and host immune system: how can we improve the anti-mycobacterial activity of current drugs to better control tuberculosis? // Front. Immunol. ‒ 2021. ‒ Vol. 12. ‒ Р. 703060.; Protti A., Ronchi D., Bassi G., Fortunato F., Bordoni A., Rizzuti T., Fumagalli R. Changes in whole-body oxygen consumption and skeletal muscle mitochondria during linezolid-induced lactic acidosis // Crit. Care Med. ‒ 2016. ‒ Vol. 44. Р. e5e79–e5e82.; Rapid Communication: Key changes to treatment of multidrug- and rifampicin-resistant tuberculosis (MDR/RR-TB). 2018.; WHO consolidated guidelines on tuberculosis. Module 4: treatment ‒ drug-resistant tuberculosis treatment. Geneva:World Health Organization; 2020. Licence: CC BY-NC-SA 3.0 IGO.; Santini A., Ronchi D., Garbellini M., Piga D., Protti A. Linezolid-induced lactic acidosis: the thin line between bacterial and mitochondrial ribosomes // Expert. Opin. Drug Saf. ‒ 2017. ‒ Vol. 16. ‒ Р. 833-843.; Soriano A., Miró O., Mensa J. Mitochondrial toxicity associated with linezolid // N. Engl. J. Med. ‒ 2005. ‒ Vol. 353. ‒ Р. 2305-2306.; Tack I., Dumicho A., Ohler L., Shigayeva A., Bulti A. B., White K., Mbatha M., Furin J., Isaakidis P. Safety and effectiveness of an all-oral, bedaquiline-based, shorter treatment regimen for rifampicin-resistant tuberculosis in high Human Immunodeficiency Virus (HIV) burden rural South Africa: A retrospective cohort analysis // Clin. Infect Dis. ‒ 2021. ‒ Vol. 73, № 9. ‒ Р. e3563-e3571.; Tang S., Yao L., Hao X., Liu Y., Zeng L., Liu G., Li M., Li F., Wu M., Zhu Y., Sun H., Gu J., Wang X., Zhang Z. Clofazimine for the treatment of multidrug-resistant tuberculosis: prospective, multicenter, randomized controlled study in China // Clin. Infect. Dis. ‒ 2015. ‒ Vol. 60, № 9. ‒ Р. 1361-1367.; Trexel J., Yoon G. S., Keswani R. K., McHugh C., Yeomans L, Vitvitsky V., Banerjee R., Sud S., Sun Y., Rosania G. R., Stringer K. A. Macrophage-mediated clofazimine sequestration is accompanied by a shift in host energy metabolism // J. Pharm. Sci. ‒ 2017. ‒ Vol. 106, № 4. ‒ Р. 1162-1174.; Ubeda C., Pamer E. G. Antibiotics, microbiota, and immune defense // Trends Immunol. ‒ 2012. ‒ Vol. 33. ‒ Р. 459-466.; Veziris N., Ibrahim M., Lounis N., Andries K., Jarlier V. Sterilizing activity of second-line regimens containing TMC207 in a murine model of tuberculosis // PLoS One. ‒ 2011. ‒ Vol. 6, № 3. ‒ Р. e17556.; WHO consolidated guidelines on tuberculosis. Module 4: treatment drug-resistant tuberculosis treatment. Geneva:World Health Organization; 2020. Licence: CC BY-NC-SA 3.0 IGO.; Winchell C. G., Mishra B. B., Phuah J. Y., Saqib M., Nelson S. J., Maiello P., Causgrove C. M., Ameel C. L., Stein B., Borish H. J., White A. G., Klein E. C., Zimmerman M. D., Dartois V., Lin P. L., Sassetti C. M., Flynn J. L. Evaluation of IL-1 blockade as an adjunct to linezolid therapy for tuberculosis in mice and macaques // Front. Immunol. ‒ 2020. ‒ Vol. 11. ‒ Р. 891.; Wu X., Li F., Wang X., Li C., Meng Q., Wang C., Huang J., Chen S., Zhu Z. Antibiotic bedaquiline effectively targets growth, survival and tumor angiogenesis of lung cancer through suppressing energy metabolism // Biochem. Biophys. Res. Commun. ‒ 2018. ‒ Vol. 495, № 1. ‒ Р. 267-272.; Xu H. B., Jiang R. H., Xiao H. P. Clofazimine in the treatment of multidrug-resistant tuberculosis // Clin. Microbiol. Infect. ‒ 2012. ‒ Vol. 18, № 11. ‒ Р. 1104-1110.; Yang J. H., Bhargava P., McCloskey D., Mao N., Palsson B. O., Collins J. J. Antibiotic-induced changes to the host metabolic environment inhibit drug efficacy and alter immune function // Cell. Host. Microbe. ‒ 2017. ‒ Vol. 22, № 6. ‒ Р. 757–765.e3.; Yoon G. S., Sud S., Keswani R. K., Baik J., Standiford T. J., Stringer K. A., Rosania G. R. Phagocytosed clofazimine biocrystals can modulate innate immune signaling by inhibiting TNFα and boosting IL-1RA secretion // Mol. Pharm. ‒ 2015. ‒ Vol. 12, № 7. ‒ Р. 2517-2527.; Yoon G. S., Keswani R. K., Sud S., Rzeczycki P. M., Murashov M. D., Koehn T. A., Standiford T. J., Stringer K. A., Rosania G. R. Clofazimine biocrystal accumulation in macrophages upregulates interleukin 1 receptor antagonist production to induce a systemic anti-inflammatory state // Antimicrob. Agents Chemother. ‒ 2016. ‒ Vol. 60, № 6. ‒ Р. 3470-3479.
-
15Academic Journal
Συγγραφείς: А. V. Kukurika, А. В. Кукурика
Πηγή: FARMAKOEKONOMIKA. Modern Pharmacoeconomics and Pharmacoepidemiology; Vol 15, No 3 (2022); 353-362 ; ФАРМАКОЭКОНОМИКА. Современная фармакоэкономика и фармакоэпидемиология; Vol 15, No 3 (2022); 353-362 ; 2070-4933 ; 2070-4909
Θεματικοί όροι: новые противотуберкулезные препараты, economic evaluation, tuberculosis, multidrug resistance, extensively drug resistance, new anti-tuberculosis drugs, экономическая оценка, туберкулез, множественная лекарственная устойчивость, широкая лекарственная устойчивость
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Relation: https://www.pharmacoeconomics.ru/jour/article/view/714/439; World Health Organization. Global tuberculosis report 2020. URL: https://www.who.int/publications-detail-redirect/9789240013131 (дата обращения 03.07.2022).; Практический справочник ВОЗ по туберкулезу. Модуль 4. Лечение. Лечение лекарственно-устойчивого туберкулеза. URL: https://apps.who.int/iris/handle/10665/339992?show=full (дата обращения 03.07.2022).; Маркелов Ю.М., Лесонен А.С. Клинико-экономические аспекты повышения эффективности лечения туберкулеза с множественной лекарственной устойчивостью. Туберкулез и болезни легких. 2020; 98 (9): 50–4. https://doi.org/10.21292/2075-1230-2020-98-9-50-54.; Маркелов Ю.М., Лесонен А.С., Михайлова Е.Д., Кузнецов Н.В. Анализ бюджетных затрат при различной эффективности лечения впервые выявленных больных туберкулезом с множественной лекарственной устойчивостью возбудителя. Фармакоэкономика: теория и практика. 2021; 9 (3): 5–10. https://doi.org/10.30809/phe.3.2021.1.; Васильева И.А., Самойлова А.Г., Рудакова А.В. и др. Экономическое обоснование применения новых схем химиотерапии для лечения больных туберкулезом с широкой лекарственной устойчивостью. Туберкулез и болезни легких. 2018; 96 (6): 7–14. https://doi.org/10.21292/2075-1230-2018-96-6-7-14.; Николенко Н.Ю., Кудлай Д.А., Докторова Н.П. Фармакоэпидемиология и фармакоэкономика туберкулеза с множественной и широкой лекарственной устойчивостью возбудителя. ФАРМАКОЭКОНОМИКА. Современная фармакоэкономика и фармакоэпидемиология. 2021; 14 (2): 235–48. https://doi.org/10.17749/2070-4909/farmakoekonomika.2021.089.; Fekadu G., Yao J., You J.H.S. A systematic review of pharmacoeconomic evaluations on oral diarylquinoline-based treatment for drugresistant tuberculosis: from high to low burden countries. Expert Rev Pharmacoecon Outcomes Res. 2021; 21 (5): 897–910. https://doi.org/10.1080/14737167.2021.1925111.; Byun J.Y., Kim H.L., Lee E.K., Kwon S.H. A systematic review of economic evaluations of active tuberculosis treatments. Front Pharmacol. 2021; 12: 736986. https://doi.org/10.3389/fphar.2021.736986.; Padmasawitri T.I.A., Saragih S.M., Frederix G.W., et al. Managing uncertainties due to limited evidence in economic evaluations of novel anti-tuberculosis regimens: a systematic review. Pharmacoecon Open. 2020: 4; 223–33. https://doi.org/10.1007/s41669-019-0162-z.; Gomez G.B., Dowdy D.W., Bastos M.L., et al. Cost and costeffectiveness of tuberculosis treatment shortening: a model-based analysis. BMC Infect Dis. 2016; 16 (1): 726. https://doi.org/10.1186/s12879-016-2064-3.; Gotham D., Fortunak J., Pozniak A., et al. Estimated generic prices for novel treatments for drug-resistant tuberculosis. J Antimicrob Chemother. 2017; 72 (4): 1243–52. https://doi.org/10.1093/jac/dkw522.; Greenaway C., Pareek M., Abou Chakra C.N., et al. The effectiveness and cost-effectiveness of screening for latent tuberculosis among migrants in the EU/EEA: a systematic review. Euro Surveill. 2018; 23 (14): 17-00543. https://doi.org/10.28071560-7917.ES.2018.23.14.1700543.; Alemayehu S., Yigezu A., Hailemariam D., Hailu A. Costeffectiveness of treating multidrug-resistant tuberculosis in treatment initiative centers and treatment follow-up centers in Ethiopia. PLoS One. 2020; 15 (7): e0235820. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0235820.; Zwerling A., Dowdy D., von Delft A., et al. Incorporating social justice and stigma in cost-effectiveness analysis: drug-resistant tuberculosis treatment. Int J Tuberc Lung Dis. 2017; 21 (11): 69–74. https://doi.org/10.5588/ijtld.16.0839.; McNaughton A., Blackmore T., McNaughton H. Comprehensive cost of treating one patient with MDR/pre-XDR-TB in Wellington, New Zealand. Eur Respir J. 2016; 48 (4): 1256–9. https://doi.org/10.1183/13993003.00876-2016.; Marks S.M., Mase S.R., Morris S.B. Systematic review, metaanalysis, and cost-effectiveness of treatment of latent tuberculosis to reduce progression to multidrug-resistant tuberculosis. Clin Infect Dis. 2017; 64 (12): 1670–7. https://doi.org/10.1093/cid/cix208.; John D., Chatterjee P., Murthy S., et al. Cost effectiveness of decentralised care model for managing MDR-TB in India. Indian J Tuberc. 2018; 65 (3): 208–17. https://doi.org/10.1016/j.ijtb.2017.08.031.; Kairu A., Orangi S., Oyando R., et al. Cost of TB services in healthcare facilities in Kenya (No 3). Int J Tuberc Lung Dis. 2021; 25 (12): 1028–34. https://doi.org/10.5588/ijtld.21.0129.; Loveday M., Wallengren K., Reddy T., et al. MDR-TB patients in KwaZulu-Natal, South Africa: cost-effectiveness of 5 models of care. PLoS One. 2018; 13 (4): e0196003. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0196003.; Nsengiyumva N.P., Mappin-Kasirer B., Oxlade O., et al. Evaluating the potential costs and impact of digital health technologies for tuberculosis treatment support. Eur Respir J. 2018; 52 (5): 1801363. https://doi.org/10.1183/13993003.01363-2018.; Van Rensburg C., Berhanu R., Hirasen K., et al. Cost outcome analysis of decentralized care for drug-resistant tuberculosis in Johannesburg, South Africa. PLoS One. 2019; 14 (6): e0217820. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0217820.; Hao X., Lou H., Bai J., et al. Cost-effectiveness analysis of Xpert in detecting Mycobacterium tuberculosis: a systematic review. Int J Infect Dis. 2020; 95: 98–105. https://doi.org/10.1016/j.ijid.2020.03.078.; Laurence Y.V., Griffiths U.K., Vassall A. Costs to health services and the patient of treating tuberculosis: a systematic literature review. Pharmacoeconomics. 2015; 33 (9): 939–55. https://doi.org/10.1007/s40273-015-0279-6.; Sagili K.D., Muniyandi M., Nilgiriwala K.S., et al. Cost-effectiveness of GeneXpert and LED-FM for diagnosis of pulmonary tuberculosis: a systematic review. PLoS One. 2018; 13 (10): e0205233. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0205233.; Ionescu A.M., Mpobela Agnarson A., Kambili C., et al. Bedaquilineversus injectable-containing drug-resistant tuberculosis regimens: a cost-effectiveness analysis. Expert Rev Pharmacoecon Outcomes Res. 2018; 18 (6): 677–89. https://doi.org/10.1080/14737167.2018.1507821.; Machlaurin A., Pol S.V., Setiawan D., et al. Health economic evaluation of current vaccination strategies and new vaccines against tuberculosis: a systematic review. Expert Rev Vaccines. 2019; 18 (9): 897–911. https://doi.org/10.1080/14760584.2019.1651650.; Feuth T., Patovirta R.L., Grierson S., et al. Costs of multidrugresistant TB treatment in Finland and Estonia affected by the 2019 WHO guidelines. Int J Tuberc Lung Dis. 2021; 25 (7): 554–9. https://doi.org/10.5588/ijtld.20.0892.; Masuku S.D., Berhanu R., Van Rensburg C., et al. Managing multidrug-resistant tuberculosis in South Africa: a budget impact analysis. Int J Tuberc Lung Dis. 2020; 24 (4): 376–82. https://doi.org/10.5588/ijtld.19.0409.; Bada F.O., Blok N., Okpokoro E., et al. Cost comparison of ninemonth treatment regimens with 20-month standardized care for the treatment of rifampicin-resistant/multi-drug resistant tuberculosis in Nigeria. PLoS One. 2020; 15 (12): e0241065. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0241065.; Lu X., Smare, C., Kambili C., et al. Health outcomes of bedaquiline in the treatment of multidrug-resistant tuberculosis in selected high burden countries. BMC Health Serv Res. 2017; 17 (1): 87. https://doi.org/10.1186/s12913-016-1931-3.; Sweeney S., Gomez G., Kitson N., et al. Cost-effectiveness of new MDR-TB regimens: study protocol for the TB-PRACTECAL economic evaluation substudy. BMJ Open. 2020; 10 (10): e036599. https://doi.org/10.1136/bmjopen-2019-036599.; Diel R., Sotgiu G., Andres S., et al. Cost of multidrug resistant tuberculosis in Germany – an update. Int J Infect Dis. 2021; 103: 102–9. https://doi.org/10.1016/j.ijid.2020.10.084.; Wirth D., Dass R., Hettle R. Cost-effectiveness of adding novel or group 5 interventions to a background regimen for the treatment of multidrug-resistant tuberculosis in Germany. BMC Health Serv Res. 2017; 17 (1): 182. https://doi.org/10.1186/s12913-017-2118-2.; Schnippel K., Firnhaber C., Conradie F., et al. Incremental cost effectiveness of bedaquiline for the treatment of rifampicin-resistant tuberculosis in South Africa: model-based analysis. Appl Health Econ Health Policy. 2018; 16 (1): 43–54. https://doi.org/10.1007/s40258017-0352-8.; Schnippel K., Firnhaber C., Page-Shipp L., Sinanovic E. Impact of adverse drug reactions on the incremental cost-effectiveness of bedaquiline for drug-resistant tuberculosis. Int J Tuberc Lung Dis. 2018; 22 (8): 918–25. https://doi.org/10.5588/ijtld.17.0869.; Wolfson L.J., Gibbert J., Wirth D., Diel R. Cost-effectiveness of incorporating bedaquiline into a treatment regimen for MDR/XDR-TB in Germany. Eur Respir J. 2015; 46 (6): 1826–9. https://doi.org/10.1183/13993003.00811-2015.; Diel R., Hittel N., Schaberg T. Cost effectiveness of treating multidrug resistant tuberculosis by adding DeltybaTM to background regimens in Germany. Respir Med. 2015; 109 (5): 632–41. https://doi.org/10.1016/j.rmed.2015.01.017.; Wolfson L.J., Walker A., Hettle R., et al. Cost-effectiveness of adding bedaquiline to drug regimens for the treatment of multidrug-resistant tuberculosis in the UK. PLoS One. 2015; 10 (3): e0120763. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0120763.; Codecasa L.R., Toumi M., D’Ausilio A., et al. Cost-effectiveness of bedaquiline in MDR and XDR tuberculosis in Italy. J Mark Access Health Pol. 2017; 5 (1): 1283105. https://doi.org/10.1080/20016689.2017.1283105.; Fan Q., Ming W.K., Yip W.Y., You J.H.S. Cost-effectiveness of bedaquiline or delamanid plus background regimen for multidrugresistant tuberculosis in a high-income intermediate burden city of China. Int J Infect Dis. 2019; 78: 44–9. https://doi.org/10.1016/j.ijid.2018.10.007.; Mpobela Agnarson A., Williams A., Kambili C., et al. The costeffectiveness of a bedaquiline-containing short-course regimen for the treatment of multidrug-resistant tuberculosis in South Africa. Expert Rev Anti Infect Ther. 2020; 18 (5): 475-83. https://doi.org/10.1080/14787210.2020.1742109.; Gomez G.B., Siapka M., Conradie F., et al. Cost-effectiveness of bedaquiline, pretomanid and linezolid for treatment of extensively drug-resistant tuberculosis in South Africa, Georgia and the Philippines. BMJ Open. 2021; 11 (12): e051521. https://doi.org/10.1136/bmjopen-2021-051521.; Mulder C., Rupert S., Setiawan E., et al. Budgetary impact of using BPaL for treating extensively drug-resistant tuberculosis. BMJ Glob Health. 2022; 7 (1): e007182. https://doi.org/10.1136/bmjgh-2021-007182.; Park H.Y., Ku H.M., Sohn H.S., et al. Cost-effectiveness of bedaquiline for the treatment of multidrug-resistant tuberculosis in the Republic of Korea. Clin Ther. 2016; 38 (3): 655–67.e1-2. https://doi.org/10.1016/j.clinthera.2016.01.023.; https://www.pharmacoeconomics.ru/jour/article/view/714
-
16Academic Journal
Πηγή: Bulletin of the Academy of Sciences of Moldova. Medical Sciences; Vol. 74 No. 3 (2022): Medical Sciences; 200-204 ; Buletinul Academiei de Științe a Moldovei. Științe medicale; Vol. 74 Nr. 3 (2022): Ştiinţe medicale; 200-204 ; Вестник Академии Наук Молдовы. Медицина; Том 74 № 3 (2022): Медицина; 200-204 ; 1857-0011 ; 10.52692/1857-0011.2022.3-74
Θεματικοί όροι: противотуберкулезные препараты, гипотиреоз, рифампицин, этионамид, протионамид, парааминосалициловая кислот, prepaarte antituberculoase, hipotiroidism, rifampicină, etionamidă, protionamida, acidul para-aminosalicilic, antituberculosis drugs, hypothyroidism, rifampicin, ethionamide, prothionamide, paraaminosalicylic acid
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Relation: https://bulmed.md/bulmed/article/view/3498/3500; https://bulmed.md/bulmed/article/view/3498
-
17Academic Journal
Συγγραφείς: E. P. Myshkova, T. I. Petrenko, T. A. Kolpakova
Πηγή: Туберкулез и болезни лёгких, Vol 100, Iss 5, Pp 35-40 (2022)
Θεματικοί όροι: туберкулез с множественной лекарственной устойчивостью, современные противотуберкулезные препараты, перхлозон, бедаквилин, линезолид, нежелательные побочные реакции, Diseases of the respiratory system, RC705-779
Relation: https://www.tibl-journal.com/jour/article/view/1640; https://doaj.org/toc/2075-1230; https://doaj.org/toc/2542-1506; https://doaj.org/article/d11159fda4b04c9c8515786bbfa6ca56
-
18Academic Journal
Συγγραφείς: G. N. Mozhokina, Yu. R. Zyuzya, L. Yu. Petrova, A. G. Samoylova
Πηγή: Туберкулез и болезни лёгких, Vol 100, Iss 10, Pp 15-21 (2022)
Θεματικοί όροι: противотуберкулезные препараты, антимикробные препараты, клофазимин, нежелательные реакции, эксперимент, Diseases of the respiratory system, RC705-779
Relation: https://www.tibl-journal.com/jour/article/view/1680; https://doaj.org/toc/2075-1230; https://doaj.org/toc/2542-1506; https://doaj.org/article/feb12b977a1a45df8c9f1f4fa7b81461
-
19Academic Journal
Συγγραφείς: A. V. Kukurika
Πηγή: Туберкулез и болезни лёгких, Vol 100, Iss 5, Pp 64-70 (2022)
Θεματικοί όροι: dpre1, противотуберкулезные препараты, btz-043, pbtz-169, tba-7371, opc-167832, туберкулез с множественной/широкой лекарственной устойчивостью, Diseases of the respiratory system, RC705-779
Relation: https://www.tibl-journal.com/jour/article/view/1644; https://doaj.org/toc/2075-1230; https://doaj.org/toc/2542-1506; https://doaj.org/article/74292493297b4ff592f48863a29f2208
-
20Academic Journal
Συγγραφείς: E. O. Peretsmanas, I. A. Gerasimov, V. S. Zubikov, I. V. Esin, Е. О. Перецманас, И. А. Герасимов, В. С. Зубиков, И. В. Есин
Πηγή: Tuberculosis and Lung Diseases; Том 99, № 9 (2021); 53-58 ; Туберкулез и болезни легких; Том 99, № 9 (2021); 53-58 ; 2542-1506 ; 2075-1230
Θεματικοί όροι: спейсеры, anti-tuberculosis drugs, bone cement, spacers, противотуберкулезные препараты, костный цемент
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Relation: https://www.tibl-journal.com/jour/article/view/1573/1582; American Society for Testing and Materials, American Society for Testing and Materials Specification F451-95. Standard specification for acrylic bone cement., Annual book of ASTM standards 13.01 (1996). ‒ P. 49-55.; Amin T. J., Lamping J. W., Hendricks K. J., McIff T. E. Increasing the elution of vancomycin from high-dose antibiotic-loaded bone cement: a novel preparation technique // JBJS. – 2012. – Vol. 94, № 21. – Р. 1946-1951.; Anagnostakos K., Meyer C. Antibiotic elution from hip and knee acrylic bone cement spacers: a systematic review // BioMed Res. International. – 2017. – Vol. 2017.; Athans V., Veve M. P., Davis S. L. Trowels and tribulations: Review of antimicrobial-impregnated bone cements in prosthetic joint surgery // Pharmacotherapy: J. Human Pharmacol. Drug Ther. – 2017. – Vol. 37, № 12. – Р. 1565-1577.; Ayre W. N., Birchall J. C., Evans S. L., Denyer S. P. A novel liposomal drug delivery system for PMMA bone cements // J. Biomed. Mater. Res. Part B: Applied Biomaterials. – 2016. – Vol. 104, № 8. – Р. 1510-1524.; Baleani M., Persson C., Zolezzi C., Andollina A., Borrelli A. M., Tigani D. Biological and biomechanical effects of vancomycin and meropenem in acrylic bone cement // J. Arthroplasty. – 2008. – Vol. 23, № 8. – Р. 1232-1238.; Bistolfi A., Massazza G., Verné E., Massè A., Deledda D., Ferraris S., Miola M., Galetto F., Crova M. Antibiotic-loaded cement in orthopedic surgery: a review // ISRN Orthopedics. – 2011. – Vol. 2011.; Bridgens J., Davies S., Tilley L., Norman P., Stockley I. Orthopaedic bone cement: do we know what we are using? // J. Bone Joint. Surg. Br. ‒ 2008. ‒ Vol. 90, № 5. ‒ Р. 643-647. doi:10.1302/0301-620X.90B5.19803.; Brock H. S., Moodie P. G., Hendricks K. J., McIff T. E. Compression strength and porosity of single-antibiotic cement vacuum-mixed with vancomycin // J. Arthroplasty. – 2010. – Vol. 25, № 6. – Р. 990-997.; Buchholz H. W., Engelbrecht H. Uber die Depotwirkung einiger Antibiotica bei Vermischung mit dem Kunstharz Palacos [Depot effects of various antibiotics mixed with Palacos resins]. Chirurg. ‒ 1970. ‒ Vol. 41, № 11. ‒ Р. 511-515. German. PMID: 5487941.; Chang C. H., Hu C. C., Chang Y., Hsieh P. H., Shih H. N., Ueng, S. W. N. Two-stage revision arthroplasty for Mycobacterium tuberculosis periprosthetic joint infection: An outcome analysis // PloS one. – 2018. – Vol. 13, № 9. – Р. e0203585.; Chang Y. H., Tai C. L., Hsu H. Y., Hsieh P. H., Lee M. S., Ueng, S. W. N. Liquid antibiotics in bone cement: an effective way to improve the efficiency of antibiotic release in antibiotic loaded bone cement // Bone Joint Res. – 2014. – Vol. 3, № 8. – Р. 246-251.; Frew N. M., Cannon T., Nichol T., Smith T. J., Stockley I. Comparison of the elution properties of commercially available gentamicin and bone cement containing vancomycin with ‘home-made’ preparations // Bone Joint J. – 2017. – Vol. 99, № 1. – Р. 73-77.; Galasso O., Mariconda M., Calonego G., Gasparini G. Physical, mechanical and pharmacological properties of coloured bone cement with and without antibiotics // J. Bone Joint Surg. British volume. – 2011. – Vol. 93, № 11. – Р. 1529-1536.; Galvez-Lopez R., Pena-Monje A., Antelo-Lorenzo R., Guardia-Olmedo J., Moliz J., Hernandez-Quero J., Parra-Ruiz J. Elution kinetics, antimicrobial activity, and mechanical properties of 11 different antibiotic loaded acrylic bone cement // Diagnost. Microbiol. Infect. Dis. – 2014. – Vol. 78, № 1. – Р. 70-74.; Han C. D., Oh T., Cho S. N., Yang J. H., Park K. K. Isoniazid could be used for antibiotic-loaded bone cement for musculoskeletal tuberculosis: an in vitro study // Clin. Orthopaed. Related Res®. – 2013. – Vol. 471, № 7. – Р. 2400-2406.; Hsieh P. H., Tai C. L., Lee P. C., Chang Y. H. Liquid gentamicin and vancomycin in bone cement: a potentially more cost-effective regimen // J. Arthroplasty. – 2009. – Vol. 24, № 1. – Р. 125-130.; Klekamp J., Dawson J. M., Haas D. W., DeBoer D., Christie M. The use of vancomycin and tobramycin in acrylic bone cement: biomechanical effects and elution kinetics for use in joint arthroplasty // J. Arthroplasty. – 1999. – Vol. 14, № 3. – Р. 339-346.; Kucera T., Ryskova L., Soukup T., Malakova J., Cermakova E., Mericka P. Elution kinetics of vancomycin and gentamicin from carriers and their effects on mesenchymal stem cell proliferation: an in vitro study // BMC musculoskeletal disorders. – 2017. – Vol. 18, № 1. – Р. 1-10.; Leclere L. E., Sechriest V. F. 2nd, Holley K. G., Tsukayama D. T. Tuberculous arthritis of the knee treated with two-stage total knee arthroplasty. A case report // J. Bone Joint Surg Am. ‒2009. ‒ Vol. 91, № 1. ‒ Р. 186-191. doi:10.2106/JBJS.G.01421.; Lee J. H., Han C. D., Cho S. N., Yang I. H., Lee, W. S., Baek, S. H. How long does antimycobacterial antibiotic-loaded bone cement have in vitro activity for musculoskeletal tuberculosis? // Clin. Orthopaed. Related Res®. – 2017. – Vol. 475, № 11. – Р. 2795-2804.; Lee J. H., Shin S. J., Cho S. N., Baek S. H., Park K. K. Does the effectiveness and mechanical strength of kanamycin-loaded bone cement in musculoskeletal tuberculosis compare to vancomycin-loaded bone cement // J. Arthroplasty. – 2020. – Vol. 35. – №. 3. – Р. 864-869.; Lee S. H., Tai C. L., Chen S. Y., Chang C. H., Chang Y. H., Hsieh P. H. Elution and mechanical strength of vancomycin-loaded bone cement: in vitro study of the influence of brand combination // PLoS One. – 2016. – Vol. 11, № 11. – Р. e0166545.; Lin T., Cai X., Shi M., Ying Z., Hu B., Zhou C., Wang W., Shi Z, Yan S. In vitro and in vivo evaluation of vancomycin-loaded PMMA cement in combination with ultrasound and microbubbles-mediated ultrasound // BioMed Res. International. – 2015. – Vol. 2015.; Martinez-Moreno J., Mura C., Merino V., Nacher A., Climente M., Merino-Sanjuan M. Study of the influence of bone cement type and mixing method on the bioactivity and the elution kinetics of ciprofloxacin // J. Arthroplasty. ‒ 2015. ‒ Vol. 30. – Р. 1243-1249. doi:10.1016/j.arth.2015.02.016.; Masri B. A., Duncan C. P., Jewesson P., Ngui-Yen J., Smith J. Streptomycin-loaded bone cement in the treatment of tuberculous osteomyelitis: an adjunct to conventional therapy // Canad. J. Surgery. – 1995. – Vol. 38, № 1. – Р. 64.; Masri B. A., Duncan C. P., Beauchamp C. P. Long-term elution of antibiotics from bone-cement: an in vivo study using the prosthesis of antibiotic-loaded acrylic cement (PROSTALAC) system // J. Arthroplasty. – 1998. – Vol. 13, № 3. – Р. 331-338.; Meyer J., Piller G., Spiegel C. A., Hetzel S., Squire M. Vacuum-mixing significantly changes antibiotic elution characteristics of commercially available antibiotic-impregnated bone cements // J. Bone Joint Surg. Am. ‒ 2011. ‒ Vol. 93. – Р. 2049-2056. doi:10.2106/JBJS.J.01777.; Miller R., McLaren A., Leon C., McLemore R. Mixing method affects elution and strength of high-dose ALBC: a pilot study // Clin. Orthopaedics Related Res®. – 2012. – Vol. 470, № 10. – Р. 2677-2683.; Miola M., Bistolfi A., Valsania M. C., Bianco C., Fucale G., Verné, E. Antibiotic-loaded acrylic bone cements: An in vitro study on the release mechanism and its efficacy // Materials Sci. Engineering: C. – 2013. – Vol. 33, №. 5. – Р. 3025-3032.; Paz E., Sanz-Ruiz P., Abenojar J., Vaquero-Martin J., Forriol F., Del Real J. C. Evaluation of elution and mechanical properties of high-dose antibiotic-loaded bone cement: comparative “in vitro” study of the influence of vancomycin and cefazolin // J. Arthroplasty. – 2015. – Vol. 30, № 8. – Р. 1423-1429.; Pelletier M. H., Malisano L., Smitham P. J., Okamoto K., Walsh W. R. The compressive properties of bone cements containing large doses of antibiotics // J. Arthroplasty. – 2009. – Vol. 24, № 3. – Р. 454-460.; Persson C., Baleani M., Guandalini L., Tigani D., Viceconti M. Mechanical effects of the use of vancomycin and meropenem in acrylic bone cement // Acta Orthopaedica. – 2006. – Vol. 77, № 4. – Р. 617-621.; Pfarr B., Burri C. Prospektive Studie über den Effekt von Gentamycin-Palacos bei 200 Totalprothesen der Hüfte [Prospective study on the effect of gentamycin-Palacos in 200 total hip prostheses] // Aktuelle Probl Chir Orthop. ‒ 1979. ‒ Vol. 12. ‒ Р. 207-210. German. PMID: 36786.; Pithankuakul K., Samranvedhya W., Visutipol B., Rojviroj S. The effects of different mixing speeds on the elution and strength of high-dose antibiotic-loaded bone cement created with the hand-mixed technique // J. Arthroplasty. – 2015. – Vol. 30, № 5. – Р. 858-863.; Sanz-Ruiz P., Carbó-Laso E., Del Real-Romero J. C., Arán-Ais F., Ballesteros-Iglesias Y., Paz-Jiménez E. Microencapsulation of rifampicin: A technique to preserve the mechanical properties of bone cement // J. Orthopaedic Res®. – 2018. – Vol. 36, № 1. – Р. 459-466.; Slane J., Gietman B., Squire M. Antibiotic elution from acrylic bone cement loaded with high doses of tobramycin and vancomycin // J. Orthopaedic Res®. – 2018. – Vol. 36, № 4. – Р. 1078-1085.; Wang J., Zhu C., Cheng T., Peng X., Zhang W., Qin H. A systematic review and meta-analysis of antibiotic-impregnated bone cement use in primary total hip or knee arthroplasty // PloS one. – 2013. – Vol. 8, № 12. – Р. e82745.; Wu K., Chen, Y., Hsu Y., Chang, C. H. Enhancing drug release from antibiotic-loaded bone cement using porogens // JAAOS-Journal of the American Academy of Orthopaedic Surgeons. – 2016. – Vol. 24, № 3. – Р. 188-195.