RESULTS OF PRECLINICAL TESTS OF SMALL-DIAMETER TISSUE ENGINEERED VASCULAR GRAFTS ON THE PRIMATE MODEL ; РЕЗУЛЬТАТЫ ПРЕКЛИНИЧЕСКИХ ИСПЫТАНИЙ ПРОТЕЗОВ КРОВЕНОСНЫХ СОСУДОВ МАЛОГО ДИАМЕТРА НА МОДЕЛИ ПРИМАТА

Συγγραφείς: Evgenia A. Senokosova, Evgenia O. Krivkina, Andrey V. Mironov, Egor S. Sardin, Tatyana Yu. Sergeeva, Vera G. Matveeva, Maryam Yu. Khanova, Evgenia A. Torgunakova, Rinat A. Mukhamadiyarov, Larisa V. Antonova, Евгения Андреевна Сенокосова, Евгения Олеговна Кривкина, Андрей Владимирович Миронов, Егор Сергеевич Сардин, Татьяна Юрьевна Сергеева, Вера Геннадьевна Матвеева, Марьям Юрисовна Ханова, Евгения Александровна Торгунакова, Ринат Авхадиевич Мухамадияров, Лариса Валерьевна Антонова

Συνεισφορές: Исследование выполнено при финансовой поддержке Министерства науки и высшего образования Российской Федерации в рамках Соглашения о предоставлении из федерального бюджета грантов в форме субсидий в соответствии с пунктом 4 статьи 78.1 Бюджетного кодекса Россий-ской Федерации №075-15-2022-1202 от 30 сентября 2022, заключённого в целях реализации Распоряжения Правительства Российской Федерации от 11 мая 2022

Πηγή: Complex Issues of Cardiovascular Diseases; Том 13, № 4 (2024); 90-103 ; Комплексные проблемы сердечно-сосудистых заболеваний; Том 13, № 4 (2024); 90-103 ; 2587-9537 ; 2306-1278

Θεματικοί όροι: Павианы, Electrospinning, Polyurethane, Polycaprolactone, Baboons, Электроспиннинг, Полиуретан, Поликапролактон

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://www.nii-kpssz.com/jour/article/view/1511/956; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1511/1710; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1511/1711; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1511/1712; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1511/1713; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1511/1714; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1511/1715; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1511/1716; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1511/1717; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1511/1718; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1511/1719; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1511/1721; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1511/1837; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1511/1838; Pashneh-Tala S., MacNeil S., Claeyssens F. The Tissue-Engineered Vascular Graft-Past, Present, and Future. Tissue Eng Part B Rev. 2016; 22(1):68-100. doi:10.1089/ten.teb.2015.0100.; Moreno M.J., Ajji A., Mohebbi-Kalhori D., Rukhlova M., Hadjizadeh A., Bureau M.N. Development of a compliant and cytocompatible micro-fibrous polyethylene terephthalate vascular scaffold. J Biomed Mater Res B Appl Biomater. 2011; 97(2):201-214. doi:10.1002/jbm.b.31774.; Кривкина Е.О., Антонова Л.В. Результаты долгосрочной проходимости биодеградируемых сосудистых протезов малого диаметра с атромбогенным лекарственным покрытием на модели овцы. Комплексные проблемы сердечно-сосудистых заболеваний. 2021;10(2):36-39. doi:10.17802/2306-1278-2021-10-2S- 36-39.; Lee K.S., Kayumov M., Emechebe G.A., Kim D.W., Cho H.J., Jeong Y.J., Lee D.W., Park J.K., Park C.H., Kim C.S., Obiweluozor F.O., Jeong I.S. A Comparative Study of an Anti-Thrombotic Small-Diameter Vascular Graft with Commercially Available e-PTFE Graft in a Porcine Carotid Model. Tissue Eng Regen Med. 2022; 19(3):537-551. doi:10.1007/s13770-021-00422-4.; Lin C.H., Hsia K., Ma H., Lee H., Lu J.H. In Vivo Performance of Decellularized Vascular Grafts: A Review Article. Int J Mol Sci. 2018; 19(7):2101. doi:10.3390/ijms19072101.; van de Laar B.C., van Heusden H.C., Pasker-de Jong P.C., van Weel V. Omniflow II biosynthetic grafts versus expanded polytetrafluoroethylene grafts for infrainguinal bypass surgery. A single-center retrospective analysis. Vascular. 2022;30(4):749-758. doi:10.1177/17085381211029815.; Toong D.W.Y., Toh H.W., Ng J.C.K., Wong P.E.H., Leo H.L., Venkatraman S., Tan L.P., Ang H.Y., Huang Y. Bioresorbable Polymeric Scaffold in Cardiovascular Applications. Int J Mol Sci. 2020; 21(10):3444. doi:10.3390/ijms21103444.; Leal B.B.J., Wakabayashi N., Oyama K., Kamiya H., Braghirolli D.I., Pranke P. Vascular Tissue Engineering: Polymers and Methodologies for Small Caliber Vascular Grafts. Front Cardiovasc Med. 2021; 7:592361. doi:10.3389/fcvm.2020.592361.; Севостьянова В.В., Миронов А.В., Глушкова Т.В., Бураго А.Ю., Матвеева В.Г. Антонова Л.В., Кудрявцева Ю.А., Сейфалиан А.М., Барбараш О.Л., Барбараш Л.С. Регенерация кровеносного сосуда на основе графта из поликапролактона в экспериментальном исследовании. Сибирский журнал клинической и экспериментальной медицины. 2016; 31(1): 53-57. doi:10.29001/2073-8552-2016-31-1-53-57.; Глушкова Т.В., Севостьянова В.В., Антонова Л.В., Клышников К.Ю., Овчаренко Е.А., Сергеева Е.А., Васюков Г.Ю., Сейфалиан А.М., Барбараш Л.С. Биомеханическое ремоделирование биодеградируемых сосудистых графтов малого диаметра in situ. Вестник трансплантологии и искусственных органов. 2016;18(2):99-109. doi:10.15825/1995-1191-2016-2-99-109.; Антонова Л.В., Севостьянова В.В., Кутихин А.Г., Великанова Е.А., Матвеева В.Г., Глушкова Т.В., Миронов А.В., Кривкина Е.О., Барбараш О.Л., Барбараш Л.С. Влияние способа модифицирования трубчатого полимерного матрикса биомолекулами bFGF, SDF-1α и VEGF на процессы формирования in vivo тканеинженерного кровеносного сосуда малого диаметра. Вестник трансплантологии и искусственных органов. 2018;20(1):96-109. doi:10.15825/1995-1191-2018-1-96-109.; Antonova L., Kutikhin A., Sevostianova V., Lobov A., Repkin E., Krivkina E., Velikanova E., Mironov A., Mukhamadiyarov R., Senokosova E., Khanova M., Shishkova D., Markova V., Barbarash L. Controlled and Synchronised Vascular Regeneration upon the Implantation of Iloprost- and Cationic Amphiphilic Drugs-Conjugated Tissue-Engineered Vascular Grafts into the Ovine Carotid Artery: A Proteomics-Empowered Study. Polymers (Basel). 2022; 14(23):5149. doi:10.3390/polym14235149.; Кудрявцева Ю.А., Овчаренко Е.А., Клышников К.Ю., Антонова Л.В., Сенокосова Е.А., Понасенко А.В., Барбараш О.Л., Барбараш Л.С. Биологические протезы для сердечно-сосудистой хирургии – полувековая история и перспективы развития. Комплексные проблемы сердечно-сосудистых заболеваний. 2024; 13(1):196-210. doi:10.17802/2306-1278-2024-13-1-196-210.; Сенокосова Е.А., Кривкина Е.О., Акентьева Т.Н., Глушкова Т.В., Кошелев В.А., Ханова М.Ю., Антонова Л.В. Тканеинженерный протез кровеносного сосуда: оценка качества материала и функциональной активности атромбогенного лекарственного покрытия. Комплексные проблемы сердечно-сосудистых заболеваний. 2024; 13(3): 193-201.; Rickel A.P., Deng X., Engebretson D., Hong Z. Electrospun nanofiber scaffold for vascular tissue engineering. Mater Sci Eng C Mater Biol Appl. 2021; 129:112373. doi:10.1016/j.msec.2021.112373.; Zhou S.Y., Li L., Xie E., Li M.X., Cao J.H., Yang X.B., Wu D.Y. Small-diameter PCL/PU vascular graft modified with heparin-aspirin compound for preventing the occurrence of acute thrombosis. Int J Biol Macromol. 2023; 249:126058. doi:10.1016/j.ijbiomac.2023.126058.; Qiu S., Du J., Zhu T., Zhang H., Chen S., Wang C., Chen D, Lu S. Electrospun compliant heparinized elastic vascular graft for improving the patency after implantation. Int J Biol Macromol. 2023; 253(1):126598. doi:10.1016/j.ijbiomac.2023.126598.; Ilanlou S., Khakbiz M., Amoabediny G., Mohammadi J., Rabbani H. Carboxymethyl kappa carrageenan-modified decellularized small-diameter vascular grafts improving thromboresistance properties. J Biomed Mater Res A. 2019;107(8):1690-1701. doi:10.1002/jbm.a.36684.; Zhang C., Xie Q., Cha R., Ding L., Jia L., Mou L., Cheng S., Wang N., Li Z., Sun Y., Cui C., Zhang Y., Zhang Y., Zhou F., Jiang X. Anticoagulant Hydrogel Tubes with Poly(ɛ-Caprolactone) Sheaths for Small-Diameter Vascular Grafts. Adv Healthc Mater. 2021; 10(19):e2100839. doi:10.1002/adhm.202100839.; Wu Y., Wagner W.D. Syndecan-4 Functionalization Reduces the Thrombogenicity of Engineered Vascular Biomaterials. Ann Biomed Eng. 2024; 52(7):1873-1882. doi:10.1007/s10439-023-03199-w.; Antonova L.V., Silnikov V.N., Sevostyanova V.V., Yuzhalin A.E., Koroleva L.S., Velikanova E.A., Mironov A.V., Godovikova T.S., Kutikhin A.G., Glushkova T.V., Serpokrylova I.Y., Senokosova E.A., Matveeva V.G., Khanova M.Y., Akentyeva T.N., Krivkina E.O., Kudryavtseva Y.A., Barbarash L.S. Biocompatibility of Small-Diameter Vascular Grafts in Different Modes of RGD Modification. Polymers (Basel). 2019; 11(1):174. doi:10.3390/polym11010174.; Gruzdeva O.V., Bychkova E.E., Penskaya T.Y., Kuzmina A.A., Antonova L.V., Barbarash L.S. Integral and Local Methods for the Evaluation of the Hemostasiological Profile in Sheep at Various Stages of Implantation of a Biodegradable Vascular Graft. Sovrem Tekhnologii Med. 2022;14(5):26-34. doi:10.17691/stm2022.14.5.03.; Антонова Л.В., Кривкина Е.О., Резвова М.А., Севостьянова В.В., Ткаченко В.О., Глушкова Т.В., Акентьева Т.Н., Кудрявцева Ю.А., Барбараш Л.С. Разработка технологии формирования атромбогенного лекарственного покрытия для биодеградируемых сосудистых протезов малого диаметра. Современные технологии в медицине. 2020; 12(6):6-14. doi:10.17691/stm2020.12.6.01.; Fortin W., Bouchet M., Therasse E., Maire M., Héon H., Ajji A., Soulez G., Lerouge S. Negative In Vivo Results Despite Promising In Vitro Data With a Coated Compliant Electrospun Polyurethane Vascular Graft. J Surg Res. 2022; 279:491-504. doi:10.1016/j.jss.2022.05.032.; Wang C., Li Z., Zhang L., Sun W., Zhou J. Long-term results of triple-layered small diameter vascular grafts in sheep carotid arteries. Med Eng Phys. 2020; 85:1-6. doi:10.1016/j.medengphy.2020.09.007.; Soldani G., Murzi M., Faita F., Di Lascio N., Al Kayal T., Spanò R., Canciani B., Losi P. In vivo evaluation of an elastomeric small-diameter vascular graft reinforced with a highly flexible Nitinol mesh. J Biomed Mater Res B Appl Biomater. 2019; 107(4):951-964. doi:10.1016/10.1002/jbm.b.34189.; Fang S., Ellman D.G., Andersen D.C. Review: Tissue Engineering of Small-Diameter Vascular Grafts and Their In Vivo Evaluation in Large Animals and Humans. Cells. 2021; 10(3):713. doi:10.1016/10.3390/cells10030713.; Антонова Л.В., Кривкина Е.О., Ханова М.Ю., Великанова Е.А., Матвеева В.Г., Миронов А.В., Шабаев А.Р., Сенокосова Е.А., Глушкова Т.В., Синицкий М.Ю., Мухамадияров Р.А., Барбараш Л.С. Результаты преклинических испытаний биодеградируемых сосудистых протезов малого диаметра на модели овцы. Вестник трансплантологии и искусственных органов. 2022; 24(3):80-93. doi:10.15825/1995-1191-2022-3-80-93.; Ye L., Takagi T., Tu C., Hagiwara A., Geng X., Feng Z. The performance of heparin modified poly(ε-caprolactone) small diameter tissue engineering vascular graft in canine-A long-term pilot experiment in vivo. J Biomed Mater Res A. 2021; 109(12):2493-2505. doi:10.1002/jbm.a.37243.

Διαθεσιμότητα: https://www.nii-kpssz.com/jour/article/view/1511

Биоразлагаемые композиционные материалы на основе поликапролактона с наполнением соломой зерновых культур

Θεματικοί όροι: Полимеры, Поликапролактон, Лигноцеллюлозные материалы, Биоразлагаемые пластики, Полимерные композиты, Биоразлагаемые материалы, Композиционные материалы, Биоразлагаемые композиты, Полимерные композиции

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Σύνδεσμος πρόσβασης: https://elib.gstu.by/handle/220612/41602

Биоразлагаемые композиционные материалы на основе поликапролактона с наполнением соломой зерновых культур

Θεματικοί όροι: Polycaprolactone, Поликапролактон, Солома, Biodegradable materials, Биоразлагаемые материалы, Straw

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Σύνδεσμος πρόσβασης: https://elib.gstu.by/handle/220612/36670

Нанесение биоактивных покрытий на поликапролактон с использованием обработки смесью хорошего и плохого растворителей

Συνεισφορές: Твердохлебов, Сергей Иванович

Θεματικοί όροι: нанесение покрытий, биоактивные покрытия, гидроксиапатиты, поликапролактон, скаффолды, обработка, растворители

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Σύνδεσμος πρόσβασης: http://earchive.tpu.ru/handle/11683/76752

Biomimetic approach to the design of artificial small‑diameter blood vessels ; Биомиметический подход к разработке протезов кровеносных сосудов малого диаметра

Συγγραφείς: E. A. Nemets, Yu. V. Belov, K. S. Kiryakov, N. V. Grudinin, V. K. Bogdanov, K. S. Filippov, A. O. Nikolskaya, I. Yu. Tyunyaeva, A. A. Vypryshko, V. M. Zaxarevich, Yu. B. Basok, V. I. Sevastianov, Е. А. Немец, В. Ю. Белов, К. С. Кирьяков, Н. В. Грудинин, В. К. Богданов, К. С. Филиппов, А. О. Никольская, И. Ю. Тюняева, А. А. Выпрышко, В. М. Захаревич, Ю. Б. Басок, В. И. Севастьянов

Πηγή: Russian Journal of Transplantology and Artificial Organs; Том 26, № 2 (2024); 145-155 ; Вестник трансплантологии и искусственных органов; Том 26, № 2 (2024); 145-155 ; 1995-1191

Θεματικοί όροι: аорта крысы, electrospinning, tubular porous scaffold, polycaprolactone, gelatin, heparin, platelet lysate, endothelial cells, cytotoxicity, implantation, rat aorta, электроспиннинг, трубчатый пористый каркас, поликапролактон, желатин, гепарин, лизат тромбоцитов, эндотелиальные клетки, цитотоксичность, имплантация

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://journal.transpl.ru/vtio/article/view/1789/1620; https://journal.transpl.ru/vtio/article/view/1789/1659; https://journal.transpl.ru/vtio/article/downloadSuppFile/1789/1610; https://journal.transpl.ru/vtio/article/downloadSuppFile/1789/1611; https://journal.transpl.ru/vtio/article/downloadSuppFile/1789/1612; https://journal.transpl.ru/vtio/article/downloadSuppFile/1789/1613; https://journal.transpl.ru/vtio/article/downloadSuppFile/1789/1614; https://journal.transpl.ru/vtio/article/downloadSuppFile/1789/1615; https://journal.transpl.ru/vtio/article/downloadSuppFile/1789/1616; https://journal.transpl.ru/vtio/article/downloadSuppFile/1789/1617; https://journal.transpl.ru/vtio/article/downloadSuppFile/1789/1618; https://journal.transpl.ru/vtio/article/downloadSuppFile/1789/1619; https://journal.transpl.ru/vtio/article/downloadSuppFile/1789/1620; https://journal.transpl.ru/vtio/article/downloadSuppFile/1789/1621; https://journal.transpl.ru/vtio/article/downloadSuppFile/1789/1622; Das D, Noh I. Overviews of Biomimetic Medical Materials. Adv Exp Med Biol. 2018; 1064: 3–24. doi:10.1007/978-981-13-0445-3_1.; Weekes A, Bartnikowski N, Pinto N, Jenkins J, Meinert C, Klein TJ. Biofabrication of small diameter tissueengineered vascular grafts. Acta Biomater. 2022 Jan 15; 138: 92–111. doi:10.1016/j.actbio.2021.11.012.; Wesolowski SA, Fries CC, Karlson KE, De Bakey M, Sawyer PN. Porosity: primary determinant of ultimate fate of synthetic vascular grafts. Surgery. 1961; 50: 91–96.; Лебедев ЛВ, Плотник ЛЛ, Смирнов АД. Протезы кровеносных сосудов. Л.: Медицина, 1981; 192.; Guan G, Yu C, Fang X, Guidoin R, King MW, Wang H, Wang L. Exploration into practical significance of integral water permeability of textile vascular grafts. J Appl Biomater Funct Mater. 2021; 22808000211014007. doi:10.1177/22808000211014007.; Copes F, Pien N, Van Vlierberghe S, Boccafoschi F, Mantovani D. Collagen-Based Tissue Engineering Strategies for Vascular Medicine. Front Bioeng Biotechnol. 2019; 7: 166. doi:10.3389/fbioe.2019.00166.; Fortin W, Bouchet M, Therasse E, Maire M, Héon H, Ajji A et al. Negative In Vivo Results Despite Promising In Vitro Data With a Coated Compliant Electrospun Polyurethane Vascular Graft. J Surg Res. 2022; 279: 491– 504. doi:10.1016/j.jss.2022.05.032.; Huang F, Sun L, Zheng J. In vitro and in vivo characterization of a silk fibroin-coated polyester vascular prosthesis. Artif Organs. 2008; 12: 932–941. doi:10.1111/j.15251594.2008.00655.x.; Lee JH, Kim WG, Kim SS, Lee JH, Lee HB. Development and characterization of an alginate-impregnated polyester vascular graft. J Biomed Mater Res. 1997; 36: 200–208. doi:10.1002/(sici)1097-4636(199708)36:23.0.co;2-o.; Lisman A, Butruk B, Wasiak I, Ciach T. Dextran/Albumin hydrogel sealant for Dacron(R) vascular prosthesis. J Biomater Appl. 2014; 28: 1386–1396. doi:10.1177/0885328213509676.; Madhavan K, Elliott WH, Bonani W, Monnet E, Tan W. Mechanical and biocompatible characterizations of a readily available multilayer vascular graft. J Biomed Mater Res B Appl Biomater. 2013; 101: 506–519. doi:10.1002/jbm.b.32851.; Немец ЕА, Панкина АП, Сургученко ВА, Севастьянов ВИ. Биостабильность и цитотоксичность медицинских изделий на основе сшитых биополимеров. Вестник трансплантологии и искусственных органов. 2018; 20 (1): 79–85.; Глушкова ТВ, Овчаренко ЕА, Рогулина НВ, Клышников КЮ, Кудрявцева ЮА, Барбараш ЛС. Дисфункции эпоксиобработанных биопротезов клапанов сердц а. Кардиология. 2019; 59 (10): 49–59.; Hennink WE, van Nostrum CF. Novel crosslinking methods to design hydrogels. Adv Drug Deliv Rev. 2002; 54: 13–36. doi:10.1016/s0169-409x(01)00240-x.; Новикова СП, Салохединова РР, Лосева СВ, Николашина ЛН, Левкина АЮ. Анализ физико-механических и структурных характеристик протезов кровеносных сосудов. Грудная и сердечно-сосудистая хирургия. 2012; 54 (4): 27–33.; Попова ИВ, Степанова АО, Сергеевичев ДС, Акулов АЕ, Захарова ИС, Покушалов АА и др. Сравнительное исследование трех типов протезов, изготовленных методом электроспиннинга, в эксперименте in vitro и in vivo. Патология кровообращения и кардиохирургия. 2015; 19 (4): 63–71.; Chen X, Yao Y, Liu S, Hu Q. An integrated strategy for designing and fabricating triple-layer vascular graft with oriented microgrooves to promote endothelialization. J Biomater Appl. 2021; 36: 297–310. doi:10.1177/08853282211001006.; Huang R, Gao X, Wang J, Chen H, Tong C, Tan Y, Tan Z. Triple-Layer Vascular Grafts Fabricated by Combined E-Jet 3D Printing and Electrospinning. Ann Biomed Eng. 2018; 46 (9): 1254–1266. doi:10.1007/s10439-0182065-z.; Liu K, Wang N, Wang W, Shi L, Li H, Guo F et al. A bioinspired high strength three-layer nanofiber vascular graft with structure guided cell growth. J Mater Chem B. 2017; 5 (20): 3758–3764. doi:10.1039/c7tb00465f.; Nemets EA, Surguchenko VA, Belov VYu, Xajrullina AI, Sevastyanov VI. Porous Tubular Scaffolds for Tissue Engineering Structures of Small Diameter Blood Vessels. Inorganic Materials: Applied Research. 2023; 14: 400– 407. doi:10.1134/S2075113323020338.; Изделия медицинские. Оценка биологического действия медицинских изделий. Часть 5. Исследование на цитотоксичность: методы in vitro: ГОСТ ISO 109935-2023. М.: Российский институт стандартизации, 2023.; Blache U, Guerrero J, Güven S, Klar AS, Scherberich A. Microvascular networks and models: in vitro formation. W. Holnthoner, A. Banfi, J. Kirkpatrick, H. Redleds. Vascularization for tissue engineering and regenerative medicine. Reference series in biomedical engineering. Springer, Cham. 2021: 345–383. doi:10.1007/978-3319-54586-8.; Григорьев АМ, Басок ЮБ, Кириллова АД, Сургученко ВА, Шмерко НП, Кулакова ВК и др. Криогенноструктурированный гидрогель на основе желатина как резорбируемая макропористая матрица для биомедицинских технологий. Вестник трансплантологии и искусственных органов. 2022; 24 (2): 83–93. doi:10.15825/1995-1191-2022-2-83-93.; Rampersad SN. Multiple applications of alamar blue as an indicator of metabolic function and cellular health in cell viability bioassays. Sensors. 2012; 12: 12347– 12360. doi:10.3390/s120912347.; Wang Z, Liu S, Guidoin R, Kodama M. Polyurethane vascular grafts with thorough porosity: does an internal or an external membrane wrapping improve their in vivo blood compatibility and biofunctionality? Artif Cells Blood Substit Immobil Biotechnol. 2004; 32 (3): 463– 484. doi:10.1081/bio-200027524.; Tara S, Kurobe H, Rocco KA, Maxfield MW, Best CA, Yi T et al. Well-organized neointima of large-pore poly(L-lactic acid) vascular graft coated with poly(Llactic-co-ε-caprolactone) prevents calcific deposition compared to small-pore electrospun poly(L-lactic acid) graft in a mouse aortic implantation model. Atherosclerosis. 2014; 237 (2): 684–691. doi:10.1016/j.atherosclerosis.2014.09.030.; https://journal.transpl.ru/vtio/article/view/1789

Διαθεσιμότητα: https://journal.transpl.ru/vtio/article/view/1789
https://doi.org/10.15825/1995-1191-2024-2-145-155

TISSUE-ENGINEERED VASCULAR GRAFT: ASSESSMENT OF MATERIAL QUALITY AND ACTIVITY OF ANTI-TROMBOGENIC COATING ; ТКАНЕИНЖЕНЕРНЫЙ ПРОТЕЗ КРОВЕНОСНОГО СОСУДА: ОЦЕНКА КАЧЕСТВА МАТЕРИАЛА И ФУНКЦИОНАЛЬНОЙ АКТИВНОСТИ АТРОМБОГЕННОГО ЛЕКАРСТВЕННОГО ПОКРЫТИЯ

Συγγραφείς: Evgenia A. Senokosova, Evgenia O. Krivkina, Tatiana N. Akentieva, Tatiana V. Glushkova, Vladislav A. Koshelev, Maryam Yu. Khanova, Larisa V. Antonova, Евгения Андреевна Сенокосова, Евгения Олеговна Кривкина, Татьяна Николаевна Акентьева, Татьяна Владимировна Глушкова, Владислав Александрович Кошелев, Марьям Юрисовна Ханова, Лариса Валерьевна Антонова

Συνεισφορές: Исследование выполнено при финансовой поддержке Министерства науки и высшего образования Российской Федерации в рамках соглашения о предоставлении из федерального бюджета грантов в форме субсидий в соответствии с пунктом 4 статьи 78.1 Бюджетного кодекса Российской Федерации № 075-15-2022-1202 от 30 сентября 2022 г., заключенного в целях реализации Распоряжения Правительства Российской Федерации от 11 мая 2022 г. № 1144-р.

Πηγή: Complex Issues of Cardiovascular Diseases; Том 13, № 3 (2024); 193-201 ; Комплексные проблемы сердечно-сосудистых заболеваний; Том 13, № 3 (2024); 193-201 ; 2587-9537 ; 2306-1278

Θεματικοί όροι: Гемосовместимость, Polycaprolactone, Polyurethane, Electrospinning, Hemocompatibility, Поликапролактон, Полиуретан, Электроспиннинг

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://www.nii-kpssz.com/jour/article/view/1490/928; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1490/1668; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1490/1669; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1490/1670; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1490/1672; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1490/1674; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1490/1675; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1490/1676; Fahad M.A.A., Lee H.Y., Park S., Choi M., Shanto P.C., Park M., Bae S.H., Lee B.T. Small-diameter vascular graft composing of core-shell structured micro-nanofibers loaded with heparin and VEGF for endothelialization and prevention of neointimal hyperplasia. Biomaterials. 2024; 306:122507. doi:10.1016/j.biomaterials.2024.122507.; Elliott M.B., Ginn B., Fukunishi T., Bedja D., Suresh A., Chen T., Inoue T., Dietz H.C., Santhanam L., Mao H.Q., Hibino N., Gerecht S. Regenerative and durable small-diameter graft as an arterial conduit. Proc Natl Acad Sci USA. 2019; 116(26):12710-12719. doi:10.1073/pnas.1905966116.; Fang Q., Gu T., Fan J., Zhang Y., Wang Y., Zhao Y., Zhao P. Evaluation of a hybrid small caliber vascular graft in a rabbit model. J Thorac Cardiovasc Surg. 2020; 159(2):461-473. doi:10.1016/j.jtcvs.2019.02.083.; Fusco D., Meissner F., Podesser B.K., Marsano A., Grapow M., Eckstein F., Winkler B. Small-diameter bacterial cellulose-based vascular grafts for coronary artery bypass grafting in a pig model. Front Cardiovasc Med. 2022; 9:881557. doi:10.3389/fcvm.2022.881557.; Кривкина Е.О., Матвеева В.Г., Антонова Л.В. Сосудистые протезы с противомикробным покрытием: экспериментальные разработки и внедрение в клиническую практику. Комплексные проблемы сердечно-сосудистых заболеваний. 2021;10(3):90-102. doi:10.17802/2306-1278-2021-10-3-90-102 [Krivkina E.O., Мatveeva V.G., Antonova L.V. Antimicrobial vascular grafts: experimental development and implementation in clinical practice. Complex Issues of Cardiovascular Diseases. 2021; 10(3):90-102. doi:10.17802/2306-1278-2021-10-3-90-102 (In Russian)]; Obiweluozor F.O., Emechebe G.A., Kim D.W., Cho H.J., Park C.H., Kim C.S., Jeong I.S. Considerations in the Development of Small-Diameter Vascular Graft as an Alternative for Bypass and Reconstructive Surgeries: A Review. Cardiovasc Eng Technol. 2020; 11(5):495-521. doi:10.1007/s13239-020-00482-y.; Awad N.K., Niu H., Ali U., Morsi Y.S., Lin T. Electrospun Fibrous Scaffolds for Small-Diameter Blood Vessels: A Review. Membranes (Basel). 2018; 8(1):15. doi:10.3390/membranes8010015.; Антонова Л.В., Севостьянова В.В., Резвова М.А., Кривкина Е.О., Кудрявцева Ю.А., Барбараш О.Л., Барбараш Л.С. Патентообладатель: Федеральное государственное бюджетное научное учреждение «Научно-исследовательский институт комплексных проблем сердечно-сосудистых заболеваний» (НИИ КПССЗ) Технология изготовления функционально активных биодеградируемых сосудистых протезов малого диаметра с лекарственным покрытием. Патент № 2702239 РФ; МПК A61F 2/06 №2019119912 заявл. 25.06.2019; опубл. 07.10.2019, Бюл. № 28 [Antonova L.V., Sevostyanova V.V., Rezvova M.A., Krivkina E.O., Kudryavtseva Yu.A., Barbarash O.L., Barbarash LS.; Federal State Budgetary Scientific Institution "Scientific Research Institute of Complex Problems of Cardiovascular Diseases" (NII KPSSZ), assignee. Manufacturing technology of functionally active biodegradable vascular prostheses of small diameter with a drug coating. patent 2702239 (RU). 07.10.2019. (In Russian)]; Siddiqui N., Asawa S., Birru B., Baadhe R., Rao S. PCL-Based Composite Scaffold Matrices for Tissue Engineering Applications. Mol Biotechnol. 2018; 60(7):506-532. doi:10.1007/s12033-018-0084-5.; Kucinska-Lipka J., Gubanska I., Janik H., Sienkiewicz M. Fabrication of polyurethane and polyurethane based composite fibres by the electrospinning technique for soft tissue engineering of cardiovascular system. Mater Sci Eng C Mater Biol Appl. 2015; 46:166-176. doi:10.1016/j.msec.2014.10.027.; Tatai L., Moore T.G., Adhikari R., Malherbe F., Jayasekara R., Griffiths I., Gunatillake P.A. Thermoplastic biodegradable polyurethanes: the effect of chain extender structure on properties and in vitro degradation. Biomaterials. 2007; 28(36):5407-5417. doi:10.1016/j.biomaterials.2007.08.035.; Hergenrother R.W., Wabers H.D., Cooper S.L. Effect of hard segment chemistry and strain on the stability of polyurethanes: in vivo biostability. Biomaterials. 1993; 14(6): 449–458. doi:10.1016/0142-9612(93)90148-u.; Antonova L. V., Sevostyanova V. V., Mironov A. V., Krivkina E. O., Velikanova E. A., Matveeva V. G., Glushkova T. V., Elgudin Ya. L., Barbarash L. S. In situ vascular tissue remodeling using biodegradable tubular scaffolds with incorporated growth factors and chemoattractant molecules. Complex Issues of Cardiovascular Diseases. 2018; 7 (2):25–36. doi:10.17802/2306-1278-2018-7-2-25-36; Matsuzaki Y., Miyamoto Sh., Miyachi H., Iwaki R., Shoji T., Blum K., Chang Yu-Ch., Kelly J., Reinhardt J.W., Nakayama H., Breuer C.K., Shinoka T. Improvement of a Novel Small-diameter Tissue-engineered Arterial Graft With Heparin Conjugation. 2021; Ann. Thorac. Surg. 111(4): 1234-1241. doi:10.1016/j.athoracsur.2020.06.112.; Fang J., Li S. End-Point Immobilization of Heparin on Electrospun Polycarbonate-Urethane Vascular Graft. Methods Mol Biol. 2022; 2375:47-59. doi:10.1007/978-1-0716-1708-3_5.; Антонова Л.В., Кривкина Е.О., Резвова М.А., Севостьянова В.В., Ткаченко В.О., Глушкова Т.В., Акентьева Т.Н., Кудрявцева Ю.А., Барбараш Л.С. Разработка технологии формирования атромбогенного лекарственного покрытия для биодеградируемых сосудистых протезов малого диаметра. Современные технологии в медицине. 2021; 12(6):6-12. doi:10.17691/stm2020.12.6.01; Vascular Grafts Market Size, Share & Trends Analysis Report by Product, by Application (Cardiac Aneurysm, Kidney Failure, Coronary Artery Disease, by Raw Material (Polyester, Polyurethane), by Region, and Segment Forecasts, 2021–2028. Available at: https://www.grandviewresearch.com/industry-analysis/vascular-graft-market (accessed 12.05. 2024).; Radke D., Jia W., Sharma D., Fena K., Wang G., Goldman J., Zhao F. Tissue Engineering at the Blood-Contacting Surface: A Review of Challenges and Strategies in Vascular Graft Development. Adv. Healthc. Mater. 2018; 7: e170146. doi:10.1002/adhm.201701461.; Yu J., Wang A., Tang Z., Henry J., Li-Ping Lee B., Zhu Y., Yuan F., Huang F, Li S. The effect of stromal cell-derived factor-1α/heparin coating of biodegradable vascular grafts on the recruitment of both endothelial and smooth muscle progenitor cells for accelerated regeneration. Biomaterials. 2012; 33(32):8062-74. doi:10.1016/j.biomaterials.2012.07.042.; Qiu X., Lee B.L., Ning X., Murthy N., Dong N., Li S. End-point immobilization of heparin on plasma-treated surface of electrospun polycarbonate-urethane vascular graft. Acta Biomater. 2017; 51:138-147. doi:10.1016/j.actbio.2017.01.012.; Lee K.S., Kayumov M., Emechebe G.A., Kim D.W., Cho H.J., Jeong Y.J., Lee D.W., Park J.K., Park C.H., Kim C.S., Obiweluozor F.O., Jeong I.S. A Comparative Study of an Anti-Thrombotic Small-Diameter Vascular Graft with Commercially Available e-PTFE Graft in a Porcine Carotid Model. Tissue Eng Regen Med. 2022; 19(3):537-551. doi:10.1007/s13770-021-00422-4.

Διαθεσιμότητα: https://www.nii-kpssz.com/jour/article/view/1490
https://doi.org/10.17802/2306-1278-2024-13-3-193-201

Нанесение биоактивных покрытий на поликапролактон с использованием обработки смесью хорошего и плохого растворителей

Συγγραφείς: Бочаров, Вадим Сергеевич, Дубиненко, Глеб Евгеньевич

Συνεισφορές: Твердохлебов, Сергей Иванович

Θεματικοί όροι: нанесение покрытий, биоактивные покрытия, поликапролактон, обработка, растворители, скаффолды, гидроксиапатиты

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: Химия и химическая технология в XXI веке : материалы XXIV Международной научно-практической конференции студентов и молодых ученых имени выдающихся химиков Л. П. Кулёва и Н. М. Кижнера, посвященной 85-летию со дня рождения профессора А. В. Кравцова, Томск, 15-19 мая 2023 г. Т. 2; http://earchive.tpu.ru/handle/11683/76752

Διαθεσιμότητα: http://earchive.tpu.ru/handle/11683/76752

Получение микропорошков поликапролактон/гидроксиаптит для 3D печати персонализированных остеоимплантатов

Θεματικοί όροι: гидроксиаптит, 3D-печать, адресная доставка, поликапролактон, биорезорбируемые полимеры, наполнители, микропорошки

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Σύνδεσμος πρόσβασης: http://earchive.tpu.ru/handle/11683/74177

Technique for reducing the surgical porosity of small-diameter vascular grafts ; Способ уменьшения хирургической пористости протезов кровеносных сосудов малого диаметра

Συγγραφείς: E. A. Nemets, A. I. Khairullina, V. Yu. Belov, V. A. Surguchenko, V. N. Vasilets, V. I. Sevastianov, E. A. Volkova, Yu. B. Basok, Е. А. Немец, А. И. Хайруллина, В. Ю. Белов, В. А. Сургученко, В. Н. Василец, Е. А. Волкова, Ю. Б. Басок, В. И. Севастьянов

Πηγή: Russian Journal of Transplantology and Artificial Organs; Том 25, № 3 (2023); 87-96 ; Вестник трансплантологии и искусственных органов; Том 25, № 3 (2023); 87-96 ; 1995-1191

Θεματικοί όροι: эндотелиальные клетки, polycaprolactone, gelatin, surgical porosity, mechanical properties, endothelial cells, поликапролактон, желатин, хирургическая пористость, механические свойства

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://journal.transpl.ru/vtio/article/view/1669/1512; https://journal.transpl.ru/vtio/article/view/1669/1528; https://journal.transpl.ru/vtio/article/downloadSuppFile/1669/1382; https://journal.transpl.ru/vtio/article/downloadSuppFile/1669/1383; https://journal.transpl.ru/vtio/article/downloadSuppFile/1669/1384; https://journal.transpl.ru/vtio/article/downloadSuppFile/1669/1385; https://journal.transpl.ru/vtio/article/downloadSuppFile/1669/1386; https://journal.transpl.ru/vtio/article/downloadSuppFile/1669/1387; https://journal.transpl.ru/vtio/article/downloadSuppFile/1669/1388; https://journal.transpl.ru/vtio/article/downloadSuppFile/1669/1389; https://journal.transpl.ru/vtio/article/downloadSuppFile/1669/1390; https://journal.transpl.ru/vtio/article/downloadSuppFile/1669/1391; https://journal.transpl.ru/vtio/article/downloadSuppFile/1669/1392; Протезы кровеносных сосудов. Общие технические требования. Методы испытаний: ГОСТ 31514-2012. Дата введения 01.01.2015. М.: Стандартинформ, 2015.; Szentivanyi A, Chakradeo T, Zernetsch H, Glasmacher B. Electrospun cellular microenvironments: understanding controlled release and scaffold structure. Adv Drug Deliv Rev. 2011; 63: 209–220.; Новикова СП, Салохединова РР, Лосева СВ, Николашина ЛН, Левкина АЮ. Анализ физико-механических и структурных характеристик протезов кровеносных сосудов. Грудная и сердечно-сосудистая хирургия. 2012; 54: 27–33.; Wesolowski SA, Fries CC, Karlson KE, De Bakey M, Sawyer PN. Porosity: primary determinant of ultimate fate of synthetic vascular grafts. Surgery. 1961; 50: 91–96.; Лебедев ЛВ, Плотник ЛЛ, Смирнов АД. Протезы кровеносных сосудов. Л.: Медицина, 1981; 192.; Guan G, Yu C, Fang X, Guidoin R, King MW, Wang H, Wang L. Exploration into practical significance of integral water permeability of textile vascular grafts. J Appl Biomater Funct Mater. 2021; 19: 22808000211014007. doi:10.1177/22808000211014007.; Yates SG, Barros D’Sa AA, Berger K, Fernandez LG, Wood SJ, Rittenhouse EA et al. The preclotting of porous arterial prostheses. Ann Surg. 1978; 188: 611–622.; Joseph J, Domenico Bruno V, Sulaiman N, Ward A, Johnson TW, Baby HM et al. A novel small diameter nanotextile arterial graft is associated with surgical feasibility and safety and increased transmural endothelial ingrowth in pig. J Nanobiotechnology. 2022; 20: 71. doi:10.1186/s12951-022-01268-1.; Hisagi M, Nishimura T, Ono M, Gojo S, Nawata K, Kyo S. New pre-clotting method for fibrin glue in a nonsealed graft used in an LVAD: the KYO method. J Artif Organs. 2010; 13: 174–177. doi:10.1007/s10047-010- 0504-1.; Weadock KS, Goggins JA. Vascular graft sealants. J Long Term Eff Med Implants. 1993; 3: 207–22.; Copes F, Pien N, Van Vlierberghe S, Boccafoschi F, Mantovani D. Collagen-Based Tissue Engineering Strategies for Vascular Medicine. Front Bioeng Biotechnol. 2019; 7: 166. doi:10.3389/fbioe.2019.00166.; Zdrahala RJ. Small caliber vascular grafts. Part I: state of the art. J Biomater Appl. 1996; 10: 309–329. doi:10.1177/088532829601000402.; Drury JK, Ashton TR, Cunningham JD, Maini R, Pollock JG. Experimental and clinical experience with a gelatin impregnated Dacron prosthesis. Ann Vasc Surg. 1987; 1: 542–547.; Fortin W, Bouchet M, Therasse E, Maire M, Héon H, Ajji A et al. Negative In Vivo Results Despite Promising In vitro Data With a Coated Compliant Electrospun Polyurethane Vascular Graft. J Surg Res. 2022; 279: 491– 504. doi:10.1016/j.jss.2022.05.032.; Huang F, Sun L, Zheng J. In vitro and in vivo characterization of a silk fibroin-coated polyester vascular prosthesis. Artif Organs. 2008; 12: 932–941. doi:10.1111/j.1525- 1594.2008.00655.x.; Lee JH, Kim WG, Kim SS, Lee JH, Lee HB. Development and characterization of an alginate-impregnated polyester vascular graft. J Biomed Mater Res. 1997; 36: 200–208. doi:10.1002/(sici)1097-4636(199708)36:23.0.co;2-o.; Lisman A, Butruk B, Wasiak I, Ciach T. Dextran/Albumin hydrogel sealant for Dacron(R) vascular prosthesis. J Biomater Appl. 2014; 28: 1386–1396. doi:10.1177/0885328213509676.; Madhavan K, Elliott WH, Bonani W, Monnet E, Tan W. Mechanical and biocompatible characterizations of a readily available multilayer vascular graft. J Biomed Mater Res B Appl Biomater. 2013; 101: 506–519. doi:10.1002/jbm.b.32851.; Немец ЕА, Панкина АП, Сургученко ВА, Севастьянов ВИ. Биостабильность и цитотоксичность медицинских изделий на основе сшитых биополимеров. Вестник трансплантологии и искусственных органов. 2018; 20 (1): 79–85. doi:10.15825/1995-1191-2018-1-79-85.; Глушкова ТВ, Овчаренко ЕА, Рогулина НВ, Клышников КЮ, Кудрявцева ЮА, Барбараш ЛС. Дисфункции эпоксиобработанных биопротезов клапанов сердца. Кардиология. 2019; 59 (10): 49–59. doi:10.18087/cardio.2019.10.n327.; Hennink WE, van Nostrum CF. Novel crosslinking methods to design hydrogels. Adv Drug Deliv Rev. 2002; 54: 13–36. doi:10.1016/s0169-409x(01)00240-x.; Chernonosova VS, Laktionov PP. Structural Aspects of Electrospun Scaffolds Intended for Prosthetics of Blood Vessels. Polymers (Basel). 2022; 14: 1698. doi:10.3390/polym14091698.; Fioretta ES, Simonet M, Smits AI, Baaijens FP, Bouten CV. Differential response of endothelial and endothelial colony forming cells on electrospun scaffolds with distinct microfiber diameters. Biomacromolecules. 2014; 15: 821–829. doi:10.1021/bm4016418.; Azimi B, Nourpanah P, Rabiee M, Arbab SJ. Poly (ε-caprolactone) Fiber: An Overview. Engineered Fibers Fabrics. 2014; 9: 74–90. doi:10.1177/155892501400900309.; Reid JA, McDonald A, Callanan A. Electrospun fibre diameter and its effects on vascular smooth muscle cells. J Mater Sci Mater Med. 2021; 32: 131. doi:10.1007/s10856-021-06605-8.; Nemets EA, Surguchenko VA, Belov VYu, Xajrullina AI, Sevastyanov VI. Porous Tubular Scaffolds for Tissue Engineering Structures of Small Diameter Blood Vessels. Inorganic Materials: Applied Research. 2023; 14: 400– 407. doi:10.1134/S2075113323020338.; Лебедев АВ, Бойко АИ. Зависимость прочности сваренных кровеносных сосудов от диаметра, толщины и модуля Юнга стенки. Биомедицинская инженерия и электроника. 2014; 2: 54–61.; https://journal.transpl.ru/vtio/article/view/1669

Διαθεσιμότητα: https://journal.transpl.ru/vtio/article/view/1669
https://doi.org/10.15825/1995-1191-2023-3-87-96

Artificial nerve conduit for guiding peripheral nerve growth (cadaveric study) ; Искусственный нервный проводник для направленного роста периферических нервов (кадаверное исследование)

Συγγραφείς: A. G. Fedyakov, E. A. Nemets, O. N. Dreval, A. V. Gorozhanin, L. A. Sidneva, Z. H. Plieva, M. A. Razin, N. V. Perova, V. I. Sevastianov, А. Г. Федяков, Е. А. Немец, О. Н. Древаль, А. В. Горожанин, Л. А. Сиднева, З. Х. Плиева, М. А. Разин, Н. В. Перова, В. И. Севастьянов

Πηγή: Russian Journal of Transplantology and Artificial Organs; Том 25, № 2 (2023); 99-106 ; Вестник трансплантологии и искусственных органов; Том 25, № 2 (2023); 99-106 ; 1995-1191

Θεματικοί όροι: регенерация, artificial nerve guide, nerve conduit, polycaprolactone, collagen, gelatin, regeneration, искусственный нервный проводник, нервный кондуит, поликапролактон, коллаген, желатин

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://journal.transpl.ru/vtio/article/view/1621/1474; https://journal.transpl.ru/vtio/article/view/1621/1493; Маргасов АВ. Актуальные проблемы травмы периферических нервов. РМЖ. 2018; 12 (1): 21–24. Margasov AV. Aktual’nye problemy travmy perifericheskih nervov. RMZh. 2018; 12 (1): 21–24.; Говенько ФС. Хирургия повреждений периферических нервов. СПб.: Феникс, 2010. 384 с.; Шоломов ИИ, Киреев СИ, Левченко КК. Состояние нервно-мышечного аппарата у больных с повреждениями ключицы, костей плечевого пояса и проксимального отдела плеча. Практическая неврология и нейрореабилитация. 2008; 3: 16–18.; Kuffler DP, Foy C. Restoration of Neurological Function Following Peripheral Nerve Trauma. International Journal of Molecular Sciences. 2020; 21 (5): 1808.; Houshyar S, Bhattacharyya A, Shanks R. Peripheral Nerve Conduit: Materials and Structures. ACS Chemical Neurosclence. 2019; 16 (11): 52.; English AW, Wilhelm JC, Ward PJ. Exercise, neurotrophins, and axon regeneration in the PNS. Physiology (Bethesda). 2014; 29: 437–445.; Piao CD, Yang K, Li P, Luo M. Autologous nerve graft repair of different degrees of sciatic nerve defect: stress and displacement at the anastomosis in a three-dimensional finite element simulation model. Neural regeneration res. 2015; 10 (5): 804–807.; Millesi H, Meisl G, Berger A. Further experience with interfascicular grafting of the median, ulnar, and radial nerves. J Bone Joint Surg. 1976; 58 (2): 209–218.; Kehoe S, Zhang XF, Boyd D. FDA approved guidance conduits and wraps for peripheral nerve injury: a review of materials and efficacy. Injury. 2012; 43 (5): 553–572.; Chrząszcz P, Derbisz K, Suszyński K, Miodoński J, Trybulski R, Lewin­Kowalik J et al. Application of peripheral nerve conduits in clinical practice: a literature review. Neurol. Neurochir. Pol. 2018; 52: 427–435.; Мирошникова ПК, Люндуп АВ, Бацаленко НП, Крашенинников МЕ, Занг Ю, Фельдман НБ, Береговых ВВ. Перспективные нервные кондуиты для стимуляции регенерации поврежденных периферических нервов. Вестник РАМН. 2018; 73 (6): 388–400. doi:10.15690/vramn1063.; Величанская АГ, Абросимов ДА, Бугрова МЛ, Казаков АВ, Погадаева ЕВ, Радаев АМ и др. Реконструкция периферического нерва при использовании биодеградируемого и бионедеградируемого кондуитов в эксперименте. 2020; 12 (5): 48–56. https://doi.org/10.17691/stm2020.12.5.05.; Liu D, Mi D, Zhang T, Zhang Y, Yan J, Wang Y et al. Tubulation repair mitigates misdirection of regenerating motor axons across a sciatic nerve gap in rats. Sci Rep. 2018; 8: 3443.; Du J, Jia X. Engineering nerve guidance conduits with three-dimenisonal bioprinting technology for long gap peripheral nerve regeneration. Neural Regen Res. 2019; 14: 2073.; Goulart CO, Pereira Lopes FR, Monte ZO, Dantas SV, Souto A, Oliveira JT et al. Evaluation of biodegradable polymer conduits – poly(l-lactic acid) – for guiding sciatic nerve regeneration in mice. Methods. 2016; 99: 28–36.; Fornasari BE, Carta G, Gambarotta G, Raimondo S. Natural-Based Biomaterials for Peripheral Nerve Injury Repair. Front Bioeng Biotechnol. 2020; 16 (8): 554257.; Nemets EA, Surguchenko VA, Belov YuV, Xajrullina AI, Sevastianov VI. Porous Tubular Scaffolds for Tissue Engineering Structures of Small Diameter Blood. Inorganic Materials: Applied Research. 2023; 14 (2): 400–407.; Федяков АГ, Древаль ОН, Кузнецов АВ, Севастьянов ВИ, Перова НВ, Немец ЕА и др. Экспериментальное обоснование применения гелевого имплантата «Сферо®Гель» и пленочного имплантата «ЭластоПОБ»® при травме периферической нервной системы в эксперименте. Вестник трансплантологии и искусственных органов. 2009; 11 (4): 75–80.; Krarup C, Isben A, Boeckstyns M et al. Effects of a Collagen Nerve Guide Tube in Patients With a Median or Ulnar Nerve Lesion. American Association for Hand Surgery Annual Meeting. 2011; 99.; Archibald SJ, Shefner J, Krarup C et al. Monkey Median Nerve Repaired by Nerve Graft or Collagen Nerve Guide Tube. J Neurosci. 1995; 15 (5): 4109–4123.; https://journal.transpl.ru/vtio/article/view/1621

Διαθεσιμότητα: https://journal.transpl.ru/vtio/article/view/1621
https://doi.org/10.15825/1995-1191-2023-2-99-106

Получение микропорошков поликапролактон/гидроксиаптит для 3D печати персонализированных остеоимплантатов

Συγγραφείς: Юрманов, В. А., Дубиненко, Глеб Евгеньевич, Твердохлебов, Сергей Иванович

Θεματικοί όροι: микропорошки, поликапролактон, гидроксиаптит, 3D-печать, биорезорбируемые полимеры, наполнители, адресная доставка

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: Перспективные материалы конструкционного и функционального назначения : сборник научных трудов Международной научно-технической молодежной конференции, Томск, 17–21 октября 2022 г.; http://earchive.tpu.ru/handle/11683/74177

Διαθεσιμότητα: http://earchive.tpu.ru/handle/11683/74177

Morphological changes in Harderian glands after the implantation of polycaprolactone films into the cornea ; Морфологические изменения желез Гардера после имплантации пленок поликапролактонных в роговицу

Συγγραφείς: Filippova, Ekaterina Olegovna, Zhuravleva, A. D.

Συνεισφορές: Kryuchkov, Yuri Yurievich

Θεματικοί όροι: изменения, железы Гардера, имплантация, пленки, роговица, поликапролактон, морфология

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: info:eu-repo/grantAgreement/RFBR//20-08-00648; Перспективы развития фундаментальных наук : сборник научных трудов XIX Международной конференции студентов, аспирантов и молодых ученых, г. Томск, 26-29 апреля 2022 г. Т. 4 : Биология и фундаментальная медицина; http://earchive.tpu.ru/handle/11683/72985

Διαθεσιμότητα: http://earchive.tpu.ru/handle/11683/72985

Angiogenic vitalization of biocompatible and biodegradable scaffold ( experimental study)

Συγγραφείς: Klabukov, Ilya, Balyasin, M., Lyundup, A., Krasheninnikov, M, Titov, A., Mudryak, D., Shepelev, A., Tenchurin, T., Chvalun, S. N., Dyuzheva, T.

Συνεισφορές: Klabukov, Ilya

Πηγή: ZHurnal «Patologicheskaia fiziologiia i eksperimental`naia terapiia». :53-60

Θεματικοί όροι: 0301 basic medicine, ангиогенез, biomaterial functionalization, ВИТАЛИЗАЦИЯ, biocompatible materials, ВАСКУЛЯРИЗАЦИЯ, Électrofilage, ANGIOGÈNES, ANGIOGENESIS, васкуляризация, angiogenesis, АНГИОГЕНЕЗ, витализация, Ingénierie tissulaire, поликапролактон, NEOVASCULGEN, VASCULARIZATION, 0303 health sciences, электроспиннинг, ТКАНЕВАЯ ИНЖЕНЕРИЯ, ЭЛЕКТРОСПИННИНГ, POLYCAPROLACTONE, BIOMATERIAL FUNCTIONALIZATION, TISSUE ENGINEERING, БИОСОВМЕСТИМЫЕ МАТЕРИАЛЫ, 3. Good health, [SDV] Life Sciences [q-bio], функционализация биоматериала, НЕОВАСКУЛГЕН, ген-активированный материал, tissue engineering, тканевая инженерия, gene-activated scaffold, NEOVASKULGEN, ФУНКЦИОНАЛИЗАЦИЯ БИОМАТЕРИАЛА, vitalization, [SDV.MHEP.AHA] Life Sciences [q-bio]/Human health and pathology/Tissues and Organs [q-bio.TO], BIOCOMPATIBLE MATERIALS, VITALISATION, MATÉRIEL ACTIVÉ PAR LES GÈNES, Неоваскулген, ГЕН-АКТИВИРОВАННЫЙ МАТЕРИАЛ, FONCTIONNALISATION DES BIOMATÉRIAUX, LES MATÉRIAUX BIOCOMPATIBLES, 03 medical and health sciences, vascularization, polycaprolactone, VITALIZATION, electrospinning, ПОЛИКАПРОЛАКТОН, биосовместимые материалы, VASSCULARISATION, ELECTROSPINNING, Neovasculgen, GENE-ACTIVATED SCAFFOLD

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Σύνδεσμος πρόσβασης: https://hal.archives-ouvertes.fr/hal-03032388/file/Angiogenic%20vitalization%20of%20biocompatible%20and%20biodegradable%20scaffold_2018.pdf
https://hal.science/hal-03032388v1/document
https://hal.science/hal-03032388v1
https://doi.org/10.25557/0031-2991.2018.02.53-60

Влияние плазмы атмосферного давления на изменение коэффициента пропускания видимого света тонких пленок поликапролактона ; Influence of atmospheric pressure plasma on visible light transmission coefficient change in polycaprolactone films

Συγγραφείς: Филиппова, Екатерина Олеговна, Журавлева, А. Д., Иванова, Нина Михайловна

Συνεισφορές: Крючков, Юрий Юрьевич

Θεματικοί όροι: плазма, атмосферное давление, коэффициент пропускания, видимый свет, тонкие пленки, поликапролактон, биоразлагаемые полимеры, шовные материалы, поверхности, пленки

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: info:eu-repo/grantAgreement/RFBR//20-08-00648; Перспективы развития фундаментальных наук : сборник научных трудов XVIII Международной конференции студентов, аспирантов и молодых ученых, г. Томск, 27-30 апреля 2021 г. Т. 1 : Физика. — Томск, 2021; http://earchive.tpu.ru/handle/11683/68262

Διαθεσιμότητα: http://earchive.tpu.ru/handle/11683/68262

The effect of local changes in ionic and enzymatic homeostasis induced by polycaprolactone scaffolds mineralized with vaterite on bone tissue regeneration

Πηγή: ZHurnal «Patologicheskaia fiziologiia i eksperimental`naia terapiia». :81-87

Θεματικοί όροι: 0301 basic medicine, 0303 health sciences, 03 medical and health sciences, щелочная фосфатаза, polycaprolactone, скаффолд, поликапролактон, scaffold, остеогенез, alkaline phosphatase, 3. Good health, osteogenesis

Σύνδεσμος πρόσβασης: https://pfiet.ru/article/download/3329/2412
https://pfiet.ru/article/view/3329

Влияние плазмы атмосферного давления на изменение коэффициента пропускания видимого света тонких пленок поликапролактона

Συνεισφορές: Крючков, Юрий Юрьевич

Θεματικοί όροι: плазма, поверхности, видимый свет, тонкие пленки, поликапролактон, коэффициент пропускания, пленки, атмосферное давление, биоразлагаемые полимеры, шовные материалы

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Σύνδεσμος πρόσβασης: http://earchive.tpu.ru/handle/11683/68262

Влияние магнетронного со-распыления титановой и медной мишеней на элементный состав поверхности скаффолдов из поликапролактона

Συνεισφορές: Твердохлебов, Сергей Иванович

Θεματικοί όροι: элементный состав, поверхности, биосовместимость, скаффолды, поликапролактон, магнетронное распыление, регенерация, живые ткани, мишени

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Σύνδεσμος πρόσβασης: http://earchive.tpu.ru/handle/11683/67645

Разработка композиционных материалов на основе линейных полиэфиров и фосфатов кальция для 3D печати остеостимулирующих имплантатов и исследование их свойств

Συγγραφείς: Дубиненко, Глеб Евгеньевич

Συνεισφορές: Твердохлебов, Сергей Иванович

Θεματικοί όροι: полимолочная кислота, поликапролактон, гидроксиапатит, аддитивные технологии, скаффолды, костные имплантаты, polylactic acid, polycaprolactone, hydroxyapatite, additive manufacturing, scaffolds, bone implants, 03.06.01, 616-77:[678.674+661.635.41]:004.925.84

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: Дубиненко Г. Е. Разработка композиционных материалов на основе линейных полиэфиров и фосфатов кальция для 3D печати остеостимулирующих имплантатов и исследование их свойств : научный доклад / Г. Е. Дубиненко; Национальный исследовательский Томский политехнический университет (ТПУ), Управление научной деятельности (УНД), Отделение экспериментальной физики (ОЭФ); науч. рук. С. И. Твердохлебов. — Томск, 2023.; http://earchive.tpu.ru/handle/11683/75188

Διαθεσιμότητα: http://earchive.tpu.ru/handle/11683/75188

Pulsed Vacuum Arc Deposition of Nitrogen-Doped Diamond-like Coatings for Long-Term Hydrophilicity of Electrospun Poly(ε-caprolactone) Scaffolds

Συγγραφείς: Goreninsky (Goreninskii), Semen Igorevich, Yuriev, Yuri Nikolaevich, Runts, Artem Alekseevich, Prosetskaya, Elizaveta Alekseevna, Sviridova, Elizaveta Vitaljevna, Plotnikov, Evgeny Vladimirovich, Stankevich, Ksenia Sergeevna, Bolbasov, Evgeny Nikolaevich

Πηγή: Membranes

Θεματικοί όροι: алмазоподобные покрытия, поликапролактон, биоматериалы, diamond-like coatings, electrospun scaffolds, polycaprolactone, biomaterials

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: Membranes. 2022. Vol. 12, iss. 11; http://earchive.tpu.ru/handle/11683/74885

Διαθεσιμότητα: http://earchive.tpu.ru/handle/11683/74885
https://doi.org/10.3390/membranes12111080

Flow Dispersion for Obtaining Ivermectin Encapsulated in Polycaprolactone Microparticles ; Проточное диспергирование для получения микрочастиц поликапролактона с инкапсулированным ивермектином

Συγγραφείς: O. I. Rybchenko, V. V. Suslov, S. A. Kedik, Yu. M. Domnina, A. I. Mogaibo, О. И. Рыбченко, В. В. Суслов, С. А. Кедик, Ю. М. Домнина, А. И. Могайбо

Πηγή: Drug development & registration; Том 11, № 2 (2022); 79-86 ; Разработка и регистрация лекарственных средств; Том 11, № 2 (2022); 79-86 ; 2658-5049 ; 2305-2066

Θεματικοί όροι: инъекционный препарат, polycaprolactone, microparticles, microfluidic device, prolonged-release drug, injectable drug, поликапролактон, микрочастицы, микрофлюидное устройство, пролонгированный препарат

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://www.pharmjournal.ru/jour/article/view/1220/969; https://www.pharmjournal.ru/jour/article/downloadSuppFile/1220/1157; McCall J. W. The safety-net story about macrocyclic lactone heartworm preventives: a review, an update, and recommendations. Vet. Parasitol. 2005;133(2–3):197–206. DOI:10.1016/j.vetpar.2005.04.005.; Genchi C., Rinaldi L., Mortarino M., Genchi M., Cringoli G. Climate and Dirofilaria infection in Europe. Vet. Parasitol. 2009;163:286–292. DOI:10.1016/j.vetpar.2009.03.026.; Koblinsky K. C., Deus K. M., Butters M. P., Hongyu T., Gray M., DaSilva I. M., Sylla M., Foy B. D. The effect of oral antielmintics on the survivorship and re-feeding frequency of anthropophilic mosquito disease vectors. Acta Trop. 2010;116:119–126. DOI:10.1016/j.actatropica.2010.06.001.; Koblinsky K. C., Sylla M., Chapman P. L., Sarr M. D., Foy B. D. Ivermectin mass drug administration to human disrupt malaria parasite transmission in Senegales villages. Am. J. Trop. Med. Hyg. 2011;85(1):3–5. DOI:10.4269/ajtmh.2011.11-0160.; Mendes A. M., Albuquerque I. S., Machado M., Pissarra J., Meireles P., Prudencio M. Inhibition of Plasmodium liver infection by ivermectin. Antimicrob. Agents. Chemiother. 2017:61(2). DOI:10.1128/AAC.02005-16.; Caly L., Druce J. D., Catton M. G., Jans D. A., Wagstaff K. M. The FDA-approved Drug Ivermectin inhibits the replication of SARSCoV-2 in vitro. Antiviral Research. 2020;178:104787. DOI:10.1016/j.antiviral.2020.104787.; Rashid M., Rashid M. I., Akbar H., Ahmad L., Hassan M. A., Ashraf K., Saeed K., Gharbi M. A systematic review on modelling approaches for economic losses studies caused by parasites and their associated diseases in cattle, Parasitology. 2019;146(2):129–141. DOI:10.1017/S0031182018001282.; Ali M. S., Saeed K., Rashid I., Ijaz M., Akbar H., Rashid M., Ashraf K. Anthelmintic Drugs: Their Efficacy and Cost-Effectiveness in Different Parity Cattle. Parasitol. 2018;104(1):79–85 DOI:10.1645/17-4.; Белименко В. В., Самойловская Н. А., Новосад Е. В., Гулюкин А. М., Махмадшова З. А., Христиановский П. И. Особенности экономического ущерба от эхинококкоза у сельскохозяйственных животных. Российский ветеринарный журнал. Сельскохозяйственные животные. 2017;7:15–19.; Ferreira da Silva C., Taline A., de Melo Barbosa R., Cardoso J. C., Morsink M., Barbosa Souto E., Severino P. New Trends in Drug Delivery Systems for Veterinary Applications. Pharmaceutical Nanotechnology. 2021;9(1):15–25. DOI:10.2174/2211738508666200613214548.; Sasidharan S., Saudagar P. Encapsulation and delivery of antiparasitic drugs: a review. Medicine. 2020;323–342. DOI:10.1016/B978-0-12-819363-1.00017-X.; Суслов В. В., Енгашева Е. С., Кедик С. А., Шняк Е. А., Максимова П. О. Пролонгированные формы антигельминтных препаратов. Российский паразитологический журнал. 2016.38(4):539–546. DOI:10.12737/23080.; Baiak B. H. B., Lehnen C. R., da Rocha R. A. Anthelmintic resistance in cattle: A systematic review and meta-analysis. Livestock Science. 2018;217:127–135. DOI:10.1016/j.livsci.2018.09.022.; Chaudhary K., Patel M. M, Mehta P. J. Long-Acting Injectables: Current Perspectives and Future Promise Critical Reviews in Therapeutic Drug Carrier Systems. 2019;36(2):137–181. DOI:10.1615/CritRevTherDrugCarrierSyst.2018025649.; Жаворонок Е. С, Кедик С.А., Панов А. В., Петрова Е.А., Суслов В. В., ред. Полимерные микрочастицы для медицины и биологии. М.: ЗАО «ИФТ»; 2014. 480 с.; Beck L. R., Pope V. Z., Tice T. R., Gilley R. M. Long-acting injectable microsphere formulation for the parenteral administration of levonorgestrel. Advances in Contraception. 1985;1:119–129. DOI:10.1007/BF01849793.; Нгуен Т. Т. Т., Кедик С. А., Суслов В. В., Шняк Е. А., Ворфоломеева Е. В., Никонорова Е. В. Разработка метода получения полимерных микросфер, содержащих иммобилизованный диклофенак. Тонкие химические технологии. 2015;10(4):27–31.; Кедик С. А., Омельченко О. А., Суслов В. В., Шняк Е. А. Разработка способа получения налтрексона основания, инкапсулированного в полимерные микрочастицы. Разработка и регистрация лекарственных средств. 2018;(1):32–35.; Li W., Zhang L., Ge X., Xu B., Zhang W., Qu L., Choi C.-H., Xu J., Zhang A., Lee H., Weitz D. A. Microfluidic fabrication of microparticles for biomedical applications. The Royal Society of Chemistry Reviews. 2018;47(15):5646–5683. DOI:10.1039/c7cs00263g.; Wang J., Li Y., Wang X., Wang J., Tian H., Zhao P., Tian Y., Gu Y., Wang L., Wang C. Droplet Microfluidics for the Production of Microparticles and Nanoparticles. Micromachines. 2017;8(22):1–23. DOI:10.3390/mi8010022.; Aceves-Serrano L. G., Ordaz-Martinez K. A., Vazquez-Piñon M., Hwang H. Microfluidics for drug delivery systems. Nanoarchitectonics in Biomedicine. 2019;55–83. DOI:10.1016/B978-0-12-816200-2.00002-5.; Martino C., deMello A. J. Droplet-based microfluidics for artificial cell eneration: a brief review. Interface Focus. 2016;6(4):20160011. DOI:10.1098/rsfs.2016.0011.; Dorati R., Conti B., Colzani B., Dondi D., Lazzaroni S., Modena T., Genta I. Ivermectin controlled release implants based on poly-D,llactide and poly-ε-caprolactone. Journal of Drug Delivery Science and Technology. 2018;46:101–110. DOI:10.1016/j.jddst.2018.04.014.; Dorati R., Genta I., Colzani B., Modena T., Bruni G., Tripodo G., Conti B. Stability Evaluation of Ivermectin-Loaded Biodegradable Microspheres. AAPS PharmSciTech. 2015;16(5):1129–1139. DOI:10.1208/s12249-015-0305-1.; Lan W., Li S., Luo G. Numerical and experimental investigation of dripping and jetting flow in a coaxial micro-channel. Chem. Eng. Sci. 2015;134:76–85. DOI:10.1016/j.ces.2015.05.004.; Vasiliu S., Lungan M. A., Racovita S., Popa M. Porous microparticles based on methacrylic copolymers and gellan as drug delivery systems. Polymer International. 2020;69:11:1066–1080. DOI:10.1002/pi.5917.; https://www.pharmjournal.ru/jour/article/view/1220

Διαθεσιμότητα: https://www.pharmjournal.ru/jour/article/view/1220
https://doi.org/10.33380/2305-2066-2022-11-2-79-86