Εμφανίζονται 1 - 20 Αποτελέσματα από 347 για την αναζήτηση '"ПАТОГЕНЫ"', χρόνος αναζήτησης: 0,71δλ Περιορισμός αποτελεσμάτων
  1. 1
  2. 2
  3. 3
  4. 4
    Academic Journal

    Συγγραφείς: Raximova Dilfuza

    Θεματικοί όροι: Annotatsiya. Muammo mevalarni yig'ib olingandan keyin xavfsiz va samarali qayta ishlash texnologiyalarini aniqlashdir. Maqsadga erishish uchun limon mevalari kesilib, har bir bo'lak Miramistin va Dekasanning 0,1 %, 0,3 %, va 0,5 % konsentratsiyalardagi eritmalari bilan ishlov berildi. Namunalari patogenlarning sof madaniyatlari bo'lgan agar bloklariga joylashtirilib, nam Petri idishlariga solindi va termostatda 25 °C haroratda 6-10 kun davomida saqlandi, tajriba uch marta takrorlandi. Tadqiqot limonlarni qayta ishlash uchun antimikrob preparatlarning konsentratsiyasini aniqlash, saqlash haroratiga qarab limon mevalarining massa yo'qotilishini aniqlashga qaratilgan. Limon mevalarini saqlash vaqtida ko'k va yashil mog'or rivojlanishini to'xtatish maqsadida ularni 0,3 % va 0,5 % konsentratsiyalarda Miramistin va Dekasan bilan ishlov berish taklif etiladi. Saqlash harorati 10 °C bo'lganda mevalar 40–45 kun saqlanadi. Shu bilan birga, kunlik yo'qotishlar 0,49 % ni tashkil etadi. Saqlash haroratini 4 °C ga tushirish saqlash muddatini 90-100 kungacha uzaytiradi, kunlik massa yo'qotilishi esa 0,08 % ni tashkil etadi. Antiseptiklar bilan ishlov berish kimyoviy sintez qilingan fungitsidlarni chiqarib tashlash va hosil yig'ib olingandan keyin yangi sitrus mevalarining tabiiy xususiyatlarini saqlab qolish, shuningdek ularning saqlash muddatini uzaytirish imkonini beradigan ekologik toza echimlarni amalga oshirish imkonini beradi. Yangi, arzon, ekologik toza va qulay texnologiyalarni ishlab chiqishda bu muhim usul hisoblanadi. Kalit so'zlar: limon mevalari, patogenlar, saqlash harorati, miramistin, desasan, mikroblarga qarshi moddalar. Аннотaция. Проблема заключается в определении безопасных и эффективных технологий переработки фруктов после их сбора. Для достижения цели лимоны были нарезаны, и каждая часть обработана растворами Мироамицина и Декасана в концентрациях 0,1%, 0,3% и 0,5%. Образцы были размещены на агаровых блоках с чистыми культурами патогенов, помещены в влажные Петри-диски и хранились в термостате при температуре 25°C в течение 6-10 дней. Эксперимент был повторен трижды. Исследование направлено на определение концентрация антимикробных препаратов для обработки лимонов и на выявление потерь массы в зависимости от температуры хранения. Для предотвращения развития синей и зеленой плесени на лимонах предлагается их обработка растворами Мироамицина и Декасана в концентрациях 0,3% и 0,5%. При хранении при температуре 10°C плоды сохраняются в течение 40-45 дней, при этом суточные потери составляют 0,49%. Понижение температуры хранения до 4°C увеличивает срок хранения до 90-100 дней, а суточная потеря массы составляет 0,08%. Обработка антисептиками позволяет исключить химически синтезированные фунгициды и сохранить природные свойства свежих цитрусовых после сбора урожая, а также увеличить срок их хранения, предоставляя экологически чистое решение. Этот метод является важным при разработке новых, дешевых, экологически чистых и удобных технологий. Ключевые слова: лимоны, патогены, температура хранения, Мироамицин, Декасан, антимикробные препараты. Abstract: The problem lies in determining safe and effective processing technologies for fruits after harvesting. To achieve this, lemon fruits were cut, and each piece was treated with solutions of Miramistin and Dekasan at concentrations of 0.1%, 0.3%, and 0.5%. The samples were placed on agar blocks containing pure cultures of pathogens, placed in moist Petri dishes, and stored in a thermostat at 25°C for 6-10 days. The experiment was repeated three times. The research aimed to determine the concentration of antimicrobial agents for lemon processing and to identify mass loss depending on storage temperature. To prevent the development of blue and green mold, treatment with Miramistin and Dekasan at concentrations of 0.3% and 0.5% is recommended. When stored at 10°C, the fruits can be kept for 40-45 days, with daily losses of 0.49%. Reducing the storage temperature to 4°C extends the storage period to 90-100 days, with daily mass loss of 0.08%. Treatment with antiseptics allows the elimination of chemically synthesized fungicides and preserves the natural properties of fresh citrus fruits after harvest, while also extending their shelf life, providing an eco-friendly solution. This method is important in developing new, inexpensive, eco-friendly, and convenient technologies. Keywords: lemons, pathogens, storage temperature, Miramistin, Dekasan, antimicrobial agents

  5. 5
  6. 6
  7. 7
    Academic Journal

    Πηγή: VIII Пущинская конференция «Биохимия, физиология и биосферная роль микроорганизмов».

  8. 8
  9. 9
    Academic Journal

    Πηγή: VII Пущинская конференция «Биохимия, физиология и биосферная роль микроорганизмов», шко- ла-конференция для молодых ученых, аспирантов и студентов «Генетические технологии в микробио- логии и микробное разнообразие».

  10. 10
    Academic Journal

    Πηγή: Vegetable crops of Russia; № 2 (2025); 20-29 ; Овощи России; № 2 (2025); 20-29 ; 2618-7132 ; 2072-9146

    Περιγραφή αρχείου: application/pdf

    Relation: https://www.vegetables.su/jour/article/view/2607/1637; Анисимов Б.В. Мировое производство картофеля: тенденции рынка, прогнозы и перспективы (аналитический обзор). Картофель и овощи. 2021;(10):3-8. https://doi.org/DOI 10.25630/PAV.2021.45.71.008 https://www.elibrary.ru/oqkwfb; Терновых К.С., Попов Д.Ю. Современные тенденции в развитии картофелеводства. Московский экономический журнал. 2020;(12):39. https://doi.org/10.24411/2413-046X-2020-10871 https://www.elibrary.ru/mhzczo; Сердеров В.К., Ханбабаев Т.Г., Сердерова Д.В. Изменение содержания сухого вещества и крахмала в клубнях картофеля в зависимости от условий возделывания. Овощи России. 2019;2(46):80-83. https://doi.org/10.18619/2072-9146-2019-2-80-83 https://www.elibrary.ru/zivwrn; Поддубная О.В., Поддубный О.А. Сравнительный анализ содержания крахмала в клубнях картофеля. Эпоха науки. 2020;(24):72-76. https://doi.org/10.24411/2409-3203-2020-12414 https://www.elibrary.ru/oktzlx; Коршунов А.В., Филиппова Г.И., Гаитова Н.А., Митюшкин А.В., Кутовенко Л.Н. Управление содержанием крахмала в картофеле. Аграрный вестник Урала. 2011;2(81):47-50. https://www.elibrary.ru/pasytn; Красников. С.Н., Черемисин А.И., Согуляк С.В., Красникова О.В., Пантеева К.О. Оценка продуктивности и качества новых перспективных сортов картофеля для условий Западной Сибири. Картофель и овощи. 2023;(7):37-40. https://doi.org/10.25630/PAV.2023.80.58.005 https://www.elibrary.ru/rdedbs; Сайнакова А.Б., Романова М.С., Красников С.Н., Литвинчук О.В., Алексеев Я.И., Никулин А.В., Терентьева Е.В. Исследование коллекционных образцов картофеля на наличие генетических маркеров устойчивости к фитопатогенам. Вавиловский журнал генетики и селекции. 2018;22(1):18-24. https://doi.org/10.18699/VJ18.326 https://www.elibrary.ru/ypntpr; Бирюкова В.А., Шмыгля И.В., Жарова В.А., Бекетова М.П., Рогозина Е., Митюшкин А.В., Мелешин А.А. Молекулярные маркеры генов экстремальной устойчивости к Y вирусу картофеля в сортах и гибридах Solanum tuberosum L. Российская сельскохозяйственная наука. 2019;(5):17-22. https://doi.org/10.31857/S2500-26272019517-22 https://www.elibrary.ru/qwjzno; Козлова В.В., Пахомова Н.Г. Защита картофеля от фитофтороза. Владимирский земледелец. 2010;(3):26a. https://www.elibrary.ru/ncsimb; Мухордова М.Е., Черемисин А.И., Урман М.В. Комплексная оценка перспективного селекционного материала картофеля в условиях Омской области. Кормопроизводство. 2023;(3):12-17. https://www.elibrary.ru/taiolp; Урман М.В., Мухордова М.Е. Оценка перспективных сортообразцов картофеля на устойчивость к патогенам. Биотехнология в растениеводстве, животноводстве и сельскохозяйственной микробиологии XXIII: Материалы 23-ей Всероссийской молодежной научной конференции, Москва, 14–16 ноября 2023 года. – Москва: Федеральное государственное бюджетное научное учреждение «Всероссийский научно-исследовательский институт сельскохозяйственной биотехнологии». 2023. С. 47-49. https://doi.org/10.48397/ARRIAB.2023.23.XXIII.022https://www.elibrary.ru/ogbnuv; Mori K., Sakamoto Y., Mukojima N., Tamiya S., Nakao T., Ishii T., Hosaka K. Development of a multiplex PCR method for simultaneous detection of diagnostic DNA markers of five disease and pest resistance genes in potato. Euphytica. 2011;(180):347- 355. https://doi.org/10.1007/s10681-011-0381-6; Kasai K., Morikawa Y., Sorri V. A., Valkonen J. P., Gebhardt C., Watanabe K. N. Development of SCAR markers to the PVY resistance gene Ryadg based on a common feature of plant disease resistance genes. Genome. 2000;43(1):1-8. https://doi.org/10.1139/g99-092; Song Y. S., Hepting L., Schweizer G., Hartl L., Wenzel G., Schwarzfischer A. Mapping of extreme resistance to PVY (Rysto) on chromosome XII using anther-culture-derived primary dihaploid potato lines. Theoretical and applied genetics. 2005;(111):879-887. https://doi.org/10.1007/s00122-005-0010-7; Marczewski W., Hennig J., Gebhardt C. The Potato virus S resistance gene Ns maps to potato chromosome VIII. Theoretical and Applied Genetics. 2002;105(4):564–567. https://doi.org/10.1007/s00122-002-0976-3; Marczewski W., Flis B., Syller J., Schäfer-Pregl R., & Gebhardt, C. A Major Quantitative Trait Locus for Resistance to Potato leafroll virus Is Located in a Resistance Hotspot on Potato Chromosome XI and Is Tightly Linked to N-Gene-Like Markers. Molecular Plant-Microbe Interactions. 2001;14(12):1420–1425. https://doi.org/10.1094/MPMI.2001.14.12.1420; Wang M., Allefs S., van den Berg R. G., Vleeshouwers V. G., van der Vossen E. A. G., Vosman B. Allele mining in Solanum: conserved homologues of Rpi-blb1 are identified in Solanum stoloniferum. Theoretical and Applied Genetics. 2008;116(7):933–943. https://doi.org/10.1007/s00122-008-0725-3; Li L., Tacke E., Hofferbert H.-R., Lubeck J., Strahwald J., Draffehn Astrid M., Walkemeier B., Gebhardt Ch. Validation of candidate gene markers for marker-assisted selection of potato cultivars with improved tuber quality. Theoretical and Applied Genetics. 2013;126(4):1039–1052. https://doi.org/10.1007/s00122-012-2035-z; Кондратюк А.В., Козлова Л.Н., Козлов В.А., Кильчевский А.В. Оценка эффективности ДНК-маркеров в селекции по биохимическим признакам качества клубней картофеля. Доклады Национальной академии наук Беларуси. 2016;60 (2):85-89. https://www.elibrary.ru/turjet; Урбанович О.Ю., Кузмицкая П.В., Картель Н.А. Генетические основы селекции растений. Том 4. Минск: Республиканское унитарное предприятие "Издательский дом "Белорусская наука", 2014. 654 с. ISBN 978-985-08-1791-4. https://www.elibrary.ru/ugolkn; Yavuz C., Demirel U., Çalışkan M.E. Assessment of the usability of four molecular markers to identify potato genotypes suitable for processing. Biotech Studies. 2024;33(2):74-81. https://doi.org/10.38042/biotechstudies.1483793.; https://www.vegetables.su/jour/article/view/2607

  11. 11
    Academic Journal

    Πηγή: Messenger of ANESTHESIOLOGY AND RESUSCITATION; Том 22, № 1 (2025); 40-56 ; Вестник анестезиологии и реаниматологии; Том 22, № 1 (2025); 40-56 ; 2541-8653 ; 2078-5658

    Περιγραφή αρχείου: application/pdf

    Relation: https://www.vair-journal.com/jour/article/view/1155/776; Белобородов В. Б., Голощапов О. В., Гусаров В. Г. и др. Методические рекомендации Российской некоммерческой общественной организации «Ассоциация анестезиологов-реаниматологов», Межрегиональной общественной организации «Альянс клинических химиотерапевтов и микробиологов», Межрегиональной ассоциации по клинической микробиологии и антимикробной химиотерапии (МАКМАХ), общественной организации «Российский Сепсис Форум» «Диагностика и антимикробная терапия инфекций, вызванных полирезистентными штаммами микроорганизмов» (обновление 2022 г.) // Вестник анестезиологии и реаниматологии – 2022. – Т. 19, № 2. – С. 84–114. https://doi.org/10.21292/2078-5658-2022-19-2-84-114.; Дехнич А. В., Кузьменков А. Ю., Попов Д. А. и др. Алгоритм выбора препаратов для таргетной антимикробной терапии на основе результатов молекулярно-биологических исследований положительных культур крови // Вестник анестезиологии и реаниматологии – 2023. – Т. 20, № 2. – С. 96–107. https://doi.org/10.24884/2078-5658-2022-20-2-96-107.; Зуева Л. П., Асланов Б. И., Васильев К. Д. и др. Эпидемиологическая диагностика – основа риск-ориентированных технологий профилактики госпитальных инфекций // Эпидемиология и вакцинопрофилактика. – 2017. – Т. 16, № 5. – С. 69–74. https://doi.org/10.31631/2073-3046-2017-16-5-69-74.; Ильина Т. С., Романова Ю. М. Бактериальные биопленки: роль в хронических инфекционных процессах и поиск средств борьбы с ними // Молекулярная генетика, микробиология и вирусология. – 2021. – Т. 39, № 2. – С. 14–24. https://doi.org/10.17116/molgen20213902114.; Методическое руководство «Эпидемиологическая диагностика инфекционных болезней, связанных с оказанием медицинской помощи, на основе стандартных определений случая». URL: https://www.nasci.ru/?id=121561&download=1 (дата обращения: 26.05.2024).; Полушин Ю. С., Шлык И. В. Можно ли повысить эффективность антибактериальной терапии нозокомиальных инфекций? // Вестник анестезиологии и реаниматологии. – 2020. – Т. 17, № 1. – С. 6–8. https://doi.org/10.21292/2078-5658-2020-17-1-6-8.; Постановление Главного государственного санитарного врача РФ от 28 января 2021 г. N 4 «Об утверждении санитарных правил и норм СанПиН 3.3686-21 «Санитарно-эпидемиологические требования по профилактике инфекционных болезней».; Шлык И. В. Опыт внедрения системы контроля антимикробной терапии в многопрофильном стационаре // Вестник анестезиологии и реаниматологии. – 2019. – Т. 16, № 6. – С. 60–66. https://doi.org/10.21292/2078-5658-2019-16-6-60-66.; Abubakar U., Awaisu A., Khan A. H., Alam K. Impact of COVID-19 Pandemic on Healthcare-Associated Infections: A Systematic Review and Meta-Analysis // Antibiotics (Basel). – 2023. – Vol. 12, № 11. – P. 1600. https://doi.org/10.3390/antibiotics12111600.; Adelman M. W., Bhamidipati D. R., Hernandez-Romieu A. C. et al. Secondary Bacterial Pneumonias and Bloodstream Infections in Patients Hospitalized with COVID-19 // Ann Am Thorac Soc. – 2021. – Vol. 18, № 9. – P. 1584–1587. https://doi.org/10.1513/AnnalsATS.202009-1093RL.; Afzal A., Gutierrez V. P., Gomez E. et al. Bloodstream infections in hospitalized patients before and during the COVID-19 surge in a community hospital in the South Bronx // Int J Infect Dis. – 2022. – Vol. 116. – P. 43–46. https://doi.org/10.1016/j.ijid.2021.12.349.; Alshahrani K. M., Alhuwaishel A. Z., Alangari N. M. et al. Clinical Impacts and Risk Factors for Central Line-Associated Bloodstream Infection: A Systematic Review // Cureus. – 2023. – Vol. 15, № 6. https://doi.org/10.7759/cureus.40954.; Atriwal T., Azeem K., Husain F. M. et al. Mechanistic understanding of Candida albicans biofilm formation and approaches for its inhibition // Front Microbiol. – 2021. – Vol. 12. – P. 638609. https://doi.org/10.3389/fmicb.2021.638609.; Babich T., Zusman O., Elbaz M. et al. Empirical Antibiotic Treatment Does Not Improve Outcomes in Catheter-Associated Urinary Tract Infection: Prospective Cohort Study // Clin Infect Dis. – 2017. – Vol. 65, № 11. – P. 1799–1805. https://doi.org/10.1093/cid/cix680.; Blot S., Ruppé E., Harbarth S. et al. Healthcare-associated infections in adult intensive care unit patients: Changes in epidemiology, diagnosis, prevention and contributions of new technologies // Intensive Crit Care Nurs. – 2022. – Vol. 70. – P. 103227. https://doi.org/10.1016/j.iccn.2022.103227.; Bouhrour N., Nibbering P. H., Bendali F. Medical Device-Associated Biofilm Infections and Multidrug-Resistant Pathogens // Pathogens. – 2024. – Vol. 13, № 5. – P. 393. https://doi.org/10.3390/pathogens13050393.; Casalini G., Giacomelli A., Antinori S. The WHO fungal priority pathogens list: a crucial reappraisal to review the prioritization // Lancet Microbe. – 2024. – Vol. 5, № 7. – P. 717–724. https://doi.org/10.1016/S2666-5247(24)00042-9.; Denny S., Abdolrasouli A., Elamin T. et al. A retrospective multicenter analysis of candidaemia among COVID-19 patients during the first UK pandemic wave // J Infect. – 2021. – Vol. 82, № 6. – P. 276–316. https://doi.org/10.1016/j.jinf.2021.02.020.; Dhesi Z., Enne V. I., Brealey D. et al. Organisms causing secondary pneumonia in COVID-19 patients in 5 UK ICUs as detected with the FilmArray test // medRxiv. – 2020. – Vol. 06, № 22. – P. 20131573. https://doi.org/10.1101/2020.06.22.20131573.; European Centre for Disease Prevention and Control. Healthcare-associated infections acquired in intensive care units // ECDC Annual epidemiological report for 2017, 2019. URL: https://www.ecdc.europa.eu/sites/default/files/documents/AER_for_2017-HAI.pdf (дата обращения: 26.05.2024).; Fakih M. G., Bufalino A., Sturm L. et al. Coronavirus disease 2019 (COVID-19) pandemic, central-line-associated bloodstream infection (CLABSI), and catheter-associated urinary tract infection (CAUTI): The urgent need to refocus on hardwiring prevention efforts // Infect Control Hosp Epidemiol. – 2022. – Vol. 43, № 1. – P. 26–31. https://doi.org/10.1017/ice.2021.70.; Geffers C., Schwab F., Behnke M., Gastmeier P. No increase of device associated infections in German intensive care units during the start of the COVID-19 pandemic in 2020 // Antimicrob Resist Infect Control. – 2022. – Vol. 11, № 1. – P. 67. https://doi.org/10.1186/s13756-022-01108-9.; Girard R., Gaujard S., Pergay V. et al. Controlling urinary tract infections associated with intermittent bladder catheterization in geriatric hospitals // J Hosp Infect. – 2015. – Vol. 90, № 3. – P. 240–247. https://doi.org/10.1016/j.jhin.2015.02.008.; Girard R., Gaujard S., Pergay V. et al. Risk factors for urinary tract infections in geriatric hospitals // J Hosp Infect. – 2017. – Vol. 97, № 1. – P. 74–78. https://doi.org/10.1016/j.jhin.2017.05.007.; Goda R., Sharma R., Borkar S. A. et al. Frailty and Neutrophil Lymphocyte Ratio as Predictors of Mortality in Patients with Catheter-Associated Urinary Tract Infections or Central Line-Associated Bloodstream Infections in the Neurosurgical Intensive Care Unit: Insights from a Retrospective Study in a Developing Country // World Neurosurg. – 2022. – Vol. 162. – P. e187–e197. https://doi.org/10.1016/j.wneu.2022.02.115.; Gouel-Cheron A., Swihart B. J., Warner S. et al. Epidemiology of ICU-Onset Bloodstream Infection: Prevalence, Pathogens, and Risk Factors Among 150,948 ICU Patients at 85 U.S. Hospitals // Crit. Care Med. – 2022. – Vol. 50, № 12. – P. 1725–1736. https://doi.org/10.1097/CCM.0000000000005662.; Horn D. L., Neofytos D., Anaissie E. J. et al. Epidemiology and outcomes of candidemia in 2019 patients: Data from the prospective antifungal therapy alliance registry // Clin Infect Dis. – 2009. – Vol. 48. – P. 1695–1703. https://doi.org/10.1086/599039.; Kim S. J., Ryu J. H., Kim Y. B. et al. Management of Candida Urinary Tract Infection in the Elderly // Urogenital Tract Infection. – 2019. – Vol. 14, № 2. – P. 33–41. https://doi.org/10.14777/uti.2019.14.2.33.; Langford B. J., So M., Raybardhan S. et al. Bacterial co-infection and secondary infection in patients with COVID-19: a living rapid review and meta-analysis // Clin Microbiol Infect. – 2020. – Vol. 26, № 12. – P. 1622–1629. https://doi.org/10.1016/j.cmi.2020.07.016.; Liu J., Yu Y. T., Xu C. H. et al. Candida Colonization in the Respiratory Tract: What Is the Significance? // Front Med (Lausanne). – 2021. – Vol. 7. – P. 598037. https://doi.org/10.3389/fmed.2020.598037.; Markovskaya Y., Gavioli E. M., Cusumano J. A. et al. Coronavirus disease 2019 (COVID-19): Secondary bacterial infections and the impact on antimicrobial resistance during the COVID-19 pandemic // Antimicrob Steward Healthc Epidemiol. – 2022. – Vol. 2, № 1. – P. e114. https://doi.org/10.1017/ash.2022.253.; Martin-Loeches I., Antonelli M., Cuenca-Estrella M. et al. ESICM/ESCMID task force on practical management of invasive candidiasis in critically ill patients // Intensive Care Med. – 2019. – Vol. 45, № 6. – P. 789–805. https://doi.org/10.1007/s00134-019-05599-w.; Minasyan H. Sepsis: mechanisms of bacterial injury to the patient // Scand J Trauma Resusc Emerg Med. – 2019. – Vol. 27, № 1. – P. 19. https://doi.org/10.1186/s13049-019-0596-4.; Mirghani R., Saba T., Khaliq H. et al. Biofilms: Formation, drug resistance and alternatives to conventional approaches // AIMS Microbiol. – 2022. – Vol. 8, № 3. – P. 239–277. https://doi.org/10.3934/microbiol.2022019.; Moriyama K., Ando T., Kotani M. et al. Risk factors associated with increased incidences of catheter-related bloodstream infection // Medicine (Baltimore). – 2022. – Vol. 101, № 42. – P. e31160. https://doi.org/10.1097/MD.0000000000031160.; Nicolle L. E. Catheter associated urinary tract infections // Antimicrob Resist Infect Control. – 2014. – Vol. 25, № 3. – P. 23. https://doi.org/10.1186/2047-2994-3-23.; Novosad S. A., Fike L., Dudeck M. A. et al. Pathogens causing central-line-associated bloodstream infections in acute-care hospitals-United States, 2011-2017 // Infect Control Hosp Epidemiol. – 2020. – Vol. 41, № 3. – P. 313–319. https://doi.org/10.1017/ice.2019.303.; Pinto M., Borges V., Nascimento M. et al. Insights on catheter-related bloodstream infections: A prospective observational study on the catheter colonization and multidrug resistance // J. HosP. Infect. – 2022. – Vol. 123. – P. 43–51. https://doi.org/10.1016/j.jhin.2022.01.025.; Preda V. G., Săndulescu O. Communication is the key: biofilms, quorum sensing, formation and prevention // Discoveries (Craiova). – 2019. – Vol. 7, № 3. – P. e100. https://doi.org/10.15190/d.2019.13.; Raja N. S. Epidemiology, risk factors, treatment and outcome of Candida bloodstream infections because of Candida albicans and Candida non-albicans in two district general hospitals in the United Kingdom // Int J Clin Pract. – 2021. – Vol. 75, № 1. – P. e13655. https://doi.org/10.1111/ijcp.13655.; Rotini G., de Mangou A., Combe A. et al. Case Report: Severe Community-Acquired Pneumonia in Réunion Island due to Acinetobacter baumannii // Am J Trop Med Hyg. – 2024. – Vol. 111, № 1. – P. 136–140. https://doi.org/10.4269/ajtmh.23-0820.; Segala F. V., Pafundi P. C., Masciocchi C. et al. Incidence of bloodstream infections due to multidrug-resistant pathogens in ordinary wards and intensive care units before and during the COVID-19 pandemic: a real-life, retrospective observational study // Infection. – 2023. – Vol. 51, № 4. – P. 1061–1069. https://doi.org/10.1007/s15010-023-02000-3.; Shadkam S., Goli H. R., Mirzaei B. et al. Correlation between antimicrobial resistance and biofilm formation capability among Klebsiella pneumoniae strains isolated from hospitalized patients in Iran // Ann Clin Microbiol Antimicrob. – 2021. – Vol. 20. – P. 13. https://doi.org/10.1186/s12941-021-00418-x.; Stewart S., Robertson C., Kennedy S. et al. Personalized infection prevention and control: identifying patients at risk of healthcare-associated infection // J Hosp Infect. – 2021. – Vol. 114. – P. 32–42. https://doi.org/10.1016/j.jhin.2021.03.032.; Vincent J. L., Sakr Y., Singer M. et al. Prevalence and Outcomes of Infection Among Patients in Intensive Care Units in 2017 // JAMA. – 2020. – Vol. 323, № 15. – P. 1478–1487. https://doi.org/10.1001/jama.2020.2717.; Vuotto C., Longo F., Pascolini C. et al. Biofilm formation and antibiotic resistance in Klebsiella pneumoniae urinary strains // J Appl Microbiol. – 2017. – Vol. 123. – P. 1003–1018. https://doi.org/10.1111/jam.13533.; WHO bacterial priority pathogens list, 2024: Bacterial pathogens of public health importance to guide research, development and strategies to prevent and control antimicrobial resistance. URL: https://www.who.int/publications/i/item/9789240093461 (дата обращения: 26.05.2024).; Wongsurakiat P., Tulatamakit S. Clinical pulmonary infection score and a spot serum procalcitonin level to guide discontinuation of antibiotics in ventilator-associated pneumonia: a study in a single institution with high prevalence of nonfermentative gram-negative bacilli infection // Ther Adv Respir Dis. – 2018. – Vol. 12. – P. 1753466618760134. https://doi.org/10.1177/1753466618760134.; Xie X., Lyu J., Hussain T., Li M. Drug Prevention and Control of Ventilator-Associated Pneumonia // Front Pharmacol. – 2019. – Vol. 10. – P. 298. https://doi.org/10.3389/fphar.2019.00298.; Yang C. H., Su P. W., Moi S. H. et al. Biofilm formation in acinetobacter baumannii: genotype-phenotype correlation // Molecules (Basel, Switz). – 2019. – Vol. 24. – P. 1849. https://doi.org/10.3390/molecules24101849.

  12. 12
    Academic Journal

    Πηγή: FARMAKOEKONOMIKA. Modern Pharmacoeconomics and Pharmacoepidemiology; Vol 18, No 2 (2025); 145-152 ; ФАРМАКОЭКОНОМИКА. Современная фармакоэкономика и фармакоэпидемиология; Vol 18, No 2 (2025); 145-152 ; 2070-4933 ; 2070-4909

    Περιγραφή αρχείου: application/pdf

    Relation: https://www.pharmacoeconomics.ru/jour/article/view/1131/581; Ranzani O.T., Motos A., Chiurazzi C., et al. Diagnostic accuracy of Gram staining when predicting staphylococcal hospital-acquired pneumonia and ventilator-associated pneumonia: a systematic review and meta-analysis. Clin Microbiol Infect. 2020; 26 (11): 1456–63. https://doi.org/10.1016/j.cmi.2020.08.015.; Zirpe K.G., Kapse U.S., Gurav S.K., et al. Impact of an antimicrobial stewardship program on broad spectrum antibiotics consumption in the intensive care setting. Indian J Crit Care Med. 2023; 27 (10): 737–42. https://doi.org/10.5005/jp-journals-10071-24543.; Luo Q., Lu P., Chen Y., et al. ESKAPE in China: epidemiology and characteristics of antibiotic resistance. Emerg Microbes Infect. 2024; 13 (1): 2317915. https://doi.org/10.1080/22221751.2024.2317915.; Белькова Ю.А., Рачина С.А., Козлов Р.С. и др. Одномоментное многоцентровое исследование использования антимикробных препаратов в российских стационарах: результаты проекта Global-PPS 2021. Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия. 2023; 25 (2): 150–8. https://doi.org/10.36488/cmac.2023.2.150-158.; Nelson R.E., Schweizer M.L., Perencevich E.N., et al. Samore costs and mortality associated with multidrug-resistant healthcare-associated acinetobacter infections. Infect Control Hosp Epidemiol. 2016; 37 (10): 1212–8. https://doi.org/10.1017/ice.2016.145.; Bartsch S.M., McKinnell J.A., Mueller L.E., et al. Potential economic burden of carbapenem-resistant Enterobacteriaceae (CRE) in the United States. Clin Microbiol Infect. 2017; 23 (1): 48.e9–16. https://doi.org/10.1016/j.cmi.2016.09.003.; Единая информационная система в сфере закупок. URL: https://zakupki.gov.ru/epz/main/public/home.html (дата обращения 11.08.2024).; Ягудина Р.И., Куликов А.Ю., Серпик В.Г. Фармакоэкономика. Ростов-на-Дону: Феникс; 2018. 238 с.; Гельфанд Б.Р. (ред.) Нозокомиальная пневмония у взрослых. Российские национальные рекомендации. — М.: Медицинское информационное агентство; 2016: 176 с. URL: http://nsicu.ru/uploads/attachment/file/938/nozocomia-pnevmo_2016_NatzRuk_Gelfand_.pdf (дата обращения 11.08.2024).; Яковлев С.В., Брико Н.И., Сидоренко С.В., Проценко Д.Н. (ред.) Программа СКАТ (Стратегия Контроля Антимикробной Терапии) при оказании стационарной медицинской помощи. Российские клинические рекомендации. М.: Перо; 2018: 156 с. https://doi.org/10.17513/np.318.; Тарифное соглашение на оплату медицинской помощи, оказываемой по территориальной программе медицинского страхования города Москвы на 2021 гг. (г. Москва, 12 января 2021 г.). URL: https://base.garant.ru/401467942/ (дата обращения 11.08.2024).; Городская клиническая больница им. С.С. Юдина. Платные медицинские услуги. URL: https://gkbyudina.ru/platnye-uslugi (дата обращения 11.08.2024).; Иванова Д.Д., Темирбулатов И.И., Сычев И.Н., Лазарева Н.Б. Фармакоэпидемиологический анализ применения антибактериальных препаратов при нозокомиальных инфекциях. Фармация. 2024; 73 (7): 48–56. https://doi.org/10.29296/25419218-2024-07-07.; Wang Y., Yu L., Zhu J., et al. Cost-effectiveness analysis of polymyxin B versus colistin for treating patients with carbapenem-resistant gram-negative bacterial infections. Sci Rep. 2024; 14: 23635. https://doi.org/10.1038/s41598-024-74290-y.; Naik J., Dillon R., Massello M., et al. Cost-effectiveness of imipenem/cilastatin/relebactam for hospital-acquired and ventilator-associated bacterial pneumonia. J Comp Eff Res. 2023; 12 (3): e220113. https://doi.org/10.2217/cer-2022-0113.; Kong W., Yang X., Shu Y., et al. Cost-effectiveness analysis of ceftazidime-avibactam as definitive treatment for treatment of carbapenem-resistant Klebsiella pneumoniae bloodstream infection. Front Public Health. 2023; 11: 1118307. https://doi.org/10.3389/fpubh.2023.1118307.; Takaya R., Mori N., Saito E., Ohde S. Cost-effectiveness analysis of CTZ/TAZ for the treatment of ventilated hospital-acquired bacterial pneumonia and ventilator-associated bacterial pneumonia in Japan. BMC Health Serv Res. 2024; 24 (1): 389. https://doi.org/10.1186/s12913-024-10883-7.; Савинцева Д.Д., Сычев И.Н., Лазарева Н.Б. Фармакоэкономические исследования новых антибактериальных препаратов, активных против полирезистентных возбудителей. Фармация. 2020; 69 (4): 10–7. https://doi.org/10.29296/25419218-2020-04-02.; Гомон Ю.М., Арепьева М.А., Балыкина Ю.Е. и др. Прогнозирование резистентности: от математического моделирования к фармакоэкономике. ФАРМАКОЭКОНОМИКА. Современная фармакоэкономика и фармакоэпидемиология. 2018; 11 (1): 27–36. https://doi.org/10.17749/2070-4909.2018.11.1.027-036.; Гомон Ю.М., Колбин А.С. Проблемы оценки экономической эффективности антимикробных препаратов: опыт Российской Федерации. Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия. 2022; 24 (1): 23–9. https://doi.org/10.36488/cmac.2022.1.23-29.; https://www.pharmacoeconomics.ru/jour/article/view/1131

  13. 13
  14. 14
  15. 15
    Academic Journal

    Πηγή: Russian Journal of Infection and Immunity; Vol 14, No 5 (2024); 927-935 ; Инфекция и иммунитет; Vol 14, No 5 (2024); 927-935 ; 2313-7398 ; 2220-7619

    Περιγραφή αρχείου: application/pdf

  16. 16
  17. 17
    Academic Journal

    Πηγή: Vegetable crops of Russia; № 4 (2024); 35-42 ; Овощи России; № 4 (2024); 35-42 ; 2618-7132 ; 2072-9146

    Περιγραφή αρχείου: application/pdf

    Relation: https://www.vegetables.su/jour/article/view/2447/1572; Penas E., Gomez R., Frias J., Vidal-Valverde C. Application of highpressure on alfalfa (Medigo sativa) and mung bean (Vigna radiata) seeds to enhance the microbiological safety of their sprouts. Food Control. 2008;19(7):698–705. http://doi.org/10.1016/j.foodcont.2007.07.010; Finley J.W. Proposed criteria for assessing the efficacy of cancer reduction by plant foods enriched in carotenoids, glucosinolates, polyphenols and selenocompounds. Annals of Botany. 2005;(95):1075–1096. http://doi.org/10.1093/aob/mci123; Schenker S. Facts behind the headlines, Broccoli. British Nutrition Foundation – Nutrition Bulletin. 2002;(27):159–160. http://doi.org/10.31677/2072-6724-2021-34-4-56-67; Аскоченская Н.А. Состояние воды в семенах. М., 1971. 168 с.; Овчаров К.Е. Физиология формирования и прорастания семян. М.: Колос, 1976. 256 с.; Лотова Л.И. Морфология и анатомия высших растений. М.: КомКнига, 2007. 510 с.; Кефеле В.И. Рост растений. М.: Колос. 1973. 120 с.; Тимирязев К А. Земледелие и физиология растений. Избранные сочинения. Т. 2. М.: Сельхозиздат, 2006. 423 с.; Николаева М.Г. Физиология и биохимия покоя и прорастания семян. М.: Колос, 1982. 495 с.; Kim S.D., Kim S.H., Hong E.H. Composition of soybean sprout and its nutritional value. Korean Soybean Sigest. 1993;(10):1–9. http://doi.org/10.7740/kjcs.2011.56.3.226; Marton M., Mandoki Zs., Csapo-Kiss Zs., Csapo J. The role of sprouts in human nutrition. A review. Acta Univ. Sapientiae, Alimentaria. 2010;(3):81–117.; Иванова М.И., Кашлева А.И., Разин А.Ф. Проростки – функциональная органическая продукция (обзор). Вестник Марийского государственного университета. Серия: сельскохозяйственные науки. Экономические науки. 2016;3(7):19-29. https://elibrary.ru/wncrgt; 3имина Г. Микрозелень: огромная польза в маленьких ростках или очередная уловка маркетологов? [Электронный ресурс]URL: https://www.ogorod.ru/ru/main/useful/14761/Mikrozelen-ogromnayapolza-v-malenkikh-rostkakh-ili-ocherednaya-ulovkamarketologov.htm.; Шукис Е.Р., Шукис С.К. Изучение сортового состава сои в условиях Приобской лесостепи Алтайского края. Достижения науки и техники АПК. 2015;(6):41-43. https://elibrary.ru/ucraff; Тутельян В.А., Шарафетдинов Х.Х., Кочеткова А.А. и др. Теоретические и практические аспекты диетотерапии при сахарном диабете 2 типа. М.: Библио-Глобус, 2017. 244 с. ISBN: 978-5-9909278- 9-6. http://doi.org/10.18334/9785990927896 https://elibrary.ru/xqqjsh; Высоцкий В.Г., Тутельян В.А. Методические проблемы исследования качества новых источников биологических белков. Медицина и здравоохранение. Сер.: Гигиена. Обзорная информация. Вып. 1. М.: ВНИИМИ, 1987. 63 с.; Княжев В.А., Большаков О.В. Задачи научных организаций по реализации Концепции Государственной политики в области здорового питания населения Российской Федерации на период до 2005 года. Хранение и переработка сельхозсырья. 1999;(12):11-14. https://elibrary.ru/scrsiv; Рогов И.А., Титов Е.И., Нефедова Н.В., Ганина В.И. Продукты питания с про- и пребиотическими свойствами. Пищевая промышленность. 2008;(2):38-39. https://elibrary.ru/ilibht; Петибская В.С., Ефремова Е.Г. Выбор сырья для производства соевых белковых продуктов. Известия ВУЗов. Пищевая технология. 2003;(4):109. https://elibrary.ru/qcpiqr; Шкаликов В.А., Белошапкина О.О. Защита растений от болезней. М.: Колос С. 2003, 255 с.; Простакова Ж.Г., Ганя А.И. Грибные болезни сои и меры борьбы с ними. АН Молдавской СССР. Киев: Штиинца. 1983. 35 с.; Новосадов И.Н., Дубовицкая Л.К., Положиёва Ю.В. Диагностика болезней сои. Благовещенск: Изд-во Дальневосточного ГАУ, 2017. 62 с.; Попкова К.В. Общая фитопатология. Москва: Дрофа, 2005. 445 с. (Классики отечественной науки). ISBN 5-7107-7752-8. https://elibrary.ru/qkwyyd; Лебедева Н.Н., Девочкина Н.Л. Способы стимулирования прорастания семян при выращивании микрозелени. Картофель и овощи. 2023;(5):29-32. https://doi.org/10.25630/PAV.2023.70.33.004 https://elibrary.ru/xajgjm; Нормов Д.А., Шевченко А.А., Шхалахов Р.С., Квитко А.В. Способ обработки яиц в инкубаторах. Патент на изобретение RUS 2343700. 08.10.2007.; Потапенко И.А., Усков А.Е., Шевченко А.А., Квитко А.В. Устройство для предпосевной обработки семян. Патент на полезную модель RUS 97237. 13.10.2009.; Доценко С.М., Кодирова Г.А. Пат. РФ. №2349098. Способ получения соевых ростков. 2009.; https://www.vegetables.su/jour/article/view/2447

  18. 18
    Academic Journal

    Συνεισφορές: The study was carried out within the framework of the state task of the Ministry of Health of Russia No. 056-00015-21-00 “Studying the mechanisms of complex resistance of microorganisms to antimicrobial drugs and physical antimicrobial factors and developing ways to overcome it” (2021–2023) Affiliations, Благодарность, финансирование Исследование выполнено в рамках государственного задания Минздрава России № 056-0001521-00 «Изучение механизмов комплексной устойчивости микроорганизмов к антимикробным препаратам и физическим антимикробным факторам и разработка способов ее преодоления» (2021–2023)

    Πηγή: Russian Sklifosovsky Journal "Emergency Medical Care"; Том 13, № 1 (2024); 29-36 ; Журнал им. Н.В. Склифосовского «Неотложная медицинская помощь»; Том 13, № 1 (2024); 29-36 ; 2541-8017 ; 2223-9022

    Περιγραφή αρχείου: application/pdf

    Relation: https://www.jnmp.ru/jour/article/view/1787/1434; https://www.jnmp.ru/jour/article/view/1787/1524; Зиновьев Е.В., Солошенко В.В., Юрова Ю.В., Костяков Д.В., Вагнер Д.О., Крылов П.К. Лизис/отторжение расщепленных аутодермотрансплантатов – пути решения. Вестник Российской Военно-медицинской академии. 2020;3(71):194–198. https://doi.org/10.17816/brmma50559; Яковлев С.В., Суворова М.П., Белобородова В.Б., Басин Е.Е., Елисеева Е.В., Ковеленов С.В., и др. Распространённость и клиническое значение нозокомиальных инфекций в лечебных учреждениях России: исследование ЭРГИНИ. Антибиотики и химиотерапия. 2016;61(5–6):32–42.; Сухорукова М.В., Эйдельштейн М.В., Склеенова Е.Ю., Иванчик Н.В., Микотина А.В., Дехнич А.В., и др. Антибиотикорезистентность нозокомиальных штаммов Pseudomonas aeruginosa в стационарах России: Результаты многоцентрового эпидемиологического исследования «Марафон» 2013–2014. Клиническая микробиология и антимикробная терапия. 2017;19(1):49–56.; Gaynes R, Edwards JR. National Nosocomial Infections Surveillance System. Overview of nosocomial infections caused by gram-negative bacilli. Clin Infect Dis. 2005;41(6):848–854. PMID: 16107985 https://doi.org/10.1086/432803; de Kraker ME, Stewardson AJ, Harbarth S. Will 10 Million People Die a Year due to Antimicrobial Resistance by 2050? PLoS Med. 2016;13(11):e1002184. PMID: 27898664 https://doi.org/10.1371/journal.pmed.1002184; Паршин Д.С., Топчиев М.А., Пятаков С.Н., Бадма-Горяев О.В., Куприянов А.В., Алибеков Р.С. Результаты фаготерапии инфекционных осложнений в неотложной абдоминальной хирургии. Таврический медико-биологический вестник. 2022;25(2):72–80. https://doi.org/10.37279/2070-8092-2022-25-2-72-80; Loc-Carrillo C, Abedon ST. Pros and cons of phage therapy. Bacteriophage. 2011;1(2):111–114. PMID: 22334867 https://doi.org/10.4161/bact.1.2.14590; Леонтьев А.Е., Павленко И.В., Ковалишена О.В., Саперкин Н.В., Тулупов А.А., Бесчастнов В.В. Применение фаготерапии в лечении ожоговых больных (обзор). Современные технологии в медицине. 2020;12(3):95–104. PMID: 34795985 https://doi.org/10.17691/stm2020.12.3.12; Williams M. Wound infections: an overview. Br J Community Nurs. 2021;26(6):22–25. PMID: 34106009 https://doi.org/10.12968/bjcn.2021.26.Sup6.S22; Cancio LC. Topical Antimicrobial Agents for Burn Wound Care: History and Current Status. Surg Infect (Larchmt). 2021;22(1):3–11. PMID: 33124942 https://doi.org/10.1089/sur.2020.368; Сытник С.И. Экологический подход к оценке кожной микрофлоры. Антибиотики и химиотерапия. 1989;34(6):466–472.; Orenstein A, Klein D, Kopolovic J, Winkler E, Malik Z, Keller N, et al. The use of porphyrins for eradication of Staphylococcus aureus in burn wound infections. FEMS Immunology & Medical Microbiology. 1997;19:307–314.; Бесчастнов В.В., Рябков М.Г., Леонтьев А.Е., Тулупов А.А., Юданова Т.Н., Широкова И.Ю. и др. Исследование in vitro жизнеспособности бактериофагов в составе комплексных гидрогелевых раневых покрытий. Современные технологии в медицине. 2021;13(2):32–39. PMID: 34513074 https://doi.org/10.17691/stm2021.13.2.03; El-Sayed A, Aleya L, Kamel M. Microbiota’s role in health and diseases. Environ Sci Pollut Res Int. 2021;28(28):36967–36983. PMID: 34043164 https://doi.org/10.1007/s11356-021-14593-z; Eguia E, Cobb AN, Baker MS, Joyce C, Gilbert E, Gonzalez R, et al. Risk factors for infection and evaluation of Sepsis-3 in patients with trauma. Am J Surg. 2019;218(5):851–857. PMID: 30885453 https://doi.org/10.1016/j.amjsurg.2019.03.005; Phillips LG, Heggers JP, Robson MC, Boertman JA, Meltzer T, Smith DJ Jr. The effect of endogenous skin bacteria on burn wound infection. Ann Plast Surg. 1989;23(1):35–38. PMID: 2764460 https://doi.org/10.1097/00000637-198907000-00007; Mertz PM, Ovington LG. Wound healing microbiology. Dermatol Clin. 1993;11(4):739–747.; Tomic-Canic M, Burgess JL, O’Neill KE, Strbo N, Pastar I. Skin Microbiota and its Interplay with Wound Healing. Am J Clin Dermatol. 2020;21(1):36–43. PMID: 32914215 https://doi.org/10.1007/s40257020-00536-w; Stacy A, Andrade-Oliveira V, McCulloch JA, Hild B, Oh JH, PerezChaparro PJ, et al. Infection trains the host for microbiota-enhanced resistance to pathogens. Cell. 2021;184(3):615–627. PMID: 33453153 https://doi.org/10.1016/j.cell.2020.12.011; Balato A, Cacciapuoti S, Di Caprio R, Marasca C, Masarà A, Raimondo A, et al. Human Microbiome: Composition and Role in Inflammatory Skin Diseases. Arch Immunol Ther Exp (Warsz). 2019;67(1):1–18. PMID: 30302512 https://doi.org/10.1007/s00005-018-0528-4; Plichta JK, Gao X, Lin H, Dong Q, Toh E, Nelson DE, et al. Cutaneous Burn Injury Promotes Shifts in the Bacterial Microbiome in Autologous Donor Skin: Implications for Skin Grafting Outcomes. Shock. 2017;48(4):441– 448. PMID: 28368977 https://doi.org/10.1097/SHK.0000000000000874; https://www.jnmp.ru/jour/article/view/1787

  19. 19
  20. 20
    Academic Journal

    Συνεισφορές: The research was carried out under the support of the Ministry of Science and Higher Education of the Russian Federation within the state assignment of the Federal Williams Research Center of Forage Production & Agroecology (theme No. FGGW-2022-0004). The authors thank the reviewers for their contribution to the peer review of this work., Работа выполнена при поддержке Минобрнауки РФ в рамках Государственного задания ФГБНУ «Федеральный научный центр кормопроизводства и агроэкологии имени В. Р. Вильямса» (тема № FGGW-2022-0004). Авторы благодарят рецензентов за их вклад в экспертную оценку этой работы.

    Πηγή: Agricultural Science Euro-North-East; Том 25, № 2 (2024); 198-206 ; Аграрная наука Евро-Северо-Востока; Том 25, № 2 (2024); 198-206 ; 2500-1396 ; 2072-9081

    Περιγραφή αρχείου: application/pdf

    Relation: https://www.agronauka-sv.ru/jour/article/view/1601/754; Конончук В. В., Тимошенко С. М., Назарова Т. О., Штырхунов В. Д., Меднов А. В. Ресурсосберегающая технология возделывания районированных в Центральном регионе Нечерноземной зоны сортов люпина узколистного в чистом виде и в смесях со злаковыми зерновыми культурами. М.: ФИЦ «Немчиновка», 2022. 48 с.; Taylor J. L., De Angelis G., Nelson M. N. How have narrow-leafed lupin genomic resources enhanced our understanding of lupin domestication? In: Singh K., Kamphuis L., Nelson M. (eds). The Lupin Genome. Compendium of Plant Genomes. Springer Cham., 2020. pp. 95–108. DOI: https://doi.org/10.1007/978-3-030-21270-4_8; Косолапов В. М., Яговенко Г. Л., Лукашевич М. И., Агеева П. А., Новик Н. В., Мисникова Н. В., Слесарева Т. Н., Такунов И. П., Пимохова Л. И., Яговенко Т. В. Люпин: селекция, возделывание, использование. Брянск: Брянское областное полиграфическое объединение, 2020. 304 с.; Агеева П. А., Почутина Н. А., Матюхина М. В. Люпин узколистный – источник ценных питательных веществ, для использования в кормопроизводстве. Кормопроизводство. 2020;(10):29–32. Режим доступа: https://www.elibrary.ru/item.asp?id=44576992 EDN:NBXRDL; Конончук В. В., Тимошенко С. М., Назарова Т. О., Штырхунов В. Д., Никиточкин Д. Н., Шуркин А. Ю., Колотилица З. М. Зерновая продуктивность и азотфиксирующая способность люпина узколистного в зависимости от норм высева, удобрений и применения гербицидов при разных погодных условиях в центре Нечерноземной зоны России. Зернобобовые и крупяные культуры. 2021;2(38):104–114. DOI: https://doi.org/10.24412/2309-348X-2021-2-104-114 EDN: WBCOIS; Пимохова Л. И., Яговенко Г. Л. Болезни и вредители люпина: система и средства защиты. Брянск: Читайгород, 2020. 88 с.; Alkemade J. A., Messmer M. M., Voegele R. T, Finckh M. R., Hohmann P. Genetic diversity of Colletotrichum lupini and its virulence on white and Andean lupin. Scientific Reports. 2021;11:13547. DOI: https://doi.org/10.1038/s41598-021-92953-y; Пимохова Л. И., Яговенко Г. Л., Царапнева Ж. В., Мисникова Н. В. Развитие белой гнили на люпине узколистном (Lupinus angustifolius L.) и белом (Lupinus albus L.) в одновидовых и смешанных посевах при разных погодных условиях Брянской области. Сельскохозяйственная биология. 2020;55(6):1257–1267. DOI: https://doi.org/10.15389/agrobiology.2020.6.1257rus EDN: EXYGKX; Ашмарина Л. Ф., Бакшаев Д. Ю., Ермохина А. И., Садохина Т. А. Болезни люпина в Западной Сибири. Защита и карантин растений. 2019;(2):19–20. Режим доступа: https://www.elibrary.ru/item.asp?id=36922330&ysclid=l42pjc6d4j EDN: PNZQEB; Побежимова Т. П., Корсукова А. В., Дорофеев Н. В., Грабельных О. И. Физиологические эффекты действия на растения фунгицидов триазольной природы. Известия ВУЗов. Известия вузов. Прикладная химия и биотехнология. 2019;9(3):461–476. DOI: https://doi.org/10.21285/2227-2925-2019-9-3-461-476 EDN: VLYINU; Запрудский А. А., Яковенко А. М., Гаджиева Г. И., Привалов Д. Ф., Белова Е. С., Гутковская Н. С., Пенязь Е. В. Защита посевов кормовых бобов и люпина узколистного от болезней в период вегетации. Наше сельское хозяйство. 2020;(9(233)):98–103.; Слободчиков А. А. Влияние средств защиты растений на продуктивность сортов яровой пшеницы. Достижения науки и техники АПК. 2020;34(2):10–14. DOI: https://doi.org/10.24411/0235-2451-2020-10202 EDN: YMHWRU; Андреева И. В., Ашмарина Л. Ф., Шаталова Е. И. Особенности изменения фитосанитарного состояния кормовых культур в условиях Западной Сибири. Достижения науки и техники АПК. 2019;33(10):26–30. DOI: https://doi.org/10.24411/0235-2451-2019-11006 EDN: OKBZFW