Showing 1 - 20 results of 74 for search '"ОСТЕОПРОТЕГЕРИН"', query time: 0.69s Refine Results
  1. 1
  2. 2
  3. 3
  4. 4
    Academic Journal

    File Description: application/pdf

    Relation: Плакса В. М. Сучасні маркери остеодисметаболічного синдрому / В. М. Плакса // Актуальні проблеми сучасної медицини: Вісник Української медичної стоматологічної академії. – 2023. – Т. 23, вип. 2 (82), ч. 1. – С. 67–73.; https://repository.pdmu.edu.ua/handle/123456789/20978

  5. 5
    Academic Journal

    Source: Meditsinskiy sovet = Medical Council; № 15 (2023); 134-143 ; Медицинский Совет; № 15 (2023); 134-143 ; 2658-5790 ; 2079-701X

    File Description: application/pdf

    Relation: https://www.med-sovet.pro/jour/article/view/7794/6916; Сметник ВП (ред.). Менопаузальная гормонотерапия и сохранение здоровья женщин зрелого возраста: клинические рекомендации (протокол лечения). М.; 2015. Режим доступа: http://zdrav.spb.ru/media/filebrowser/менопаузальная_гормонотерапия_и_сохранение_здоровья_женщин_в_зрелом_возрасте.pdf.; Nappi RE, Kroll R, Siddiqui E, Stoykova B, Rea C, Gemmen E, Schultz NM. Global cross-sectional survey of women with vasomotor symptoms associated with menopause: prevalence and quality of life burden. Menopause. 2021;28(8):875–882. https://doi.org/10.1097/GME.0000000000001793.; Palacios S, Stevenson JC, Schaudig K, Lukasiewicz M, Graziottin A. Hormone therapy for first-line management of menopausal symptoms: Practical recommendations. Womens Health (Lond). 2019;15:1745506519864009. https://doi.org/10.1177/1745506519864009.; Bansal R, Aggarwal N. Menopausal Hot Flashes: A Concise Review. J Midlife Health. 2019;10(1):6–13. https://doi.org/10.4103/jmh.JMH_7_19.; Майлян ЭА, Чурилов АВ, Джеломанова ЕС, Лесниченко ДА. Уровни отдельных цитокинов у женщин с климактерическим синдромом. В: Проблемы экологической и медицинской генетики и клинической иммунологии: сборник научных трудов. Луганск, 2022. Выпуск 1, с. 33–41. Режим доступа: https://ecoproblemlug.ucoz.ua/1_169.pdf.; Huang WY, Hsin IL, Chen DR, Chang CC, Kor CT, Chen TY, Wu HM. Circulating interleukin-8 and tumor necrosis factor-α are associated with hot flashes in healthy postmenopausal women. PLoS ONE. 2017;12(8):e0184011. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0184011.; Levine ME, Lu AT, Chen BH, Hernandez DG, Singleton AB, Ferrucci L et al. Menopause accelerates biological aging. Proc Natl Acad Sci U S A. 2016;113(33):9327–9332. https://doi.org/10.1073/pnas.1604558113.; Kalkan R, Altarda M, Tosun O. RANKL is a new Epigenetic Biomarker for the Vasomotor Symptom During Menopause. Balkan J Med Genet. 2020;23(1):51–56. https://doi.org/10.2478/bjmg-2020-0001.; Lotrich FE. Inflammatory cytokine-associated depression. Brain Res. 2015;1617:113–125. https://doi.org/10.1016/j.brainres.2014.06.032.; Hodes GE, Pfau ML, Leboeuf M, Golden SA, Christoffel DJ, Bregman D et al. Individual differences in the peripheral immune system promote resilience versus susceptibility to social stress. Proc Natl Acad Sci U S A. 2014;111(45):16136–16141. https://doi.org/10.1073/pnas.1415191111.; Guo L, Ren L, Zhang C. Relationship between depression and inflammatory factors and brain-derived neurotrophic factor in patients with perimenopause syndrome. Exp Ther Med. 2018;15(5):4436–4440. https://doi.org/10.3892/etm.2018.5985.; Abdi F, Mobedi H, Mosaffa N, Dolatian M, Ramezani Tehrani F. Hormone Therapy for Relieving Postmenopausal Vasomotor Symptoms: A Systematic Review. Arch Iran Med. 2016;19(2):141–146. Available at: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/26838086.; Holmberg L, Anderson H; HABITS steering and data monitoring committees. HABITS (hormonal replacement therapy after breast cancer – is it safe?), a randomised comparison: trial stopped. Lancet. 2004;363(9407):453–455. https://doi.org/10.1016/S0140-6736(04)15493-7.; Madalinska JB, van Beurden M, Bleiker EM, Valdimarsdottir HB, Hollenstein J, Massuger LF et al. The impact of hormone replacement therapy on menopausal symptoms in younger high-risk women after prophylactic salpingo-oophorectomy. J Clin Oncol. 2006;24(22):3576–3582. https://doi.org/10.1200/JCO.2005.05.1896.; Чурилов АВ, Майлян ЭА, Джеломанова ЕС, Лесниченко ДА. Ассоциации дефицита витамина D с клиническими проявлениями климактерического синдрома. Медико-социальные проблемы семьи. 2022;27(2):20–27. Режим доступа: https://journal.ak-gin.org/index.php/mspf/article/view/389.; Catalano A, Bellone F, Santoro D, Schwarz P, Gaudio A, Basile G et al. Vitamin D Boosts Alendronate Tail Effect on Bone Mineral Density in Postmenopausal Women with Osteoporosis. Nutrients. 2021;13(6):1878. https://doi.org/10.3390/nu13061878.; Riazi H, Ghazanfarpour M, Taebi M, Abdolahian S. Effect of Vitamin D on the Vaginal Health of Menopausal Women: A Systematic Review. J Menopausal Med. 2019;25(3):109–116. https://doi.org/10.6118/jmm.19194.; Schnatz PF, Jiang X, Aragaki AK, Nudy M, O’Sullivan DM, Williams M et al. Effects of Calcium, Vitamin D, and Hormone Therapy on Cardiovascular Disease Risk Factors in the Women’s Health Initiative: A Randomized Controlled Trial. Obstet Gynecol. 2017;129(1):121–129. https://doi.org/10.1097/AOG.0000000000001774.; Pérez-López FR, Chedraui P, Pilz S. Vitamin D supplementation after the menopause. Ther Adv Endocrinol Metab. 2020;11:2042018820931291. https://doi.org/10.1177/2042018820931291.; LeBlanc ES, Hedlin H, Qin F, Desai M, Wactawski-Wende J, Perrin N et al. Calcium and vitamin D supplementation do not influence menopause-related symptoms: Results of the Women’s Health Initiative Trial. Maturitas. 2015;81(3):377–383. https://doi.org/10.1016/j.maturitas.2015.04.007.; Polisseni AF, Andrade AT, Ribeiro LC, Castro IQ, Brandão M, Polisseni F, Guerra Mde O. Effects of a continuous-combined regimen of low-dose hormone therapy (oestradiol and norethindrone acetate) and tibolone on the quality of life in symptomatic postmenopausal women: a double-blind, randomised study. Maturitas. 2013;74(2):172–178. https://doi.org/10.1016/j.maturitas.2012.11.001.; Абусуева ЗА, Тетекаева АМ, Хашаева ТХ, Гейбатова ЛГ, Алиева ИМ. Особенности менопаузальных расстройств у пациенток с эпилепсией. Медицинский алфавит. 2019;2(14):45–46. https://doi.org/10.33667/2078-5631-2019-2-14(389)-45-46.; Озолиня ЛА, Савченко ТН, Сафонина МС, Оверко АВ. Значение витамина D для здоровья женщин перименопаузального периода. Медицинский совет. 2020;(13):84–90. https://doi.org/10.21518/2079-701X-2020-13-84-90.; Pinkerton JV. Hormone Therapy for Postmenopausal Women. N Engl J Med. 2020;382(5):446–455. https://doi.org/10.1056/NEJMcp1714787.; The NAMS 2017 Hormone Therapy Position Statement Advisory Panel. The 2017 hormone therapy position statement of The North American Menopause Society. Menopause. 2017;24(7):728–753. https://doi.org/10.1097/GME.0000000000000921.; Gordon JL, Rubinow DR, Eisenlohr-Moul TA, Leserman J, Girdler SS. Estradiol variability, stressful life events, and the emergence of depressive symptomatology during the menopausal transition. Menopause. 2016;23(3):257–266. https://doi.org/10.1097/GME.0000000000000528.; Maki PM, Kornstein SG, Joffe H, Bromberger JT, Freeman EW, Athappilly G et al. Guidelines for the evaluation and treatment of perimenopausal depression: summary and recommendations. Menopause. 2018;25(10):1069–1085. https://doi.org/10.1097/GME.0000000000001174.; Muka T, Oliver-Williams C, Colpani V, Kunutsor S, Chowdhury S, Chowdhury R et al. Association of Vasomotor and Other Menopausal Symptoms with Risk of Cardiovascular Disease: A Systematic Review and Meta-Analysis. PLoS ONE. 2016;11(6):e0157417. https://doi.org/10.1371/journal. pone.0157417.; Cintron D, Lahr BD, Bailey KR, antoro N, Lloyd R, Manson JE et al. Effects of oral versus transdermal menopausal hormone treatments on self-reported sleep domains and their association with vasomotor symptoms in recently menopausal women enrolled in the Kronos Early Estrogen Prevention Study (KEEPS). Menopause. 2018;25(2):145–153. https://doi.org/10.1097/GME.0000000000000971.; Пестрикова ТЮ, Ячинская ТВ. Оценка эффективности комплексного подхода к лечению менопаузальных симптомов у женщин периода ранней постменопаузы на фоне дефицита витамина D. Медицинский алфавит. 2017;4(37):6–9. Режим доступа: https://www.med-alphabet.com/jour/article/view/411.; Ячинская ТВ. Менопаузальная гормональная терапия и витамин D у женщин в постменопаузе: качество жизни сегодня и завтра. Дальневосточный медицинский журнал. 2017;(3):28–31. Режим доступа: https://elibrary.ru/zigbkj.; Saucedo R, Rico G, Basurto L, Ochoa R, Zárate A. Transdermal estradiol in menopausal women depresses interleukin-6 without affecting other markers of immune response. Gynecol Obstet Invest. 2002;53(2):114–117. https://doi.org/10.1159/000053005.; Yasui T, Uemura H, Tomita J, Miyatani Y, Yamada M, Kuwahara A et al. Association of interleukin-8 with hot flashes in premenopausal, perimenopausal, and postmenopausal women and bilateral oophorectomized women. J Clin Endocrinol Metab. 2006;91(12):4805–4808. https://doi.org/10.1210/jc.2006-1100.; Bueloni-Dias FN, Orsatti CL, Cangussu LM, Poloni PF, Spadoto-Dias D, Nahas-Neto J, Nahas EAP. Isolated vitamin D supplementation improves the immune-inflammatory biomarkers in younger postmenopausal women: a randomized, double-blind, placebo-controlled trial. Menopause. 2018;25(8):897–903. https://doi.org/10.1097/GME.0000000000001106.

  6. 6
  7. 7
  8. 8
  9. 9
  10. 10
  11. 11
    Academic Journal

    Source: Rossiyskiy Vestnik Perinatologii i Pediatrii (Russian Bulletin of Perinatology and Pediatrics); Том 65, № 4 (2020); 71-77 ; Российский вестник перинатологии и педиатрии; Том 65, № 4 (2020); 71-77 ; 2500-2228 ; 1027-4065 ; 10.21508/1027-4065-2020-65-4

    File Description: application/pdf

    Relation: https://www.ped-perinatology.ru/jour/article/view/1204/959; Майлян Э.А., Резниченко Н.А., Майлян Д.Э. Ассоциация полиморфизма генов системы витамина D с некоторыми заболеваниями человека. Вятский медицинский вестник 2017; 2(54): 30—40.; Национальная программа «Недостаточность витамина D у детей и подростков Российской Федерации: современные подходы к коррекции». Союз педиатров России. М.: ПедиатрЪ, 2018; 96.; Acar S., Demir K., Shi Y. Genetic causes of rickets. J Clin Res Pediatr Endocrinol 2017; 9(2): 88-105. DOI:10.4274/jcrpe.2017.S008; Власова А.Н., Гаймоленко И.Н., Тихоненко О.А. Применение витамина D у часто болеющих детей. Забайкальский медицинский вестник 2014; 2: 92-95.; Захарова И.Н., Коровина Н.А., Дмитриева Ю.А. Современный взгляд на патогенез и профилактику рахита. Практика педиатра 2012; 2: 34—40.; HolickM.F., Grant W.B. Vitamin D status and ill health. Lancet Diabetes Endocrinol 2014; 2(4): 273—274. DOI:10.1016/S2213-8587(13)70165-7; Мальцев С.В. Архипова Н.Н., Шакирова Э.М. Витамин D, кальций и фосфаты у здоровых детей и при патологии. Казань, 2012; 15.; Реушева С.В., Паничева Е.А, Пастухова С.Ю., Реушев М.Ю. Значение дефицита витамина D в развитии заболеваний человека. Успехи современного естествознания 2013; 11: 27—31.; Донников А.Е., Бордакова Е.В., Сметник А.А., Якушев-ская О.В., Трофимов Д.Ю., Юренева С.В. Клинико-прогностическое значение молекулярно-генетических факторов при постменопаузальном остеопорозе. Остеопороз и остеопатии 2016; 2: 34.; Панкратова Ю.В., Пигарова Е.А., Дзеранова Л.К. Витамин К-зависимые белки: остеокальцин, матриксный GLA-белок и их внекостные эффекты. Ожирение и метаболизм 2013; 2(35): 11—18.; Павлов С.Б. Участие паратиреоидного гормона и кальци-тонина в регуляции метаболизма костной ткани при моделировании его нарушений. Вестник проблем биологии и медицины 2013; 1(2): 185—189.; Данилов Н.В. Остеопороз как проблема тиреоидной хирургии. Наука молодых — Eruditio Juvenium 2014; 1: 105— 113.; Захаров И.С., Колпинский Г.И., Ушакова Г.А., Вавин Г.В. Биохимические маркеры в диагностике нарушений ремоделирования костной ткани при остеопорозе. Вестник Авиценны 2013; 4(57): 119—123.; Киселева И.В. Изменение маркеров метаболизма костной ткани в сыворотке крови у больных остеопорозом. Современные проблемы науки и образования 2014; 3: 552.; Кочеткова Е.А., Буря К.А., Угай Л.Г., Коцюрбий Е.А., Невзорова В.А., Лукьянов П.А., Албавичус С.А. Роль остео-протегерина в формировании остеопенического синдрома при хронической обструктивной болезни легких. Тихоокеанский медицинский журнал 2013; 1: 20—22.; Герштейн Е.С., Тимофеев Ю.С., Зуев А.А., Кушлин-ский Н.Е. Лиганд-рецепторная система RANK/RANKL/ OPG и ее роль при первичных новообразованиях костей (анализ литературы и собственные результаты). Успехи молекулярной биологии 2015; 2(3): 51—59.

  12. 12
  13. 13
  14. 14
  15. 15
  16. 16
    Academic Journal

    Source: Bulletin of Siberian Medicine; Том 18, № 3 (2019); 116-124 ; Бюллетень сибирской медицины; Том 18, № 3 (2019); 116-124 ; 1819-3684 ; 1682-0363 ; 10.20538/1682-0363-2019-18-3

    File Description: application/pdf

    Relation: https://bulletin.tomsk.ru/jour/article/view/2409/1634; Huber L.C., Distler O., Tarner I., Gay R.E., Gay S., Pap T. Synovial fibroblasts: key players in rheumatoid arthritis. Rheumatology (Oxford). 2006; 45 (6): 669–675. DOI:10.1093/rheumatology/kel065.; Müller-Ladner U., Kriegsmann J., Franklin B.N., Matsumoto S., Geiler T., Gay R.E., Gay S. Synovial fibroblasts of patients with rheumatoid arthritis attach to and invade normal human cartilage when engrafted into SCID mice. Am. J. Pathol. 1996; 149 (5): 1607–1615.; Lefèvre S., Knedla A., Tennie C., Kampmann A., Wunrau C., Dinser R., Korb A., Schnäker E.M., Tarner I.H., Robbins P.D., Evans C.H, Stürz H., Steinmeyer J., Gay S., Schölmerich J., Pap T., Müller-Ladner U., Neumann E. Synovial fibroblasts spread rheumatoid arthritis to unaffected joints. Nat. Med. 2009; 15 (12): 1414–1420. DOI:10.1038/nm.2050.; Шнайдер М.А., Ширинский В.С., Ширинский И.В. Культура фибробластоподобных синовиальных клеток больных ревматоидным артритом: свойства и возможности. Медицинская иммунология. 2016; 18 (2): 107–118.; Boyle W.J., Simonet W.S., Lacey D.L. Osteoclast differentiation and activation. Nature. 2003; 423: 337–342. DOI:10.1038/nature01658.; Takayanagi H., Oda H., Yamamoto S., Kawaguchi H., Tanaka S., Nishikawa T., Koshihara Y. A new mechanism of bone destruction in rheumatoid arthritis: synovial fibroblasts induce osteoclastogenesis. Biochem. Biophys. Res. Commun. 1997; 240 (2): 279–286. DOI:10.1006/bbrc.1997.7404.; Lacey D.L., Timms E., Tan H.-L., Kelley M.J., Dunstan C.R., Burgess T., Elliot R., Colombero A., Elliot G., Scully S., Hsu H., Sullivan J., Hawkins N., Davy E., Capparelli C., Eli A., Qian Y.X., Kaufman S., Sarosi I., Shalhoub V., Senaldi G., Guo J., Delaney J., Boyle W.J. Osteoprotegerin ligand is a cytokine that regulates osteoclast differentiation and activation. Cell. 1998; 93: 165–176. DOI:10.1016/S0092-8674(00)81569-X.; Haynes D.R., Barg E., Crotti T.N., Holding C., Weedon H., Atkins G.J., Zannetino A., Ahern M.J., Coleman M., Roberts-Thomson P.J., Kraan M., Tak P.P., Smith M.D. Osteoprotegerin expression in synovial tissue from patients with rheumatoid arthritis, spondyloarthropathies and osteoarthritis and normal controls. Rheumatology (Oxford), 2003. 42 (1): 123–134.; Crotti T.N., Ahern M.J., Lange K., Weedon H., Coleman M., Roberts-Thomson P.J., Haynes D.R., Smith M.D. Variability of RANKL and osteoprotegerin staining in synovial tissue from patients with active rheumatoid arthritis: quantification using color video image analysis. J. Rheumatol. 2003; 30 (11): 2319–2324.; Fonseca J.E., Cortez-Dias N., Francisco A., Sobral M., Canhão H., Resende C., Castelão W., Macieira C., Sequeira G., Saraiva F., Pereira da Silva J.A., Carmo-Fonseca M., Viana Queiroz M. Inflammatory cell infiltrate and RANKL/OPG expression in rheumatoid synovium: comparison with other inflamatory arthropathies and correlation with outcome. Clin. Exp. Rheumatol. 2005; 23 (2): 185–192.; Skoumal M., Kolarz G., Haberhauer G., Woloszczuk W., Hawa G., Klingler A. Osteoprotegerin and the receptor activator of NF-kappa B ligand in the serum and synovial fluid. A comparison of patients with longstanding rheumatoid arthritis and osteoarthritis. Rheumatol. Int. 2005; 26 (1): 63–69. DOI:10.1007/s00296-004-0579-1.; Moutasim K.A., Nystrom M.L., Thomas G.J. Cell migration and invasion assays. Methods in Molecular Biology. 2011; 731: 333–343. DOI:10.1007/978-1-61779-080-5_27.; Bartok B., Firestein G.S. Fibroblast-like synoviocytes: key effector cells in rheumatoid arthritis. Immunol Rev. 2010; 233 (1): 233–255. DOI:10.1111/j.0105-2896.2009.00859.x.; Portela A., Esteller M. Epigenetic modifications and human diseases. Nat. Biotechnol. 2010; 28 (10): 1057–1068. DOI:10.1038/nbt.1685.; Dolinoy D.C., Weidman J.R., Waterland R.A., Jirtle R.L. Maternal genistein alters coat color and protects avy mouse offspring from obesity by modifying the fetal epigenome. Environ. Health Perspect. 2006; 114 (4): 567–572. DOI:10.1289/ehp.8700.; Li J., Gang D., Yu X., Hu Y., Yue Y., Cheng W., Pan X., Zhang P. Genistein: the potential for efficacy in rheumatoid arthritis. Clin. Rheumatol. 2013; 32 (5): 535–540. DOI:10.1007/s10067-012-2148-4.; Arce C., Segura-Pacheco B., Perez-Cardenas E., TajaChayeb L., Candelaria M., Duennas-Gonzalez A. Hydralazine target: from blood vessels to the epigenome. J. Transl. Med. 2006; 4: 10–22. DOI:10.1186/1479-5876-4-10.; Lydersen S. Statistical review: frequently given comments. Ann. Rheum. Dis. 2015; 74 (2): 323–325. DOI:10.1136/annrheumdis-2014-206186.; Firestein G.S. Etiology and pathogenesis of rheumatoid arthritis. In: Firestein G.S., Budd R.C., Harris T., McInnes I.B., Ruddy S., Sergent J.S., editors. Kelly’s Textbook of Rheumatology. Philadelphia, PA: Saunders Elsevier, 2009: 1035–1086. DOI:10.1016/B978-0-323-31696-5.00069-3.; Redlich K., Hayer S., Ricci R., David J.P., Tohidast-Akrad M., Kollias G., Steiner G., Smolen J.S., Wagner E.F., Schett G. Osteoclasts are essential for TNF-a-mediated joint destruction. J. Clin. Invest. 2002; 110 (10): 1419–1427. DOI:10.1172/JCI15582.; Bromley M., Woolley D.E. Chondrocytes and osteoclasts at subchondral sites of erosions in the rheumatoid joint. Arthitis Rheum. 1984; 27 (9): 968–975.; Gravallese E.M., Manning C., Tsay A., Naito A., Pan C., Amento E., Goldring S.R. Synovial tissue in rheumatoid arthritis is a source of osteoclast differentiation factor. Arthritis Rheum. 2000; 43: 250–258. DOI:10.1002/1529-0131(200002)43:23.0.co;2-p; Yasuda H., Shima N., Nakagawa N., Yamaguchi K., Kinosaki M., Mochizuki S.-I., Tomoyasu A., Yano K., Goto M., Murakami A., Tsuda E., Morinaga T., Higashio K., Udagawa N., Takahashi N., Suda T. Osteoclast differentiation factor is a ligand for osteoprotegerin/osteoclastogenesis-inhibitory factor and is identical to TRANCE/RANKL. Proc. Nat. Acad. Sci. USA. 1998; 95 (7): 3597–3602.; Simonet W.S., Lacey D.L., Dunstan C.R., Kelley M., Chang M.S., Lüthy R., Nguyen H.Q., Wooden S., Bennett L., Boone T., Shimamoto G., DeRose M., Elliott R., Colombero A., Tan H.L., Trail G., Sullivan J., Davy E., Bucay N., Renshaw-Gegg L., Hughes T.M., Hill D., Pattison W., Campbell P., Sander S., Van G., Tarpley J., Derby P., Lee R., Boyle W.J. Osteoprotegerin: a novel secreted protein involved in the regulation of bone density. Cell. 1997; 89: 309–319. DOI:10.1016/S0092-8674(00)80209-3.; Hofbauer L.C., Khosla S., Dunstan C.R., Lacey D.L., Boyle W.J., Riggs B.L. The roles of osteoprotegerin and osteoprotegerin ligand in the paracrine regulation of bone resorption. J. Bone Miner. Res. 2000; 15: 2–12. DOI:10.1359/jbmr.2000.15.1.2.; Yano K., Nakagawa N., Yasuda H., Tsuda E., Higashio K. Synovial cells from a patient with rheumatoid arthritis produce osteoclastogenesis inhibitory factor/ osteoprotegerin: reciprocal regulation of the production by inflammatory cytokines and basic fibroblast growth factor. J. Bone Miner. Metab. 2001; 19 (6): 365–372. DOI:10.1007/s007740170006.; Klein K., Ospelt C., Gay S. Epigenetic contributions in the development of rheumatoid arthritis. Arthritis Res. Ther. 2012; 14 (6): 227. DOI:10.1186/ar4074.; Bustamante M.F., Garcia-Carbonell R., Whisenant K.D., Guma M. Fibroblast-like synoviocyte metabolism in the pathogenesis of rheumatoid arthritis. Arthritis. Res. Ther. 2017; 19 (1): 110. DOI:10.1186/s13075-017-1303-3.; Kramer N., Walzl A., Unger C., Rosner M., Krupitza G., Hengstschläger M., Dolznig H. In vitro cell migration and invаsion assays. Mutat. Res. 2013; 752 (1): 10–24. DOI:10.1016/j.mrrev.2012.08.001.; Shelef M.A., Bennin D.A., Yasmin N., Warner T.F., Ludwig T., Beggs H.E., Huttenlocher A. Focal adhesion kinase is required for synovial fibroblast invasion, but not murine inflammatory arthritis. Arthritis Res. Ther. 2014; 16 (5): 464. DOI:10.1186/s13075-014-0464-6.; https://bulletin.tomsk.ru/jour/article/view/2409

  17. 17
  18. 18
  19. 19
  20. 20