Showing 1 - 20 results of 295 for search '"ОЛЕНЕВОДСТВО"', query time: 0.74s Refine Results
  1. 1
  2. 2
  3. 3
  4. 4
  5. 5
  6. 6
  7. 7
    Academic Journal

    Contributors: the research was carried out under the support of the Ministry of Science and Higher Education of the Russian Federation within the state assignment of the Federal Research Center for Animal Husbandry named after Academy Member L. K. Ernst (theme No. FGGN-2024-0018, No. 124051400016-6)., работа выполнена при поддержке Минобрнауки РФ в рамках Государственного задания ФГБНУ «Федеральный исследовательский центр животноводства – ВИЖ имени академика Л. К. Эрнста» (тема № FGGN-2024-0018, № 124051400016-6).

    Source: Agricultural Science Euro-North-East; Том 25, № 4 (2024); 525–537 ; Аграрная наука Евро-Северо-Востока; Том 25, № 4 (2024); 525–537 ; 2500-1396 ; 2072-9081

    File Description: application/pdf

    Relation: https://www.agronauka-sv.ru/jour/article/view/1711/786; Омашева М. Е., Аубакирова К. П., Рябушкина Н. А. Молекулярные маркеры. причины и последствия ошибок генотипирования. Биотехнология. Теория и практика. 2013;(4):20–28. Режим доступа: https://www.elibrary.ru/item.asp?id=25612911 EDN: VOMRFP; Кийко Е. И. Принципы маркерной селекции в молочном скотоводстве. Вестник Тамбовского университета. Серия: естественные и технические науки. 2010;15(1):134–135. Режим доступа: https://www.elibrary.ru/item.asp?id=14805077 EDN: MLZMAJ; Litt M. A., Luty J. A. Hypervariable microsatellite revealed by in vitro amplification of a dinucleotide repeat within the cardiac muscle actin gene. American Journal of Human Genetics. 1989;44(3):397–401; Tautz D. Hypervariability of simple sequences as a general source for polymorphic DNA markers. Nucleic Acids Research. 1989;17(16):6463–6471. DOI: https://doi.org/10.1093/nar/17.16.6463; Weber J. L., May P. E. Abundant class of human DNA polymorphisms which can be typed using the polymerase chain reaction. American Journal of Human Genetics. 1989;44(3):388–396.; Edwards A., Civitello A., Hammond H. A., Caskey C. T. DNA typing and genetic mapping with trimeric and tetrameric tandem repeats. The American Journal of Human Genetics. 1991;49(4):746–775.; Jeffreys A. J., Royle N. J., Wilson V., Wong Z. Spontaneous mutation rates to new length alleles at tandemrepetitive hypervariable loci in human DNA. Nature. 1988;332(6161):278–281. DOI: https://doi.org/10.1038/332278a0; Abdul-Muneer P. M. Application of microsatellite markers in conservation genetics and fisheries management: recent advances in population structure analysis and conservation strategies. Genetics Research International. 2014;2014(1):691759. DOI: https://doi.org/10.1155/2014/691759; Hoffman J. I., Amos W. Microsatellite genotyping errors: detection approaches, common sources and consequences for paternal exclusion. Molecular Ecology. 2005;14(2):599–612. DOI: https://doi.org/10.1111/j.1365-294X.2004.02419.x; Rajendrakumar P., Biswal A. K., Balachandran S. M., Srinivasarao K., Sundaram R. M. Simple sequence repeats in organellar genomes of rice: frequency and distribution in genic and intergenic regions. Bioinformatics. 2007;23(1):1–4. DOI: https://doi.org/10.1093/bioinformatics/btl547; Kalia R. K., Rai M. K., Kalia S., Singh R., Dhawan A. K. Microsatellite markers: an overview of the recent progress in plants. Euphytica. 2011;177:309–334. DOI: https://doi.org/10.1007/s10681-010-0286-9; Bishop M. D., Kappes S. M., Keele J. W., Stone R. T., Sunden S. L., Hawkins G. A., Toldo S. S., Fries R., Grosz M. D., Yoo J. A genetic linkage map for cattle. Genetics. 1994;136(2):619–639. DOI: https://doi.org/10.1093/genetics/136.2.619; Bishop M. D., Hawkins G. A., Keeler C. L. Use of DNA markers in animal selection. Theriogenology. 1995;43(1):61–70. DOI: https://doi.org/10.1016/0093-691X(94)00018-P; Peakall R., Gilmore S., Keys W., Morgante M., Rafaske A. Cross-species amplification of soybean (Glycine max) simple sequence repeat (SSRs) within the genus and other legume genera: implications for the transferability of SSRs in plants. Molecular Biology and Evolution. 1998;15(10):1275–1287. DOI: https://doi.org/10.1093/oxfordjournals.molbev.a025856; Baron E. E., Mário L. M., Verneque R. S., Coutinho L. L. Parentage testing and effect of misidentification on the estimation of breeding value in Gir cattle. Genetics and Molecular Biology. 2002;25(4):389–394. DOI: https://doi.org/10.1590/S1415-47572002000400006; Kuleung C., Baenziger P. S., Dweikat I. Transferability of SSR markers among wheat, rye and triticale. Theoretical and Applied Genetics. 2004;108:1147–1150. DOI: https://doi.org/10.1007/s00122-003-1532-5; Yang W., Kang X., Yang Q., Lin Y., Fang M. Review on the development of genotyping methods for assessing farm animal diversity. Journal of Animal Science and Biotechnology. 2013;(4):2. DOI: https://doi.org/10.1186/2049-1891-4-2; Tabbasam N., Zafar Y., Mehboob-ur-Rahman. Pros and cons of using genomic SSRs and EST-SSRs for resolving phylogeny of the genus Gossypium. Plant Systics and Evolution. 2014;300:559–575. DOI: https://doi.org/10.1007/s00606-013-0891-x; Hasan N., Choudhary S., Naaz N., Sharma N., Laskar R. A. Recent advancements in molecular markerassisted selection and applications in plant breeding programmes. Journal of Genetic Engineering and Biotechnology. 2021;19(1):128. DOI: https://doi.org/10.1186/s43141-021-00231-1; Mohindra V., Mishra A., Palanichamy M., Ponniah A. G. Cross-species amplification of Catla catla microsatellite locus in Labeo rohita. Indian Journal of Fisheries. 2001;48(1):103–108. URL: https://epubs.icar.org.in/index.php/IJF/article/view/8492/3463; Carneiro V. M. L., Santini L., Diniz A. L., de Freitas Munhoz C. Microsatellite markers: what they mean and why they are so useful. Genetics and Molecular Biology. 2016;39(3):312–328. DOI: https://doi.org/10.1590/1678-4685-gmb-2016-0027; Pei J., Bao P., Chu M., Liang C., Ding X., Wang H., Wu X., Guo X., Yan P. Evaluation of 17 microsatellite markers for parentage testing and individual identification of domestic yak (Bos grunniens). PeerJ. 2018;6:e5946. DOI: https://doi.org/10.7717/peerj.5946; Гладырь Е. А., Горелов П. В., Маурчева В. Н., Шахин А. В., Чинаров Ю. И., Зиновьева Н. А. Оценка результативности тест-системы на основе микросателлитов в проведении ДНК-экспертизы крупного рогатого скота. Достижения науки и техники АПК. 2011;(8):51–54. Режим доступа: https://elibrary.ru/item.asp?id=16690837 EDN: OBGJWR; Zhao J., Zhu C., Xu Z., Jiang X., Yang S., Chen A. Microsatellite markers for animal identification and meat traceability of six beef cattle breeds in the Chinese market. Food Control. 2017;78:469–475. DOI: https://doi.org/10.1016/j.foodcont.2017.03.017; Kang S. W., Lee S. Y., Chio D. H., Kang H. J., Hu M. B., Yang Y. J. Statistical analysis of alleles in 4703 thoroughbred racing horses using fifteen microsatellite DNA markers. Journal of Animal Science. 2016;94:88. DOI: https://doi.org/10.2527/jas2016.94supplement488x; Калинкова Л. В. Молекулярно-генетическая экспертиза достоверности происхождения племенных лошадей. Эффективное животноводство. 2018;(6(145)):70–72. Режим доступа: https://elibrary.ru/item.asp?id=35554714 EDN: XYLHVZ; Зиновьева Н. А., Харзинова В. Р., Логвинова Т. И., Гладырь Е. А., Сизарева Е. И., Чинаров Ю. И. Микросателлитные профили как критерии определения чистопородности и оценки степени гетерогенности подборов родительских пар в свиноводстве. Сельскохозяйственная биология. 2011;46(6):47–53.; Radko A., Podbielska A. Microsatellite DNA Analysis of genetic diversity and parentage testing in the popular dog breeds in Poland. Genes (Basel). 2021;12(4):485. DOI: https://doi.org/10.3390/genes12040485; Koskinen M. T., Bredbacka P. Assessment of the population structure of five Finnish dog breeds with microsatellites. Animal genetics. 2000;31(5):310–317. DOI: https://doi.org/10.1046/j.1365-2052.2000.00669.x; Денискова Т. Е., Селионова М. И., Гладырь Е. А., Доцев А. В., Бобрышова Г. Т., Костюнина О. В., Брем Г., Зиновьева Н. А. Изменчивость микросателлитов в породах овец, разводимых в России. Сельскохозяйственная биология. 2016;51(6):801–810. Режим доступа: https://elibrary.ru/item.asp?id=27639405 EDN: XGVQYJ; Weising K., Winter P., Huttel B., Kahl G. Microsatellite markers for molecular breeding. Journal of Crop Production. 1997;1(1):113–143. DOI: https://doi.org/10.1300/j144v01n01_06; Røed K. H., Ferguson K. H., Crête M. A. D., Bergerud T. A. Genetic variation in transferrin as a predictor for differentiation and evolution of caribou from eastern Canada. Rangifer. 2010;11:65–74. DOI: https://doi.org/10.7557/2.11.2.979; Zhai J. C., Liu W. S., Yin Y. J., Xia Y. L., Li H. P. Analysis on genetic diversity of reindeer (Rangifer tarandus) in the Greater Khingan Mountains using microsatellite markers. Zoological Studies. 2017;56:e11. DOI: https://doi.org/10.6620/ZS.2017.56-11; Крутикова А. А., Пегливанян Г. К. Динамика убойной массы домашних северных оленей полуострова Ямал в зависимости от половой и возрастной принадлежности. Международный научно-исследовательский журнал. 2023;(12(138)). DOI: https://doi.org/10.23670/IRJ.2023.138.28 EDN: VYCUDF; Gordon B. Rangifer and man: An ancient relationship. Rangifer. 2003;23(14):15–28. DOI: https://doi.org/10.7557/2.23.5.1651; Харзинова В. Р., Денискова Т. Е., Сермягин А. А., Доцев А. В., Соловьева А. Д., Зиновьева Н. А. Эволюция методов оценки биоразнообразия северного оленя (Rangifer tarandus) (обзор). Сельскохозяйственная биология. 2017;52(6):1083–1093. DOI: https://doi.org/10.15389/agrobiology.2017.6.1083rus EDN: YLSUZR; Брызгалов Г. Я., Игнатович Л. С. Селекционно-племенная работа в северном оленеводстве (к смене парадигмы развития). Генетика и разведение животных. 2021;(4):29–36. DOI: https://doi.org/10.31043/2410-2733-2021-4-29-36 EDN: OOKGFF; Hall R. J. Deer. In: Cockett N. E., Kole C. (eds) Genome mapping and genomics in domestic animals. Genome mapping and genomics in animals. Springer, Berlin, Heidelberg, 2009. Vol. 3. Chapter 4. DOI: https://doi.org/10.1007/978-3-540-73835-0; Polziehn R. O., Strobeck C. Phylogeny of wapiti, red deer, sika deer, and other North American cervids as determined from mitochondrial DNA. Molecular Phylogenetics and Evolution. 1998;10(2):249–258. DOI: https://doi.org/10.1006/mpev.1998.0527; Ludt C. J., Schroeder W., Rottmann O., Kuehn R. Mitochondrial DNA phylogeography of red deer (Cervus elaphus). Molecular phylogenetics and evolution. 2004;31(3):1064–1083. DOI: https://doi.org/10.1016/j.ympev.2003.10.003; Cote S. D., Dallas J. F., Marshall F., Irvine R. J., Langvatn R., Albon S. D. Microsatellite DNA evidence for genetic drift and philopatry in Svalbard reindeer. Molecular Ecology. 2002;11(10):1923–1930. DOI: https://doi.org/10.1046/j.1365-294X.2002.01582.x; Deniskova T. E., Kharzinova V. R., Dotsev A. V., Solovieva А. D., Romanenko Т. М., Yuzhakov А. А., Layshev К. А., Brem G., Zinovieva N. A. Genetic characteristics of regional populations of Nenets reindeer breed (Rangifer tarandus). Agricultural Biology. 2018;53(6):1152–1161. (In Russ.). DOI: https://doi.org/10.15389/agrobiology.2018.6.1152eng; Ju Y., Liu H., Rong M., Zhang R., Dong Y., Zhou Y., Xing X. Genetic diversity and population genetic structure of the only population of Aoluguya Reindeer (Rangifer tarandus) in China. Mitochondrial DNA. Part A, DNA mapping, sequencing, and analysis. 2019;30(1):24–29. DOI: https://doi.org/10.1080/24701394.2018.1448081; Anderson D. G., Kvie K. S., Davydov V. N., Røed K. H. Maintaining genetic integrity of coexisting wild and domestic populations: Genetic differentiation between wild and domestic Rangifer with long traditions of intentional interbreeding. Ecology and Evolution. 2017;7(17):6790–6802. DOI: https://doi.org/10.1002/ece3.3230; Kharzinova V. R., Dotsev A. V., Kramarenko A. S., Layshev K. A., Romanenko T. M., Solov’eva A. D., Deniskova T. E., Kostyunina O. V., Brem G., Zinovieva N. A. Study of the allele pool and the degree of genetic introgression of semidomesticated and wild populations of reindeer (Rangifer tarandus L., 1758) using microsatellites. Agricultural Biology. 2016;51:811–834. DOI: https://doi.org/10.15389/agrobiology.2016.6.811eng; Svishcheva G. R., Babayan O. V., Sipko T. P., Kashtanov S. N., Kholodova M. V., Stolpovsky Y. A. Genetic differentiation between coexisting wild and domestic reindeer (Rangifer tarandus L. 1758) in Northern Eurasia. Genetic Resources. 2022;3(6):1–14. URL: https://www.genresj.org/index.php/grj/article/view/genresj.UYML5006; Røed K. H., Flagstad O., Nieminen M., Holand O., Dwyer M. J., Røv N., Vilà C. Genetic analyses reveal independent domestication origins of Eurasian reindeer. Proceedings of the Royal Society B. Biological Sciences. 2008;275(1645):1849–1855. DOI: https://doi.org/10.1098/rspb.2008.0332; Colson K. E., Mager K. H., Hundertmark K. J. Reindeer introgression and the population genetics of caribou in southwestern Alaska. Journal of Heredity. 2014;105(5):585–596. DOI: https://doi.org/10.1093/jhered/esu030; Klütsch C. F., Manseau M., Trim V., Polfus J., Wilson P. J. The eastern migratory caribou: the role of genetic introgression in ecotype evolution. Royal Society Open Science. 2016;3(2):150469. DOI: https://doi.org/10.1098/rsos.150469; Weckworth B. V., Musiani M., McDevitt A. D., Hebblewhite M., Mariani S. Reconstruction of caribou evolutionary history in Western North America and its implications for conservation. Molecular Ecology. 2012;21(14):3610–3624. DOI: https://doi.org/10.1111/j.1365-294X.2012.05621.x; Доцев А. В., Романенко Т. М., Харзинова В. Р., Соловьева А. Д., Лайшев К. А., Брем Г., Зиновьева Н. А. Фенотипические и генотипические особенности популяций северного оленя ненецкой породы. Сельскохозяйственная биология. 2017;52(6):1175–1183. DOI: https://doi.org/10.15389/agrobiology.2017.6.1175rus EDN: YLSVDD; Kharzinova V. R., Karpushkina T. V., Dotsev A. V., Solovieva A. D., Romanenko T. M., Brem G., Zinovieva N. A. 213 Association of microsatellite profile with phenotypic traits of semi-domesticated reindeer. Journal of Animal Science. 2017;95(Suppl. 4):105. DOI: https://doi.org/10.2527/asasann.2017.213; Dotsev A. V., Kharzinova V. R., Romanenko T. M., Brem G., Nikitkina E. V., Zinovieva N. A. PSVIII-22 Microsatellite-based heterozygosity fitness correlations in reindeer. Journal of Animal Science. 2019;97(Supp. 3):266. DOI: https://doi.org/10.1093/jas/skz258.541; Thompson L. M., Klütsch C. F. C., Manseau M., Wilson P. J. Spatial differences in genetic diversity and northward migration suggest genetic erosion along the boreal caribou southern range limit and continued range retraction. Ecology and Evolution. 2019;9(12):7030–7046. DOI: https://doi.org/10.1002/ece3.5269; Peeters B., Le Moullec M., Raeymaekers J. A. M., Marquez J. F., Røed K. H., Pedersen Å. Ø., Veiberg V., Loe L. E., Hansen B. B. Sea ice loss increases genetic isolation in a high Arctic ungulate metapopulation. Global change biology. 2020;26(4):2028–2041. DOI: https://doi.org/10.1111/gcb.14965; Muneer P. M. A., Gopalakrishnan A., Shivanandan R., Basheer V. S., Ponniah A. G. Genetic variation and phylogenetic relationship between two species of yellow catfish, Horabagrus brachysoma and H. nigricollaris (Teleostei: Horabagridae) based on RAPD and microsatellite markers. Molecular Biology Reports. 2011;38(4):2225–2232. DOI: https://doi.org/10.1007/s11033-010-0352-3; Sudheer P. D. V. N., Mastan S. G., Rahman H., Ravi Prakash C., Singh S., Reddy M. P. Cross species amplification ability of novel microsatellites isolated from Jatropha curcas and genetic relationship with sister taxa: cross species amplification and genetic relationship of Jatropha using novel microsatellites. Molecular Biology Reports. 2011;38(2):1383–1388. DOI: https://doi.org/10.1007/s11033-010-0241-9; Kim K. S., Min M. S., An J. H, Lee H. Cross-species amplification of Bovidae microsatellites and low diversity of the endangered Korean goral. Journal of Heredity. 2004;95(6):521–525. DOI: https://doi.org/10.1093/jhered/esh082; Yasodha R., Ghosh M., Sumathi R., Gurumurthi K. Cross-species amplification of eucalyptus SSR markers in Casuarinaceae. Acta Botanica Croatica. 2005;64(1):115–120. URL: https://hrcak.srce.hr/file/5717; Котова С. А., Заблоцкая Е. А., Спивак Е. А., Рыбакова В. И., Недзвецкая Д. Э., Цыбовский И. С. Перекрестная амплификация микросателлитных ДНК маркеров в исследовании полиморфизма видов отряда Artiodactyla (парнокопытные). Молекулярная и прикладная генетика. 2017;22:25–33. Режим доступа: https://elibrary.ru/item.asp?id=29328279 EDN: YRUOHH; Engel S. R., Linn R. A., Taylor J. F., Davis S. K. Conservation of microsatellite loci across species of Artiodactyls: implications for population studies. Journal of Mammalogy. 1996;77(2):504–518. DOI: https://doi.org/10.2307/1382825; Wilson G. A., Strobeck C., Wu L., Coffin J. W. Characterization of microsatellite loci in caribou Rangifer tarandus, and their use in other artiodactyls. Molecular ecology. 1997;6(7):697–699. DOI: https://doi.org/10.1046/j.1365-294x.1997.00237.x; Røed K. H., Midthjell L. Microsatellites in reindeer, Rangifer tarandus, and their use in other Cervids. Molecular ecology. 1998;7(12):1773–1776. DOI: https://doi.org/10.1046/j.1365-294x.1998.00514.x; Cronin M. A., MacNeil M. D., Patton J. C. Mitochondrial DNA and microsatellite DNA variation in domestic reindeer (Rangifer tarandus tarandus) and relationships with wild caribou (Rangifer tarandus granti, Rangifer tarandus groenlandicus, and Rangifer tarandus caribou). Journal of Heredity. 2006;97(5):525–530. DOI: https://doi.org/10.1093/jhered/esl012; Mager K. H., Colson K. E., Hundertmark K. J. High genetic connectivity and introgression from domestic reindeer characterize northern Alaska caribou herds. Conservation Genetics. 2013;14(6):1111–1123. DOI: https://doi.org/10.1007/s10592-013-0499-2; Jepsen B. I., Siegismund H. R., Fredholm M. Population genetics of the native caribou (Rangifer tarandus groenlandicus) and the semi-domestic reindeer (Rangifer tarandus tarandus) in Southwestern Greenland: evidence of introgression. Conservation Genetics. 2002;3:401–409. DOI: https://doi.org/10.1023/A:1020523303815; Kharzinova V. R., Gladyr E. A., Fedorov V. I., Romanenko T. M., Shimit L. D., Layshev K. A., Kalashnikova L. A., Zinovieva N. A. Development of multiplex microsatellite panel to assess the parentage verification in and differentiation degree of reindeer populations (Rangifer tarandus). Agricultural Biology. 2015;50(6):756–765. DOI: https://doi.org/10.15389/agrobiology.2015.6.756eng; Кошкина О. А., Соловьева А. Д., Денискова Т. Е., Харзинова В. Р., Зиновьева Н. А. Изучение генетического разнообразия домашних и диких популяций северного оленя (Rangifer tarandus L., 1758) с использованием маркеров ядерного и митохондриального геномов. Сельскохозяйственная биология. 2022;57(6):1101–1116. DOI: https://doi.org/10.15389/agrobiology.2022.6.1101rus EDN: KOSGBP; Kharzinova V. R., Dotsev A. V., Solovieva A. D., Fedorov V. I., Brem G., Zinovieva N. A. Estimation of biodiversity and population structure of Russian reindeer (Rangifer tarandus) breeds inhabiting Northeastern Siberia (Republic of Sakha – Yakutia) using microsatellite markers. Acta Fytotechnica et Zootechnica. 2016;19(3):87–92. DOI: https://doi.org/10.15414/afz.2016.19.03.87-92; Соловьева А. Д., Харзинова В. Р., Денискова Т. Е., Зиновьева Н. А. Исследование генетической структуры домашних и диких северных оленей Республики Саха (Якутия) с использованием STR-анализа. Генетика и разведение животных. 2022;(3):5–11. DOI: https://doi.org/10.31043/2410-2733-2022-3-5-11 EDN: DAWAMX; Романенко Т. М., Харзинова В. Р., Лайшев К. А. Сравнительная характеристика микропопуляций северных оленей ненецкой породы малоземельской тундры НАО. Генетика и разведение животных. 2020;(2):37–43. Режим доступа: https://elibrary.ru/item.asp?id=43162320 EDN: HFQSLZ; Николаев С. В., Матюков В. С., Филатов А. В. Изменения микросателлитного профиля в опытном стаде северных оленей ненецкой породы. Международный вестник ветеринарии. 2023;(3):275–283. DOI: https://doi.org/10.52419/issn2072-2419.2023.3.275 EDN: AGZUPJ; Харзинова В. Р., Кудрявцев А. В., Семерикова М. Н., Зиновьева Н. А. Изучение популяционной структуры и генетического разнообразия чукотской породы северного оленя на основе анализа микросателлитов. Достижения науки и техники АПК. 2023;37(9):87–92. DOI: https://doi.org/10.53859/02352451_2023_37_9_87 EDN: VBESRE; Kharzinova V. R., Dotsev A. V., Solovieva A. D., Fedorov V. I., Shimit L. D., Romanenko T. M., Senchik A. V., Sergeeva O. K., Goncharov V. V., Layshev K. A., Yuzhakov A. A., Brem G., Zinovieva N. A. PSIII-15 Genetic variability of Russian domestic reindeer populations (Rangifer Tarandus) by microsatellites. Journal of Animal Science. 2020;98(Suppl.4):237–238. DOI: https://doi.org/10.1093/jas/skaa278.435; Баранова А. И., Холодова М. В., Сипко Т. П. Генетическая структура дикого северного оленя (Rangifer tarandus) России на основании полиморфизма микросателлитных локусов. Актуальные вопросы современной зоологии и экологии животных: мат-лы Всероссийской научной конференции, посвященной 70-летнему юбилею кафедры «Зоология и экология» Пензенского государственного университета и памяти профессора В. П. Денисова (1932–1997). Пенза: Пензенский государственный университет; 2016. С. 21. Режим доступа: https://www.elibrary.ru/item.asp?edn=xexeel&ysclid=lwaieypffc136387386 EDN: XEXEEL; Холодова М. В., Баранова А. И. Изучение генетического разнообразия северного оленя европейской части России, значение результатов для теории и практики. Лесной северный олень проблемы и перспективы сохранения на европейском севере России: сб. ст. Под общ. ред. Н. Шматкова. М.: Всемирный фонд дикой природы (WWF), 2021. С. 17–19. DOI: https://doi.org/10.47364/9785604736210_17 EDN: FJGEIX; Додохов В. В., Павлова Н. И., Калашникова Л. А. Полиморфизм микросателлитных локусов ДНК у оленей чукотской породы. Аграрный научный журнал. 2020;(9):49–53. DOI: https://doi.org/10.28983/asj.y2020i9pp49-53 EDN: THWKGL; Филиппова Н. П., Корякина Л. П., Павлова А. И. Изучение аллелофонда эвенской породы северного оленя по локусам трансферрина и микросателлитов. Генетика и разведение животных. 2020;(1):44–49. Режим доступа: https://elibrary.ru/item.asp?id=42672645 EDN: FJVBWW; Семина М. Т., Каштанов С. Н., Бабаян О. В., Лайшев К. А., Южаков А. А., Воронкова В. Н., Николаева Э. А., Свищёва Г. Р. Анализ генетического разнообразия и популяционной структуры ненецкой аборигенной породы северных оленей на основе микросателлитных маркеров. Генетика. 2022;58(8):954–966. DOI: https://doi.org/10.31857/S0016675822080069 EDN: TLCNGQ; Столповский Ю. А., Бабаян О. В., Каштанов С. Н., Пискунов А. К., Сёмина М. Т., Холодова М. В., Лайшев К. А., Южаков А. А., Романенко Т. М., Лисичкина М. Г., Дмитриева Т. И., Етылина О. В., Прокудин А. В., Свищёва Г. Р. Генетическая оценка пород северного оленя (Rangifer tarandus) и их дикого предка с помощью новой панели STR-маркеров. Генетика. 2020;56(12):1410–1426. DOI: https://doi.org/10.31857/S0016675820120139 EDN: YCPKAN

  8. 8
  9. 9
  10. 10
  11. 11
  12. 12
  13. 13
    Academic Journal

    Source: ECHO OF THE ARCTIC ODYSSEY: THE FATES OF ETHNIC CULTURES IN THE STUDIES OF NORTHERN SCIENTISTS. Сборник материалов Всероссийской научно-практической конференции с международным участием. :168-172

  14. 14
  15. 15
  16. 16
  17. 17
  18. 18
  19. 19
  20. 20