Εμφανίζονται 1 - 20 Αποτελέσματα από 129 για την αναζήτηση '"ОДНОФОТОННАЯ ЭМИССИОННАЯ КОМПЬЮТЕРНАЯ ТОМОГРАФИЯ"', χρόνος αναζήτησης: 0,88δλ Περιορισμός αποτελεσμάτων
  1. 1
    Academic Journal

    Πηγή: Transplantologiya. The Russian Journal of Transplantation; Том 16, № 2 (2024); 219-229 ; Трансплантология; Том 16, № 2 (2024); 219-229 ; 2542-0909 ; 2074-0506

    Περιγραφή αρχείου: application/pdf

    Relation: https://www.jtransplantologiya.ru/jour/article/view/890/868; https://www.jtransplantologiya.ru/jour/article/view/890/875; Aguilar J, Miller RJH, Otaki Y, Tamarappoo B, Hayes S, Friedman J, et al. Clinical Utility of SPECT in the Heart Transplant Population: Analysis from a Single Large-Volume Center. Transplantation. 2022;106(3):623–632. PMID: 33901107 https://doi.org/10.1097/TP.0000000000003791; Veenis JF, Boiten HJ, van den Berge JC, Caliskan K, Maat APWM, Valkema R, et al. Prediction of long-term (> 10 year) cardiovascular outcomes in heart transplant recipients: Value of stress technetium-99m tetrofosmin myocardial perfusion imaging. J Nucl Cardiol. 2019;26(3):845–852. PMID: 29116562 https://doi.org/10.1007/s12350-0171089-3; Acharya D, Rajapreyar I. Myocardial perfusion imaging for cardiac allograft vasculopathy assessment: evidencegrows, but questions remain. J Nucl Cardiol. 2019;26(3):853–856. PMID: 29116561 https://doi.org/10.1007/s12350-0171116-4; Остроумов Е.Н. Где нужна ядерная кардиология? Российский кардиологический журнал. 2009;(5):4–9.; Marcassa C, Bax JJ, Bengel F, Hesse B, Petersen CL, Reyes E, et al. Clinical value, cost-effectiveness, and safety of myocardial perfusion scintigraphy: a position Statement. Eur Heart J. 2008;29(4):557–563.PMID: 18202253 https://doi.org/10.1093/eurheartj/ehm607; Мигунова Е.В., Нефедова Г.А., Кудряшова Н.Е., Остроумов Е.Н., Коков Л.С., Шемакин С.Ю. и др. Оценка митохондриальной дисфункции пересаженного сердца радионуклидным методом (два клинических наблюдения). REJR. 2020;10(3):156–164. https://doi.org/10.21569/2222-7415-2020-10-3156-164; Elhendy A, van Domburg RT, Vantrimpont P, Poldermans D, Bax JJ, van Gelder T, et al. Prediction of mortality in heart transplant recipients by stress technetium-99m tetrofosmin myocardial perfusion imaging. Am J Cardiol. 2002;89(8):964–968. PMID: 11950436 https://doi.org/10.1016/s00029149(02)02247-6; https://www.jtransplantologiya.ru/jour/article/view/890

  2. 2
    Academic Journal

    Πηγή: Diagnostic radiology and radiotherapy; Том 14, № 4 (2023); 60-72 ; Лучевая диагностика и терапия; Том 14, № 4 (2023); 60-72 ; 2079-5343

    Περιγραφή αρχείου: application/pdf

    Relation: https://radiag.bmoc-spb.ru/jour/article/view/940/623; Воронкова И.А., Еремкина А.К., Крупинова Ю.А. Нейроэндокринные маркеры в опухолях околощитовидных желез // Архив патологии. 2020. Т. 82, № 6. С. 70–78. https://doi.org/10.17116/patol20208206170.; Мокрышева Н.Г., Крупинова Ю.А., Воронкова И.А. Околощитовидные железы: нормальное развитие, анатомическое и гистологическое строение // Эндокринная хирургия. 2018. Т. 12, № 4. С. 178–187. https://doi.org/10.14341/serg10039.; Мокрышева Н.Г., Еремкина А.К., Ковалева Е.В. Современные проблемы гипер- и гипопаратиреоза // Терапевтический архив. 2021. Т. 93, № 10. С. 1149–1154. doi:10.26442/00403660.2021.10.201109.; Мокрышева Н.Г., Ковалева Е.В., Еремкина А.К. Регистры заболеваний околощитовидных желез в Российской Федерации // Проблемы эндокринологии. 2021. Т. 67, № 4. С. 4–7. https://doi.org/10.14341/probl12803.; Islam A.K. Advances in the diagnosis and the management of primary hyperparathyroidism // Ther. Adv. Chronic. Dis. 2021. Jun 11. Vol. 12. Р. 1–54. doi:10.1177/20406223211015965.; Khan A.A., Hanley D.A., Rizzoli R. et al. Primary hyperparathyroidism: review and recommendations on evaluation, diagnosis, and management // A Canadian and international consensus. Osteoporos Int. 2017. Vol. 28, No. 1. Р. 1–19. doi:10.1007/s00198-016-3716-2.; Дедов И.И., Мельниченко Г.А., Мокрышева Н.Г. Первичный гиперпаратиреоз: клиника, диагностика, дифференциальная диагностика, методы лечения // Проблемы эндокринологии. 2016. Т. 62, № 6. С. 40–77. https://doi.org/10.14341/probl201662640-77.; Bilezikian J.P., Brandi M.L., Eastell R. Guidelines for the management of asymptomatic primary hyperparathyroidism: summary statement from the Fourth International Workshop // J. Clin. Endocrinol. Metab. 2014. Vol. 99, No. 10. Р. 3561–3569. doi:10.1210/jc.2014-2413.; Никитина Т.П., Гладкова И.Н., Русаков В.Ф. Качество жизни пациентов с первичным гиперпаратиреозом после хирургического лечения // Проблемы эндокринологии. 2022. Т. 68, № 1. С. 27–39. doi: https://doi.org/10.14341/probl12825.; Мокрышева Н.Г., Еремкина А.К., Мирная С.С. Клинические рекомендации по первичному гиперпаратиреозу, краткая версия // Проблемы эндокринологии. 2021. Т. 67, № 4. С. 94–124. https://doi.org/10.14341/probl12801.; Слепцов И.В., Выборнова Н.Б., Черников Р.А. Модифицированная интраоперационная методика измерения уровня паратгормона крови при лечении первичного гиперпаратиреоза // Эндокринная хирургия. 2015. Т. 9, № 4. С. 12–21. https://doi.org/10.14341/serg2015412-21.; Слепцов И.В., Черников Р.А., Бубнов А.Н. Малоинвазивные операции в лечении первичного гиперпаратиреоза // Эндокринная хирургия. 2012. Т. 6, № 4. С. 24–33.; Singh Ospina N.M., Rodriguez-Gutierrez R, Maraka S. et al. Outcomes of parathyroidectomy in patients with primary hyperparathyroidism: a systematic review and meta-analysis // World J. Surg. 2016. Vol. 40, No. 10. Р. 2359–2377. doi:10.1007/s00268-016-3514-1.; Ahmadieh H., Kreidieh O., Akl E.A. et al. Minimally invasive parathyroidectomy guided by intraoperative parathyroid hormone monitoring (IOPTH) and preoperative imaging versus bilateral neck exploration for primary hyperparathyroidism in adults // Cochrane Database. Syst. Rev. 2020. Vol. 10. Р. 1–110. doi:10.1002/14651858.CD010787.pub2.; Yeh M.W., Wiseman J.E., Chu S.D. et al. Population-level predictors of persistent hyperparathyroidism // Surgery. 2011. Vol. 150, No. 6. Р. 1113–1119. doi:10.1016/j.surg.2011.09.025.; Venkat R., Kouniavsky G., Tufano R. Long-term outcome in patients with primary hyperparathyroidism who underwent minimally invasive parathyroidectomy // World J. Surg. 2012. Vol. 36, No. 1. Р. 55–60. doi:10.1007/s00268-011-1344-8.; Бузанаков Д.М., Слепцов И.В., Семенов А.А. Место двусторонней ревизии шеи при хирургическом лечении первичного гиперпаратиреоза // Проблемы эндокринологии. 2022. Т. 68, № 6. С. 22–29. https://doi.org/10.14341/probl13096.; Buzanakov D.M., Sleptsov I.V., Semenov A.A. et al. Persistence of primary hyperparathyroidism: a single-center experience // Langenbecks Arch. Surg. 2022. Vol. 407. Р. 3651–3659. doi:10.1007/s00423-022-02711-5.; Слащук К.Ю, Дегтярев М.В., Румянцев П.О. Методы визуализации околощитовидных желез при первичном гиперпаратиреозе. Обзор литературы // Эндокринная хирургия. 2019. Т. 13, № 4. С. 153–174. https://doi.org/10.14341/serg12241.; Guerin C., Paladino N., Lowery A. Persistent and recurrent hyperparathyroidism // Updates in Surgery. 2017. Vol. 69, No. 2. Р. 161–169. doi:10.1007/s13304-017-0447-7.; Wilhelm S.M., Wang T.S., Ruan D.T. et al. The American Association of Endocrine Surgeons guidelines for definitive management of primary hyperparathyroidism // JAMA Surg. 2016. Vol. 151. Р. 959–968. doi:10.1001/jamasurg.2016.2310.; Hessman O., Stalberg P., Sundin A. et al. High success rate of parathyroid reoperation may be achieved with improved localization diagnosis // World J. Surg. 2008. Vol. 32, No. 5. Р. 774–781. doi:10.1007/s00268-008-9537-5.; Feingold D.L., Alexander H.R., Chen C.C. et al. Ultrasound and sestamibi scan as the only preoperative imaging tests in reoperation for parathyroid adenomas // Surgery. 2000. Vol. 128, No. 6. Р. 1103–1110. doi:10.1067/msy.2000.109963.; Caveny S.A., Klingensmith W.C. 3rd, Martin W.E. Parathyroid imaging: the importance of dual-radiopharmaceutical simultaneous acquisition with 99mTc-sestamibi and 123I // J. Nucl. Med Technol. 2012. Vol. 40, No. 2. Р. 104–110. https://doi.org/10.2967/jnmt.111.098400.; Hassler S., Ben-Sellem D., Hubele F. Dual-isotope 99mTc-MIBI/123I parathyroid scintigraphy in primary hyperparathyroidism: comparison of subtraction SPECT/CT and pinhole planar scan // Clin. Nucl. Med. 2014. Vol. 39, No. 1. Р. 32–36. https://doi.org/10.1097/RLU.0000000000000272.; Krakauer M., Wieslander B., Myschetzky P.S. A Prospective Comparative Study of Parathyroid Dual-Phase Scintigraphy, Dual-Isotope Subtraction Scintigraphy, 4D-CT, and Ultrasonography in Primary Hyperparathyroidism // Clinical Nuclear Medicine. 2016. Vol. 41, No. 2. Р. 93–100. doi:10.1097/rlu.0000000000000988.; Kushchayeva Y.S., Tella S.H., Kushchayev S.V. Comparison of hyperparathyroidism types and utility of dual radiopharmaceutical acquisition with Tc99m sestamibi and 123I for localization of rapid washout parathyroid adenomas // Osteoporos Int. 2019 May. Vol. 30, No. 5. Р. 1051–1057. doi:10.1007/s00198-019-04846-6. Epub 2019 Jan 31. PMID: 30706095.; Neumann D.R., Obuchowski N.A., DiFilippo F.P. Preoperative 123I/99mTc-Sestamibi Subtraction SPECT and SPECT/CT in Primary Hyperparathyroidism // Journal of Nuclear Medicine. 2008. Vol. 49, No. 12. Р. 2012–2017. doi:10.2967/jnumed.108.054858; Treglia G. et al. Detection rate of 99m Tc-MIBI single photon emission computed tomography (SPECT)/CT in preoperative planning for patients with primary hyperparathyroidism: a meta-analysis // Head Neck. 2016. Vol. 38. Р. 2159–2172. doi:10.1002/hed.24027.; Sun L., Yao J., Hao P. Diagnostic Role of Four-Dimensional Computed Tomography for Preoperative Parathyroid Localization in Patients with Primary Hyperparathyroidism: A Systematic Review and Meta-Analysis // Diagnostics (Basel). 2021. Apr 7. Vol. 11, No. 4. Р. 664. 1–14. doi:10.3390/diagnostics11040664. PMID: 33917261. Vol. PMCID: PMC8068020.; Grimaldi S., Young J., Kamenicky P. Challenging pre-surgical localization of hyperfunctioning parathyroid glands in primary hyperparathyroidism: the added value of 18F-Fluorocholine PET/CT // European Journal of Nuclear Medicine and Molecular Imaging. 2018. 45, No. 10. Р. 1772–1780. doi:10.1007/s00259-018-4018-z.; Mathey C., Keyzer C., Blocklet D. 18F-Fluorocholine PET/CT Is More Sensitive Than 11C-Methionine PET/CT for the Localization of Hyperfunctioning Parathyroid Tissue in Primary Hyperparathyroidism // J. Nucl. Med. 2022. May. Vol. 63, No. 5. Р. 785–791. doi:10.2967/jnumed.121.262395.; PetranovićOvčariček, P., Giovanella, L., CarrióGasset, I. et al. The EANM practice guidelines for parathyroid imaging // Eur. J. Nucl. Med. Mol. Imaging. 2021. 48. Р. 2801–2822. doi:10.1007/s00259-021-05334-y.; Nawrot I., Chudziński W., Ciąćka T. Reoperations for persistent or recurrent primary hyperparathyroidism: results of a retrospective cohort study at a tertiary referral center // Med. Sci. Monit. 2014. Sep 9. Vol. 20. Р. 1604–1612. doi:10.12659/MSM.890983. PMID: 25201515. Vol. PMCID: PMC4166223.; Weber T., Dotzenrath C., Dralle H. Management of primary and renal hyperparathyroidism: guidelines from the German Association of Endocrine Surgeons (CAEK) // Langenbecks Arch. Surg. 2021. May. Vol. 406, No. 3. Р. 571–585. doi:10.1007/s00423-021-02173-1. Epub 2021 Apr 21. PMID: 33880642.; Parikh P.P., Farra J.C., Allan B.J. Long-term effectiveness of localization studies and intraoperative parathormone monitoring in patients undergoing reoperative parathyroidectomy for persistent or recurrent hyperparathyroidism // The American Journal of Surgery. 2015. Vol. 210, No. 1. Р. 117–122. doi:10.1016/j.amjsurg.2014.09.039.; Richards M.L., Thompson G.B., Farley D.R. Reoperative parathyroidectomy in 228 patients during the era of minimal-access surgery and intraoperative parathyroid hormone monitoring // American Journal of Surgery. 2008. Vol. 196, No. 6. Р. 937–943. doi:10.1016/j.amjsurg.2008.07.022.; Yen T.W.F., Wang T.S., Doffek K.M. Reoperative parathyroidectomy: an algorithm for imaging and monitoring of intraoperative parathyroid hormone levels that results in a successful focused approach // Surgery. 2008. Vol. 144, No. 4. Р. 611–621. doi:10.1016/j.surg.2008.06.017.; Schalin-Jantti C., Ryhanen E., Heiskanen I. et al. Planar scintigraphy with 123I/99mTc-Sestamibi, 99mTc-sestamibi SPECT/CT, 11C-methionine PET/CT, or selective venous sampling before reoperation of primary hyperparathyroidism? // Journal of Nuclear Medicine. 2013. Vol. 54, No. 5. Р. 739–747. doi:10.2967/jnumed.112.109561.; Wong K.K., Fig L.M., Gross M.D. Parathyroid adenoma localization with 99mTc-sestamibi SPECT/CT: a meta-analysis // Nucl. Med. Commun. 2015. Apr. Vol. 36, No. 4. Р. 363–375. doi:10.1097/MNM.0000000000000262. PMID: 25642803.; Yin L., Guo D., Liu J. The role of 99mTc-MIBI SPECT-CT in reoperation therapy of persistent hyperparathyroidism patients // OpenMed (Wars). 2015. Dec 17. Vol. 10, No. 1. Р. 462–467. doi:10.1515/med-2015–0064. PMID: 28352737. Vol. PMCID: PMC5368852.; Witteveen J.E., Kievit J., Stokkel M.P. Limitations of Tc99m-MIBI-SPECT imaging scans in persistent primary hyperparathyroidism // World J. Surg. 2011 Jan. Vol. 35, No. 1. Р. 128–139. doi:10.1007/s00268-010-0818-4. PMID: 20957360; PMCID: PMC3006642.; Cruz-Centeno N., Longoria-Dubocq T., Mendez-Latalladi W. Efficacy of 4D CT Scan in Re-operative Parathyroid Surgery // Am. Surg. 2022. Jul. Vol. 88, No. 7. Р. 1549–1550. doi:10.1177/00031348221083938.

  3. 3
    Academic Journal

    Πηγή: Cancer Urology; Том 20, № 2 (2024); 74-86 ; Онкоурология; Том 20, № 2 (2024); 74-86 ; 1996-1812 ; 1726-9776

    Περιγραφή αρχείου: application/pdf

    Relation: https://oncourology.abvpress.ru/oncur/article/view/1762/1547; Tannock I.F., de Wit R., Berry W.R. et al. Docetaxel plus prednisone or mitoxantrone plus prednisone for advanced prostate cancer. N Engl J Med 2004;351(15):1502–12. DOI:10.1056/NEJMoa040720; Pezaro C., Omlin A., Lorente D. et al. Visceral disease in castration-resistant prostate cancer. Eur Urol 2014;65(2):270–3. DOI:10.1016/j.eururo.2013.10.055; Smith H.S. Painful osseous metastases. Pain Physician 2011;14(4):E373–403.; Coleman R.E. Clinical features of metastatic bone disease and risk of skeletal morbidity. Clin Cancer Res 2006;12(20 Pt 2):6243s–9s. DOI:10.1158/1078-0432.CCR-06-0931; Tait C., Moore D., Hodgson C. et al. Quantification of skeletal metastases in castrate-resistant prostate cancer predicts progressionfree and overall survival. BJU Int 2014;114(6b):E70–3. DOI:10.1111/bju.12717; Riihimäki M., Thomsen H., Brandt A. et al. What do prostate cancer patients die of? Oncologist 2011;16(2):175–81. DOI:10.1634/theoncologist.2010-0338; Cornford P., Bellmunt J., Bolla M. et al. EAU-ESTRO-SIOG guidelines on prostate cancer. Part II: treatment of relapsing, metastatic, and castration-resistant prostate cancer. Eur Urol 2017;71(4):630–42. DOI:10.1016/j.eururo.2016.08.002; Parker C., Nilsson S., Heinrich D. et al. Alpha emitter radium-223 and survival in metastatic prostate cancer. N Engl J Med 2013;369(3):213–23. DOI:10.1056/NEJMoa1213755; Sartor O., Coleman R., Nilsson S. et al. Effect of radium-223 dichloride on symptomatic skeletal events in patients with castration-resistant prostate cancer and bone metastases: results from a phase 3, double-blind, randomised trial. Lancet Oncol 2014;15(7):738–46. DOI:10.1016/S1470-2045(14)70183-4; Hoskin P., Sartor O., O’Sullivan J.M. et al. Efficacy and safety of radium-223 dichloride in patients with castration-resistant prostate cancer and symptomatic bone metastases, with or without previous docetaxel use: a prespecified subgroup analysis from the randomised, double-blind, phase 3 ALSYMPCA trial. Lancet Oncol 2014; 15(12):1397–406. DOI:10.1016/S1470-2045(14)70474-7; Nilsson S., Cislo P., Sartor O. et al. Patient-reported quality-of-life analysis of radium-223 dichloride from the phase III ALSYMPCA study. Ann Oncol 2016;27(5):868–74. DOI:10.1093/annonc/mdw065; Parker C., Finkelstein S.E., Michalski J.M. et al. Efficacy and safety of radium-223 dichloride in symptomatic castration-resistant prostate cancer patients with or without baseline opioid use from the phase 3 ALSYMPCA trial. Eur Urol 2016;70(5):875–83. DOI:10.1016/j.eururo.2016.06.002; Николаева Е.А., Тарачкова Е.В., Шейх Ж.В. и др. Обзор методов визуализации для оценки ответа на лечение метастазов в костях при раке предстательной железы и молочной железы. Кремлевская медицина. Клинический вестник 2022;3:107–14. DOI:10.26269/tvby-7e26; Helyar V., Mohan H.K., Barwick T. et al. The added value of multislice SPECT/CT in patients with equivocal bony metastasis from carcinoma of the prostate. Eur J Nucl Med Mol Imaging 2010;37(4):706–13. DOI:10.1007/s00259-009-1334-3; Vogelzang N.J., Coleman R.E., Michalski J.M. et al. Hematologic safety of radium-223 dichloride: baseline prognostic factors associated with myelosuppression in the ALSYMPCA trial. Clin Genitourin Cancer 2017;15(1):42–52.e8. DOI:10.1016/j.clgc.2016.07.027; Etchebehere E.C., Araujo J.C., Fox P.S. et al. Prognostic factors in patients treated with 223Ra: the role of skeletal tumor burden on baseline 18F-fluoride PET/CT in predicting overall survival. J Nucl Med 2015;56(8):1177–84. DOI:10.2967/jnumed.115.158626; Ulmert D., Kaboteh R., Fox J.J. et al. A novel automated platform for quantifying the extent of skeletal tumour involvement in prostate cancer patients using the Bone Scan Index. Eur Urol 2012;62(1): 78–84. DOI:10.1016/j.eururo.2012.01.037; Fosbøl M.Ø., Petersen P.M., Kjaer A., Mortensen J. 223Ra therapy of advanced metastatic castration-resistant prostate cancer: quantitative assessment of skeletal tumor burden for prognostication of clinical outcome and hematologic toxicity. J Nucl Med 2018;59(4):596–602. DOI:10.2967/jnumed.117.195677; Shariftabrizi A., Kothari S., George S. et al. Optimization of radium-223 treatment of castration-resistant prostate cancer based on the burden of skeletal metastasis and clinical parameters. Oncologist 2023;28(3):246–51. DOI:10.1093/oncolo/oyac245; Николаева Е.А., Крылов А.С., Рыжков А.Д. и др. Количественная оценка методом ОФЭКТ/КТ эффективности радионуклидной терапии хлоридом радия-223 костных метастазов при метастатическом кастрационно-резистентном раке предстательной железы. Онкологический журнал: лучевая диагностика, лучевая терапия 2022;5(3):29–42. DOI:10.37174/2587-7593-2022-5-3-29-42; Shore N.D. Radium-223 dichloride for metastatic castrationresistant prostate cancer: the urologist’s perspective. Urology 2015;85(4):717–24. DOI:10.1016/j.urology.2014.11.031; Gillessen S., Omlin A., Attard G. et al. Management of patients with advanced prostate cancer: recommendations of the St Gallen Advanced Prostate Cancer Consensus Conference (APCCC) 2015. Ann Oncol 2015;26(8):1589–604. DOI:10.1093/annonc/mdv257; CTCAE. National Cancer Institute Enterprise Vocabulary Services website. Available at: https://evs.nci.nih.gov/ftp1/CTCAE/About.html (accessed 15 December 2023).; Asselah J., Sperlich C. Post-docetaxel options for further survival benefit in metastatic castration-resistant prostate cancer: questions of choice. Can Urol Assoc J 2013;7(1–2 Suppl 1):S11–7. DOI:10.5489/cuaj.274; Sathianathen N.J., Lamb A., Nair R. et al. Updates of prostate cancer staging: prostate-specific membrane antigen. Investig Clin Urol 2016;57(Suppl 2):S147–54. DOI:10.4111/icu.2016.57.S2.S147; Lowrance W.T., Roth B.J., Kirkby E. et al. Castration-resistant prostate cancer: AUA guideline amendment 2015. J Urol 2016;195(5):1444–52. DOI:10.1016/j.juro.2015.10.086; Parker C., Gillessen S., Heidenreich A., Horwich A. ESMO Guidelines Committee. Cancer of the prostate: ESMO clinical practice guidelines for diagnosis, treatment and follow-up. Ann Oncol 2015;26(Suppl 5):v69–77. DOI:10.1093/annonc/mdv222; Saad F., Chi K.N., Finelli A. et al. The 2015 CUA-CUOG Guidelines for the management of castration-resistant prostate cancer (CRPC). Can Urol Assoc J 2015;9(3–4):90–6. DOI:10.5489/cuaj.2526; Носов Д.А., Волкова М.И., Гладков О.А. и др. Практические рекомендации по лечению рака предстательной железы. Злокачественные опухоли: Практические рекомендации RUSSCO 2021;11(3s2):540–55. DOI:10.18027/2224-5057-2021-11-3s2-33; Smith M., Parker C., Saad F. et al. Addition of radium-223 to abiraterone acetate and prednisone or prednisolone in patients with castration-resistant prostate cancer and bone metastases (ERA 223): a randomised, double-blind, placebo-controlled, phase 3 trial [published correction appears in Lancet Oncol 2019;20(10):e559]. Lancet Oncol 2019;20(3):408–19. DOI:10.1016/S1470-2045(18)30860-X; Choudhury A.D., Kwak L., Cheung A. et al. Randomized phase II study evaluating the addition of pembrolizumab to radium-223 in metastatic castration-resistant prostate cancer. Journal of Clinical Oncology 2021;39(6_suppl):98. DOI:10.1200/JCO.2021.39.6_suppl.98; Sternberg C.N., Saad F., Graff J.N. et al. A randomised phase II trial of three dosing regimens of radium-223 in patients with bone metastatic castration-resistant prostate cancer. Ann Oncol 2020;31(2):257–65. DOI:10.1016/j.annonc.2019.10.025; Carles J., Alonso-Gordoa T., Mellado B. et al. Radium-223 for patients with metastatic castration-resistant prostate cancer with asymptomatic bone metastases progressing on first-line abiraterone acetate or enzalutamide: a single-arm phase II trial. Eur J Cancer 2022;173:317–26. DOI:10.1016/j.ejca.2022.06.057; Marshall C.H., Fu W., Wang H. et al. Randomized phase II trial of sipuleucel-T with or without radium-223 in men with bonemetastatic castration-resistant prostate cancer. Clin Cancer Res 2021;27(6):1623–30. DOI:10.1158/1078-0432.CCR-20-4476; Morris M.J., Loriot Y., Sweeney C.J. et al. Radium-223 in combination with docetaxel in patients with castration-resistant prostate cancer and bone metastases: a phase 1 dose escalation/ randomised phase 2a trial. Eur J Cancer 2019;114:107–16. DOI:10.1016/j.ejca.2019.04.007; Darolutamide with radium-223 or placebo and the effect on radiological Progression-free survival for patients with mCSPC (CARE). ClinicalTrials.gov. ID NCT05771896. Available at: https://clinicaltrials.gov/study/NCT05771896; Kostos L., Buteau J.P., Yeung T. et al. AlphaBet: combination of radium-223 and [177Lu]Lu-PSMA-I&T in men with metastatic castration-resistant prostate cancer (clinical trial protocol). Front Med (Lausanne) 2022;9:1059122. DOI:10.3389/fmed.2022.1059122; Pezaro C.J., Omlin A., Lorente D. et al. Visceral disease in castration-resistant prostate cancer. Eur Urol 2014;65:270–3. DOI:10.1016/j.eururo.2013.10.055; Bosch D., van der Velden K.J.M., Oving I.M. et al. The impact of baseline PSMA PET/CT vs. CT on outcomes of Radium-223 therapy in mCRPC patients. Annals of Oncology 2023;34(Suppl 2): 987–8. DOI:10.1016/j.annonc.2023.09.2771; Carles J., Castellano D., Méndez-Vidal M.J. et al. Circulating tumor Cells as a biomarker of survival and response to Radium-223 therapy: experience in a cohort of patients with metastatic castration-resistant prostate cancer. Clin Genitourin Cancer 2018;16(6):e1133–9. DOI:10.1016/j.clgc.2018.07.013; Iizuka J. Evaluating radium-223 response in metastatic castrationresistant prostate cancer with imaging. Asia Pac J Clin Oncol 2018;14(Suppl 5):16–23. DOI:10.1111/ajco.13058; Scher H.I., Morris M.J., Stadler W.M. et al. Prostate cancer clinical trials working group 3. Trial design and objectives for castrationresistant prostate cancer: updated recommendations from the prostate cancer clinical trials working group 3. J Clin Oncol 2016;34(12):1402–18. DOI:10.1200/JCO.2015.64.2702; https://oncourology.abvpress.ru/oncur/article/view/1762

  4. 4
    Academic Journal

    Πηγή: Russian Journal of Pediatric Hematology and Oncology; Том 11, № 1 (2024); 36-43 ; Российский журнал детской гематологии и онкологии (РЖДГиО); Том 11, № 1 (2024); 36-43 ; 2413-5496 ; 2311-1267

    Περιγραφή αρχείου: application/pdf

    Relation: https://journal.nodgo.org/jour/article/view/1017/891; Wilson L.M., Draper G.J. Neuroblastoma, its natural history and prognosis: a study of 487 cases. Br Med J. 1974;3:301–7. doi:10.1136/bmj.3.5926.301.; Punia R.S., Mundi I., Kundu R., Jindal G., Dalal U., Mohan H. Spectrum of nonhematological pediatric tumors: a clinicopathologic study of 385 cases. Indian J Med Paediatr Oncol. 2014;35(2):170–4. doi:10.4103/0971-5851.138995.; Brodeur G.M., Castleberry R.P. Neuroblastoma. In: Principles and practices of pediatric oncology. Pizzo P.A., Poplack D.G., eds. 5th ed. Philadelphia: Lippincott Williams & Wilkins, 2006. Pp. 933–70.; Ren J., Fu Z., Zhao Y. Clinical value of 18F-FDG PET/CT to predict MYCN gene, chromosome 1p36 and 11q status in pediatric neuroblastoma and ganglioneuroblastoma. Front Oncol. 2023;13:1099290. doi:10.3389/fonc.2023.1099290.; Sharp S.E., Shulkin B.L., Gelfand M.J., Salisbury S., Furman W.L. 123I-MIBG scintigraphy and 18F-FDG PET in neuroblastoma. J Nucl Med. 2009;50(8):1237–43. doi:10.2967/jnumed.108.060467.; Nakajo M., Shapiro B., Copp J., Kalff V., Gross M.D., Sisson J.C., Beierwaltes W.H. The normal and abnormal distribution of the adrenomedullary imaging agent m-[I-131]iodobenzylguanidine (I-131 MIBG) in man: evaluation by scintigraphy. J Nucl Med. 1983;24(8):672–82. PMID: 6135764.; Wang Y., Xu Y., Kan Y., Wang W., Yang J. Diagnostic Value of Seven Diff erent Imaging Modalities for Patients with Neuroblastic Tumors: A Network Meta-Analysis. Contrast Media Mol Imaging. 2021;2021:5333366. doi:10.1155/2021/5333366.; Zhang H., Huang R., Cheung N.K., Guo H., Zanzonico P.B., Thaler H.T., Lewis J.S., Blasberg R.G. Imaging the norepinephrine transporter in neuroblastoma: a comparison of [18F]-MFBG and 123I-MIBG. Clin Cancer Res. 2014;20(8):2182–91. doi:10.1158/1078-0432.CCR-13-1153.; Dhull V.S., Sharma P., Patel C., Kundu P., Agarwala S., Bakhshi S., Bhatnagar V., Bal C., Kumar R. Diagnostic value of 18F-FDG PET/CT in paediatric neuroblastoma: comparison with 131I-MIBG scintigraphy. Nucl Med Commun. 2015;36(10):1007–13. doi:10.1097/MNM.0000000000000347.; Beijst C., de Keizer B., Lam M.G.E.H., Janssens G.O., Tytgat G.A.M., de Jong H.W.A.M. A phantom study: Should 124I-mIBG PET/CT replace 123I-mIBG SPECT/CT? Med Phys. 2017;44(5):1624–31. doi:10.1002/mp.12202.; Bar-Sever Z., Biassoni L., Shulkin B., Kong G., Hofman M.S., Lopci E., Manea I., Koziorowski J., Castellani R., Boubaker A., Lambert B., Pfl uger T., Nadel H., Sharp S., Giammarile F. Guidelines on nuclear medicine imaging in neuroblastoma. Eur J Nucl Med Mol Imaging. 2018;45(11):2009–24. doi:10.1007/s00259-018-4070-8.; Ambrosini V., Morigi J.J., Nanni C., Castellucci P., Fanti S. Current status of PET imaging of neuroendocrine tumours ([18F]FDOPA, [68Ga] tracers, [11C]/[18F]-HTP). Q J Nucl Med Mol Imaging. 2015;59(1):58–69. PMID: 25677589.; Sait S., Modak S. Anti-GD2 immunotherapy for neuroblastoma. Expert Rev Anticancer Ther. 2017;17(10):889–904. doi:10.1080/14737140.2017.1364995.; Chan G.C., Chan C.M. Anti-GD2 Directed Immunotherapy for High- Risk and Metastatic Neuroblastoma. Biomolecules. 2022;12(3):358. doi:10.3390/biom12030358.; Kroiss A., Putzer D., Uprimny C., Decristoforo C., Gabriel M., Santner W., Kranewitter C., Warwitz B., Waitz D., Kendler D., Virgolini I.J. Functional imaging in phaeochromocytoma and neuroblastoma with 68Ga-DOTA-Tyr 3-octreotide positron emission tomography and 123I-metaiodobenzylguanidine. Eur J Nucl Med Mol Imaging. 2011;38(5):865–73. doi:10.1007/s00259-010-1720-x.; Del Olmo-Garcia M.I., Prado-Wohlwend S., Andres A., Soriano J.M., Bello P., Merino-Torres J.F. Somatostatin and Somatostatin Receptors: From Signaling to Clinical Applications in Neuroendocrine Neoplasms. Biomedicines. 2021;9(12):1810. doi:10.3390/biomedicines9121810.; Bădan M.I., Piciu D. Immunohistochemical markers and SPECT/CT somatostatin-receptor (99mTc-tektrotyd) uptake in well and moderately diff erentiated neuroendocrine tumors. Acta Endocrinol (Buchar). 2022;18(4):523–30. doi:10.4183/aeb.2022.523.; Клинические рекомендации. Нейробластома. Национальное общество детских гематологов и онкологов, 2020.; Ben-Sellem D., Ben-Rejeb N. Does the Incremental Value of 123I-Metaiodobenzylguanidine SPECT/CT over Planar Imaging Justify the Increase in Radiation Exposure? Nucl Med Mol Imaging. 2021;55(4):173–80. doi:10.1007/s13139-021-00707-5.; Bleeker G., Tytgat G.A., Adam J.A., Caron H.N., Kremer L.C., Hooft L., Dalen E.C. 123I-MIBG scintigraphy and 18F-FDG-PET imaging for diagnosing neuroblastoma. Cochrane Database Syst Rev. 2015;(9):CD009263. doi:10.1002/14651858.CD009263.pub2.; Kroiss A.S. Current status of functional imaging in neuroblastoma, pheochromocytoma, and paraganglioma disease. Wien Med Wochenschr. 2019;169:25–32. doi:10.1007/s10354-018-0658-7.; Emami-Ardekani A., Mirzabeigi A., Fard-Esfahani A., Fallahi B., Beiki D., Hassanzadeh-Rad A., Geramifar P., Eftekhari M. Comparing diagnostic performance of 131I-metaiodobenzylguanidine (131I-MIBG) and 99mTc-hydrazinonicotinyl-Tyr3-Octreotide (99mTc-HYNIC-TOC) in diagnosis and localization of pheochromocytoma and neuroblastoma. Iran J Nucl Med. 2018;26(2):68–75.; Alexander N., Marrano P., Thorner P., Naranjo A., Van Ryn C., Martinez D., Batra V., Zhang L., Irwin M.S., Baruchel S. Prevalence and Clinical Correlations of Somatostatin Receptor-2 (SSTR2) Expression in Neuroblastoma. J Pediatr Hematol Oncol. 2019;41(3):222–7. doi:10.1097/MPH.0000000000001326.; Zhou Z., Wang G., Qian L., Liu J., Yang X., Zhang S., Zhang M., Kan Y., Wang W., Yang J. Evaluation of iodine-123-labeled metaiodobenzylguanidine single-photon emission computed tomography/computed tomography based on the International Society of Pediatric Oncology Europe Neuroblastoma score in children with neuroblastoma. Quant Imaging Med Surg. 2023;13(6):3841–51. doi:10.21037/qims-22-1120.; Limouris G.S., Giannakopoulos V., Stavraka A., Toubanakis N., Vlahos L. Comparison of In-111 pentetreotide, Tc-99m (V)DMSA and I-123 mlBG scintimaging in neural crest tumors. Anticancer Res. 1997;17(3B):1589–92. PMID: 9179199.; https://classic.clinicaltrials.gov/ct2/show/NCT04023331 [Электронный ресурс]. Дата обращения: 22.10.2023.; https://journal.nodgo.org/jour/article/view/1017

  5. 5
    Academic Journal

    Συνεισφορές: the study was supported by Russian Science Foundation grant No. 23-75- 01085, https://rscf.ru/project/23-75-01085/ ., исследование выполнено за счет гранта Российского научного фонда № 23-75-01085, https://rscf.ru/project/23-75-01085/.

    Πηγή: Siberian Journal of Clinical and Experimental Medicine; Том 39, № 2 (2024); 149-159 ; Сибирский журнал клинической и экспериментальной медицины; Том 39, № 2 (2024); 149-159 ; 2713-265X ; 2713-2927

    Περιγραφή αρχείου: application/pdf

    Relation: https://www.sibjcem.ru/jour/article/view/2233/954; Kunadian V., Chieffo A., Camici P.G., Berry C., Escaned J., Maas A.H.EM. An EAPCI expert consensus document on ischaemia with non-obstructive coronary arteries in collaboration with European Society of Cardiology Working Group on Coronary Pathophysiology & Microcirculation Endorsed by Coronary Vasomotor Disorders International Study Group. Eur. Heart J. 2020;41(37):3504–3520. DOI:10.1093/eurheartj/ehaa503.; Рябов В.В., Федорова С.Б., Вышлов Е.В. Инфаркт миокарда без обструктивного коронарного атеросклероза – актуальная проблема неотложной кардиологии. Сибирский журнал клинической и экспериментальной медицины. 2018;33(4):10–18. DOI:10.29001/2073-8552-2018-33-4-10-18.; Утегенов Р.Б., Бессонов И.С. Особенности диагностики и лечения ишемической болезни сердца у пациентов без обструктивного атеросклеротического поражения коронарных артерий. Сибирский журнал клинической и экспериментальной медицины. 2023;38(2):30–37. DOI:10.29001/2073-8552-2023-38-2-30-37.; Sun R., Ma R., Wang M., Han K., Zhang Z., Wang L. et al. Prognostic value of myocardial flow reserve derived by quantitative SPECT for patients with intermediate coronary stenoses. J. Nucl. Cardiol. 2023;30(4):1427–1436. DOI:10.1007/s12350-022-03186-z.; Li L., Pang Z., Wang J., Chen Y., Chu H., He Z. et al. Prognostic value of myocardial flow reserve measured with CZT cardiac-dedicated SPECT low-dose dynamic myocardial perfusion imaging in patients with INOCA. J. Nucl. Cardiol. 2023;30(6):2578–2592. DOI:10.1007/s12350-023-03332-1.; Завадовский К.В., Веснина Ж.В., Анашбаев Ж.Ж., Мочула А.В., Сазонова С.И., Ильюшенкова Ю.Н. и др. Современное состояние ядерной кардиологии в Российской Федерации. Российский кардиологический журнал. 2022;27(12):5134. DOI:10.15829/1560-4071-2022-5134.; Nakajima K., Okuda K., Matsuo S., Slomka P. Making the invisible visible: Phase dyssynchrony has potential as a new prognostic marker. J. Nucl. Cardiol. 2019;26(1):298–302. DOI:10.1007/s12350-017-0929-5.; Chen J., Garcia E.V., Folks R.D., Cooke C.D., Faber T.L., Tauxe E.L. et al. Onset of left ventricular mechanical contraction as determined by phase analysis of ECG-gated myocardial perfusion SPECT imaging: development of a diagnostic tool for assessment of cardiac mechanical dyssynchrony. J. Nucl. Cardiol. 2005;12(6):687–695. DOI:10.1016/j.nuclcard.2005.06.088.; Aggarwal H., AlJaroudi W.A., Mehta S., Mannon R., Heo J., Iskandrian A.E. et al. The prognostic value of left ventricular mechanical dyssynchrony using gated myocardial perfusion imaging in patients with end-stage renal disease. J. Nucl. Cardiol. 2014;21(4):739–746. DOI:10.1007/s12350-014-9886-4.; Pazhenkottil A.P., Buechel R.R., Husmann L., Nkoulou R.N., Wolfrum M., Ghadri J.R. et al. Long-term prognostic value of left ventricular dyssynchrony assessment by phase analysis from myocardial perfusion imaging. Heart. 2011;97(1):33–37. DOI:10.1136/hrt.2010.201566.; Hess P.L., Shaw L.K., Fudim M., Iskandrian A.E., Borges-Neto S. The prognostic value of mechanical left ventricular dyssynchrony defined by phase analysis from gated single-photon emission computed tomography myocardial perfusion imaging among patients with coronary heart disease. J. Nucl. Cardiol. 2017;24(2):482–490. DOI:10.1007/s12350-015-0388-9.; Zhang F., Yang W., Wang Y., Tang H., Wang J., Shao X. et al. Is there an association between hibernating myocardium and left ventricular mechanical dyssynchrony in patients with myocardial infarction? Hell. J. Nucl. Med. 2018;21(1):28–34. DOI:10.1967/s002449910704.; Henzlova M.J., Duvall W.L., Einstein A.J., Travin M.I., Verberne H.J. ASNC imaging guidelines for SPECT nuclear cardiology procedures: Stress, protocols, and tracers. [Published correction appears in J. Nucl. Cardiol. 2016;23(3):640–642]. J. Nucl. Cardiol. 2016;23(3):606–639. DOI:10.1007/s12350-015-0387-x.; Heusch G. Myocardial stunning and hibernation revisited. Nat. Rev. Cardiol. 2021;18(7):522–536. DOI:10.1038/s41569-021-00506-7.; Cortés C.M., Aramayo G. E.N., Barboza P.E., Crottogini A., Embon M.A. Impact of early post-stress 99mTc sestamibi ECG-gated SPECT myocardial perfusion imaging on the detection of ischemic LV dyssynchrony: an early step in the stunning cascade. Int. J. Cardiovasc. Imaging. 2021;37(5):1789–1798. DOI:10.1007/s10554-020-02145-4.; Otaki Y., Fish M.B., Miller R.J.H., Lemley M., Slomka P.J. Prognostic value of early left ventricular ejection fraction reserve during regadenoson stress solid-state SPECT-MPI. J. Nucl. Cardiol. 2022;29(3):1219–1230. DOI:10.1007/s12350-020-02420-w.; Askew J.W., Miller T.D., Ruter R.L., Jordan L.G., Hodge D.O., Gibbons R.J. et al. Early image acquisition using a solid-state cardiac camera for fast myocardial perfusion imaging. J. Nucl. Cardiol. 2011;18(5):840–846. DOI:10.1007/s12350-011-9423-7.; Al Jaroudi W., Alraies M.C., DiFilippo F., Brunken R.C., Cerqueira M.D., Jaber W.A. Effect of stress testing on left ventricular mechanical synchrony by phase analysis of gated positron emission tomography in patients with normal myocardial perfusion. Eur. J. Nucl. Med. Mol. Imaging. 2012;39:665–672. DOI:10.1007/s00259-011-2025-4.; Van Tosh A., Votaw J.R., Cooke C.D., Reichek N., Palestro C.J., Nichols K.J. Relationships between left ventricular asynchrony and myocardial blood flow. J. Nucl. Cardiol. 2017;24(1):43–52. DOI:10.1007/s12350-015-0270-9.; Van Tosh A., Votaw J.R., David Cooke C., Cao J.J., Palestro C.J., Nichols K.J. Relationship of 82Rb PET territorial myocardial asynchrony to arterial stenosis. J. Nucl. Cardiol. 2020;27(2):575–588. DOI:10.1007/s12350-018-1350-4.; https://www.sibjcem.ru/jour/article/view/2233

  6. 6
    Academic Journal

    Συνεισφορές: The patient signed an informed consent (grant RSF No. 23-75-00009, protocol approved by LAC, 241 from 09.03.2023), Исследование выполнено за счет гранта Российского научного фонда № 23-75-00009, https://rscf.ru/project/23-75-00009/

    Πηγή: Siberian Journal of Clinical and Experimental Medicine; Том 39, № 3 (2024); 51-57 ; Сибирский журнал клинической и экспериментальной медицины; Том 39, № 3 (2024); 51-57 ; 2713-265X ; 2713-2927

    Περιγραφή αρχείου: application/pdf

    Relation: https://www.sibjcem.ru/jour/article/view/2425/992; Агеев Ф.Т., Арутюнов Г.П., Беграмбекова Ю.Л., Беленков Ю.Н., Бойцов С.А., Васюк Ю.А. и др. Хроническая сердечная недостаточность. Клинические рекомендации 2020. Российский кардиологический журнал. 2020;25(11):4083. DOI:10.15829/1560-4071-2020-4083.; Гарганеева А.А., Бауэр В.А., Борель К.Н. Пандемия XXI века: хроническая сердечная недостаточность – бремя современного общества. Эпидемиологические аспекты (обзор литературы). Сибирский журнал клинической и экспериментальной медицины. 2014;29(3):8–12. DOI:10.29001/2073-8552-2014-29-3-8-12.; Шляхто Е.В., Беленков Ю.Н., Бойцов С.А., Виллевальде С.В., Галявич А.С., Глезер М.Г. и др. Результаты промежуточного анализа проспективного наблюдательного многоцентрового регистрового исследования пациентов с хронической сердечной недостаточностью в Российской Федерации «ПРИОРИТЕТ-ХСН»: исходные характеристики и лечение первых включенных пациентов. Российский кардиологический журнал. 2023;28(10):5593. DOI:10.15829/1560-4071-2023-5593.; Гарганеева А.А., Кужелева Е.А., Кузьмичкина М.А., Рябов В.В., Мареев Ю.В., Мареев В.Ю. Изменения характеристик и лечения больных с хронической сердечной недостаточностью, поступивших в кардиологический стационар в 2002 и 2016 годах. Кардиология. 2018;58(S12):18–26. DOI:10.18087/cardio.2605.; Gewirtz H., Dilsizian V. Myocardial viability: Survival mechanisms and molecular imaging targets in acute and chronic ischemia. Circ. Res. 2017;120(7):1197–1212. DOI:10.1161/CIRCRESAHA.116.307898.; Unno K., Isobe S., Izawa H., Cheng X.W., Kobayashi M., Hirashiki A. et al. Relation of functional and morphological changes in mitochondria to myocardial contractile and relaxation reserves in asymptomatic to mildly symptomatic patients with hypertrophic cardiomyopathy. Eur. Heart J. 2009;30(15):1853–1862. DOI:10.1093/eurheartj/ehp184.; Корепанов В.А., Реброва Т.Ю., Афанасьев С.А. Активность дыхания изолированных кардиомиоцитов и микровязкость их мембран у крыс разных возрастов при сердечной недостаточности. Бюллетень сибирской медицины. 2023;22(1):51–56. DOI:10.20538/1682-0363-2023-1-51-56.; Еремеев С.А., Ягужинский Л.С. О локальном сопряжении систем электронного транспорта и синтеза АТФ в митохондриях. Теория и эксперимент. Биохимия. 2015;80(5):682–688.; Hayashi D., Ohshima S., Isobe S., Cheng X.W., Unno K., Funahashi H. et al. Increased (99m)Tc-sestamibi washout reflects impaired myocardial contractile and relaxation reserve during dobutamine stress due to mitochondrial dysfunction in dilated cardiomyopathy patients. J. Am. Coll. Cardiol. 2013;14;61(19):2007–2017. DOI:10.1016/j.jacc.2013.01.074.; Иванченко М.В., Твердохлеб И.В. Характер образования межмитохондриальных контактов в процессе онтогенетического формирования митохондриального аппарата в норме и в условиях гипоксического повреждения кардиогенеза. Рос. мед.-биол. вестн. им. акад. И.П. Павлова. 2014;2.; Huang X., Sun L., Ji S., Zhao T., Zhang W., Xu J. et al. Kissing and nanotunneling mediate intermitochondrial communication in the heart. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2013;110(8):2846–2851. DOI:10.1073/pnas.1300741110.; Бакеева Л.Е., Сударикова Ю.В., Цыпленкова В.Г. Межмитохондриальные контакты как специальная межмембранная контактная структура, объединяющая митохондрии в единую морфофункциональную систему. Информационный бюллетень РФФИ. Биология, медицинская наука. 1999;7.; https://www.sibjcem.ru/jour/article/view/2425

  7. 7
  8. 8
  9. 9
  10. 10
  11. 11
    Academic Journal

    Πηγή: Radiatsionnaya Gygiena = Radiation Hygiene; Том 15, № 4 (2022); 122-133 ; Радиационная гигиена; Том 15, № 4 (2022); 122-133 ; 2409-9082 ; 1998-426X ; 10.21514/1998-426X-2022-15-4

    Περιγραφή αρχείου: application/pdf

    Relation: https://www.radhyg.ru/jour/article/view/917/817; Наркевич Б.Я. Физико-техническое обеспечение ядерной медицины: современное состояние и перспективы развития // Радиационная онкология и ядерная медицина. 2012. № 1. С. 51-75.; National Council on Radiation Protection and Measurements. Medical radiation exposure of patients in the United States // NCRP Report No. 184, 2019.; Evaluation of medical exposure to ionizing radiation // UNSCEAR 2020/2021 Report Volume I. Annex A.; Онищенко Г.Г., Попова А.Ю., Романович И.К., и др. Современные принципы обеспечения радиационной безопасности при использовании источников ионизирующего излучения в медицине. Часть 1. Тенденции развития, структура лучевой диагностики и дозы медицинского облучения // Радиационная гигиена. 2019. Т. 12, № 1. С. 6-24. DOI:10.21514/1998-426X-2019-12-1-6-24.; Онищенко Г.Г., Попова А.Ю., Романович И.К., и др. Современные принципы обеспечения радиационной безопасности при использовании источников ионизирующего излучения в медицине. Часть 2. Радиационные риски и совершенствование системы радиационной защиты // Радиационная гигиена. 2019. Т. 12, № 2. С. 6-24. DOI:10.21514/1998-426X-2019-12-2-6-24.; Martin A., Eckerman K., Pawel D., et al. Improved Age- and Gender-Specific Radiation Risk Models Applied on Cohorts of Swedish Patients // Radiation Protection Dosimetry. 2021. Vol. 195, No 3-4. P. 334-338. DOI:10.1093/rpd/ncab075.; Результаты радиационно-гигиенической паспортизации в субъектах Российской Федерации за 2020 г. (Радиационно-гигиенический паспорт Российской Федерации). М.: Федеральная служба по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека, 2021. 130 с.; Результаты радиационно-гигиенической паспортизации в субъектах Российской Федерации за 2019 г. (Радиационно-гигиенический паспорт Российской Федерации). М.: Федеральная служба по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека, 2020. 136 c.; Результаты радиационно-гигиенической паспортизации в субъектах Российской Федерации за 2018 г. (Радиационно-гигиенический паспорт Российской Федерации). М.: Федеральная служба по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека, 2019. 130 с.; Радиационно-гигиенический паспорт России: Результаты радиационно-гигиенической паспортизации в субъектах Российской Федерации за 2017 г. (Радиационно-гигиенический паспорт Российской Федерации). М.: Федеральный центр гигиены и эпидемиологии Роспотребнадзора, 2018. 117 с.; Результаты радиационно-гигиенической паспортизации в субъектах Российской Федерации за 2016 г. (Радиационно-гигиенический паспорт Российской Федерации). М.: Федеральный центр гигиены и эпидемиологии Роспотребнадзора, 2017. 125 с.; Результаты радиационно-гигиенической паспортизации в субъектах Российской Федерации за 2015 г. (Радиационно-гигиенический паспорт Российской Федерации). М.: Федеральная служба по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека, 2016. 125 с.; Водоватов А.В., Романович И.К., Историк О.А., и др. Предварительная оценка изменения структуры и коллективной дозы от КТ-исследований за период март-июнь 2020 г в связи с диагностикой COVID-19 в Российской Федерации. 2020. Препринт: https://covid19-preprints. microbe.ru/article/28 (Дата обращения: 27.07.2022) DOI:10.21055/preprints-3111724.; Звонова И.А., Чипига Л.А., Балонов М.И., Сухов В.Ю. Радионуклидная диагностика в Санкт-Петербурге: текущее состояние и проблемы развития // Радиационная гигиена. 2015. Т. 8, № 4. С. 32-41.; Костылев В.А., Рыжикова О.А., Сергиенко В.Б. Статус и перспектива развития методов позитронно-эмиссионной томографии в России // Медицинская физика. 2015. № 2. С. 5-16.; European Commission. Medical radiation exposure of the European population // Radiation Protection. 2019. № 180, part 1/2.; Verberne H.J., Acampa W., Anagnostopoulos C. EANM procedural guidelines for radionuclide myocardial perfusion imaging with SPECT and SPECT/CT: 2015 revision // European Journal of Nuclear Medicine and Molecular Imaging. 2009. Vol. 36. P. 1201-1216. DOI:10.1007/s00259-015-3139-x.; Kapucu Ö.L., Nobili F., Varrone A., et al. EANM procedure guideline for brain perfusion SPECT using 99mTc-labelled radiopharmaceuticals, version 2 // European Journal of Nuclear Medicine and Molecular Imaging. 2009. Vol. 36(12). P. 2093-102. DOI 10.1007/s00259-009-1266-y.; Балонов М.И., Голиков В.Ю., Звонова И.А., и др. Современные уровни медицинского облучения в России // Радиационная гигиена. 2015. Т. 8, № 3. С. 67-79.; Balonov M., Golikov V., Zvonova I., et al. Patient doses from medical examinations in Russia: 2009-2015 // Journal of Radiological Protection. 2018. Vol. 38, No 1. P. 121-139. DOI:10.1088/1361-6498/aa9b99.; Балонов М.И., Голиков В.Ю., Водоватов А.В., и др. Научные основы радиационной защиты в современной медицине, Том 1. Лучевая диагностика. Под ред. профессора М.И. Балонова. СПб.: НИИРГ имени проф. П.В. Рамзаева, 2019. Т. 1. 320 с.; Чипига Л.А. Сравнение расчетных методов определения эффективной и органных доз у пациентов при компьютерно-томографических исследованиях // Радиационная гигиена. 2017. Т. 10, № 1. С. 56–64. DOI:10.21514/1998-426Х-2017-10-1-56-64.; Chipiga L., Golikov V., Vodovatov A., Bernhardsson C. Comparison of organ absorbed doses in whole-body computed tomography scans of paediatric and adult patient models estimated by different methods // Radiation Protection Dosimetry. 2021. Vol. 195, No 3-4. P. 246-256. https://doi. Org/10.1093/rpd/ncab086.; https://www.radhyg.ru/jour/article/view/917

  12. 12
    Academic Journal

    Πηγή: Head and Neck Tumors (HNT); Том 13, № 1 (2023); 91-101 ; Опухоли головы и шеи; Том 13, № 1 (2023); 91-101 ; 2411-4634 ; 2222-1468 ; 10.17650/2222-1468-2023-13-1

    Περιγραφή αρχείου: application/pdf

    Relation: https://ogsh.abvpress.ru/jour/article/view/871/575; Filetti S., Durante C., Hartl D., Leboulleux S. et al. Berruti on behalf of the ESMO Guidelines Committee. 2019. Thyroid cancer: ESMO Clinical Practice Guidelines for diagnosis, treatment and follow-up. Ann Oncol 2019;30(12):1856–83. DOI:10.1093/annonc/mdz400; Клинические рекомендации. Дифференцированный рак щитовидной железы. 2020 г. Доступно по: https://cr.minzdrav.gov.ru/schema/329_1#doc_a1.; Gulec S., Ahuja S., Avram A. et al. A joint statement from the American Thyroid Association, the European Association of Nuclear Medicine, the European Thyroid Association, the Society of Nuclear Medicine and Molecular Imaging on Current Diagnostic and Theranostic Approaches in the Management of Thyroid Cancer. Thyroid 2021;31(7):1009–19. DOI:10.1089/ thy.2020.0826; Haddad R., Bischoff L., Ball D. et al. Thyroid Carcinoma. Version 2.2022. NCCN Clinical Practice Guidelines in Oncology. J Nat Compr Canc Netw 2022;20(8):925–51. DOI:10.6004/ jnccn.2022.0040; Шуринов А.Ю., Крылов В.В., Бородавина Е.В. Радиойодаблация при раке щитовидной железы. Исторические и современные аспекты. Обзор литературы. Онкологический журнал: лучевая диагностика, лучевая терапия 2021;4(4):9–19. DOI:10.37174/2587-7593-2021-4-4-9-19; Duren M., Siperstein A., Shen W. et al. Value of stimulated serum thyroglobulin levels for detecting persistent or recurrent differentiated thyroid cancer in high- and low-risk patients. Surgery 1999;26(1):13–9. DOI:10.1067/msy.1999.98849; Pacini F., Lippi F., Formica N. et al. Therapeutic doses of iodine-131 reveal undiagnosed metastases in thyroid cancer patients with detectable serum thyroglobulin levels. J Nucl Med 1987;28(12):1888–91.; Pineda J., Lee T., Ain K. et al. Iodine-131 therapy for thyroid cancer patients with elevated thyroglobulin and negative diagnostic scan. J Clin Endocrinol Metab 1995;80(5):1488–92. DOI:10.1210/ jcem.80.5.7744991; Roelants V., De Nayer P., Bouckaert A., Beckers C. The predictive value of serum thyroglobulin in the follow-up of differentiated thyroid cancer. Eur J Nucl Med 1997;24:722–7. DOI:10.1007/ BF00879658; Pacini F., Molinaro E., Castagna M. et al. Ablation of thyroid residues with 30 mCi 131I: a comparison in thyroid cancer patients prepared with recombinant human TSH or thyroid hormone withdrawal. J Clin Endocrinol Metab 2002;87(9):4063–8. DOI:10.1210/jc.2001-011918; Kukulska A., Krajewska J., Gawkowska-Suwiriska M. et al. Radioiodine thyroid remnant ablation in patients with differentiated thyroid carcinoma (DTC): prospective comparison of long-term outcomes of treatment with 30, 60, and 100 mCi. Thyroid Res 2010;3(1):9. DOI:10.1186/1756-6614-3-9; Toubeau M., Touzery C., Arveux P. et al. Predictive value for disease progression of serum thyroglobulin levels measured in the postoperative period and after 131I ablation therapy in patients with differentiated thyroid cancer. J Nucl Med 2004;45(6):988–94.; Haugen B., Alexander E., Bible K.C. et al. 2015 American Thyroid Association Management Guidelines for Adult Patients with Thyroid Nodules and Differentiated Thyroid Cancer. Thyroid 2016;26(1):1–133. DOI:10.1089/thy.2015.0020; Lamartina L., Grani G., Durante C., Filetti S. Recent advances in managing differentiated thyroid cancer. F1000Res 2018;7:86. DOI:10.12688/f1000research.12811.1; Gray J., Singh G., Uttley L., Balasubramanian S. Routine thyroglobulin, neck ultrasound and physical examination in the routine follow up of patients with differentiated thyroid cancer: where is the evidence? Endocrine 2018;62(1):26–33. DOI:10.1007/s12020-018-1720-3; Prpić M., Franceschi M., Romić M. et al. Thyroglobulin as a tumor marker in differentiated thyroid cancer – clinical considerations. Acta Clin Croat 2018;57(3):518–27. DOI:10.20471/acc.2018.57.03.16; Giovanella L., Clark P., Chiovato L. et al. Thyroglobulin measurement using highly sensitive assays in patients with differentiated thyroid cancer: a clinical position paper. Eur J Endocrinol 2014;171(2):R33–46. DOI:10.1530/EJE-14-0148; Spencer C. Clinical review: clinical utility of thyroglobulin antibody (TgAb) measurements for patients with differentiated thyroid cancers (DTC). J Clin Endocrinol Metab 2011;96(12):3615–27. DOI:10.1210/jc.2011-1740; Dekker B., Van der Horst-Schrivers A., Brouwers A. et al. Clinical irrelevance of lower titer thyroglobulin autoantibodies in patients with differentiated thyroid carcinoma. Eur Thyroid J 2022 20;11(6):e220137. DOI:10.1530/ETJ-22-0137; Brassard M., Borget I., Edet-Sanson A. et al. Long-term follow-up of patients with papillary and follicular thyroid cancer: a prospective study on 715 patients. J Clin Endocrinol Metab 2011;96(5):1352–9. DOI:10.1210/jc.2010-2708; Durante C., Montesano T., Attard M. et al. Long-term surveillance of papillary thyroid cancer patients who do not undergo postoperative radioiodine remnant ablation: is there a role for serum thyroglobulin measurement? J Clin Endocrinol Metab 2012;97(8):2748–53. DOI:10.1210/jc.2012-1123; Angell T., Spencer C., Rubino B. et al. In search of an unstimulated thyroglobulin baseline value in low-risk papillary thyroid carcinoma patients not receiving radioactive iodine ablation. Thyroid 2014;24(7):1127–33. DOI:10.1089/thy.2013.0691; Grani G., Fumarola A. Thyroglobulin in lymph node fine-needle aspiration washout: a systematic review and meta-analysis of diagnostic accuracy. J Clin Endocrinol Metab 2014;99(6):1970–82. DOI:10.1210/jc.2014-1098; Torlontano M., Attard M., Crocetti U. et al. Follow-up of low risk patients with papillary thyroid cancer: role of neck ultrasonography in detecting lymph node metastases. J Clin Endocrinol Metab 2004;89(7):3402–7. DOI:10.1210/ jc.2003-031521; Grani G., Lamartina L., Cantisani V. et al. Enterobserver agreement of various thyroid imaging reporting and data systems. Endocr Connect 2018;7(1):1–7. DOI:10.1530/EC-17-0336; Lamartina L., Grani G., Biffoni M. et al. Risk stratification of neck lesions detected sonographically during the follow-up of differentiated thyroid cancer. J Clin Endocrinol Metab 2016;101(8):3036–44. DOI:10.1210/jc.2016-1440; Leboulleux S., Girard E., Rose M. et al. Ultrasound criteria of malignancy for cervical lymph nodes in patients followed up for differentiated thyroid cancer. J Clin Endocrinol Metab 2007;92(9):3590–4. DOI:10.1210/jc.2007-0444; Leenhardt L., Erdogan M., Hegedus L. et al. 2013 European Thyroid Association guidelines for cervical ultrasound scan and ultrasound-guided techniques in the postoperative management of patients with thyroid cancer. Eur Thyroid J 2013;2(3):147–59. DOI:10.1159/000354537; Lamartina L., Deandreis D., Durante C., Filetti S. ENDOCRINE TUMOURS: imaging in the follow-up of differentiated thyroid cancer: current evidence and future perspectives for a risk-adapted approach. Eur J Endocrinol 2016;175(5):R185–202. DOI:10.1530/ EJE-16-0088; Grani G., Ramundo V., Falcone R. et al. Thyroid cancer patients with no evidence of disease: the need for repeat neck ultrasound. J Clin Endocrinol Metab 2019;104(11):4981–9. DOI:10.1210/jc.2019-00962; Castagna M., Maino F., Cipri C. et al. Delayed risk stratification, to include the response to initial treatment (surgery and radioiodine ablation), has better outcome predictivity in differentiated thyroid cancer patients. Eur J Endocrinol 2011;165(3):441–6. DOI:10.1530/EJE-11-0466; Tuttle R., Tala H., Shah J. et al. Estimating risk of recurrence in differentiated thyroid cancer after total thyroidectomy and radioactive iodine remnant ablation: using response to therapy variables to modify the initial risk estimates predicted by the new American Thyroid Association staging system. Thyroid 2010;20(12):1341–9. DOI:10.1089/thy.2010.0178; Durante C., Attard M., Torlontano M. et al. Identification and optimal postsurgical follow-up of patients with very low-risk papillary thyroid microcarcinomas. J Clin Endocrinol Metab 2010;95(11):4882–8. DOI:10.1210/jc.2010-0762; Tuttle R., Tala H., Shah J. et al. Estimating risk of recurrence in differentiated thyroid cancer after total thyroidectomy and radioactive iodine remnant ablation: using response to therapy variables to modify the initial risk estimates predicted by the new American Thyroid Association staging system. Thyroid 2010; 20(12):1341–9. DOI:10.1089/thy.2010.0178; Jeon M., Kim W., Park W. et al. Modified dynamic risk stratification for predicting recurrence using the response to initial therapy in patients with differentiated thyroid carcinoma. Eur J Endocrinol 2014;170:23–30. DOI:10.1530/EJE-13-0524; Han J., Kim W., Yim J. et al. Long-term clinical outcome of differentiated thyroid cancer patients with undetectable stimulated thyroglobulin level one year after initial treatment. Thyroid 2012;22(8):784–90. DOI:10.1089/thy.2011.0322; Scheffel R., Zanella A., Antunes D. et al. Low recurrence rates in a cohort of differentiated thyroid carcinoma patients: a referral center experience. Thyroid 2015;25(8):883–9. DOI:10.1089/thy.2015.0077; Llamas-Olier A., Cuéllar D., Buitrago G. Intermediate-risk papillary thyroid cancer: risk factors for early recurrence in patients with excellent response to initial therapy. Thyroid 2018;28(10):1311–7. DOI:10.1089/thy.2017.0578; Ganly I., Nixon I., Wang L. et al. Survival from differentiated thyroid cancer: what has age got to do with it? Thyroid 2015;25(10):1106–14. DOI:10.1089/thy.2015.0104; Comtois R., Theriault C., Del Vecchio P. Assessment of the efficacy of iodine-131 for thyroid ablation. J Nucl Med 1993;34(11):1927–30.; Schlumberger M., Berg G., Cohen O. et al. Follow-up of low-risk patients with differentiated thyroid carcinoma. Eur J Endocrinol 2004;150(2):105–12. DOI:10.1530/eje.0.1500105; Sacks W., Fung C., Chang J. et al. The effectiveness of radioactive iodine for treatment of low-risk thyroid cancer: a systematic analysis of the peer-reviewed literature from 1966 to April 2008. Thyroid 2010;20(11):1235–45. DOI:10.1089/thy.2009.0455; Dietlein M., Eschner W., Grünwald F. et al. Procedure guidelines for radioiodine therapy of differentiated thyroid cancer. Nuklearmedizin 2016;55:77–89. DOI:10.1055/s-0037-1616478; Gastanga M., Cantara S., Pacini F. Reappraisal of the indication for radioiodine thyroid ablation in differentiated thyroid cancer patients. J Endocrinol Invest 2016;39(10):1087–94. DOI:10.1007/s40618-016-0503-z; Deandreis D., Rubino C., Tala H. et al. Comparison of empiric versus whole-body-blood clearance dosimetry-based approach to radioactive iodine treatment in patients with metastases from differentiated thyroid cancer. J Nucl Med 2017;58(5):717–22. DOI:10.2967/jnumed.116.179606; Verburg F., Schmidt M., Kreissl M. et al. Procedural guideline for Iodine-131 whole-body scintigraphy in differentiated thyroid carcinoma (version 5). Nuklearmedizin 2019;58(3):228–41. DOI:10.1055/a-0891-1839; Giovanella L., Treglia G., Sadeghi R. et al. Unstimulated highly sensitive thyroglobulin in follow-up of differentiated thyroid cancer patients: a meta-analysis. J Clin Endocrinol Metab 2014;99(2):440– 7. DOI:10.1210/jc.2013-3156; Francis G., Waguespack S., Bauer A. et al. American Thyroid Association Guidelines Task Force Management guidelines for children with thyroid nodules and differentiated thyroid cancer. Thyroid 2015;25(7):716–59. DOI:10.1089/thy.2014.0460; Li J., He Z., Bansal V., Hennessey J. Low iodine diet in differentiated thyroid cancer: a review. Clin Endocrinol (Oxf) 2016;84(1):3–12. DOI:10.1111/cen.12846; Campennì А., Barbaro D., Guzzo M. et al. Personalized management of differentiated thyroid cancer in real life – practical guidance from a multidisciplinary panel of experts. Endocrine 2020;70(2):280–91. DOI:10.1007/s12020-020-02418-x; Feine U., Lietzenmayer R., Hanke J. et al. 18FDG whole-body PET in differentiated thyroid carcinoma. Flipflop in uptake patterns of 18FDG and 131I. [In German]. Nuklearmedizin 1995;34(4):127–34.; Feine U., Lietzenmayer R., Hanke J. et al. Fluorine-18-FDG and iodine-131-iodide uptake in thyroid cancer. J Nucl Med 1996;37(9):1468–72.; Asa S., Aksoy S., Vatankulu B. et al. The role of FDG-PET/CT in differentiated thyroid cancer patients with negative iodine-131 whole-body scan and elevated anti-Tg level. Ann Nucl Med 2014;28(10):970–9. DOI:10.1007/s12149-014-0897-7; Liu Y. The role of 18F-FDG PET/CT in the follow-up of well-differentiated thyroid cancer with negative thyroglobulin but positive and/or elevated antithyroglobulin antibody. Nucl Med Commun 2016;37(6):577–82. DOI:10.1097/MNM.0000000000000480; Ozkan E., Aras G., Kucuk N. Correlation of 18F-FDG PET/CT findings with histopathological results in differentiated thyroid cancer patients who have increased thyroglobulin or antithyroglobulin antibody levels and negative 131I whole-body scan results. Clin Nucl Med 2013;38(5):326–31. DOI:10.1097/RLU.0b013e318286827b; Liu M., Cheng L., Jin Y. et al. Predicting 131I-avidity of metastases from differentiated thyroid cancer using 18F-FDG PET/CT in postoperative patients with elevated thyroglobulin. Sci Rep 2018;8(1):4352. DOI:10.1038/s41598-018-22656-4; Silberstein E. The problem of the patient with thyroglobulin elevation but negative iodine scintigraphy: the TENIS syndrome. Semin Nucl Med 2011;41(2):113–20. DOI:10.1053/j.semnuclmed.2010.10.002; Bartel C., Magerefteh S., Avram A. et al. Snmmi procedure standard for scintigraphy for differentiated thyroid cancer. J Nucl Med Technol 2020;48(3):202–9. DOI:10.2967/jnmt.120.243626; Avram А., Giovanella L., Greenspan B. et al. SNMMI procedure standard/eanm practice guideline for nuclear medicine evaluation and therapy of differentiated thyroid cancer: abbreviated version. J Nucl Med 2022;63(6):15N–35N.; Petranović P., Kreissl M., Campenni A. et al. SNMMI/EANM practice guideline vs. ETA Consensus Statement: differences and similarities in approaching differentiated thyroid cancer management-the EANM perspective. Eur J Nucl Med Mol Imaging 2022;49(12):3959–63. DOI:10.1007/s00259-022-05935-1; Giovanella L., Treglia G., Ceriani L., Verburg F. Detectable thyroglobulin with negative imaging in differentiated thyroid cancer patients. What to do with negative anatomical imaging and radioiodine scan? Nuklearmedizin 2014;53(1):1–10. DOI:10.3413/Nukmed-0618-13-08; Van Nostrand D. Radioiodine imaging for differentiated thyroid cancer: not all radioiodine images are performed equally. Thyroid 2019;29(7):901–9.; Donohoe K., Aloff J., Avram А. et al. Appropriate use criteria for nuclear medicine in the evaluation and treatment of differentiated thyroid cancer. J Nucl Med 2020;61(3):375–96. DOI:10.2967/jnumed.119.240945; Binse I., Poeppel T., Ruhlmann M. et al. 68Ga-DOTATOC PET/CT in patients with iodine- and 18F-FDG-negative differentiated thyroid carcinoma and elevated serum thyroglobulin. J Nucl Med 2016;57(10):1512–7. DOI:10.2967/jnumed.115.171942; Vrachimis A., Stegger L., Wenning C. et al. 68Ga-DOTATATE PET/ MRI and 18F-FDG PET/CT are complementary and superior to diffusion-weighted MR imaging for radioactive-iodine-refractory differentiated thyroid cancer. Eur J Nucl Med Mol Imaging 2016;43(10):1765–72. DOI:10.1007/s00259-016-3378-5; Czepczynski R., Matysiak-Grzes M., Gryczynska M. et al. Peptide receptor radionuclide therapy of differentiated thyroid cancer: efficacy and toxicity. Arch Immunol Ther Exp (Warsz) 2015;63(2):147–54. DOI:10.1007/s00005-014-0318-6; Versari A., Sollini M., Frasoldati A. et al. Differentiated thyroid cancer: A new perspective with radiolabeled somatostatin analogues for imaging and treatment of patients. Thyroid 2014;24(4):715–26. DOI:10.1089/thy.2013.0225; Roll W., Riemann B., Schafers M. et al. 177Lu-DOTATATE therapy in radioiodine-refractory differentiated thyroid cancer: a single center experience. Clin Nucl Med 2018;43(10):e346–51. DOI:10.1097/RLU.0000000000002219; Gubbi S., Koch C., Klubo-Gwiezdzinska J. Peptide receptor radionuclide therapy in thyroid cancer. Front endocrinol (Lausanne) 2022;13:896287. DOI:10.3389/fendo.2022.896287; Ryu Y.J., Lim S.Y., Na Y.M. et al. Prostate-specific membrane antigen expression predicts recurrence of papillary thyroid carcinoma after total thyroidectomy. BMC Cancer 2022;22(1):1278. DOI:10.1186/s12885-022-10375-z; Piek M., De Vries L., Donswijk M. et al. Ploeg IMC. Retrospective analysis of PSMA PET/CT thyroid incidental uptake in adults: incidence, diagnosis, and treatment/outcome in a tertiary cancer referral center and University Medical Center. Eur J Nucl Med Mol Imaging 2022;49(7):2392–400. DOI:10.1007/s00259-022-05679-y; https://ogsh.abvpress.ru/jour/article/view/871

  13. 13
    Academic Journal

    Συνεισφορές: The study was supported by the grant of the Ministry of Science and Higher Education (agreement No. 075-15-2022-1103) within the topic “Development of scaffold-based target molecules for the diagnosis and treatment of cancer: a theranostic approach”, Работа выполнена в рамках гранта Министерства науки и высшего образования (соглашение № 075-15-2022-1103) по теме «Разработка таргетных молекул на основе каркасных белков для диагностики и терапии злокачественных новообразований: тераностический подход»

    Πηγή: Bulletin of Siberian Medicine; Том 22, № 3 (2023); 6-13 ; Бюллетень сибирской медицины; Том 22, № 3 (2023); 6-13 ; 1819-3684 ; 1682-0363 ; 10.20538/1682-0363-2023-22-3

    Περιγραφή αρχείου: application/pdf

    Relation: https://bulletin.ssmu.ru/jour/article/view/5300/3432; https://bulletin.ssmu.ru/jour/article/view/5300/3451; Han L., Li L., Wang N., Xiong Y., Li Y., Gu Y. Relationship of epidermal growth factor receptor expression with clinical symptoms and metastasis of invasive breast cancer. Interferon Cytokine Res. 2018;38(12):578–582. DOI:10.1089/jir.2018.0085.; Pernas S., Tolaney S.M. HER2-positive breast cancer: new therapeutic frontiers and overcoming resistance. Ther. Adv. Med. Oncol. 2019;11:1758835919833519. DOI:10.1177/1758835919833519.; Wolff A.C., Hammond M.E.H., Allison K.H., Harvey B.E., Mangu P.B., Bartlett J.M. et al. Human epidermal growth factor receptor 2 testing in breast cancer: American society of clinical oncology/ College of American pathologist clinical practice guideline focused update. Pathol. Lab. Med. 2018;142(11):1364–1382. DOI:10.5858/arpa.2018-0902-SA.; Lower E.E., Khan S., Kennedy D., Baughman R.P. Discordance of the estrogen receptor and HER-2/neu in breast cancer from primary lesion to first and second metastatic site. Breast Cancer – Targets and Therapy. 2017;9:515–520. DOI:10.2147/BCTT.S137709.; Bragina O.D., Deyev S.M., Chernov V.I., Tolmachev V.M. Evolution of targeted radionuclide diagnosis of HER2-positive breast cancer. Acta Naturae. 2022;14(2):4–15. DOI:10.32607/actanaturae.11611.; Shilova O.N., Deyev S.M. DARPins: Promising scaffolds for theranostics. Acta Naturae. 2019;11(4):42–53. DOI:10.32607/20758251-2019-11-4-42-53/; Брагина О.Д., Чернов В.И., Зельчан Р.В., Синилкин И.Г., Медведева А.А., Ларкина М.С. Альтернативные каркасные белки в радионуклидной диагностике злокачественных образований. Бюллетень сибирской медицины. 2019;18(3):125– 133. DOI:10.20538/1682-0363-2019-3-125-133/; Tolmachev V., Orlova A., Sorensen J. The emerging role of radionuclide molecular imaging of HER2 expression in breast cancer. Semin. Cancer Biol. 2021;72:185–197. DOI:10.1016/j.semcancer.2020.10.005/; Брагина О.Д., Чернов В.И., Гарбуков Е.Ю., Дорошенко А.В., Воробьева А.Г., Орлова А.М и др. Возможности радионуклидной диагностики Her2-позитивного рака молочной железы с использованием меченных технецием-99m таргетных молекул: первый опыт клинического применения. Бюллетень сибирской медицины. 2021;20(1):23–30. DOI:10.20538/1682-0363-2021-1-23-30.; Bragina O., Chernov V., Schulga A., Konovalova E., Garbukov E., Vorobyeva A. et al. Phase I trial of 99mTc-(HE)3-G3, a DARPin-based probe for imaging of HER2 expression in breast cancer. Journal of Nuclear Medicine. 2022;63(4):528– 535. DOI:10.2967/jnumed.121.262542.; Tolmachev V., Bodenko V., Oroujeni M., Deyev S., Konovalova E., Shulga A. et al. Direct in vivo comparison of 99mTc-labeled scaffold proteins, DARPin G3 and ADAPT6, for visualization of HER2 expression and monitoring of early response for trastuzumab therapy. Int. J. Mol. Sci. 2022;23(23):15181. DOI:10.3390/ijms232315181.; Lindbo S., Garousi J., Åstrand M., Honarvar H., Orlova A., Hober S. et al. Influence of histidine-containing tags on the biodistribution of ADAPT scaffold proteins. Bioconjug Chem. 2016;27(3):716–726. DOI:10.1021/ACS.BIOCONJCHEM.5B00677.; Vorobyeva A., Schulga A., Konovalova E. et al. Optimal composition and position of histidine-containing tags improves biodistribution of 99mTc-labeled DARPin G3. Sci. Rep. 2019;9(1):9405. DOI:10.1038/S41598-019-45795-8.; https://bulletin.ssmu.ru/jour/article/view/5300

  14. 14
    Academic Journal

    Πηγή: Bulletin of Siberian Medicine; Том 22, № 1 (2023); 65-72 ; Бюллетень сибирской медицины; Том 22, № 1 (2023); 65-72 ; 1819-3684 ; 1682-0363 ; 10.20538/1682-0363-2023-22-1

    Περιγραφή αρχείου: application/pdf

    Relation: https://bulletin.ssmu.ru/jour/article/view/5133/3350; Гордон К.Б., Гулидов И.А., Рожнов В.А., Семенов А.В. Возможности химиолучевого лечения первичных местно-распространенных опухолей органов головы и шеи. Онкология. Журнал им. П.А. Герцена. 2018;7(3):68–74.; Красавина Е.А., Балацкая Л.Н., Чойнзонов Е.Л. Биологическая обратная связь в голосовой реабилитации больных после ларингэктомии. Физическая и реабилитационная медицина, медицинская реабилитация. 2019;3(3):32–36. DOI:10.36425/2658-6843-2019-3-32-36.; Трофимов Е.И., Сивкович О.О., Дайхес Н.А., Виноградов В.В., Решульский С.С. Оптимизация диагностики и хирургического лечения метастатического рака гортани и гортаноглотки. Опухоли головы и шеи. 2019;9(2):29–34. DOI:10.17650/2222-1468-2019-9-2-29-34.; Jones T.M., De M., Foran B., Harrington K., Mortimore S. Laryngeal cancer: United Kingdom National Multidisciplinary guidelines. The Journal of Laryngology & Otology. 2016;130(S2):75–82. DOI:10.1017/S0022215116000487.; Boada A., Tejera-Vaquerizo A., Ribero S., Puig S., Moreno-Ramírez D., Quaglino P. et al. Factors associated with sentinel lymph node status and prognostic role of completion lymph node dissection for thick melanoma. Eur. J. Surg. Oncol. 2020;46(2):263–271. DOI:10.1016/j.ejso.2019.09.189.; Lafuente-Sanchis A., Olmo A., Carretero J., Alcacer Fernandez-Coronado J., Estors-Guerrero M., Martínez-Hernández N.J. et al. Clinical significance of epithelial-mesenchymal transition-related markers expression in the micrometastatic sentinel lymph node of NSCLC. Clin. Transl. Oncol. 2020;22(3):381– 391. DOI:10.1007/s12094-019-02138-3.; Ni J.S., Janz T.A., Nguyen S.A., Lentsch E.J. Predictors of occult lymph node metastasis in cutaneous head and neck melanoma. World J. Otorhinolaryngol. Head Neck Surg. 2019;5(4):200–206. DOI:10.1016/j.wjorl.2019.02.003.; Touhami O., Grégoire J., Renaud M.C., Sebastianelli A., Plante M. Performance of sentinel lymph node (SLN) mapping in high-risk endometrial cancer. Gynecol. Oncol. 2017;147(3):549–553. DOI:10.1016/j.ygyno.2017.09.014.; Cabañas R.M. An approach for the treatment of penile cancer. Cancer. 1977;39:456–466.; Чернов В.И., Брагина О.Д., Зельчан Р.В., Медведева А.А., Синилкин И.Г., Ларькина М.С. и др. Меченные аналоги соматостатина в тераностике нейроэндокринных опухолей. Медицинская радиология и радиационная безопасность. 2017;62(3):42–49.; Тицкая А.А., Чернов В.И., Слонимская Е.М., Синилкин И.Г., Зельчан Р.В. Маммосцинтиграфия с 99mTс-МИБИ в диагностике рака молочной железы. Сибирский медицинский журнал (г. Томск). 2010;25(4–1):92–95.; Bragina O., Zelchan R., Medvedeva A., Chernov V., Orlova A., медицине. 2015;4:72–77. DOI:10.17691/stm2015.7.4.09.; Брагина О.Д., Чернов В.И., Зельчан Р.В., Синилкин И.Г., Медведева А.А., Ларькина М.С. Альтернативные каркасные белки в радионуклидной диагностике злокачественных образований. Бюллетень сибирской медицины. 2019;18(3):125–133. DOI:10.20538/1682-0363-2019-3-125-133.; Чернов В.И., Дудникова Е.А., Зельчан Р.В., Кравчук Т.Л., Данилова А.В., Медведева А.А. и др. Однофотонная эмиссионная компьютерная томография с 99mTC-1-ТИО-Dглюкозой в диагностике и стадировании злокачественных лимфом: первый опыт использования. Сибирский онкологический журнал. 2018;17(4):81–87. DOI:10.21294/18144861-2018-17-4-81-87.; Alex J.C., Krag D.N. The gamma-probe-guided resection of radiolabeled primary lymph nodes. Surg. Oncol. Clin. N. Am. 1996;5(1):33–41.; Zhang J.J., Zhang W.C., An C.X., Li X.M., Ma L. Comparative research on 99mTc-Rituximab and 99mTc-sulfur colloid in sentinel lymph node imaging of breast cancer. BMC Cancer. 2019;19(1):956. DOI:10.1186/s12885-019-6197-9.; Unkart J.T., Hosseini A., Wallace A.M. Tc-99m tilmanocept versus Tc-99m sulfur colloid in breast cancer sentinel lymph node identification: Results from a randomized, blinded clinical trial. J. Surg. Oncol. 2017;116(7):819–823.; Кузнецов С.А., Шубина И.Ж., Мамедова Л.Т., Грицай А.Н., Киселевский М.В. Методы идентификации микрометастазов при злокачественных новообразованиях. Онкогематология. 2016;1:75–79. DOI:10.17650/1818-8346-2016-111-75-79.; Jimenez I.R., Roca M., Vega E., García M.L., Benitez A., Bajén M. et al. Particle sizes of colloids to be used in sentinel lymph node radio localization. Nucl. Med. Commun. 2008;29(2):166–172. DOI:10.1097/MNM.0b013e3282f258d9.; Варламова Н.В., Скуридин В.С., Нестеров Е.А., Ларионова Л.А., Чернов В.И. Исследование кумулятивных свойств радиофармпрепарата «Наноколлоид, 99mTc-Al2O3» на крысах. Вестник Новосибирского государственного университета. Серия: Биология, клиническая медицина. 2015;13(2):40–44.; Варламова Н.В., Стасюк Е.С., Тицкая А.А., Синилкин И.Г., Ларионова Л.А., Шерстобоев Е.Ю. и др. Изучение аллерvisualization in patients with cancer of larynx and hypopharynx. Eur. J. Nucl. Med. Mol. Imag. 2015;42:704.; Скуридин В.С., Стасюк Е.С., Варламова Н.В., Рогов А.С., Садкин В.Л., Нестеров Е.А. Получение нового наноколлоидного радиофармпрепарата на основе оксида алюминии. Известия Томского политехнического университета. 2013;323(3):33–37.; Chernov V.I., Sinilkin I.G., Zelchan R.V., Medvedeva A.A., Lyapunov A.Yu., Bragina O.D. et alExperimental study of 99mTc-aluminum oxide use for sentinel lymph nodes detection. AIP Conference Proceedings. 2016;020012.; Chernov V., Sinilkin I., Choynzonov E., Chijevskaya S., Titskaya A., Zelchan R. et al. Comparative evaluation of 99mTсAl2O3 and 99mTс-fitat nanocolloids for sentinel lymph nodes visualization in patients with cancer of larynx and hypopharynx. Eur. J. Nucl. Med. Mol. Imag. 2015;42:704; Синилкин И.Г., Чернов В.И., Коломиец Л.А., Слонимская Е.М., Медведева А.А., Зельчан Р.В. и др. Первый опыт клинического применения нового отечественного радиофармпрепарата 99mTс-гамма-оксид алюминия для визуализации сторожевых лимфатических узлов при злокачественных новообразованиях. Медицинская визуализация. 2016;2:57–62.; Рожнов В.А., Андреев В.Г., Мардынский Ю.С., Панкратов В.А., Барышев В.В., Буякова М.Е. и др. Сравнительные результаты хирургического и комбинированного лечения местно-распространенного рецидивного рака гортани (rT3N0M0). Сибирский онкологический журнал. 2008;5(29):23–26.; Alkureishi L.W., Ross G.L., Shoaib T., Soutar D.S., Robertson A.G., Sorensen J.A. et al. Does tumor depth affect nodal upstaging in squamous cell carcinoma of the head and neck. Laryngoscope. 2008;118: 629–634. DOI:10.1097/MLG.0b013e31815e8bf0.; Sharma D., Koshy G., Grover S., Sharma B. Sentinel Lymph Node Biopsy: A new approach in the management of head and neck cancers. Sultan Qaboos Univ. Med. J. 2017;17(1):e3– e10. DOI:10.18295/squmj.2016.17.01.002.; De Veij Mestdagh P.D., Janssen T., Lamers E., Carbaat C., Hamming-Vrieze O., Vogel W.V. et al. SPECT/CT-guided elective nodal irradiation for head and neck cancer: estimation of clinical benefits using NTCP models. Radiother. Oncol. 2019;130:18–24. DOI:10.1016/j.radonc.2018.07.023.; De Veij Mestdagh P.D., Schreuder W.H., Vogel W.V., Donswijk M.L., van Werkhoven E., van der Wal J.E. et al. Mapping of sentinel lymph node drainage using SPECT/CT to tailor elective nodal irradiation in head and neck cancer patients (SUSPECT-2): a single-center prospective trial. BMC Cancer. 2019;19(1):1110. DOI:10.1186/s12885-019-6331-8.; Lawson G., Matar N., Nollevaux M.C., Jamart J., Krug B., Delos M. et al. Reliability of sentinel node technique in the treatment of N0 supraglottic laryngeal cancer. Laryngoscope. 2010;120:2213–2217. DOI:10.1002/lary.21131.; Yoshimoto S., Hasegawa Y., Matsuzuka T., Shiotani A., Takahashi K., Kohno N. et al. Sentinel node biopsy for oral and laryngopharyngeal squamous cell carcinoma: a retrospective study of 177 patients in Japan. Auris Nasus Larynx. 2012;39(1):65–70. DOI:10.1016/j.anl.2011.03.002.; https://bulletin.ssmu.ru/jour/article/view/5133

  15. 15
    Academic Journal

    Πηγή: Diagnostic radiology and radiotherapy; Том 12, № 4 (2021); 65-73 ; Лучевая диагностика и терапия; Том 12, № 4 (2021); 65-73 ; 2079-5343

    Περιγραφή αρχείου: application/pdf

    Relation: https://radiag.bmoc-spb.ru/jour/article/view/658/509; Устюжанин Д.В., Белькинд М.Б., Гаман С.А., Шария М.А., Терновой С.К. КТ-картина коронавирусной болезни: результаты по итогам работы COVIDцентра на базе НМИЦ кардиологии // REJR. 2020. Т. 10, № 2. С. 27–38. doi:10.21569/2222-7415-2020-10-2-27-38.; Agricola E., Beneduce A., Esposito A., Ingallina G., Palumbo D., Palmisano A., Ancona F., Baldetti L., Pagnesi M., Melisurgo G., Zangrillo A., De Cobelli F. Heart and lung multimodality imaging in COVID-19 // JACC Cardiovasc. Imaging. 2020. Vol. 13, No. 8. Р. 1792–1808. doi:10.1016/j.jcmg.2020.05.017.; Shi H., Han X., Jiang N., Cao Y., Alwalid O., Gu J., Fan Y., Zheng C. Radiological findings from 81 patients with COVID-19 pneumonia in Wuhan, China: a descriptive study // Lancet Infect. Dis. 2020. Vol. 20, No. 4. Р. 425–434. doi:10.1016/S1473-3099(20)30086-4.; Петриков С.С., Попова И.Е., Муслимов Р.Ш. и др. Возможности компьютерной томографии в оценке степени поражения легких у больных COVID19 в условиях динамического наблюдения // REJR. 2020. Vol. 10, No. 2. Р. 14–26. doi:10.21569/2222-7415-2020-10-2-14-26-3.; Сперанская А.А. Лучевые проявления новой коронавирусной инфекции COVID-19 // Лучевая диагностика и терапия. 2020. Т. 11, № 1. С. 18–25. doi:10.22328/2079-5343-2020-11-1-18-25.; Teuwen L.A., Geldhof V., Pasut A., Carmeliet P. COVID-19: the vasculature unleashed // Nat. Rev. Immunol. 2020. May 21. Р. 389–391. doi:10.1038/s41577-020-0343-0.; Li X.C., Zhang J., Zhuo J.L. The vasoprotective axes of the renin-angiotensin system: physiological relevance and therapeutic implications in cardiovascular, hypertensive and kidney diseases // Pharmacol. Res. 2017, Vol. 125, рр. 21–38. doi:10.1016/j.phrs.2017.06.005.; Zhang H., Penninger J.M., Li Y., Zhong N., Slutsky A.S. Angiotensin-converting enzyme 2 (ACE2) as a SARS-CoV-2 receptor: molecular mechanisms and potential therapeutic target // Intensive Care Med. 2020. Vol. 46, No 4. Р. 586–590. doi:10.1007/s00134-020-05985-9.; Huertas A., Montani D., Savale L. et al. Endothelial Cell Dysfunction: A Major Player in SARS-CoV-2 Infection (COVID-19)? // Eur. Respir. J. 2020. Vol. 18. Р. 1–5. doi:10.1183/13993003.01634-2020.; Петрищев Н.Н., Халепо О.В., Вавиленкова Ю.А., Власов Т.Д. COVID-19 и сосудистые нарушения (обзор литературы) // Регионарное кровообращение и микроциркуляция. 2020. Т.19, №3. С. 90–98. doi:10.24884/1682-6655-2020-19-3-90-98.; Воробьев П.А., Момот А.П., Зайцев А.А., Елыкомов В.А, Сычев Д.А. и др. Синдром диссеминированного внутрисосудистого свертывания крови при инфекции COVID-19 // Терапия. 2020. № 5. С. 25–34. doi:10.18565/therapy.2020.5.25-34.; Галстян Г.М. Коагулопатия при COVID-19 // Пульмонология. 2020. Т. 30, № 5. С. 645–657. doi:10.18093/0869-0189-2020-30-5-645-657.; Hunt B. et al. Practical guidance for the prevention of thrombosis and management of coagulopathy and disseminated intravascular coagulation of patients infected with COVID-19. March 25, 2020. Р. 1–6. Available at: https://thrombosisuk.org/downloads/T&HandCOVID.pdf.; Ackermann M., Verleden S.E., Kuehnel M. et al. Pulmonary Vascular Endothelialitis, Thrombosis, and Angiogenesis in COVID-19 // N. Engl. J. Med. 2020. No. 383. Р. 120–128. doi:10.1056/NEJMoa2015432.; Xu P., Zhou Q., Xu J. Mechanism of thrombocytopenia in COVID-19 patients // Ann. Hematol. 2020 Vol. 99, Nо. 6. Р. 1205–1208. doi:10.1007/s00277-020-04019-0.; Золотницкая В.П., Тишков А.В., Амосов В.И. Способ количественного определения накопления радиофармпрепарата при радионуклидном исследовании перфузии легких. Патент RUS № 262044, 24.08.2017 г.; Martini R. The compelling arguments for the need of microvascular investigation in COVID-19 critical patients // Clin. Hemorheol. Microcirc. 2020. Vol. 75, No. 1. Р. 27–34. doi:10.3233/CH-200895.; Goshua G., Pine A.B., Meizlish M.L., Chang C.H., Zhang H., Bahel P., Baluha A., Bar N., Bona R.D., Burns AJ., Dela Cruz CS., Dumont A., Halene S., Hwa J., Koff J., Menninger H., Neparidze N., Price C., Siner J.M., Tormey C., Rinder H.M., Chun H.J., Lee A.I. Endotheliopathy in COVID-19-associated coagulopathy: evidence from a single-centre, cross-sectional study // Lancet Haematol. 2020. Vol. 7, No. 8. Р. e575–e582. doi:10.1016/S2352-3026(20)30216-7.; Levi M., Thachil J., Iba T., Levy J.H. Coagulation abnormalities and thrombosis in patients with COVID-19 // Lancet Haematol. 2020. Vol. 7, No. 6. Р. e438–e440. doi:10.1016/S2352-3026(20)30145-9.; Tang N., Li D., Wang X., Sun Z. Abnormal coagulation parameters are associated with poor prognosis in patients with novel coronavirus pneumonia // J. Thromb. Haemost. 2020. Vol. 18, No. 4. Р. 844–847. doi:10.1111/jth.14768.; Lodigiani C., Iapichino G., Carenzo L., Cecconi M., Ferrazzi P., Sebastian T., Kucher N., Studt J.D., Sacco C., Alexia B., Sandri M.T., Barco S. Venous and arterial thromboembolic complications in COVID-19 patients admitted to an academic hospital in Milan, Italy // Thromb. Res. 2020. No. 191. Р. 9–14. doi:10.1016/j.thromres.2020.04.024.

  16. 16
    Academic Journal

    Συνεισφορές: This study was performed as a part of the clinical program “Providing medical care to patients with primary and secondary hyperparathyroidism using hybrid technologies of radionuclide imaging and gamma-navigation surgery” at the Research Medical Center of Endocrinology, Ministry of Health of Russia between 2018 and 2020 (No. 2018-4-1)., Работа проведена в рамках клинической апробации Минздрава России «Оказание медицинской помощи пациентам с первичным и вторичным гиперпаратиреозом на основе гибридных технологий радионуклидной визуализации и гамма-навигационной хирургии», выполняемой на базе ФГБУ «Научного медицинского исследовательского центра эндокринологии» Минздрава России в период с 2018 по 2020 г. (№ 2018-4-1).

    Πηγή: Head and Neck Tumors (HNT); Том 11, № 4 (2021); 10-21 ; Опухоли головы и шеи; Том 11, № 4 (2021); 10-21 ; 2411-4634 ; 2222-1468 ; 10.17650/2222-1468-2017-0-4

    Περιγραφή αρχείου: application/pdf

    Relation: https://ogsh.abvpress.ru/jour/article/view/710/497; Мокрышева Н.Г., Мирная С.С., Добрева Е.А. и др. Первичный гиперпаратиреоз в России по данным регистра. Проблемы эндокринологии 2019;65(50):300–10. DOI:10.14341/probl10126.; Yeh M.W., Ituarte P.H.G., Zhou H.C. et al. Incidence and prevalence of primary hyperparathyroidism in a racially mixed population. J Clin Endocrin Metab 2013;98(3):1122–9. DOI:10.1210/jc.2012-4022.; Sudhaker D. Epidemiology of parathyroid disorders. Best Pract Res Clin Endocrinol Metab 2018;32(6):773–80. DOI:10.1016/j.beem.2018.12.003.; Слащук К.Ю., Дегтярев М.В., Румянцев П.О. и др. Методы визуализации околощитовидных желез при первичном гиперпаратиреозе. Обзор литературы. Эндокринная хирургия 2019;13(4):153–74. DOI:10.14341/serg12241.; Cheung K., Wang T.S., Farrokhyar F. et al. A meta-analysis of preoperative localization techniques for patients with primary hyperparathyroidism. Ann Surg Oncol 2012;19(2):577–83.; Kluijfhout W.P., Pasternak J.D., Beninato T. et al. Diagnostic performance of computed tomography for parathyroid adenoma localization; a systematic review and meta-analysis. Eur J Radiol 2017;88:117–28. DOI:10.1016/j.ejrad.2017.01.004.; Baj J., Sitarz R., Łokaj M. et al. Preoperative and intraoperative methods of parathyroid gland localization and the diagnosis of parathyroid adenomas. Molecules 2020;25(7):1724. DOI:10.3390/molecules25071724.; Lombardi C.P., Raffaelli M., Traini E. et al. Video-assisted minimally invasive parathyroidectomy: benefits and long-term results. World J Surg 2009;33(11):2266. DOI:10.1007/s00268-009-9931-7.; Suliburk J.W., Sywak M.S., Sidhu S.B., Delbridge L.W. 1000 minimally invasive parathyroidectomies without intra-operative parathyroid hormone measurement: lessons learned. ANZ J Surg 2011;81(5):362–5. DOI:10.1111/j.1445-2197.2010.05488.x.; Udelsman R., Lin Z., Donovan P. et al. The superiority of minimally invasive parathyroidectomy based on 1650 consecutive patients with primary hyperparathyroidism. Ann Surg 2011;253(3):585–91. DOI:10.1097/SLA.0b013e318208fed9.; Venkat R., Kouniavsky G., Tufano R.P. et al. Long-term outcome in patients with primary hyperparathyroidism who underwent minimally invasive parathyroidectomy. World J Surg 2012;36(1):55–60. DOI:10.1007/s00268-011-1344-8.; Wilhelm S.M., Wang T.S., Ruan D.T. et al. The American Association of Endocrine Surgeons Guidelines for Definitive Management of Primary Hyperparathyroidism. JAMA Surg 2016;151(10):959–68. DOI:10.1001/jamasurg.2016.2310.; Lorberboym M., Ezri T., Schachter P.P. Preoperative technetium Tc 99m sestamibi SPECT imaging in the management of primary hyperparathyroidism in patients with concomitant multinodular goiter. Arch Surg 2005;140(7):656–60. DOI:10.1001/archsurg.140.7.656.; Shafiei B., Hoseinzadeh S., Fotouhi F. et al. Preoperative99m Tc-sestamibi scintigraphy in patients with primary hyperparathyroidism and concomitant nodular goiter: comparison of SPECT-CT, SPECT, and planar imaging. Nucl Med Commun 2012;33(10):1070–6. DOI:10.1097/MNM.0b013e32835710b6.; https://ogsh.abvpress.ru/jour/article/view/710

  17. 17
    Academic Journal

    Συνεισφορές: ELAKPI, The study was supported by EU-financed Horizon-2020 project AMMODIT

    Πηγή: Наукові вісті КПІ; № 1 (2017): ; 61-68
    Научные вести КПИ; № 1 (2017): ; 61-68
    Research Bulletin of the National Technical University of Ukraine "Kyiv Politechnic Institute"; № 1 (2017): Engineering; 61-68

    Περιγραφή αρχείου: application/pdf

  18. 18
    Academic Journal

    Πηγή: Russian Sklifosovsky Journal "Emergency Medical Care"; Том 9, № 4 (2020); 545-550 ; Журнал им. Н.В. Склифосовского «Неотложная медицинская помощь»; Том 9, № 4 (2020); 545-550 ; 2541-8017 ; 2223-9022 ; 10.23934/2223-9022-2020-9-4

    Περιγραφή αρχείου: application/pdf

    Relation: https://www.jnmp.ru/jour/article/view/1001/832; https://www.jnmp.ru/jour/article/view/1001/898; Алехин Д.И., Фокин А.А. Новый метод лечения хронической ишемии конечностей с преимущественным поражением дисталь- ного артериального русла. Вестник хирургии им. И.И. Грекова. 2004;(4):24–28.; Conte MS, Bradbury AW, Kolh P, White JV, Dick F, Fitridge R, et al. Global vascular guidelines on the management of chronic limb-threatening ischemia. Eur J Vasc Endovasc Surg. 2019;58(1S):S1–S109.e33. PMID: 31182334 https://doi.org/10.1016/j.ejvs.2019.05.006; Norgen L, Hiatt WR, Dorandy JA, Nehler MR, Harris KA, Fowkes FG. Inter-Society Consensus for the Management of Peripheral Arterial Disease (TASC II). J Vasc Surg. 2007;45(SupplS):S5–S67. PMID: 17223489 https://doi.org/10.1016/j.jvs.2006.12.037; Гаибов А.Д., Калмыков Е.Л., Камолов А.Н. Ампутации нижних конечностей при их хронической критической ишемии (обзор литературы). Кардиология и сердечно-сосудистая хирургия. 2009;(2):40–46.; Степанов Н.Г. Качество жизни пациента и ее продолжительность после ампутации. Ангиология и сосудистая хирургия. 2004;(4):13–16.; Baars E, Emmelot C, Geertzen J, Rommers GM. Lower leg amputation due to critical limb ischemia: morbidity, mortality and rehabilitation potential. Nad Tijdschr Geneeskd. 2007;151(49):2751; author reply 2751–2752. PMID: 18225801; Покровский А.В., Гаврилюк А.Л. Состояние сосудистой хирургии в 2018 г. Ангиология и сосудистая хирургия. 2019;25(2), Прил.: Внедрение высоких технологий в сосудистую хирургию и флебологию: тезисы докл. XXXV междунар. конф., (Санкт-Петер- бург, 21–23 июня 2019 г.): 33–36. URL: http://www.angiolsurgery.org/society/situation/2018.pdf [Дата обращения 30 октября 2020]; Максимов А.В., Гайсина Э.А., Ситдикова Д.И., Нуретдинов Р.М. Отдаленные результаты лечения пациентов с критической ишемией конечностей. Практическая медицина. 2016;(4–1):120–122.; Барбараш Л.С., Золоев Л.С., Чеченин Л.С., Васильченко Е.М., Коваль О.А., Литвиновский С.В., и др. Динамика показателей числа больших ампутаций и летальности при заболеваниях артерий конечностей в период 1993–2007 годов. Результаты популяционного исследования. Ангиология и сосудистая хирургия. 2010;16(3):20–26.; Лисин С.В. Санирующие и пластические вмешательства у больных с хронической артериальной недостаточностью нижней конечности IV стадии. Ангиология и сосудистая хирургия. 2007;13(1):133–136.; Малахов Ю.С., Аверьянов Д.А., Иванов А.В. Анализ результатов хирургического лечения больных с гнойно-некротическими поражениями нижних конечностей ишемического генеза. Ангиология и сосудистая хирургия. 2009;15(1):133–137.; https://www.jnmp.ru/jour/article/view/1001

  19. 19
    Academic Journal

    Πηγή: PULMONOLOGIYA; Том 31, № 5 (2021); 588-597 ; Пульмонология; Том 31, № 5 (2021); 588-597 ; 2541-9617 ; 0869-0189

    Περιγραφή αρχείου: application/pdf

    Relation: https://journal.pulmonology.ru/pulm/article/view/2879/2283; Hamming I., Timens W., Bulthuis M.L.C. et al. Tissue distribution of ACE2 protein, the functional receptor for SARS coronavirus. A first step in understanding SARS pathogenesis. J. Pathol. 2004; 203 (2): 631–637. DOI:10.1002/path.1570.; Chen L., Li X., Chen M. et al. The ACE2 expression in human heart indicates new potential mechanism of heart injury among patients infected with SARS-CoV-2. Cardiovasc. Res. 2020; 116 (6): 1097–1100. DOI:10.1093/cvr/cvaa078.; Bombardini T., Picano E. Angiotensin-converting enzyme 2 as the molecular bridge between epidemiologic and clinical features of COVID-19. Can. J. Cardiol. 2000; 36 (5): 784.e1–784.e2. DOI:10.1016/j.cjca.2020.03.026.; Li X.C., Zhang J., Zhuo J.L. The vasoprotective axes of the renin-angiotensin system: physiological relevance and therapeutic implications in cardiovascular, hypertensive and kidney diseases. Pharmacol. Res. 2017; 125 (Pt A): 21–38. DOI:10.1016/j.phrs.2017.06.005.; Zhang H., Penninger J.M., Li Y. et al. Angiotensin-converting enzyme 2 (ACE2) as a SARS-CoV-2 receptor: molecular mechanisms and potential therapeutic target. Intensive Care Med. 2020; 46 (4): 586–590. DOI:10.1007/s00134-020-05985-9.; Hoffmann M., Kleine-Weber H., Schroeder S. SARS-CoV-2 cell entry depends on ACE2 and TMPRSS2 and is blocked by a clinically proven protease inhibitor. Cell. 2020; 181 (2): 271–280.e278. DOI:10.1016/j.cell.2020.02.052.; Raj V.S. Mou H., Smits S.L. et al. Dipeptidyl peptidase 4 is a functional receptor for the emerging human coronavirus-EMC. Nature. 2013; 495 (7440): 251–254. DOI:10.1038/nature12005.; Huertas A., Montani D., Savale L. et al. Endothelial cell dysfunction: a major player in SARS-CoV-2 infection (COVID-19)? Eur. Respir. J. 2020; 56 (1): 2001634. DOI:10.1183/13993003.01634-2020.; Петрищев Н.Н., Халепо О.В., Вавиленкова Ю.А., Власов Т.Д. COVID-19 и сосудистые нарушения (обзор литературы). Регионарное кровообращение и микроциркуляция. 2020; 19 (3): 90–98. DOI:10.24884/1682-6655-2020-19-3-90-98.; Teuwen L.A., Geldhof V., Pasut A., Carmeliet P. COVID-19: the vasculature unleashed. Nat. Rev. Immunol. 2020; 20 (7): 389–391. DOI:10.1038/s41577-020-0343-0.; Xu P., Zhou Q., Xu J. Mechanism of thrombocytopenia in COVID-19 patients. Ann. Hematol. 2020; 99 (6): 1205–1208. DOI:10.1007/s00277-020-04019-0.; Воробьев П.А., Момот А.П., Зайцев А.А. и др. Синдром диссеминированного внутрисосудистого свертывания крови при инфекции COVID-19. Терапия. 2020; (5): 25–34. DOI:10.18565/therapy.2020.5.25-34.; Галстян Г.М. Коагулопатия при COVID-19. Пульмонология. 2020; 30 (5): 645–657. DOI:10.18093/0869-0189-2020-30-5-645-657.; Hunt B., Retter A., McClintock C. Practical guidance for the prevention of thrombosis and management of coagulopathy and disseminated intravascular coagulation of patients infected with COVID-19. Thrombosis UK. March 25, 2020. Available at: https://thrombosisuk.org/downloads/T&H%20and%20COVID.pdf; Ackermann M., Verleden S.E., Kuehnel M. et al. Pulmonary vascular endothelialitis, thrombosis, and angiogenesis in Covid-19. N. Engl. J. Med. 2020; 383 (2): 120–128. DOI:10.1056/NEJMoa2015432.; Устюжанин Д.В., Белькинд М.Б., Гаман С.А. и др. КТ-кар- тина коронавирусной болезни: результаты по итогам работы COVID-центра на базе НМИЦ кардиологии. Российский электронный журнал лучевой диагностики. 2020; 10 (2): 27–38. DOI:10.21569/2222-7415-2020-10-2-27-38.; Agricola E., Beneduce A., Esposito A. et al. Heart and lung multimodality imaging in COVID-19. JACC Cardiovasc. Imaging. 2020; 13 (8): 1792–1808. DOI:10.1016/j.jcmg.2020.05.017.; Shi H., Han X., Jiang N. et al. Radiological findings from 81 patients with COVID-19 pneumonia in Wuhan, China: a descriptive study. Lancet Infect. Dis. 2020; 20 (4): 425–434. DOI:10.1016/S1473- 3099(20)30086-4.; Петриков С.С., Попова И.Е., Муслимов Р.Ш. и др. Возможности компьютерной томографии в оценке степени поражения легких у больных COVID-19 в условиях динамического наблюдения. Российский электронный журнал лучевой диагностики. 2020; 10 (2): 14–26. DOI:10.21569/2222-7415-2020-10-2-14-26.; Martini R. The compelling arguments for the need of microvascular investigation in COVID-19 critical patients. Clin. Hemorheol. Microcirc. 2020; 75 (1): 27–34. DOI:10.3233/CH-200895.; Goshua G., Pine A.B., Meizlish M.L. et al. Endotheliopathy in COVID-19-associated coagulopathy: evidence from a single-centre, cross-sectional study. Lancet Haematol. 2020; 7 (8): e575–582. DOI:10.1016/S2352-3026(20)30216-7.; Sun P., Qie S., Liu Z. et al. Clinical characteristics of hospitalized patients with SARS-CoV-2 infection: A single arm meta-analysis. J. Med. Virol. 2020; 92 (6): 612–617. DOI:10.1002/jmv.25735.; Ngai J.C., Ko F.W., Ng S.S. et al. The long-term impact of severe acute respiratory syndrome on pulmonary function, exercise capacity and health status. Respirology. 2010; 15 (3): 543–550. DOI:10.1111/j.1440-1843.2010.01720.x.; Hui D.S., Joynt G.M., Wong K.T. et al. Impact of severe acute respiratory syndrome (SARS) on pulmonary function, functional capacity and quality of life in a cohort of survivors. Thorax. 2005; 60 (5): 401–409. DOI:10.1136/thx.2004.030205.; Tilocca B., Soggiu A., Sanguinetti M. et al. Comparative computational analysis of SARS-CoV-2 nucleocapsid protein epitopes in taxonomically related coronaviruses. Microbes. Infect. 2020; 22 (4-5): 188–194. DOI:10.1016/j.micinf.2020.04.002.; Zuo W., Zhao X., Chen Y.G. SARS coronavirus and lung fibrosis. In: Lal S. (ed.). Molecular biology of the SARS-coronavirus. Berlin, Heidelberg: Springer; 2010: 247–258. DOI:10.1007/978-3-642-03683-5_15.; Bell T.J., Brand O.J., Morgan D.J. et al. Defective lung function following influenza virus is due to prolonged, reversible hyaluronan synthesis. Matrix Biol. 2019; 80: 14–28. DOI:10.1016/j.matbio.2018.06.006.; Wang J., Wang B.J., Yang J.C. et al. [Research advances in the mechanism of pulmonary fibrosis induced by coronavirus disease 2019 and the corresponding therapeutic measures]. Zhonghua Shao Shang Za Zhi. 2020; 36 (8): 691–697. DOI:10.3760/cma.j.cn501120-20200307-00132 (in Chinese).; He X., Zhang L., Ran Q. et al. Integrative bioinformatics analysis provides insight into the molecular mechanisms of 2019-nCoV. MedRxiv. 2020 [Preprint. Posted: February 05, 2020]. DOI:10.1101/2020.02.03.20020206.; https://journal.pulmonology.ru/pulm/article/view/2879

  20. 20
    Academic Journal

    Συνεισφορές: The study was performed with the support of Council on Grants of the President of the Russian Federation (Grant No. MK-813.2019.7)., Обзор подготовлен в рамках выполнения гранта Совета по грантам президента Российской Федерации (№ МК-1347.2020.7).

    Πηγή: Bulletin of Siberian Medicine; Том 20, № 1 (2021); 178-189 ; Бюллетень сибирской медицины; Том 20, № 1 (2021); 178-189 ; 1819-3684 ; 1682-0363 ; 10.20538/1682-0363-2021-20-1

    Περιγραφή αρχείου: application/pdf

    Relation: https://bulletin.tomsk.ru/jour/article/view/4292/2948; https://bulletin.tomsk.ru/jour/article/view/4292/2974; Kajander S.A., Joutsiniemi E., Saraste M., Pietila M., Ukkonen H., Saraste A., Sipila H.T., Teras M., Maki M., Airaksinen J., Hartiala J., Knuuti J. Clinical value of absolute quantification of myocardial perfusion with 15o- water in coronary artery disease. Circ. Cardiovasc. Imaging. 2011; 4 (6): 678–684. DOI:10.1161/CIRCIMAGING.110.960732.; Kaufmann P.A., Camici P.G. Myocardial blood flow measurement by PET: Technical aspects and clinical applications. J. Nucl. Med. 2005; 46 (1): 75–88.; Kassab G.S., Lin D.H., Fung Y.C. Morphometry of pig coronary venous system. Am. J. Physiol. 1994; 267 (6 Pt 2): H2100–H2113. DOI:10.1152/ajpheart.1994.267.6.H2100.; Dawson D., Rinkevich D., Belcik T., Jayaweera A.R., Rafter P., Kaul S., Wei K. Measurement of myocardial blood flow velocity reserve with myocardial contrast echocardiography in patients with suspected coronary artery disease: comparison with quantitative gated Technetium 99m-sestamibi single photon emission computed tomography. J. Am. Soc. Echocardiogr. 2003; 16 (11): 1171–1177. DOI:10.1067/S0894-7317(03)00646-1.; Dodge J.T. Jr., Brown B.G., Bolson E.L., Dodge H.T. Lumen diameter of normal human coronary arteries. Influence of age, sex, anatomic variation, and left ventricular hypertrophy or dilation. Circulation. 1992; 86 (1): 232–246. DOI:10.1161/01.cir.86.1.232.; Herrmann J., Kaski L.C., Lerman A. Coronary Microvascular dysfunction in the clinical setting: from mystery to reality. Eur. Heart J. 2012; 33 (22): 2771–2783. DOI:10.1093/eurheartj/ehs246.; Nijjer S.S., de Waard G.A., Sen S., van de Hoef T.P., Petraco R., Echavarría-Pinto M., van Lavieren M.A., Meuwissen M., Danad I., Knaapen P., Escaned J., Piek J.J., Davies J.E., van Royen N. Coronary pressure and flow relationships in humans: phasic analysis of normal and pathological vessels and the implications for stenosis assessment: a report from the Iberian-Dutch-English (IDEAL) collaborators. Eur. Heart J. 2016; 37 (26): 2069–2080. DOI:10.1093/eurheartj/ehv626.; Westerhof N., Boer C., Lamberts R.R., Sipkema P. Cross-talk between cardiac muscle and coronary vasculature. Physiol. Rev. 2006; 86 (4): 1263–308. DOI:10.1152/physrev.00029.2005.; Marcus M.L., Harrison D.G., White C.W., Hiratzka L.F. Assessing the physiological significance of coronary obstruction in man. Can. J. Cardiol. 1986; (Suppl. A): 195A–199A.; Lamping K.G., Kanatsuka H., Eastham C.L., Chilian W.M., Marcus M.L. Nonuniform vasomotor responses of the coronary microcirculation to serotonin and vasopressin. Circ. Res. 1989; 65 (2): 343–351. DOI:10.1161/01.res.65.2.343.; Kanatsuka H., Lamping K.G., Eastham C.L., Marcus M.L. Heterogeneous changes in epimyocardial microvascular size during graded coronary stenosis. Evidence of the microvascular site for autoregulation. Circ. Res. 1990; 66: 389–396. DOI:10.1161/01.res.66.2.389.; Berne R.M. Cardiac nucleotides in hypoxia: possible role in regulation of coronary blood flow. Am. J. Physiol. 1963; 204: 317–322. DOI:10.1152/ajplegacy.1963.204.2.317.; Case R.B., Greenberg H. The Response of сanine сoronary vascular resistance to local alterations in coronary arterial P CO2. Circ. Res. 1976; 39 (4): 558–566. DOI:10.1161/01.res.39.4.558.; Ishizaka H., Kuo L. Acidosis-induced coronary arteriolar dilation is mediated by ATP-sensitive potassium channels in vascular smooth muscle. Circ. Res. 1996; 78 (1): 50–57. DOI:10.1161/01.res.78.1.50.; Feigl E.O. Berne’s adenosine hypothesis of coronary blood flow control. Am. J. Physiol. Heart Circ. Physiol. 2004; 287 (5): H1891–1894. DOI:10.1152/classicessays.00003.2004.; Kuo L., Davis M.J., Chilian W.M. Myogenic activity in isolated subepicardial and subendocardial coronary arterioles. Am. J. Physiol. 1988; 255 (6–2): H1558–1562. DOI:10.1152/ajpheart.1988.255.6.H1558.; Cornelissen A.J., Dankelman J., Van Bavel E., Spaan J.A. Balance between myogenic, flow-dependent, and metabolic flow control in coronary arterial tree: a model study. Am. J. Physiol. Heart Circ. Physiol. 2002; 282(6):H2224–H2237. DOI:10.1152/ajpheart.00491.2001.; Lundberg J.O., Gladwin M.T., Weitzberg E. Strategies to increase nitric oxide signalling in cardiovascular disease. Nat. Rev. Drug. Discov. 2015; 14 (9): 623–641. DOI:10.1038/nrd4623.; Duncker D.J., Bache R.J. Regulation of coronary blood flow during exercise. Physiol. Rev. 2008; 88 (3): 1009–1086. DOI:10.1152/physrev.00045.2006.; Camm J.A., Luscher T.F., Serruys P.W. The ESC textbook of cardiovascular medicine. 2nd ed. Oxford: Oxford University Press, 2009: 1398.; Camici P.G., Rimoldi O.E. The сlinical value of myocardial blood flow measurement. J. Nucl. Med. 2009; 50 (7): 1076–1087. DOI:10.2967/jnumed.108.054478.; Gould K.L., Lipscomb K., Hamilton G.W. Physiologic basis for assessing critical coronary stenosis. Instantaneous flow response and regional distribution during coronary hyperemia as measures of coronary flow reserve. Am. J. Cardiol. 1974; 33 (1): 87–94. DOI:10.1016/0002-9149(74)90743-7.; Lee J.M., Hwang D., Park J., Zhang J., Tong Y., Kim C.H., Bang J.I., Suh M., Paeng J.C., Cheon G.J., Koo B.K. Exploring coronary circulatory response to stenosis and its association with invasive physiologic indexes using absolute myocardial blood flow and coronary pressure. Circulation. 2017; 136 (19): 1798–1808. DOI:10.1161/CIRCULATIONAHA.117.029911.; Heymann M.A., Payne B.D., Hoffman J.I., Rudolph A.M. Blood flow measurements with radionuclide-labeled microspheres. Prog. Cardiovasc. Dis. 1977; 20 (1): 55–79. DOI:10.1016/s0033-0620(77)80005-4.; Prinzen F.W., Glenny R.W. Developments in non- radioactive microsphere techniques for blood flow measurement. Cardiovasc. Res. 1994; 28 (10): 1467–1475. DOI:10.1093/cvr/28.10.1467.; Bassingthwaighte J.B., Malone M.A., Moffett T.C., King R.B., Chan I.S., Link J.M., Krohn K.A. Molecular and particulate depositions for regional myocardial flows in sheep. Circ. Res. 1990; 66 (5): 1328–1344. DOI:10.1161/01.res.66.5.1328.; Austin R.E., Hauck W.W., Aldea G.S., Flynn A.E., Coggins D.L., Hoffman J.I. Quantitating error in blood flow measurements with radioactive microspheres. Am. J. Physiol. 1989; 257 (1 Pt 2): H280–H288. DOI:10.1152/ajpheart.1989.257.1.H280.; Ashburn W.L., Braunwald E., Simon A.L., Peterson K.L., Gault J.H. Myocardial perfusion imaging with radioactive-labeled par tides injected directly into the coronary circulation of patients with coronary artery disease. Circulation. 1971; 44: 851–865. DOI:10.1161/01.cir.44.5.851.; Чорголиани Т.Н., Грацианский H.A., Будницкий В.А. Микроциркуляция миокарда по данным сцинтиграфии с меченными микросферами. Медицинская радиология. 1989; 2 (34): 17–21.; Gould K.L., Johnson N.P., Bateman T.M., Beanlands R.S., Bengel F.M., Bober R., Camici P.G., Cerqueira M.D.; Chow B.J.W., Di Carli M.F., Dorbala S., Gewirtz H., Gropler R.J., Kaufmann P.A., Knaapen P., Knuuti J., Merhige M.E., Rentrop K.P., Ruddy T.D., Schelbert H.R., Schindler T.H., Schwaiger M., Sdringola S., Vitarello J., Williams K.A.Sr., Gordon D., Dilsizian V., Narula J. Anatomic versus physiologic assessment of coronary artery disease: Role of coronary flow reserve, fractional flow reserve, and positron emission tomography imaging in revascularization decision-making. J. Am. Coll. Cardiol. 2013: 62 (18): 1639– 1653. DOI:10.1016/j.jacc.2013.07.076.; Бокерия Л.А., Асланиди И.П., Шурупова И.В., Чернова А.А. Значение совмещенной стресс-ПЭТ/КТ миокарда с контрастным усилением коронарных артерий при обследовании пациентов с верифицированной и предполагаемой ишемической болезнью сердца. Бюллетень НЦССХ им. А.Н. Бакулева РАМН «Сердечно-сосудистые заболевания». 2016; 17 (4): 4–11.; Knaapen P. Quantitative myocardial blood flow imaging: not all flow is equal. Eur. J. Nucl. Med. Mol. Imaging. 2014; 41 (1): 116–118. DOI:10.1007/s00259-013-2585-6.; Tio R.A., Dabeshlim A., Siebelink H.M. de Sutter J., Hillege H.L., Zeebregts C.J., Dierckx R.A., van Veldhuisen D.J., Zijlstra .F, Slart R.H. Comparison between the prognostic value of left ventricular function and myocardial perfusion reserve in patients with ischemic heart disease. J. Nucl. Med. 2009; 50 (2): 214–219. DOI:10.2967/jnumed.108.054395.; Herzog B.A., Husmann L., Valenta I., Gaemperli O., Siegrist P.T., Tay F.M., Burkhard N., Wyss C.A., Kaufmann P.A. Long-term prognostic value of 13N-ammonia myocardial perfusion positron emission tomography added value of coronary flow reserve. J. Am. Coll. Cardiol. 2009; 54 (2): 150–156. DOI:10.1016/j.jacc.2009.02.069.; Fukushima K., Javadi M.S., Higuchi T., Lautamaki R., Merrill J., Nekolla S.G., Bengel F.M. Prediction of short-term cardiovascular events using quantification of global myocardial flow reserve in patients referred for clinical 82Rb PET perfusion imaging. J. Nucl. Med. 2011; 52 (5): 726–732. DOI:10.2967/jnumed.110.081828.; Ziadi M.C., Dekemp R.A., Williams K.A., Guo A., Chow B.J., Renaud J.M., Ruddy T.D., Sarveswaran N., Tee R.E., Beanlands R.S. Impaired myocardial flow reserve on rubidium-82 positron emission tomography imaging predicts adverse outcomes in patients assessed for myocardial ischemia. J. Am. Coll. Cardiol. 2011; 58 (7): 740–748. DOI:10.1016/j.jacc.2011.01.065.; Murthy V.L., Naya M., Foster C.R., Hainer J., Gaber M., Di Carli G., Blankstein R., Dorbala S., Sitek A., Pencina M.J., Di Carli M.F. Improved cardiac risk assessment with noninvasive measures of coronary flow reserve. Circulation. 2011; 124 (20): 2215–2224. DOI:10.1161/CIRCULATIONAHA.111.050427.; Preliminary report on supply of radioisotopes for medical use and current developments in nuclear medicine; rev. 8. Luxembourg: SANCO/C/3/HWD, 2009; 67.; Iida H., Eberl S., Kim K., Tamura Y., Ono Y., Nakazawa M., Sohlberg A., Zeniya T., Hayashi T., Watabe H. Absolute quantitation of myocardial blood flow with 201Tl and dynamic SPECT in canine: optimisation and validation of kinetic modelling. Eur. Nucl. Med. Mol. Imaging. 2008; 35 (5): 896–905. DOI:10.1007/s00259-007-0654-4.; Gullberg G.T., Di Bella E.V., Sinusas A.J. Estimation of coronary flow reserve: can SPECT compete with other modalities? J. Nucl. Cardiol. 2001; 8 (5): 620–625. DOI:10.1067/mnc.2001.118121.; Yoshinori I., Chietsugu K., Kazuyuki N., Kuge Y., Furuyama H., Morita K., Kohya T., Kitabatake A., Tamaki N. Estimation of myocardial blood flow and myocardial flow reserve by 99mTc-sestamibi imaging: comparison with the results of [15O]H2O PET. EJNMMI. 2003; 30 (2): 281–287. DOI:10.1007/s00259-002-1031-y.; Storto G., Cirillo P., Vicario M.L., Pellegrino T., Sorrentino A.R., Petretta M., Galasso G., De Sanctis V., Piscione F., Cuocolo A. Estimation of coronary flow reserve by Tc-99m sestamibi imaging in patients with coronary artery disease: Comparison with the results of intracoronary Doppler technique. J. Nucl. Cardiol. 2004; 11 (6): 682–688. DOI:10.1016/j.nuclcard.2004.08.007/; Hsu B., Hu L.H., Yang B.H., Chen L.C., Chen Y.K., Ting C.H., Hung G.U., Huang W.S., Wu T.C. SPECT myocardial blood flow quantitation toward clinical use: a comparative study with (13)N-Ammonia PET myocardial blood flow quantitation. Eur. J. Nucl. Med. Mol. Imaging. 2017; 441 (1): 17–28. DOI:10.1007/s00259-016-3491-5.; Tsukamoto T., Ito Y., Noriyasu K., Morita K., Katoh C., Okamoto H., Tamaki N. Quantitative assessment of regional myocardial flow reserve using Tc-99m-sestamibi imaging comparison with results of 15O-water PET. Circ. J. 2005; 69 (2): 188–193. DOI:10.1253/circj.69.188.; Slomka P., Berman D.S., Germano G. Myocardial blood flow from SPECT. J. Nucl. Cardiol. 2017; 24 (1): 278–281. DOI:10.1007/s12350-015-0386-y.; Imbert L., Poussier S., Franken P.R., Songy B., Verger A., Morel O., Wolf D., Noel A, Karcher G., Marie P.Y. Compared performance of high-sensitivity cameras dedicated to myocardial perfusion SPECT: a comprehensive analysis of phantom and human images. J. Nucl. Med. 2012; 53 (12): 1897–1903. DOI:10.2967/jnumed.112.107417.; Klein R., Hung G.U., Wu T.C., Huang W.S., Li D., de Kemp R.A., Hsu B. Feasibility and operator variability of myocardial blood flow and reserve measurements with 99mTc-sestamibi quantitative dynamic SPECT/CT imaging. J. Nucl. Cardiol. 2014; 21 (6): 1075–1088. DOI:10.1007/s12350-014-9971-8.; Hsu B., Chen F.C., Wu T.C., Huang W.S., Hou P.N., Chen C.C., Hung G.U. Quantitation of myocardial blood flow and myocardial flow reserve with 99mTc-sestamibi dynamic SPECT/CT to enhance detection of coronary artery disease. Eur. J. Nucl. Med. Mol. Imaging. 2014; 41 (12): 2294–2306. DOI:10.1007/s00259-014-2881-9.; Wells R.G., Timmins R., Klein R., Lockwood J., Marvin B., deKemp R.A., Wei L., Ruddy T.D. Dynamic SPECT measurement of absolute myocardial blood flow in a porcine model. J. Nucl. Med. 2014; 55 (10): 1685–1691. DOI:10.2967/jnumed.114.139782.; Ben-Haim S., Murthy V.L., Breault C., Allie R., Sitek A., Roth N., Fantony J., Moore S.C., Park M.A., Kijewski M., Haroon A., Slomka P., Erlandsson K., Baavour R., Zilberstien Y., Bomanji J., Di Carli M.F. Quantification of Myocardial Perfusion Reserve Using Dynamic SPECT Imaging in Humans: A Feasibility Study. J. Nucl. Med. 2013; 54 (6): 873–879. DOI:10.2967/jnumed.112.109652.; Bouallègue F.B., Roubille F., Lattuca B., Cung T.T., Macia J.C., Gervasoni R., Leclercq F., Mariano-Goulart D. SPECT myocardial perfusion reserve in patients with multivessel coronary disease: correlation with angiographic findings and invasive fractional flow reserve measurements. J. Nucl. Med. 2015; 56 (11): 1712–1717. DOI:10.2967/jnumed.114.143164.; Nkoulou R., Fuchs T.A., Pazhenkottil A.P., Kuest S.M., Ghadri J.R., Stehli J., Fiechter M., Herzog B.A., Gaemperli O., Buechel R.R., Kaufmann P.A. Absolute myocardial blood flow and flow reserve assessed by gated spect with cadmium-zinc-telluride detectors using 99mTc-Tetrofosmin: Head-to-head comparison with 13N-Ammonia PET. J. Nucl. Med. 2016; 57 (12): 1887–1892. DOI:10.2967/jnumed.115.165498.; Fang Y.D., Liu Y.C., Ho K.C., Kuo F.C., Yang C.F., Yen T.C., Hsieh I.C. Single-scan rest/stress imaging with Tc-Sestamibi and cadmium zinc telluride-based SPECT for hyperemic flow quantification: A feasibility study evaluated with cardiac magnetic resonance imaging. PLoS One. 2017; 12 (8): e0183402. DOI:10.1371/journal.pone.0183402.; Miyagawa M., Nishiyama Y., Uetani T., Ogimoto A., Ikeda S., Ishimura H., Watanabe E., Tashiro R., Tanabe Y., Kido T., Kurata A., Mochizuki T. Estimation of myocardial flow reserve utilizing an ultrafast cardiac SPECT: Comparison with coronary angiography, fractional flow reserve, and the SYNTAX score. Int. J. Cardiol. 2017; 244: 347–353. DOI:10.1016/j.ijcard.2017.06.012.; Wells R.G., Marvin B., Poirier M., Renaud J., deKemp R.A., Ruddy T.D. Optimization of SPECT measurement of myocardial blood flow with corrections for attenuation, motion, and blood binding compared with PET. J. Nucl. Med. 2017; 58 (12): 2013–2019. DOI:10.2967/jnumed.117.191049.; Agostini D., Roule V., Nganoa C., Roth N., Baavour R., Parienti J.J., Beygui F., Manrique A. First validation of myocardial flow reserve assessed by dynamic 99mTc-sestamibi CZT-SPECT camera: head to head comparison with 15O-water PET and fractional flow reserve in patients with suspected coronary artery disease. The WATERDAY study. Eur. J. Nucl. Med. Mol. Imaging. 2018; 45 (7): 1079–1090. DOI:10.1007/s00259-018-3958-7.; Zavadovsky K.V., Mochula A.V., Boshchenko A.A., Vrublevsky A.V., Baev A.E., Krylov A.L., Gulya M.O., Nesterov E.A., Liga R., Gimelli A. Absolute myocardial blood flows derived by dynamic CZT scan vs invasive fractional flow reserve: Correlation and accuracy. J. Nucl. Cardiol. 2019. DOI:10.1007/s12350-019-01678-z.; Мочула А.В., Завадовский К.В., Андреев С.Л., Лишманов Ю.Б. Динамическая однофотонная эмиссионная компьютерная томография миокарда как метод идентификации многососудистого поражения коронарного русла. Вестник рентгенологии и радиологии. 2016; 97 (5): 289–295. DOI:10.20862/0042-4676-2016-97-5.; Завадовский К.В., Мишкина А.И., Мочула А.В., Лишманов Ю.Б. Методика устранения артефактов движения сердца при выполнении перфузионной сцинтиграфии миокарда. Российский электронный журнал лучевой диагностики. 2017; 7 (2): 56–64. DOI:10.21569/2222-7415-2017-7-2-56-64.; https://bulletin.tomsk.ru/jour/article/view/4292