-
1
-
2
-
3Academic Journal
Authors: Мартинова, Раїса
Source: Pedagogical Discourse; No 36 (2024): Pedagogical Discourse; 41-48 ; Dyskurs Pedagogichnyi; Nr 36 (2024): Dyskurs Pedagogichnyi; 41-48 ; Педагогический дискурс; № 36 (2024): Педагогічний дискурс; 41-48 ; Педагогічний дискурс; № 36 (2024): Педагогічний дискурс; 41-48 ; 2313-8769 ; 2309-9127 ; 10.31475/ped.dys.2024.36
Subject Terms: neurogenesis, neocortex, neural connections, intensification of the process of learning foreign languages, non-linguistic environment, нейрогенез, неокортекс, нейронні зв’язки, інтенсифікація процесу навчання іноземних мов, немовне середовище
File Description: application/pdf
Relation: http://ojs.kgpa.km.ua/index.php/peddiscourse/article/view/1225/1099; http://ojs.kgpa.km.ua/index.php/peddiscourse/article/view/1225
-
4Academic Journal
Source: Odesa National University Herald. Biology; Vol. 6 No. 1 (2001); 197-201
Вестник Одесского национального университета. Биология; Том 6 № 1 (2001); 197-201
Вісник Одеського національного університету. Біологія; Том 6 № 1 (2001); 197-201Subject Terms: afterhyperpolarizations, слідові гіперполяризації, неокортекс, neocortex, следовые гиперполяризации
File Description: application/pdf
Access URL: http://visbio.onu.edu.ua/article/view/261029
-
5Academic Journal
Authors: Изабелла Гершовна Силькис
Source: Интегративная физиология, Vol 3, Iss 1 (2022)
Subject Terms: произвольное внимание, синаптическая пластичность, дофамин, неокортекс, таламус, базальные ганглии, Physiology, QP1-981
File Description: electronic resource
-
6Academic Journal
Authors: Топольнік , Є. В., Денисенко , О. В., Дейнека , Ю. С., Железна, К. Г., Ільницка , Н. А., Фоміна , Ю. П.
Source: Odesa National University Herald. Biology; Vol. 6 No. 1 (2001); 197-201 ; Вестник Одесского национального университета. Биология; Том 6 № 1 (2001); 197-201 ; Вісник Одеського національного університету. Біологія; Том 6 № 1 (2001); 197-201 ; 2415-3125 ; 2077-1746
Subject Terms: слідові гіперполяризації, неокортекс, afterhyperpolarizations, neocortex, следовые гиперполяризации
File Description: application/pdf
Relation: http://visbio.onu.edu.ua/article/view/261029/257468; http://visbio.onu.edu.ua/article/view/261029
Availability: http://visbio.onu.edu.ua/article/view/261029
-
7Academic Journal
Source: ZHurnal «Patologicheskaia fiziologiia i eksperimental`naia terapiia». :30-38
Subject Terms: 0301 basic medicine, electron microscopy, apoptosis, острая ишемия, нейроны, necrosis, 03 medical and health sciences, белая крыса, 0302 clinical medicine, acute ischemia, неокортекс, световая, флуоресцентная, электронная микроскопия, некроз, апоптоз, neocortex, white rat, neurons, light microscopy, морфометрия, morphometry, fluorescent microscopy
-
8Academic Journal
Authors: D. B. Avdeev, V. A. Akulinin, S. S. Stepanov, A. Yu. Shoronova, L. M. Makarieva, A. V. Gorbunova, M. S. Korzhuk, M. V. Markelov, Д. Б. Авдеев, В. А. Акулинин, С. С. Степанов, А. Ю. Шоронова, Л. М. Макарьева, А. В. Горбунова, М. С. Коржук, М. В. Маркелова
Contributors: This study was supported by the Omsk State Medical University as part of the training and certification program for scientific and teaching staff., Данная работа выполнена при поддержке Омского государственного медицинского университета в рамках подготовки и аттестации научно-педагогических и научных кадров.
Source: General Reanimatology; Том 17, № 2 (2021); 55-71 ; Общая реаниматология; Том 17, № 2 (2021); 55-71 ; 2411-7110 ; 1813-9779
Subject Terms: крысы Wistar, bi-nucleated neurons, astroglia, microglia, immunohistochemistry, morphometry, Wistar rats, неокортекс, двуядерные нейроны, астроглия, микроглия, иммуногистохимия, морфометрия
File Description: application/pdf
Relation: https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/2053/1502; https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/2053/1503; Аврущенко М.Ш., Острова И.В. Постреанимационные изменения экспрессии мозгового нейротрофического фактора (BDNF): взаимосвязь с процессом гибели нейронов. Общая реаниматология. 2017; 13 (4): 6-21. DOI:10.15360/1813-97792017-4-6-21; Степанов С.С., Акулинин В.А., Авдеев Д.Б., Степанов А.С., Горбунова А.В. Структурно-функциональная реорганизация ядрышкового аппарата нейронов неокортекса, архикортекса и базальных ганглиев головного мозга белых крыс после 20-минутной окклюзии общих сонных артерий. Журнал анатомии и гистопатологии. 2018; 7 (4): 67-74. DOI:10.18499/2225-7357; Степанов А.С., Акулинин В.А., Степанов С.С., Авдеев Д.Б. Клеточные системы восстановления и утилизации поврежденных нейронов головного мозга белых крыс после 20-минутной окклюзии общих сонных артерий. Российский физиологический журнал им. И.М. Сеченова. 2017; 103 (10): 1135-1147.; Степанов А.С., Акулинин В.А., Мыцик А.В., Степанов С.С., Авдеев Д.Б. Нейро-глио-сосудистые комплексы головного мозга после острой ишемии. Общая реаниматология. 2017; 13 (6): 6-17. DOI:10.15360/1813-9779-2017-6-6-17; Oksanen M, Lehtonen, S., Jaronen, M., Goldsteins, G., Hamalainen R.H., Koistinaho J. Astrocyte alterations in neurodegenerative pathologies and their modeling in human induced pluripotent stem cell platforms. Cellular and Molecular Life Sciences. 2019; 76: 2739-2760. DOI:10.1007/s00018-019-03111-7; Сахарнова Т.А., Ведунова М.В., Мухина И.В. Нейротрофический фактор головного мозга (bdnf) и его роль в функционировании центральной нервной системы. Нейрохимия. 2012; 29 (4): 269-277.; Митрошина Е.В., Абогессименгане Б.Ж., Уразов М.Д., Хамрауй И., Мищенко Т.А., Астраханова Т.А., Щелчкова Н.А., Лапшин Р.Д., Шишкина Т.В., Белоусова И.И., Мухина И.В., Ведунова М.В. Адаптационная роль глиального нейротрофического фактора при ишемии головного мозга. Современные технологии в медицине. 2017; 9 (1): 68-77. DOI:10.17691/stm2017.9.1.08; Алексеева О.С., Кирик О.В., Гилерович Е.Г., Коржевский Д.Э. Микроглия головного мозга: происхождение, структура и функции. Эволюционной биохимии и физиологии. 2019; 55 (4): 231-241. DOI:10.1134/S0044452919040028; Калинина Ю.А., Гилерович Е.Г., Коржевский Д.Э. Астроциты и их участие в механизмах терапевтического действия мультипотентных мезенхимальных стромальных клеток при ишемическом повреждении головного мозга. Гены и клетки. 2019; 14 (1): 33-40. DOI:10.23868/201903004; Pekny M., Pekna M. Astrocyte reactivity and reactive astrogliosis: costs and benefits. Physiol Rev. 2014; 94: 1077-1098. DOI:10.1152/physrev.00041.2013; Cowan M., Petri Jr. W. A. Microglia: Immune regulators of neurodevelopment. Frontiers in immunology. 2018; 9: 2576. DOI:10.3389/fimmu.2018.02576; Chen Z., Zhong, D., Li, G. The role of microglia in viral encephalitis: a review. Journal of Neuroinflammation. 2019; 16: 76. DOI:10.1186/s12974-019-1443-2; Сотников О.С., Фрумкина Л.Е., Лактионова А.А., Парамонова Н.М., Новаковская С.А. Двуядерные нейроны: синцитиальное слияние или амитоз. Успехи физиологических наук. 2011; 42 (4): 76-89. PMID: 22145312; Сотников О.С., Фрумкина Л.Е., Новаковская С.А., Боголепов Н.Н. Слияние нейронов мозга у эмбрионов крыс. Морфология. 2011; 139 (2): 18-21. PMID: 21866800; Kemp K., Wilkins A., Scolding N. Cell fusion in the brain: two cells forward, one cell back. Acta Neuropathol. 2014; 128: 629-638. DOI:10.1007/s00401-0141303-1; Pereira M, Birtele M., Rylander Ottosson D. Direct reprogramming into interneurons: potential for brain repair. Cellular and Molecular Life Sciences. 2019; 76: 3953-3967. DOI:10.1007/s00018-019-03193-3; Свиридкина Н.Б., Шакова Ф.М., Комиссарова С.В., Дубровин И.П., Турыгина С.А., Романова Г.А., Баранова В.М. Морфофункциональное исследование действия антиортостатической гипокинезии при очаговом ишемическом повреждении коры головного мозга. Патологическая физиология и экспериментальная терапия. 2012; 2: 22-26. PMID: 22708403; Криштоп В.В., Никонорова В.Г., Румянцева Т.А. Изменения клеточного состава коры головного мозга у крыс с разным уровнем когнитивных функций при церебральной гипоперфузии. Вестник Российского университета дружбы народов. 2019; 8 (4): 22-29. DOI:10.18499/2225-7357-2019-8-4-22-29; Paltsyn A.A., Manukhina E.B., Goryacheva A.V., Downey H.F., Dubrovin I.P., Komissarova S.V, KubatievA.A. Intermittent hypoxia stimulates formation of binuclear neurons in brain cortex - A role of cell fusion in neuroprotection? Experimental Biology and Medicine. 2014; 239: 595-600. DOI:10.1177/1535370214523898; Пальцын А.А., Свиридкина Н.Б. О регенерации мозга (лекция II). Патогенез. 2018; 16 (1): 83-91. DOI:10.25557/2310-0435.2018.01.83-91; Моргун А.В., Малиновская Н.А., Комлева Ю.К., Лопатина О.Л., Кувачева Н.В., Панина Ю.А., Таранушенко Т.Е., Солончук Р.Ю., Салмина А.Б. Структурная и функциональная гетерогенность астроцитов головного мозга: роль в нейродегенерации и нейровоспалении. Бюллетень сибирской медицины. 2014; 13 (5): 138-148. DOI:10.20538/1682-0363-2014-5-138-148; Sankavaram S.R., Svensson M.A., Olsson T., Brundin L., Johansson C.B. Cell fusion along the anterior-posterior neuroaxis in mice with experimental autoimmune encephalomyelitis. PLoS One. 2015; 10 (7): e0133903. DOI:10.1371/journal.pone.0133903; Giordano-Santini R., Linton C., Hilliard M.A. Cell-cell fusion in the nervous system: Alternative mechanisms of development, injury, and repair. Semin. Cell Dev. Biol. 2016; 60: 146-54. DOI:10.1016/j.sem-cdb.2016.06.019; Kravtsov V., Oren-Suissa M., Podbilewicz B. The fusogen AFF-1 can rejuvenate the regenerative potential of adult dendritic trees by selffusion. Development. 2017; 144 (13): 2364-74. DOI:10.1242/dev.150037; Espejel S., Romero R., Alvarez-Buylla A. Radiation damage increases Purkinje neuron heterokaryons in neonatal cerebellum. Ann. Neurol. 2009; 66: 100-109. DOI:10.1002/ana.21670; Kemp K., Gray E., Wilkins A., Scolding N. Purkinje cell fusion and binucleate heterokaryon formation in multiple sclerosis cerebellum. Brain. 2012; 135: 2962-2972. DOI:10.1002/ana.21670; Юшков Б.Г. Клетки иммунной системы и регуляция регенерации. Бюллетень сибирской медицины. 2017; 16 (4): 94-105. DOI:10.20538/1682-0363-2017-4-94-105; Ackman J.B., Siddiqi F., Walikonis R.S., LoTurco J.J. Fusion of microglia with pyramidal neurons after retroviral infection. J. Neurosci. 2006; 26: 11413-11422. DOI:10.1523/JNEUROSCI.3340-06.2006; Сотников О.С. Ретикулярная теория Камилло Гольджи и перестройка электрических синапсов в синцитиальные перфорации. Известия РАН. Серия биологическая. 2019; 2: 127-143. DOI:10.1134/S0002332919020140; Авдеев Д.Б., Акулинин В.А., Степанов А.С., Горбунова А.В., Степанов С.С. Плейотропные ферменты апоптоза и синаптическая пластичность гиппокампа белых крыс после окклюзии общих сонных артерий. Сибирский медицинский журнал (г. Томск). 2018; 33 (3): 102-110. DOI:10.29001/2073-8552-2018-33-3-102-110; Боровиков В. Statistica. Искусство анализа данных на компьютере. Изд-во Питер; 2003: 2-ое изд.: 688.; Giordano-Santinia R., Kaulicha E., Galbraitha K.M., Ritchiea F.K., Wangb W., Lib Z., Hilliarda M.A. Fusogen-mediated neuron-neuron fusion disrupts neural circuit connectivity and alters animal behavior. PNAS. 2020; 117 (37): 23054-23065. DOI:10.1073/pnas.1919063117; Alvarez-Dolado M., Martinez-Losa M. Cell fusion and tissue regeneration. Adv. Exp. Med. Biol. 2011; 713: 161-175. DOI:10.1007/978-94-007-0763-4_10; Kosi N., Alic I., Kolacevic M., Vrsaljko N., Jovanov Milosevic N., Sobol M, Philimonenko A., Hozak P, Gajovic S., PochetR., Mitrecic D. Nop2 is expressed during proliferation of neural stem cells and in adult mouse and human brain. Brain Res. 2015; 1597: 65-76. DOI:10.1016/j.brainres.2014.11.040; Damisah E.C., Hill R.A., Rai A., Chen F., Ghosh S., Grutzendler J. Astrocytes and microglia play orchestrated roles and respect phagocytic territories during neuronal corpse removal in vivo. Science Advances. 2020; 6 (26): eaba3239. DOI:10.1126/sciadv.aba3239; https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/2053
-
9Academic Journal
Authors: S. S. Stepanov, D. V. Avdeev, V. A. Akulinin, A. Yu. Shoronova, L. M. Makarieva, M. S. Korzhuk, С. С. Степанов, Д. Б. Авдеев, В. А. Акулинин, А. Ю. Шоронова, Л. М. Макарьева, М. С. Коржук
Contributors: This research was supported by the Omsk State Medical University as part of the training and certification of the academic staff program., Данная работа выполнена при поддержке ФГБОУ ВО Омского государственного медицинского университета в рамках подготовки и аттестации научно-педагогических и научных кадров.
Source: General Reanimatology; Том 17, № 5 (2021); 111-128 ; Общая реаниматология; Том 17, № 5 (2021); 111-128 ; 2411-7110 ; 1813-9779
Subject Terms: крысы Wistar, acute ischemia, neocortex, neurons, astroglia, immunohistochemistry, morphometry, Wistar rats, острая ишемия, неокортекс, нейроны, астроглия, иммуногистохимия, морфометрия
File Description: application/pdf
Relation: https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/2138/1559; https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/2138/1560; Баширова А.Р., Сундуков Д.В., Бабкина А.С., Голубев М.А., Телипов И.Н. Морфометрические изменения клеток коры головного мозга при острых отравлениях клозапином в сочетании с этиловым спиртом. Общая реаниматология. 2020; 16 (6): 19-30. DOI:10.15360/1813-9779-2020-6-19-30; Bailey D.M.,Bartsch P.,Knauth M.,Baumgartner R.W. Emerging concepts in acute mountain sickness and high-altitude cerebral edema: from the molecular to the morphological. Cell Mol Life Sci. 2009, 66 (22): 3583-3594. DOI:10.1007/s00018-009-0145-9.; Adeva M.M., Souto G., Donapetry C., Portals M., Rodriguez A., Lamas D. Brain edema in diseases of different etiology. Neurochem Int. 2012, 61 (2): 166-174. DOI:10.1016/j.neuint.2012.05.007; Wang Y.F., Parpura V. Astroglial modulation of hydromineral balance and cerebral edema. Front Mol Neurosci. 2018, 11: 204. DOI:10.3389/fnmol.2018.00204.; Slivka A., Murphy E., Horrocks L. Cerebral edema after temporary and permanent middle cerebral artery occlusion in the rat. Stroke. 1995, 26 (6): 1061-1065. DOI:10.1161/01.str.26.6.1061.; Keep R.F., Jones H.C., Drewes L.R. This was the year that was: brain barriers and brain fluid research in 2019. Fluids Barriers CNS. 2020, 17 (1): 20. DOI:10.1186/s12987-020-00181-9.; Krueger M., Mages B., Hobusch C., Michalski D. Endothelial edema precedes blood-brain barrier breakdown in early time points after experimental focal cerebral ischemia. Acta Neuropathologica Communications. 2019, 7: 17. https: //doi.org/10.1186/s40478-019-0671-0; Ding Y., Liu J., Xu Y., Dong X., Shao B. Evolutionary adaptation of Aquaporin-4 in Yak (Bos grunniens) brain to high-altitude hypoxia of Qinghaitibetan plateau. High altitude medicine & biology. 2020, 21 (2). DOI:10.1089/ham.2019.0076; Hinzman J.M., DiNapoli V.A., Mahoney E.J., Gerhardt G.A., Hartings J.A. Spreading depolarizations mediate excitotoxicity in the development of acute cortical lesions. Exp Neurol. 2015, 267: 243-253. DOI:10.1016/j.expneurol.2015.03.014.; Dreier J.P., Lemale C.L., Kola V., Friedman A., Schoknecht K. Spreading depolarization is not an epiphenomenon but the principal mechanism of the cytotoxic edema in various gray matter structures of the brain during stroke. Neuropharmacol. 2018, 15 (134): 189-207. DOI:10.1016/j.neuropharm.2017.09.027.; Квитницкий-Рыжов Ю.Н. Отек и набухание головного мозга. Киев: «Здоров'я», 1978: 184.; Ito U., Hakamata Y., Kawakami E., Oyanagi K. Degeneration of astrocytic processes and their mitochondria in cerebral cortical regions peripheral to the cortical infarction: heterogeneity of their disintegration is closely associated with disseminated selective neuronal necrosis and maturation of injury. Stroke. 2009, 40 (6): 2173-2181. DOI:10.1161/STROKEAHA.108.534990.; Моргун А.В., Малиновская Н.А., Комлева Ю.К., Лопатина О.Л., Кувачева Н.В., Панина Ю.А., Таранушенко Т.Е., Солончук Р.Ю., Салмина А.Б. Структурная и функциональная гетерогенность астроцитов головного мозга: роль в нейродегенерации и нейровоспалении. Бюлл. сибирской медицины. 2014, 13 (5): 138-148. DOI:10.20538/1682-0363-2014-5-138-148; Степанов А.С., Акулинин В.А., Мыцик А.В., Степанов С.С., Авдеев Д.Б. Нейро-глио-сосудистые комплексы головного мозга после острой ишемии. Общая реаниматология. 2017, 13 (6): 6-17. DOI:10.15360/1813-9779-2017-6-6-17; Pekny M., Pekna M. Astrocyte reactivity and reactive astrogliosis: costs and benefits. Physiol Rev. 2014, 94: 1077-1098. DOI:10.1152/physrev.00041.2013.; Bai J., Lyden P.D. Переосмысливая постишемическое реперфузионное повреждение головного мозга: новые взгляды на понимание механизмов нарушения реперфузии, кровоизлияния и отека. Internation. J. Stroke. 2015, 10 (2): 143-152 DOI:10.1111/ijs.12434; Von Kummer R., Dzialowski I. Imaging of cerebral ischemic edema and neuronal death. Neuroradiology. 2017; 59 (6): 545-553. DOI:10.1007/s00234-017-1847-6.; Бабкина А.С., Баева А.А., Баширова А.Р., Благонравов М.Л., Голубев А.М., Гребенчиков О.А., Гречко А.В., Ершов А.В., Захарченко В.Е., Кузовлев А.Н., Муслимов Б.Г., Острова И.В., Перепелица С.А., Петрова М.В., Романова О.Л., Саидов Ш.Х., Силачев Д.Н., Сундуков Д.В., Телипов И.Н., Усманов Э.Ш., Хаджиева М.Б., Чурилов А.А., Шабанов А.К., Шевелев О.А. Биологические маркеры повреждения и регенерации центральной нервной системы. Москва: ООО «ВЦИ»; 2021: 432. ISBN 9785604415900.; Shi K., Tian De-Cai, Li Zhi-Guo, Ducruet A.F., Lawton M.T., Shi Fu-Dong. Global brain inflammation in stroke. Lancet Neurol. 2019; 18 (11): 1058-1066. DOI:10.1016/S1474-4422(19)30078-X.; Paxinos G, Watson C. The Rat Brain in Stereotaxic Coordinates. 5th ed. San Diego: Elsevier Academic Press. 2005.; Herbert A.D., Carr A.M., Hoffmann E. FindFoci: a focus detection algorithm with automated parameter training that closely matches human assignments, reduces human inconsistencies and increases speed of analysis. PLoS One. 2014; 9 (12): e114749. DOI:10.1371/journal.pone.0114749; Bolon B., Garman R., Jensen K., Krinke G., Stuart B. Best practices approach to neuropathologic assessment in developmental neurotoxicity testing. Toxicol. rathol. 2006; 34 (3): 296-313. DOI:10.1080/01926230600713269; Ooigawa H., Nawashiro H., Fukui S., Otani N, Osumi A, Toyooka T, Shima K. The fate of Nissl-stained dark neurons following traumatic brain injury in rats: difference between neocortex and hippocampus regarding survival rate. Acta Neuropathol. 2006; 112 (4): 471-481. DOI:10.1007/s00401-006-0108-2; Боровиков В. Statistica. Искусство анализа данных на компьютере. Изд-во Питер; 2003: 2-ое изд.: 688.; Волкова Д.А., Косицын Н.С., Голобородько Е.В., Логинова Н.А., Свинов М.М. Электрофизиологические корреляты морфологических перестроек при моделировании локальной ишемии разной степени тяжести в сенсомоторной коре крыс. Бюлл. Эксперим. Биол. Медиц. 2013; 155 (2): 233-236. DOI:10.1007/s10517-013-2128-y; Степанов С.С., Акулинин В.А., Авдеев Д.Б., Степанов А.С., Горбунова А.В. Реорганизазия астроцитов неокортекса белых крыс после 20-минутной окклюзии общих сонных артерий. Российский физиологический журнал им. И.М. Сеченова. 2019; 105 (5): 578-590. DOI:10.1134/S086981391905011X; Семченко В.В., Степанов С.С., Боголепов Н.Н. Синаптическая пластичность головного мозга (фундаментальные и прикладные аспекты). М.: Директ-Медиа; 2014.; https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/2138
-
10Academic Journal
Authors: I. P. Koshman, S. S. Stepanov, A. Y. Shoronova, A. G. Kalinichev, V. A. Akulinin, D. B. Avdeyev, V. I. Sergeyev, И. П. Кошман, С. С. Степанов, А. Ю. Шоронова, А. Г. Калиничев, В. А. Акулинин, Д. Б. Авдеев, В. И. Сергеев
Contributors: This work was supported by the Foundation for the Promotion of Innovation under the «UMNIK» program No. 14 dated December 15, 2017 and the internal grant No. 574 of the Omsk State Medical University dated November 24, 2017, Данная работа выполнена при поддержке Фонда содействия инновациям по программе «УМНИК» №14 от 15.12.2017 г. и внутреннего гранта ФГБОУ ВО Омского государственного медицинского университета № 574 от 24.11.2017 г.
Source: Russian Sklifosovsky Journal "Emergency Medical Care"; Том 9, № 2 (2020); 251-258 ; Журнал им. Н.В. Склифосовского «Неотложная медицинская помощь»; Том 9, № 2 (2020); 251-258 ; 2541-8017 ; 2223-9022 ; 10.23934/2223-9022-2020-9-2
Subject Terms: L-лизина эсцинат, neocortex, edema-swelling, morphometry, Wistar rats, L-lysine escinate, неокортекс, отек-набухание, морфометрия, крысы Wistar
File Description: application/pdf
Relation: https://www.jnmp.ru/jour/article/view/938/775; https://www.jnmp.ru/jour/article/view/938/862; Аханов Г.Ж., Дюсембеков Е.К., Нурбакыт А.Н. Клинико-эпидемиологические аспекты черепно-мозговой травмы. Нейрохирургия и неврология Казахстана. 2017;2(47):65–71.; Лихтерман Л.Б. Черепно-мозговая травма. Диагностика и лечение. Москва; ГЭОТАР-Медиа; 2014.; Крылов В.В., Коновалов А.Н., Дашьян В.Г., Кондаков Е.Н., Таняшин С.В., Горелышев С.К. и др. Состояние нейрохирургической службы Российской Федерации. Журнал Вопросы нейрохирургии имени Н.Н. Бурденко. 2017;1(81):5–12.; Hackenberg K, Unterberg A. Schädel-Hirn-Trauma [Traumatic brain injury]. Nervenarzt. 2016; 87(2):203–216. [in German] PMID: 26810405. PMID: 26810405 https://doi.org/10.1007/s00115-015-0051-3; Задворнов А.А., Голомидов А.В., Григорьев Е.В. Клиническая патофизиология отека головного мозга (часть 2). Вестник анестезиологии и реаниматологии. 2017;14(4):52–60. https://doi.org/10.21292/2078-5658-2017-14-4-52-60; Крылов В.В., Петриков С.С., Солодов А.А. Внутричерепная гипертензия. Москва; БИНОМ; 2016.; Латышева В.Я., Курман В.И., Цуканов А.Н., Усова Н.Н., Галиновская Н.В., Олизарович М.В. Отек головного мозга: этиопатогенез, клиника, диагностика, лечение: практическое пособие для врачей. Гомель; 2016.; Петриков С.С., Солодов А.А., Бадыгов С.А., Мехиа Мехиа Э.Д., Крылов В.В. Влияние L-лизина эсцината на внутричерепное давление у пострадавших с тяжелой черепно-мозговой травмой, находящихся в критическом состоянии. Журнал им. Н.В. Склифосовского Неотложная медицинская помощь. 2016;2:31–36.; Мирзабаев М.Ж., Дюсембеков Е.К., Алиев М.А. Динамика и пути коррекции внутричерепного давления у пациентов с тяжелой черепно-мозговой травмой. Вестник алматинского государственного института усовершенствования врачей. 2017;3:42–27.; Schwarzmaier SM, Gallozzi M, Plesnila N. Identification of the Vascular Source of Vasogenic Brain Edema following Traumatic Brain Injury Using In Vivo 2-Photon Microscopy in Mice. J Neurotrauma. 2015;32(13):990–1000. PMID: 25585052 https://doi.org/10.1089/neu.2014.3775; Задворнов А.А., Голомидов А.В., Григорьев Е.В. Клиническая патофизиология отека головного мозга (часть 1). Вестник анестезиологии и реаниматологии. 2017;14(3):44–50. https://doi.org/10.21292/2078-5658-2017-14-3-44-50; Stokum JA, Gerzanich V, Simard JM. Molecular pathophysiology of cerebral edema. J Cereb Blood Flow Metab. 2016;36(3):513–538. PMID:26661240 https://doi.org/10.1177/0271678x15617172; Ng SY, Lee AYW. Traumatic Brain Injuries: Pathophysiology and Potential Therapeutic Targets. Front Cell Neurosci. 2019;13:528. PMID: 31827423 https://doi.org/10.3389/fncel.2019.00528; Парфенов В.А. Использование L-лизина эсцината при заболеваниях центральной нервной системы. Неврология, нейропсихиатрия, психосоматика. 2011;3(4):99–104.; Бадалов В.И., Шевелев П.Ю., Рева В.А., Семенов Е.А., Аджиева З.Н., Михайловская Е.М. и др. Разработка экспериментальной модели тяжелой черепно-мозговой травмы. Военно-медицинский журнал. 2018;339(7):15–21.; Paxinos G, Watson C. The Rat Brain in Stereotaxic Coordinates. The New coronal set. 5th ed. San Diego: Elsevier Academic Press; 2005.; Боровиков В. Statistica. Искусство анализа данных на компьютере. 2-е изд. Санкт-Петербург: Издательство Питер; 2003.; https://www.jnmp.ru/jour/article/view/938
-
11Academic Journal
Authors: V. Akulinin A., D. Avdeev B., A. Stepanov S., A. Gorbunova V., S. Stepanov S., I. Tsuskman G., В. Акулинин А., Д. Авдеев Б., А. Степанов С., А. Горбунова В., С. Степанов С., И. Цускман Г.
Contributors: Данная работа выполнена при поддержке Фонда содействия инновациям по программе «УМНИК» № 14 от 15.12.2017 г. и внутреннего гранта ФГБОУ ВО Омского государственного медицинского университета № 574 от 24.11.2017 г.
Source: Bulletin of Siberian Medicine; Том 18, № 4 (2019); 7-15 ; Бюллетень сибирской медицины; Том 18, № 4 (2019); 7-15 ; 1819-3684 ; 1682-0363 ; 10.20538/1682-0363-2017-0-12
Subject Terms: acute ischemia, neocortex, hippocampus, amygdala, glia, GFAP, острая ишемия, неокортекс, гиппокамп, амигдола, глия
File Description: application/pdf
Relation: https://bulletin.tomsk.ru/jour/article/view/2550/1652; https://bulletin.tomsk.ru/jour/article/view/2550/1682; Wolburg H., Noell S., Mack A. et al. Brain endothelial cells and the glio-vascular complex. Cell Tissue Res. 2009; 335 (1): 75–96. DOI:10.1007/s00441-008-0658-9.; Nakagawa S., Deli M.A., Kawaguchi H. et al. A new bloodbrain barrier model using primary rat brain endothelial cells, pericytes and astrocytes. Neurochem. Int. 2009; 54 (3–4): 253–263. DOI:10.1016/j.neuint.2008.12.002.; Liu S., Agalliu D., Yu C., Fisher M. The role of pericytes in blood-brain barrier function and stroke. Curr. Pharm. Des. 2012; 18 (25): 3653–3662. DOI:10.2174/138161212802002706.; Степанов А.С., Акулинин В.А., Степанов С.С., Авдеев Д.Б. Клеточные системы восстановления и утилизации поврежденных нейронов головного мозга белых; крыс после 20-минутной окклюзии общих сонных артерий. Российский физиологический журнал им. И.М. Сеченова. 2017; 103 (10): 1135–1147.; Zuchero J.B., Barres B.A. Glia in mammalian development and disease. Development. 2015; 142 (22): 3805–3809. DOI:10.1242/dev.129304.; Дробленков А.В., Наумов Н.В., Монид М.В., Сосин В.В., Пеньков Д.С., Прошин С.Н., Шабанов П.Д. Реакция клеточных элементов головного мозга крыс на циркуляторную гипоксию. Медицинский академический журнал. 2013; 13 (4): 19–28.; Буреш Я., Бурешова О., Хьюстон Д.П. Методики и основные эксперименты по изучению мозга и поведения. М.: Высшая школа, 1991: 399.; Paxinos G., Watson C. The rat brain in stereotaxic coordinates; 5th ed. San Diego: Elsevier Academic Press, 2005: 367.; Боровиков В. Statistica. Искусство анализа данных на компьютере; 2-е изд. СПб: Питер, 2003: 688.; Яковлев А.А., Гуляева Н.В. Прекондиционирование клеток мозга к патологическим воздействиям: вовлеченность протеаз (обзор). Биохимия. 2015; 80 (2): 204–213.; Шляхто Е.В., Баранцевич Е.Р., Щербак Н.С., Галагудза М.М. Молекулярные механизмы формирования ишемической толерантности головного мозга (обзор литературы. Часть 1). Вестник Российской академии медицинских наук. 2012; 67 (6): 42–50.; Baillieul S., Chacaroun S., Doutreleau S. et al. Hypoxic conditioning and the central nervous system: A new therapeutic opportunity for brain and spinal cord injuries? Exp. Biol. Med. (Maywood). 2017; 242 (11): 1198–1206. DOI:10.1177/1535370217712691.; https://bulletin.tomsk.ru/jour/article/view/2550
-
12Academic Journal
Authors: Chuikova, O. V.
Source: Науково-теоретичний альманах "Грані". 0:25-29
Subject Terms: cognition, когнитивность, philosophy, свідомість, когнітивність, трансдисциплінарний метод, consciousness, neopallium, философия, філософія, transdisciplinary method, неокортекс, трансдисциплинарный метод, сознание
File Description: application/pdf
-
13Academic Journal
Authors: Tkachuk, O. V., Tkachuk, S. S., Myslytskyi, V. F., Yasinska, O. V., Povar, M. A., Lenkov, O. M.
Source: Clinical and experimental pathology; Vol. 17 No. 2 (2018) ; Клиническая и экспериментальная патология; Том 17 № 2 (2018) ; Клінічна та експериментальна патологія; Том 17 № 2 (2018) ; 2521-1153 ; 1727-4338
Subject Terms: bilateral carotid ischemia-reperfusion, diabetes mellitus, neocortex, hippocampus, electron microscopy, двусторонняя каротидная ишемия-реперфузия, сахарный диабет, неокортекс, гиппокамп, электронная микроскопия, двобічна каротидна ішемія-реперфузія, цукровий діабет, гіпокамп, електронна мікроскопія
File Description: application/pdf
-
14Academic Journal
Authors: Овчаренко, Г.Р., Калашнікова, Л.Є., Александрова, К.О.
Source: Biomedical Engineering and Technology; No. 1(1) (2018) ; Биомедицинская инженерия и технология; № 1(1) (2018) ; Біомедична інженерія і технологія; № 1(1) (2018) ; 2707-8434 ; 10.20535/2617-8974.2018.1(1)
Subject Terms: Спектр частот, частотна характеристика, електроенцефалограма, спектральна щільність потужності, неокортекс, ритми ЕЕГ, електрична активність мозку, звукові коливання, коефіцієнт концентрації уваги, IBM SPSS Statistics
File Description: application/pdf
Relation: http://biomedtech.kpi.ua/article/view/152463/163160; http://biomedtech.kpi.ua/article/view/152463
Availability: http://biomedtech.kpi.ua/article/view/152463
https://doi.org/10.20535/2617-8974.2018.1(1).152463 -
15Academic Journal
Authors: Lyanna, O.
Source: Regulatory Mechanisms in Biosystems, Vol 4, Iss 2, Pp 43-46 (2013)
Subject Terms: МЕТОДИ БіЛКОВОї ХіМії, іНГіБіТОРИ ПРОТЕОЛіЗУ, КАТЕПСИН В, НЕОКОРТЕКС ЛЮДИНИ, 0301 basic medicine, 0303 health sciences, 03 medical and health sciences, Science, 16. Peace & justice, 3. Good health
File Description: text/html
Access URL: https://doaj.org/article/c65cc0d338e0484ab1ae23d57639e86f
https://medicine.dp.ua/index.php/med/article/view/185
https://medicine.dp.ua/index.php/med/article/download/185/215
https://cyberleninka.ru/article/n/an-endogenous-inhibitor-of-cysteine-cathepsin-b-from-brain-tissues
http://cyberleninka.ru/article_covers/15528169.png
http://cyberleninka.ru/article/n/an-endogenous-inhibitor-of-cysteine-cathepsin-b-from-brain-tissues -
16Academic Journal
Source: Biomedical engineering and technology; № 1(1) (2018)
Биомедицинская инженерия и технология; № 1(1) (2018)
Біомедична інженерія і технологія; № 1(1) (2018)Subject Terms: Спектр частот, частотна характеристика, електроенцефалограма, спектральна щільність потужності, неокортекс, ритми ЕЕГ, електрична активність мозку, звукові коливання, коефіцієнт концентрації уваги, IBM SPSS Statistics
File Description: application/pdf
Access URL: http://biomedtech.kpi.ua/article/view/152463
-
17Academic Journal
Authors: Tkachuk, O. V., Tkachuk, S. S., Myslytskyi, V. F., Yasinska, O. V., Povar, M. A., Lenkov, O. M.
Source: Clinical & experimental pathology; Том 17, № 2 (2018)
Клиническая и экспериментальная патология; Том 17, № 2 (2018)
Клінічна та експериментальна патологія; Том 17, № 2 (2018)Subject Terms: двусторонняя каротидная ишемия-реперфузия, сахарный диабет, неокортекс, гиппокамп, электронная микроскопия, bilateral carotid ischemia-reperfusion, diabetes mellitus, neocortex, hippocampus, electron microscopy, двобічна каротидна ішемія-реперфузія, цукровий діабет, гіпокамп, електронна мікроскопія, 3. Good health
File Description: application/pdf
-
18Academic Journal
Contributors: ELAKPI
Subject Terms: електроенцефалограма, IBM SPSS, спектральная плотность мощности, звуковые колебания, коефіцієнт концентрації уваги, brain electrical activity, amplitude-frequency characteristic, електрична активність мозку, электрическая активность мозга, неокортекс, sound oscillation, neocortex, электроэнцефалограмма, concentration factor, частотна характеристика, EEG rhythms, IBM SPSS Statistics, амплитудно-частотная характеристика, звукові коливання, ритмы ЭЭГ, коэффициент концентрации внимания, electroencephalogram, спектр частот, спектральна щільність потужності, ритми ЕЕГ, spectral density of power, spectrum of frequencies
File Description: application/pdf
Access URL: https://ela.kpi.ua/handle/123456789/33747
-
19Academic Journal
Authors: D. I. Peregud, S. V. Freiman, A. O. Tishkina, L. S. Sokhranyaeva, N. A. Lazareva, M. V. Onufriev, M. Y. Stepanichev, N. V. Gulyaeva, Д. И. Перегуд, С. В. Фрейман, А. О. Тишкина, Л. С. Сохраняева, Н. А. Лазарева, М. В. Онуфриев, М. Ю. Степаничев, Н. В. Гуляева
Source: Vavilov Journal of Genetics and Breeding; Том 20, № 2 (2016); 191-197 ; Вавиловский журнал генетики и селекции; Том 20, № 2 (2016); 191-197 ; 2500-3259
Subject Terms: гиппокамп, BDNF transcription, early proinflammatory stress, lipopolysaccharide, neocortex, hippocampus, транскрипция BDNF, ранний провоспалительный стресс, липополисахарид, неокортекс
File Description: application/pdf
Relation: https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/585/765; Григорьян Г.А., Дыгало Н.Н., Гехт А.Б., Степаничев М.Ю., Гуляева Н.В. Молекулярные и клеточные механизмы депрессии. Роль глюкокортикоидов, цитокинов, нейротрансмиттеров и трофических факторов в генезе депрессивных нарушений. Усп. физиол. наук. 2014;45(2):3-19.; Иванов А.Д. Роль NGF и BDNF в регуляции активности зрелого мозга. Журн. высш. нерв. деят. 2014;64:137-146.; Сахарнова Т.А., Ведунова М.В., Мухина И.В. Нейротрофический фактор головного мозга (BDNF) и его роль в функционировании центральной нервной системы. Нейрохимия. 2012;29:269-277.; Aid T., Kazantseva A., Piirsoo M., Palm K., Timmusk T. Mouse and rat BDNF gene structure and expression revisited. J. Neurosci. Res. 2007;85:525-535.; Altman J., Bayer S.A. Migration and distribution of two populations of hippocampal granule cell precursors during the perinatal and postnatal periods. J. Comp. Neurol. 1990;301:365-381.; Arnold S.E., Trojanowski J.Q. Human fetal hippocampal development: I. Cytoarchitecture, myeloarchitecture, and neuronal morphologic features. J. Comp. Neurol. 1996;367:274-292.; Baj G., Leone E., Chao M.V., Tongiorgi E. Spatial segregation of BDNF transcripts enables BDNF to differentially shape distinct dendritic compartments. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2011;108:16813-16818.; Calabrese F., Rossetti A.C., Racagni G., Gass P., Riva M.A., Molteni R. Brain-derived neurotrophic factor: a bridge between inflammation and neuroplasticity. Front. Cell Neurosci. 2014;8:430. DOI 10.3389/fncel.2014.00430.eCollection 2014; Chiaruttini C., Sonego M., Baj G., Simonato M., Tongiorgi E. BDNF mRNA splice variants display activity-dependent targeting to distinct hippocampal laminae. Mol. Cell. Neurosci. 2008;37:11-19.; Doosti M.-H., Bakhtiari A., Zare P., Amani M., Majidi-Zolbanin N., Babri S., Salari A.A. Impacts of early intervention with fluoxetine following early neonatal immune activation on depression-like behaviors and body weight in mice. Progr. Neuro-Psychopharmacol. Biol. Psychiat. 2013;43:55-65.; Duclot F., Kabbaj M. Individual differences in novelty seeking predict subsequent vulnerability to social defeat through a differential epigenetic regulation of brain-derived neurotrophic factor expression. J. Neurosci. 2013;33:11048-11060.; Erburu M., Cajaleon L., Guruceaga E., Venzala E., Muñoz-Cobo I., Beltrán E., Puerta E., Tordera R.M. Chronic mild stress and imipramine treatment elicit opposite changes in behavior and in gene expression in the mouse prefrontal cortex. Pharmacol. Biochem. Behav. 2015;135:227-236.; Farhang S., Barar J., Fakhari A., Mesgariabbasi M., Khani S., Omidi Y., Farnam A. Asymmetrical expression of BDNF and NTRK3 genes in frontoparietal cortex of stress-resilient rats in an animal model of depression. Synapse. 2014;68:387-393.; Guan Z., Fang J. Peripheral immune activation by lipopolysaccharide decreases neurotrophins in the cortex and hippocampus in rats. Brain Behav. Immun. 2006;20:64-71.; Kawai T., Akira S. Signaling to NF-kappaB by Toll-like receptors. Trends Mol. Med. 2007;13:460-469.; Kranjac D., McLinden K.A., Deodati L.E., Papini M.R., Chumley M.J., Boehm G.W. Peripheral bacterial endotoxin administration triggers both memory consolidation and reconsolidation deficits in mice. Brain Behav. Immun. 2012;26:109-121.; Laus M.F., Vales L.D., Costa T.M., Almeida S.S. Early postnatal protein-calorie malnutrition and cognition: A review of human and animal studies. Int. J. Environ. Res. Public Health. 2011;8:590-612.; Lehmann K., Rodriguez E.G., Kratz O., Moll G.H., Dawirs R.R., Teuchert-Noodt G. Early preweaning methamphetamine and postweaning rearing conditions interfere with the development of peripheral stress parameters and neural growth factors in gerbils. Int. J. Neurosci. 2007;117:1621-1638.; Lipsky R.H., Xu K., Zhu D., Kelly C., Terhakopian A., Novelli A., Marini A.M. Nuclear factor kappaB is a critical determinant in Nmethyl- D-aspartate receptor-mediated neuroprotection. J. Neurochem. 2001;78:254-264.; Livak K.J., Schmittgen T.D. Analysis of relative gene expression data using real-time quantitative PCR and the 2-DDCt method. Methods. 2001;25:402-408.; Loman M.M., Gunnar M.R. Early experience and the development of stress reactivity and regulation in children. Neurosci. Biobehav. Rev. 2010;34:867-876.; Lubin F.D., Roth T.L., Sweatt J.D. Epigenetic regulation of BDNF gene transcription in the consolidation of fear memory. J. Neurosci. 2008;28:10576-10586.; Lucassen P.J., Naninck E.F., van Goudoever J.B., Fitzsimons C., Joels M., Korosi A. Perinatal programming of adult hippocampal structure and function; emerging roles of stress, nutrition and epigenetics. Trends Neurosci. 2013;36:621-631.; Lyons M.R., West A.E. Mechanisms of specificity in neuronal activityregulated gene transcription. Prog. Neurobiol. 2011;94:259-295.; O’Connor T.G., Ben-Shlomo Y., Heron J., Golding J., Adams D., Glover V. Prenatal anxiety predicts individual differences in cortisol in pre-adolescent children. Biol. Psychiat. 2005;58:211-217.; Oskvig D.B., Elkahloun A.G., Johnson K.R., Phillips T.M., Herkenham M. Maternal immune activation by LPS selectively alters specific gene expression profiles of interneuron migration and oxidative stress in the fetus without triggering a fetal immune response. Brain. Behav. Immun. 2012;26:623-634.; Pruunsild P., Sepp M., Orav E., Koppel I., Timmusk T. Identification of cis-elements and transcription factors regulating neuronal activitydependent transcription of human BDNF gene. J. Neurosci. 2011; 31:3295-3308.; Rico J.L.R., Ferraz D.B., Ramalho-Pinto F.J., Morato S. Neonatal exposure to LPS leads to heightened exploratory activity in adolescent rats. Behav. Brain Res. 2010;215;102-109.; Roth T.L., Lubin F.D., Funk A.J., Sweatt J.D. Lasting epigenetic influence of early-life adversity on the BDNF. Biol. Psychiat. 2009;65: 760-769.; Saha R.N., Liu X., Pahan K. Up-regulation of BDNF in astrocytes by TNF-alpha: a case for the neuroprotective role of cytokine. J. Neuroimmune Pharmacol. 2006;3:212-222.; Schmidt H.D., Sangrey G.R., Darnell S.B., Schassburger R.L., Cha J.H., Pierce R.C., Sadri-Vakili G. Increased brain-derived neurotrophic factor (BDNF) expression in the ventral tegmental area during cocaine abstinence is associated with increased histone acetylation at BDNF exon I-containing promoters. J. Neurochem. 2012;120: 202-209.; Shanks N., Larocque S., Meaney M.J. Neonatal endotoxin exposure alters the development of the hypothalamic-pituitary-adrenal axis: early illness and later responsivity to stress. Neurosci. 1995;15: 376-384.; Sominsky L., Meehan C.L., Walker A.K., Bobrovskaya L., McLaughlin E.A., Hodgson D.M. Neonatal immune challenge alters reproductive development in the female rat. Hormones Behav. 2012a;62: 345-355.; Sominsky L., Walker A.K., Ong L.K., Tynan R.J., Walker F.R., Hodgson D.M. Increased microglial activation in the rat brain following neonatal exposure to a bacterial mimetic. Behav. Brain Res. 2012b;226:351-356.; Stepanichev M., Dygalo N.N., Grigoryan G., Shishkina G.T., Gulyaeva N. Rodent models of depression: neurotrophic and neuroinflammatory biomarkers. Biomed. Res. Int. 2014;2014:932757. DOI 10.1155/2014/932757; Tabuchi A. Synaptic plasticity-regulated gene expression: a key event in the long-lasting changes of neuronal function. Biol. Pharm. Bull. 2008;31:327-335.; Tsankova N.M., Kumar A., Nestler E.J. Histone modifications at gene promoter regions in rat hippocampus after acute and chronic electroconvulsive seizures. J. Neurosci. 2004;24:5603-5610.; Walker A.K., Hawkins G., Sominsky L., Hodgson D.M. Transgenerational transmission of anxiety induced by neonatal exposure to lipopolysaccharide: implications for male and female germ lines. Psychoneuroendocrinology. 2012;37:1320-1335.; Walker A.K., Hiles S.A., Sominsky L., McLaughlin E.A., Hodgson D.M. Neonatal lipopolysaccharide exposure impairs sexual development and reproductive success in the Wistar rat. Brain Behav. Immun. 2011;25:674-684.; Walker A.K., Nakamura T., Byrne R.J., Naicker S., Tynan R.J., Hunter M., Hodgson D.M. Neonatal lipopolysaccharide and adult stress exposure predisposes rats to anxiety-like behaviour and blunted corticosterone responses: implications for the double-hit hypothesis. Psychoneuroendocrinology. 2009;34:1515-1525.; Yehuda R., Engel S.M., Brand S.R., Seckl J., Marcus S.M., Berkowitz G.S. Transgenerational effects of posttraumatic stress disorder in babies of mothers exposed to the World Trade Center attacks during pregnancy. J. Clin. Endocrinol. Metab. 2005;90:4115-4118.; Zhang J.C., Wu J., Fujita Y., Yao W., Ren Q., Yang C., Li S.X., Shirayama Y., Hashimoto K. Antidepressant effects of TrkB ligands on depression-like behavior and dendritic changes in mice after inflammation. Int. J. Neuropsychopharmacol. 2014;18. DOI 10.1093/ijnp/ pyu077; https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/585
-
20Academic Journal
Authors: V. A. Akulinin, S. S. Stepanov, A. V. Mytsik, A. S. Stepanov, V. S. Rasumovsky, В. А. Акулинин, С. С. Степанов, А. В. Мыцик, А. С. Степанов, В. С. Разумовский
Source: General Reanimatology; Том 12, № 4 (2016); 24-36 ; Общая реаниматология; Том 12, № 4 (2016); 24-36 ; 2411-7110 ; 1813-9779 ; 10.15360/1813-9779-2016-4
Subject Terms: нейропептид Y, man, neocortex, inhibitory interneurons, calbindin D28k, neuropeptide Y, человек, неокортекс, тормозные интернейроны, кальбиндин D28k
File Description: application/pdf
Relation: https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1537/1044; https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1537/1045; Аврущенко М.Ш., Острова И.В., Волков А.В. Постреанимационные изменения экспрессии глиального нейротрофического фактора (GDNF): взаимосвязь с повреждением клеток Пуркинье мозжечка (экспериментальное исследование). Общая реаниматология. 2014; 10 (5): 59-68. http://dx.doi.org/10.15360/1813-9779-2014-5-59-68; Заржецкий Ю.В., Мороз В.В., Волков А.В. Влияния иммуноактивных препаратов на функциональное восстановление мозга и стероидные гормоны в постреанимационном периоде. Общая реаниматология. 2014; 10 (1): 5-11. http://dx.doi.org/10.15360/1813-9779-2014-1-5-11; Острова И.В., Аврущенко М.Ш. Экспрессия мозгового нейротрофического фактора (BDNF) повышает устойчивость нейронов к гибели в постреанимационном периоде. Общая реаниматология. 2015; 11 (3): 45-53. http://dx.doi.org/10.15360/1813-9779-2015-3-45-53; Markram H., Toledo_Rodriguez M., Wang Y., Gupta A., Silberberg G., Wu C. Interneurons of the neocortical inhibitory system. Nat. Rev. Neurosci. 2004; 5 (10): 793#807. http://dx.doi.org/10.1038/nrn1519.PMID: 15378039; Kalinichenko S.G., Dudina Y.V., Motavkin P.A. Neurogliaform cells: neurochemistry, spatial arrangement, and their role in the neocortical inhibitory system. Tsitologiia. 2006; 48 (5): 508-514. PMID: 16893057; Druga R. Neocortical inhibitory system. Folia Biol. (Praha). 2009; 55 (6): 201-217. PMID: 20163769; Rossignol E. Genetic and function of neocortical GABAergic interneurons in neurodevelopmental disorders. Neural. Plast. 2011; 2011: 649325. http://dx.doi.org/10.1155/2011/649325. PMID: 21876820; Wenner P. Mechanisms of GABAergic homeostatic plasticity. Neural. Plast. 2011; 2011: 489470. http://dx.doi.org/10.1155/2011/489470.PMID: 21876819; Calabresi P., Di Filippo M. A pathophysiological link between dystonia, striatal interneurons and neuropeptide Y. Brain. 2013; 136 (Pt 5): 1341-1344. http://dx.doi.org/10.1093/brain/awt096.PMID: 23599388; Aoki C., Pickel V.M. Neuropeptide Y in the cerebral cortex and the caudate-putamen nuclei: ultrastructural basis for interactions with GABAergic and non#GABAergic neurons. J. Neurosci. 1989; 9 (12): 4333-4354. PMID: 2687439; Maekawa S., Al_Sarraj S., Kibble M., Landau S., Parnavelas J., Cotter D., Everall I., Leigh P.N. Cortical selective vulnerability in motor neuron disease: a morphometric study. Brain. 2004; 127 (Pt 6): 1237-1251. http://dx.doi.org/10.1093/brain/awh132. PMID: 15130949; Lavenex P., Lavenex P.B., Bennett J.L., Amaral D.G. Postmortem changes in the neuroanatomical characteristics of the primate brain: the hippocampal formation. J. Comp. Neurol. 2009; 512 (1): 27-51. http://dx.doi.org/10. 1002/cne.21906. PMID: 18972553; Sharma V., Nag T.C., Wadhwa S., Roy T.S. Stereological investigation and expression of calcium#binding proteins in developing human inferior colliculus. J. Chem. Neuroanat. 2009; 37 (2): 78-86. http://dx.doi.org/10. 1016/j.jchemneu.2008.11.002. PMID: 19095058; De Almeida J., Mengod G. Quantitative analysis of glutamatergic and GABAergic neurons expressing 5#HT2A receptors in human and monkey prefrontal cortex. J. Neurochem. 2007; 103 (2): 475-486. http://dx.doi.org/10.1111/j.1471#4159.2007.04768.x. PMID: 17635672; Buritica E., Villamil L., Guzman F., Escobar M.I., García_Cairasco N., Pimienta H.J. Changes in calcium-binding protein expression in human cortical contusion tissue. J. Neurotrauma. 2009; 26 (12): 2145-2155. http://dx.doi.org/10.1089/neu.2009.0894. PMID: 19645526; Akulinin V.A., Dahlstrom A. Quantitative analysis of MAP2 immunoreactivity in human neocortex of three patients surviving after brain ischemia. Neurochem. Res. 2003; 28 (2): 373-378. http://dx.doi.org/10.1023/A:1022401922669. PMID: 12608711; Naegele J.R., Katz L.C. Cell surface molecules containing N-acetylgalactosamine are associated with basket cells and neurogliaform cells in cat visual cortex. J. Neurosci. 1990; 10 (2): 540-557. PMID: 2303859; Raghupathi R., Graham D.I., McIntosh T.K. Apoptosis after traumatic brain injury. J. Neurotrauma. 2000; 17 (10): 927#938. http://dx.doi.org/10.1089/neu.2000.17.927. PMID: 11063058; Leker R.R., Shohami E. Cerebral ischemia and trauma#different etiologies yet similar mechanisms: neuroprotective opportunities. Brain Res. Rev. 2002; 39 (1): 55-73. http://dx.doi.org/10.1016/S0165-0173(02)00157-1. PMID: 12086708; Berman R.F., Verweij B.H., Muizelaar J.P. Neurobehavioral protection by the neuronal calcium channel blocker ziconotide in a model of traumatic diffuse brain injury in rats. J. Neurosurg. 2000; 93 (5): 821-828. http://dx.doi.org/10.3171/jns.2000.93.5.0821. PMID: 11059664; Patterson M., Yasuda R. Signaling pathways underlying structural plasticity of dendritic spines. Br. J. Pharmacol. 2011; 163 (8): 1626-1638. http://dx.doi.org/10.1111/j.1476-5381.2011.01328.x. PMID: 21410464; Cormier К.J., Greenwood А.С., Connor J.А. Bidirectional synaptic plasticity correlated with the magnitude of dendritic calcium transients above а threshold. J. Neurophysiol. 2001; 85 (1): 399-406. PMID: 11152740; Klapstein G.J., Vietla S., Lieberman Р.М., Gray Р.А., Airaksinen М.S., Thoenen H., Meyer M., Mody I. Calbindin D28K fails to protect hippocampal neurons against ischemia in spite of its cytoplasmic calcium buffering properties: evidence from calbindin-D28k knockout mice. Neuroscience. 1998; 85 (2): 361-373. http://dx.doi.org/10.1016/S0306-4522(97)00632-5. PMID: 9622236; Ghosh A., Greenberg M.E. Calcium signaling in neurons: molecular mechanisms and cellular consequences. Science. 1995; 268 (5208): 239-247. http://dx.doi.org/10.1126/science.7716515. PMID: 7716515; Morona R., González A. Pattern of calbindin#D28k and calretinin immunoreactivity in the brain of Xenopuslaevis during embryonic and larval development. J. Comp. Neurol. 2013; 521 (1): 79-108. http://dx.doi.org/10.1002/cne.23163. PMID: 22678695; Goodman J.Н., Wasterlain С.G., Massarweh W.F., Dean Е., Sollas А.L., Sloviter R.S. Calbindin#D28k immunoreactivity and selective vulnerability to ischemia in the dentate gyrus of the developing rat. Brain Res. 1993; 606 (2): 309#314. http://dx.doi.org/10.1016/0006-8993(93)90999-4. PMID: 8490723; Yenari M.A., Minami M., Sun G.H., Meier T.J., Kunis D.M., McLaughlin J.R., Ho D.Y., Sapolsky R.M., Steinberg G.K. Calbindin D28K overexpression protects striatal neurons from transient focal cerebral ischemia. Stroke. 2001; 32 (4): 1028-1035. http://dx.doi.org/10.1161/01.STR.32.4.1028. PMID: 11283407; Rami А., Rabie А., Thomasset М., Krieglstein J. Calbindin D28K and ischemic damage of pyramidal cells in rat hippocampus. J. Neurosci. Res. 1992; 31 (1): 89-95. PMID: 1613825; Rami А., Rabie А., Winckler J. Synergy between chronic corticosterone treatment and cerebral ischemia in producing damage in noncalbindinergic neurons. Ехр. Neurol. 1998; 149 (2): 439#446. http://dx.doi.org/10.1006/exnr.1997.6729. PMID: 9500960; Barbado M.V., Briсón J.G., Weruaga E., Porteros A., Arévalo R., Aijón J., Alonso J.R. Changes in immunoreactivity to calcium#binding proteins in the anterior olfactory nucleus of the rat after neonatal olfactory deprivation. Exp. Neurol. 2002; 177 (1): 133-150. http://dx.doi.org/10.1006/exnr.2002.7951. PMID: 12429217; Desgent S., Boire D., Ptito M. Altered expression of parvalbumin and calbindin in interneurons within the primary visual cortex of neonatal enucleated hamsters. Neuroscience. 2010; 171 (4): 1326-1340. http://dx.doi.org/10.1016/j.neuroscience.2010.10.016. PMID: 20937364; Fung S.J., Webster M.J., Sivagnanasundaram S., Duncan C., Elashoff M., Weickert C.S. Expression of interneuron markers in the dorsolateral prefrontal cortex of the developing human and in schizophrenia. Am. J. Psychiatry. 2010; 167 (12): 1479#1488. http://dx.doi.org/10.1176/appi.ajp.2010.09060784. PMID: 21041246; Colmers W.F., El Bahh B. Neuropeptide Y and epilepsy. Epilepsy Curr. 2003; 3 (2): 53#58. http://dx.doi.org/10.1046/j.1535#7597.2003. 03208.x. PMID: 15309085; Andiran N., Celik N., Ark N., Koca C., Kurtaran H., Karabel D. Changes in growth pattern, leptin ghrelin and neuropeptide Y levels after adenotonsillectomy in prepubertal children. J. Pediatr. Endocrinol. Metab. 2013; 26 (7-8): 683-687. http://dx.doi.org/10.1515/jpem-201-#0325.PMID: 23612639; Goto S., Kawarai T., Morigaki R., Okita S., Koizumi H., Nagahiro S., Munoz E.L., Lee L.V., Kaji R. Defects in the striatal neuropeptide Y system in X-linked dystonia#parkinsonism. Brain. 2013; 136 (Pt 5): 1555-1567. http://dx.doi.org/10.1093/brain/awt084. PMID: 23599389; González_Albo M.C., Elston G.N., DeFelipe J. The human temporal cortex: characterization of neurons expressing nitric oxide synthase, neuropeptides and calcium#binding proteins, and their glutamate receptor subunit profiles. Cereb. Cortex. 2001; 11 (12): 1170-1181. http://dx.doi.org/10.1093/cercor/11.12.1170. PMID: 11709488; Hong S.M., Chung S.Y., Park M.S., Huh Y.B., Park M.S., Yeo S.G. Immunoreactivity of calcium#binding proteins in the central auditory nervous system of aged rats. J. Korean Neurosurg. Soc. 2009; 45 (4): 231235. http://dx.doi.org/10.3340/jkns.2009.45.4.231. PMID: 19444349; https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1537
