Showing 1 - 20 results of 31 for search '"НЕЙРОСПЕЦИФИЧЕСКАЯ ЕНОЛАЗА"', query time: 0.63s Refine Results
  1. 1
    Academic Journal

    Source: Messenger of ANESTHESIOLOGY AND RESUSCITATION; Том 18, № 3 (2021); 72-78 ; Вестник анестезиологии и реаниматологии; Том 18, № 3 (2021); 72-78 ; 2541-8653 ; 2078-5658

    File Description: application/pdf

    Relation: https://www.vair-journal.com/jour/article/view/542/495; Аврущенко М. Ш., Острова И. В., Волков А. В. и др. Постреанимационные изменения морфофункционального состояния нервных клеток: значение в патогенезе энцефалопатий // Общая реаниматология. – 2006. – Т. 2, № 6. – С. 85–96. https://doi.org/10.15360/1813-9779-2006-6-85-96.; Бридько В. И., Шмаков А. С., Журавлев Д. Е. и др. Основные закономерности и исходы постреанимационной болезни // Университетская медицина Урала. – 2019. – Т. 5, № 1. – С. 25–27.; Голубев А. М., Кузовлев А. Н., Антонова В. В. и др. Молекулярные биомаркеры прогнозирования неврологического исхода после внезапной остановки кровообращения (обзор) // Общая реаниматология. – 2018. – Т. 14, № 3. – C. 68–81. https://doi.org/10.15360/1813-9779-2018-3-68-81.; A randomized clinical study of cardiopulmonary-cerebral resuscitation: design, methods, and patient characteristics. Brain Resuscitation Clinical Trial I Study Group // Amer. J. Emerg. Med. – 1986. – Vol. 4, № 1. – P. 72–86. https://doi.org/10.1016/0735-6757(86)90255-X.; Callaway C. W., Donnino M. W., Fink E. L. et al. Part 8: Post-Cardiac Arrest Care: 2015 American Heart Association Guidelines Update for Cardiopulmonary Resuscitation and Emergency Cardiovascular Care // Circulation. – 2015. – Vol. 132, № 18 (2). – P. 465–482. https://doi.org/10.1161/CIR.0000000000000262.; Dragancea I., Horn J., Kuiper M. et al. Neurological prognostication after cardiac arrest and targeted temperature management 33°C versus 36°C: Results from a randomised controlled clinical trial // Resuscitation. – 2015. – Vol. 93. – P. 164–170. https://doi.org/10.1186/s13054-018-2060-7.; Drohan C. M., Cardi A. I., Rittenberg J. C. et al. Effect of sedation on quantitative electroencephalography after cardiac arrest // Resuscitation. – 2018. – Vol. 124. – P. 132–137. https://doi.org/10.1016/j.resuscitation.2017.11.068.; Golan E., Barrett K., Alali A. S. et al. Predicting neurologic outcome after targeted temperature management for cardiac arrest: systematic review and meta-analysis // Crit. Care Med. – 2014. – Vol. 42, № 8. – P. 1919–1930. https://doi.org/10.1097/CCM.0000000000000335.; Greer D. M., Yang J., Scripko P. D. et al. Clinical examination for prognostication in comatose cardiac arrest patients // Resuscitation. – 2013. – Vol. 84. – P. 1546–1551. https://doi.org/10.1016/j.resuscitation.2013.07.028.; Haywood K., Whitehead L., Nadkarni V. M. et al. COSCA (Core Outcome Set for Cardiac Arrest) in adults: an advisory statement from the International Liaison Committee on Resuscitation // Circulation. – 2018. – Vol. 137, № 22. – P. 783–801. https://doi.org/10.1161/CIR.0000000000000562.; Hong J.Y., Lee D.H., Oh J.H. et al. Grey-white matter ratio measured using early unenhanced brain computed tomography shows no correlation with neurological outcomes in patients undergoing targeted temperature management after cardiac arrest // Resuscitation. – 2019. – Vol. 140. – P. 161–169. https://doi.org/10.1016/j.resuscitation.2019.03.039.; Nolan J. P., Soar J., Cariou A. et al. European Resuscitation Council and European Society of Intensive Care Medicine Guidelines for Post-resuscitation Care 2015: Section 5 of the European Resuscitation Council Guidelines for Resuscitation 2015 // Resuscitation. – 2015. – Vol. 95. – P. 202–222. https://doi.org/10.1016/j.resuscitation.2015.07.018.; Kiehl E. L., Parker A. M., Matar R. M. et al. C-GRApH: A validated scoring system for early stratification of neurologic outcome after out-of-hospital cardiac arrest treated with targeted temperature management // J. American Heart Association. – 2017. – Vol. 6, № 5. – e003821.https://doi.org/10.1161/JAHA.116.003821.; Kiguchi T., Okubo M., Nishiyama C. et al. Out-of-hospital cardiac arrest across the World: First report from the International Liaison Committee on Resuscitation (ILCOR) // Resuscitation. – 2020. – Vol. 152. – P. 39–49. https://doi.org/10.1016/j.resuscitation.2020.02.044.; Luescher T., Mueller J., Isenschmid C. et al. Neuron-specific enolase (NSE) improves clinical risk scores for prediction of neurological outcome and death in cardiac arrest patients: Results from a prospective trial // Resuscitation. – 2019. – Vol. 142. – P. 50–60. https://doi.org/10.1016/j.resuscitation.2019.07.003.; Lupton J. R., Kurz M. C., Daya M. R. Neurologic prognostication after resuscitation from cardiac arrest // J. Amer. College Emerg. Physic. Open. – 2020. – Vol. 1, № 4. – P. 333–341. https://doi.org/10.1002/emp2.12109.; Martinell L., Nielsen N., Herlitz J. et al. Early predictors of poor outcome after out-of-hospital cardiac arrest // Crit. care. – 2017. – Vol. 21, № 1. – P. 96. https://doi.org/10.1186/s13054-017-1677-2.; Maupain C., Bougouin W., Lamhaut L. et al. The CAHP (Cardiac Arrest Hospital Prognosis) score: a tool for risk stratification after out-of-hospital cardiac arrest // Eur. Heart J. – 2016. – Vol. 37, № 42. – P. 3222–3228. https://doi.org/10.1093/eurheartj/ehv556.; Na M. K., Kim W., Lim T. H. et al. Gray matter to white matter ratio for predicting neurological outcomes in patients treated with target temperature management after cardiac arrest: A systematic review and meta-analysis // Resuscitation. – 2018. – Vol. 132. – P. 21–28. https://doi.org/10.1016/j.resuscitation.2018.08.024.; Park J. H., Wee J. H., Choi S. P. et al. Assessment of serum biomarkers and coagulation/fibrinolysis markers for prediction of neurological outcomes of out of cardiac arrest patients treated with therapeutic hypothermia // Clin. Experim. Emerg. Med. – 2019. – Vol. 6, № 1. – P. 9–18. https://doi.org/10.15441/ceem.17.273.; Paul M., Bougouin W., Geri G. et al. Delayed awakening after cardiac arrest: prevalence and risk factors in the Parisian registry // Intens. Care Med. – 2016. – Vol. 42, № 7. – P. 1128–1136. https://doi.org/10.1007/s00134-016-4349-9.; Rankin J. Cerebral vascular accidents in patients over the age of 60. II. Prognosis // Scottish Med J. – 1957. – Vol. 2, № 5. – P. 200–215. https://doi.org/10.1177/003693305700200504.; Reynolds A. S., Rohaut B., Holmes M. G. et al. Early myoclonus following anoxic brain injury // Neurology. – 2018. – Vol. 8, № 3. – P. 249–256. https://doi.org/10.1212/CPJ.0000000000000466.; Ruijter B. J., van Putten M. J. A. M, van den Bergh W. M. et al. Propofol does not affect the reliability of early EEG for outcome prediction of comatose patients after cardiac arrest // Clin. Neurophysiol. – 2019. – Vol. 130, № 8. – P. 1263–1270. https://doi.org/10.1016/j.clinph.2019.04.707.; Samaniego E. A., Mlynash M., Caulfield A. F. et al. Sedation confounds outcome prediction in cardiac arrest survivors treated with hypothermia // Neurocrit. Care. – 2011. – Vol. 15, № 1. – P. 113–119. https://doi.org/10.1007/s12028-010-9412-8.; Sandroni C., Cavallaro F., Callaway C. W. et al. Predictors of poor neurological outcome in adult comatose survivors of cardiac arrest: a systematic review and meta-analysis. Part 1: patients not treated with therapeutic hypothermia // Resuscitation. – 2013. – Vol. 84, № 10. – P. 1310–1323. https://doi.org/10.1016/j.resuscitation.2013.06.020.; Sandroni C., D'Arrigo S., Cacciola S. et al. Prediction of poor neurological outcome in comatose survivors of cardiac arrest: a systematic review // Intens. Care Med. – 2020. – Vol. 46, № 10. – P. 1803–1851. https://doi.org/10.1007/s00134-020-06198-w.; Sandroni C., D'Arrigo S., Nolan J. P. Prognostication after cardiac arrest // Crit. Care. – 2018. – Vol. 22, № 1. – P. 150. https://doi.org/10.1186/s13054-018-2060-7.; Selig C., Riegger C., Dirks B. et al. Bispectral index (BIS) and suppression ratio (SR) as an early predictor of unfavourable neurological outcome after cardiac arrest // Resuscitation. – 2014. – Vol. 85, № 2. – P. 221–226. https://doi.org/10.1016/j.resuscitation.2013.11.008.; Solari D., Rossetti A.O., Carteron L. et al. Early prediction of coma recovery after cardiac arrest with blinded pupillometry // Ann. Neurol. – 2017. – Vol. 81, № 6. – P. 804–810. https://doi.org/10.1002/ana.24943.; Sondag L., Ruijter B. J., Tjepkema-Cloostermans M. C. et al. Early EEG for outcome prediction of postanoxic coma: prospective cohort study with cost-minimization analysis // Crit. Care. – 2017. – Vol. 21, № 1. – P. 111. https://doi.org/10.1186/s13054-017-1693-2.; Sonnier M., Rittenberger J. C. State-of-the-art considerations in post-arrest care // J. Amer. College of Emergency Physicians Open. – 2020. – Vol. 1, № 2. – P. 107–116. https://doi.org/10.1002/emp2.12022.; Suys T., Bouzat P., Marques-Vidal P. et al. Automated quantitative pupillometry for the prognostication of coma after cardiac arrest // Neurocrit. Care. – 2014. – Vol. 21, № 2. – P. 300–308. https://doi.org/10.1007/s12028-014-9981-z.; Westhall E., Rossetti A.O., van Rootselaar A.F. et al. Standardized EEG interpretation accurately predicts prognosis after cardiac arrest // Neurology. – 2016. – Vol. 86, № 16. – P. 1482–1490. https://doi.org/10.1212/WNL.0000000000002462.; Wiberg S., Hassager C., Stammet P. et al. Single versus serial measurements of neuron-specific enolase and prediction of poor neurological outcome in persistently unconscious patients after out-of-hospital cardiac arrest - a TTM-trial substudy // PloS one. – 2017. – Vol. 12, № 1. – e0168894.https://doi.org/10.1371/journal.pone.0168894.; Witten L., Gardner R., Holmberg M. J. et al. Reasons for death in patients successfully resuscitated from out-of-hospital and in-hospital cardiac arrest // Resuscitation. – 2019. – Vol. 136. – P. 93–99. https://doi.org/10.1016/j.resuscitation.2019.01.031.

  2. 2
  3. 3
    Academic Journal

    Source: FARMAKOEKONOMIKA. Modern Pharmacoeconomics and Pharmacoepidemiology; Vol 7, No 1 (2014); 40-45 ; ФАРМАКОЭКОНОМИКА. Современная фармакоэкономика и фармакоэпидемиология; Vol 7, No 1 (2014); 40-45 ; 2070-4933 ; 2070-4909

    File Description: application/pdf

    Relation: https://www.pharmacoeconomics.ru/jour/article/view/119/105; Блинов Д.В. Оценка проницаемости ГЭБ для нейроспецифической енолазы при перинатальном гипоксически-ишемическом поражении ЦНС. Акушерство, гинекология и репродукция. 2013; 4: 15-19.; Блинов Д.В. Показатели содержания глиофибриллярного кислого протеина в сыворотке крови после церебральной ишемии в перинатальном периоде. Акушерство, гинекология и репродукция. 2014; 1: 6-11.; Волкова Е.В., Копылова Ю.В. Роль сосудистых факторов роста в патогенезе плацентарной недостаточности. Акушерство, гинекология и репродукция. 2013; 2: 29-33.; Классификация перинатальных поражений нервной системы у новорожденных. Методические рекомендации. М. 2000; 40 с.; Липатова Л.В. Нейроиммунные механизмы как ключ к патогенетическому лечению заболевания. Эпилепсия и пароксизмальные состояния. 2010; 3: 20-27.; Маджидова Ё.Н., Рахимбаева Г.С., Азизова Р.Б. Нейроиммунопатогенетические механизмы эпилепсии. Эпилепсия и пароксизмальные состояния. 2014; 1: 15-18.; Рогаткин С.О, Блинов Д.В., Володин Н.Н., Гурина О.И., Семенова А.В., Лебедев С.В., Петров С.В., Чехонин В.П. Перспективы применения иммуноферментного анализа нейроспецифических антигенов в перинатальной неврологии (клинико-экспериментальное исследование). Вопросы гинекологии, акушерства и перинатологии. 2003; 2 (4); 8-15.; Сидорова И.С., Унанян А.Л., Никитина Н.А., Рзаева А.А., Кинякин В.В. Cравнительная оценка молекулярных и иммуногистохимических маркеров иммунного повреждения эндотелия сосудов у беременных с артериальной гипертензией и преэклампсией. Акушерство, гинекология и репродукция. 2012; 4: 29-32.; Чехонин В.П., Дмитриева Т.Б., Жирков Ю.А. Иммунохимический анализ нейроспецифических антигенов. М. 2000.; Berger R., Garnier Y., Pathophysiology of perinatal brain damage. Brain Res Rew. 1999; 30: 107-134.; Blennow M., Savman K., Ilves P., Thoresen M., Rosengren L. Brain-specific proteins in the cerebrospinal fluid of severely asphyxiated newborn infants. Acta Paediatr. 2001; 90: 1171-1175.; Elimian A., Figueroa R., Verma U., Visintainer P., Sehgal P, Tejani N. Amniotic fluid neuron-specific enolase: a role in predicting neonatal neurologic injury? Obst Gynecol. 1998; 92 (1): 546-550.; Herrmann M., Curio N., Jost S., Wunderlich M.T., Synowitz H., Wallesch C.W. Protein S-100B and neuron specific enolase as early neurobio-chemical markers of the severity of traumatic brain injury. Restor Neurol Neurosci. 1999; 14: 109-114.; Missler U., Wiesmann M., Friedrich C., Kaps M. S-100 protein and neuron-specific enolase concentrations in blood as indicators of infarction volume and prognosis in acute ischemic stroke. Stroke. 1997; 28: 1956-1960.; Nagdyman N., Kömen W., Ko H., Muller C., Obladen M. Early Biochemical Indicators of Hypoxic-Ischemic Encephalopathy after Birth Asphyxia. Pediatric Research. 2001; 49 (4): 502-6.; https://www.pharmacoeconomics.ru/jour/article/view/119

  4. 4
    Academic Journal

    Source: Obstetrics, Gynecology and Reproduction; Vol 7, No 4 (2013); 15-19 ; Акушерство, Гинекология и Репродукция; Vol 7, No 4 (2013); 15-19 ; 2500-3194 ; 2313-7347

    File Description: application/pdf

    Relation: https://www.gynecology.su/jour/article/view/50/454; Классификация перинатальных поражений нервной системы у новорожденных. Методические рекомендации. М. 2000; 40 с.; Голосная Г.С. Нейрохимические аспекты патогенеза гипоксических поражений мозга у новорожденных. Автореф. дисс. …докт. мед. наук. 2005; 48 с.; Рогаткин С.О, Блинов Д.В., Володин Н.Н., Гурина О.И., Семенова А.В., Лебедев С.В., Петров С.В., Чехонин В.П. Перспективы применения иммуноферментного анализа нейроспецифических антигенов в перинатальной неврологии (клинико-экспериментальное исследование). Вопросы гинекологии, акушерства и перинатологии. 2003; 2 (4); 8-15.; Чехонин В.П., Дмитриева Т.Б., Жирков Ю.А. Иммунохимический анализ нейроспецифических антигенов. М., 2000.; Чехонин В.П., Лебедев С.В., Блинов Д.В., Гурина О.И., Семенова А.В., Лазаренко И.П., Петров С.В., Рябухин И.А., Рогаткин С.О., Володин Н.Н. Патогенетическая роль нарушения проницаемости гематоэнцефалического барьера для нейроспецифических белков при перинатальных гипоксическиишемических поражениях ЦНС. Вопросы гинекологии, акушерства и перинатологии. 2004; 3 (2): 50-56.; Berger R., Garnier Y. Pathophysiology of perinatal brain damage. Brain Res Rew. 1999; 30: 107-134.; Blennow M., Savman K., Ilves P., Thoresen M., Rosengren L. Brain-specific proteins in the cerebrospinal fluid of severely asphyxiated newborn infants. Acta Paediatr. 2001; 90: 1171-1175.; Elimian A., Figueroa R., Verma U., Visintainer P., Sehgal P, Tejani N. Amniotic fluid neuronspecific enolase: a role in predicting neonatal neurologic injury? Obst. Gynecol. 1998; 92 (1): 546-550.; Herrmann M., Curio N., Jost S., Wunderlich M.T., Synowitz H., Wallesch C.W. Protein S-100B and neuron specific enolase as early neurobio-chemical markers of the severity of traumatic brain injury. Restor. Neurol. Neurosci. 1999; 14: 109-114.; Missler U., Wiesmann M., Friedrich C., Kaps M. S-100 protein and neuron-specific enolase concentrations in blood as indicators of infarction volume and prognosis in acute ischemic stroke. Stroke. 1997; 28: 1956-1960.; Nagdyman N., Kömen W., Ko H., Muller C., Obladen M. Early Biochemical Indicators of Hypoxic-Ischemic Encephalopathy after Birth Asphyxia. Pediatric. Research. 2001; 49 (4).; https://www.gynecology.su/jour/article/view/50

  5. 5
    Academic Journal

    Source: Medical Immunology (Russia); Том 12, № 1-2 (2010); 147-150 ; Медицинская иммунология; Том 12, № 1-2 (2010); 147-150 ; 2313-741X ; 1563-0625 ; 10.15789/1563-0625-2010-1-2

    File Description: application/pdf

    Relation: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/61/59; Алексеева М. А., Гусарова Е. В., Муллабаева С.М. Онкомаркеры, их характеристики и некоторые аспекты клинико-диагностического использования//Проблемы репродукции. -2005. -№ 3. -С. 69.; Балаболкин М.И., Клебанова Е.М., Креминская В.М. Фундаментальная и клиническая тироидология. -М.: Медицина, 2007. -816 с.; Велданова М.В. Уроки тиреоидологии. -Петрозаводск: ИнтелТек, 2005. -397 с.; Жирков Ю.А., Гурина О.И., Рябухина И.А. Количественно-кинетические параметры элиминации нейроспецифических антигенов и антител к ним из крови при некоторых нервно-психических заболеваниях//Российский психиатрический журнал. -2000. -№ 4. -С. 8.; Цыбиков Н.Н., Цыбикова Е.А. Уровень мозгоспецифического белка S100В, аутоантител к нему и цитокиновый профиль у больных алкогольным делирием//Медицинская иммунология. -2008. -Т. 10, № 1. -С. 85-88.; Чехонин В.П., Лебедев С.В., Дмитриева Т.Б. Иммуноферментный анализ NSE и GFAP как критерий динамической оценки проницаемости гематоэнцефалического барьера крыс при перинатальном гипоксически-ишемическом поражении ЦНС//Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. -2003. -Т. 136, № 9. -С. 299-303.; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/61

  6. 6
  7. 7
  8. 8
    Academic Journal

    Source: Acta Biomedica Scientifica; № 3(2) (2013); 13-16 ; 2587-9596 ; 2541-9420

    File Description: application/pdf

    Relation: https://www.actabiomedica.ru/jour/article/view/1480/1427; Барашнев Ю.И. Перинатальная неврология. -М.: Триада-Х, 2001. - 640 с.; Володин Н.Н. Национальное руководство по неонатологии. - М.: Геотар-Медицина, 2007. - 848 с.; Володин Н.Н. Перинатальная неврология - проблемы и пути решения // Ж. неврологии и психиатрии. - 2009. - № 10. - С. 4-8.; Голосная Г.С. Роль ингибиторов апоптоза в диагностике и прогнозировании исходов перинатальных гипоксических поражений головного мозга у новорожденных // Педиатрия. - М., 2005. - № 3. - С. 30-35.; Хайкин С. Нейронные сети полный курс. - М.: ООО «И.Д. Вильямс», 2006. - 1104 с.; Шляхто Е.В., Баранцевич Е.Р., Щербак Н.С., Галагудза М.М. Молекулярные механизмы формирования ишемической толерантности головного мозга // Вестн. РАМН. - 2012. - № 6. - С. 42-50.; Kawamoto A., Kawata H., Akai Y. et al. Serum levels of VEGF and basic FGF in the subacute phase of myocardial infarction // Int. J. Cardiol. - 1998. - Vol. 67. - P. 47-54.; https://www.actabiomedica.ru/jour/article/view/1480

  9. 9
  10. 10
  11. 11
  12. 12
  13. 13
  14. 14
  15. 15
  16. 16
  17. 17
  18. 18
  19. 19
  20. 20