-
1Academic Journal
Συγγραφείς: Tatiana, DANILA, Mihaela, MUNTEANU, Lucia, CIOBANU, Mihail, POPOVICI, VALERIU, COBEȚ
Πηγή: Bulletin of the Academy of Sciences of Moldova. Medical Sciences; Vol. 72 No. 1 (2022): Medical Sciences; 97-105 ; Buletinul Academiei de Științe a Moldovei. Științe medicale; Vol. 72 Nr. 1 (2022): Ştiinţe medicale; 97-105 ; Вестник Академии Наук Молдовы. Медицина; Том 72 № 1 (2022): Медицина; 97-105 ; 1857-0011 ; 10.52692/1857-0011.2022.1-72
Θεματικοί όροι: NSTEMI, нарушение гемостаза, прокоагулянтные маркеры, антикоагулянтные маркеры, маркеры фибринолиза, dereglarea hemostazei, markeri procoagulanți, markerii ai sistemului antiocoagulant, markeri ai fibrinolizei, haemostasis disorder, procoagulant markers, anticoagulant system markers, fibrinolysis markers
-
2Academic Journal
Συγγραφείς: Dănilă, T., Munteanu Ivanov, M.V., Ciobanu, L.M., Popovici, M.I., Cobeţ, V.A., Kobets, V.A.
Πηγή: Buletinul Academiei de Ştiinţe a Moldovei. Ştiinţe Medicale 72 (1) 97-105
Θεματικοί όροι: markerii ai sistemului antiocoagulant, NSTEMI, procoagulant markers, нарушение гемостаза, haemostasis disorder, прокоагулянтные маркеры, антикоагулянтные маркеры, dereglarea hemostazei, fibrinolysis markers, маркеры фибринолиза, markeri ai fibrinolizei, anticoagulant system markers, markeri procoagulanți
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Σύνδεσμος πρόσβασης: https://ibn.idsi.md/vizualizare_articol/153779
-
3Academic Journal
Συγγραφείς: A. D. Filev, V. M. Pisarev, А. Д. Филев, В. М. Писарев
Πηγή: Russian Sklifosovsky Journal "Emergency Medical Care"; Том 9, № 1 (2020); 96-107 ; Журнал им. Н.В. Склифосовского «Неотложная медицинская помощь»; Том 9, № 1 (2020); 96-107 ; 2541-8017 ; 2223-9022 ; 10.23934/2223-9022-2020-9-1
Θεματικοί όροι: нарушение гемостаза, critical illness, inflammation, impaired hemostasis, критические состояния, воспаление
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Relation: https://www.jnmp.ru/jour/article/view/909/747; https://www.jnmp.ru/jour/article/view/909/802; Кузовлев А.Н., Гречко А.В. Ингаляционные антибиотики в реаниматологии: состояние проблемы и перспективы развития. Общая реаниматология. 2017;13(5):69–84. https://doi.org/10.15360/1813-9779-2017-5-69-84; Востриков В.А., Кузовлев А.Н. Общедоступная дефибрилляция при внезапной остановке сердца. Общая реаниматология. 2018;14(1):58–67. https://doi.org/10.15360/1813-9779-2018-1-58-67; Jabaley CS, Blum JM, Groff RF, O’Reilly-Shah VN. Global trends in the awareness of sepsis: insights from search engine data between 2012 and 2017. Crit Care. 2018;22(1):7. PMID: 29343292 https://doi.org/10.1186/s13054-017-1914-8; Iwashyna TJ, Ely EW, Smith DM, Langa KM. Long-term Cognitive Impairment and Functional Disability Among Survivors of Severe Sepsis. JAMA. 2010; 304(16):1787–1794. PMID: 20978258 https://doi.org/ 10.1001/jama.2010.1553; Gaudry S, Messika J, Ricard JD, Guillo S, Pasquet B, Dubief E, et al. Patient-important outcomes in randomized controlled trials in critically ill patients: a systematic review. Ann Intensive Care. 2017;7(1):28. PMID: 28271450 https://doi.org/ 10.1186/s13613-017-0243-z; Jickling GC, Sharp FR. Blood biomarkers of ischemic stroke. Neurotherapeutics. 2011;8(3):349–360. PMID: 21671123 https://doi.org/10.1007/s13311-011-0050-4; Писарев В.М., Чумаченко А.Г., Филев А.Д., Ершова Е.С., Костюк С.В., Вейко Н.Н., и др. Комбинация молекулярных биомаркеров ДНК в прогнозе исхода критических состояний. Общая реаниматология. 2019;15(3):31–47. https://doi.org/10.15360/1813-9779-2019-3-31-47; Roca E, Nescolarde L, Lupón J Barallat J, Januzzi JL, Liu P, et al. The Dynamics of Cardiovascular Biomarkers in non-Elite Marathon Runners. J Cardiovasc Transl Res. 2017;10(2):206–208. PMID: 28382580https://doi.org/10.1007/s12265-017-9744-2; Дмитриева И.Б., Белобородова Н.В., Черневская Е.А. Биомаркеры прокальцитонин и белок S100β в клинико-лабораторном мониторинге при критических состояниях новорожденных. Общая реаниматология. 2013;9(3):58–65. https://doi.org/10.15360/1813-9779-2013-3-58; Boyapati RK, Tamborska A, Dorward DA, Ho GT. Advances in the understanding of mitochondrial DNA as a pathogenic factor in inflammatory diseases. F1000Res. 2017;6:169. PMID: 28299196 https://doi.org/10.12688/f1000research.10397.1; Тамакович С.Н., Власов В.В., Лактионов П.П. Циркулирующие дезоксирибонуклеиновые кислоты крови и их использование в медицинской диагностике. Молекулярная биология. 2008;42(1):12–23.; Хубутия М.Ш., Шабанов А.К., Скулачев М.В., Булава Г.В., Савченко И.М., Гребенников О.А. и др. Митохондриальная и ядерная ДНК у пострадавших с тяжелой сочетанной травмой. Общая реаниматология. 2013;9(6):24–35. https://doi.org/10.15360/1813-9779-2013-6-24; Мороз В.В., Мягкова Е.А., Жанатаев А.К., Рябов Г.А., Остапченко Д.А., Дурнев А.Д., и др. Повреждения ДНК и процессы клеточной гибели лейкоцитов у пострадавших с тяжелой травмой. Общая реаниматология. 2014;10(4):11–36. https://doi.org/10.15360/1813-9779-2014-4-11-36; Козлов В.А. Свободная внеклеточная ДНК в норме и при патологии. Медицинская иммунология. 2013;15(5):399–412. https://doi.org/10.15789/1563-0625-2013-5-399-412; Moore LD, Le T, Fan G. DNA methylation and its basic function. Neuropsychopharmacology. 2013;38(1):23–38. PMID: 22781841 https://doi.org/10.1038/npp.2012.112; Suelves M, Carrió E, Núñez-Álvarez Y, Peinado MA. DNA methylation dynamics in cellular commitment and differentiation. Brief Funct Genomics. 2016;15(6):443–453. PMID: 27416614 https://doi.org/10.1093/bfgp/elw017; Lehmann-Werman R, Neiman D, Zemmour H. Moss J, Magenheim J, Vaknin-Dembinsky A, et al. Identification of tissue-specific cell death using methylation patterns of circulating DNA. Proc Natl Acad Sci USA. 2016;113(13):E1826–34. PMID: 26976580 https://doi.org/10.1073/pnas.1519286113; Moss J, Magenheim J, Neiman D Zemmour H, Loyfer N, Korach A, et al. Comprehensive human cell-type methylation atlas reveals origins of circulating cell-free DNA in health and disease. Nat Commun. 2018;9(1):5068. PMID: 30498206 https://doi.org/ 10.1038/s41467-018-07466-6; Pisetsky DS. The origin and properties of extracellular DNA: from PAMP to DAMP. Clin Immunol. 2012;144(1):32–40. https://doi.org/10.1016/j.clim.2012.04.006; Peters DL, Pretorius PJ. Origin, translocation and destination of extracellular occurring DNA — a new paradigm in genetic behavior. Clin Chim Acta. 2011;412(11–12):806–11. https://doi.org/10.1016/j.cca.2011.01.026; Gahan PB, Anker P, Stroun M. Metabolic DNA as the origin of spontaneously released DNA? Ann N Y Acad Sci. 2008;1137:7–17. https://doi.org/10.1196/annals.1448.046; Brinkmann V, Reichard U, Goosmann C, Fauler B, Uhlemann Y, Weiss DS, et al. Neutrophil extracellular traps kill bacteria. Science. 2004;303(5663):1532–1535. https://doi.org/10.1126/science.1092385; Fuchs TA, Abed U, Goosmann C, Hurwitz R, Schulze I, Wahn V, et al. Novel cell death program leads to neutrophil extracellular traps. J Cell Biol. 2007;176(2):231–41. https://doi.org/10.1083/jcb.200606027; Jorch SK, Kubes P. An emerging role for neutrophil extracellular traps in noninfectious disease. Nat Med. 2017;23(3):279–287. PMID: 28267716 https://doi.org/10.1038/nm.4294; Ermakov AV, Kostyuk SV, Konkova MS Egolina NA, Malinovskaya EM, et al. Extracellular DNA fragments. Ann N Y Acad Sci. 2008;1137:41–46. PMID: 18837923 https://doi.org/10.1196/annals.1448.024; Van der Vaart M, Pretorius PJ. The origin of circulating free DNA. Clin Chem. 2007;53(12):2215. https://doi.org/10.1373/clinchem.2007.092734; Swarup V, Rajeswari MR. Circulating (cell-free) nucleic acids--a promising, non-invasive tool for early detection of several human diseases. FEBS Lett. 2007;581(5):795–799. PMID: 17289032 https://doi.org/ 10.1016/j.febslet.2007.01.051; Zhivotosky B, Orrenius S. Assessment of apoptosis and necrosis by DNA fragmentation and morphological criteria. Curr Protoc Cell Biol. 2001;Ch18:18.3.1–18.3.23. PMID:18228342 https://doi.org/10.1002/0471143030.cb1803s12; Verhoven B, Schlegel RA, Williamson P. Mechanisms of phosphatidylserine exposure, a phagocyte recognition signal, on apoptotic T lymphocytes. J Exp Med. 1995;182(5)1597–1601. PMID: 7595231 https://doi.org/10.1084/jem.182.5.1597; Radic M, Marion TN. Neutrophil extracellular chromatin traps connect innate immune response to autoimmunity. Semin Immunopathol. 2013;35(4):465–480. PMID: 23595413 https://doi.org/10.1007/s00281-013-0376-6; Fernando MR, Jiang C, Krzyzanowski GD, Ryan WL. New evidence that a large proportion of human blood plasma cell-free DNA is localized in exosomes. PLoS One. 2017; 12(8):e0183915. PMID: 28850588 https://doi.org/10.1371/journal.pone.0183915; Anitei M, Wassmer T, Stange C, Hoflack B. Bidirectional transport between the trans-Golgi network and the endosomal system. Mol Membr Biol. 2010;27(8):443–456. PMID: 21054155 https://doi.org/10.3109/09687688.2010.522601; Raposo G, Nijman HW, Stoorvogel W, Liejendekker R, Harding CV, Melief CJ, et al. B lymphocytes secrete antigen-presenting vesicles. J Exp Med. 1996;183(3):1161–1172. PMID: 8642258 https://doi.org/10.1084/jem.183.3.1161; Valadi H, Ekström K, Bossios A Sjöstrand M, Lee JJ, Lötvall JO, et al. Exosome-mediated transfer of mRNAs and microRNAs is a novel mechanism of genetic exchange between cells. Nat Cell Biol. 2007;9(6):654–659. PMID: 17486113 https://doi.org/10.1038/ncb1596; MacKenzie A, Wilson HL, Kiss-Toth E, Dower SK, North RA, Surprenant A, et al. Rapid secretion of interleukin-1beta by microvesicle shedding. Immunity. 2001;15(5):825–835. PMID: 11728343 https://doi.org/10.1016/s1074-7613(01)00229-1; Nunnari J, Suomalainen A. Mitochondria: in sickness and in health. Cell. 2012;148(6):1145–1159. PMID: 22424226 https://doi.org/10.1016/j.cell.2012.02.035; Hong EE, Okitsu CY, Smith AD, Hsieh CL. Regionally specific and genome-wide analyses conclusively demonstrate the absence of CpG methylation in human mitochondrial DNA. Mol Cell Biol. 2013;33(14):2683–2690. PMID: 23671186 https://doi.org/10.1128/MCB.00220-13; Shock LS, Thakkar PV, Peterson EJ, Moran RG, Taylor SM, et al. DNA methyltransferase 1, cytosine methylation, and cytosine hydroxymethylation in mammalian mitochondria. Proc Natl Acad Sci U S A. 2011;108(9):3630–3635. PMID: 21321201 https://doi.org/10.1073/pnas.1012311108; Di Carlo M, Giacomazza D, Picone P Nuzzo D, San Biagio PL. Are oxidative stress and mitochondrial dysfunction the key players in the neurodegenerative diseases? Free Radic Res. 2012;46(11):1327–1338. PMID: 22817279 https://doi.org/10.3109/10715762.2012.714466; Shimada K, Crother TR, Karlin J Dagvadorj J, Chiba N, Chen S, et al. Oxidized mitochondrial DNA activates the NLRP3 inflammasome during apoptosis. Immunity. 2012;36(3):401–414. PMID: 22342844 https://doi.org/10.1016/j.immuni.2012.01.009; Zhong Z, Liang S, Sanchez-Lopez E He F, Shalapour S, Lin XJ, et al. New mitochondrial DNA synthesis enables NLRP3 inflammasome activation. Nature. 2018;560(7717):198–203. PMID: 30046112 https://doi.org/10.1038/s41586-018-0372-z; Phaniendra A, Jestadi DB, Periyasamy L. Free Radicals: Properties, Sources, Targets, and Their Implication in Various Diseases. Indian J Clin Biochem. 2015;30(1):11–26. https://doi.org/10.1007/s12291-014-0446-0; Jackson SP, Bartek J. The DNA-damage response in human biology and disease. Nature. 2009;461(7267):1071–1078. PMID: 19847258 https://doi.org/10.1038/nature08467; Hegde ML, Hazra TK, Mitra S. Early Steps in the DNA Base Excision/ Single-Strand Interruption Repair Pathway in Mammalian Cells. Cell Res. 2008;18(1):27–47. PMID: 18166975 https://doi.org/10.1038/cr.2008.8; Hegde ML, Izumi T, Mitra S. Oxidized Base Damage and Single-Strand Break Repair in Mammalian Genomes: Role of Disordered Regions and Posttranslational Modifications in Early Enzymes. Prog Mol Biol Transl Sci. 2012;110:123–153. PMID: 22749145 https://doi.org/10.1016/B978-0-12-387665-2.00006-7; Jaruga P, Rozalski R, Jawien A Migdalski A, Olinski R, Dizdaroglu M. DNA damage products (5’R)- and (5’S)-8,5’-cyclo-2’-deoxyadenosines as potential biomarkers in human urine for atherosclerosis. Biochemistry. 2012;51(9):1822–1824. PMID: 22360777 https://doi.org/10.1021/bi201912c; Filev AD, Shmarina GV, Ershova E, Veiko NN, Martynov AV, Borzikova MA, et al. Oxidized Cell-Free DNA Role in the Antioxidant Defense Mechanisms under Stress. Hindawi. Oxid Med Cell Longev. 2019(4):1–13. PMID: 31360293 https://doi.org/10.1155/2019/1245749; Zhang L, Deng S, Zhao S , Ai Y, Zhang L, Pan P, et al. Intra-Peritoneal Administration of Mitochondrial DNA Provokes Acute Lung Injury and Systemic Inflammation via Toll-Like Receptor 9. Int J Mol Sci. 2016;17(9). pii: E1425. PMID: 27589725 https://doi.org/10.3390/ijms17091425; Pallen MJ. Time to recognise that mitochondria are bacteria? Trends Microbiol. 2011;19(2):58–64. PMID: 21123072 https://doi.org/10.1016/j.tim.2010.11.001; Gunter TE, Buntinas L, Sparagna GC, Gunter KK. The Ca2+ transport mechanisms of mitochondria and Ca2+ uptake from physiological-type Ca2+ transients. Biochim Biophys Acta. 1998;1366(1–2):5–15. PMID: 9714709 https://doi.org/10.1016/s0005-2728(98)00117-0; Hockenbery D, Nuñez G, Milliman C Schreiber RD, Korsmeyer SJ, et al. Bcl-2 is an inner mitochondrial membrane protein that blocks programmed cell death. Nature. 1990;348(6299):334–336. PMID: 2250705 https://doi.org/10.1038/348334a0; Rodríguez-Nuevo A, Zorzano A. The sensing of mitochondrial DAMPs by non-immune cells. Cell Stress. 2019;3(6):195–207. PMID:31225514 https://doi.org/10.15698/cst2019.06.190; de Jong SD, Basha G, Wilson KD Kazem M, Cullis P, Jefferies W, et al. The immunostimulatory activity of unmethylated and methylated CpG oligodeoxynucleotide is dependent on their ability to colocalize with TLR9 in late endosomes. J Immunol. 2010;184(11):6092–6102. PMID: 20427776 https://doi.org/10.4049/jimmunol.0802442; Hemmi H, Takeuchi O, Kawai T Kaisho T, Sato S, Sanjo H, et al. A Tolllike receptor recognizes bacterial DNA. Nature. 2000;408(6813):740–745. PMID: 11130078 https://doi.org/10.1038/35047123; Lund J, Sato A, Akira S, Medzhitov R, Iwasaki A, et al. Toll-like receptor 9-mediated recognition of Herpes simplex virus-2 by plasmacytoid dendritic cells. J Exp Med. 2003;198(3):513–520. PMID: 12900525 https://doi.org/10.1084/jem.20030162; Bird AP, Taggart MH, Nicholls RD, Higgs DR. Non-methylated CpG-rich islands at the human alpha-globin locus: implications for evolution of the alpha-globin pseudogene. EMBO J. 1987;6(4):999–1004. PMID: 3595568; Broz P, Dixit VM. Inflammasomes: mechanism of assembly, regulation and signalling. Nat Rev Immunol. 2016;16(7):407–420. PMID: 27291964 https://doi.org/10.1038/nri.2016.58; Gould TJ, Vu TT, Stafford AR Dwivedi DJ, Kim PY, Fox-Robichaud AE, et al. Cell-Free DNA Modulates Clot Structure and Impairs Fibrinolysis in Sepsis. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2015;35(12):2544–2553. PMID: 26494232 https://doi.org/10.1161/ATVBAHA.115.306035; Mai SH, Khan M, Dwivedi DJ, Ross CA, Zhou J, Gould TJ, et al. Canadian Critical Care Translational Biology Group. Delayed but not Early Treatment with DNase Reduces Organ Damage and Improves Outcome in a Murine Model of Sepsis. Shock. 2015;44(2):166–172. PMID: 26009820 https://doi.org/10.1097/SHK.0000000000000396; Meng W, Paunel-Görgülü A, Flohé S, Hoffmann A, Witte I, MacKenzie C, et al. Depletion of neutrophil extracellular traps in vivo results in hypersusceptibility to polymicrobial sepsis in mice. Crit Care. 2012;16(4):R137. PMID: 22835277 https://doi.org/10.1186/cc11442; Motwani M, Pesiridis S, Fitzgerald KA. DNA sensing by the cGAS-STING pathway in health and disease. Nat Rev Genet. 2019;20(11):657–674. PMID: 31358977 https://doi.org/10.1038/s41576-019-0151-1; Tsai NW, Lin TK, Chen SD, Chang WN, Wang HC, Yang TM, et al. The value of serial plasma nuclear and mitochondrial DNA levels in patients with acute ischemic stroke. Clin Chim Acta. 2011;412(5–6):476–479. PMID: 21130757 https://doi.org/10.1016/j.cca.2010.11.036; Конорова И.Л., Максимова М.Ю., Смирнова И.Н., Болотова Т.А., Ершова Е.С., Вейко Н.Н., и др. Циркулирующая в плазме крови внеклеточная ДНК в патогенезе ишемического инсульта: роль транскрибируемой области рибосомного повтора. Патологическая физиология и экспериментальная медицина. 2014;(2):13–23.; O’Connell GC, Petrone AB, Tennant CS, Lucke-Wold N, Kabbani Y, Tarabishy AR, et al. Circulating extracellular DNA levels are acutely elevated in ischaemic stroke and associated with innate immune system activation. Brain Inj. 2017;31(10):1369–1375. PMID: 28585898 https://doi.org/10.1080/02699052.2017.1312018; Glebova KV, Veiko NN, Nikonov AA. Porokhovnik LN, Kostuyk SV, et al. Cell-free DNA as a biomarker in stroke: Current status, problems and perspectives. Crit Rev Clin Lab Sci. 2018;55(1):55–70. PMID: 29303618 https://doi.org/10.1080/10408363.2017.1420032; Hummel EM, Hessas E, Müller S, Beiter T, Fisch M, Eibl A, et al. Cell-free DNA release under psychosocial and physical stress conditions. Transl Psychiatry. 2018;8(1):236. PMID: 30374018 https://doi.org/10.1038/s41398-018-0264-x; Rannikko J, Seiskari T, Huttunen R, Tarkiainen I, Jylhävä J, Hurme M, et al. Plasma cell-free DNA and qSOFA score predict 7-day mortality in 481 emergency department bacteraemia patients. J Intern Med. 2018;284(4):418–426. PMID: 29687943 https://doi.org/ 0.1111/joim.12766; Schneck E, Samara O, Koch C, Hecker A, Padberg W, Lichtenstern C, et al. Plasma DNA and RNA differentially impact coagulation during abdominal sepsis-an explorative study. J Surg Res. 2017;210:231–243. PMID: 28457334 https://doi.org/10.1016/j.jss.2016.11.044; Jackson Chornenki NL, Coke R, Kwong AC, Dwivedi DJ, Xu MK, McDonald E, et al. Comparison of the source and prognostic utility of cfDNA in trauma and sepsis. Intensive Care Med Exp. 2019;7(1):29. PMID: 31119471 https://doi.org/10.1186/s40635-019-0251-4; Базеко Н.П., Алексеенко Ю.В.; Всемирная Организация Здравоохранения. Инсульт: программа возврата к активной жизни. Москва: Медицинская литература; 2004.; Silva GS, Koroshetz WJ, González RG, Schwamm LH. Causes of Ischemic Stroke. In: González R, Hirsch J, Lev M, Schaefer P, Schwamm L. (eds.) Acute Ischemic Stroke. Imaging and Intervention. Springer, Berlin, Heidelberg; 2011. p.25–42.; Arai K, Lok J, Guo S, Hayakawa K, Xing C, Lo EH. Cellular mechanisms of neurovascular damage and repair after stroke. J Child Neurol. 2011; 6(9):1193–1198. PMID: 21628695 https://doi.org/10.1177/0883073811408610; Oldendorf WH, Cornford ME, Brown WJ. The large apparent work capability of the blood-brain barrier: a study of the mitochondrial content of capillary endothelial cells in brain and other tissues of the rat. Ann Neurol. 1977;1(5):409–17. PMID: 617259 https://doi.org/10.1002/ana.410010502; Khatri R, McKinney AM, Swenson B, Janardhan V. Blood-brain barrier, reperfusion injury, and haemorrhagic transformation in acute ischemic stroke. Neurology. 2012;79(13 Suppl 1):S52–57. PMID: 23008413 https://doi.org/10.1212/WNL.0b013e3182697e70; del Zoppo GJ. The neurovascular unit, matrix proteases, and innate inflammation. Ann N Y Acad Sci. 2010;1207:46–49. PMID: 20955425 https://doi.org/10.1111/j.1749-6632.2010.05760.x; Kago T, Takagi N, Date I, Takenaga Y, Takagi K, Takeo S. Cerebral ischemia enhances tyrosine phosphorylation of occludin in brain capillaries. Biochem Biophys Res Commun. 2006;339(4):1197–1203. PMID: 16338221 DOI:10.1016/j.bbrc.2005.11.133; Grossmann J. Molecular mechanisms of «detachment-induced apoptosis – Anoikis». Apoptosis. 2002;7(3):247–260. PMID: 11997669; Boyko M, Ohayon S, Goldsmith T, Douvdevani A, Gruenbaum BF, Melamed I, et al. Cell-free DNA-a marker to predict ischemic brain damage in a rat stroke experimental model. J Neurosurg Anesthesiol. 2011;23(3):222–228. PMID: 21593692 https://doi.org/10.1097/ANA.0b013e31821b536a; Guidelines for the Early Management of Patients With Acute Ischemic Stroke: 2019 Update to the 2018 Guidelines for the Early Management of Acute Ischemic Stroke: A Guideline for Healthcare Professionals From the American Heart Association/American Stroke Association. Stroke. 2019;50(12):e440–e441. PMID: 3176529 https://doi.org/10.1161/STR.0000000000000215; Vajpeyee A, Wijatmiko T, Vajpeyee M, Taywade O. Cell free DNA: A Novel Predictor of Neurological Outcome after Intravenous Thrombolysis and/or Mechanical Thrombectomy in Acute Ischemic Stroke Patients. Neurointervention. 2018;13(1):13–19. PMID: 29535894 https://doi.org/10.5469/neuroint.2018.13.1.13; Bhaskar S, Stanwell P, Cordato D, Attia J, Levi C, et al. Reperfusion therapy in acute ischemic stroke: dawn of a new era? BMC Neurol. 2018;18(1):8. PMID: 29338750 https://doi.org/10.1186/s12883-017-1007-y; Wang L, Xie L, Zhang Q, Cai X, Tang Y, Wang L, et al. Plasma nuclear and mitochondrial DNA levels in acute myocardial infarction patients. Coron Artery Dis. 2015; 26(4):296–300. PMID: 25714070 https://doi.org/10.1097/MCA.0000000000000231; Zemmour H, Planer D, Magenheim J, Moss J, Neiman D, Gilon D, et al. Non-invasive detection of human cardiomyocyte death using methylation patterns of circulating DNA. Nat Commun. 2018;9(1):1443. PMID: 29691397 https://doi.org/10.1038/s41467-018-03961-y; Omar AS, Mahmoud K, Hanoura S, Osman H, Sivadasan P, Sudarsanan S, et al. Acute kidney injury induces high-sensitivity troponin measurement changes after cardiac surgery. BMC Anesthesiol. 2017;17(1):15. PMID: 28143401 https://doi.org/10.1186/s12871-017-0307-5; Vallabhajosyula S, Sakhuja A, Geske JB Kumar M, Poterucha JT, Kashyap R, et al. Role of Admission Troponin-T and Serial Troponin-T Testing in Predicting Outcomes in Severe Sepsis and Septic Shock. J Am Heart Assoc. 2017;6(9).pii: e005930. PMID: 28889100 https://doi.org/10.1161/JAHA.117.005930; Herman DS, Kavsak PA, Greene DN. Variability and Error in Cardiac Troponin Testing: An ACLPS Review. Am J Clin Patrol. 2017;148(4):281–295. PMID: 28967956 DOI:10.1093/ajcp/aqx066; Xie J, Yang J, Hu P. Correlations of Circulating Cell-Free DNA With Clinical Manifestations in Acute Myocardial Infarction. Am J Med Sci. 2018;356(2):121–129. PMID: 30219153 https://doi.org/10.1016/j.amjms.2018.04.007; Singer M, Deutschman CS, Seymour CW Shankar-Hari M, Annane D, Bauer M, et al. The Third International Consensus Definitions for Sepsis and Septic Shock (Sepsis-3). JAMA. 2016; 315(8):801–810. PMID: 26903338 https://doi.org/10.1001/jama.2016.0287; Angus DC, Seymour CW, Coopersmith CM, Deutschman CS, Klompas M, Levy MM, et al. A framework for the development and interpretation of different sepsis definitions and clinical criteria. Crit Care Med. 2016;44(3):e113–e121. PMID: 26901559 https://doi.org/10.1097/CCM.0000000000001730; Avriel A, Paryente Wiessman M, Almog Y Perl Y, Novack V, Galante O, et al. Admission cell free DNA levels predict 28-day mortality in patients with severe sepsis in intensive care. PLoS One. 2014;9(6):e100514. PMID: 24955978 https://doi.org/10.1371/journal.pone.0100514; Dwivedi DJ, Toltl LJ, Swystun LL Pogue J, Liaw KL, Weitz JI, et al. Canadian Critical Care Translational Biology Group. Prognostic utility and characterization of cell-free DNA in patients with severe sepsis. Crit Care. 2012;16(4):R151. PMID: 22889177 https://doi.org/10.1186/cc11466; Wheeler AP, Bernard GR. Treating patients with severe sepsis. N Engl J Med. 1999;340(3):207–214. PMID: 9895401 https://doi.org/10.1056/NEJM199901213400307; Hotchkiss RS, Karl IE. The pathophysiology and treatment of sepsis. N Engl J Med. 2003;348(2):138–150. PMID: 12519925 https://doi.org/10.1056/NEJMra021333; Gould TJ, Vu TT, Swystun LL Dwivedi DJ, Mai SH, Weitz JI, et al. Neutrophil extracellular traps promote thrombin generation through platelet-dependent and platelet-independent mechanisms. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2014;34(9):1977–1984. PMID: 25012129 https://doi.org/10.1161/ATVBAHA.114.304114; Trigg RM, Martinson LJ, Parpart-Li S, Shaw JA. Factors that influence quality and yield of circulating-free DNA: A systematic review of the methodology literature. Heliyon. 2018;4(7):e00699. PMID: 30094369 https://doi.org/10.1016/j.heliyon.2018.e00699; https://www.jnmp.ru/jour/article/view/909
-
4Academic Journal
Συγγραφείς: M. A. Mingalimov, K. N. Grigorieva, M. V. Tretyakova, I. Elalamy, Kh. G. Sultangadzhieva, V. O. Bitsadze, J. Kh. Khizroeva, A. D. Makatsariya, М. А. Мингалимов, К. Н. Григорьева, М. В. Третьякова, И. Элалами, Х. Г. Султангаджиева, В. О. Бицадзе, Д. Х. Хизроева, А. Д. Макацария
Πηγή: Obstetrics, Gynecology and Reproduction; Vol 14, No 1 (2020); 56-68 ; Акушерство, Гинекология и Репродукция; Vol 14, No 1 (2020); 56-68 ; 2500-3194 ; 2313-7347
Θεματικοί όροι: неонатальные тромбозы, DIC, perinatal medicine, thromboses, hemostatic disorders, anticoagulant therapy, gestation, neonatal thromboses, перинатальная медицина, тромбозы, нарушение гемостаза, антикоагулянтная терапия, гестация
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Relation: https://www.gynecology.su/jour/article/view/625/780; Зыятдинов К.Ш., Белопухов В.М., Якупов И.Ф. и др. Синдром диссеминированного внутрисосудистого свертывания при инфаркте миокарда. Вестник современной клинической медицины. 2014;7(5):34-9.; Макацария А.Д., Панфилова О.Ю. К вопросу о ДВС-синдроме в акушерстве: новое о старом. Практическая медицина. 2010;(4):25-37.; Trousseau A. Phlegmasia alba dolens. Clin Med Hotel Dieu Paris. 1865;3:695.; Ratnoff O.D., Pritchard J.A., Colopy J.E. et al. Hemorrhagic states during pregnancy. N Engl J Med. 1955;253(3):97-102. DOI:10.1056/NEJM195507212530305.; Lasch H.G., Heene D.L., Huth K., Sandritter W. Pathophysiology, clinical manifestations and therapy of consumption-coagulopathy («Verbrauchskoagulopathie»). Am J Cardiol. 1967;20(3):381—91. DOI:10.1016/0002-9149(67)90062-8.; McKay D.G. Disseminated intravascular coagulation: an intermediary mechanism of disease. New York: Hoeber Medical Division of Harper and Row, 1965. 392 p.; Lisman T., Luyendyk J.P. Platelets as modulators of liver disease. Semin Thromb Hemost. 2018;44(2):114-25. DOI:10.1055/s-0037-1604091.; Abbassi-Ghanavati M., Greer L.G., Cunningham F.G. Pregnancy and laboratory studies: a reference table for clinicians. Obstet Gynecol. 2009;114(6):1326-31. DOI:10.1097/A0G.0b013e3181c2bde8.; Levi M., Ten Cate H. Disseminated intravascular coagulation. N Engl J Med. 1999;341(8):586-92. DOI:10.1056/NEJM199908193410807.; Uszynski M., Zekanowska E., Uszyński W., Kuczyński J. Tissue factor (TF) and tissue factor pathway inhibitor (TFPI) in amniotic fluid and blood plasma: implications for the mechanism of amniotic fluid embolism. Eur J Obstet Gynecol Reprod Biol. 2001;95(2):163-6. DOI:10.1016/s0301-2115(00)00448-6.; Boer K., den Hollander I.A., Meijers J.C., Levi M. Tissue factor-dependent blood coagulation is enhanced following delivery irrespective of the mode of delivery. J Thromb Haemost. 2007;5(12):2415—20. DOI:10.1111/j.1538-7836.2007.02767.x.; Williams obstetrics. Eds. F. Cunningham, K.J. Leveno, S.L. Bloom et al. 25th ed. New York (NY): McGraw-Hill, 2018. 1328 p.; Kuczynski J., Uszyński W., Zekanowska E. et al. Tissue factor (TF) and tissue factor pathway inhibitor (TFPI) in the placenta and myometrium. Eur J Obstet GynecolReprod Biol. 2002;105(1):15—9. DOI:10.1016/s0301-2115(02)00113-6.; Pritchard J.A., Brekken AL. Clinical and laboratory studies on severe abruptio placentae. Am J Obstet Gynecol. 1967;97(5):681—700. DOI:10.1016/0002-9378(67)90454-1.; Макацария А.Д., Панфилова О.Ю. Эмболия околоплодными водами или анафилактоидный синдром беременности. Практическая медицина. 2010;(43):13-9.; Clark S.L. Amniotic fluid embolism. Obstet Gynecol. 2014;123(2 Pt 1):337—48. DOI:10.1097/A0G.0000000000000107.; Nelson D.B., Yost N.P., Cunningham F.G. Hemostatic dysfunction with acute fatty liver of pregnancy. Obstet Gynecol. 2014;124(1):40—6. DOI:10.1097/AOG.0000000000000296.; Sibai B.M. Imitators of severe preeclampsia. Obstet Gynecol. 2007;109(4):956--66. DOI:10.1097/01.AOG.0000258281.22296.de.; Vigil-de Gracia P., Montufar-Rueda C. Acute fatty liver of pregnancy: diagnosis, treatment, and outcome based on 35 consecutive cases. J Matern Fetal Neonatal Med. 2011;24(9):1143—6. DOI:10.3109/14767058.2010.531325.; Russell J.A. Management of sepsis. N Engl J Med. 2006;355(16):1699— 713. DOI:10.1056/NEJMra043632.; Moellering R.C., Abbott G.F., Ferraro M.J. Case records of the Massachussets General Hospital Case 2-2011. A 30-year-old woman with shock after treatment for a furuncle. N Engl J Med. 2011;364(3):266—75. DOI:10.1056/NEJMcpc1003886.; Mabie W.C., Barton J.R., Sibai B. Septic shock in pregnancy. Obstet Gynecol. 1997;90(4 Pt 1):553-61. DOI:10.1016/s0029-7844(97)00352-9.; Barton J.R., Sibai B.M. Severe sepsis and septic shock in pregnancy. Obstet Gynecol. 2012;120(3):689-706. DOI:10.1097/AOG.0b013e318263a52d.; Sheffield J.S., Cunningham F.G. Urinary tract infection in women. Obstet Gynecol. 2005;106(5 Pt 1):1085-92. DOI:10.1097/01.AOG.0000185257.52328.a2.; Wenzel R.P., Edmond M.B. Septic shock-evaluating another failed treatment. N Engl J Med. 2012;366(22):2122-4. DOI:10.1056/NEJMe1203412.; Hypertensive disorders in pregnancy. Ed. L.C. Chesley. New York (NY): Appleton-Century-Crofts, 1978. 628 р.; Pritchard J.A., Cunningham F.G., Mason R.A. Coagulation changes in eclampsia: their frequency and pathogenesis. Am J Obstet Gynecol. 1976;124(8):855-64. DOI:10.1016/s0002-9378(16)33390-7.; Jimenez J.M., Pritchard J.A. Pathogenesis and treatment of coagulation defects resulting fetal death. Obstet Gynecol. 1968;32(4):449-59.; Kramer M.S., Berg C., Abenhaim H. et al. Incidence, risk factors, and temporal trends in severe postpartum hemorrhage. Am J Obstet Gynecol. 2013;209(5):449.e1-7. DOI:10.1016/j.ajog.2013.07.007.; Erez O., Novack L., Beer-Weisel R. et al. DIC score in pregnant women - a population based modification of the International Society on Thrombosis and Hemostasis score. PLoS One. 2014;9(4):e93240. DOI:10.1371/journal.pone.0093240.; Roberts I., Murray N.A. Neonatal thrombocytopenia: causes and management. Arch Dis Child Fetal Neonatal Ed. 2003;88(5):F359-64. DOI:10.1136/fn.88.5.F359.; Levi M., Toh C.H., Thachil J., Watson H.G. Guidelines for the diagnosis and management of disseminated intravascular coagulation. British Committee for Standards in Haematology. Br J Haematol. 2009;145(1):24-93. DOI:10.1111/j.1365-2141.2009.07600.x.; Levi M., Meijers J.C. DIC: which laboratory tests are most useful. Blood Rev. 2011;25(1):33-7. DOI:10.1016/j.blre.2010.09.002.; Момот А.П., Мамаев А.Н. Современные аспекты патогенеза, диагностики и терапии ДВС-синдрома. Клиническая онкогематология. Фундаментальные исследования и клиническая практика. 2008;1(1):63-71.; Hunt B.J. Bleeding and coagulopathies in critical care. N Engl J Med. 2014;370(9):847-59. DOI:10.1056/NEJMra1208626.; Josic D., Hoffer L., Buchacher A. et al. Manufacturing of a prothrombin complex concentrate aiming at low thrombogenicity. Thromb Res. 2000;100(5):433-41. DOI:10.1016/S0049-3848(00)00339-X.; Kreuz W., Meili E., Peter-Salonen K. et al. Efficacy and tolerability of a pasteurized human fibrinogen concentrate in patients with congenital fibrinogen deficiency. Transfus Apher Sci. 2005;32(2):247-53. DOI:10.1016/j.transci.2004.08.003.; Weinkove R., Rangarajan S. Fibrinogen concentrate for acquired hypofibrinogenaemic states. Transfus Med. 2008;18(3):151-7. DOI:10.1111/j.1365-3148.2008.00854.x.; Corrigan J.J., Jordan C.M. Heparin therapy in septicemia with disseminated intravascular coagulation. N Engl J Med. 1970;283(15):778-82. DOI:10.1056/NEJM197010082831502.; Kobayashi T., Teraro T., Ikenoue T. et al. B151017 Study Group. Treatment of severe preeclampsia with antithrombin concentrate: results of a prospective feasibility study. Semin Thromb Hemost. 2003;29(6):645-52. DOI:10.1055/s-2004-815632.; Bernard G.R., Vincent J.L., Laterre P.F. et al. Efficacy and safety of recombinant human activated protein C for severe sepsis. N Engl J Med. 2001;344(10):699—709. DOI:10.1056/NEJM200103083441001.; Edwards H.M. Aetiology and treatment of severe postpartum haemorrhage. Dan Med J. 2018;65(3). pii: B5444.; https://www.gynecology.su/jour/article/view/625
-
5Academic Journal
Συγγραφείς: Гульмурадов, Т., Хамидов, Д., Абдурахимов, З., Тошпулатов, У., Бурхонов, Ш., Мурадов, А.
Περιγραφή αρχείου: text/html
-
6Academic Journal
Συγγραφείς: A. Gudkov V., D. Titov V., M. Plotnikov B., T. Borovskaya G., А. Гудков В., Д. Титов В., М. Плотников Б., Т. Боровская Г.
Πηγή: Bulletin of Siberian Medicine; Том 11, № 2 (2012); 10-12 ; Бюллетень сибирской медицины; Том 11, № 2 (2012); 10-12 ; 1819-3684 ; 1682-0363 ; 10.20538/1682-0363-2012-11-2
Θεματικοί όροι: hyperactive urocyst, urodynamics disturbance, microcirculation disturbance, homeostasis disturbance, гиперактивный мочевой пузырь, нарушение уродинамики, нарушение микроциркуляции, нарушение гемостаза
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Relation: https://bulletin.tomsk.ru/jour/article/view/441/431; Бочаров Р.В. Фармакологическая оптимизация эфферентных методов детоксикации у детей при тяжелой термической травме: автореф. дис. … канд. мед. наук. Томск, 2008. 25 с.; Вишневский Е.Л. Функциональные нарушения уродинамики нижних мочевых путей у детей (клиника, диагностика, лечение): автореф. дис. … д-ра мед. наук. М., 1982. 29 с.; Лазерная допплеровская флоуметрия микроциркуляции крови: руководство для врачей / под ред. А.И. Крупаткина, В.В. Сидорова. М.: Медицина, 2005. 256 с.; Маслов М.Ю. Гемореологические и церебропротективные свойства смеси диквертина и аскорбиновой кислоты: автореф. дис. … канд. мед. наук. Томск, 2001. 22 с.; Мешков М.В., Ерохин А.И., Яковлев А.И., Якушина Л.М. Состояние гемостаза у детей с урологической патологией // Детская хирургия. 2004. № 3. С. 26—28.; Нейрогенные дисфункции мочевого пузыря / М.Д. Джавадзаде, В.М. Державин, Е.Л. Вишневский и др.; под ред. М.Д. Джавадзаде, В.М. Державина. М.: Медицина, 1989. 384 с.; Руководство по клинической урологии / Филипп М. Ханно, С. Брюс Малкович, Алан Дж. Вейн. 3-е изд. М.: Мед. информ. агентство, 2006. 544 с.; https://bulletin.tomsk.ru/jour/article/view/441
-
7Academic Journal
Συγγραφείς: D. V. Titov
Πηγή: Бюллетень сибирской медицины, Vol 11, Iss 2, Pp 77-79 (2012)
Θεματικοί όροι: дети, нейрогенная дисфункция мочевого пузыря, нарушение уродинамики, нарушение микроциркуляции, нарушение гемостаза, Medicine
Relation: https://bulletin.ssmu.ru/jour/article/view/454; https://doaj.org/toc/1682-0363; https://doaj.org/toc/1819-3684; https://doaj.org/article/39da9be3054d4ca083b0562e4fc16825
-
8Academic Journal
Συγγραφείς: Титов, Дмитрий
Θεματικοί όροι: ДЕТИ, НЕЙРОГЕННАЯ ДИСФУНКЦИЯ МОЧЕВОГО ПУЗЫРЯ, НАРУШЕНИЕ УРОДИНАМИКИ, НАРУШЕНИЕ МИКРОЦИРКУЛЯЦИИ, НАРУШЕНИЕ ГЕМОСТАЗА
Περιγραφή αρχείου: text/html
-
9Academic Journal
Συγγραφείς: Гудков, Александр, Титов, Дмитрий, Плотников, М., Боровская, Т.
Θεματικοί όροι: ГИПЕРАКТИВНЫЙ МОЧЕВОЙ ПУЗЫРЬ, НАРУШЕНИЕ УРОДИНАМИКИ, НАРУШЕНИЕ МИКРОЦИРКУЛЯЦИИ, НАРУШЕНИЕ ГЕМОСТАЗА
Περιγραφή αρχείου: text/html
-
10Academic Journal
Συγγραφείς: Гульмурадов, Т., Хамидов, Д., Курбанов, Д., Рахимов, Х.
Θεματικοί όροι: врожденные пороки сердца, искусственное кровообращение, нарушение гемостаза, оксидантный статус, легочные осложнения
Περιγραφή αρχείου: text/html
-
11Academic Journal
Συγγραφείς: Алябьева, Е., Аржанова, О., Шляхтенко, Т., Сельков, С., Плужникова, Т.
Θεματικοί όροι: НЕВЫНАШИВАНИЕ БЕРЕМЕННОСТИ, ГИПЕРГОМОЦИСТЕИНЕМИЯ, НАРУШЕНИЕ ГЕМОСТАЗА, ПРЕГРАВИДАРНАЯ ПОДГОТОВКА
Περιγραφή αρχείου: text/html
-
12Academic Journal
Συγγραφείς: A. Solnyshco L., V. Shalygin A., D. Boldyshev A., R. Bocharov V., А. Солнышко Л., В. Шалыгин А., Д. Болдышев А., Р. Бочаров В.
Πηγή: Bulletin of Siberian Medicine; Том 1, № 2 (2002); 82-86 ; Бюллетень сибирской медицины; Том 1, № 2 (2002); 82-86 ; 1819-3684 ; 1682-0363 ; 10.20538/1682-0363-2002-1-2
Θεματικοί όροι: children, appendicular peritonitis, violation of a hemostasis, extracorporal hemocorection, hypocoagulation, дети, аппендикулярный перитонит, нарушение гемостаза, экстракорпоральная гемокоррекция, гипокоагуляция
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Relation: https://bulletin.tomsk.ru/jour/article/view/3969/2725; Габриэлян Н.И., Коновалов А.А., Дмитриев А.А. // Анестезиология и реаниматология. 1983. С. 48—50.; Долецкий С.Я., Щетинин В.Е., Арапова А.В. Осложненный острый аппендицит у детей. М.: Медицина, 1982. 192 с.; Куликов Ю.Н., Васильков В.Г. // Анестезиология и реаниматология. 1990. ¹ 2. С. 39—41.; Лохвицкий С.В., Шептунов Ю.М. // Хирургия. 1984. ¹ 11. С. 129–132.; Саитов М.М., Никитенко В.И., Есипов В.К., Писецкий С.Н. // Вестник РАМН. 1997. ¹ 3. С. 17—19.; Самхарадзе И.В. // Тромбогеморрагический синдром при острых перитонитах у детей: Автореф. дис. … докт. мед. наук. М., 1992. 49 с.; Ташев Х.Р., Благов И.Н. // Хирургия. 1999. ¹ 3. С. 37–39.; Цуман В.Г., Машков А.Е., Косарев В.А. и др. // Хирургия. 1994. ¹ 7. С. 23—25.; Шагинян А.Э. // Антибиотикотерапия методом инкубации клеточной массы в комплексном лечении перитонитов у детей: Дис. … к. м. н. Гос. Научноклин. Центр охр. здор. шахтеров СО РАМН. Ленинск-Кузнецкий, 1997. 139 с.; Шалыгин В.А. // Роль нарушений реологических свойств крови и микроциркуляции в патогенезе интоксикационного синдрома и их коррекция при аппендикулярном перитоните: Автореф. дис. … докт. мед. наук. Сиб. гос. мед. университет. Томск, 1998. 33 с.; https://bulletin.tomsk.ru/jour/article/view/3969
-
13Academic Journal
Πηγή: Доклады Академии наук Республики Таджикистан.
Θεματικοί όροι: ВРОЖДЕННЫЕ ПОРОКИ СЕРДЦА, ИССКУСТВЕННОЕ КРОВООБРАЩЕНИЕ, НАРУШЕНИЕ ГЕМОСТАЗА ОКСИДАНТНЫЙ СТАТУС, 3. Good health
Περιγραφή αρχείου: text/html
-
14Academic Journal
Πηγή: Сибирский медицинский журнал (Иркутск).
Θεματικοί όροι: ДЕТИ, НЕЙРОГЕННАЯ ДИСФУНКЦИЯ МОЧЕВОГО ПУЗЫРЯ, НАРУШЕНИЕ УРОДИНАМИКИ, НАРУШЕНИЕ МИКРОЦИРКУЛЯЦИИ, НАРУШЕНИЕ ГЕМОСТАЗА, 3. Good health
Περιγραφή αρχείου: text/html
-
15Academic Journal
Πηγή: Бюллетень сибирской медицины.
Θεματικοί όροι: ГИПЕРАКТИВНЫЙ МОЧЕВОЙ ПУЗЫРЬ, НАРУШЕНИЕ УРОДИНАМИКИ, НАРУШЕНИЕ МИКРОЦИРКУЛЯЦИИ, НАРУШЕНИЕ ГЕМОСТАЗА, 3. Good health
Περιγραφή αρχείου: text/html
-
16Academic Journal
Πηγή: Бюллетень сибирской медицины.
Θεματικοί όροι: ДЕТИ, НЕЙРОГЕННАЯ ДИСФУНКЦИЯ МОЧЕВОГО ПУЗЫРЯ, НАРУШЕНИЕ УРОДИНАМИКИ, НАРУШЕНИЕ МИКРОЦИРКУЛЯЦИИ, НАРУШЕНИЕ ГЕМОСТАЗА, 3. Good health
Περιγραφή αρχείου: text/html
-
17Academic Journal
Πηγή: Доклады Академии наук Республики Таджикистан.
Θεματικοί όροι: врожденные пороки сердца, искусственное кровообращение, нарушение гемостаза, оксидантный статус, легочные осложнения, 3. Good health
Περιγραφή αρχείου: text/html
-
18Academic Journal
Πηγή: Журнал акушерства и женских болезней.
Θεματικοί όροι: НЕВЫНАШИВАНИЕ БЕРЕМЕННОСТИ, ГИПЕРГОМОЦИСТЕИНЕМИЯ, НАРУШЕНИЕ ГЕМОСТАЗА, ПРЕГРАВИДАРНАЯ ПОДГОТОВКА, 3. Good health
Περιγραφή αρχείου: text/html
