-
1Academic Journal
Συγγραφείς: T. G. Bodrova, U. A. Budanova, Yu. L. Sebyakin, Т. Г. Бодрова, У. А. Буданова, Ю. Л. Себякин
Συνεισφορές: This work was performed using the equipment of the Shared Science and Training Center for Collective Use at the RTU MIREA and supported by the Ministry of Science and Higher Education of the Russian Federation within the framework of agreement No. 075-15-2021-689 dated September 01, 2021., Работа выполнена с использованием оборудования Центра коллективного пользования РТУ МИРЭА при поддержке Министерства науки и высшего образования Российской Федерации в рамках Соглашения № 075-15-2021-689 от 01.09.2021 г.
Πηγή: Fine Chemical Technologies; Vol 19, No 3 (2024); 202-213 ; Тонкие химические технологии; Vol 19, No 3 (2024); 202-213 ; 2686-7575 ; 2410-6593
Θεματικοί όροι: антибактериальная активность, cationic amphiphiles, L-ornithine derivatives, minimum inhibitory concentration, antibacterial activity, катионные амфифилы, производные L-орнитина, минимальная ингибирующая концентрация
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Relation: https://www.finechem-mirea.ru/jour/article/view/2085/2025; https://www.finechem-mirea.ru/jour/article/view/2085/2024; https://www.finechem-mirea.ru/jour/article/downloadSuppFile/2085/1230; Francine P. Systems Biology: New Insight into Antibiotic Resistance. Microorganisms. 2022;10(12):2362. https://doi.org/10.3390/microorganisms10122362; Van Duin D., Paterson D.L. Multidrug-Resistant Bacteria in the Community: An Update. Infect. Dis. Clin. North Am. 2020;34(4):709–722. https://doi.org/10.1016/j.idc.2020.08.002; Mayegowda S.B., Ng M., Alghamdi S., Atwah B., Alhindi Z., Islam F. Role of Antimicrobial Drug in the Development of Potential Therapeutics. Evid. Based Complement. Alternat. Med. 2022;2022:2500613. https://doi.org/10.1155/2022/2500613; Bakka T.A., Strøm M.B., Andersen J.H., Gautun O.R. Synthesis and antimicrobial evaluation of cationic low molecular weight amphipathic 1, 2, 3-triazoles. Bioorg. Med. Chem. Lett. 2017;27(5):1119–1123. https://doi.org/10.1016/j.bmcl.2017.01.092; Taubes G. The bacteria fight back. Science. 2008;321(5887): 356–361. https://doi.org/10.1126/science.321.5887.356; Bortolotti A., Troiano C., Bobone S., Konai M.M., Ghosh C., Bocchinfuso G., Acharya Y., Santucci V., Bonacorsi S., Di Stefano C., Haldar J., Stella L. Mechanism of lipid bilayer perturbation by bactericidal membrane-active small molecules. Biochim. Biophys. Acta Biomembr. 2023;1865(1):184079. https://doi.org/10.1016/j.bbamem.2022.184079; Kristiansson E., Fick J., Janzon A., Grabic R., Rutgersson C., Weijdegård B., Söderström H., Larsson D.G. Pyrosequencing of antibiotic-contaminated river sediments reveals high levels of resistance and gene transfer elements. PLoS One. 2011;6(2):e17038. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0017038; Guo Y., Hou E., Wen T., Yan X., Han M., Bai L.P., Fu X., Liu J., Qin S. Development of Membrane-Active Honokiol/ Magnolol Amphiphiles as Potent Antibacterial Agents against Methicillin-Resistant Staphylococcus aureus (MRSA). J. Med. Chem. 2021;64(17):12903–12916. https://doi.org/10.1021/acs.jmedchem.1c01073; Schweizer L., Ramirez D., Schweizer F. Effects of Lysine N-ζ-Methylation in Ultrashort Tetrabasic Lipopeptides (UTBLPs) on the Potentiation of Rifampicin, Novobiocin, and Niclosamide in Gram-Negative Bacteria. Antibiotics. 2022;11(3):335. https://doi.org/10.3390/antibiotics11030335; Neubauer D., Jaśkiewicz M., Bauer M., Gołacki K., Kamysz W. Ultrashort Cationic Lipopeptides-Effect of N-Terminal Amino Acid and Fatty Acid Type on Antimicrobial Activity and Hemolysis. Molecules. 2020;25(2):257. https://doi.org/10.3390/molecules25020257; Dawgul M.A., Greber K.E., Bartoszewska S., Baranska-Rybak W., Sawicki W., Kamysz W. In Vitro Evaluation of Cytotoxicity and Permeation Study on Lysine- and Arginine-Based Lipopeptides with Proven Antimicrobial Activity. Molecules. 2017;22(12):2173. https://doi.org/10.3390/molecules22122173; Wang M., Feng X., Gao R., Sang P., Pan X., Wei L., Lu C., Wu C., Cai J. Modular Design of Membrane-Active Antibiotics: From Macromolecular Antimicrobials to Small Scorpionlike Peptidomimetics. J. Med. Chem. 2021;64(14):9894–9905. https://doi.org/10.1021/acs.jmedchem.1c00312; Rehberg N., Sommer G.A., Drießen D., Kruppa M., Adeniyi E.T., Chen S., Wang L., Wolf K., Tasch B.O.A., Ioerger T.R., Zhu K., Müller T.J.J., Kalscheuer R. Nature-Inspired (di)Azine-Bridged Bisindole Alkaloids with Potent Antibacterial in Vitro and in Vivo Efficacy against Methicillin-Resistant Staphylococcus aureus. J. Med. Chem. 2020;63(21):12623–12641. https://doi.org/10.1021/acs.jmedchem.0c00826; Yu H.F., Qin X.J., Ding C.F., Wei X., Yang J., Luo J.R., Liu L., Khan A., Zhang L.C., Xia C.F., Luo X.D. Nepenthe-Like Indole Alkaloids with Antimicrobial Activity from Ervatamia chinensis. Org. Lett. 2018;20(13):4116–4120. https://doi.org/10.1021/acs.orglett.8b01675; Liu J., Li H., He Q., Chen K., Chen Y., Zhong R., Li H., Fang S., Liu S., Lin S. Design, synthesis, and biological evaluation of tetrahydroquinoline amphiphiles as membrane-targeting antimicrobials against pathogenic bacteria and fungi. Eur. J. Med. Chem. 2022;243:114734. https://doi.org/10.1016/j.ejmech.2022.114734; Lawrence C.L., Okoh A.O., Vishwapathi V., McKenna S.T., Critchley M.E., Smith R.B. N-alkylated linear heptamethine polyenes as potent non-azole leads against Candida albicans fungal infections. Bioorg. Chem. 2020;102:104070. https://doi.org/10.1016/j.bioorg.2020.104070; Whitby L.R., Boyle K.E., Cai L., Yu X., Gochin M., Boger D.L. Discovery of HIV fusion inhibitors targeting gp41 using a comprehensive α-helix mimetic library. Bioorg. Med. Chem. Lett. 2012;22(8):2861–2865. https://doi.org/10.1016/j.bmcl.2012.02.062; Lee W.G., Gallardo-Macias R., Frey K.M., Spasov K.A., Bollini M., Anderson K.S., Jorgensen W.L. Picomolar inhibitors of HIV reverse transcriptase featuring bicyclic replacement of a cyanovinylphenyl group. J. Am. Chem. Soc. 2013;135(44):16705–16713. https://doi.org/10.1021/ja408917n; Pape V.F., Tóth S., Füredi A., Szebényi K., Lovrics A., Szabó P., Wiese M., Szakács G. Design, synthesis and biological evaluation of thiosemicarbazones, hydrazinobenzothiazoles and arylhydrazones as anticancer agents with a potential to overcome multidrug resistance. Eur. J. Med. Chem. 2016;117:335–354. https://doi.org/10.1016/j.ejmech.2016.03.078; Özdemir A., Altintop M.D., Turan-Zitouni G., Çiftçi G.A., Ertorun İ., Alataş Ö., Kaplancikli Z.A. Synthesis and evaluation of new indole-based chalcones as potential antiinflammatory agents. Eur. J. Med. Chem. 2015;89:304–309. https://doi.org/10.1016/j.ejmech.2014.10.056; Короткин М.Д., Филатова С.М., Дениева З.Г., Буданова У.А., Себякин Ю.Л. Синтез производных аминокислот на основе диэтаноламина с симметричными и асимметричными радикалами в гидрофобном домене с потенциальной антимикробной активностью. Тонкие химические технологии. 2022;17(1):50–64. https://doi.org/10.32362/2410-6593-2022-17-1-50-64; Гусева М.К., Буданова У.А., Себякин Ю.Л. Синтез и оценка антимикробной активности катионных амфифилов на основе бивалентных производных диэтилентриамина. Хим.-фарм. журн. 2022;56(12):30–35. https://doi.org/10.30906/0023-1134-2022-56-12-38-43
-
2
-
3Academic Journal
Θεματικοί όροι: антимикобактериальные свойства, бензальдегиы полифторзамещенные, микобактерициды, минимальная ингибирующая концентрация, полифторзамещенные бензальдегиы, оксимы
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Σύνδεσμος πρόσβασης: https://elib.belstu.by/handle/123456789/48652
-
4Academic Journal
Συγγραφείς: R. R. Yenikeyev, N. Y. Tatarinova, L. M. Zakharchuk, E. N. Vinogradova, Р. Р. Еникеев, Н. Ю. Татаринова, Л. М. Захарчук, Е. Н. Виноградова
Συνεισφορές: Исследование осуществлялось в рамках научного проекта по выполнению государственного задания МГУ № 23-1-21 (регистрационный номер ЦИТИС 121032300094-7) без использования животных и без привлечения людей в качестве испытуемых
Πηγή: Vestnik Moskovskogo universiteta. Seriya 16. Biologiya; Том 77, № 2 (2022); 89–97 ; Вестник Московского университета. Серия 16. Биология; Том 77, № 2 (2022); 89–97 ; 0137-0952
Θεματικοί όροι: асептические помещения, antibiotic resistance, minimum inhibitory concentration, efflux pumps, β-lactamase activity, aseptic rooms, устойчивость к антибиотикам, минимальная ингибирующая концентрация, эффлюкс-насосы, активность β-лактамаз
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Relation: https://vestnik-bio-msu.elpub.ru/jour/article/view/1130/585; Nikaido H. Multidrug resistance in bacteria // Annu. Rev. Biochem. 2009. Vol. 78. P. 119–146.; Farrar W.E., Reboli A.C. The genus Bacillus—Medical // The Prokaryotes. Handbook on the biology of bacteria, vol. 4. Bacteria: Firmicutes, Cyanobacteria / Eds. M. Dworkin, S. Falkow, E. Rosenberg, K.-H. Schleifer, and E. Stackebrandt. N.Y.: SpringerVerlag, 2006. P. 609–630.; Bianco A., Capozzi L., Monno M.R., Del Sambro L., Manzulli V., Pesole G., Loconsole D., Parisi A. Characterization of Bacillus cereus group isolates from human bacteremia by whole-genome sequencing // Front. Microbiol. 2021. Vol. 11: 599524.; Ehling-Schulz M., Koehler T.M., Lereclus D. The Bacillus cereus Group: Bacillus species with pathogenic potential // Gram-positive pathogens. 3rd Ed. / Eds. V.A. Fischetti, R.P. Novick, J.J. Ferretti, D.A. Portnoy, M. Braunstein, and J.I. Rood. Washington: ASM Press, 2019. P. 875–902.; Yenikeyev R.R., Tatarinova N.Y., Zakharchuk L.M. Mechanisms of resistance to clinically significant antibiotics of strains of bacteria of the genus Bacillus isolated from samples delivered from the International Space Station // Moscow Univ. Biol. Sci. Bull. 2020. Vol. 75. N 4. P. 224–230.; Janda J.M., Abbot S.L. 16S rRNA gene sequencing for bacterial identification in the diagnostic laboratory: pluses, perils, and pitfalls // J. Clin. Microbiol. 2007. Vol. 45. N 9. P. 2761–2764.; Hrabak J., Chudackova E., Walkova R. Matrixassisted laser desorption ionization time- of flight (MALDI-TOF) mass spectrometry for detection of antibiotic resistance mechanisms: from research to routine diagnosis // Clin. Microbiol. Rev. 2013. Vol. 26. N 1. P. 103–114.; Ardebili A., Lari A.R., Talebi M. Correlation of ciprofloxacin resistance with the AdeABC efflux system in Acinetobacter baumannii clinical isolates // Ann. Lab. Med. 2014. Vol. 34. N 6. P. 433–438.; Aoki N., Ishii Y. , Tateda K., Saga T., Kimura S., Kikuchi Y., Kobayashi T., Tanabe Y., Tsukada H., Gejyo F., Yamaguchi K. Efficacy of calcium-EDTA as an inhibitor for metallo-β-lactamase in a mouse model of Pseudomonas aeruginosa pneumonia // Antimicrob. Agents Chemother. 2010. Vol. 54. N 11. P. 4582–4588.; Лазарева А.В., Крыжановская О.А., Бочарова Ю.А., Чеботарь И.В., Маянский Н.А. Распространенность металл-β-лактамаз и эффлюкс-механизмов у карбапенемрезистентных госпитальных штаммов Pseudomonas aeruginosa, выделенных в г. Москве в 2012–2015 гг. // Вестн. РАМН. 2015. Т. 70. № 6. С. 679–683.; Li X.Z., Nikaido H. Efflux-mediated drug resistance in bacteria // Drugs. 2004. Vol. 64. N 2. P. 159–204.; Bush K. Past and present perspectives on β-lactamases // Antimicrob. Agents Chemother. 2018. Vol. 62. N 10: e01076-18.; Timmery S., Hu X., Mahillon J. Characterization of bacilli isolated from the confined environments of the Antarctic Concordia station and the International Space Station // Astrobiology. 2011. Vol. 11. N 4. P. 323–334.; Coil D.A., Neches R.Y., Lang J.M., Brown W.E., Severance M., Cavalier D.D., Eisen J.A. Growth of 48 built environment bacterial isolates on board the International Space Station (ISS) // Peer J. 2016. Vol. 4: e1842.; Moissl-Eichinger C., Cockell C., Rettberg P. Venturing into new realms? Microorganisms in space // FEMS Microbiol. Rev. 2016. Vol. 40. N 5. P. 722–737.; Horneck G., Moeller R., Cadet J., Douki T., Rocco L., Mancinelli R.L., Wayne L., Nicholson W.L., Panitz C., Rabbow E., Rettberg P., Spry A., Stackebrandt E., Vaishampayan P., Venkateswaran K.J. Resistance of bacterial endospores to outer space for planetary protection purposes – Experiment PROTECT of the EXPOSE-E Mission // Astrobiology. 2012. Vol. 12. N 5. P. 445–456.; Uchino Y., Iriyama N., Matsumoto K., Hirabayashi Y., Miura K., Kurita D., Kobayashi Y., Yagi M., Kodaira H., Hojo A., Kobayashi S., Hatta Y., Takeuchi J. A case series of Bacillus cereus septicemia in patients with hematological disease // Intern. Med. 2012. Vol. 51. N 19. P. 2733–2738.; Schmid P.J., Maitz S., Kittinger C. Bacillus cereus in packaging material: Molecular and phenotypical diversity revealed // Front. Microbiol. 2021. Vol. 12: 698974.; Dellinger R.P., Levy M.M., Rhodes A., et al. Surviving sepsis campaign: international guidelines for management of severe sepsis and septic shock, 2012 // Crit. Care Med. 2013. Vol. 41. N 2. P. 580–637.; Nolivos S., Cayron J., Dedieu A., Page A., Delolme F., Lesterlin C. Role of AcrAB-TolC multidrug efflux pump in drug-resistance acquisition by plasmid transfer // Science. 2019. Vol. 364. N 6442. P. 778–782.; Foster T.J. Antibiotic resistance in Staphylococcus aureus. Current status and future prospects // FEMS Microbiol. Rev. 2017. Vol. 41. N 3. P. 430–449.; Baranova N., Elkins C.A. Antimicrobial drug efflux pumps in other gram-positive bacteria // effluxmediated antimicrobial resistance in bacteria. Mechanisms, regulation and clinical implications / Eds. X. Li, C.A. Elkins, and H.I. Zgurskaya. Springer Publ., 2016. P. 197–218.; Hassan K.A., Fagerlund A., Elbourne L.D.H., Voros A., Kroeger J.K., Simm R., Tourasse N.J., Finke S., Henderson P.J.F., Okstad J.A., Paulsen I.T., Kolsto A. The putative drug efflux systems of the Bacillus cereus group // PLoS One. 2017. Vol. 12. N 5. P. 35.; Stewart N.K., Bhattacharya M., Toth M., Smith C.A., Vakulenko S.B. A surface loop modulates activity of the Bacillus class D β-lactamases // J. Struct. Biol. 2020. Vol. 211. N 2: 107544.; Karsisiotis A.I., Damblon C.F. Gordon C.K. Roberts G.C.K. Solution structures of the Bacillus cereus metallo-β-lactamase BcII and its complex with the broad spectrum inhibitor R-thiomandelic acid // Biochem J. 2013. Vol. 456. N 3. P. 397–407.; Miyamoto T, Sukimoto K, Sayed A., Kim S., Honjoh K., Hatano S. Detection of penicillin-binding proteins in Bacillus cereus by using biotinylated β-lactams // J. Fac. Agric. Kyushu Univ. 2000. Vol. 44. N 3. P. 299–307.; van Duijkeren E., Schink A.K., Roberts M.C., Wang Y., Schwarz S. Mechanisms of bacterial resistance to antimicrobial agents // Microbiol. Spectr. 2017. Vol. 6. N 2. DOI: https://doi.org/10.1128/microbiolspec.ARBA-0019-2017.
Διαθεσιμότητα: https://vestnik-bio-msu.elpub.ru/jour/article/view/1130
-
5Academic Journal
Συγγραφείς: D. A. Starkova, V. Yu. Zhuravlev, N. S. Solovieva
Πηγή: Туберкулез и болезни лёгких, Vol 100, Iss 11, Pp 39-47 (2022)
Θεματικοί όροι: микобактериоз, mycobacterium avium, m. intracellulare, лекарственная чувствительность, sensititre slomyco, минимальная ингибирующая концентрация, антибактериальные препараты, Diseases of the respiratory system, RC705-779
Relation: https://www.tibl-journal.com/jour/article/view/1691; https://doaj.org/toc/2075-1230; https://doaj.org/toc/2542-1506; https://doaj.org/article/7c9d8517d93f4a088f0c5d8941df6fe4
-
6Academic Journal
Συγγραφείς: Demchenko, N. (Nataliya), Suvorova, Z. (Zinaida), Fedchenkova, Y. (Yuliia), Shpychak, T. (Tamara), Shpychak, O. (Oleh), Bobkova, L. (Ludmila), Demchenko, S. (Sergii)
Πηγή: ScienceRise: Pharmaceutical Science
Θεματικοί όροι: 9-тетрагідро-5H-[1, 4]триазоло[4, антибактеріальна активність, in vitro дослідження, мінімальна інгібуюча концентрація, 4]triazolo[4, 9-тетрагидро-5H-[1, 3-a]azepin-1-ium bromides, in vitro исследования, 3-arylaminomethyl-1-(2-oxo-2-arylethyl)-6, 9-tetrahydro-5H-[1, in vitro tests, minimum inhibitory concentration, 3-ариламинометил-1-(2-оксо-2-арилэтил)-6, 3-a]азепиний-1 бромиды, Indonesia, 3-a]азепіній-1 броміди, antibacterial activity, антибактериальная активность, минимальная ингибирующая концентрация, 3-ариламінометил-1-(2-оксо-2-арилетил)-6
Time: 7, 2, 8
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
-
7Academic Journal
Συγγραφείς: N. A. Ryabov, V. M. Ryzhov, V. A. Kurkin, S. D. Kolpakova, A. V. Zhestkov, A. V. Lyamin, Н. А. Рябов, М. В. Рыжов, В. А. Куркин, С. Д. Колпакова, А. В. Жестков, А. В. Лямин
Συνεισφορές: Данное исследование не имело какой-либо поддержки от сторонних организаций.
Πηγή: Pharmacy & Pharmacology; Том 9, № 2 (2021); 104-113 ; Фармация и фармакология; Том 9, № 2 (2021); 104-113 ; 2413-2241 ; 2307-9266 ; undefined
Θεματικοί όροι: антимикробная активность, Quercus robur L, leaves, buds, water-ethanolic extractions, tincture, minimum inhibitory concentration, antimicrobial activity, листья, почки, водно-спиртовые извлечения, настойка, минимальная ингибирующая концентрация
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Relation: https://www.pharmpharm.ru/jour/article/view/828/706; https://www.pharmpharm.ru/jour/article/view/828/715; Dasgupta А., Krasowski M.D. Chapter 10 - Therapeutic drug monitoring of antimicrobial, antifungal and antiviral agents, Therapeutic Drug Monitoring Data (Fourth Edition), Academic Press. - 2020. – P.159-197. DOI:10.1016/B978-0-12-815849-4.00010-4; Andrade H.B., Shinotsuka C.R., da Silva I.R.F., Donini C.S., Yeh Li H., de Carvalho F.B., Americano do Brasil P.E.A., Bozza F.A., Miguel Japiassu A. Highly active antiretroviral therapy for critically ill HIV patients: A systematic review and meta-analysis // PLoS One. – 2017. – Vol.12, No.10. - e0186968. DOI:10.1371/journal.pone.0186968.; Grozdova N.B., Nekrasov V.I., Globa-Mikhailenko D.A. Trees, shrubs and vines. M .: Lesn. industry, 1986. - P. 176-178.; Maevsky P.F. Flora of the middle zone of the European part of Russia. 11th ed. M .: Partnership of scientific publications KMK, 2014. p. 200-201.; British Pharmacopoeia 2009. British Pharmacopoeia Herbal Drugs and Herbal Drug Preparations. Oak Bark. 2009; Vol. III. 7203 p.; European Pharmacopoeia - 8th Edition. «01/2008:1887 corrected 6.0». 2013. [Электронный ресурс]. Режим доступа: http://pharmeuropa.edqm.eu (Дата обращения 12 апреля 2021).; Государственная фармакопея Российской Федерации / МЗ РФ. XIV изд. Т. I-IV. М., 2018. [Электронный ресурс]. Режим доступа: http:// http://femb.ru/femb/pharmacopea.php (Дата обращения 16 апреля .2021).; Fatehi S., Mohammadi Sichani M., Tavakoli M. Evaluation of antimicrobial and Anti-quorum sensing activity of mazouj and ghalghaf galls extracts of oak against Pseudomonas aeruginosa // Qom Univ Med Sci J. – 2018. – Vol.12, No.10. – P.36-45. DOI:10.29252/qums.12.10.36; Pailhoriès H., Munir M.T., Aviat F., Federighi M., Belloncle C., Eveillard M. Oak in Hospitals, the Worst Enemy of Staphylococcus aureus? // Infection Control & Hospital Epidemiology. – 2017. – Vol.38, No.3. – P.382–384. DOI:10.1017/ice.2016.304; Smailagić A., Ristivojević P., Dimkić I., Pavlović T., Dabić Zagorac D., Veljović S., Fotirić Akšić M., Meland M., Natić M. Radical Scavenging and Antimicrobial Properties of Polyphenol Rich Waste Wood Extracts // Foods. – 2020. – Vol.9, No.3. – P.319. DOI:10.3390/foods9030319.; Sarwar R, Farooq U, Naz S, Riaz N, Majid Bukhari S, Rauf A, Mabkhot Ya.N., Al-Showiman S.S. Isolation and Characterization of Two New Antimicrobial Acids from Quercus incana (Bluejack Oak) // Biomed Res Int. – 2018. – Vol.2018. - 3798105. DOI:10.1155/2018/3798105; Smailagić A., Zagorac D.D., Veljović S., Sredojević M., Relić D., Fotirić M. A., Roglić G., Natić M. Release of wood extractable elements in experimental spirit model: Health risk assessment of the wood species generated in Balkan cooperage // Food Chemistry. – 2021. – Vol. 338. – 127804. DOI:10.1016/j.foodchem.2020.127804.; Elansary O. H., Szopa A., Kubica P., Ekiert H., Mattar A. M., Al-Yafrasi M.A., El-Ansary D.O., Zin El-Abedin T.K., Yessoufou K. Polyphenol Profile and Pharmaceutical Potential of Quercus spp // Bark Extracts. Plants. – 2019. – Vol.8, No.11. - 486. DOI:10.3390/plants8110486; Rao N. In vitro phytochemical screening, antioxidant & antimicrobial activity of the methanolic extract of Quercus infectoria L. – 2013. – Vol.5. – P.273-277.; Dróżdż P., Pyrzyńska K. Assessment of polyphenol content and antioxidant activity of oak bark extracts // European Journal of Wood and Wood Products. – 2017. – Vol.76. – P.793-795. DOI:10.1007/s00107-017-1280-x.; Sánchez-Burgosa J.A., Ramírez-Maresb M.V., Larrosac M.M., Gallegos-Infantea J.A., González-Laredoa R.F., Medina-Torresd L., Rocha-Guzmána N.E. Antioxidant, antimicrobial, antitopoisomerase and gastroprotective effect of herbal infusions from four Quercus species. Industrial Crops and Products. – 2013. – Vol.42. – P.57-62. DOI:10.1016/j.indcrop.2012.05.017; Буданцев, А.Л. Растительные ресурсы России. Дикорастущие цветковые растения, их компонентный состав и биологическая активность. Том 2: Actinidiaceae-Malvaceae, Euphorbiaceae-Haloragaceae. / А.Л. Буданцев. - М.: Товарищество научных изданий КМК, 2009. - 774 c.; Grotewold E. The Science of Flavonoids. 8th ed. New York: Springer. 2006. 274 p. DOI:10.1007/978-0-387-28822-2.; Bedi M.K., Shenefelt P.D. Herbal Therapy in Dermatology // Archives of Dermatology. – 2002. – Vol.138, No.2. – P.237-238. DOI:10.1001/archderm.138.2.232.; Cushnie T.P., Lamb A.J. Recent advances in understanding the antibacterial properties of flavonoids // Int. J. Antimimicrob. Agents. – 2011. – Vol.38. – P.99–107. DOI:10.1016/j.ijantimicag.2011.02.014.; Scalbert A., Haslam E. Polyphenols and chemical defence of the leaves of Quercus robur // Phytochemistry. – 1987. – Vol.26. – P.3191-3195. DOI:10.1016/S0031-9422(00)82468-1.; Benyagoub E., Nabbou N., Dine A. Antimicrobial Effect of Quercus robur L. Leaves Selective Extracts from the Mezi Mountain of Djenane Bourezg (West of Algeria) // Current Bioactive Compounds. – 2020. – Vol.16, No.8. – P.1181-1190. DOI:10.2174/1573407216666191226141609.; Benyagoub E., Nabbou N., Boukhalkhel S., Dehini I. The In vitro Evaluation of the Antimicrobial Activity of Quercus robur L. Methanolic and Aqueous Leaves’ Extracts, from the Algerian High Plateaus Against some Uropathogenic Microbial Strains // Phytopathology. – 2019. – Vol.12. DOI:10.29252/qums.12.10.36.; Nassima B, Behidj-Benyounes N, Ksouri R. Antimicrobial and antibiofilm activities of phenolic compounds extracted from Populus nigra and Populus alba buds (Algeria) // Brazilian Journal of Pharmaceutical Sciences. – 2019. – Vol. 55. - e18114. DOI:10.1590/s2175-97902019000218114; Isidorov V.A., Bagan R., Szczepaniak L., Swiecicka I. Chemical profile and antimicrobial activity of extractable compounds of Betula litwinowii (Betulaceae) buds // Open Chemistry. – 2015. – Vol.13, No.1. – P.123-127. DOI:10.1515/chem-2015-0019; The definition of the sensitivity of microorganisms to antibacterial drugs. Guidelines. MUK 4.2.1890-04. Clinical Microbiology and Antimicrobial Chemotherapy. – 2004. – Vol.6, No.4. – P.306-359.; Козлова И. В., Лекарева Л. И., Быкова А. П. Кандидоз желудочно-кишечного тракта // Экспериментальная и клиническая гастроэнтерология. - 2016. – Т.3. - С. 40-46.; Golus J., Sawicki R., Widelski J., Ginalska G. The agar microdilution method – a new method for antimicrobial susceptibility testing for essential oils and plant extracts // J Appl Microbiol. – 2016. – Vol.121. – P.1291-1299. DOI:10.1111/jam.13253; https://www.pharmpharm.ru/jour/article/view/828
-
8Academic Journal
Συγγραφείς: M. A. Samotrueva, A. A. Ozerov, A. A. Starikova, N. M. Gabitova, D. V. Merezhkina, A. A. Tsibizova, I. N. Tyurenkov, М. А. Самотруева, А. А. Озеров, А. А. Старикова, Н. М. Габитова, Д. В. Мережкина, А. А. Цибизова, И. Н. Тюренков
Συνεισφορές: This work was carried out within the framework of the state assignment of the Ministry of Health of the Russian Federation in terms of conducting research on the topic “Search and development of promising compounds with antibacterial activity among pyrimidine derivatives for the creation of drugs” 48.2-2021., Данная работа выполнена в рамках государственного задания Министерства здравоохранения РФ в части проведения НИР по теме «Поиск и разработка перспективных соединений с антибактериальной активностью среди производных пиримидина для создания лекарственных препаратов» 48.2-2021.
Πηγή: Pharmacy & Pharmacology; Том 9, № 4 (2021); 318-329 ; Фармация и фармакология; Том 9, № 4 (2021); 318-329 ; 2413-2241 ; 2307-9266 ; 10.19163/2307-9266-2021-9-4
Θεματικοί όροι: большой мобильный элемент, antimicrobial activity, lead-compound, electron-donating centers, enzyme active site, minimum inhibitory concentration, minimum suppressing concentration, bacteriostatic action, bactericidal activity, resistance, ATP-dependent efflux pump, plasmids, transposones, large mobile element, антимикробная активность, соединение-лидер, электронодонорные центры, активный сайт фермента, минимальная подавляющая концентрация, минимальная ингибирующая концентрация, бактериостатическое действие, бактерицидная активность, резистентность, АТФ-зависимый эффлюксный насос, плазмиды, транспозоны
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Relation: https://www.pharmpharm.ru/jour/article/view/885/750; https://www.pharmpharm.ru/jour/article/view/885/751; Abrusán G., Marsh J.A. Ligands and receptors with broad binding capabilities have common structural characteristics: An antibiotic design perspective // J. Med. Chem. – 2019. – Vol. 62. – Р. 9357−9374. DOI:10.1021/acs.jmedchem.9b00220.; Beyzaei H., Ghasemi B. In vitro Antibacterial evaluation of newly synthesized heterocyclic compounds against Streptococcus Pneumoniae // Journal of Sciences, Islamic Republic of Iran. – 2018. – Vol. 29, No.3. – Р. 211–220. DOI:10.22059/JSCIENCES.2018.67436.; Цибизова А.А., Ясенявская А.Л., Озеров А.А., Самотруева М.А., Тюренков И.Н. Оценка острой токсичности нового пиримидинового производного // Астраханский медицинский журнал. – 2021. – Т. 16, № 1. – С. 82–87. DOI:10.17021/2021.16.1.82.87.; Jampilek J. Heterocycles in Medicinal Chemistry // Molecules. – 2019. -Vol. 24. – Art. No.3839. DOI:10.3390/molecules24213839.; Patel P.R., Joshi H., Shah U., Bapna M., Patel B. New generation of quinazolinone derivatives as potent antimicrobial agents // Asian Pac. J. Health Sci. – 2021. – Vol. 8, No.2. – Р. 61–66. DOI:10.21276/apjhs.2021.8.2.12.; Etebu E., Arikekpar I. Antibiotics: Classification and mechanisms of action with emphasis on molecular perspectives // Int. J. Appl. Microbiol. Biotechnol.Res. – 2016. – Vol. 4. – Р. 90–101.; Alanazi A.M., Abdel-Aziz A.A.M., Shawer T.Z., Ayyad R.R., Al-Obaid A.M., Al-Agamy M.H.M., Maarouf A.R., El-Azab A.S. Synthesis, antitumor and antimicrobial activity of some new 6-methyl-3-phenyl-4(3H)-quinazolinone analogues: in silico studies // Journal of Enzyme Inhibition and Medicinal Chemistry. – 2016. – Vol. 31, No.5. – Р. 721–735. DOI:10.3109/14756366.2015.1060482.; El-Sayed N.N.E., Al-Otaibi T.M., Alonazi M., Masand V.H., Barakat A., Almarhoon Z.M., Ben Bacha A. Synthesis and characterization of some new quinoxalin-2(1H)-one and 2-methyl-3H-quinazolin-4-one derivatives targeting the onset and progression of CRC with SRA, Molecular Docking, and ADMET analyses // Molecules. – 2021. – Vol. 26. – Art. No.3121. DOI:10.3390/molecules26113121.; Hassan K.A., Liu Q., Elbourne L.D.H., Ahmad I., Sharples D., Naidu V., Chan C.L., Li L., Harborne S.P.D., Pokhrel A., Postis V.L.G., Goldman A., Henderson P.J.F., Paulsen I.T. Pacing across the membrane: the novel PACE family of efflux pumps is widespread in gram-negative pathogens // Research in Microbiology. – 2018. – Vol. 169. – P. 450–454. DOI:10.1016/j.resmic.2018.01.001.; Vila J., Moreno-Morales J., Balleste-Delpierre C. Current landscape in the discovery of novel antibacterial agents // Clinical Microbiology and Infection. – 2020. – Vol. 26. – P. 596–603. DOI:10.1016/j.cmi.2019.09.015.; Nagaraja V., Godbole A.A., Henderson S.R., Maxwell A. DNA topoisomerase I and DNA gyrase as targets for TB therapy // Drug Discovery Today. – 2017. – Vol. 22, Nо. 3. – P. 510–518. DOI:10.1016/j.drudis.2016.11.006.; D’Atanasio N., Capezzone de Joannon A., Di Sante L., Mangano G., Ombrato R., Vitiello M., Antibacterial activity of novel dual bacterial DNA type II topoisomerase inhibitors // Plos One. – 2020. – Vol. 15, No. 2. – Р. 1–21. DOI:10.1371/journal.pone.0228509.; Karaman R., Jubeh B., Breijyeh Z., Karaman R. Resistance of gram-positive bacteria to current antibacterial agents and overcoming approaches // Molecules. – 2020. – Vol. 25, No.12. – Art. No.2888. DOI:10.3390/molecules25122888.; Lepak A.J., Seiler P., Surivet J.P., Ritz D., Kohl C., Andes D.R. In vivo pharmacodynamic target investigation of two bacterial topoisomerase inhibitors, ACT-387042 and ACT-292706, in the neutropenic murine thigh model against Streptococcus pneumoniaeand Staphylococcus aureus // Antimicrobial Agents and Chemotherapy. – 2016. – Vol. 60, No. 6. – Р. 3626–3632. DOI:10.1128/AAC.00363-16.; Li L., Wang Q., Zhang H., Yang M., Khan M.I., Zhou X. Sensor histidine kinase is a β-lactam receptor and induces resistance to β-lactam antibiotics // Microbiology. – 2016. – Vol. 113, No.6. – P. 1648–1653. DOI:10.1073/pnas.1520300113.; Qiao Y., Srisuknimit V., Rubino F., Schaefer K., Ruiz N., Walker S., Kahne D. Lipid II overproduction allows direct assay of transpeptidase inhibition by β-lactams // Nat Chem Biol. – 2017. – Vol. 13, No.7. – Р. 793–798. DOI:10.1038/nchembio.2388.; Janardhanan J., Bouley R., Martнnez-Caballero S., Peng Z., Batuecas-Mordillo M., Meisel J.E., Ding D., Schroeder V.A., Wolter W.R., Mahasenan K.V., Hermoso J.A., Mobashery S., Chang M. The quinazolinone allosteric inhibitor of PBP 2a synergizes with piperacillin and tazobactam against methicillin-resistant Staphylococcus aureus // Antimicrobial Agents and Chemotherapy. – 2019. – Vol. 63, No.5. – Р. 1–12. DOI:10.1128/AAC.02637-18.; Liu J., Chen D., Peters B.M., Li L., Li B., Xu Z., Shirliff M.E. Staphylococcal chromosomal cassettes mec (SCCmec): A mobile genetic element in methicillin-resistant Staphylococcus aureus // Microbial Pathogenesis. – 2016. – Vol. 101. – Р. 56–67. DOI:10.1016/j.micpath.2016.10.028.; Cai Z.Q., Jin Z.S., Zheng D.Q, Hou L., Huang G.W., Tian J.Q., Wang G.J. Synthesis of several new quinazolin-4-amines containing p-toluenesulfonate moiety // Journal of chemical research. – 2016. – Vol. 40. – Р. 573–575. DOI:10.3184/174751916X14725679922221.; Khan I., Zaib S., Batool S., Abbas N., Ashraf Z., Iqbal J., Saeed A. Quinazolines and quinazolinones as ubiquitous structural fragments in medicinal chemistry: An update on the development of synthetic methods and pharmacological diversification // Bioorg. Med. Chem. – 2016. – Vol. 24. – Р. 2361–2381. DOI:10.1016/j.bmc.2016.03.031.; Badshah S.L., Ullah A. New developments in non-quinolone-based antibiotics for the inhibition of bacterial gyrase and topoisomerase IV // European Journal of Medicinal Chemistry. – 2018. – Vol. 152. – Р. 393–400. DOI:10.1016/j.ejmech.2018.04.059.; Qian Y., Allegretta G., Janardhanan J., Peng Z., Mahasenan K.V., Lastochkin E., Gozun M.M.N., Tejera S., Schroeder V.A., Wolter W.R., Feltzer R., Mobashery S., Chang M. Exploration of the structural space in 4(3H)-quinazolinone antibacterials // J Med Chem. – 2020. – Vol. 63, No.10. – Р. 5287–5296. DOI:10.1021/acs.jmedchem.0c00153.; Masri A., Anwar A., Khan N.A., Shahbaz M.S., Khan K.M., Shahabuddin S., Siddiqui R. Antibacterial effects of quinazolin-4(3H)-one functionalized-conjugated silver nanoparticles // Antibiotics. – 2019. – Vol. 8. – Р. 179. DOI:10.3390/antibiotics8040179.; Bouley R., Ding D., Peng Z., Bastian M., Lastochkin E., Song W., Suckow M.A., Schroeder V.A., Wolter W.R., Mobashery S., Chang M. Structure−activity relationship for the 4(3H) quinazolinoneantibacterials // Journal of Medicinal Chemistry. – 2016. – Vol. 59. – P. 5011–5021. DOI:10.1021/acs.jmedchem.6b00372.; Nakano S., Fujisawa T., Ito Y., Chang B., Matsumura Y., Yamamoto M., Suga S., Ohnishi M., Nagao M. Penicillin-binding protein typing, antibiotic resistance gene identification, and molecular phylogenetic analysis of meropenem-resistant Streptococcus pneumoniaeserotype 19A-CC3111 strainsin Japan // Antimicrob Agents Chemother. – 2019. – Vol. 63. – Р. 1–9. DOI:10.1128/AAC.00711-19.; Brouwers R., Vass H., Dawson A., Squires T., Tavaddod S., Allen R.J. Stability of β-lactam antibiotics in bacterial growth media // PLoS One. – 2020. – Vol. 15, No.7. – Р. e0236198. DOI:10.1371/journal.pone.0236198.; Ligozzi M., Galia L., Bertoncelli A., Mazzariol A. Intrinsic role of coagulase negative staphylococcinor A-like efflux system in fluoroquinolones resistance // AIMS Microbiology. – 2017. – Vol. 3, No.4. – Р. 908–914. DOI:10.3934/microbiol.2017.4.908.; Ankireddy A.R., Rambabu G., Balaraju T., Banothu V., Gundla P.L., Addepally U., Mantipally M. Synthesis, characterization and antibacterial activity of some novel C-7-Substituted-2-morpholino-N-(pyridin-2-ylmethyl)quinazolin-4-amine derivatives // Der PharmaChemica. – 2018. – Vol. 10, No.11. – Р. 40–48.; Ghorab M.M., Alqahtani A.S., Soliman A.M., Askar A.A. Novel N-(Substituted) thioacetamide quinazolinone benzene sulfonamides as antimicrobial agents // International Journal of Nanomedicine. – 2020. – Vol. 15. – Р. 3161–3180. DOI:10.2147/IJN.S241433.; De Rosa M., Verdino A., Soriente A., Marabotti A. The Odd Couple(s): An overview of Beta-Lactam antibiotics bearing more than one pharmacophoric group // Int. J. Mol. Sci. – 2021. – Vol. 22. – Р. 2–21. DOI:10.3390/ijms22020617.; Kahlmeter G., Brown D. F. J., Goldstein F. W., MacGowan A. P., Mouton J. W., Odenholt I., Rodloff A., Soussy C-J., Steinbakk M., Soriano F., Stetsiouk O. European Committee on Antimicrobial Susceptibility Testing (EUCAST) Technical Notes on antimicrobial susceptibility testing // Clinical Microbiology and Infection. – 2006. – Vol. 12, No. 6. – Р. 501–503. DOI:10.1111/j.1469-0691.2006.01454.x.; Turnidge J., Kahlmeter, G., Kronvall, G. Statistical characterisation of bacterial wild-type MIC value distributions and the determination of epidemiological cut-off values // ClinMicrobiol Infect. – 2006. – Vol. 12, No.5. – Р. 418–425. DOI:10.1111/j.1469-0691.2006.01377.x.; Лужнова С.А., Воронков А.В., Кодониди И.П., Габитова Н.М., Храпова А.В., Бель С. Активность новых производных 1,3-диазинона-4 и их нециклических предшественников в отношении Staphilococcus aureus // Астраханский медицинский журнал. – 2017. – Т. 12, № 2. – С. 56–63.; Gajdács M. The continuing threat of methicillin-resistant Staphylococcus aureus // Antibiotics. – 2019. – Vol. 8. – Р. 52. DOI:10.3390/antibiotics8020052.; Nandwana N.K., Singh R.P., Patel O.P.S., Dhiman S., Saini H.K., Jha P.N., Kumar A. Design and synthesis of Imidazo/Benzimidazo[1,2-c]quinazolinederivatives and evaluation of their antimicrobial activity// ACS Omega. – 2018. – Vol.3, No. 11. – Р. 16338−16346. DOI:10.1021/acsomega.8b01592.; Maruthamuthu D., Rajam S., Christina Ruby Stella P., BharathiDileepan A.G., Ranjith R. The chemistry and biological significance of imidazole, benzimidazole, benzoxazole, tetrazole and quinazolinone nucleus // J. Chem. Pharm. Res. – 2016. – Vol. 8, No. 5. – Р. 505–526.; Mahato A., Shrivastava B., Shanthi N. Synthesis, Molecular Docking and Biological Evaluation of Substituted Quinazolinones as Antibacterial Agents // Chemical Science Transactions. – 2015. – Vol. 4, No. 2. – Р. 595–603. DOI:10.7598/cst2015.995.; Fisher J.F., Mobashery S. Constructing and deconstructing the bacterial cell wall // Protein Science. – 2020. – Vol. 29. – Р. 629–646. DOI:10.1002/pro.3737.; Ibrahim M.A.A., Abdeljawaad K.A.A., Abdelrahman A.H.M., Alzahrani O.R., Alshabrmi F.M., Khalaf E., Moustafa M.F., Alrumaihi F., Allemailem K.S., Soliman M.E.S., Paré P.W., Hegazy M.E.F., Atia M.A.M. Non-b-Lactam allosteric inhibitors target methicillin-resistant Staphylococcus aureus: an in silico drug discovery study // Antibiotics. – 2021. – Vol. 10, No. 8. – Art. No. 934. DOI:10.3390/antibiotics10080934.; Mahasenan K.V., Molina R., Bouley R., Batuecas M.T., Fisher J.F., Hermoso J.A., Chang M., Mobashery S. Conformational dynamics in penicillin-binding protein 2a of methicillin-resistant Staphylococcus aureus, allosteric communication network and enablement of catalysis // J Am Chem Soc. – 2017. – Vol. 139, No. 5. – Р. 2102–2110. DOI:10.1021/jacs.6b12565.; Higgins D.L., Chang R., Debabov D.V., Leung J., Wu T., Krause K.M., Sandvik E., Hubbard J.M., Kaniga K., Schmidt D.E. Jr, Gao Q., Cass R.T., Karr D.E., Benton B.M., Humphrey P.P. Telavancin, a multifunctional lipoglycopeptide, disrupts both cell wall synthesis and cell membrane integrity in methicillin-resistant Staphylococcus aureus // Antimicrobial agents and chemotherapy. – 2005. – Vol. 49, No. 3. – P. 1127–1134. DOI:10.1128/AAC.49.3.1127-1134.2005.; Bayer A.S., Schneider T., Sahl H.G. Mechanisms of daptomycin resistance in Staphylococcus aureus: role of the cell membrane and cell wall // Ann N Y Acad Sci. – 2013. – Vol. 1277, No. 1. – Р. 139-158. DOI:10.1111/j.1749-6632.2012.06819.x.; Зубарева И.В., Беренштейн Т.Ф., Федянин С.Д. Об адгезии грамположительных кокков // Вестник ВГМУ. – 2010. – Т. 9, №1. – C. 1–15.; https://www.pharmpharm.ru/jour/article/view/885
-
9Academic Journal
Πηγή: ScienceRise: Pharmaceutical Science; No. 6 (34) (2021); 51-57
ScienceRise: Pharmaceutical Science; № 6 (34) (2021); 51-57Θεματικοί όροι: in vitro дослідження, мінімальна інгібуюча концентрація, антибактериальная активность, 3-arylaminomethyl-1-(2-oxo-2-arylethyl)-6,7,8,9-tetrahydro-5H-[1,2,4]triazolo[4,3-a]azepin-1-ium bromides, минимальная ингибирующая концентрация, 04 agricultural and veterinary sciences, антибактеріальна активність, minimum inhibitory concentration, in vitro исследования, 0404 agricultural biotechnology, antibacterial activity, in vitro tests, 3-ариламінометил-1-(2-оксо-2-арилетил)-6,7,8,9-тетрагідро-5H-[1,2,4]триазоло[4,3-a]азепіній-1 броміди, 3-ариламинометил-1-(2-оксо-2-арилэтил)-6,7,8,9-тетрагидро-5H-[1,2,4]триазоло[4,3-a]азепиний-1 бромиды, 0405 other agricultural sciences
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Σύνδεσμος πρόσβασης: http://journals.uran.ua/sr_pharm/article/view/249480
-
10Academic Journal
Πηγή: Tuberculosis, Lung Diseases, HIV Infection; No. 1 (2021); 43-50
Туберкулез, легочные болезни, ВИЧ-инфекция; № 1 (2021); 43-50
Туберкульоз, легеневі хвороби, ВІЛ-інфекція; № 1 (2021); 43-50Θεματικοί όροι: микобактериоз, лекарственная устойчивость, нетуберкулезные микобактерии, минимальная ингибирующая концентрация, mycobacteriosis, drug resistance, nontuberculosis mycobacteria, minimum inhibitory concentration, мікобактеріоз, медикаментозна стійкість, нетуберкульозні мікобактерії, мінімальна інгібуюча концентрація, 3. Good health
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Σύνδεσμος πρόσβασης: http://tubvil.com.ua/article/view/226417
-
11Academic Journal
Συγγραφείς: Shvets, Volodumur, Karpenko, Olena, Karpenko, Ilona, Novikov, Volodymyr, Lubenets, Vira
Πηγή: Innovative Biosystems and Bioengineering; Том 1, № 1 (2017); 43-48
Θεματικοί όροι: 0106 biological sciences, 0301 basic medicine, 03 medical and health sciences, Рамнолипидный биокомплекс, Тиосульфонаты, Микроорганизмы-фитопатогены, Минимальная ингибирующая концентрация, Минимальная бактерицидная концентрация, Проницаемость клеточных мембран, Rhamnolipid biocomplex, Thiosulfonates, Microorganism-phytopathogens, Minimum inhibitory concentration, Minimum bactericidіс concentration, Permeability of cell membrane, Биология, Биотехнологии, Біогенні поверхнево-активні речовини, Тіосульфонати, Мікроорганізми-фітопатогени, Мінімальна інгібувальна концентрація, Мінімальна бактерицидна концентрація, Проникність клітинних мембран, 01 natural sciences, Biology, Biotechnology, Біологія, Біотехнології
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
-
12Academic Journal
Συγγραφείς: R. R. Yenikeyev, N. Y. Tatarinova, L. M. Zakharchuk, Р. Р. Еникеев, Н. Ю. Татаринова, Л. М. Захарчук
Πηγή: Vestnik Moskovskogo universiteta. Seriya 16. Biologiya; Том 75, № 4 (2020); 265-272 ; Вестник Московского университета. Серия 16. Биология; Том 75, № 4 (2020); 265-272 ; 0137-0952
Θεματικοί όροι: замкнутая среда обитания, bacteria of the genus Bacillus, antibiotic resistance, minimum inhibitory concentration, efflux pumps, closed habitat, бактерии рода Bacillus, устойчивость к антибиотикам, минимальная ингибирующая концентрация, эффлюкс-насосы
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Relation: https://vestnik-bio-msu.elpub.ru/jour/article/view/937/533; Mora M., Mahnert A., Koskinen K., Pausan M.R., Oberauner-Wappis L., Krause R., Perras A.K., Gorkiewicz G., Berg G., Moissl-Eichinger C. Microorganisms in confined habitats: microbial monitoring and control of intensive care units, operating rooms, cleanrooms and the International Space Station // Front Microbiol. 2016. Vol. 7: 1573.; Mora M., Perras A., Alekhova T., Wink L., Krause R., Aleksandrova A., Novozhilova T., Moissl-Eichinger C. Resilient microorganisms in dust samples of the International Space Station-survival of the adaptation specialists // Microbiome. 2016. Vol. 4. N 1. P. 65–85.; Alekhova T.A.,Zakharchuk L.M., Tatarinova N.Y., Kadnikov V.V., Mardanov A.V., Ravin N.V. Skryabin K.G. Diversity of bacteria of the genus Bacillus on board of international space station // Dokl. Biochem. Biophys. 2015. Vol. 465. N 1. Р. 104–107.; Coil D.A., Neches R.Y., Lang J.M., Brown W.E., Severance M., Cavalier D.D., Eisen J.A. Growth of 48 built environment bacterial isolates on board the International Space Station (ISS) // Peer J. 2016. Vol. 4: e1842.; Moissl-Eichinger C., Cockell C., Rettberg P. Venturing into new realms? Microorganisms in space // FEMS Microbiol. Rev. 2016. Vol. 40. N 5. P. 722–737.; Checinska A., Probst A.J., Vaishampayan P., White J.R., Kumar D., Stepanov V.G., Fox G.E., Nilsson H.R., Pierson D.L., Perry J., Venkateswaran K. Microbiomes of the dust particles collected from the International Space Station and Spacecraft Assembly Facilities // Microbiome. 2015. Vol. 3. N 1. P. 50–68.; Vaishampayan K.P., Cisneros J., Pierson D.L., Rogers S.O., Perry J. International Space Station environmental microbiome-microbial inventories of ISS filter debris // Appl. Microbiol. Biotechnol. 2014. Vol. 98. N 14. P. 6453–6466.; Farrar W.E., Reboli A.C. The genus Bacillus— Medical // The Prokaryotes. Handbook on the biology of bacteria, vol. 4. Bacteria: Firmicutes, Cyanobacteria / Eds. M. Dworkin, S. Falkow, E. Rosenberg, K.-H. Schleifer, and E. Stackebrandt. N.Y.: Springer-Verlag, 2006. P. 609–630.; Janda J.M., Abbot S.L. 16S rRNA gene sequencing for bacterial identification in the diagnostic laboratory: pluses, perils, and pitfalls // J. Clin. Microbiol. 2007. Vol. 45. N 9. P. 2761–2764.; Elshikh M., Ahmed S., Funston S., Dunlop P., McGaw M., Marchant R., Banat I.M. Resazurin-based 96- well plate microdilution method for the determination of minimum inhibitory concentration of biosurfactants // Biotechnol. Lett. 2016. Vol. 38. N 6. P. 1015–1019.; Ardebili A., Lari A.R., Talebi M. Correlation of ciprofloxacin resistance with the AdeABC efflux system in Acinetobacter baumannii clinical isolates // Ann. Lab. Med. 2014. Vol. 34. N 6. P. 433–438.; Li X.Z., Nikaido H. Efflux-mediated drug resistance in bacteria // Drugs. 2004. Vol. 64. N 2. P. 159–204.; Timmery S., Hu X., Mahillon J. Characterization of Bacilli isolated from the confined environments of the Antarctic Concordia station and the International Space Station // Astrobiology. 2011. Vol. 11. N 4. P. 323–334.; Horneck G., Moeller R., Cadet J., Douki T., Rocco L., Mancinelli R.L., Wayne L., Nicholson W.L., Panitz C., Rabbow E., Rettberg P., Spry A., Stackebrandt E., Vaishampayan P., Venkateswaran K.J. Resistance of bacterial endospores to outer space for planetary protection purposes – Experiment PROTECT of the EXPOSE-E Mission // Astrobiology. 2012. Vol. 12. N 5. P. 445–456.; Gaci N., Borrel G., Tottey W., O’Toole P.W., Brugère J-F. Archaea and the human gut: new beginning of an old story // World J. Gastroenterol. 2014. Vol. 20. N 43. P. 16062–16078.; Nolivos S., Cayron J., Dedieu A., Page A., Delolme F., Lesterlin C. Role of AcrAB-TolC multidrug efflux pump in drug-resistance acquisition by plasmid transfer // Science. 2019. Vol. 364. N 6442. P. 778–782.; Foster T.J. Antibiotic resistance in Staphylococcus aureus. Current status and future prospects // FEMS Microbiol. Rev. 2017. Vol. 41. N 3. P. 430–449.; Piddock L.J.V. Multidrug-resistance efflux pumps? Not just for resistance // Nat. Rev. Microbiol. 2006. Vol. 4. N 8. P. 629–636.; Poole K. Efflux pumps as antimicrobial resistance mechanisms // Ann. Med. 2007. Vol. 39. N 3. P. 162–176.; Blair J.M.A., Richmond G.E., Piddock L.J.V. Multidrug efflux pumps in gram-negative bacteria and their role in antibiotic resistance // Future Microbiol. 2014. Vol. 9. N 10. P. 1165–1177.; Peleg A.Y., Adams J., Paterson D.L. Tigecycline efflux as a mechanism for nonsusceptibility in Acinetobacter baumannii // Antimicrob. Agents Chemother. 2007. Vol. 51. N 6. P. 2065–2069.; Baranova N., Elkins C.A. Antimicrobial drug efflux pumps in other gram-positive bacteria // Efflux-mediated antimicrobial resistance in bacteria. Mechanisms, regulation and clinical implications / Eds. X. Li, C.A. Elkins, and H.I. Zgurskaya. Cham: Springer, 2018. P. 197–218.; Masaoka Y., Ueno Y., Morita Y., Kuroda T., Mizushima T., Tsuchiya T. A two-component multidrug efflux pump, EbrAB, in Bacillus subtilis // J. Bacteriol. 2000. Vol. 182. N 8. P. 2307–2310.; Zhang Z.C., Pornillos M.O., Chang X.G., Saier M.H. Functional characterization of the heterooligomeric EbrAB multidrug efflux transporter of Bacillus subtilis // Biochemistry. 2007. Vol. 46. N 17. P. 5218–5225.; Van Houdt R., Mijnendonckx K., Leys N. Microbial contamination monitoring and control during human space missions // Planet Space Sci. 2012. Vol. 60. N 1. P. 115–120.
Διαθεσιμότητα: https://vestnik-bio-msu.elpub.ru/jour/article/view/937
-
13Academic Journal
Συγγραφείς: Mindubaev, A.Z., Миндубаев, А.З., Voloşina, A.D., Voloshina, A.D., Волошина, А.Д., Bobynin, E.V., Бабынин, Э.В., Minzanova, S.T., Минзанова, С.Т., Mironova, L.G., Миронова, Л.Г., Akosah, Y.A., Акосах, Й.А., Badeeva, E.K., Бадеева, Е.К.
Πηγή: Biogeochemical innovations under the conditions of the biosphere technogenesis correction (Vol.1)
Θεματικοί όροι: биодеградация, белый фосфор, защита окружающей среды, Aspergillus niger, метаболический путь, минимальная ингибирующая концентрация, генотоксичность, biodegradation, white phosphorus, environmental protection, metabolic pathway, Minimum inhibitory concentration, genotoxicity
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Διαθεσιμότητα: https://ibn.idsi.md/vizualizare_articol/115137
-
14Academic Journal
Συγγραφείς: Заремба, Є. Х., Федечко, М. Й., Федечко, Й. М., Іжицька, Н. В., Макар, О. Р., Заремба, Е. Ф., Ижицькая, Н. В., Zaremba, Ye. F., Fedechko, M. I., Fedechko, I. M, Izhitskaya, N. V., Makar, O. R.
Θεματικοί όροι: нестабільна стенокардія, хронічне обструктивне захворювання легень, мікробом, системне запалення, С-реактивний протеїн, загальний фібриноген, біоплівка, нестабильная стенокардия, хроническое обструктивное заболевание легких, микробиом, системное воспаление, С-реактивный протеин, общий фибриноген, биоплёнка, минимальная ингибирующая концентрация, unstable angina, chronic obstructive pulmonary disease, microbiome, systemic inflammation, C-reactive protein, total fibrinogen, biofilm, minimal inhibitory concentration
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Relation: Нестабільна стенокардія у хворих із хронічним обструктивним захворюванням легеньяк наслідок активізації факторів запалення на фоні адаптаційних змін мікробіому дихальних шляхів / Є. Х. Заремба, М. Й. Федечко, Й. М. Федечко [та ін.] // Актуальні проблеми сучасної медицини: Вісник Української медичної стоматологічної академії. – 2018. – Т. 18, вип. 1 (61). – С. 40–44.; https://repository.pdmu.edu.ua/handle/123456789/11040
Διαθεσιμότητα: https://repository.pdmu.edu.ua/handle/123456789/11040
-
15Academic Journal
Συγγραφείς: Швець, В. В., Карпенко, О. В., Карпенко, І. В., Новіков, В. П., Лубенець, В. І.
Πηγή: Innovative Biosystems and Bioengineering : international scientific journal, 2017, Vol. 1, No. 1
Θεματικοί όροι: біогенні поверхнево-активні речовини, тіосульфонати, мікроорганізми-фітопатогени, мінімальна інгібувальна концентрація, мінімальна бактерицидна концентрація, проникність клітинних мембран, rhamnolipid biocomplex, thiosulfonates, microorganism-phytopathogens, minimum inhibitory concentration, minimum bactericidіс concentration, permeability of cell membrane, рамнолипидный биокомплекс, тиосульфонаты, микроорганизмы-фитопатогены, минимальная ингибирующая концентрация, минимальная бактерицидная концентрация, проницаемость клеточных мембран, 604 + 632:632.3
Περιγραφή αρχείου: Pp. 43–48; application/pdf
Relation: Антимікробна активність композицій на основі тіосульфонатів і біогенних поверхнево-активних речовин щодо фітопатогенів / В. В. Швець, О. В. Карпенко, І. В. Карпенко, В. П. Новіков, В. І. Лубенець // Innovative Biosystems and Bioengineering : international scientific journal. – 2017. – Vol. 1, No. 1. – Pp. 43–48. – Bibliogr.: 14 ref.; https://ela.kpi.ua/handle/123456789/32817; https://doi.org/10.20535/ibb.2017.1.1.112895
-
16Academic Journal
Συγγραφείς: O. I. Alkhovik, T. I. Petrenko
Πηγή: Туберкулез и болезни лёгких, Vol 95, Iss 8, Pp 58-62 (2017)
Θεματικοί όροι: лекарственная устойчивость, нетуберкулезные микобактерии, минимальная ингибирующая концентрация, Diseases of the respiratory system, RC705-779
Relation: https://www.tibl-journal.com/jour/article/view/1036; https://doaj.org/toc/2075-1230; https://doaj.org/toc/2542-1506; https://doaj.org/article/fa973922e1d64a758ef3b31ff9b447ec
-
17Report
Θεματικοί όροι: ОСНОВАНИЯ МАННИХА, МИНИМАЛЬНАЯ ИНГИБИРУЮЩАЯ КОНЦЕНТРАЦИЯ, antimicrobial and antifungal activity, aminophenoxy derivatives of organic compounds, Mannich bases, АМИНФОЕНОКСИ-ПРОИЗВОДНЫЕ ОРГАНИЧЕСКИХ СОЕДИНЕНИЙ, minimum inhibitory concentration, АНТИМИКРОБНАЯ И АНТИФУНГАЛЬНАЯ АКТИВНОСТЬ, 3. Good health
-
18Academic Journal
Συγγραφείς: N. S. Bagirova, N. V. Dmitrieva, Н. С. Багирова, Н. В. Дмитриева
Πηγή: Journal Infectology; Том 8, № 1 (2016); 26-31 ; Журнал инфектологии; Том 8, № 1 (2016); 26-31 ; 2072-6732 ; undefined
Θεματικοί όροι: пограничные концентрации, Candida spp, amphotericin B, resistance, minimum inhibitory concentration, E test, Vitek 2, breakpoints, амфотерицин В, резистентность, минимальная ингибирующая концентрация, Е-тест, Vitek2
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Relation: https://journal.niidi.ru/jofin/article/view/458/437; Kriengkauykiat J., J. I. Ito, S. S. Dadwai, Epidemiology and treatment approaches in management of invasive fungal infections. Review. Clinical Epidemiology 2011; 3: 175-191; Maiken Cavling Arendrup. Candida and Candidaemia. Susceptibility and Epidemiology. Dan Med J 2013; 60(11): B4698; Pfaller MA, Diekema DJ. 2012. Progress in antifungal susceptibility testing of Candida spp. by use of Clinical and Laboratory Standards Institute broth microdilution methods, 2010 to 2012. J. Clin. Microbiol. 50:2846–2856; Pfaller M.A., Shawn A. Messer, Leah N. Woosley, Ronald N. Jones, Mariana Castanheira. Echinocandin and Triazole Antifungal Susceptibility Profiles for Clinical Opportunistic Yeast and Mold Isolates Collected from 2010 to 2011: Application of New CLSI Clinical Breakpoints and Epidemiological Cutoff Values for Characterization of Geographic and Temporal Trends of Antifungal Resistance. August 2013 Volume 51 Number 8 Journal of Clinical Microbiology p.2571–2581; Espinel-Ingroff A., M. A. Pfaller, B. Bustamante, E. Canton, A. Fothergill, J. Fuller, G. M. Gonzalez, C. Lass-Flцrl, S. R. Lockhart, E. Martin-Mazuelos, J. F. Meis, M. S. C. Melhem, L. Ostrosky-Zeichner, T. Pelaez, M. W. Szeszs, G. St-Germain, L. X. Bonfietti, J. Guarro, J. Turnidge. Multilaboratory Study of Epidemiological Cutoff Values for Detection of Resistance in Eight Candida Species to Fluconazole, Posaconazole, and Voriconazole. Antimicrob. Agents and Chemother. April 2014, Volume 58, Number 4, p. 2006–2012; Diekema DJ, Pfaller MA. 2012. Utility of antifungal susceptibility testing and clinical correlations, p 131. In Hall GS (ed), Interactions of yeasts, moulds, and antifungal agents: how to detect resistance. Springer, New York, NY; Rex JH, Pfaller MA. 2002. Has antifungal susceptibility testing come of age? Clin. Infect. Dis. 35:982–989; European Committee on Antimicrobial Susceptibility Testing. Breakpoint tables for interpretation of MICs. Version 8.0, valid from 2015-11-16. http://mic.eucast.org; Cuenca-Estrella M., A. Gomez-Lopez, A. Alastruey-Izquierdo, L. Bernal-Martinez, I. Cuesta, M.J. Buitrago, and J.L. Rodriguez-Tudela. Comparison of the VITEK 2 Antifungal Susceptibility System with the CLSI and the EUCAST Broth Microdilution Reference methods and with the Sensititre Yeast-One and the Etest Techniques for the Detection in Vitro of Antifungal Resistance in Yeasts. J. Clin. Microbiol., May 2010, Vol. 48, No. 5, p. 1782–1786; Ranque S., L. Lachaud, M. Gari-Toussaint, A. Michel-Nguyen, M. Malliй, J. Gaudart, and S. Bertout. Interlaboratory Reproducibility of Etest Amphotericin B and Caspofungin Yeast Susceptibility Testing and Comparison with the CLSI Method. J. Clin. Microbiol. 2012, 50(7):2305; Pfaller MA, Messer SA, Bolmstrom A. 1998. Evaluation of Etest for determining in vitro susceptibility of yeast isolates to amphotericin B. Diagn. Microbiol. Infect. Dis. 32:223–227; Krogh-Madsen M, Arendrup MC, Heslet L, Knudsen JD. 2006. Amphotericin B and caspofungin resistance in Candida glabrata isolates recovered from a critically ill patient. Clin. Infect. Dis. 42:938–944; Багирова, Н.С. Определение резистентности Candida spp. к антифунгальным препаратам системного действия эпсилометрическим методом (Е-тест) с учетом видо-специфических особенностей кандид / Н.С. Багирова, Н.В. Дмитриева // Журнал инфектологии. – 2015. – Т. 7, № 3. – С. 91–102.; Fahriye Eksi, Efgan Dogan Gayyurhan, and Iclal Balci. Research Article. In Vitro Susceptibility of Candida Species to Four Antifungal Agents Assessed by the Reference Broth Microdilution Method. Hindawi Publishing Corporation The ScientificWorld Journal Volume 2013, Article ID 236903, 6 pages http://dx.doi.org/10.1155/2013/236903; M. Cuenca-Estrella, D. Rodriguez, B. Almirante et al., “In vitro susceptibilities of bloodstream isolates of Candida species to six antifungal agents: results from a population-based active surveillance programme, Barcelona, Spain, 2002-2003,” Journal of Antimicrobial Chemotherapy, vol. 55, no. 2, pp. 194–199, 2005; N. Kiraz, Z. Erturan, M. Uzun et al., “Susceptibility of 300 Candida albicans strains to amphotericin B, flucytosine, fluconazole ve mikonazole,” Klimik Dergisi, vol. 11, no. 3, pp. 116–118, 1998; M. Cuenca-Estrella, L. Rodero, G. Garc´ıa-Effr´on, and J. L. Rodriguez-Tudela, “Antifungal susceptibilities of Candida spp. isolated from blood in Spain and Argentina, 1996–1999,” Journal of Antimicrobial Chemotherapy, vol. 49, no. 6, pp. 981–987, 2002; D. J. Diekema, S. A. Messer, A. B. Brueggemann et al., “Epidemiology of candidemia: 3-Year results from the emerging infections and the epidemiology of Iowa organisms study,” Journal of Clinical Microbiology, vol. 40, no. 4, pp. 1298–1302, 2002; https://journal.niidi.ru/jofin/article/view/458; undefined
Διαθεσιμότητα: https://journal.niidi.ru/jofin/article/view/458
-
19Academic Journal
Συγγραφείς: S. N. Аndreevskaya, E. E. Larionova, T. G. Smirnova, I. Yu. Аndrievskaya, E. A. Kiseleva, L. N. Chernousova
Πηγή: Туберкулез и болезни лёгких, Vol 94, Iss 4, Pp 43-50 (2016)
Θεματικοί όροι: нетуберкулезные микобактерии, минимальная ингибирующая концентрация, лекарственная чувствительность, Diseases of the respiratory system, RC705-779
Relation: https://www.tibl-journal.com/jour/article/view/879; https://doaj.org/toc/2075-1230; https://doaj.org/toc/2542-1506; https://doaj.org/article/53483802766844d5a6bc7a5bda5b1c66
-
20Academic Journal
Συνεισφορές: ELAKPI
Θεματικοί όροι: микроорганизмы-фитопатогены, мікроорганізми-фітопатогени, тіосульфонати, thiosulfonates, тиосульфонаты, минимальная ингибирующая концентрация, рамнолипидный биокомплекс, біогенні поверхнево-активні речовини, minimum inhibitory concentration, проницаемость клеточных мембран, проникність клітинних мембран, мінімальна інгібувальна концентрація, minimum bactericidіс concentration, минимальная бактерицидная концентрация, мінімальна бактерицидна концентрація, microorganism-phytopathogens, rhamnolipid biocomplex, permeability of cell membrane
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Σύνδεσμος πρόσβασης: https://ela.kpi.ua/handle/123456789/32817