Εμφανίζονται 1 - 20 Αποτελέσματα από 59 για την αναζήτηση '"МИКРОБИОЛОГИЧЕСКИЕ МЕТОДЫ"', χρόνος αναζήτησης: 0,79δλ Περιορισμός αποτελεσμάτων
  1. 1
    Academic Journal

    Πηγή: Tuberculosis and Lung Diseases; Том 99, № 5 (2021); 25-34 ; Туберкулез и болезни легких; Том 99, № 5 (2021); 25-34 ; 2542-1506 ; 2075-1230

    Περιγραφή αρχείου: application/pdf

    Relation: https://www.tibl-journal.com/jour/article/view/1536/1539; Владимирова Е. Б., Шмелев Е. И., Зайцева А. С. и др. Нетуберкулезный микобактериоз легких – возможности диагностики в практике пульмонолога // Терапевтический архив. ‒ 2019. ‒ Т. 91, № 11. ‒ С. 31-36. DOI:10.26442/00403660.2019.11.000306.; Гомболевский В. А., Чернина В. Ю., Блохин И. А., Николаев А. Е., Барчук А. А., Морозов С. П. Основные достижения низкодозной компьютерной томографии в скрининге рака легкого // Туб. и болезни легких. – 2021.– Т. 99, № 1. – С. 61-70. http://doi.org/10.21292/2075-1230-2021-99-1-61-70.; Мамаев А. Н., Кудлай Д. А. Статистические методы в медицине. ‒ М.: Практическая медицина, 2021. ‒ 136 с. ISBN 978-5-98811-635-6.; Нечаева О. Б. Социально значимые инфекционные заболевания, представляющие биологическую угрозу населению России // Туб. и болезни легких. ‒ 2019. ‒ Т. 97, № 11. ‒ С. 7-18. DOI:10.21292/2075-1230-2019-97-11-7-17.; Смирнова Т. Г., Андреевская С. Н., Ларионова Е. Е., Андриевская И. Ю., Устинова В. В., Черноусова Л. Н. Мониторинг видового разнообразия нетуберкулезных микобактерий в ряде областей РФ с использованием ДНК-стрипов genotype Mycobacterium CM/AS (Hain Lifescience, Германия) // Туб. и болезни легких. ‒ 2017. ‒ Т. 95, № 5. ‒ С. 54-59.; Туберкулез у взрослых / под ред. Васильева И. А., Баласанянц Г. С., Борисов С. Е., Бурмистрова И. А., Валиев Р. Ш., Ваниев Э. В., Вахрушева Д. В., Веселова Е. И., Воронин Е. Е., Зимина В. Н., Иванова Д. А., Казимирова Н. Е., Каминский Г. Д., Корниенко С. В., Краснов В. А., Кульчавеня Е. В., Ловачева О. В., Марьяндышев А. О., Мордык А. В., Морозова Т. И. и др. Клинические рекомендации 2020, М., 121 с. https://www.elibrary.ru/item.asp?id=42593525.; Atkins N. K., Marjara J., Kaifi J. T., Kunin J. R., Saboo S. S., Davis R. M., Bhat A. P. Role of computed tomography-guided biopsies in the era of electromagnetic navigational bronchoscopy: a retrospective study of factors predicting diagnostic yield in electromagnetic navigational bronchoscopy and computed tomography biopsies // J. Clin. Imaging Sci. ‒ 2020. ‒ № 10. ‒ Р. 33. doi:10.25259/JCIS_53_2020.; British Thoracic Society guideline for diagnostic flexible bronchoscopy in adults. Du Rand I. A. et al. // Thorax. ‒ 2013. ‒ № 68. ‒ Р. i1-i44. http://dx.doi.org/10.1136/thoraxjnl-2013-203618.; Chan A., Devanand A., Low S. Y., Koh M. S. Radial endobronchial ultrasound in diagnosing peripheral lung lesions in a high tuberculosis setting // BMC Pulm Med. ‒ 2015. ‒ № 15. ‒ Р. 90.; Chung Y. H., Lie C. H., Chao T. Y. et al. Endobronchial ultrasonography with distance for peripheral pulmonary lesions // Respir. Med. ‒ 2007. ‒ № 101. ‒ Р. 738-745. 10.1016/j.rmed.2006.08.014.; Daley C. L., Jonathan M. et al. Treatment of nontuberculous mycobacterial pulmonary disease: an official ATS/ERS/ESCMID/IDSA clinical practice guideline: executive summary // Clin. Infect. Dis. ‒ 2020. ‒ Vol. 71, № 4. ‒ Р. e1-e36. DOI:10.1093/cid/ ciaa241.; Gu Y., Wu C., Yu F. et al. Application of endobronchial ultrasonography using a guide sheath and electromagnetic navigation bronchoscopy in the diagnosis of atypical bacteriologically-negative pulmonary tuberculosis // Ann. Transl. Med. ‒ 2019. ‒ Vol. 7, № 20. ‒ Р. 567. doi:10.21037/atm.2019.09.37. doi:10.1186/s12880-015-0060-5.; Herth F. J., Ernst A., Becker H. D. Endobronchial ultrasound-guided transbronchial lung biopsy in solitary pulmonary nodules and peripheral lesions // Eur. Respir. J. ‒ 2002. ‒ № 20. ‒ P. 972-974.; Kuo C. H., Lin S. M., Lee K. Y. et al. Endobronchial ultrasound-guided transbronchial biopsy and brushing: a comparative evaluation for the diagnosis of peripheral pulmonary lesions // Eur. J. Cardiothorac. Surg. ‒ 2014. ‒ № 45. ‒ Р. 894-898. 10.1093/ejcts/ezt472.; Kurimoto N., Miyazawa T., Okimasa S., Maeda A., Oiwa H., Miyazu Y. et al. Endobronchial ultrasonography using a guide sheath increases the ability to diagnose peripheral pulmonary lesions endoscopically // Chest. ‒ 2004. ‒ № 126. ‒ P. 959-965. doi:10.1378/chest.126.3.959.; Lai R. S., Lee S. S., Ting Y. M., Wang H. C., Lin C. C., Lu J. Y. Diagnostic value of transbronchial lung biopsy under fluoroscopic guidance in solitary pulmonary nodule in an endemic area of tuberculosis // Respir. Med. ‒ 1996. ‒ Vol. 90, № 3. ‒ Р. 139-143.; Lin S. M. et al. Diagnostic value of endobronchial ultrasonography for pulmonary tuberculosis // J. Thorac. Cardiovasc. Surg. ‒ 2009. ‒ Vol. 138, № 1. ‒ Р. 179-184. doi:10.1016/j.jtcvs.2009.04.004.; Lin S. M., Ni Y. L., Kuo C. H., Lin T. Y., Wang T. Y., Chung F. T., Kuo H. P. Endobronchial ultrasound increases the diagnostic yields of polymerase chain reaction and smear for pulmonary tuberculosis // J. Thorac. Cardiovasc. Surg. ‒ 2010. ‒ Vol. 139, № 6. ‒ Р. 1554-1560.; Minezawa Т. et al. Bronchus sign on thin-section computed tomography is a powerful predictive factor for successful transbronchial biopsy using endobronchial ultrasound with a guide sheath for small peripheral lung lesions: a retrospective observational study // BMC Med. Imaging. ‒ 2015. ‒ № 15. ‒ Р. 21. doi:10.1186/s12880-015-0060-5.; Mondoni M., Repossi A., Carlucci P., Centanni S., Sotgiu G. Bronchoscopic techniques in the management of patients with tuberculosis // Int. J. Infect. Dis. ‒ 2017. ‒ Vol. 64. ‒ Р. 27-37. doi:10.1016/j.ijid.2017.08.008.; Moon S. M., Choe J., Jeong B. H., Um S. W., Kim H., Kwon O. J., Lee K. Diagnostic performance of radial probe endobronchial ultrasound without a guide-sheath and the feasibility of molecular analysis // Tuberc. Respir. Dis. (Seoul). ‒ 2019. ‒ Vol. 82, № 4. ‒ Р. 319-327. doi:10.4046/trd.2018.0082.; Yeonseok C., Byung W. J., Jhingook К., Hee J. H., Nam Y. L. Characteristics and outcomes of surgically resected solitary pulmonary nodules due to nontuberculous mycobacterial infections // J. Clin. Med. ‒ 2019. ‒ Vol. 8, № 11. ‒ Р. 1898. DOI:10.1183/13993003.congress-2019.PA2925.

  2. 2
    Academic Journal

    Πηγή: Rational Pharmacotherapy in Cardiology; Vol 17, No 1 (2021); 153-164 ; Рациональная Фармакотерапия в Кардиологии; Vol 17, No 1 (2021); 153-164 ; 2225-3653 ; 1819-6446

    Περιγραφή αρχείου: application/pdf

    Relation: https://www.rpcardio.com/jour/article/view/2401/2127; Habib G., Lancellotti P., Erba P., et al., EURO-ENDO Investigators. Clinical presentation, aetiology and outcome of infective endocarditis. Results of the ESC-EORP EURO-ENDO (European infective endocarditis) registry: a prospective cohort study. Eur Heart J. 2019;40(39):3222-32. DOI:10.1093/eurheartj/ehz620.; Murdoch D., Corey G., Hoen B., et. all. Clinical presentation, etiology, and outcome of infective endocarditis in the 21st century: the International Collaboration on Endocarditis-Prospective Cohort study. Arch Intern Med. 2009;169:463-73. DOI:10.1001/archinternmed.2008.603.; Шевченко Ю.Л., ред. Инфекционные эндокардиты, руководство. М.: Гэотар-Медиа; 2012.; Данилов А.И., Алексеева И.В., Аснер Т.В. и др. Реальная практика терапии инфекционного эндокардита в РФ: промежуточные результаты исследования МАЭСТРО. Клиническая Микробиология и Антимикробная Химиотерапия. 2013;15(2); приложение 1:18-9.; Котова Е.О., Домонова Э.А., Караулова Ю.Л., и др. Инфекционный эндокардит: значение молекулярно-биологических методов в этиологической диагностике. Тер. Архив. 2016;88(11):62-7. DOI:10.17116/terarkh2016881162-67.; Habib G., Lancellotti P., Antunes MJ., et al. 2015 ESC guidelines for the management of infective endocarditis: The Task Force for the Management of Infective Endocarditis of the European Society of Cardiology (ESC). Endorsed by: European Association for Cardio-Thoracic Surgery (EACTS), the European Association of Nuclear Medicine (EANM). Eur Heart J. 2015;36:3075-128. DOI:10.1093/eurheartj/ehv319.; Morpeth S., Murdoch D., Cabell C., et. al. Non-HACEK gram-negative bacillus endocarditis. Ann Intern Med. 2007;147:829-35. DOI:10.7326/0003-4819-147-12-200712180-00002.; Korber F., Zeller M., Grünstäudl B., et. al. SeptiFast versus blood culture inclinical routine – A report on 3 years experience. Wien Klin Wochenschr . 2017;129:427-34. DOI:10.1007/s00508-017-1181-3.; Fukuchi T., Iwata K., Ohji G. Failure of early diagnosis of infective endocarditis in Japan - a retrospective descriptive analysis. Medicine (Baltimore). 2014;93:237. DOI:10.1097/MD.0000000000000237; Habib G., Hoen B., Tornos P., Thuny F., et al. Guidelines on the prevention, diagnosis and treatment of infective endocarditis (new version 2009): the Task Force on the Prevention, Diagnosis and Treatment of Infective Endocarditis of the European Society of Cardiology (ESC), endorsed by the European Society of Clinical Microbiology and Infectious Diseases (ESCMID) and the International Society of Chemotherapy (ISC) for Infection and Cancer. Eur Heart J. 2009;30:2369-413. DOI:10.1093/eurheartj/ehp285; Liesman R., Pritt B., Maleszewski J., Patel R. Laboratory diagnosis of infective endocarditis. J Clin Microbiol. 2017;55:259-2608. DOI:10.1128/JCM.00635-17.; Спицын А.Н., Уткин Д.В., Куклев В.Е., и др. Применение MALDI масс-спектрометрии в диагностике особо опасных инфекционных болезней: современное состояние и перспективы. Проблемы Особо Опасных Инфекций. 2014;3:77-82. DOI:10.21055/0370-1069-2014-3-77-82.; Lim D., Simpson J., Kearns E., Kramer M. Current and Developing technologies for monitoring agents of bioterrorism and biowarfare. Clin Microbiol Rew. 2005;18(4):583-607. DOI:10.1128/CMR.18.4.583-607.2005.; Peruski A.H., Peruski L.F.Jr. Immunological Methods for Detection and Identification of Infectious Disease and Biological Warfare Agents. Clin Diagn Lab Immunol. 2003;10(4):506-13. DOI:10.1128/cdli.10.4.506-513.2003.; Raoult D., Casalta J., Richet H., et al. Contribution of systematic serological testing in diagnosis of infective endocarditis. J Clin Microbiol. 2005;43:5238-42. DOI:10.1128/JCM.43.10.5238-5242.2005.; Houpikian P., Raoult D. Blood culture-negative endocarditis in a reference center: etiologic diagnosis of 348 cases. Medicine (Baltimore). 2005;84:162-73. DOI:10.1097/01.md.0000165658.82869.17.; Maurin M., Eb F., Etienne J., Raoult D. Serological cross-reactions between Bartonella and Chlamydia species: implications for diagnosis. J Clin Microbiol. 1997;35:2283-7. DOI:10.1128/jcm.35.9.2283-2287.1997.; Baddour L., Wilson W., Bayer A., et al. Infective endocarditis in adults: diagnosis, antimicrobial therapy, and management of complications: a scientific statement for healthcare professionals from the American Heart Association. Circulation. 2015;132:1435-86. DOI:10.1161/CIR.0000000000000296.; Jenkins C., Ling L.C., Ciesielczuk H.L., et al. Detection and identification of bacteria in clinical samples by 16S rRNA gene sequencing: comparison of two different approaches in clinical practice. J Med Microbiol. 2012;61:483-8. DOI:10.1099/jmm.0.030387-0.; Tattevin P., Revset M., Lefort A., Michelet C., Lortholary O. Fungal endocarditis: current challenges. Int J Antimicrobiol Agents. 2014;44:290-4. DOI:10.1016/j.ijantimicag.2014.07.003.; Mongelli G., Romeo M. A., Denaro C., et al. Added value of multi-pathogen probe based real-time PCR SeptiFast in the rapid diagnosis of bloodstream infections in patients with bacteraemia. J Med Microbiol. 2015;64(7):670-5. DOI:10.1099/jmm.0.000074.; Suberviola B., Márquez-López A.,, Castellanos-Ortega A., et al. Microbiological diagnosis of sepsis: polymerase chain reaction system versus blood cultures. Am J Crit Care. 2016;25(1):68-75. DOI:10.4037/ajcc2016728.; Casalta J., Gouriet F., Roux V., et al. Evaluation of the Light Cycler Septi Fast test in the rapid etiologic diagnostic of infectious endocarditis. Eur J Clin Microbiol Infect Dis. 2009;28(6):569-73. DOI:10.1007/s10096-008-0672-6.; Shrestha N., Ledtke C., Wang H., et al. Heart valve culture and sequencing to identify the infective endocarditis pathogen in surgically treated patients. Ann Thorac Surg. 2015;99:33-7. DOI:10.1016/j.athoracsur.2014.07.028.; Cheng J., Hu H., Kang Y., et al. Identification of pathogens in culture-negative infective endocarditis cases by metagenomic analysis. Ann Clin Microbiol Antimicrob. 2018;17(1):43. DOI:10.1186/s12941-018-0294-5.; Cheng J., Hu H., Fang W., et al. Detection of pathogens from resected heart valves of patients with infective endocarditis by next-generation sequencing. Int J Infect Dis. 2019;83:148-53. DOI:10.1016/j.ijid.2019.03.007.; Попов Д.А., Овсеенко С.Т., Вострикова Т.Ю. Экспресс – идентификация положительных гемокультур с помощью метода прямой MALDI-TOF масс-спектрометрии. Анестезиология и Реаниматология. 2015;60(5):71-5.; Maneg D., Sponsel J., Muller I., et al. Advantages and limitations of direct PCR amplification of bacterial 16S-rDNA from resected heart tissue or swabs followed by direct sequencing for diagnosing infective endocarditis: a retrospective analysis in the routine clinical setting. BioMed Res Int. 2016;2016:e7923874. DOI:10.1155/2016/7923874.; Harris K., Yam T., Jalili S., et al. Service evaluation to establish the sensitivity, specificity and additional value of broad-range 16S rDNA PCR for the diagnosis of infective endocarditis from resected endocardial material in patients from eight UK and Ireland hospitals. Eur J Clin Microbiol Infect Dis. 2014;33:2061-6. DOI:10.1007/s10096-014-2145-4.; Edouard S., Nabet C., Lepidi H., et al. Bartonella, a common cause of endocarditis: a report on 106 cases and review. J Clin Microbiol. 2015;53:824-9. DOI:10.1128/JCM.02827-14.; Varani S. et al. Diagnosis of bloodstream infections in immunocompromised patients by real-time PCR. J Infect. 2009;58(5):346-51. DOI:10.1016/j.jinf.2009.03.001.; Tsalik E., Jones D., Nicholson B., et al. Multiplex PCR to diagnose blood stream infections in patients admitted from the emergency department with sepsis. J Clin Microbiol. 2010;48(1):26-33. DOI:10.1128/JCM.01447-09.; Rovery C., Greub G., Lepidi H., et al. PCR detection of bacteria on cardiac valves of patients with treated bacterial endocarditis. J Clin Microbiol. 2005;43:163-7. DOI:10.1128/JCM.43.1.163-167.2005.; Imai A., Gotoh K., Asano Y., et al. Comprehensive metagenomic approach for detecting causative microorganisms in culture-negative infective endocarditis. Int J Cardiol. 2014;172:288-9. DOI:10.1016/j.ijcard.2013.12.197.; Сперанская А.С. Секвенирование NextGen. Молекулярная диагностика инфекционных болезней. В: Покровский В.И., Творогова М.Г., Шипулин Г.А., ред. Молекулярная диагностика инфекционных болезней М.: РИПОЛ классик; 2018: 145-71.; Fukui Y., Aoki K., Okuma S., et al. Metagenomic analysis for detecting pathogens in culture-negative infective endocarditis. J Infect Chemother. 2015;21:882-4. DOI:10.1016/j.jiac.2015.08.007.; Costabile A., Santarelli S., Claus S.P., et al. Effect of breadmaking process on in vitro gut microbiota parameters in irritable bowel syndrome. PLoS One. 2014;9(10):e111225. DOI:10.1371/journal.pone.0111225.; Bruzzese E., Callegari M.L., Raia V., et al. Disrupted intestinal microbiota and intestinal inflammation in children with cystic fibrosis and its restoration with Lactobacillus GG: a randomised clinical trial. PLoS One. 2014;9(2):e87796. DOI:10.1371/journal.pone.0087796.; Баранцевич Е.П., Баранцевич Н.Е. Применение MALDI-TOF масс-спектрометрии в клинической микробиологии. Трансляционная Медицина. 2014;(3):23-8. DOI:10.18705/2311-4495-2014-0-3-23-28.; Malek-Elkowska M., Elikowski W., Lisiecka M., Szyszka A. Microbiological diagnostics of infective endocarditis in the light of the new guidelines of the European Society of Cardiology with particular focus on the molecular methods. Przegl Lek. 2016;73(7):525-9.; Croxatto A., Prod’hom G., Greub G. Applications of MALDI-TOF mass spectrometry in clinical diagnostic microbiology. FEMS Microbiol Rev. 2011;36:380-407. DOI:10.1111/j.1574-6976.2011.00298.x; Bader O., Weig M., Taverne-Ghadwal L., et al. Improved clinical laboratory identification of human pathogenic yeasts by matrix-assisted laser desorption ionization time-off light mass spectrometry. Clin Microbiol Infect. 2011; 17:1359–65. DOI:10.1111/j.1469-0691.2010.03398.x.; Kosikowska U., Stępień-Pyśniak D., Pietas-Ożga D., Andrzejczuk S., Juda M. Zastosowanie spektrometrii masowej MALDI-TOF MS w identyfikacji bakterii izolowanych z materiałów klinicznych od ludzi i zwierząt. Diagn Lab. 2015;51:23-30.; De Carolis E., Vella A., Vaccaro L., et al. Development and Validation of an In-House Database for MatrixAssisted Laser Desorbtion Ionization-Time of Flight Mass Spectrometry-Based Yeast Identification Using a Fast Protein Extraction Procedure. J Clin Microbiol. 2014;52(5):1453-8. DOI:10.1128/JCM.03355-13.; Patel R. MALDI-TOF Mass Spectrometry: Transformative Proteomics for Clinical Microbiology. Clin Chem. 2013;59(2): 340-2. DOI:10.1373/clinchem.2012.183558.; Ferreira L., Vega Castaño S.V., Sánchez-Juanes F., et al. Identification of Brucella by MALDI-TOF Mass Spectrometry. Fast and Reliable Identification from Agar Plates and Blood Cultures. PLoS One. 2010;5(12):14235. DOI:10.1371/journal.pone.0014235.; Lista F., Reubsaet F., De Santis R., et al. Reliable identification at the species level of Brucella isolates with MALDI-TOF-MS. BMC Microbiology. 2011;11:267. DOI:10.1186/1471-2180-11-267.; Prod’hom G., Bizzini A., Durussel C., et al. Matrix-assisted laser desorption ionization-time of flight mass spectrometry for direct bacterial identification from positive blood culture pellets. J Clin Microbiol. 2010;48(4):1481-3. DOI:10.1128/JCM.01780-09.; Ferreira L., Sánchez-Juanes F., González-Avila M., et al. Direct identification of urinary tract pathogens from urine samples by matrix-assisted laser desorption ionization-time of flight mass spectrometry. J Clin Microbiol. 2010;48(6):2110-5. DOI:10.1128/JCM.02215-09.; Ломинадзе Г.Г., Семенова Е.А., Мотузова О.В., и др. Использование метода MALDI-TOF масс-спектрометрии для ускорения идентификации микроорганизмов в гемокультурах пациентов с подозрением на сепсис. Лаборатория ЛПУ. 2014;4:17-20.; Wüppenhorst N., Consoir C., Lörch D., Schneider C. Direct identification of bacteria from charcoalcontaining blood culture bottles using matrix-assisted laser desorption/ionisation time-of-flight mass spectrometry. Eur J Clin. Microbiol Infect Dis. 2012;31(10):2843-50. DOI:10.1007/s10096-012-1638-2.; Mestas J., Felsenstein S., Bard J.D. Direct identification of bacteria from positive BacT/ALERT blood culture bottles using matrix-assisted laser desorption ionization-time-of-flight mass spectrometry. Diagn Microbiol Infect Dis. 2014;80(3):193-6. DOI:10.1016/j.diagmicrobio.2014.07.008.; Monteiro J., Inoue F.M., Lobo A.P., et al. Fast and reliable bacterial identification direct from positive blood culture using a new TFA sample preparation protocol and the Vitek MS system. J. Microbiol. Meth. 2015;109:157-9. DOI:10.1016/j.mimet.2014.12.009; Machen A., Drake T., Wang Y. Same Day Identification and full panel antimicrobial susceptibility testing of bacteria from Positive blood culture bottles made possible by a combined lysis-filtration method with MALDI-TOF VITEK mass spectrometry and the VITEK2 system. PLoS One. 2014;9(2):e87870. DOI:10.1371/journal.pone.0087870; Hooff G.P., van Kampen J.J., Meesters R.J., et al. Characterization of β-lactamase enzyme activity in bacterial lysates using MALDI-mass spectrometry. J Proteome Res. 2012;11:79-84. DOI:10.1021/pr200858r.; Kostrzewa M., Sparbier K., Maier T., Schubert S. MALDI-TOF MS: an upcoming tool for rapid detection of antibiotic resistance in microorganisms. Proteom Clin. 2013;7(11-12):767-78. DOI:10.1002/prca.201300042.; Wallet F., Herwegh S., Decoene C., Courcol R.J. PCR-electrospray ionization time-of-flight mass spectrometry: a new tool for the diagnosis of infective endocarditis from heart valves. Diagn Microbiol Infect Dis. 2013;76:125-8. DOI:10.1016/j.diagmicrobio.2013.02.007.; Morris A.J., Drinkovic D., Pottumarthy S., et al. Gram stain, culture, and histopathological examination findings for heart valves removed because of infective endocarditis. Clin Infect Dis. 2003;36:697-704. DOI:10.1086/367842.; Моисеев В.С., Кобалава Ж.Д. Мильто А.С., и др. Инфекционный эндокардит: клиническая характеристика и исходы (7-летний опыт лечения и наблюдения в многопрофильной городской больнице). Кардиология. 2018;58(12):62-5. DOI:10.18087/cardio.2018.12.10192.; Habib G., Lancellotti P., Erba PA. et al., EURO-ENDO Investigators. The ESC-EORP EURO-ENDO (European Infective Endocarditis) registry. European Heart Journal – Quality of Care and Clinical Outcomes 2019;5(3):202-7. DOI:10.1093/ehjqcco/qcz018.; https://www.rpcardio.com/jour/article/view/2401

  3. 3
  4. 4
  5. 5
    Report

    Συγγραφείς: Гулниязов, Арслан

    Συνεισφορές: Пулькина, Наталья Эдуардовна

    Περιγραφή αρχείου: application/pdf

    Relation: Гулниязов А. Комплексная оценка методов увеличения нефтеотдачи при разработке пластов с высоковязкой нефтью : бакалаврская работа / А. Гулниязов; Национальный исследовательский Томский политехнический университет (ТПУ), Инженерная школа природных ресурсов (ИШПР), Отделение нефтегазового дела (ОНД); науч. рук. Н. Э. Пулькина. — Томск, 2021.; http://earchive.tpu.ru/handle/11683/67357

    Διαθεσιμότητα: http://earchive.tpu.ru/handle/11683/67357

  6. 6
  7. 7
  8. 8
  9. 9
    Conference

    Συγγραφείς: Карих, А. А.

    Συνεισφορές: Недоливко, Наталья Михайловна

    Relation: Творчество юных - шаг в успешное будущее : материалы VIII Всероссийской научной студенческой конференции с элементами научной школы имени профессора М. К. Коровина, г. Томск, 23-27 ноября 2015 г. — Томск, 2015.; http://earchive.tpu.ru/handle/11683/15646

    Διαθεσιμότητα: http://earchive.tpu.ru/handle/11683/15646

  10. 10
  11. 11
  12. 12
  13. 13
  14. 14
  15. 15
  16. 16
  17. 17
  18. 18
    Academic Journal

    Πηγή: Zaporozhye мedical journal; No. 4 (2014): Zaporozhye medical journal ; Запорожский медицинский журнал; № 4 (2014): Запорізький медичний журнал ; Запорізький медичний журнал; № 4 (2014): Запорізький медичний журнал ; 2310-1210 ; 2306-4145

    Περιγραφή αρχείου: application/pdf

    Διαθεσιμότητα: http://zmj.zsmu.edu.ua/article/view/27370

  19. 19
  20. 20