Εμφανίζονται 1 - 20 Αποτελέσματα από 2.321 για την αναζήτηση '"ЛАБОРАТОРНАЯ"', χρόνος αναζήτησης: 0,86δλ Περιορισμός αποτελεσμάτων
  1. 1
  2. 2
  3. 3
  4. 4
  5. 5
  6. 6
  7. 7
  8. 8
  9. 9
  10. 10
  11. 11
  12. 12
    Academic Journal

    Πηγή: Bulletin of Yassawi University; Vol. 3 No. 137 (2025): Bulletin of Yassawi University; 426-439 ; Ясауи университетінің хабаршысы; Нөмір 3 № 137 (2025): Ясауи университетінің хабаршысы; 426-439 ; Вестник университета Ясави; Том 3 № 137 (2025): Вестник университета Ясави; 426-439 ; Iasaýı ýnıversıtetіnіń habarshysy; Cilt 3 Sayı 137 (2025): Iasaýı ýnıversıtetіnіń habarshysy; 426-439 ; 2664-0686 ; 2306-7365

    Περιγραφή αρχείου: application/pdf

  13. 13
  14. 14
  15. 15
  16. 16
  17. 17
    Academic Journal

    Συγγραφείς: Иванова Светлана Валерьевна, МБОУ «СОШ №20», Svetlana V. Ivanova, MBOU "SOSh 20" g. Cheboksary Chuvashskoi Respubliki

    Πηγή: Education and the family in the context of sustainable development; 191-194 ; Образование и семья в контексте устойчивого развития; 191-194

    Περιγραφή αρχείου: text/html

    Relation: info:eu-repo/semantics/altIdentifier/isbn/978-5-907965-09-6; https://phsreda.com/e-articles/10666/Action10666-115068.pdf; Федеральный государственный образовательный стандарт основного общего образования. – 126 с. [Электронный ресурс]. – Режим доступа: http://publication.pravo.gov.ru/Document/View/0001202107050027?index=3 (дата обращения: 30.11.2024).; Федеральная программа основного общего образования. Биология 5–9 классы, базовый уровень. – 97 с. [Электронный ресурс]. – Режим доступа: https://edsoo.ru/wp-content/uploads/2023/08/24_ФРП-Биология_5–9-классы_база.pdf (дата обращения: 30.11.2024).; Биология. Живой организм 6 класс: поурочные планы по учебнику Н.И. Сонина / авт.-сост. М.В. Высоцкая. –4-е изд., испр. – Волгоград: Учитель, 2022. – 255 с.; Биология. Покрытосеменные растения: строение и жизнедеятельность: линейный курс. 6 класс. Методическое пособие к учебнику В.В. Пасечника «Биология. Многообразие покрытосеменных растений. 6 класс» / В.В. Пасечник. – М.: Просвещение, 2021. – 55 с.; Биология: 5–9-е классы: базовый уровень: методическое пособие к предметной линии «Линия жизни» / В.В. Пасечник. – М.: Просвещение, 2022. – 186 с.; Биология. 6 класс: методическое пособие / И.Н. Пономарёва, Л.В. Симонова, В.С. Кучменко – М.: Вентана-Граф, 2018. – 128 с.; Константинова И.Ю. Поурочные разработки по биологии. 6 класс: пособие для учителя / И.Ю. Константинова. – 3-е изд., эл. – М.: ВАКО, 2021. – 223 с.; https://phsreda.com/article/115068/discussion_platform

  18. 18
    Academic Journal

    Πηγή: Pedagogy, Psychology, Society: from theory to practice; 102-103 ; Педагогика, психология, общество: от теории к практике; 102-103

    Περιγραφή αρχείου: text/html

    Relation: info:eu-repo/semantics/altIdentifier/isbn/978-5-907965-20-1; https://phsreda.com/e-articles/10697/Action10697-116048.pdf; Методическая продукция в современном образовательном пространстве // Образовательная социальная сеть [Электронный ресурс]. – Режим доступа: https://nsportal.ru/npo-spo/kultura-i-iskusstvo/library/2021/02/08/metodich eskaya-produktsiya-v-sovremennom (дата обращения: 11.03.2024).; Хацринова О.Ю. Повышение методической компетентности преподавателей инженерного вуза – гарантия обеспечения качества образования / О.Ю. Хацринова, Р.С. Сайфуллин // Казанский педагогический журнал. – 2018. – Вып. 4 (129). – С. 43–48. – EDN XWCKTJ; https://phsreda.com/article/116048/discussion_platform

  19. 19
    Academic Journal

    Συνεισφορές: The project, implemented by leading scientists, including young researchers, is funded under Grant No. 23-76-10062, Работа выполнена при государственной поддержке РНФ конкурса 2023 года «Проведение исследований научными группами под руководством молодых ученых» Президентской программы исследовательских проектов, реализуемых ведущими учеными, в том числе молодыми учеными No 23-76-10062

    Πηγή: Agricultural Machinery and Technologies; Том 19, № 1 (2025); 22-29 ; Сельскохозяйственные машины и технологии; Том 19, № 1 (2025); 22-29 ; 2073-7599

    Περιγραφή αρχείου: application/pdf

    Relation: https://www.vimsmit.com/jour/article/view/637/559; Лобачевский Я.П., Дорохов А.С., Сибирев А.В. Современное состояние технологического обеспечения производства овощных культур в Российской Федерации // Овощи России. 2023. N5. 5-10. DOI:10.18619/2072-9146-2023-5-5-17.; Дорохов А.С., Аксенов А.Г., Сибирёв А.В. и др. Теоретические предпосылки интенсификации уборки лука-­­севка // Сельскохозяйственные машины и технологии. 2023.N3. С. 85-92. DOI:10.22314/2073-7599-2023-17-3-85-92.; Yanykin, D.V., Paskhin M.O., Simakin A.V. et al. Plant photochemistry under glass coated with upconversion luminescent film. Applied Sciences. 2022. N12. 7480. DOI:10.3390/app12157480.; Golmohammadi A., Bejaei F., Behfar H. Design, development and evaluation of an online potato sorting system using machine vision. International Journal of Agriculture and Crop Sciences. 2013. N6. 396-402.; Дорохов А.С., Cибирев А.В., Аксенов А.Г. и др. Определение параметров электрофизического взаимодействия на овощные культуры и картофель перед закладкой на хранение // Аграрный научный журнал. 2024. N3. С. 103-109. DOI:10.28983/asj.y2024i3pp103-109.; Лобачевский Я.П., Ценч Ю.С. Принципы формирования систем машин и технологий для комплексной механизации и автоматизации технологических процессов в растениеводстве // Сельскохозяйственные машины и технологии. 2022. N16(4). С. 4-12. DOI:10.22314/2073-7599-2022-16-4-4-12.; Попов В.Д., Валге А.М., Папушин Э.А. Повышение эффективности производства продукции растениеводства с использованием информационных технологий // Технологии и технические средства механизированного производства продукции растениеводства и животноводства. 2009. Т. 81. С. 32-39. EDN: THYQKD.; Измайлов А.Ю., Лобачевский Я.П., Дорохов А.С. и др. Современные технологии и техника для сельского хозяйства – тенденции выставки Аgritechnika 2019 // Тракторы и сельхозмашины. 2020. N6. C. 28-40. DOI:10.31992/0321-4443-2020-6-28-40.; Ценч Ю.С., Годлевская Е.В. Математическое моделирование как инструмент проектирования сельскохозяйственных машин и агрегатов (применительно к истории развития научной школы Южного Урала) // Сельскохозяйственные машины и технологии. 2023. Т. 17. N2. C. 4-12. DOI:10.22314/2073-7599-2023-17-2-412.; Ракутько С.А., Ракутько Е.Н., Медведев Г.В. Разработка экспериментального фитотрона и его применение в исследованиях по энергоэкологии светокультуры // Сельскохозяйственные машины и технологии. 2023. Т. 17. N2. C. 40-48. DOI:10.22314/2073-7599-2023-17-2-40-48.; Avila R., Schoenau J., King T. et al. Effects of subsoiling tillage on structure, permeability, and crop yields on compacted Solonetzic and Chernozemicdry land soils in Western Canada. Canadian Biosystems Engineering. 2020. N62. 1.1-1.9. DOI:10.7451/CBE.2020.62.1.1.; Lobachevsky Ya., Dorokhov A., Aksenov A. et al. RAMAN and fluorimetric scattering lidar facilitated to detect dama­ged potatoes by determination of spectra. Applied Sciences. 2022. N12(15). 7480. DOI:10.3390/app12115391.; Erokhin M.N.,Dorokhov A.S.,Sibirev A.V. et al. Development and modeling of an onion harvester with an automated separation system. AgriEngineering. 2022. N4. 380399. DOI:10.3390/agriengineering4020026.; Аксенов А.Г., Сибирев А.В. Состояние технического обеспечения производства овощных культур в Российской Федерации // Картофель и овощи. 2021. N8. С. 3-8. DOI:10.25630/PAV.2021.85.47.001.; Aksenov A.G., Sibirev A.V. Technical support of vegetable growing in countries of the Eurasian Economic Union. AMA. 2020. N3(51). 12-19. EDN: XAWSBO.; Пастухов А.Г., Добрицкий А.А., Бахарев Д.Н., Вольвак С.Ф. Исследование физико-механических свойств семян тыквы как объекта сушки // Сельскохозяйственные машины и технологии. 2024. Т. 18. N1. С. 52-59. DOI:10.22314/2073-7599-2024-18-1-52-59.; Зимин И.Б., Игнатенков В.Г., Яковлев М.А., Смирнов А.В. Экспериментальное исследование аэродинамических характеристик гранулированных сыпучих материалов // Известия Великолукской государственной сельскохозяйственной академии. 2020. N2(31). С. 29-33. EDN: LZPPMW.; Сазонов Н.В., Мосяков М.А., Тетерин В.С. и др. Показатели качества работы автоматизированной машины для ухода за растениями картофеля в селекции и семеноводстве // Сельскохозяйственные машины и технологии. 2024. Т. 18. N1. C. 60-67. DOI:10.22314/2073-7599-2024-18-1-60-67.; Лобачевский Я.П., Лачуга Ю.Ф., Измайлов А.Ю., Шогенов Ю.Х. Научно-технические достижения агроинженерных научных организаций в условиях цифровой трансформации сельского хозяйства // Техника и оборудование для села. 2023. N4(310). С. 2-5. DOI:10.33267/2072-9642-2023-4-2-5.; Казаков С.С., Живаев О.В., Никулин А.В. Конструкционные пути снижения повреждаемости клубней посадочного картофеля при работе цепочно-ложечного высаживающего аппарата // Тракторы и сельхоз­машины. 2019. N3. С. 29-34. DOI:10.31992/0321-4443-2019-3-29-34.; https://www.vimsmit.com/jour/article/view/637

  20. 20
    Academic Journal

    Πηγή: Rossiyskiy Vestnik Perinatologii i Pediatrii (Russian Bulletin of Perinatology and Pediatrics); Том 70, № 1 (2025); 18-25 ; Российский вестник перинатологии и педиатрии; Том 70, № 1 (2025); 18-25 ; 2500-2228 ; 1027-4065

    Περιγραφή αρχείου: application/pdf

    Relation: https://www.ped-perinatology.ru/jour/article/view/2134/1562; Naghavi M., Abajobir A.A., Abbafati C., Abbas K.M., Abd-Allah F., Abera S.F., et al. Global, regional, and national age-sex specific mortality for 264 causes of death, 1980–2016: a systematic analysis for the Global Burden of Disease Study 2016. The Lancet 2017; 390: 1151–210. DOI:10.1016/S0140–6736(17)32152–9; Nelson R.E., Hatfield K.M., Wolford H., Samore M.H., Scott R.D., Reddy S.C., et al. National Estimates of Healthcare Costs Associated With Multidrug-Resistant Bacterial Infections Among Hospitalized Patients in the United States. Clin Infect Dis 2021; 72: S17–26. DOI: org/10.1093/CID/CIAA1581; Mejias A., Wu B., Tandon N., Chow W., Varma R., Franco E., et al. Risk of childhood wheeze and asthma after respiratory syncytial virus infection in full-term infants. Pediatr Allergy Immunol 2020; 31: 47–56. DOI:10.1111/pai.13131; Ouellette C.P., Sánchez P.J., Xu Z., Blankenship D., Zeray F., Ronchi A., et al. Blood genome expression profiles in infants with congenital cytomegalovirus infection. Nat Commun 2020; 11. DOI:10.1038/S41467–020–17178–5; Godfred-Cato S., Bryant B., Leung J., Oster M.E., Conklin L., Abrams J., et al. COVID-19-Associated Multisystem Inflammatory Syndrome in Children — United States, March–July 2020. Morbidity and Mortality Weekly Report 2020; 69: 1074. DOI:10.15585/MMWR.MM6932E2; Bousfiha A., Moundir A., Tangye S.G., Picard C., Jeddane L., Al-Herz W., et al. The 2022 Update of IUIS Phenotypical Classification for Human Inborn Errors of Immunity. J Clin Immunol 2022;42:1508–1520. DOI: org/10.1007/s10875–022–01352-z/metrics; Redmond M.T., Scherzer R., Prince B.T. Novel Genetic Discoveries in Primary Immunodeficiency Disorders. Clin Rev Allergy Immunol 2022; 63: 55. DOI:10.1007/S12016–021–08881–2; Godfrey A., Vandendriessche B., Bakker J.P., Fitzer-Attas C., Gujar N., Hobbs M., et al. Fit-for-Purpose Biometric Monitoring Technologies: Leveraging the Laboratory Biomarker Experience. Clin Transl Sci 2021; 14: 62. DOI:10.1111/cts.12865; Mayeux R. Biomarkers: Potential Uses and Limitations. NeuroRx. 2004; 1: 182. DOI:10.1602/neurorx.1.2.182; Wan-Ibrahim W.I., Singh V.A., Hashim O.H., Abdul-Rahman P.S. Biomarkers for Bone Tumors: Discovery from Genomics and Proteomics Studies and Their Challenges. Mol Med 2015; 21: 861. DOI: org/10.2119/MOLMED.2015.00183; Mert D.G., Terzi H. Mean platelet volume in bipolar disorder: the search for an ideal biomarker. Neuropsychiatr Dis Treat 2016; 12: 2057. DOI: org/10.2147/NDT.S112374; Van Der Poll T., Van De Veerdonk F.L., Scicluna B.P., Netea M.G. The immunopathology of sepsis and potential therapeutic targets. Nat Rev Immunol 2017; 17: 407–420. DOI:10.1038/NRI.2017.36; Langlais D., Fodil N., Gros P. Genetics of Infectious and Inflammatory Diseases: Overlapping Discoveries from Association and Exome-Sequencing Studies. Annu Rev Immunol 2017; 35: 1–30. DOI:10.1146/annurev-immunol-051116–052442; Zhong Y., Xu F., Wu J., Schubert J., Li M.M. Application of Next Generation Sequencing in Laboratory Medicine. Ann Lab Med 2021; 41: 25–43. DOI:10.3343/alm.2021.41.1.25; Asgari S., McLaren P.J., Peake J., Wong M., Wong R., Bartha I., et al. Exome Sequencing Reveals Primary Immunodeficiencies in Children with Community-Acquired Pseudomonas aeruginosa Sepsis. Front Immunol 2016; 7. DOI:10.3389/fimmu.2016.00357; Borghesi A., Trück J., Asgari S., Sancho-Shimizu V., Agyeman P.K.A., Bellos E., et al. Whole-exome Sequencing for the Identification of Rare Variants in Primary Immunodeficiency Genes in Children With Sepsis: A Prospective, Population-based Cohort Study. Clin Infect Dis 2020; 71: E614–23. DOI:10.1093/cid/ciaa290; Hermans P.W.M., Hibberd M.L., Booy R., Daramola O., Hazelzet J.A., De Groot R., et al. 4G/5G promoter polymorphism in the plasminogen-activator-inhibitor-1 gene and outcome of meningococcal disease. Lancet 1999; 354: 556–560. DOI:10.1016/S0140–6736(99)02220–5; Brouwer M.C., Read R.C., van de Beek D. Host genetics and outcome in meningococcal disease: a systematic review and meta-analysis. Lancet Infect Dis 2010; 10: 262–274. DOI:10.1016/S1473–3099(10)70045–1; Mazzotti L., Gaimari A., Bravaccini S., Maltoni R., Cerchione C., Juan M., et al. T-Cell Receptor Repertoire Sequencing and Its Applications: Focus on Infectious Diseases and Cancer. Int J Mol Sci 2022; 23. DOI:10.3390/IJMS23158590/S1; Korsunskiy I., Blyuss O., Gordukova M., Davydova N., Zaikin A., Zinovieva N., et al. Expanding TREC and KREC Utility in Primary Immunodeficiency Diseases Diagnosis. Front Immunol 2020; 11: 320. DOI:10.3389/FIMMU.2020.00320; Sottini A., Serana F., Bertoli D., Chiarini M., Valotti M., Tessitore M.V., et al. Simultaneous Quantification of T-Cell Receptor Excision Circles (TRECs) and K-Deleting Recombination Excision Circles (KRECs) by Real-time PCR. J Vis Exp 2014; 94: 52184. DOI:10.3791/52184; Borte S., Von Döbeln U., Fasth A., Wang N., Janzi M., Winiarski J., et al. Neonatal screening for severe primary immunodeficiency diseases using high-throughput triplex real-time PCR. Blood 2012; 119: 2552–2555. DOI:10.1182/blood-2011–08–371021; Korsunskiy I., Blyuss O., Gordukova M., Davydova N., Gordleeva S., Molchanov R., et al. TREC and KREC levels as predictors of lymphocyte subpopulations measured by flow cytometry. Front Physiol 2019; 10. DOI:10.3389/fphys.2018.01877; Remaschi G., Ricci S., Cortimiglia M., De Vitis E., Iannuzzi L., Boni L., et al. TREC and KREC in very preterm infants: reference values and effects of maternal and neonatal factors. J Maternal-Fetal Neonatal Med 2021; 34: 3946–3951. DOI:10.1080/14767058.2019.1702951; Zanotti C., Chiarini M., Serana F., Sottini A., Garrafa E., Torri F., et al. Peripheral accumulation of newly produced T and B lymphocytes in natalizumab-treated multiple sclerosis patients. Clin Immunol 2012; 145: 19–26. DOI:10.1016/J.CLIM.2012.07.007; Sottini A., Capra R., Zanotti C., Chiarini M., Serana F., Ricotta D., et al. Pre-existing T- and B-cell defects in one progressive multifocal leukoencephalopathy patient. PLoS One 2012; 7. DOI:10.1371/journal.pone.0034493; Masuda S., Nakazawa D., Shida H., Miyoshi A., Kusunoki Y., Tomaru U., et al. NETosis markers: Quest for specific, objective, and quantitative markers. Clinica Chimica Acta 2016; 459: 89–93. DOI:10.1016/J.CCA.2016.05.029; Xu J., Zhang X., Pelayo R., Monestier M., Ammollo C. T., Semeraro F., et al. Extracellular histones are major mediators of death in sepsis. Nat Med 2009; 15: 1318–21. DOI:10.1038/NM.2053; Fuchs T.A., Brill A., Wagner D.D. Neutrophil extracellular trap (NET) impact on deep vein thrombosis. Arterioscler Thromb Vasc Biol 2012; 32: 1777–1783. DOI:10.1161/atvbaha.111.242859; Nakazawa D., Tomaru U., Suzuki A., Masuda S., Hasegawa R., Kobayashi T., et al. Abnormal conformation and impaired degradation of propylthiouracil-induced neutrophil extracellular traps: Implications of disordered neutrophil extracellular traps in a rat model of myeloperoxidase antineutrophil cytoplasmic antibody-associated vasculitis. Arthritis Rheum 2012; 64: 3779–3787. DOI:10.1002/art.34619; Zhang H., Wang Y., Qu M., Li W., Wu D., Cata J. P., et al. Neutrophil, neutrophil extracellular traps and endothelial cell dysfunction in sepsis. Clin Transl Med 2023; 13. DOI:10.1002/ctm2.1170; Zhang Y.Y., Ning B.T. Signaling pathways and intervention therapies in sepsis. Signal Transduct Target Ther 2021; 6. DOI:10.1038/S41392–021–00816–9; Ackermann M., Anders H. J., Bilyy R., Bowlin G. L., Daniel C., De Lorenzo R., et al. Patients with COVID-19: in the dark- NETs of neutrophils. Cell Death Differ 2021; 28: 3125–3139. DOI:10.1038/S41418–021–00805-Z; Russell C.D., Baillie J.K. Treatable traits and therapeutic targets: Goals for systems biology in infectious disease. Curr Opin Syst Biol 2017; 2: 140–146. DOI:10.1016/j.coisb.2017.04.003; Ghezzi P., Cerami A. Tumor necrosis factor as a pharmacological target. Methods Mol Med 2004; 98: 1–8. DOI:10.1385/1–59259–771–8:001; Qiu P., Cui X., Barochia A., Li Y., Natanson C., Eichacker P.Q. The evolving experience with therapeutic TNF inhibition in sepsis: considering the potential influence of risk of death. Expert Opin Investig Drugs 2011; 20: 1555–64. DOI:10.1517/13543784.2011.623125; Cannon J.G., Tompkins R.G., Gelfand J.A., Michie H.R., Stanford G.G., van der Meer J.W.M., et al. Circulating interleukin-1 and tumor necrosis factor in septic shock and experimental endotoxin fever. J Infect Dis 1990; 161: 79–84. DOI:10.1093/infdis/161.1.79; Joosten L.A.B., Van De Veerdonk F.L., Vonk A.G., Boerman O.C., Keuter M., Fantuzzi G., et al. Differential susceptibility to lethal endotoxaemia in mice deficient in IL-1α, IL-1β or IL-1 receptor type I. APMIS 2010; 118: 1000–1007. DOI:10.1111/J.1600–0463.2010.02684.X; Образцов И.В., Черникова Е.А., Образцова А.А., Епифанова М.А., Жиркова Ю.В. Динамика интерлейкина-6 как маркера генерализации инфекции при развитии неонатального сепсиса. Анестезиология и реаниматология 2024; 3: 35‑42.; Kao P.C., Shiesh S.C., Wu T.J. Serum C-reactive protein as a marker for wellness assessment. Ann Clin Lab Sci 2006 Spring; 36(2): 163–169.; Whelan S.A., Hendricks N., Dwight Z.L., Fu Q., Moradian A., Van Eyk J.E. et al. Assessment of a 60-Biomarker Health Surveillance Panel (HSP) on Whole Blood from Remote Sampling Devices by Targeted LC/MRM-MS and Discovery DIA-MS Analysis. Anal Chem 2023; 95(29): 11007–11018. DOI:10.1021/acs.analchem.3c01189; Mauri T., Bellani G., Patroniti N., Coppadoro A., Peri G., Cuccovillo I., et al. Persisting high levels of plasma pentraxin 3 over the first days after severe sepsis and septic shock onset are associated with mortality. Intensive Care Med 2010; 36: 621–629. DOI:10.1007/S00134–010–1752–5; Kofoed K., Andersen O., Kronborg G., Tvede M., Petersen J., Eugen-Olsen J., et al. Use of plasma C-reactive protein, procalcitonin, neutrophils, macrophage migration inhibitory factor, soluble urokinase-type plasminogen activator receptor, and soluble triggering receptor expressed on myeloid cells-1 in combination to diagnose infections: a prospective study. Crit Care 2007; 11: R38. DOI:10.1186/cc5723; Shapiro N.I., Trzeciak S., Hollander J.E., Birkhahn R., Otero R., Osborn T.M., et al. A prospective, multicenter derivation of a biomarker panel to assess risk of organ dysfunction, shock, and death in emergency department patients with suspected sepsis. Crit Care Med 2009; 37: 96–104. DOI:10.1097/ccm.0b013e318192fd9d; Gibot S., Béné M.C., Noel R., Massin F., Guy J., Cravoisy A., et al. Combination biomarkers to diagnose sepsis in the critically ill patient. Am J Respir Crit Care Med 2012; 186: 65–71. DOI:10.1164/rccm.201201–0037oc; Stryjewski G.R., Nylen E.S., Bell M.J., Snider R.H., Becker K.L., Wu A., et al. Interleukin-6, interleukin-8, and a rapid and sensitive assay for calcitonin precursors for the determination of bacterial sepsis in febrile neutropenic children. Pediatr Crit Care Med 2005; 6: 129–135. DOI:10.1097/01.pcc.0000149317.15274.48; Bozza F.A., Salluh J.I., Japiassu A.M., Soares M., Assis E.F., Gomes R.N., et al. Cytokine profiles as markers of disease severity in sepsis: a multiplex analysis. Crit Care 2007; 11. DOI:10.1186/cc5783; Monneret G., Finck M. E., Venet F., Debard A. L., Bohé J., Bienvenu J., et al. The anti-inflammatory response dominates after septic shock: association of low monocyte HLA-DR expression and high interleukin-10 concentration. Immunol Lett 2004; 95: 193–198. DOI:10.1016/j.imlet.2004.07.009; Guignant C., Lepape A., Huang X., Kherouf H., Denis L., Poitevin F., et al. Programmed death-1 levels correlate with increased mortality, nosocomial infection and immune dysfunctions in septic shock patients. Crit Care 2011; 15. DOI:10.1186/cc10112; Urbonas V., Eidukaitė A., Tamulienė I. Increased interleukin-10 levels correlate with bacteremia and sepsis in febrile neutropenia pediatric oncology patients. Cytokine 2012; 57: 313–315. DOI:10.1016/j.cyto.2011.11.012; Zeitoun A.A.H., Gad S.S., Attia F.M., Abu Maziad A.S., Bell E.F. Evaluation of neutrophilic CD64, interleukin 10 and procalcitonin as diagnostic markers of early- and late-onset neonatal sepsis. Scand J Infect Dis 2010; 42: 299–305. DOI:10.3109/00365540903449832; Shubin N.J., Navalkar K., Sampson D., Yager T.D., Cermelli S., Seldon T., et al. Serum Protein Changes in Pediatric Sepsis Patients Identified With an Aptamer-Based Multiplexed Proteomic Approach. Crit Care Med 2020; 48: E48–57. DOI:10.1097/ccm.0000000000004083; Pilar-Orive F.J., Astigarraga I., Azkargorta M., Elortza F., Garcia-Obregon S. A Three-Protein Panel to Support the Diagnosis of Sepsis in Children. J Clin Med 2022; 11. DOI:10.3390/jcm11061563; Luo T., Yan H., Li X., Deng Y., Huang J., Li L., et al. Proteomic analysis identified potential age-associated prognostic biomarkers in pneumonia-derived paediatric sepsis. Proteomics Clin Appl 2022; 16. DOI:10.1002/prca.202100036; Wong H.R., Cvijanovich N.Z., Hall M., Allen G.L., Thomas N.J., Freishtat R.J., et al. Interleukin-27 is a novel candidate diagnostic biomarker for bacterial infection in critically ill children. Crit Care 2012; 16. DOI:10.1186/CC11847