-
1Academic Journal
Source: Messenger of ANESTHESIOLOGY AND RESUSCITATION; Том 21, № 6 (2024); 116-121 ; Вестник анестезиологии и реаниматологии; Том 21, № 6 (2024); 116-121 ; 2541-8653 ; 2078-5658
Subject Terms: механотрансдукция эндотелия, endothelial dysfunction, critical conditions, endothelial mechanotransduction, эндотелиальная дисфункция, критическое состояние
File Description: application/pdf
Relation: https://www.vair-journal.com/jour/article/view/1114/770; Binggeli C., Spieker L. E., Corti R. et al. Statins enhance postischemic hyperemia in the skin circulation of hypercholesterolemic patients: a monitoring test of endothelial dysfunction for clinical practice? // J. Am. Coll. Cardiol. – 2003. – Vol. 42, № 1. – P. 71–77. https://doi.org/10.1016/s0735-1097(03)00505-9.; Boerma E. C., Koopmans M., Konijn A. et al. Effects of nitroglycerin on sublingual microcirculatory blood flow in patients with severe sepsis/septic shock after a strict resuscitation protocol: a double-blind randomized placebo-controlled trial // Crit. Care Med. – 2010. – Vol. 38. – P. 93–100. https://doi.org/10.1097/CCM.0b013e3181b02fc1.; Chatterjee S. Endothelial mechanotransduction, redox signaling and the regulation of vascular inflammatory pathways // Front Physiol. – 2018. – Vol. 9. – P. 524. https://doi.org/10.3389/fphys.2018.00524.; Coon B. G., Baeyens N., Han J. et al. Intramembrane binding of VE-cadherin to VEGFR2 and VEGFR3 assembles the endothelial mechanosensory complex // J Cell Biol. – 2015. – Vol. 208, № 7. – P. 975–986. https://doi.org/10.1083/jcb.201408103.; De Backer D., Creteur J., Preiser J. C. et al. Microvascular blood flow is altered in patients with sepsis // Am. J. Respir. Crit. Care Med. – 2002. – Vol. 166, № 1. – P. 98–104. https://doi.org/10.1164/rccm.200109-016oc.; De Backer D., Creteur J., Dubois M. J. et al. The effects of dobutamine on microcirculatory alterations in patients with septic shock are independent of its systemic effects // Crit. Care Med. – 2006. – Vol. 34. – P. 403–408. https://doi.org/10.1097/01.CCM.0000198107.61493.5A.; Den Uil C. A., Caliskan K., Lagrand W. K. et al. Dose-dependent benefit of nitroglycerin on microcirculation of patients with severe heart failure // Intensive Care Med. – 2009. – Vol. 35. – P. 1893–1899. https://doi.org/10.1007/s00134-009-1591-4.; Dubin A., Pozo M. O., Casabella C. A. et al. Increasing arterial blood pressure with norepinephrine does not improve microcirculatory blood flow: a prospective study // Crit. Care. – 2009. – Vol. 13. – P. R92. https://doi.org/10.1186/cc7922.; Edul V. S., Ferrara G., Pozo M. O. et al. Failure of nitroglycerin (glyceryl trinitrate) to improve villi hypoperfusion in endotoxaemic shock in sheep // Crit Care Resusc. – 2011. – Vol. 13, № 4. – P. 252–261. PMID: 22129287.; Enrico C., Kanoore Edul V. S., Vazquez A. R. et al. Systemic and microcirculatory effects of dobutamine in patients with septic shock // J Crit Care. – 2012. – Vol. 27, № 6. – P. 630–8. https://doi.org/10.1016/j.jcrc.2012.08.002.; Georger J. F., Hamzaoui O., Chaari A. et al. Restoring arterial pressure with norepinephrine improves muscle tissue oxygenation assessed by near-infrared spectroscopy in severely hypotensive septic patients // Intensive Care Med. – 2010. – Vol. 36. – P. 1882–1889. https://doi.org/10.1007/s00134-010-2013-3.; Ghiadoni L., Versari D., Giannarelli C. et al. Non-invasive diagnostic tools for investigating endothelial dysfunction // Curr. Pharm. Des. – 2008. – Vol.14, № 35. – P. 3715–3722. https://doi.org/10.2174/138161208786898761.; Hamlin S. K., Strauss P. Z., Chen H. M. et al. Microvascular fluid [resuscitation in circulatory shock // Nurs Clin North Am. – 2017. – Vol. 52, № 2. – P. 291–300. https://doi.org/10.1016/j.cnur.2017.01.006.; Ihlemann N., Rask-Madsen C., Perner A. et al. Tetrahydrobiopterin restores endothelial dysfunction induced by an oral glucose challenge in healthy subjects // Am J Physiol Heart Circ Physiol. – 2003. – Vol. 285, № 2. – P. H875–82. https://doi.org/10.1152/ajpheart.00008.2003.; Ince C. Hemodynamic coherence and the rationale for monitoring the microcirculation // Crit Care. – 2015. – Vol. 19, Suppl 3. – S8. https://doi.org/10.1186/cc14726.; Janotka M., Ostadal P. Biochemical markers for clinical monitoring of tissue perfusion // Mol Cell Biochem. – 2021. – Vol. 476, № 3. – P. 1313–1326. https://doi.org/10.1007/s11010-020-04019-8.; Kanoore Edul V. S., Ince C., Dubin A. What is microcirculatory shock? // Curr Opin Crit Care. – 2015. – Vol. 21, № 3. – P. 245–252. https://doi.org/10.1097/MCC.0000000000000196.; Kara A., Akin S., Ince C. Monitoring microcirculation in critical illness // Curr Opin Crit Care. – 2016. – Vol. 22, № 5. – P. 444–452. https://doi.org/10.1097/MCC.0000000000000335.; Li K., Li Y., Chen Y. et al. Ion channels remodeling in the regulation of vascular hyporesponsiveness during shock // Microcirculation. – 2024. – Vol. 31, № 6. – e12874. https://doi.org/10.1111/micc.12874.; Lipinska-Gediga M. Sepsis and septic shock – is a microcirculation a main player? // Anaesthesiol Intensive Ther. – 2016. – Vol. 48, № 4. – P. 261–265. https://doi.org/10.5603/AIT.a2016.0037.; Longden T. A., Zhao G., Hariharan A. et al. Pericytes and the control of blood flow in brain and heart // Annu Rev Physiol. – 2023. – Vol. 85. – P. 137–164. https://doi.org/10.1146/annurev-physiol-031522-034807.; Maglione M., Hermann M., Hengster P. et al. Tetrahydrobiopterin attenuates microvascular reperfusion injury following murine pancreas transplantation // Am. J. Transplant. – 2006. – Vol. 6. – P. 1551–1559. https://doi.org/10.1111/j.1600-6143.2006.01345.x.; Merdji H., Levy B., Jung C. et al. Microcirculatory dysfunction in cardiogenic shock // Ann Intensive Care. – 2023. – Vol. 13, № 1. – P. 38. https://doi.org/10.1186/s13613-023-01130-z.; Miura K., Kashima H., Morimoto M. et al. Effects of unilateral arm warming or cooling on the modulation of brachial artery shear stress and endothelial function during leg exercise in humans // J Atheroscler Thromb. – 2021. – Vol. 28, № 3. – P. 271–282. https://doi.org/10.5551/jat.55731.; Morelli A., Donati A., Ertmer C. et al. Levosimendan for resuscitating the microcirculation in patients with septic shock: a randomized controlled study // Crit. Care. – 2010. – Vol. 14. – P. R232. https://doi.org/10.1186/cc9387.; Nakajima Y., Baudry N., Duranteau J. et al. Effects of vasopressin, norepinephrine, and L-arginine on intestinal microcirculation in endotoxemia // Crit. Care Med. – 2006. – Vol. 34. – P. 1752–1757. https://doi.org/10.1097/01.CCM.0000218812.73741.6C.; Nour S. Endothelial shear stress enhancements: a potential solution for critically ill Covid-19 patients // Biomed Eng Online. – 2020. – Vol. 19, № 1. – P. 91. https://doi.org/10.1186/s12938-020-00835-7.; Ospina-Tascon G., Neves A. P., Occhipinti G. et al. Effects of fluids on microvascular perfusion in patients with severe sepsis // Intensive Care Med. – 2010. – Vol. 36. – P. 949–955. – https://doi.org/10.1007/s00134-010-1843-3.; Ospina-Tascón G. A., Umaña M., Bermúdez W. F. et al. Can venous-to-arterial carbon dioxide differences reflect microcirculatory alterations in patients with septic shock? // Intensive Care Med. – 2016. – Vol. 42, № 2. – P. 211–221. https://doi.org/10.1007/s00134-015-4133-2.; Patt B. T., Jarjoura D., Haddad D. N. et al. Endothelial dysfunction in the microcirculation of patients with obstructive sleep apnea // Am J Respir Crit Care Med. – 2010. – Vol. 182, № 12. – P. 1540–1555. https://doi.org/10.1164/rccm.201002-0162OC.; Pober J. S., Sessa W. C. Evolving functions of endothelial cells in inflammation // Nat. Rev. Immunol. – 2007. – Vol. 7, № 10. – P. 803–815. https://doi.org/10.1038/nri2171.; Pottecher J., Deruddre S., Teboul J. L. et al. Both passive leg raising and intravascular volume expansion improve sublingual microcirculatory perfusion in severe sepsis and septic shock patients // Intensive Care Med. – 2010. – Vol. 36. – P. 1867–1874. https://doi.org/10.1007/s00134-010-1966-6.; Potter D. R., Damiano E. R. The hydrodynamically relevant endothelial cell glycocalyx observed in vivo is absent in vitro // Circ Res. – 2008. – Vol. 102, № 7. – P. 770–776. https://doi.org/10.1161/CIRCRESAHA.107.160226.; Puissant C., Abraham P., Durand S. et al. Endothelial function: role, assessment and limits // J. Mal. Vasc. – 2014. – Vol. 39, № 1. – P. 47–56. – https://doi.org/10.1016/j.jmv.2013.11.004.; Roux E., Bougaran P., Dufourcq P. et al. Fluid shear stress sensing by the endothelial layer // Front Physiol. – 2020. – Vol. 11. – P. 861. https://doi.org/10.3389/fphys.2020.00861.; Schmidt T. S., Alp N. J. Mechanisms for the role of tetrahydrobiopterin in endothelial function and vascular disease // Clin Sci (Lond). – 2007. – Vol. 113, № 2. – P. 47–63. https://doi.org/10.1042/CS20070108.; Schwarte L. A., Picker O., Bornstein S. R. et al. Levosimendan is superior to milrinone and dobutamine in selectively increasing microvascular gastric mucosal oxygenation in dogs // Crit. Care Med. – 2005. – Vol. 33. – P. 135–142. https://doi.org/10.1097/01.; Secchi A., Wellmann R., Martin E. et al. Dobutamine maintains intestinal villus blood flow during normotensive endotoxemia: an intravital microscopic study in the rat // J. Crit. Care. – 1997. – Vol. 12. – P. 137–141. https://doi.org/10.1016/S0883-9441(97)90043-5.; Seetharaman S., Devany J., Kim H. R. et al. Mechanosensitive FHL2 tunes endothelial function // BioRxiv. – 2024. – Jun 17. https://doi.org/10.1101/2024.06.16.599227.; Taher R., Sara J. D., Toya T. et al. Secondary Raynaud’s phenomenon is associated with microvascular peripheral endothelial dysfunction // Microvasc Res. – 2020. – Vol. 132. – 104040. https://doi.org/10.1016/j.mvr.2020.104040.; Thooft A., Favory R., Salgado D. R. et al. Effects of changes in arterial pressure on organ perfusion during septic shock // Crit. Care. – 2011. – Vol. 15. – P. R222. – https://doi.org/10.1186/cc10462.
-
2Academic Journal
Authors: E. G. Osmanov, A. M. Shulutko, S. E. Khmyrova, E. L. Altukhov, A. E. Shestopalov, A. A. Yakovlev, A. V. Yakovleva, Yu. K. Danileiko, Э. Г. Османов, А. М. Шулутко, С. Е. Хмырова, Е. Л. Алтухов, А. Е. Шестопалов, А. А. Яковлев, А. В. Яковлева, Ю. К. Данилейко
Source: Wounds and wound infections. The prof. B.M. Kostyuchenok journal; Том 11, № 1 (2024); 42-48 ; Раны и раневые инфекции. Журнал имени проф. Б.М. Костючёнка; Том 11, № 1 (2024); 42-48 ; 2500-0594 ; 2408-9613
Subject Terms: репаративные процессы, decubital ulcers, high-frequency electrical stimulation, wounds, chronic critical state, cerebral catastrophe, reparative processes, декубитальные язвы, высокочастотная электростимуляция ран, хроническое критическое состояние, церебральная катастрофа
File Description: application/pdf
Relation: https://www.riri.su/jour/article/view/318/316; Алексеева Г. В., Радаев С. М., Лосев В. В., Боттаев Н. А. Результаты реабилитации больного с тяжелой патологией мозга и выраженными гнойно-воспалительными нарушениями. Клиническая анестезиология и реаниматология. 2004; (3): 26–34.; Дибиров М. Д. Пролежни: профилактика и лечение. Амбулаторная хирургия. 2016; (1): 55–63.; Ахтямова Н. Е. Лечение пролежней у малоподвижных пациентов. Российский медицинский журнал. 2015; (26): 1549–1552.; Liao X., Ju Y., Liu G., et al. Risk Factors for Pressure Sores in Hospitalized Acute Ischemic Stroke Patients. J Stroke Cerebrovasc Dis. 2019; 28 (7): 2026–2030.; Verdú-Soriano J., Berenguer-Pérez M., Quesada J.A. Trends in mortality due to pressure ulcers in Spain, over the period 1999-2016. J Tissue Viability. 2021; 30 (2): 147–154.; Sprigle S., McNair D., Sonenblum S. Pressure Ulcer Risk Factors in Persons with Mobility-Related Disabilities. Adv Skin Wound Care. 2020; 33 (3): 146–154.; Polak A., Kucio C., Kloth L.C., et al. A randomized, controlled clinical study to assess the effect of anodal and cathodal electrical stimulation on periwound skin blood flow and pressure ulcer size reduction in persons with neurological injuries. Ostomy Wound Manage. 2018; 64 (2): 10–29.; Alam W., Hasson J., Reed M. Clinical approach to chronic wound management in older adults. J Am Geriatr Soc. 2021; 69 (8): 2327– 2334.; Пшеленская А. И. Применение высокочастотной электростимуляции в лечении открытых ран промежности и крестцово-копчиковой области: автореф. дисс. . канд. мед. наук. М., 2014. 24 с.; Строкина О. С., Васильева Т. С. Динамическая электростимуляция в комплексном лечении гнойных ран мягких тканей. В кн.: Материалы II Всероссийской конференции молодых ученых им. H. H. Бурденко. Воронеж, 2009. Т. 2. С. 89–91.; Li L., Wei G., Juan D., et al. Electric fields guide migration of epidermal stem cells and pro-mote skin wound healing. Wound Repair Regen. 2012; 20 (6): 840–851.; Bora Karsli P., Gurcay E., Karaahmet O. Z., Cakci A. High-Voltage Electrical Stimulation Versus Ultrasound in the Treatment of Pressure Ulcers. Adv Skin Wound Care. 2017; 30 (12): 565–570.; Arora M., Harvey L.A., Glinsky J.V., et al. Electrical stimulation for treating pressure ulcers. Cochrane Database Syst Rev. 2020; 1 (1): CD012196.; Palmieri B., Vadalà M., Laurino C. Electromedical devices in wound healing management: a narrative review. J Wound Care. 2020; 29 (7): 408–418.; Girgis B., Duarte J.A. High Voltage Monophasic Pulsed Current (HVMPC) for stage II-IV pressure ulcer healing. A systematic review and meta-analysis. J Tissue Viability. 2018; 27 (4): 274–284.; Wang Y., Rouabhia M., Zhang Z. Pulsed electrical stimulation benefits wound healing by activating skin fibroblasts through the TGFβ1/ERK/NF-κB axis. Biochim Biophys Acta. 2016; 1860 (7): 1551–1559.; https://www.riri.su/jour/article/view/318
-
3Academic Journal
Authors: А. V. Stepanov, K. G. Shapovalov, А. В. Степанов, К. Г. Шаповалов
Source: General Reanimatology; Том 20, № 3 (2024); 42-52 ; Общая реаниматология; Том 20, № 3 (2024); 42-52 ; 2411-7110 ; 1813-9779
Subject Terms: полиорганная недостаточность, critical illness, biomarkers, immunity, sepsis, multiple organ failure, критическое состояние, биомаркеры, иммунитет, сепсис
File Description: application/pdf
Relation: https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/2479/1839; https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/2479/1846; Costabella F., Patel K.B., Adepoju A.V., Singh P., Mahmoud H.A.H., Zafar A., Patel T., et al. Healthcare cost and outcomes associated with surgical site infection and patient outcomes in low- and middle-income countries. Cureus. 2023; 15 (7): e42493. DOI:10.7759/cureus.42493.; Charalampous P., Haagsma J.A., Jakobsen L.S. Gorasso V., Noguer I., Padron-Monedero A., Sarmiento R., et al. Burden of infectious disease studies in Europe and the United Kingdom: a review of methodological design choices. Epidemiol Infect. 2023; 151: e19. DOI:10.1017/S0950268823000031. PMID: 36621004.; Afzal M.S., Chennuri R.N., Naveed H., Bai B.R., Hanif R., Shahzad Z., Umer M., et al. Comparison of clinical outcomes between culture-positive and culture-negative sepsis and septic shock patients: a meta-analysis. Cureus. 2023; 15 (2): e35416. DOI:10.7759/cureus.35416. PMID: 36987463.; Wang W., Liu C.F. Sepsis heterogeneity. World J Pediatr. 2023; 19 (10): 919–927. DOI:10.1007/s12519-023-00689-8. PMID: 36735197.; Batool M., Galloway-Peña J. Clinical metagenomics-challenges and future prospects. Front Microbiol. 2023; 14: 1186424. DOI:10.3389/fmicb.2023.1186424. PMID: 37448579.; Remick B.C., Gaidt M.M., Vance R.E. Effector-triggered immunity. Annu Rev Immunol. 2023; 41: 453–481. DOI:10.1146/annurev-immunol-101721-031732. PMID: 36750319.; Martins Y.C., Ribeiro-Gomes F.L., Daniel-Ribeiro C.T. A short history of innate immunity. Mem Inst Oswaldo Cruz. 2023; 118: e230023. DOI:10.1590/0074-02760230023. PMID: 37162063.; Belizaire R., Wong W.J., Robinette M.L., Ebert B.L. Clonal haematopoiesis and dysregulation of the immune system. Nat Rev Immunol. 2023; 23 (9): 595–610. DOI:10.1038/s41577-023-00843-3. PMID: 36941354.; Cron R.Q., Goyal G., Chatham W.W. Cytokine storm syndrome. Annu Rev Med. 2023; 74: 321–337. DOI:10.1146/annurev-med-042921-112837. PMID: 36228171.; Silva E.E., Skon-Hegg C., Badovinac V.P., Griffith T.S. The calm after the storm: implications of sepsis immunoparalysis on host immunity. J Immunol. 2023; 211 (5): 711–719. DOI:10.4049/jimmunol.2300171. PMID: 37603859.; Nasrollahi H., Talepoor A.G., Saleh Z., Vakili M.A., Heydarinezhad O., Karami N., Noroozi M., et al. Immune responses in mildly versus critically ill COVID-19 patients. Front Immunol. 2023; 14: 1077236. DOI:10.3389/fimmu.2023.1077236. PMID: 36793739.; Li J., Zhang K., Zhang Y., Gu Z., Huang C. Neutrophils in COVID-19: recent insights and advances. Virol J. 2023; 20 (1): 169. DOI:10.1186/s12985-023-02116-w. PMID: 37533131.; Fu X., Liu Z., Wang Y. Advances in the study of immunosuppressive mechanisms in sepsis. J Inflamm Res. 2023; 16: 3967–3981. DOI:10.2147/JIR.S426007. PMID: 37706064.; Zhang W., Fang X., Gao C., Song C., He Y., Zhou T., Yang X., et al. MDSCs in sepsis-induced immunosuppression and its potential therapeutic targets. Cytokine Growth Factor Rev. 2023; 69: 90–103. DOI:10.1016/j.cytogfr.2022.07.007. PMID: 35927154.; Kobayashi S.D., DeLeo F.R., Quinn M.T. Microbes and the fate of neutrophils. Immunol Rev. 2023; 314 (1): 210–228. DOI:10.1111/imr.13163. PMID: 36345955.; Liu S., Duan C., Xie J., Zhang J., Luo X., Wang Q., Liang X., et al. Peripheral immune cell death in sepsis based on bulk RNA and single-cell RNA sequencing. Heliyon. 2023; 9 (7): e17764. DOI:10.1016/j.heliyon.2023.e17764. PMID: 37455967.; Wu H., Tang T., Deng H., Chen D., Zhang C., Luo J., Chen S., et al. Immune checkpoint molecule Tim-3 promotes NKT cell apoptosis and predicts poorer prognosis in sepsis. Clin Immunol. 2023; 254: 109249. DOI:10.1016/j.clim.2023.109249. PMID: 36736642.; Huang L., Zhang X., Fan J., Liu X., Luo S., Cao D., Liu Y., et al. EGFR promotes the apoptosis of CD4+ T lymphocytes through TBK1/Glut1 induced Warburg effect in sepsis. J Adv Res. 2023; 44: 39–51. DOI:10.1016/j.jare.2022.04.010. PMID: 35618635.; Chao Y., Huang W., Xu Z., Li P., Gu S. Effect of RUNX1/FOXP3 axis on apoptosis of T and B lymphocytes and immunosuppression in sepsis. Open Med (Wars). 2023; 18 (1): 20230728. DOI:10.1515/med-2023-0728. PMID: 37636994.; Yu D., Xie Y., Li X. Based on the Hippo signaling pathway to explore the mechanism of autophagy in lung injury of acute respiratory distress syndrome induced by sepsis. Zhonghua Wei Zhong Bing Ji Jiu Yi Xue. 2023; 35 (8): 884–888. DOI:10.3760/cma.j.cn121430-20220705-00633. PMID: 37593872.; Yang L., Zhou L., Li F., Chen X., Li T., Zou Z., Zhi Y., et al. Diagnostic and prognostic value of autophagy-related key genes in sepsis and potential correlation with immune cell signatures. Front Cell Dev Biol. 2023; 11: 1218379. DOI:10.3389/fcell.2023.1218379. PMID: 37701780.; Di C., Du Y., Zhang R. Zhang L., Wang S. Identification of autophagy-related genes and immune cell infiltration characteristics in sepsis via bioinformatic analysis. J Thorac Dis. 2023; 15 (4): 1770–1784. DOI:10.21037/jtd-23-312. PMID: 37197531.; Yang Y.S., Zheng W.J., Liu C.Y., Chen W.-C., Xie W.-Z., He H.- F. Mitophagy-related genes could facilitate the development of septic shock during immune infiltration. Medicine (Baltimore). 2023; 102 (42): e35154. DOI:10.1097/MD.0000000000035154. PMID: 37861563.; Mangalesh S., Dudani S., Malik A. The systemic immuneinflammation index in predicting sepsis mortality. Postgrad Med. 2023; 135 (4): 345–351. DOI:10.1080/00325481.2022.2140535.PMID: 36287784.; Kourilovitch M., Galarza-Maldonado C. Could a simple biomarker as neutrophil-to-lymphocyte ratio reflect complex processes orchestrated by neutrophils? J Transl Autoimmun. 2022; 6: 100159. DOI:10.1016/j.jtauto.2022.100159. PMID: 37396460.; Zhao J., Dai R.S., Chen Y.Z., Zhuang Y.G. Prognostic significance of lymphocyte subpopulations for ICU-acquired infections in patients with sepsis: a retrospective study. J Hosp Infect. 2023; 140: 40-45. DOI:10.1016/j.jhin.2023.05.022. PMID: 37399906.; Plebani M. Why C-reactive protein is one of the most requested tests in clinical laboratories? Clin Chem Lab Med. 2023; 61 (9): 1540–1545. DOI:10.1515/cclm-2023-0086. PMID: 36745137.; Jiang X., Zhang C., Pan Y., Cheng X., Zhang W. Effects of Creactive protein trajectories of critically ill patients with sepsis on in-hospital mortality rate. Sci Rep. 2023; 13 (1): 15223. DOI:10.1038/s41598-023-42352-2. PMID: 37709919.; Ji S.-R., Zhang S.-H., Chang Y., Li H.-Y., Wang M.-Y., Zhu L., et al. C-reactive protein: the most familiar stranger. Immunol. 2023; 210 (6): 699–707. DOI:10.4049/jimmunol.2200831. PMID: 36881905.; Saura O., Luyt C-.E. Procalcitonin as a biomarker to guide treatments for patients with lower respiratory tract infections. Expert Rev Respir Med. 2023; 17 (8): 651–661. DOI:10.1080/17476348.2023.2251394. PMID: 37639716.; August B.A., Kale-Pradhan P.B., Giuliano C., Johnson L.B. Biomarkers in the intensive care setting: a focus on using procalcitonin and C-reactive protein to optimize antimicrobial duration of therapy. Pharmacotherapy. 2023; 43 (9): 935–949. DOI:10.1002/phar.2834. PMID: 37300522.; Molano-Franco D., Arevalo-Rodriguez I., Muriel A., Del Campo-Albendea L., Fernández-García S., Alvarez-Méndez A., Simancas-Racines D., et al., SEPSIS-BIOMARKERS Collaborators. Basal procalcitonin, C-reactive protein, interleukin-6, and presepsin for prediction of mortality in critically ill septic patients: a systematic review and metaanalysis. Diagn Progn Res. 2023; 7 (1): 15. DOI:10.1186/s41512-023-00152-2. PMID: 37537680.; Long A., Kleiner A., Looney R.J. Immune dysregulation. J Allergy Clin Immunol. 2023; 151 (1): 70–80. DOI:10.1016/j.jaci.2022.11.001. PMID: 36608984.; Das U.N. Infection, inflammation, and immunity in sepsis. Biomolecules. 2023; 13 (9): 1332. DOI:10.3390/biom13091332. PMID: 37759732.; Afshar Z.M., Barary M., Babazadeh A., Pirzaman A.T., Hosseinzadeh R., Alijanpour A., AllahgholipourA., et al. The role of cytokines and their antagonists in the treatment of COVID-19 patients. Rev Med Virol. 2023; 33 (1): e2372. DOI:10.1002/rmv.2372. PMID: 35621229.; Chen Y., Dong P., Zhang X. [Research advance on the role of pro-inflammatory cytokines in sepsis]. Zhonghua Wei Zhong Bing Ji Jiu Yi Xue. 2023; 35 (2): 212–216. DOI:10.3760/cma.j.cn121430-20220919-00846. PMID: 36916385.; Qin R., He L., Yang Z., Jia N., Chen R., Xie J., Fu W., et al. Identification of parameters representative of immune dysfunction in patients with severe and fatal COVID-19 infection: a systematic review and meta-analysis. Clin Rev Allergy Immunol. 2023; 64 (1): 33–65. DOI:10.1007/s12016-021-08908-8. PMID: 35040086.; Яковенко М. П., Антипин Э. Э., Бочкарева Н. А., Королева Н.И., Дроботова Е.Ф., Недашковский Э.В. Модифицированные блокады надключичного и грудных нервов при имплантации внутривенной портсистемы у онкологических пациентов. Общая реаниматология. 2023; 19 (3): 28–38. DOI:10.15360/1813-9779-2023-3-28-38.; Ратников В. А., Щеглов А. Н., Абрамовский С. В., Симутис И.С., Данилов М.С., Иванова Г.Г., Сыроватский А.А. Предикторы клинической эффективности гемосорбции цитокинов при COVID-19. Общая реаниматология. 2023; 19 (1): 20–26. DOI:10.15360/1813-9779-2023-1-2224.; Румянцев А.Г., Демина О.М., Греченко В.В., Ганковская Л.В., Потекаев Н.Н. Патогенетическое значение семейства ИЛ-10 при акне тяжелой степени. Иммунология. 2023; 44 (4): 463–470. DOI:10.33029/0206-4952-2023-44-4-463-470.; Порошина А.С., Шершакова Н.Н., Шиловский И.П., Кадушкин А.Г., Таганович А.Д., Гудима Г.О., Хаитов М.Р. Роль ИЛ-25, ИЛ-33 и TSLP в развитии кортикостероидной резистентности. Иммунология. 2023; 44 (4): 500–510. DOI:10.33029/0206-4952-2023-44-4-500-510.; Бязрова М.Г., Порошина А.С., Сухова М.М., Фролов Е.А., Шилкина А.Б., Латышева Е.А., Латышева Т.В., с соавт. Продукция цитокинов наивными В-лимфоцитами и В-клетками памяти при стимуляции in vitro. Иммунология. 2023; 44 (5): 575-585. DOI:10.33029/0206-4952-2023-44-5-575-585.; Pham H.M., Nguyen D.L.M., Duong M.C., Tran L.T., Pham T.T.N. Diagnostic value of neutrophil CD64 in sepsis patients in the intensive care unit: a cross-sectional study. Diagnostics (Basel). 2023; 13 (8): 1427. DOI:10.3390/diagnostics13081427. PMID: 37189528.; Han J., Zhang Y., Ge P., Dakal T.C., Wen H., Tang S., Luo Y., et al. Exosome-derived CIRP: an amplifier of inflammatory diseases. Front Immunol. 2023; 14: 1066721. DOI:10.3389/fimmu.2023.1066721. PMID: 36865547.; Scott J., Trevi L., McNeil H., Ewen T., Mawson P., McDonald D., Filby A., et al. Role of immunosuppression in an antibiotic stewardship intervention and its association with clinical outcomes and antibiotic use: protocol for an observational study (RISC-sepsis). BMJ Open. 2022; 12 (12): e068321. DOI:10.1136/bmjopen-2022-068321. PMID: 36600326.; Zou S., Jie H., Han X., Wang J. The role of neutrophil extracellular traps in sepsis and sepsis-related acute lung injury. Int Immunopharmacol. 2023; 124 (Pt A): 110436. DOI:10.1016/j.intimp.2023.110436. PMID: 37688916.; Ansari M.A., Das S., Rai G., Singh P.K., Lahan S., Tyagi A., Alamer E., et al. Low monocytic HLA-DR expression in critically ill patients of sepsis: an indicator for antimicrobial and/or immunomodulatory intervention. Transpl Immunol. 2023; 81: 101942. DOI:10.1016/j.trim.2023.101942. PMID: 37866671.; Joshi I., Carney W.P., Rock E.P. Utility of monocyte HLA-DR and rationale for therapeutic GM-CSF in sepsis immunoparalysis. Front Immunol. 2023; 14: 1130214. DOI:10.3389/fimmu.2023.1130214. PMID: 36825018.; Quirant-Sánchez B., Plans-Galván O., Lucas E., Argudo E., Martinez-Cáceres E.M., Arméstar F. HLA-DR expression on monocytes and sepsis index are useful in predicting sepsis. Biomedicines. 2023; 11 (7): 1836. DOI:10.3390/biomedicines11071836. PMID: 37509475.; Ostrand-Rosenberg S., Lamb T.J., Pawelec G. Here, there, and everywhere: myeloid-derived suppressor cells in immunology. J Immunol. 2023; 210 (9): 1183–1197. DOI:10.4049/jimmunol.2200914. PMID: 37068300.; Wang F., Cui Y., He D., Gong L., Liang H. Natural killer cells in sepsis: friends or foes? Front Immunol. 2023; 14: 1101918. DOI:10.3389/fimmu.2023.1101918. PMID: 36776839.; Etemad B., Sun X., Li Y., Melberg M., Moisi D., Gottlieb R., Ahmed H., et al. HIV post-treatment controllers have distinct immunological and virological features. Proc Natl Acad Sci USA. 2023; 120 (11): e2218960120. DOI:10.1073/pnas.2218960120. PMID: 36877848.; Sohn H., Cooper M.A. Metabolic regulation of NK cell function: implications for immunotherapy. Immunometabolism (Cobham). 2023; 5 (1): e00020. DOI:10.1097/IN9.0000000000000020. PMID: 36710923.; Yao Y.M., Zhang H., Wu Y. [Novel strategy of sepsis immunomodulation targeting dendritic cells]. Zhonghua Shao Shang Yu Chuang Mian Xiu Fu Za Zhi. 2023; 39 (7): 606–611. DOI:10.3760/cma.j.cn501225-20230321-00087. PMID: 37805688.; Zhao F.-Z., Gu W.-J., Li L.-Z., Qu Z.-K., Xu M.-Y., Liu K.,Zhang F., et al. Cannabinoid receptor 2 alleviates sepsis-associated acute lung injury by modulating maturation of dendritic cells. Int Immunopharmacol. 2023; 123: 110771. DOI:10.1016/j.intimp.2023.110771. PMID: 37582314.; Wu Y., Chen L., Qiu Z., Zhang X., Zhao G., Lu Z. PINK1 protects against dendritic cell dysfunction during sepsis through the regulation of mitochondrial quality control. Mol Med. 2023; 29 (1): 25. DOI:10.1186/s10020-023-00618-5. PMID: 36809929.; Bénard A., Hansen F.J., Uhle F., Klösch B., Czubayko F., Mittelstädt A., Jacobsen A., et al. Interleukin-3 protects against viral pneumonia in sepsis by enhancing plasmacytoid dendritic cell recruitment into the lungs and T cell priming. Front Immunol. 2023; 14: 1140630. DOI:10.3389/fimmu.2023.1140630. PMID: 36911737.; Zhang T., Lian G., Fang W., Tian L., Ma W., Zhang J., Meng Z., et al. Comprehensive single-cell analysis reveals novel anergic antigen-presenting cell subtypes in human sepsis. Front Immunol. 2023; 14: 1257572 DOI:10.3389/fimmu.2023.1257572. PMID: 37781404.; Li J.-B., Xie M.-R., Duan M.-L., Yu Y.-N., Hang C.-C., Tang Z.-R., Li C.-S. Over-expression of programmed death-ligand 1 and programmed death-1 on antigen-presenting cells as a predictor of organ dysfunction and mortality during early sepsis: a prospective cohort study. World J Emerg Med. 2023; 14 (3): 179–185. DOI:10.5847/wjem.j.1920-8642.2023.041. PMID: 37152526.; Turner S., Raisley B., Roach K., Bajaña S., Munroe M.E., James J.A., Coggeshall K.M., et al. Gram-positive bacteria cell wall peptidoglycan polymers activate human dendritic cells to produce IL-23 and IL-1β and promote TH17 cell differentiation. Microorganisms. 2023; 11 (1): 173. DOI:10.3390/microorganisms11010173. PMID: 36677464.; Liu H., Li J.-F., Zhang L.-M., Wang H.-H., Wang X.-Q., Kiu G.-Q., Du H.-B., et al. Posthemorrhagic shock mesenteric lymph impairs splenic dendritic cell function in mice. Shock. 2023; 59 (2): 256–266. DOI:10.1097/SHK.0000000000002056. PMID: 36427100.; Finfer S., Venkatesh B., Hotchkiss R.S., Sasson S.C. Lymphopenia in sepsis- an acquired immunodeficiency? Immunol Cell Biol. 2023; 101 (6): 535–544. DOI:10.1111/imcb.12611. PMID: 36468797.; Winer H., Rodrigues G.O.L, Hixon J.A., Aielo F.B., Hsu T.C., Wachter B.T., Li W., et al. IL-7: comprehensive review. Cytokine. 2022; 160: 156049. DOI:10.1016/j.cyto.2022.156049. PMID: 36201890.; Gao Y., Ya Y., Zhang X., Chen F., Meng X.-L., Chen X.-S., Wang C.-L., et al. Regulatory T cells: angels or demons in the pathophysiology of sepsis? Front. Immunol. 2022; 13: 829210. DOI:10.3389/fimmu.2022.829210. PMID: 35281010.; Li X.-Y., Liu M., Fu Y-.J., Jiang Y.-J., Zhang Z.-N. Alterations in levels of cytokine following treatment to predict outcome of sepsis: a meta-analysis. Cytokine. 2023; 161: 156056. DOI:10.1016/j.cyto.2022.156056. PMID: 36240721.; Wautier J.L., Wautier M.P. Pro- and anti-Inflammatory prostaglandins and cytokines in humans: a mini review. Int J Mol Sci. 2023; 24 (11): 9647. DOI:10.3390/ijms24119647. PMID: 37298597.; Barber G., Tanic J., Leligdowicz A. Circulating protein and lipid markers of early sepsis diagnosis and prognosis: a scoping review. Curr Opin Lipidol. 2023; 34 (2): 70–81. DOI:10.1097/MOL.0000000000000870. PMID: 36861948.; Korzhenevich J., Janowska I., van der Burg M., Rizzi M. Human and mouse early B cell development: So similar but so different. Immunol Lett. 2023; 261: 1–12. DOI:10.1016/j.imlet.2023.07.004. PMID: 37442242.; Dong X., Tu H., Qin S., Bai X., Yang F., Li Z. Insights into the roles of B cells in patients with sepsis. J Immunol Res. 2023; 2023: 7408967. DOI:10.1155/2023/7408967. PMID: 37128298.; Pan B., Sun P., Pei R., Lin F., Cao H. Efficacy of IVIG therapy for patients with sepsis: a systematic review and metaanalysis. J Transl Med. 2023; 21 (1): 765. DOI:10.1186/s12967-023-04592-8. PMID: 37898763.; Du K., Hao S., Luan H. Retracted: expression of peripheral blood DCs CD86, CD80, and Th1/Th2 in sepsis patients and their value on survival prediction. Comput Math Methods Med. 2023; 2023: 9832093. DOI:10.1155/2023/9832093. PMID: 37416269.; Dong X., Tu H., Bai X., Qin S., Li Z. Intrinsic/extrinsic apoptosis and pyroptosis contribute to the selective depletion of B cell subsets in septic shock patients. Shock. 2023; 60 (3): 345–353. DOI:10.1097/SHK.0000000000002174. PMID: 37477437.; Sharma P., Goswami S., Raychaudhuri D., Siddiqui B.A., Singh P., Nagarajan A., Liu J. Immune checkpoint therapycurrent perspectives and future directions. Cell. 2023; 186 (8): 1652–1669. DOI:10.1016/j.cell.2023.03.006. PMID: 37059068.; Liu D., Huang S.Y., Sun J.H., Zhang H.-C., Cai Q.-L., Gao C., Li L. Sepsis-induced immunosuppression: mechanisms, diagnosis and current treatment options. Mil Med Res. 2022; 9 (1): 56. DOI:10.1186/s40779-022-00422-y. PMID: 36209190.; van den Haak D.A.C., Otten L.S., Koenen HJ.PM., Smeets R.L., Piet B., Pickkers P., Kox M., et al. Evidence-based rationale for low dose nivolumab in critically ill patients with sepsis-induced immunosuppression. Clin Transl Sci. 2023; 16 (6): 978–986. DOI:10.1111/cts.13503. PMID: 37002646.; Kim G.-R., Choi J.-M. Current understanding of cytotoxic T lymphocyte antigen-4 (CTLA-4) signaling in T-cell biology and disease therapy. Mol Cells. 2022; 45 (8): 513–521. DOI:10.14348/molcells.2022.2056. PMID: 35950451.; Bailly C., Thuru X., Goossens L., Goossens J.-F. Soluble TIM3 as a biomarker of progression and therapeutic response in cancers and other of human diseases. Biochem Pharmacol. 2023; 209: 115445. DOI:10.1016/j.bcp.2023.115445. PMID: 36739094.; Ibrahim R., Saleh K., Chahine C., Khoury R., Khalife N., Cesne A.L. LAG-3 Inhibitors: novel immune checkpoint inhibitors changing the landscape of immunotherapy. Biomedicines. 2023; 11 (7): 1878. DOI:10.3390/biomedicines11071878. PMID: 37509517.; Sordo-Bahamonde C., Lorenzo-Herrero S., Granda-Díaz R., Martínez-Pérez A., Aguilar-García C., Rodrigo J.P., GarcíaPedrero J.M., et al. Beyond the anti-PD-1/PD-L1 era: promising role of the BTLA/HVEM axis as a future target for cancer immunotherapy. Mol Cancer. 2023; 22 (1): 142. DOI:10.1186/s12943-023-01845-4. PMID: 37649037.; García Melián M.F., Moreno M., Cerecetto H., Calzada V. Aptamer-based immunotheranostic strategies. Cancer Biother Radiopharm. 2023; 38 (4): 246–255. DOI:10.1089/cbr.2022.0064. PMID: 36603108.; Rienzo M., Skirecki T., Monneret G., Timsit J.-F. Immune checkpoint inhibitors for the treatment of sepsis: insights from preclinical and clinical development. Expert Opin Investig Drugs. 2022; 31 (9): 885–894. DOI:10.1080/13543784.2022.2102477. PMID: 35944174.; https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/2479
-
4Academic Journal
Source: Вестник интенсивной терапии, Iss 4 (2023)
-
5Academic Journal
Authors: Inessa G. Shchelkunova, Alexey A. Yakovlev, Alexandra V. Yakovleva, Olga G. Panasenkova, Maria G. Samchuk
Source: Siberian Journal of Life Sciences and Agriculture, Vol 13, Iss 1, Pp 78-93 (2021)
Subject Terms: белково-энергетическая недостаточность, колит, Science, Agriculture, strongyloides stercoralis, нейрореабилитация, стронгилоидоз, хроническое критическое состояние, глистная инвазия
-
6Academic Journal
Authors: Yu. S. Aleksandrovich, D. O. Ivanov, E. Yu. Pavlovskaia, Konstantin V. Pshenisnov, D. A. Zemlyanoy
Source: Вестник интенсивной терапии, Iss 3 (2023)
-
7Academic Journal
Source: Российские биомедицинские исследования, Vol 7, Iss 4 (2023)
Subject Terms: Medicine (General), newborns, R5-920, мониторинг, critical condition, критическое состояние, новорожденные, сердечный выброс
-
8Academic Journal
Source: Вестник интенсивной терапии, Iss 1 (2023)
-
9Academic Journal
Authors: Ирина Владимировна Боронина, Юрий Станиславович Александрович, Константин Викторович Пшениснов, Андрей Глебович Васильев
Source: Российские биомедицинские исследования, Vol 7, Iss 4 (2023)
Subject Terms: новорожденные, критическое состояние, сердечный выброс, мониторинг, newborns, critical condition, Medicine (General), R5-920
File Description: electronic resource
-
10Academic Journal
Authors: A. O. Sivkov, N. P. Shen, I. N. Leyderman, O. G. Sivkov, А. О. Сивков, Н. П. Шень, И. Н. Лейдерман, О. Г. Сивков
Source: Messenger of ANESTHESIOLOGY AND RESUSCITATION; Том 20, № 4 (2023); 54-60 ; Вестник анестезиологии и реаниматологии; Том 20, № 4 (2023); 54-60 ; 2541-8653 ; 2078-5658
Subject Terms: критическое состояние, mNUTRIC, in-hospital mortality, COVID-19, predictor, critical illness, внутрибольничная смертность, предиктор
File Description: application/pdf
Relation: https://www.vair-journal.com/jour/article/view/833/653; Омельяновский В. В., Авксентьева М. В., Сура М. В. и др. Методические рекомендации по проведению метаанализа. – М.: ФГБУ «ЦЭККМП» Минздрава России. – 2017. – 28 с.; Сивков А. О., Лейдерман И. Н., Сивков О. Г., Гирш А. О. Оценка и прогностическая значимость показателей нутритивного статуса у травматологических и хирургических пациентов отделений реанимации и интенсивной терапии. Систематический обзор литературы // Политравма. – 2021. – № 3. – С. 91–102. Doi:10.24412/1819-1495-2021-3-91-102.; Abate S. M., Chekole Y. A., Estifanos M. B. et al. Prevalence and outcomes of malnutrition among hospitalized COVID-19 patients: A systematic review and meta-analysis // Clin Nutr ESPEN. – 2021. – Vol. 43. – P. 174–183. Doi:10.1016/j.clnesp.2021.03.002.; Allen K., Hoffman L. Enteral nutrition in the mechanically ventilated patient // Nutr Clin Pract. – 2019. – Vol. 34, № 4. – P. 540–557. Doi:10.1002/ncp.10242.; Alberda C., Gramlich L., Jones N. et al. The relationship between nutritional intake and clinical outcomes in critically ill patients: results of an international multicenter observational study // Intensive Care Med. – 2009. – Vol. 35, № 10. – P. 1728–1737. Doi:10.1007/s00134-009-1567-4.; Bodolea C., Nemes A., Avram L. et al. nutritional risk assessment scores effectively predict mortality in critically ill patients with severe COVID-19 // Nutrients. – 2022. – Vol. 18, № 14 (10). – P. 2105. Doi:10.3390/nu14102105.; Domenech-Briz V., Gea-Caballero V., Czapla M. et al. Importance of nutritional assessment tools in the critically ill patient: A systematic review // Front Nutr. – 2023. – Vol. 30, № 9. – P. 1073782. Doi:10.3389/fnut.2022.1073782.; Fernández-Quintela A., Milton-Laskibar I., Trepiana J. et al. Key aspects in nutritional management of COVID-19 patients // J Clin Med. – 2020. – Vol. 10, № 9 (8). – P. 2589. Doi:10.3390/jcm9082589.; Heyland D. K., Dhaliwal R., Jiang X. et al. Identifying critically ill patients who benefit the most from nutrition therapy: the development and initial validation of a novel risk assessment tool // Crit Care. – 2011. – Vol. 15, № 6. – R268. Doi:10.1186/cc10546.; Knaus W. A., Draper E. A., Wagner D. P. et al. APACHE II: a severity of disease classification system // Crit Care Med. – 1985. – Vol. 13, № 10. – P. 818–29. PMID: 3928249.; Kasapoglu U. S., Gok A., Delen L. A. et al. Comparison of nutritional risk status assessment tools in predicting 30-day survival in critically ill COVID-19 pneumonia patients // Ann Saudi Med. – 2022. – Vol. 42, № 4. – P. 236–245. Doi:10.5144/0256-4947.2022.236.; Leoni M. L. G., Moschini E., Beretta M. et al. The modified NUTRIC score (mNUTRIC) is associated with increased 28-day mortality in critically ill COVID-19 patients: Internal validation of a prediction model // Clin Nutr ESPEN. – 2022. – Vol. 48. – P. 202–209. Doi:10.1016/j.clnesp.2022.02.014.; Lee Z. Y., Heyland D. K. Determination of nutrition risk and status in critically ill patients: what are our considerations? // Nutr Clin Pract. – 2019. – Vol. 34, № 1. – P. 96–111. Doi:10.1002/ncp.10214.; Li T., Zhang Y., Gong C. et al. Prevalence of malnutrition and analysis of related factors in elderly patients with COVID-19 in Wuhan, China // Eur J Clin Nutr. – 2020. – Vol. 74, № 6 . – P. 871–875. Doi:10.1038/s41430-020-0642-3.; Laviano A., Koverech A., Zanetti M. Nutrition support in the time of SARS-CoV-2 (COVID-19) // Nutrition. – 2020. – Vol. 74. – P. 110834. Doi:10.1016/j.nut.2020.110834.; Moher D., Liberati A., Tetzlaff J. et al. PRISMA Group. Preferred reporting items for systematic reviews and meta-analyses: the PRISMA statement // PLoS Med. – 2009. – Vol. 21, № 6 (7). – e1000097. Doi:10.1371/journal.pmed.1000097.; Martinuzzi A. L. N., Manzanares W., Quesada E. et al. Nutritional risk and clinical outcomes in critically ill adult patients with COVID-19 // Nutr Hosp. – 2021. – Vol. 38, № 6. – P. 1119–1125. Doi:10.20960/nh.03749.; Palermo Dos Santos A. C., Japur C. C., Passos C. R. et al. Nutritional risk, not obesity, is associated with mortality in critically ill COVID-19 patients // Obes Res Clin Pract. – 2022. – Vol. 16, № 5. – P. 379–385. Doi:10.1016/j. orcp.2022.08.005.; Pimentel G. D., Pichard C., Martins P. M. et al. Assessment of Nutritional Risk at ICU Admission and Mortality in Patients with Suspected COVID-19 // Clin Pract. – 2022. – Vol. 23, № 12 (6). – P. 950–954. Doi:10.3390/clinpract12060100.; Rahman A., Hasan R. M., Agarwala R. et al. Identifying critically-ill patients who will benefit most from nutritional therapy: Further validation of the «modified NUTRIC» nutritional risk assessment tool // Clin Nutr. – 2016. – Vol. 35, № 1. – P. 158–162. Doi:10.1016/j.clnu.2015.01.015.; Vincent J. L., de Mendonça A., Cantraine F. et al. Use of the SOFA score to assess the incidence of organ dysfunction/failure in intensive care units: results of a multicenter, prospective study. Working group on «sepsis-related problems» of the European Society of Intensive Care Medicine // Crit Care Med. – 1998. – Vol. 26, № 11. – P. 1793–1800. Doi:10.1097/00003246-199 811000-00016.; WHO Coronavirus (COVID-19) Dashboard // World Health Organization. 2021. URL: https://covid19.who.int/ (дата обращения: 07.07.23).; Xu W., Sun N. N., Gao H. N. et al. Risk factors analysis of COVID-19 patients with ARDS and prediction based on machine learning // Sci Rep. – 2021. – Vol. 11, № 1. – P. 2933. Doi:10.1038/s41598-021-82492-x.; Yanowsky-Escatell F. G., Ontiveros-Galindo A. L., Arellano-Arteaga K. J. et al. Use of mNUTRIC-Score for nutrition risk assessment and prognosis prediction in critically ill patients with COVID-19: a retrospective observational study // Crit Care Res Pract. – 2021. – Vol. 22. – P. 5866468. Doi:10.1155/2021/5866468.; Yeo H. J., Byun K. S., Han J. et al. Prognostic significance of malnutrition for long-term mortality in community-acquired pneumonia: a propensity score matched analysis // Korean J Intern Med. – 2019. – Vol. 34, № 4. – P. 841–849. Doi:10.3904/kjim.2018.037.; Zhang P., He Z., Yu G. et al. The modified NUTRIC score can be used for nutritional risk assessment as well as prognosis prediction in critically ill COVID-19 patients // Clin Nutr. – 2021. – Vol. 40, № 2. – P. 534–541. Doi:10.1016/j.clnu.2020.05.051.; Zheng Z., Peng F., Xu B. et al. Risk factors of critical & mortal COVID-19 cases: A systematic literature review and meta-analysis // J Infect. – 2020. – Vol. 81, № 2. – P. e16–e25. Doi:10.1016/j.jinf.2020.04.021.
-
11Academic Journal
Authors: Oleg V. Zavyalov, Irina V. Ignatko, Aleksander N. Strizhakov, Igor N. Pasechnik, Madina A. Kardanova, О. В. Завьялов, И. В. Игнатко, А. Н. Стрижаков, И. Н. Пасечник, М. А. Карданова
Contributors: Not specified, Отсутствует
Source: Pediatric pharmacology; Том 20, № 3 (2023); 274-281 ; Педиатрическая фармакология; Том 20, № 3 (2023); 274-281 ; 2500-3089 ; 1727-5776
Subject Terms: синдром дыхательного расстройства новорожденного, critical fetal condition, premature newborn, perinatal medicine, perinatal morbidity, perinatal centers, placental insufficiency, premature delivery, intrauterine growth restriction, newborn respiratory distress syndrome, критическое состояние плода, недоношенные новорожденные, внутриутробный ребенок, перинатология, перинатальная заболеваемость, перинатальные центры, плацентарная недостаточность, преждевременные роды, синдром задержки роста плода
File Description: application/pdf
Relation: https://www.pedpharma.ru/jour/article/view/2319/1504; Савельева Г.М. Интранатальная охрана здоровья плода. Дискуссионные и нерешенные вопросы // Вопросы гинекологии, акушерства и перинатологии. — 2004. — Т. 3. — № 44. — С. 7-11.; Байбарина Е.Н., Дегтярев Д.Н. Переход на новые правила регистрации рождения детей в соответствии с критериями, рекомендованные всемирной организацией здравоохранения: исторические, медико-экономические и организационные аспекты // Российский вестник перинатологии и педиатрии. — 2011. — Т. 56. — № 6. — С. 6-9.; Байбарина Е.Н., Сорокина З.Х. Исходы беременности в сроки 22-27 недель в медицинских учреждениях Российской Федерации // Вопросы современной педиатрии. — 2011. — Т. 10. — № 1. — С. 17-20.; Завьялов О.В., Игнатко И.В., Пасечник И.Н., Бабаев Б.Д. Первое десятилетие отечественной «перинатальной революции»: историческая роль и клинико-эпидемиологические аспекты заболеваемости глубоконедоношенных новорожденных // Педиатрия Санкт-Петербурга: опыт, инновации, достижения. Здоровье и образ жизни учащихся в современных условиях: взгляд врача и педагога: сборник материалов XIV Всероссийского форума и XIV Всероссийской научно-практической конференции. — СПб.; 2022. — С. 99-104.; Стрижаков А.Н., Давыдов А.И., Игнатко И.В. и др. Высокотехнологичные методы исследования состояния матери и плода: обеспечение здоровья будущего поколения // Вопросы гинекологии, акушерства и перинатологии. — 2012. — Т. 11. — № 4. — С. 6-12.; Игнатко И.В., Родионова А.М., Карданова М.А. и др. Neonatal near miss — «едва не умершие» новорожденные: критерии оценки и значение в перинатальном аудите // Вопросы гинекологии, акушерства и перинатологии. — 2017. — Т. 16. — № 2. — С. 40-48. — doi: https://doi.org/10.20953/1726-1678-2017-2-40-48; Игнатко И.В., Карданова М.А., Мирющенко М.М., Байбулатова Щ.Ш. Патогенез, диагностика, перинатальные исходы при критическом состоянии плода // Архив акушерства и гинекологии им. В.Ф. Снегирева. — 2015. — Т. 2. — № 4. — С. 43-44.; Стрижаков А.Н., Белоусова В.С., Тимохина Е.В. и др. Перинатальные исходы при преждевременных родах // Вопросы гинекологии, акушерства и перинатологии. — 2016. — Т. 15. — № 4. — С. 7-12. — doi: https://doi.org/10.20953/1726-1678-2016-4-7-12; Володин Н.Н., Беляева И.А., Намазова-Баранова Л.С. и др. Вызовы современности и перспективы внедрения достижений фундаментальных наук в практическую неонатологию // Педиатрия. Журнал им. Г.Н. Сперанского. — 2020. — Т. 99. — № 1. — С. 8-17. — doi: https://doi.org/10.24110/0031-403X-2020-99-1-8-17; Володин Н.Н., Кешишян Е.С., Панкратьева Л.Л. и др. Стратегии отечественной неонатологии: вызовы настоящего и взгляд в будущее // Педиатрия. Журнал им. Г.Н. Сперанского. — 2022. — Т. 101. — № 1. — С. 8-20. — doi: https://doi.org/10.24110/0031-403X-2022-101-1-8-20; Наглядная неонатология / под ред. Т. Лиссауэра, А.А. Фанароффа, Л. Майалла, Дж. Фанароффа, пер. с англ. под ред. И.И. Рюминой. — М.: ГЭОТАР-Медиа; 2019. — 304 с.; Стрижаков А.Н., Попова Н.Г., Игнатко И.В. и др. Прогнозирование поражений центральной нервной системы плода при преждевременных родах // Вопросы гинекологии, акушерства и перинатологии. — 2016. — Т. 15. — № 2. — С. 31-42. — doi: https://doi.org/10.20953/1726-1678-2016-2-31-42; Завьялов О.В., Пасечник И.Н., Игнатко И.В. и др. Внутрижелудочковые кровоизлияния у детей с экстремально низкой массой тела: комплексная перинатальная оценка при сравнительном анализе тактики респираторной терапии в раннем неонатальном периоде // Врач. — 2021. — Т. 32. — № 3. — С. 48-55. — doi: https://doi.org/10.29296/25877305-2021-03-09; Белоусова В.С., Стрижаков А.Н., Свитич О.А. и др. Преждевременные роды: причины, патогенез, тактика // Акушерство и гинекология. — 2020. — № 2. — С. 82-87. — doi: https://doi.org/10.18565/aig.2020.2.82-87; Шабалов Н.П., Шмидт А.А., Гайворонских Д.И. Перинатология: учебник для студентов медицинских вузов. — СПб.: СпецЛит; 2020. — 206 с.; Якубова Д.И., Игнатко И.В., Меграбян А.Д. и др. Возможности прогнозирования и особенности течения беременности при различных фенотипических формах задержки роста плода // Вопросы гинекологии, акушерства и перинатологии. — 2022. — Т. 21. — № 6. — С. 35-42. — doi: https://doi.org/10.20953/1726-1678-2022-6-35-42; Завьялов О.В., Пасечник И.Н., Игнатко И.В. и др. Патогенез синдрома дыхательного расстройства новорожденного с позиции особенностей эмбриогенеза респираторной системы // Врач. — 2022. — Т. 33. — № 1. — С. 17-25. — doi: https://doi.org/10.29296/25877305-2022-01-03; Завьялов О.В., Пасечник И.Н., Игнатко И.В. и др. Антенатальная профилактика респираторного дистресс-синдрома плода и сурфактантная терапия у недоношенных новорожденных: оценка курса дородовых глюкокортикостероидов при определении тактики респираторной поддержки // Врач. — 2022. — Т. 33. — № 2. — С. 12-20. — doi: https://doi.org/10.29296/25877305-2022-02-02; https://www.pedpharma.ru/jour/article/view/2319
-
12Academic Journal
Authors: I. V. Sergeev, M. V. Petrova, A. E. Shestopalov, M. M. Kanarsky, O. B. Lukyanets, I. A. Yarotskaya, Yu. Yu. Nekrasova, И. В. Сергеев, М. В. Петрова, А. Е. Шестопалов, М. М. Канарский, О. Б. Лукьянец, И. А. Яроцкая, Ю. Ю. Некрасова
Contributors: без финансовой поддержки
Source: General Reanimatology; Том 19, № 4 (2023); 4-11 ; Общая реаниматология; Том 19, № 4 (2023); 4-11 ; 2411-7110 ; 1813-9779
Subject Terms: длительное нарушение сознания, critical illness, protein metabolism, amino acid profile, amino acids, prolonged disturbance of consciousness, критическое состояние, белковый обмен, аминокислотеый профиль, аминокислоты
File Description: application/pdf
Relation: https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/2329/1743; https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/2329/1748; https://www.reanimatology.com/rmt/article/downloadSuppFile/2329/789; Wischmeyer P.E, San-Millan I. Winning the war against ICU-acquired weakness: new innovations in nutrition and exercise physiology. Crit Care. 2015; 19 Suppl 3 (Suppl 3): S6. DOI:10.1186/cc14724. PMID: 26728966.; Desai S.V, Law T.J, Needham D.M. Long-term complications of critical care. Crit Care Med. 2011; 39 (2): 371-379. DOI:10.1097/CCM.0b013e3181fd66e5. PMID: 20959786.; Herridge M.S., Tansey C.M., Matté A., Tomlinson G., Diaz-Granados N., Cooper A., Guest C.B., Mazer C.D., Mehta S., Stewart T.E., Kudlow P., Cook D., Slutsky A.S., Cheung A.M.; Canadian Critical Care Trials Group. Functional disability 5 years after acute respiratory distress syndrome. N Engl J Med. 2011; 364 (14): 1293-1304. DOI:10.1056/NEJMoa1011802. PMID: 21470008.; Cheung A.M., Tansey C.M., Tomlinson G., Diaz-Granados N., Matté A., Barr A., Mehta S., Mazer C.D., Guest C.B., Stewart T.E., Al-Saidi F., Cooper A.B., Cook D., Slutsky A.S., Herridge M.S. Two-year outcomes, health care use, and costs of survivors of acute respiratory distress syndrome. Am J Respir Crit Care Med. 2006; 174 (5): 538-544. DOI:10.1164/rccm.200505-693OC. PMID: 16763220.; Needham D.M., Davidson J., Cohen H., Hopkins R.O., Weinert C., Wunsch H., Zawistowski C., Bemis-Dougherty A., Berney S.C., Bienvenu O.J., Brady S.L., Brodsky M.B., Denehy L., Elliott D., Flatley C., Harabin A.L., Jones C., Louis D., Meltzer W., Muldoon S.R., Palmer J.B., Perme C., Robinson M., Schmidt D.M., Scruth E., Spill G.R., Storey C.P., Render M., Votto J., Harvey M.A. Improving long-term outcomes after discharge from intensive care unit: report from a stakeholders' conference. Crit Care Med. 2012; 40 (2): 502-509. DOI:10.1097/CCM.0b013e318232da75. PMID: 21946660.; Puthucheary, Z. A., Rawal, J., McPhail, M., Connolly, B., Ratnayake, G., Chan, P., Hopkinson, N. S., Phadke, R., Dew, T., Sidhu, P. S., Velloso, C., Seymour, J., Agley, C. C., Selby, A., Limb, M., Edwards, L. M., Smith, K., Rowlerson, A., Rennie, M. J., Moxham, J., Harridge S. D. R., Hart N., Montgomery, H. E. Acute skeletal muscle wasting in critical illness. JAMA. 2013; 310 (15): 1591-1600. DOI:10.1001/jama.2013.278481. PMID: 24108501.; Singer P., Blaser A.R., Berger M.M., Alhazzani W., Calder P.C., Casaer M.P., Hiesmayr M., Mayer K., Montejo J.C., Pichard C., Preiser J.C., van Zanten A.R.H., Oczkowski S., Szczeklik W., Bischoff S.C. ESPEN guideline on clinical nutrition in the intensive care unit. Clin Nutr. 2019; 38 (1): 48-79. DOI:10.1016/j.clnu.2018.08.037. PMID: 30348463.; McClave SA, Taylor BE, Martindale RG, Warren MM, Johnson DR, Braunschweig C, McCarthy MS, Davanos E, Rice TW, Cresci GA, Gervasio JM, Sacks GS, Roberts PR, Compher C; Society of Critical Care Medicine; American Society for Parenteral and Enteral Nutrition. Guidelines for the Provision and Assessment of Nutrition Support Therapy in the Adult Critically Ill Patient: Society of Critical Care Medicine (SCCM) and American Society for Parenteral and Enteral Nutrition (A.S.P.E.N.). JPEN J Parenter Enteral Nutr. 2016; 40 (2): 159–211. DOI:10.1177/0148607115621863. PMID: 26773077.; Mooi N.M., Ncama B.P. Evidence on nutritional therapy practice guidelines and implementation in adult critically ill patients: A systematic scoping review. Curationis. 2019; 42 (1): e1-e13. DOI:10.4102/curationis.v42i1.1973. PMID: 31833375.; Heyland D.K., Schroter-Noppe D., Drover J.W., Jain M., Keefe L., Dhaliwal R., Day A. Nutrition support in the critical care setting: current practice in canadian ICUs--opportunities for improvement? JPEN J Parenter Enteral Nutr. 2003; 27 (1): 74-83. DOI:10.1177/014860710302700174. PMID: 12549603.; Hill A., Heyland D.K., Ortiz Reyes L.A., Laaf E., Wendt S., Elke G., Stoppe C. Combination of enteral and parenteral nutrition in the acute phase of critical illness: An updated systematic review and meta-analysis. JPEN J Parenter Enteral Nutr. 2022; 46 (2): 395-410. DOI:10.1002/jpen.2125 PMID: 33899951.; Wandrag L., Brett S.J., Frost G., Hickson M. Impact of supplementation with amino acids or their metabolites on muscle wasting in patients with critical illness or other muscle wasting illness: a systematic review. J Hum Nutr Diet. 2015; 28 (4): 313-330. DOI:10.1111/jhn.12238. PMID: 24807079.; Bailey R.L., West K.P. Jr, Black R.E. The epidemiology of global micronutrient deficiencies. Ann Nutr Metab. 2015; 66 Suppl 2: 22-33. DOI:10.1159/000371618. PMID: 26045325.; Koekkoek W.A., van Zanten A.R. Antioxidant Vitamins and Trace Elements in Critical Illness. Nutr Clin Pract. 2016; 31 (4): 457-474. DOI:10.1177/0884533616653832. PMID: 27312081.; Yarandi S.S., Zhao V.M., Hebbar G., Ziegler T.R. Amino acid composition in parenteral nutrition: what is the evidence? Curr Opin Clin Nutr Metab Care. 2011; 14 (1): 75-82. DOI:10.1097/MCO.0b013e328341235a. PMID: 21076291; Hoffer L.J., Sher K., Saboohi F., Bernier P., MacNamara E.M., Rinzler D. N-acetyl-L-tyrosine as a tyrosine source in adult parenteral nutrition. JPEN J Parenter Enteral Nutr. 2003; 27 (6): 419-422. DOI:10.1177/0148607103027006419. PMID: 14621123.; Mackenzie T.A., Clark N.G., Bistrian B.R., Flatt J.P., Hallowell E.M., Blackburn G.L. A simple method for estimating nitrogen balance in hospitalized patients: a review and supporting data for a previously proposed technique. J Am Coll Nutr. 1985; 4 (5): 575-581. DOI:10.1080/07315724.1985.10720100. PMID: 3932497.; Crenn P., Messing B., Cynober L. Citrulline as a biomarker of intestinal failure due to enterocyte mass reduction. Clin Nutr. 2008; 27 (3): 328-339. DOI:10.1016/j.clnu.2008.02.005. PMID: 18440672.; Crenn P., Cynober L. Effect of intestinal resections on arginine metabolism: practical implications for nutrition support. Curr Opin Clin Nutr Metab Care. 2010; 13 (1): 65-69. DOI:10.1097/MCO.0b013e328333c1a8. PMID: 19915459.; van de Poll M.C., Soeters P.B., Deutz N.E., Fearon K.C., Dejong C.H. Renal metabolism of amino acids: its role in interorgan amino acid exchange. Am J Clin Nutr. 2004; 79 (2): 185-197. DOI:10.1093/ajcn/79.2.185. PMID: 14749222.; Osowska S., Duchemann T., Walrand S., Paillard A., Boirie Y., Cynober L., Moinard C. Citrulline modulates muscle protein metabolism in old malnourished rats. Am J Physiol Endocrinol Metab. 2006; 291 (3): E582-E586. DOI:10.1152/ajpendo.00398.2005. PMID: 16608884.; Jourdan M., Nair K.S., Carter R.E., Schimke J., Ford G.C., Marc J., Aussel C., Cynober L. Citrulline stimulates muscle protein synthesis in the post-absorptive state in healthy people fed a low-protein diet - A pilot study. Clin Nutr. 2015; 34 (3): 449-456. DOI:10.1016/j.clnu.2014.04.019. PMID: 24972455.; Poon I.K., Patel K.K., Davis D.S., Parish C.R., Hulett M.D. Histidine-rich glycoprotein: the Swiss Army knife of mammalian plasma. Blood. 2011; 117 (7): 2093-2101. DOI:10.1182/blood-2010-09-303842. PMID: 20971949.; Сергеев И.В., Петрова М.В., Шестопалов А.Е., Радутная М.Л., Хижняк Т.И., Ветшева М.С., Лукьянец О.Б., Яковлева А.В. Саркопения у пациентов после тяжелых повреждений головного мозга. Неотложная медицинская помощь. Журнал им. Н.В. Склифосовского. 2022; 11 (3): 402–411 DOI 10.23934/2223-9022-2022-11-3-402-411.; Петрова М.В., Сергеев И.В., Шестопалов А.Е., Лукьянец О.Б. Метаболические нарушения у пациентов, находящихся в хроническом критическом состоянии, обусловленном последствиями черепно-мозговой травмы. Вопросы питания. 2021; 90 (4): 103–11. DOI 10.33029/0042-8833-2021-90-4-103-111.; Cho E.S., Anderson H.L., Wixom R.L., Hanson K.C., Krause G.F. Long-term effects of low histidine intake on men. J Nutr. 1984; 114 (2): 369-384. DOI:10.1093/jn/114.2.369. PMID: 6693997.; Drazic A., Miura H., Peschek J., Le Y., Bach N.C., Kriehuber T., Winter J. Methionine oxidation activates a transcription factor in response to oxidative stress. Proc Natl Acad Sci U S A. 2013; 110 (23): 9493-9498. DOI:10.1073/pnas.1300578110. PMID: 23690622.; Aledo J.C. The Role of Methionine Residues in the Regulation of Liquid-Liquid Phase Separation. Biomolecules. 2021; 11 (8): 1248. DOI:10.3390/biom11081248. PMID: 34439914.; Mao X., Zeng X., Qiao S., Wu G., Li D. Specific roles of threonine in intestinal mucosal integrity and barrier function. Front Biosci (Elite Ed). 2011; 3 (4): 1192-1200. DOI:10.2741/e322. PMID: 21622125.; Sorgdrager F.J.H., Naudé P.J.W., Kema I.P., Nollen E.A., Deyn P.P. Tryptophan Metabolism in Inflammaging: From Biomarker to Therapeutic Target. Front Immunol. 2019; 10: 2565. DOI:10.3389/fimmu.2019.02565. PMID: 31736978.; Rashid J., Kumar S.S., Job K.M., Liu X., Fike C.D., Sherwin C.M.T. Therapeutic Potential of Citrulline as an Arginine Supplement: A Clinical Pharmacology Review. Paediatr Drugs. 2020; 22 (3): 279-293. DOI:10.1007/s40272-020-00384-5. PMID: 32140997.; Meijer A.J., Lamers W.H., Chamuleau R.A. Nitrogen metabolism and ornithine cycle function. Physiol Rev. 1990; 70 (3): 701-748. DOI:10.1152/physrev.1990.70.3.701. PMID: 2194222.; Bak L.K., Schousboe A., Waagepetersen H.S. The glutamate/GABA-glutamine cycle: aspects of transport, neurotransmitter homeostasis and ammonia transfer. J Neurochem. 2006; 98 (3): 641-653. DOI:10.1111/j.1471-4159.2006.03913.x. PMID: 16787421.; Yu Y., Lv X., Li J., Zhou Q., Cui C., Hosseinzadeh P., Mukherjee A., Nilges M.J., Wang J., Lu Y. Defining the role of tyrosine and rational tuning of oxidase activity by genetic incorporation of unnatural tyrosine analogs. J Am Chem Soc. 2015; 137 (14): 4594-4597. DOI:10.1021/ja5109936. PMID: 25672571.; Jäger S., Cuadrat R., Wittenbecher C., Floegel A., Hoffmann P., Prehn C., Adamski J., Pischon T., Schulze M.B. Mendelian Randomization Study on Amino Acid Metabolism Suggests Tyrosine as Causal Trait for Type 2 Diabetes. Nutrients. 2020; 12 (12): 3890. DOI:10.3390/nu12123890. PMID: 33352682.; https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/2329
-
13Academic Journal
Authors: M. V. Stern, E. V. Sharova, L. A. Zhavoronkova, V. T. Dolgikh, A. N. Kuzovlev, I. N. Pronin, М. В. Штерн, Е. В. Шарова, Л. А. Жаворонкова, В. Т. Долгих, А. Н. Кузовлев, И. Н. Пронин
Source: General Reanimatology; Том 19, № 2 (2023); 51-59 ; Общая реаниматология; Том 19, № 2 (2023); 51-59 ; 2411-7110 ; 1813-9779
Subject Terms: нейропластичность, chronic critical illness, pathogenesis of motor connectome impairment, neuroplasticity, хроническое критическое состояние, патогенез нарушений функциональной двигательной системы
File Description: application/pdf
Relation: https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/2297/1715; https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/2297/1726; Лихтерман Л.Б., Кравчук А.Д., Охлопков В.А. Учение о последствиях черепно-мозговой травмы Часть I. Дефиниции, классификация, клиническая и количественно-томографическая синдромология. Клинический разбор в общей медицине. 2021; 2 (5): 25-29. DOI:10.47407/kr2021.2.5.00067.; D'Souza M.M., Kumar M., Choudhary A., Kaur P., Kumar P., Rana P., Trivedi R. et al. Alterations of connectivity patterns in functional brain networks in patients with mild traumatic brain injury: a longitudinal resting-state functional magnetic resonance imaging study. Neuroradioly J. 2020; 33 (2): 186-197. DOI:10.1177/1971400920901706. PMID: 31992126.; Shi J., Teng J., Du X., Li N. Multi-modal analysis of restingstate fMRI data in mTBI patients and association with neuropsychological outcomes. Front Neurol. 2021; 12: 639760. DOI:10.3389/fneur.2021.639760. PMID: 34079510.; Zhang J., Safar K., Emami Z., Ibrahim G.M., Scratch S.E., da Costa L., Dunkley B.T. Local and large-scale beta oscillatory dysfunction in males with mild traumatic brain injury. J Neurophysiol. 2020; 124 (6): 1948-1958. DOI:10.1152/jn.00333.2020. PMID: 33052746.; Boone D.R., Weisz H.A., Willey H.E., Torres K.E.O., Falduto M.T., Sinha M., Spratt H. et al. Traumatic brain injury induces long-lasting changes in immune and regenerative signaling. PLoS One. 2019; 14 (4): e0214741. DOI:10.1371/journal.pone.0214741. PMID: 30943276.; Caeyenberghs K., Verhelst H., Clemente A., Wilson P.H. Mapping the functional connectome in traumatic brain injury: what can graph metrics tell us? Neuroimage. 2017; 160: 113-123. DOI:10.1016/j.neuroimage.2016.12.003. PMID: 27919750.; Chaban V., Clarke G.J.B., Skandsen T., Islam R., Einarsen C.E., Vik A., Damas J.K. et al. Systemic inflammation persists the first year after mild traumatic brain injury: results from the prospective Trondheim mild traumatic brain injury study. J Neurotrauma. 2020; 37 (19): 2120-2130. DOI:10.1089/neu.2019.6963. PMID: 32326805.; Кирячков Ю.Ю., Гречко А.В., Колесов Д.Л., Логинов А.А., Петрова М.В., Рубанес М., Пряников И.В. Мониторинг эффективности интенсивной терапии и реабилитации по функциональной активности автономной нервной системы у пациентов с повреждениями головного мозга. Общая реаниматология. 2018; 14 (4): 21-34. DOI:10.15360/1813-9779-2018-4-21-34.; Кондратьева Е.А., Синкин М.В., Шарова Е.В., Лоуренс С., Кондратьев А.Н. Действие золпидема при длительном нарушении сознания (клиническое наблюдение). Общая реаниматология. 2019; 15 (5): 44-60. DOI:10.15360/1813-9779-2019-58.; Екушева Е.В., Комазов А.А. Нарушение тонкой моторики кисти после латерализованного инсульта: процессы нейропластичности и сенсомоторной интеграции. Клиническая практика. 2019; 10 (1): 16-22. DOI:10.17816/clin-pract10116-22.; Кадыков А.С., Шахпаронова Н.В., Белопасова А.В., Пряников И.В. Нейропластичность и восстановление нарушенных функций после инсульта. Физическая и реабилитационная медицина, медицинская реабилитация. 2019; 1 (2): 32-36. DOI:10.36425/2658-6843-19184.; Hallett M.L., de Haan W., Deco G., Dengler R., Di Iorio R., Gallea C., Gerloff C. et al. Human brain connectivity: clinical applications for clinical neurophysiology. Clin Neurophysiol 2020; 131 (7): 1621-1651. DOI:10.1016/j.clinph.2020.03.031. PMID: 32417703.; Штарк М.Б. Коростышевская А.М. Резакова М.В., Савелов А.А. Функциональная магнитно-резонансная томография и нейронауки. Успехи физиологических наук. 2012; 43 (1): 3-29. УДК: 612.82; 616-073.8: 611.81.; Rispoli V., Schreglmann S.R., Bhatia K.P. Neuroimaging advances in Parkinson's disease. Curr Opin Neurol. 2018; 31 (4): 415-424. DOI:10.1097/WCO.0000000000000584. PMID: 29878908.; Sharova E.V., Pogosbekian E.L., Korobkova E.V., Zaitsev O.S., Zakharova N.E., Chelyapina M.V., Fadeeva L.M. et al. Inter hemispheric connectivity and attention in patients with disorders of consciousness after severe traumatic brain injury. J Neurol Stroke. 2018; 8 (4): 245-253. DOI:10.15406/jnsk.2018.08.00319.; Teasdale G., Jennett B. Assessment of coma and impaired consciousness. A practical scale. Lancet. 1974; 2 (7872): 81-84. DOI:10.1016/S0140-6736 (74)91639-0. PMID: 4136544.; Wade D.T. Measurement in neurological rehabilitation. Curr Opin Neurol Neurosurg. 1992; 5 (5): 682-686. PMID: 1392142.; Шарова Е.В., Болдырева Г.Н., Лысачев Д.А., Куликов М.А., Жаворонкова Л.А., Челяпина-Постникова М.В., Попов В.В. и соавт. ЭЭГ-корреляты пассивного движения руки у пациентов с черепно-мозговой травмой при сохранном двигательном фМРТ-ответе. Физиология человека. 2019; 45 (5): 30-40. DOI:10.1134/S0131164619050175.; Болдырева Г.Н., Шарова Е.В., Жаворонкова Л.А., Челяпина М.В., Дубровская Л.П., Симонова О.А., Смирнов А.С. и соавт. ФМРТ и ЭЭГ реакции мозга здорового человека при активных и пассивных движениях ведущей рукой. Журнал высшей нервной деятельности им. И.П. Павлова. 2014; 64 (5): 488-488. DOI:10.7868/S0044467714050049.; Шарова Е.В., Котович Ю.В., Дезаараюо Я.И., Смирнов А.С., Гаврон А.А., Фадеева Л.М., Челяпина-Постникова М.В. и соавт. Визуализация сетей покоя (resting state) фМРТ у пациентов с тяжелой черепно-мозговой травмой. Медицинская визуализация. 2020; 24 (1): 68-84. DOI:10.24835/1607-0763-2020-1-68-84.; Жаворонкова Л.А., Морареску С.И., Болдырева Г.Н., Шарова Е.В., Купцова С.В., Смирнов А.С., Машеров С.Л. и соавт. ФМРТ-реакции мозга при выполнении двигательных нагрузок у пациентов с черепно-мозговой травмой. Физиология человека. 2018; 44 (5): 5-13. DOI:10.1134/S0131164619050175.; Lee S. H., Jin S. H., An J. Distinction of directional coupling in sensorimotor networks between active and passive finger movements using fNIRS. Biomed Opt Express. 2018; 9 (6): 2859-2870. DOI:10.1364/BOE.9.002859. PMID: 30258695.; Casiraghi L., Alahmadi A.A.S., Monteverdi A., Palesi F., Castellazzi G., Savini G., Friston К., Wheeler-Kingshott C.A.M.G. et al. I see your effort: force-related BOLD effects in an extended action execution-observation network involving the cerebellum. Cerebr Cortex. 2019; 29 (3): 1351-1368. DOI:10.1093/cercor/bhy322. PMID: 30615116.; Zhavoronkova L.A., Boldyreva G.N., Sharova E.V., Kuptsova S.V., Smirnov A.S., Pronin I.N. fMRI responses of the brain during active and passive movements in left-handed subjects. Human Physiology. 2017; 43 (2): 191-198. DOI:10.1134/S0362119717010108. https://link.springer.com/article/10.1134/s0362119717010108.; Дамулин И.В., Екушева Е.В. Клиническое значение феномена нейропластичности при ишемическом инсульте. Анналы клинической и экспериментальной неврологии. 2016; 10 (1): 57-64. DOI:10.36425/2658-6843-19184.; Zhavoronkova L., Moraresku S., Boldyreva G., Sharova E., Kuptsova S., Smirnov A., Masherov E.L. et al. FMRI and EEG reactions to hand motor tasks in patients with mild traumatic brain injury: left-hemispheric sensitivity to trauma. J Behav Brain Sci. 2019; 9 6): 273. DOI:10.4236/jbbs.2019.96020. https://www.scirp.org/journal/paperinformation.aspx?paperid=93489.; Boldyreva G.N., Yarets M.Y., Sharova E.V., Zhavoronkova L.A., Kuptsova S.V., Chelyapina-Postnikova M.V., Kulikov M.A. et al. Characteristics of brain fMRI responses to motor loads in patients with mild posttraumatic hemiparesis. Neuroscience and Behavioral Physiology. 2021; 51 (4): 450-457. DOI 10.1007/s11055-021-01091-5. https://link.springer.com/article/10.1007/s11055-021-01091-5.; https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/2297
-
14Academic Journal
Authors: Андрей Глебович Васильев
Source: Российские биомедицинские исследования, Vol 7, Iss 4 (2023)
Subject Terms: новорожденные, критическое состояние, сердечный выброс, мониторинг, newborns, critical condition, Medicine (General), R5-920
-
15Academic Journal
Subject Terms: статистическая термодинамика, стохастические задачи, статистическая механика, броуновские частицы, коэффициент диффузии, критическое состояние вещества
File Description: application/pdf
Access URL: https://elib.belstu.by/handle/123456789/51816
-
16Academic Journal
Authors: Н. Э. Альтшулер, М. Б. Куцый, Н. М. Кругляков, К. К. Губарев, Г. И. Багжанов, Константин Александрович Попугаев
Source: Вестник интенсивной терапии, Iss 3 (2022)
Subject Terms: критическое состояние, гидрокортизон, кортизол, экстракорпоральная мембранная оксигенация, надпочечники, адренокортикотропный гормон, Medical emergencies. Critical care. Intensive care. First aid, RC86-88.9
File Description: electronic resource
-
17Academic Journal
Authors: A. V. Golomidov, E. V. Grigoriev, V. G. Moses, K. B. Moses, А. В. Голомидов, Е. В. Григорьев, В. Г. Мозес, К. Б. Мозес
Source: Messenger of ANESTHESIOLOGY AND RESUSCITATION; Том 19, № 2 (2022); 74-83 ; Вестник анестезиологии и реаниматологии; Том 19, № 2 (2022); 74-83 ; 2541-8653 ; 2078-5658
Subject Terms: персистирующее критическое состояние, multiple organ failure, persistent critical illness, полиорганная недостаточность
File Description: application/pdf
Relation: https://www.vair-journal.com/jour/article/view/651/554; Григорьев Е. В., Шукевич Д. Л., Плотников Г. П. и др. Неудачи интенсивного лечения полиорганной недостаточности: патофизиология и потребность в персонификации (обзор литературы) // Вестник интенсивной терапии им. А. И. Салтанова. – 2019. – № 2. – C. 48–57. doi:10.21320/1818-474X-2019-2-48-57.; Сергеева В. А., Александрович Ю. С., Шабалов Н. П. и др. Влияние фетального воспалительного ответа на тяжесть течения раннего неонатального периода у новорожденных с внутриутробным инфицированием // Человек и его здоровье. – 2011. – № 1. – С. 80‒88.; Сергеева В. А., Шабалов Н. П., Александрович Ю. С. и др. Взгляд на проблему респираторных нарушений у новорожденных с позиции синдрома фетального воспалительного ответа // Человек и его здоровье. – 2010. – № 2. – С. 125–130.; Сергеева В. А., Шабалов Н. П., Александрович Ю. С. и др. Предопределяет ли фетальный воспалительный ответ осложненное течение раннего неонатального периода? // Сибирский медицинский журнал. (Иркутск). – 2010. – № 2. – С. 75–80.; Старостина Л. С., Яблокова Е. А. Особенности функционирования пищеварительной системы у детей раннего возраста: коррекция наиболее частых расстройств // РМЖ. – 2017. – № 19. – C. 1335–1340.; Aguiar F. P., Westphal G. A., Dadam M. M. et al. Characteristics and predictors of chronic critical illness in the intensive care unit // Rev. Bras. Ter. Intensiva. – 2019. – № 31 (4). – P. 511–520. doi:10.5935/0103-507X.20190088.; Assimakopoulos S. F., Triantos C., Thomopoulos K. et al. Gut-origin sepsis in the critically ill patient: pathophysiology and treatment // Infection. – 2018. – Vol. 46, № 6. – Р. 751–760. doi:10.1007/s15010-018-1178-5.; Bagshaw S. M., Stelfox H. T., McDermid R. C. et al. Association between frailty and short- and long-term outcomes among critically ill patients: a multicentre prospective cohort study // CMAJ. – 2014. – Vol. 186, № 2. – Р. 95–102. doi:10.1503/cmaj.130639.; Barrington K. J., Finer N., Pennaforte T. et al. Nitric oxide for respiratory failure in infants born at or near term // Cochrane Database Syst Rev. – 2017. – Vol. 1, № 1. – CD000399. doi:10.1002/14651858.CD000399.pub3.; Bechard L. J., Staffa S. J., Zurakowski D. et al. Time to achieve delivery of nutrition targets is associated with clinical outcomes in critically ill children // Am. J. Clin. Nutr. – 2021. – № 28. – P. 244. doi:10.1093/ajcn/nqab244.; Belletti A., Benedetto U., Biondi-Zoccai G. et al. The effect of vasoactive drugs on mortality in patients with severe sepsis and septic shock. A network meta-analysis of randomized trials // J. Crit. Care. – 2017. – № 37. – P. 91–98. doi:10.1016/j.jcrc.2016.08.010.; Blauvelt D. G., Abada E. N., Oishi P. et al. Advances in extracorporeal membrane oxygenator design for artificial placenta technology // Artif. Organs. – 2021. – № 45 (3). – P. 205–221. doi:10.1111/aor.13827.; Broman M., Lindfors M., Norberg A. et al. Low serum selenium is associated with the severity of organ failure in critically ill children // Clin. Nutr. – 2018. – Vol. 37, № 4. – P. 1399–1405. doi:10.1016/j.clnu.2017.06.014.; Budniok T., ElSayed Y., Louis D. Effect of vasopressin on systemic and pulmonary hemodynamics in neonates // Am. J. Perinatol. – 2021. – Vol. 38, № 12. – P. 1330–1334. doi:10.1055/s-0040-1712999.; Burkhardt B. E., Rücker G., Stiller B. Prophylactic milrinone for the prevention of low cardiac output syndrome and mortality in children undergoing surgery for congenital heart disease // Cochrane Database Syst Rev. – 2015. – № 3. – CD009515. doi:10.1002/14651858.CD009515.pub2.; Cao X., Liao X. L., He X. L. et al. Predictors of long-term mortality and health related quality of life for elderly patients with sepsis // Sichuan Da XueXue Bao Yi Xue Ban. – 2018. – № 49. – Р. 140–144.; Carson S. S. Definitions and epidemiology of the chronically critically ill // Respir. Care. – 2012. – Vol. 57, № 6. – P. 848–856. doi:10.4187/respcare.01736.PMID: 22663962.; Chang W., Xie J. F., Xu J. Y. et al. Effect of levosimendan on mortality in severe sepsis and septic shock: a meta-analysis of randomised trials // BMJ Open. – 2018. – Vol. 8, № 3. – P. 019338. doi:10.1136/bmjopen-2017-019338.; Cheng L., Yan J., Han S. et al. Comparative efficacy of vasoactive medications in patients with septic shock: a network meta-analysis of randomized controlled trials // Crit. Care. – 2019. – Vol. 23, № 1. – P. 168. doi:10.1186/s13054-019-2427-4.; Demirkiran H., Kilic M., Tomak Y. et al. Evaluation of the incidence, characteristics, and outcomes of pediatric chronic critical illness // PLoS One. – 2021. – Vol. 16, № 5. – Р. e0248883. doi:10.1371/journal.pone.0248883.; Dempsey E., Rabe H. The use of cardiotonic drugs in neonates // Сlin. Perinatol. – 2019. – Vol. 46, № 2. – Р. 273–290. doi:10.1016/j.clp.2019.02.010.; Efron P. A., Mohr A. M., Bihorac A. et al. Persistent inflammation, immunosuppression, and catabolism and the development of chronic critical illness after surgery // Surgery. – 2018. – Vol. 164, № 2. – P. 178–184. doi:10.1016/j.surg.2018.04.011.; Fenner B. P., Darden D. B., Kelly L. S. et al. Immunological endotyping of chronic critical illness after severe sepsis // Front Med. (Lausanne). – 2021. – № 7. – P. 616694. doi:10.3389/fmed.2020.616694.; Girard K., Raffin T. A. The chronically critically ill: to save or let die? // Respir. Care. – 1985. – № 30. – P. 339–347.; Gorga S. M., Carlton E. F., Kohne J. G. et al. Consensus acute kidney injury criteria integration identifies children at risk for long-term kidney dysfunction after multiple organ dysfunction syndrome // Pediatr. Nephrol. – 2021. – № 36 (6). – P. 1637–1646. doi:10.1007/s00467-020-04865-0.; Holloway A. J., Spaeder M. C., Basu S. Association of timing of tracheostomy on clinical outcomes in PICU patients // Pediatr. Crit. Care Med. – 2015. – № 16. – P. 52–58. doi:10.1097/PCC.0000000000000336.; Joynt C., Cheung P. Y. Cardiovascular supportive therapies for neonates with asphyxia – a literature review of pre-clinical and clinical studies // Front. Pediatr. – 2018. – № 6. – P. 363. doi:10.3389/fped.2018.00363.; Joynt C., Cheung P. Y. Treating hypotension in preterm neonates with vasoactive medications // Front. Pediatr. – 2018. – № 6. – P. 86. doi:10.3389/fped.2018.00086.; Kahn J. M., Le T., Angus D. C. et al. The epidemiology of chronic critical illness in the United States // Crit. Care Med. – 2015. – Vol. 43. – № 2. – P. 282–287. doi:10.1097/CCM.0000000000000710.; Kim F., Polin R. A., Hooven T. A. Neonatal sepsis // BMJ. – 2020. – № 371. – P. 3672. doi:10.1136/bmj.m3672.; Kirkland B. W., Wilkes J., Bailly D. K. et al. Extracorporeal membrane oxygenation for pediatric respiratory failure: risk factors associated with center volume and mortality // Pediatr. Crit. Care Med. – 2016. – № 17 (8). – P. 779–788. doi:10.1097/PCC.0000000000000775.; Lee G., Kaiser J. R., Moffett B. S. et al. Efficacy of low-dose epinephrine continuous infusion in neonatal intensive care unit patients // J. Pediatr. Pharmacol. Ther. – 2021. – Vol. 26, № 1. – P. 51–55. doi:10.5863/1551-6776-26.1.51.; Loftus T. J., Filiberto A. C., Ozrazgat-Baslanti T. et al. Cardiovascular and renal disease in chronic critical illness // J. Clin. Med. – 2021. – Vol. 10. № 8. – P. 1601. doi:10.3390/jcm10081601.; Loftus T. J., Mira J. C., Ozrazgat-Baslanti T. et al. Sepsis and Critical Illness Research Center investigators: Protocols and standard operating procedures for a prospective cohort study of sepsis in critically ill surgical patients // BMJ Open. – 2017. – № 7. – P. 015136. doi:10.1136/bmjopen-2016-015136.; Lone N. I., Walsh T. S. Prolonged mechanical ventilation in critically ill patients: epidemiology, outcomes and modelling the potential cost consequences of establishing a regional weaning unit // Crit. Care. – 2011. – Vol. 15, № 2. – P. 102. doi:10.1186/cc10117.; MacIntyre N. R., Epstein S. K., Carson S. et al. Management of patients requiring prolonged mechanical ventilation: report of a NAMDRC consensus conference // Chest. – 2005. – Vol. 128, № 6. – P. 3937–3954. doi:10.1378/chest.128.6.3937.; Marino L. V., Valla F. V., Beattie R. M. et al. Micronutrient status during paediatric critical illness: A scoping review // Clin. Nutr. – 2020. – Vol. 39, № 12. – P. 3571–3593. doi:10.1016/j.clnu.2020.04.015.; Masarwa R., Paret G., Perlman A. et al. Role of vasopressin and terlipressin in refractory shock compared to conventional therapy in the neonatal and pediatric population: a systematic review, meta-analysis, and trial sequential analysis // Crit. Care. – 2017. – Vol. 21. – P. 1. doi:10.1186/s13054-016-1589-6.; McNally J. D., Nama N., O'Hearn K. et al. Vitamin D deficiency in critically ill children: a systematic review and meta-analysis // Crit. Care. – 2017. – Vol. 21, № 1. – P. 287. doi:10.1186/s13054-017-1875-y.; Mizuno T., Gist K. M., Gao Z. et al. Developmental pharmacokinetics and age-appropriate dosing design of milrinone in neonates and infants with acute kidney injury following cardiac surgery // Clin. Pharmacokinet. – 2019. – Vol. 58, № 6. – P. 793–803. doi:10.1007/s40262-018-0729-3.; Muraskas J., Astrug L., Amin S. FIRS: Neonatal considerations // Semin. Fetal. Neonatal. Med. – 2020. – № 25 (4). – P. 101142. doi:10.1016/j.siny.2020.101142.; Oami T., Chihade D. B., Coopersmith C. M. The microbiome and nutrition in critical illness // Curr. Opin. Crit. Care. – 2019. – Vol. 25, № 2. – P. 145–149. doi:10.1097/MCC.0000000000000582.; Papazian L., Aubron C., Brochard L. et al. Formal guidelines: management of acute respiratory distress syndrome // Ann. Intens. Care. – 2019. – Vol. 9, № 1. – P. 69. doi:10.1186/s13613-019-0540-9.; Papp Z., Agostoni P., Alvarez J. et al. Levosimendan efficacy and safety: 20 years of SIMDAX in clinical use // J. Cardiovasc Pharmacol. – 2020. – Vol. 76, № 1. – P. 4–22. doi:10.1097/FJC.0000000000000859.; Peterson-Carmichael S. L., Cheifetz I. M. The chronically critically ill patient: pediatric considerations // Respir. Care. – 2012. – № 57 (6). – P. 993–1002. doi:10.4187/respcare.; Poisson K., Lin J. J., Chen A. et al. Case 2: respiratory failure and multiple organ system dysfunction in a 7-day-old infant // Pediatr. Rev. – 2019. – Vol. 40, № 11. – P. 593–595. doi:10.1542/pir.2017-0102.; Rahiman S., Kowalski R., Kwok S. Y. et al. Milrinone acts as a vasodilator but not an inotrope in children after cardiac surgery-insights from wave intensity analysis // Crit. Care Med. – 2020. – Vol. 48, № 11. – P. 1071–1078. doi:10.1097/CCM.0000000000004622.; Ramanathan K., Tan C. S., Rycus P. et al. Extracorporeal membrane oxygenation for severe adenoviral pneumonia in neonatal, pediatric, and adult patients // Pediatr. Crit. Care Med. – 2019. – № 20 (11). – P. 1078–1084. doi:10.1097/PCC.0000000000002047.; Rizk M. Y., Lapointe A., Lefebvre F. et al. Norepinephrine infusion improves haemodynamics in the preterm infants during septic shock // Acta Paediatr. – 2018. – Vol. 107, № 3. – P. 408–413. doi:10.1111/apa.14112.; Rosenthal M. D., Kamel A. Y., Rosenthal C. M. et al. Chronic critical illness: application of what we know // Nutr. Clin. Pract. – 2018. – Vol. 33, № 1. – P. 39–45. doi:10.1002/ncp.10024.; Shapiro M. C., Henderson C. M., Hutton N. et al. Defining pediatric chronic critical illness for clinical care, research, and policy // Hosp. Pediatr. – 2017. – Vol. 7, № 4. – P. 236–244. doi:10.1542/hpeds.2016-0107.; Shivanna B., Gowda S., Welty S. E. et al. Prostanoids and their analogues for the treatment of pulmonary hypertension in neonates // Cochrane Database Syst Rev. – 2019. – Vol. 10, № 10. – CD012963. doi:10.1002/14651858.CD012963.pub2.; Sison S. M., Sivakumar G. K., Caufield-Noll C. et al. Mortality outcomes of patients on chronic mechanical ventilation in different care settings: A systematic review // Heliyon. – 2021. – Vol. 7, № 2. – P. 06230. doi:10.1016/j.heliyon.2021.e06230.; Skurupii D. A., Sonnyk E. G., Sizonenko V. M. Multiorgan failure syndrome in newborns: role of social and anatomico-functional features (literature review) // Wiad Lek. – 2018. – Vol. 71, № 3. – P. 777–780.; Stortz J. A., Mira J. C., Raymond S. L. et al. Benchmarking clinical outcomes and the immunocatabolic phenotype of chronic critical illness after sepsis in surgical intensive care unit patients // J. Trauma Acute Care Surg. – 2018. – Vol. 84, № 2. – P. 342–349. doi:10.1097/TA.0000000000001758.; Temsah M. H., Abouammoh N., Al-Eyadhy A. et al. Predictors and direct cost estimation of long stays in pediatric intensive care units in Saudi Arabia: a mixed methods study // Risk ManagHealthc Policy. – 2021. – № 14. – P. 2625–2636. doi:10.2147/RMHP.S311100.; Troch R., Schwartz J., Boss R. Slow and steady: a systematic review of icu care models relevant to pediatric chronic critical illness // J. Pediatr. Intens. Care. – 2020. – Vol. 9, № 4. – P. 233–240. doi:10.1055/s-0040-1713160.; Valla F. V., Bost M., Roche S. et al. Multiple micronutrient plasma level changes are related to oxidative stress intensity in critically ill children // Pediatr. Crit. Care Med. – 2018. – Vol. 19, № 9. – P. 455–463. doi:10.1097/PCC.0000000000001626.; Wang X., Li B., Ma Y. et al. Effect of NO inhalation on ECMO use rate and mortality in infants born at or near term with respiratory failure // Medicine (Baltimore). – 2019. – Vol. 98, № 41. – P. 17139. doi:10.1097/MD.0000000000017139.; Wynn J. L., Kelly M. S., Benjamin D. K. et al. Timing of multiorgan dysfunction among hospitalized infants with fatal fulminant sepsis // Am. J. Perinatol. – 2017. – Vol. 34, № 7. – P. 633–639. doi:10.1055/s-0036-1597130.; Zhang W. F., Chen D. M., Wu L. Q. et al. Clinical effect of continuous blood purification in treatment of multiple organ dysfunction syndrome in neonates // Zhongguo Dang Dai Er Ke Za Zhi. – 2020. – Vol. 22, № 1. – P. 31–36. doi:10.7499/j.issn.1008-8830.2020.01.007.; Zimmerman J. J., Banks R., Berg R. A. et al. Critical illness factors associated with long-term mortality and health-related quality of life morbidity following community-acquired pediatric septic shock // Crit. Care Med. – 2020. – Vol. 48, № 3. – P. 319–328. doi:10.1097/CCM.0000000000004122.
-
18Academic Journal
Authors: L. M. Vasilyeva, N. I. Rabazanov, Л. М. Васильева, Н. И. Рабазанов
Source: South of Russia: ecology, development; Том 17, № 3 (2022); 6-15 ; Юг России: экология, развитие; Том 17, № 3 (2022); 6-15 ; 2413-0958 ; 1992-1098 ; 10.18470/1992-1098-2022-3
Subject Terms: биотехнология, sturgeons, production stocks, sturgeon hatcheries, producers, reproduction efficiency, critical condition, Caspian herd, biotechnology, осетровые рыбы, продукционные стада, осетровые рыбоводные заводы, производители, эффективность воспроизводства, критическое состояние, каспийское стадо
File Description: application/pdf
Relation: https://ecodag.elpub.ru/ugro/article/view/2575/1286; Сергиева З.М., Бурлаченко И.В., Николаев А.И., Яхонтова И.В. Основные этапы становления искусственного воспроизводства водных биологических ресурсов в России // Труды ВНИРО. 2015. Т. 153. С. 3‐25.; Кокоза А.А. Искусственное воспроизводство осетровых рыб. Астрахань: АГТУ, 2004. 207 с.; Кокоза А.А., Григорьев В.А., Загребина О.Н. Искусственное воспроизводство каспийских осетровых с элементами его интенсификации. Астрахань: АГТУ, 2014. 216 с.; Кожин Н.И., Гербильский Н.Л., Казанский Б.Н. Биотехника разведения и принципиальная схема осетрового рыбоводного завода // Осетровое хозяйство в водоемах СССР. М.: АН СССР, 1963. С. 29‐34.; Мильштейн В.В. Осетроводство. М.: Легкая и пищевая промышленность, 1982. 152 с.; Ходоревская Р.П., Некрасова С.О. Современное состояние и перспективы воспроизводства водных биологических ресурсов для промышленной аквакультуры в Астраханской области // Вестник Астраханского государственного технического университета. Серия: Рыбное хозяйство. 2019. N 3. С. 107‐116.; Ходоревская Р.П., Красиков Е.В., Довгопол Г.Ф., Журавлева О.Л. Ихтиологический мониторинг за состоянием запасов осетровых рыб в Каспийском море // Сборник докладов Международной конференции «Экосистемы Прикаспия XXI века», Элиста, 1999. С. 67‐71.; Макаров Э.Д., Житенева Л.Д., Абросимова Н.А. Живые ископаемые близки к вымиранию: Научный очерк об осетровых. Ростов‐на‐Дону, 2000. 138 с.; Судаков Г.А., Власенко А.Д., Ходоревская Р.П. Состояние запасов водных биологических ресурсов Каспийского бассейна и меры по их сохранению в условиях развития нефтедобычи // Материалы III Международной научно‐практической конференции «Проблемы сохранения экосистемы Каспия в условиях освоения нефтегазовых месторождений», Астрахань, 2009. С. 200‐204.; Рубан Г.И., Ходоревская Р.П., Шатуновский М.И. Динамика популяций белуги, русского осетра и севрюги в условиях запрета их коммерческого лова в Волго‐ Каспийском бассейне // Вопросы рыболовства. 2015. N 3. С. 269‐277.; Васильева Л.М. К вопросу восстановления популяций каспийских осетровых рыб // Материалы Международной научно‐практической конференции «Социально‐ экономические и экологические аспекты развития Прикаспийского региона», Элиста, 2019. С. 531‐535.; Мирзоян А.В., Васильева Л.М. Повышение эффективности искусственного воспроизводства – реальный путь восстановления природных популяций осетровых рыб в Волго‐Каспийском бассейне // Рыбное хозяйство. 2018. N 5. С. 76‐81.; Шипулин С.В. Состояние запасов водных биоресурсов Волжско‐Каспийского бассейна и меры по их сохранению в условиях развития нефтедобычи // Материалы VIII научно‐практической конференции с международным участием «Проблемы сохранения экосистемы Каспия в условиях освоения нефтегазовых месторождений», Астрахань, 2021. С. 306‐309.; Судакова Н.В., Микодина Е.В., Васильева Л.М. Смена парадигмы искусственного воспроизводства осетровых рыб (Acipenseridae) в Волжско‐Каспийском бассейне в условиях дефицита производителей естественных генераций // Сельскохозяйственная биология. 2018. Т. 53. N 4. С. 698‐711.; Власенко С.А., Чавычалова Н.И., Фомин С.С. Состояние естественного воспроизводства осетровых в низовьях р. Волги // Материалы Всероссийской научной конференции с международным участием, посвященной 100‐летию Астраханского государственного заповедника «Природные экосистемы Каспийского региона: прошлое, настоящее, будущее», Астрахань, 2019. С. 68‐69.; Васильева Л.М., Наумов В.В., Судакова Н.В. Особенности современного состояния искусственного воспроизводства осетровых рыб в Волго‐Каспийском бассейне // Естественные науки. 2015. N 4 (53). С. 90‐95.; Казанцева Е.С., Ветров А.М. Искусственное воспроизводство водных биоресурсов Нижней Волги // Материалы Всероссийской. научно‐практической конференции «Водные биоресурсы и аквакультура Юга России», Краснодар, 2018. С. 331‐336.; Приказ Министерства сельского хозяйства РФ от 31 марта 2020 г. N 167 «Об утверждении Методики исчисления размера вреда, причиненного водным биологическим ресурсам», 2020. 47 c.; Бурцев И.А. Рекомендации по повышению эффективности искусственного воспроизводства осетровых видов рыб // Труды ВНИРО. 2015. Т. 153. С. 165‐174.; Материалы, обосновывающие общие допустимые уловы в районе добычи (вылова) водных биологических ресурсов во внутренних водах Астраханской области, за исключением внутренних морских вод, на 2023 год (с оценкой воздействия на окружающую среду). Астрахань, 2022. URL: http://kaspnirh.vniro.ru/about/materiali_odu/ (дата обращения: 01.06.2022); Досаева В.Г., Кириллов Д.Е., Никитушкина В.Е., Петрова О.Ф. Искусственное воспроизводство белуги и севрюги в целях сохранения биоразнообразия и численности водных видов биологических ресурсов // Материалы VIII научно‐практической конференции с международным участием «Проблемы сохранения экосистемы Каспия в условиях освоения нефтегазовых месторождений», Астрахань, 2021. С. 100‐104.; Приказ Минсельхоза России от 25.08.2015 N 377 «О внесении изменений в Методику расчета объема добычи (вылова) водных биологических ресурсов, необходимого для обеспечения сохранения водных биологических ресурсов и обеспечения деятельности рыбоводных хозяйств, при осуществлении рыболовства в целях аквакультуры (рыбоводства), утвержденную приказом Минсельхоза России от 30 января 2015 г. N 25» (Зарегистрировано в Минюсте России 28.10.2015 N 39501).; https://ecodag.elpub.ru/ugro/article/view/2575
-
19Academic Journal
Authors: Игорь Николаевич Пасечник, А. И. Закревский
Source: Вестник интенсивной терапии, Iss 2 (2021)
Subject Terms: пожилой и старческий возраст, критическое состояние, нутритивная поддержка, саркопения, Medical emergencies. Critical care. Intensive care. First aid, RC86-88.9
File Description: electronic resource
-
20Academic Journal
Authors: O. G. Sivkov, О. Г. Сивков
Source: General Reanimatology; Том 17, № 1 (2021); 27-33 ; Общая реаниматология; Том 17, № 1 (2021); 27-33 ; 2411-7110 ; 1813-9779
Subject Terms: перитонит, small intestine, acetaminophen absorption test, enteral feeding, nasojejunal feeding, feeding intolerance, critical illness, peritonitis, тонкая кишка, тест абсорбции ацетаминофена, энтеральное питание, назоеюнальное питание, непереносимость питания, критическое состояние
File Description: application/pdf
Relation: https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/2012/1477; https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/2012/1484; Reintam A., Parm P., Kitus R., Kern H., Starkopf J. Gastrointestinal symptoms in intensive care patients. Acta Anaesthesiol Scand. 2009; 53: 318–324. DOI:10.1111/j.1399-6576.2008.01860.x.; Zhang D., Fu R., Li Y., Li H., Li Y, Li H. Comparison of the clinical characteristics and prognosis of primary versus secondary acute gastrointestinal injury in critically ill patients. J Intensive Care. 2017; 5: 26. Published 2017 Apr 20. DOI:10.1186/s40560-017-0221-4.; Reintam Blaser A., Malbrain, M. L., Starkopf J., Fruhwald S., Jakob S. M., De Waele J., Braun J. P., Poeze M., Spies C. Gastrointestinal function in intensive care patients: terminology, definitions and management. Recommendations of the ESICM Working Group on Abdominal Problems. Intensive Care Med. 2012: 38, 3; 384–394. PMID: 22310869 PMCID: PMC3286505 DOI:10.1007/s00134-011-2459-y; Kar P., Jones K.L., Horowitz M., Chapman M.J., Deane A.M. Measurement of gastric emptying in the critically ill. Clin Nutr. 2015; 34: 557– 564. DOI:10.1016/j.clnu.2014.11.003; Medhus A.W., Lofthus C.M., Bredesen J., Husebye E. Gastric emptying: the validity of the paracetamol absorption test adjusted for individual pharmacokinetics. Neurogastroenterol Motil. 2001; 13: 179–185. PMID: 11437980 DOI:10.1046/j.1365-2982.2001.00249.x; Miyauchi T., Ishikawa M., Tashiro S., Hisaeda H., Nagasawa H., Himeno K. Acetaminophen absorption test as a marker of small bowel transplant rejection. Transplantation. 1997; 63 (8): 1179–1182. DOI:10.1097/00007890-199704270-00020; Kreymann K.G., Berger M.M., Deutz N.E., Hiesmayr M., Jolliet P., Kazandjiev G., Nitenberg G., Berghe G., Wernerman J., Ebner C., Hartl W., Heymann C., Spies C. ESPEN guidelines on enteral nutrition: intensive care. Clin Nutr. 2006; 25: 210–223. DOI:10.1016/j.clnu.2006.01.021.; Vincent J.L., Moreno R., Takala J., Willatts S., De Mendonça A., Bruining H., Reinhart C.K., Suter P.M., Thijs L.G. Working Group on Sepsis-Related Problems of the European Society of Intensive Care Medicine. The SOFA (Sepsis-related Organ Failure Assessment) score to describe organ dysfunction/failure. Intensive Care Med. 1996; 22 (7): 707–710. PMID: 8844239 DOI:10.1007/BF01709751; Knaus W.A., Knaus W.A., Draper E.A., Wagner D.P., Zimmerman J.E. APACHE II: a severity of disease classification system. Crit Care Med. 1985; 13: 818–829. DOI:10.1097/00003246-198510000-00009; Singer M., Deutschman C.S., Seymour C.W., Shankar-Hari M., Annane D., Bauer M., Bellomo, R., Bernard, G.R., Chiche, J.D., Coopersmith C.M., Hotchkiss R.S., Levy M.M., Marshall J.C., Martin G.S., Opal S.M., Rubenfeld G.D., van der Poll T., Vincent J. L., Angus D.C. The Third International Consensus Definitions for Sepsis and Septic Shock (Sepsis-3). JAMA. 2016; 315 (8): 801–810. DOI:10.1001/jama.2016.0287; Reintam A., Parm P., Kitus R., Starkopf J., Kern H. Gastrointestinal failure score in critically ill patients: a prospective observational study [published correction appears in Crit Care. 2008; 12 (6): 435. Crit Care. 2008; 12 (4): R90. DOI:10.1186/cc6958.; Greiff J.M., Rowbotham D. Pharmacokinetic drug interactions with gastrointestinal motility modifying agents. Clin Pharmacokinet. 1994; 27: 447–461. PMID: 7882635 DOI:10.2165/00003088-199427060-00004; Sachdev A.H., Pimentel M. Gastrointestinal bacterial overgrowth: pathogenesis and clinical significance. Ther Adv Chronic Dis. 2013; 4: 223–231. PMID: 23997926 PMCID: PMC3752184 DOI:10.1177/2040622313496126; McClave S.A., Taylor B.E., Martindale R.G., Warren M.M., Johnson D.R., Braunschweig, C., McCarthy M.S., Davanos E., Rice T.W., Cresci G.A., Gervasio J.M., Sacks G.S., Roberts P.R., Compher C. Guidelines for the Provision and Assessment of Nutrition Support Therapy in the Adult Critically Ill Patient: Society of Critical Care Medicine (SCCM) and American Society for Parenteral and Enteral Nutrition (A.S.P.E.N.) JPEN J Parenter Enteral Nutr. 2016; 40: 159–211. DOI:10.1177/0148607115621863.; Alkhawaja S., Martin C., Butler R.J., Gwadry-Sridhar F. Post-pyloric versus gastric tube feeding for preventing pneumonia and improving nutritional outcomes in critically ill adults. Cochrane Database Syst Rev. 2015; 2015 (8): CD008875. DOI:10.1002/14651858.; Davies A.R., Morrison S.S., Bailey M.J., Bellomo R., Cooper D.J., Doig G.S., Finfer S.R., Heyland D.K. ENTERIC Study Investigators; ANZICS Clinical Trials Group. A multicenter, randomized controlled trial comparing early nasojejunal with nasogastric nutrition in critical illness. Crit Care Med. 2012; 40: 2342–2348. DOI:10.1097/CCM.0b013e318255d87e.; Minard G., Kudsk K A., Melton S., Patton J.H., Tolley E.A. Early versus delayed feeding with an immune-enhancing diet in patients with severe head injuries. J Parenter Enter Nutr. 2000; 24: 145–149. DOI:10.1177/0148607100024003145.; Davies A.R., Froomes P.R., French C.J., Bellomo R., Gutteridge G.A., Nyulasi I., Walker R., Sewell R.B. Randomized comparison of nasojejunal and nasogastric feeding in critically ill patients. Crit Care Med. 2002; 30: 586–590. DOI:10.1097/00003246-200203000-00016.; Hsu C.W., Sun S.F., Lin S.L., Kang S.P., Chu K.A., Lin C.H., Huang H.H. Duodenal versus gastric feeding in medical intensive care unit patients: a prospective, randomized, clinical study. Crit Care Med. 2009; 37: 1866–1872. DOI:10.1097/CCM.0b013e31819ffcda.; Singer P., Blaser A.R., Berger M.M., Alhazzani W., Calder P.C., Casaer M.P., Hiesmayr M., Mayer K., Montejo J.C., Pichard C., Preiser J.-C., van Zanten Arthur R.H., Oczkowski S., Szczeklik W., Bischoff S.C. ESPEN guideline on clinical nutrition in the intensive care unit. Clinical Nutrition. 2019; 38 (1): 48–79. DOI:10.1016/j.clnu.2018.08.037.; Sciarretta G., Furno A., Mazzoni M., Garagnani B., Malaguti P. Lactulose hydrogen breath test in orocecal transit assessment. Critical evaluation by means of scintigraphic method. Dig Dis Sci. 1994; 39: 1505–1510. PMID: 8026263 DOI:10.1007/BF02088056; Madsen J.L., Larsen N.E., Hilsted J., Worning H. Scintigraphic determination of gastrointestinal transit times. A comparison with breath hydrogen and radiologic methods. Scand J Gastroenterol. 1991; 26: 1263–1271. PMID: 1763296 DOI:10.3109/00365529108998623; Rauch S., Krueger K., Turan A., You J., Roewer N., Sessler D.I. Use of wireless motility capsule to determine gastric emptying and small intestinal transit times in critically ill trauma patients. J Crit Care. 2012; 27 (534): e7–e12. PMID: 22300488 DOI:10.1016/j.jcrc.2011.12.002; Gao T., Cheng M.H., Xi F.C., Chen Y., Cao C., Su T., Li W.Q., Yu W.K. Predictive value of transabdominal intestinal sonography in critically ill patients: a prospective observational study. Crit Care. 2019; 23 (1): 378. DOI:10.1186/s13054-019-2645-9. PMID: 31775838; PMCID: PMC6880579.; Zusman O., Theilla M., Cohen J., Kagan I., Bendavid I., Singer P. Resting energy expenditure, calorie and protein consumption in critically ill patients: a retrospective cohort study. Crit Care. 2016; 20 (1): 367. DOI:10.1186/s13054-016-1538-4.; Wang W.N., Yang M.F., Wang C.Y., Hsu C.Y., Lee B.J., Fu P.K. Optimal Time and Target for Evaluating Energy Delivery after Adjuvant Feeding with Small Bowel Enteral Nutrition in Critically Ill Patients at High Nutrition Risk. Nutrients. 2019; 11 (3): 645. Published 2019 Mar 16. DOI:10.3390/nu11030645.; https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/2012