КОРРЕКЦИЯ ИММУНОСУПРЕССИИ У ОНКОЛОГИЧЕСКИХ БОЛЬНЫХ В ЗАВИСИМОСТИ ОТ ВИДА АНЕСТЕЗИИ

Θεματικοί όροι: иммуносупрессия, иммунокоррекция, иммунитет, анестезия

КОРРЕКЦИЯ ИММУНОСУПРЕССИИ У ОНКОЛОГИЧЕСКИХ БОЛЬНЫХ В ЗАВИСИМОСТИ ОТ ВИДА АНЕСТЕЗИИ

Θεματικοί όροι: иммуносупрессия, иммунокоррекция, иммунитет, анестезия

ОСОБЕННОСТИ ПРОТЕКАНИЯ БЕРЕМЕННОСТИ ПРИ НЕКОТОРЫХ ВИДАХ ГЕЛЬМИНТОЗОВ И ПРОТОЗООЗОВ

Θεματικοί όροι: protozoosis, immunosuppression, гельминтозы, helminthiasis, pregnancy, протозоозы, иммуносупрессия, беременность

Ascariasis in an 8-year-old child with pronounced allergic manifestations in the form of exanthema ; Аскаридоз у ребенка 8 лет с выраженными аллергическими проявлениями в виде экзантемы

Συγγραφείς: G. R. Fatkullina, S. R. Dzamukov, M. I. Dzamukova, Г. Р. Фаткуллина, С. Р. Дзамуков, М. И. Дзамукова

Πηγή: Rossiyskiy Vestnik Perinatologii i Pediatrii (Russian Bulletin of Perinatology and Pediatrics); Том 70, № 5 (2025); 124-129 ; Российский вестник перинатологии и педиатрии; Том 70, № 5 (2025); 124-129 ; 2500-2228 ; 1027-4065

Θεματικοί όροι: иммуносупрессия, helminthiasis, geohelminthiasis, ascariasis, exanthema, immunosuppression, гельминтоз, геогельминтоз, аскаридоз, экзантема

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://www.ped-perinatology.ru/jour/article/view/2268/1638; Поляков В.Е., Лысенко А.Я. Гельминтозы у детей и подростков. Москва; «Медицина», 2003; 23–30; Лобзин Ю.В., Алексеева Л.А., Бабаченко И.В., Бехтерева М.К. Справочник по инфекционным болезням у детей. Санкт-Петербург «СпецЛит», 2013; 591; «Санитарная охрана территории Российской Федерации» СП 3.4.1328–03 https://meganorm.ru/Data2/1/4294815/4294815025.htm. Ссылка активна на 07.08.2025; Клинические рекомендации. Аскаридоз у детей. 2021. https://cr.minzdrav.gov.ru/recomend/485_2. Ссылка активна на 25.05.2025; Аракельян Р.С., Мальсагова А.Б., Могилина Е.А., Курбангалиева А.Р., Власова Е.В. Клинические и эпидемиологические аспекты аскаридоза. Пермский медицинский журнал, 2023; XL (4): 102–110 DOI:10.17816/pmj404102110; Абдулазизов А.И. Современное состояние заболеваемости аскаридозом в Дагестане. Современные наукоемкие технологии, 2012; 8: 53–56.; Гурина О.П., Дементьева Е.А., Варламова О.Н., Блинов А.Е. Иммунологическая реактивность при аскаридозе у детей. University Therapeutic Journal 2020; 2 (1): 54–55.; Умаров Р.М. Влияние ландшафта и почвенно-климатических особенностей на распространение аскаридоза в Чеченской Республике. Грозненский естественнонаучный бюллетень, 2019; 4–2 (16): 93–98 DOI:10.25744/genb.2019.16.2.010; Хасанов З.Г., Фатихова З.Дж., Саидова О.Х., Одинаев Ф.И., Одинаев Ш.Ф. Распространенность аскаридоза, энтеробиоза и лямблиоза среди населения Республики Таджикистан в современных социально-экономических условиях. Здравоохранение Таджикистана, 2020; 3: 57–63; Шипкова Л.Н., Мороз А.Н., Мальгина Е.А. Случаи аскаридоза в Краснодарском крае в период 2015–2019 гг. Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями. 2020; 21: 519–524; De Meeûs T., McCoy K.D., Prugnolle F. Population genetics and molecular epidemiology or how to “debusquer la bete”. Infect. Genet. Evol. 2007; 7: 308–332. DOI:10.1016/j.mee-gid.2006.07.003; Narayan A., Gangaboraiah D.H. Randomized controlled trial comparing the safetyand efficacy of single dose albendazol and mebendazoleon ascaris, hookworm and trichuris infections. Indian commun Helth. 2001; 199 (5): 35 — 40; Lynser D., Handique A., Daniala C., Phukan P., Marbaniang E. Sonographic images of hepato-pancreatico-biliary and intestinal ascariasis: A pictorial review. Insight Imaging. 2015; 6: 641 — 646. DOI:10.1007/s13244-015-0428-7.; Аничкин В.В., Мартынюк В.В., Чубченко Н.В., Коноваленко А.В., Каримова Е.М. Хирургические осложнения аскаридоза органов брюшной полости. Проблемы здоровья и экологии. 2013; 1 (35): 63 — 70. DOI:10.51523/2708-6011.2013-10-1-11; Колоцей В.Н., Страпко В.П. Случай аскаридной кишечной непроходимости, осложненной некрозом кишки. Журнал Гродненского государственного медицинского университета. 2015; 3 (51): 100 — 102; Миргасимова Д.М., Глебашева С.Г., Одинцова А.Х., Хафизова Т.А., Абдулганиева Д.И., Нуртдинова Г.Г. Редкий случай в эндоскопической практике: удаление живой аскариды из желчного протока. Казанский медицинский журнал. 2007; 88(1): 69 — 70; Сергиев В.П., Лобзин Ю.В., Козлов С.С. Паразитарные болезни человека (протозоозы и гельминтозы). Изд. 3-е, исправл. и доп. Санкт-Петербург; Фолиант, 2016; 640 с; Das A.K. Hepatic and biliary ascariasis. J. Global. Infect. Dis. 2014; 6: 65 — 72. DOI:10.4103/0974-777X.132042; Cicek C., Cundogdu D., Direkel S., Оzturk C. Akut. Ascaris lumbricoides in the nasogastric tube after operation on a patient with the diagnosis of acute mesenteric ischemia: case report. Turkive Parazitol. Derg. 2013; 37 (3): 212 — 215. DOI:10.5152/tpd.2013.47; Criscione Ch.D., Anderson J.D., Sudimack D., Peng W., Jha B.K., Blangero S.W., Anderson T.J.C. Disentangling hybridization and host colonization in parasitic roundworms of humans and pigs. Proceedings of the Royal Society B. August 2007; 274(1626): 2669–2677. DOI:10.1098/rspb.2007.0877

Διαθεσιμότητα: https://www.ped-perinatology.ru/jour/article/view/2268
https://doi.org/10.21508/1027-4065-2025-70-5-124-129

Pathogenetic mechanisms of developing impaired innate and adaptive immunity in sepsis ; Патогенетические механизмы формирования нарушений врожденного и адаптивного иммунитета при сепсисе

Συγγραφείς: Poryadin G.V., Zakhvatov A.N., Mosina L.M., Tarasova T.V., Haidar D.A., Saushev I.V., Tishkov P.S.

Συνεισφορές: 1

Πηγή: Russian Journal of Infection and Immunity; Vol 15, No 4 (2025); 609-618 ; Инфекция и иммунитет; Vol 15, No 4 (2025); 609-618 ; 2313-7398 ; 2220-7619

Θεματικοί όροι: immune dysfunction, immunosuppression, multiple organ failure, apoptosis, innate immunity, adaptive immunity, cytokines, иммунная дисфункция, иммуносупрессия, полиорганная недостаточность, апоптоз, врожденный иммунитет, адаптивный иммунитет, цитокины

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://iimmun.ru/iimm/article/view/17885/2234; https://iimmun.ru/iimm/article/view/17885/2327; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/17885/139054; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/17885/139055; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/17885/139089; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/17885/139090; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/17885/139091; https://iimmun.ru/iimm/article/view/17885

Διαθεσιμότητα: https://iimmun.ru/iimm/article/view/17885
https://doi.org/10.15789/2220-7619-PMO-17885

Parvovirus B19 infection and its role in rheumatology ; Парвовирусная B19 инфекция и ее роль в ревматологии

Συγγραφείς: G. I. Gridneva, B. S. Belov, M. S. Tolbeeva, E. S. Aronova, Г. И. Гриднева, Б. С. Белов, М. С. Толбеева, Е. С. Аронова

Συνεισφορές: The article was prepared in the framework of a research project, state assignment №1021051503137-7, Статья подготовлена в рамках научно-исследовательской работы, государственное задание №1021051503137-7

Πηγή: Modern Rheumatology Journal; Том 19, № 2 (2025); 113-118 ; Современная ревматология; Том 19, № 2 (2025); 113-118 ; 2310-158X ; 1996-7012

Θεματικοί όροι: инфекционный артрит, differential diagnosis, infections, immunosuppression, aplastic anemia, infectious arthritis, дифференциальная диагностика, инфекции, иммуносупрессия, апластическая анемия

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://mrj.ima-press.net/mrj/article/view/1749/1593; Brown KE, Anderson SM, Young NS. Erythrocyte P antigen: cellular receptor for B19 parvovirus. Science. 1993 Oct 1;262(5130): 114-7. doi:10.1126/science.8211117; Young NS. B19 parvovirus. Baillieres Clin Haematol. 1995 Mar;8(1):25-56. doi:10.1016/s0950-3536(05)80231-8; Zadori Z, Szelei J, Lacoste MC et al. A viral phospholipase A2 is required for parvovirus infectivity. Dev Cell. 2001 Aug;1(2): 291-302. doi:10.1016/s1534-5807(01)00031-4; Farcet MR, Karbiener M, Aberham C et al. Parvovirus B19 rebound outbreak 2024 and implications for blood- and plasma-product safety. Transfusion. 2024 Dec;64(12):2218-2221. doi:10.1111/trf.18032; Landry ML. Parvovirus B19. Microbiol Spectr. 2016 Jun;4(3). doi:10.1128/microbiolspec.DMIH2-0008-2015.; Candotti D, Etiz N, Parsyan A, Allain JP. Identification and characterization of persis tent human erythrovirus infection in blood donor samples. J Virol. 2004 Nov;78(22): 12169-78. doi:10.1128/JVI.78.22.12169-12178.2004; Никишов ОН, Кузин АА , Антипова АЮ, Лаврентьева ИН. Парвовирусная инфекция – современная проблема в эпидемиологии и клинической медицине. Эпидемиология и Вакцинопрофилактика. 2015; 4(83):29-35.; Останкова ЮВ, Хамитова ИВ, Лаврентьева ИН, Семенов АВ. Cпособ выявления в биологическом материале ДНК вируса парвовирус В19 на основе двухэтап ной ПЦР. Патент на изобретение RU 2753310 C2, 13.08.2021. Заявка № 2019121500 от 08.07.2019.; Ceccarelli G, Branda F, Ciccozzi A et al. Reassessing the Risk of Severe Parvovirus B19 Infection in the Immunocompetent Population: A Call for Vigilance in the Wake of Resurgence. Viruses. 2024 Aug 24;16(9):1352. doi:10.3390/v16091352; Heegaard ED, Brown KE. Human parvovirus B19. Clin Microbiol Rev. 2002 Jul;15(3): 485-505. doi:10.1128/CMR.15.3.485-505.2002; Khamitova IV, Lavrentyeva IN, Averyanova MYu, et al. Parvovirus B19 incidence, specific antibody response, and delayed hemato poietic recovery after allogeneic hematopoietic stem cell transplantation. Cellular Therapy and Transplantation. 2018;7(1):36-42. doi:10.18620/ctt-1866-8836-2018-7-1-36-43; Ананьева ЛП. Инфекция, вызванная парвовирусом B19. Научно-практическая ревматология 2002;(4):32-35.; Rasizadeh R, Ebrahimi F, Zamani Kermanshahi A, et al. Viruses and thrombocytopenia. Heliyon. 2024 Mar 16;10(6):e27844. doi:10.1016/j.heliyon.2024.e27844; Ананьева ЛП, Конева ОА, Солдато ва СИ и др. Cерологическая диагностика парвовирусной В19 инфекции при ревматических заболеваниях. Научно-практическая ревматология. 2005;(4):18-23.; Poeta M, Moracas C, Calo Carducci FI, et al. Pediatric INF-ACT Network Study Group; Collaborators of the Paediatric INF-ACT Network Study Group. Outbreak of paediatric myocarditis associated with parvovirus B19 infection in Italy, January to October 2024. Euro Surveill. 2024 Nov;29(48): 2400746. doi:10.2807/15607917.ES.2024.29.48.2400746; Hutton K, Carlsen KМ. AB1050 Reactive arthritis due to parvovirus b19 may be overlooked in adult rheumatology. Ann Rheum Dis. 2018;77:1639. Doi:10.1136/annrheumdis-2018-eular.7378; Etienne A, Harms M. Cutaneous manifestations of parvovirus B19 infection. Presse Med. 1996 Sep 7;25(25):1162-5.; Umene K, Nunoue T. A new genome type of human parvovirus B19 present in sera of patients with encephalopathy. J Gen Virol. 1995 Nov;76 (Pt 11):2645-51. doi:10.1099/0022-1317-76-11-2645; Ягужинская ОЕ, Февралева ИС, Элижбаева МА и др. Вторичная аутоиммунная гемолитическая анемия как результат персистенции парвовируса В19 у больных с иммунодефицитом. Терапевтический архив. 2011;83(12):62-68.; Söderlund-Venermo M, Hokynar K, Nieminen J, et al. Persistence of human parvovirus B19 in human tissues. Pathol Biol (Paris). 2002 Jun;50(5):307-16. doi:10.1016/s0369-8114(02)00307-3; Lu J, Zhi N, Wong S, Brown KE. Activation of synoviocytes by the secreted phospholipase A2 motif in the VP1-unique region of parvovirus B19 minor capsid protein. J Infect Dis. 2006 Feb 15;193(4):582-90. doi:10.1086/499599; Kurtzman GJ, Cohen BJ, Field AM, et al. Immune response to B19 parvovirus and an antibody defect in persistent viral infection. J Clin Invest. 1989 Oct;84(4):1114-23. doi:10.1172/JCI114274; Kerr JR, Cunniffe VS, Kelleher P, et al. Successful intravenous immunoglobulin therapy in 3 cases of parvovirus B19-associated chronic fatigue syndrome. Clin Infect Dis. 2003 May 1;36(9):e100-6. doi:10.1086/374666; Smolen JS, Aletaha D, Barton A, et al. Rheumatoid arthritis. Nat Rev Dis Primers. 2018;4:18001. doi:10.1038/nrdp.2018.1; Saal JG, Steidle M, Einsele H, et al. Persistence of B19 parvovirus in synovial membranes of patients with rheumatoid arthritis. Rheumatol Int. 1992;12(4):147-51. doi:10.1007/BF00274934; Kakurina N, Kadisa A, Lejnieks A, et al. Use of exploratory factor analysis to ascertain the correlation between the activities of rheumatoid arthritis and infection by human parvovirus B19. Medicina (Kaunas). 2015; 51(1):18-24. doi:10.1016/j.medici.2015.01.004. Epub 2015 Jan 28.; Aboelazm AA, Emam SM, Elolemy GG, Fawzy RM. Human Parvovirus B19 Infection in Rheumatoid Arthritis Patients: Screening and Clinical Significance. Egypt J Immunol. 2018 Jun;25(2):1-10.; Kareem Ali M, Shia JS. Erythema nodosum manifestation of Parvovirus B19-associated reactive arthritis. J Infect Dev Ctries. 2024 Sep 30;18(9):1435-1441. doi:10.3855/jidc.19513; Насонов ЕЛ, Каратеев ДЕ, Балабано ва РМ. Ревматоидный артрит. В кн.: Насонов ЕЛ, НАонова ВА, редакторы. Ревматология. Национальное руководство. Москва: ГЭОТАР-Медиа; 2008. С. 290-331.; Ананьева ЛП Диагностика и лечение интерстициального поражения легких при системной склеродермии. Современная ревматология. 2018;12(2):12-21. doi: 10/14412/1996-7012-2018-2-12-2; Ferri C, Longombardo G, Azzi A, Zakrzewska K. Parvovirus B19 and systemic sclerosis. Clin Exp Rheumatol. 1999 Mar-Apr; 17(2):267-8.; Campisi J, d'Adda di Fagagna F. Cellular senescence: when bad things happen to good cells. Nat Rev Mol Cell Biol. 2007 Sep;8(9): 729-40. doi:10.1038/nrm2233; Kuilman T, Peeper DS. Senescence-messa ging secretome: SMS-ing cellular stress. Nat Rev Cancer. 2009 Feb;9(2):81-94. doi:10.1038/nrc2560; Arvia R, Zakrzewska K, Giovannelli L, et al. Parvovirus B19 induces cellular senescence in human dermal fibroblasts: putative role in systemic sclerosis-associated fibrosis. Rheumatology (Oxford). 2022 Aug 30;61(9): 3864-3874. doi:10.1093/rheumatology/keab904.; Попкова ТВ, Панафидина ТА, Соловьев СК. По материалам обновленных рекомендаций Европейской антиревматической лиги (EULAR) по лечению системной красной волчанки – 2019: дискуссионные вопросы и комментарии. Научно-практическая ревматология. 2019; 57(5):496-510.; Pan Q, Liu Z, Liao S, et al. Current mechanistic insights into the role of infection in systemic lupus erythematosus. Biomed Pharmacother. 2019 Sep;117:109122. doi:10.1016/j.biopha.2019.109122; Nesher G, Moore TL. Human parvovirus infection. Infec Med. 1997;14:638-642.; D'Onofrio B, Virelli G, Pedrollo E, et al. High risk of misclassification of acute Parvovirus B19 infection into a systemic rheumatic disease. Rheumatol Adv Pract. 2024 Sep 6;8(3):rkae105. doi:10.1093/rap/rkae105; Pertuiset E, Kemiche F, Yahia M, Cerf-Payrastre I. Immunological Abnormalities in Adult Patients with Parvovirus B19 Infection: A study of 23 Cases Rheumatology, Centre Hospitalier Rene Dubos, Pontoise, France. ACR Abstract book. Abstract number: 2162; Hassan F, Khoury W, Daood R, et al. Rheumatic manifestations and sequela of acute parvovirus B19 infection in hospitalized adult population. Int J Rheum Dis. 2024 Nov; 27(11):e15409. doi:10.1111/1756-185X.15409; Mori Y, Yamashita H, Umeda Y, et al. Association of parvovirus B19 infection with acute glomerulonephritis in healthy adults: case report and review of the literature. Clin Nephrol. 2002 Jan;57(1):69-73. doi:10.5414/cnp57069; Hod T, Zandman-Goddard G, Lange vitz P, et al. Does parvovirus infection have a role in systemic lupus erythematosus? Immunol Res. 2017 Apr;65(2):447-453. doi:10.1007/s12026-017-8896-0; Нурбаева КС, Решетняк ТМ, Лила АМ. Нетоз в патогенезе антифосфолипидного синдрома и системной красной волчанки. Современная ревматология. 2021; 15(5):96-102. 10.14412/1996-7012-2021-5-96-102; Tzang BS, Chin HY, Tzang CC, et al. Parvovirus B19 Infection Is Associated with the Formation of Neutrophil Extracellular Traps and Thrombosis: A Possible Linkage of the VP1 Unique Region. Int J Mol Sci. 2024 Sep 13;25(18):9917. doi:10.3390/ijms25189917; Насонов ЕЛ, редактор. Российские клинические рекомендации. Ревматология. Москва: ГЭОТАР- Медиа; 2017. 182 c.; Rodriguez-Pla A, Stone JH. Vasculitis and systemic infections. Curr Opin Rheumatol. 2006 Jan;18(1):39-47. doi:10.1097/01.bor.0000197999.58073.2e; Hu X, Jia C, Wu J, et al. Towards the Antiviral Agents and Nanotechnology-Enabled Approaches Against Parvovirus B19. Front Cell Infect Microbiol. 2022 Jun 20;12: 916012. doi:10.3389/fcimb.2022.916012

Διαθεσιμότητα: https://mrj.ima-press.net/mrj/article/view/1749
https://doi.org/10.14412/1996-7012-2025-2-113-118

Тuberculous enterocolitis as a reflection of immunosuppressive conditions ; Туберкулезный энтероколит как «зеркало» иммуносупрессивных состояний

Συγγραφείς: M. N. Reshetnikov, S. A. Sterlikov, U. O. Gafarov, D. V. Plotkin, М. Н. Решетников, С. А. Стерликов, У. О. Гафаров, Д. В. Плоткин

Πηγή: HIV Infection and Immunosuppressive Disorders; Том 16, № 4 (2024); 90-98 ; ВИЧ-инфекция и иммуносупрессии; Том 16, № 4 (2024); 90-98 ; 2077-9828 ; 10.22328/2077-9828-2024-16-4

Θεματικοί όροι: сахарный диабет, intestinal tuberculosis, risk factors, HIV infection, drug immunosuppression, cirrhosis, diabetes mellitus, туберкулез кишечника, факторы риска, ВИЧ-инфекция, лекарственная иммуносупрессия, цирроз печени

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://hiv.bmoc-spb.ru/jour/article/view/967/618; Jha D.K., Pathiyil M.M., Sharma V. Evidence-based approach to diagnosis and management of abdominal tuberculosis // Indian J. Gastroenterol. 2023. Vol. 42, No. 1. Р. 17–31. doi: https://doi.org/10.1007/s12664-023-01343-x.; Решетников М.Н., Плоткин Д.В., Синицын М.В., Гафаров У.О., Беленцева О.В. Хирургические осложнения абдоминального туберкулеза у пациентов с различным иммунным статусом // Экспериментальная и клиническая гастроэнтерология. 2019. № 4. С. 46–53. doi: https://doi.org/10.31146/16828658-ecg-164-4-46–53.; Hayward S.E., Rustage K., Nellums L.B. et al. Extrapulmonary tuberculosis among migrants in Europe, 1995 to 2017 // Clin. Microbiol. Infect. 2021. Vol. 27, No. 9. Р. 1347.e1–1347.e7. doi: https://doi.org/10.1016/j.cmi.2020.12.006.; Fang Y., Zhou Q., Li L., Zhou Y., Sha W. Epidemiological characteristics of extrapulmonary tuberculosis patients with or without pulmonary tuberculosis // Epidemiol Infect. 2022. Vol. 150. Р. e158. doi: https://doi.org/10.1017/S0950268822001236.; Nath. P. Epidemiology of Gastrointestinal Tuberculosis // Sharma V. (eds.) Tuberculosis of the Gastrointestinal system. Singapore: Springer, 2022. https://doi.org/10.1007/978-981-16-9053-2_2.; Rolo M., González-Blanco B., Reyes C.A., Rosillo N., López-Roa P. Epidemiology and factors associated with Extra-pulmonary tuberculosis in a Low-prevalence area // J. Clin. Tuberc. Other Mycobact. Dis. 2023. Vol. 32. Р. 100377. doi: https://doi.org/10.1016/j.jctube.2023.100377.; Niu T., He F., Yang J., Ma C. et al. The epidemiological characteristics and infection risk factors for extrapulmonary tuberculosis in patients hospitalized with pulmonary tuberculosis infection in China from 2017 to 2021 // BMC Infect Dis. 2023. Vol. 23, No. 1. Р. 488. Published 2023 Sep 1. doi: https://doi.org/10.1186/s12879-023-08410-w.; Белиловский Е.М., Борисов С.Е. Организация эпидемиологического мониторинга туберкулеза в городе Москве // Проблемы социальной гигиены, здравоохранения и истории медицины. 2021. Т. 29, № S2. С. 1275–1280. doi: https://doi.org/10.32687/0869-866X-2021-29-s2-1275-1280.; Silva D.R., Muñoz-Torrico M., Duarte R. et al. Risk factors for tuberculosis: diabetes, smoking, alcohol use, and the use of other drugs // J. Bras. Pneumol. 2018. Vol. 44, No. 2. Р. 145–152. doi: https://doi.org/10.1590/s1806-37562017000000443.; Al-Zanbagi A.B., Shariff M.K. Gastrointestinal tuberculosis: A systematic review of epidemiology, presentation, diagnosis and treatment // Saudi J. Gastroenterol. 2021. Vol. 27, No. 5. Р. 261–274. doi: https://doi.org/10.4103/sjg.sjg_148_21.; Reichardt H.M., Tuckermann J.P., Göttlicher M. et al. Repression of inflammatory responses in the absence of DNA binding by the glucocorticoid receptor // EMBO J. 2001. Vol. 20, No. 24. Р. 7168–7173. doi: https://doi.org/10.1093/emboj/20.24.7168.; Schutz C., Davis A.G., Sossen B. et al. Corticosteroids as an adjunct to tuberculosis therapy // Expert. Rev. Respir. Med. 2018. Vol. 12, No. 10. Р. 881–891. doi: https://doi.org/10.1080/17476348.2018.1515628.; Jick S.S., Lieberman E.S., Rahman M.U., Choi H.K. Glucocorticoid use, other associated factors, and the risk of tuberculosis // Arthritis Rheum. 2006. Vol. 55, No. 1. Р. 19–26. doi: https://doi.org/10.1002/art.21705.; Machuca I., Vidal E., de la Torre-Cisneros J., Rivero-Román A. Tuberculosis in immunosuppressed patients. Tuberculosisen pacientes inmunodeprimidos // Enferm. Infec. Microbiol Clin (Engl Ed). 2018. Vol. 36, No. 6, pp. 366–374. doi: https://doi.org/10.1016/j.eimc.2017.10.009.; Razafindrazoto C.I., Randriamifidy N.H., Rakotomalala J.A. et al. Inappropriate prescription of corticosteroid therapy during inflammatory ileo-colitis revealing disseminated tuberculosis with digestive involvement: Two case reports // Clin. Case Rep. 2021. Vol. 9, No. 6. Р. e04215. doi: https://doi.org/10.1002/ccr3.4215.; Mezouar S., Diarra I., Roudier J., Desnues B., Mege J.L. Tumor Necrosis Factor-Alpha Antagonist Interferes With the Formation of Granulomatous Multinucleated Giant Cells: New Insights Into Mycobacterium tuberculosis Infection // Front Immunol. 2019. Vol. 10. Р. 1947. doi: https://doi.org/10.3389/fimmu.2019.01947.; Harris J., Keane J. How tumour necrosis factor blockers interfere with tuberculosis immunity // Clin. Exp. Immunol. 2010. Vol. 161, No. 1. Р. 1–9. doi: https://doi.org/10.1111/j.1365-2249.2010.04146.x.; Wallis R.S. Mathematical modeling of the cause of tuberculosis during tumor necrosis factor blockade // Arthritis Rheum. 2008. Vol. 58, No. 4. Р. 947–952. doi: https://doi.org/doi:10.1002/art.23285.; Katrak S.S., Li R., Reynolds S. et al. Association of Tumor Necrosis Factor Inhibitor Use with Diagnostic Features and Mortality of Tuberculosis in the United States, 2010–2017 // Open Forum Infect Dis. 2021. Vol. 9, No. 2. Р. ofab641. doi: https://doi.org/10.1093/ofid/ofab641.; Riestra S., de Francisco R., Arias-Guillén M. et al. Risk factors for tuberculosis in inflammatory bowel disease: anti-tumor necrosis factor and hospitalization // Rev. Esp. Enferm. Dig. 2016. Vol. 108, No. 9. Р. 541–549. doi: https://doi.org/10.17235/reed.2016.4440/2016.; Torres T., Chiricozzi A., Puig L., Lé A.M. et al. Treatment of Psoriasis Patients with Latent Tuberculosis Using IL-17 and IL-23 Inhibitors: A Retrospective, Multinational, Multicentre Study // Am. J. Clin. Dermatol. 2024. Vol. 25, No. 2. Р. 333–342. doi: https://doi.org/10.1007/s40257024-00845-4.; Ronacher K., Joosten S.A., van Crevel R. et al. Acquired immunodeficiencies and tuberculosis: focus on HIV/AIDS and diabetes mellitus // Immunol. Rev. 2015. Vol. 264, No. 1. Р. 121–137. doi: https://doi.org/10.1111/imr.12257.; Yanqiu X., Yang Y., Xiaoqing W., Zhixuan L., Kuan Z., Xin G., Bo Z., Jinyu W., Jing C., Yan M., Aiguo M. Impact of hyperglycemia on tuberculosis treatment outcomes: a cohort study // Sci Rep. 2024. Vol. 14, No. 1. Р. 13586. doi: https://doi.org/10.1038/s41598-024-64525-3.; Repine J.E., Clawson C.C., Goetz F.C. Bactericidal function of neutrophils from patients with acute bacterial infections and from diabetics // J. Infect Dis. 1980. Vol. 142, No. 6. Р. 869–875. doi: https://doi.org/10.1093/infdis/142.6.869.; Foe-Essomba J.R., Kenmoe S., Tchatchouang S. et al. Diabetes mellitus and tuberculosis, a systematic review and meta-analysis with sensitivity analysis for studies comparable for confounders // PLoS One. 2021. Vol. 16, No. 12. Р. e0261246. doi: https://doi.org/10.1371/journal.pone.0261246.; Restrepo B.I. Diabetes and Tuberculosis // Microbiol Spectr. 2016. Vol. 4. Р. 6.10.1128/microbiolspec.TNMI7-0023-2016. doi: https://doi.org/10.1128/microbiolspec.tnmi7-0023-2016.; Bell L.C.K., Noursadeghi M. Pathogenesis of HIV-1 and Mycobacterium tuberculosis co-infection // Nat. Rev. Microbiol. 2018. Vol. 16, No. 2. Р. 80–90. doi: https://doi.org/10.1038/nrmicro.2017.128.; Wong K., Nguyen J., Blair L. et al. Pathogenesis of Human Immunodeficiency Virus-Mycobacterium tuberculosis Co-Infection // J. Clin. Med. 2020. Vol. 9, No. 11. Р. 3575. doi: https://doi.org/10.3390/jcm9113575.; Gao J., Zheng P., Fu H. Prevalence of TB/HIV co-infection in countries except China: a systematic review and meta-analysis // PLoS One. 2013. Vol. 8, No. 5. Р. e64915. doi: https://doi.org/10.1371/journal.pone.0064915.; Monreal-Robles R., González-González J.A., Sordia-Ramírez J. et al. High mortality due to gastrointestinal TB in HIV and non-HIV patients // Int. J. Tuberc. Lung Dis. 2022. Vol. 26, No. 4. Р. 348–355. doi: https://doi.org/10.5588/ijtld.21.0446.

Διαθεσιμότητα: https://hiv.bmoc-spb.ru/jour/article/view/967
https://doi.org/10.22328/2077-9828-2024-16-4-90-98

Assessment of the adaptogenic properties of herbal tea based on pine needles and microstrobiles ; Оценка адаптогенных свойств фиточая на основе хвои и микростробилов сосен

Συγγραφείς: S. D. Zhamsaranova, V. G. Shiretorova, S. A. Erdyneeva, A. A. Tykheev, S. N. Lebedeva, С. Д. Жамсаранова, В. Г. Ширеторова, С. А. Эрдынеева, А. А. Тыхеев, С. Н. Лебедева

Συνεισφορές: The study was supported by the grant of the Russian Science Foundation No. 24-26-20042, https://rscf.ru/project/24-26-20042/, Исследование выполнено в соответствии с грантом Российского научного фонда № 24-26-20042, https://rscf.ru/project/24-26-20042/

Πηγή: Food systems; Vol 8, No 1 (2025); 124-133 ; Пищевые системы; Vol 8, No 1 (2025); 124-133 ; 2618-7272 ; 2618-9771 ; 10.21323/2618-9771-2025-8-1

Θεματικοί όροι: селезенка, immunosuppression, adaptogenic properties, histomorphology, thymus, spleen, иммуносупрессия, адаптогенные свойства, гистоморфология, тимус

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://www.fsjour.com/jour/article/view/714/382; Skevaki, C., Nadeau, K. C., Rothenberg, M. E., Alahmad, B., Mmbaga, B. T., Masenga, G. G. et al. (2024). Impact of climate change on immune responses and barrier defense. Journal of Allergy and Clinical Immunology, 153(5), 1194–1205. https://doi.org/10.1016/j.jaci.2024.01.016; Rio, P., Caldarelli, M., Gasbarrini, A., Gambassi, G., Cianci, R. (2024). The impact of climate change on immunity and gut microbiota in the development of disease. Diseases, 12(6), Article 118. https://doi.org/10.3390/diseases12060118; Adegboye, O. A., Alele, F. O., Castellanos, M. E., Pak, A., Emeto, T. I. (2023). Editorial: Environmental stressors, multi-hazards and their impact on health. Frontiers in Public Health? 11, Article 1231955. https://doi.org/10.3389/fpubh.2023.1231955; Veremchuk, L. V., Vitkina, T. I., Kondratyeva, E. V. (2024). Impact of technogenic air pollution factors on the immune system in respiratory diseases. Siberian Journal of Life Sciences and Agriculture, 16(2), 182–197. https://doi.org/10.12731/2658-6649-2024-16-2-723; Cantuaria, M. L., Brandt, J., Blanes-Vidal, V. (2023). Exposure to multiple environmental stressors, emotional and physical well-being, and self-rated health: An analysis of relationships using latent variable structural equation modelling. Environmental Research, 227, Article 115770. https://doi.org/10.1016/j.envres.2023.115770; Seiler, A., Fagundes, C. P., Christian, L. M. (2020). The impact of everyday stressors on the immune system and health. Chapter in a book: Stress challenges and immunity in space. Springer, Cham. https://doi.org/10.1007/978-3-030-16996-1_6; Shao, T., Verma, H. K., Pande, B., Costanzo, V., Ye, W., Cai, Y. et al. (2021). Physical activity and nutritional influence on immune function: An important strategy to improve immunity and health status. Frontiers in Physiology, 12, Article 751374. https://doi.org/10.3389/fphys.2021.751374; Alotiby, A. (2024). Immunology of stress: A review article. Journal of Clinical Medicine, 13(21), Article 6394. https://doi.org/10.3390/jcm13216394; Кучма, В. Р., Ткачук, Е. А., Глобенко, Н. Э. (2022). Проблемы питания современных школьников, включая детей с расстройствами психологического развития (обзор литературы). Гигиена и санитария, 101(11), 1372–1378.; Munteanu, C., Schwartz, B. (2022). The relationship between nutrition and the immune system. Frontiers in Nutrition, 9, Article 1082500. https://doi.org/10.3389/fnut.2022.1082500; Pandey, V. K., Tripathi, A., Srivastava, S., Pandey, S., Dar, A. H., Singh, R. et al. (2023). A systematic review on immunity functionalities and nutritional food recommendations to develop immunity against viral infection. Applied Food Research, 3(1), Article 100291. https://doi.org/10.1016/j.afres.2023.100291; Morales, F., Montserrat-de la Paz, S., Leon, M. J., Rivero-Pino, F. (2024). Effects of malnutrition on the immune system and infection and the role of nutritional strategies regarding improvements in children’s health status: A literature review. Nutrients, 16(1), Article 1. https://doi.org/10.3390/nu16010001; Olennikov, D. N., Nikolaev, V. M., Chirikova, N. K. (2021). Sagan Dalya tea, a new “old” probable adaptogenic drug: Metabolic characterization and bioactivity potentials of Rhododendron adamsii Leaves. Antioxidants, 10(6), Article 863. https://doi.org/10.3390/antiox10060863; Panossian, A. G., Efferth, T., Shikov, A. N., Pozharitskaya, O. N., Kuchta, K., Mukherjee, P. K. et al. (2021). Evolution of the adaptogenic concept from traditional use to medical systems: Pharmacology of stress- and aging-related diseases. Medicinal Research Reviews, 41(1), 630–703. https://doi.org/10.1002/med.21743; Tóth-Mészáros, A., Garmaa, G., Hegyi, P., Bánvölgyi, A., Fenyves, B., Fehérvári, P. et al. (2023). The effect of adaptogenic plants on stress: A systematic review and meta-analysis. Journal of Functional Foods, 108, Article 105695. https://doi.org/10.1016/j.jff.2023.105695; Молибога, Е.А., Сухостав, Е.В., Козлова, О.А., Зинич, А.В. (2022). Анализ рынка функционального питания: российский и международный аспект. Техника и технология пищевых производств, 52(4), 775–786.; Martazanova, L., Maslova, A., Ulikhanov, K., Khadaeva, D., Shemshedinova, A., Abdullayeva, A. M. et al. (2023). The study of the effect of drinks based on extracts of herbal adaptogens on the functional status of athletes during physical activity. Potravinarstvo Slovak Journal of Food Sciences, 17, 30–42. https://doi.org/10.5219/1804; Stephen, J., Manoharan, D., Radhakrishnan, M. (2023). Immune boosting functional components of natural foods and its health benefits. Food Production, Processing and Nutrition, 5, Article 61. https://doi.org/10.1186/s43014-023-00178-5; Vignesh, A., Amal, T. C., Sarvalingam, A., Vasanth, K. (2024). A review on the influence of nutraceuticals and functional foods on health. Food Chemistry Advances, 5, Article 100749. https://doi.org/10.1016/j.focha.2024.100749; Baruah, C., Yepthomi, Y. (2021). Development of herbal tea using Moringa olifera, Elsholtzia communis and Alpinia galanga: A sensory acceptance study. International Journal of Advanced Research, 9, 446–453. https://doi.org/10.21474/IJAR01/13144; Клинцевич, В. Н., Бушкевич, Н. В., Флюрик, Е. А. (2021). Фиточай: состав, свойства, производство. Труды БГТУ. Серия 2: Химические технологии, биотехнология, геоэкология, 1(241), 5–23. [Klintsevich V. N., Bushkevich N. V., Flyurik Е. А. (2021). Phytotea: Composition, properties, production (review). Proceedings of BSTU, issue 2, Chemical Engineering, Biotechnologies, Geoecology, 1(241), 5–23. (In Russian) https://doi.org/10.52065/2520-2669-2021-241-1-5-23; Ульянова, Е. В., Михайлова, И. Ю. (2024). Современные технологии в производстве напитков на основе чая. Пиво и напитки, 1, 23–27. [Ulyanova, E. V., Mikhailova, I. Y. (2024). Modern technologies in the production of tea-based drinks. Beer and Beverages, 1, 23–27. (In Russian) https://doi.org/10.52653/PIN.2024.01.09; Poswal, F. S., Russell, G., Mackonochie, M., MacLennan, E., Adukwu, E. C., Rolfe, V. (2019). Herbal teas and their health benefits: A scoping review. Plant Foods for Human Nutrition, 74(3), 266–276. https://doi.org/10.1007/s11130-019-00750-w; Kuo, P.-C., Li, Y.-C., Kusuma, A. M., Tzen, J. T. C., Hwang, T.-L., Ye, G.-H. et al. (2021). Anti-inflammatory principles from the needles of Pinus taiwanensis Hayata and in silico studies of their potential anti-aging effects. Antioxidants, 10(4), Article 598. https://doi.org/10.3390/antiox10040598; Dziedziński, M., Kobus-Cisowska, J., Stachowiak, B. (2021). Pinus species as prospective reserves of bioactive compounds with potential use in functional food — current state of knowledge. Plants, 10(7), Article 1306. https://doi.org/10.3390/plants10071306; Патент РФ № 2826318. Фиточай, обладающий адаптогенными свойствами. Ширеторова В. Г., Эрдынеева С. А., Жамсаранова С. Д., Лебедева С. Н., Хантургаев, А. Г., Котова, Т. И. и др. Опубл. 09.09.2024. Бюл. № 25.; Nikolic, M. V., Jakovljevic, V. L., Bradic, J. V., Tomovic, M. T., Petrovic, B. P., Petrovic, A. M. (2022). Korean and Siberian Pine: Review of chemical composition and pharmacological profile. Acta Poloniae Pharmaceutica, 79(6), 785–797. https://doi.org/10.32383/appdr/161040; Cheng, Y., Wang, Z., Quan, W., Xue, C., Qu, T., Wang, T. et al. (2023). Pine pollen: A review of its chemical composition, health effects, processing, and food applications. Trends in Food Science and Technology, 138, 599–614. https://doi.org/10.1016/j.tifs.2023.07.004; Эрдынеева, С. А., Ширеторова, В. Г., Раднаева, Л. Д. (2022). Фармакогностическое исследование микростробилов Pinus sylvestris L. Вопросы биологической, медицинской и фармацевтической химии, 25(9), 34–39.; Ширеторова, В. Г., Эрдынеева, С. А., Раднаева, Л. Д. (2022). Элементный состав микростробилов и почек Рinus sylvestris, Р. sibirica и P. pumila. Известия вузов. Прикладная химия и биотехнология, 12(4), 605–611.; Chen, Y., Cai, Y., Wang, K., Wang, Y. (2023). Bioactive compounds in sea buckthorn and their efficacy in preventing and treating metabolic syndrome. Foods, 12, Article 1985. https://doi.org/10.3390/foods12101985; Todorova, V., Ivanov, K., Delattre, C., Nalbantova, V., Karcheva-Bahchevanska, D., Ivanova, S. (2021). Plant adaptogens — history and future perspectives. Nutrients, 13(8), Article 2861. https://doi.org/10.3390/nu13082861; Esmaealzadeh, N., Iranpanah, A., Sarris, J., Rahimi, R. (2022). A literature review of the studies concerning selected plant-derived adaptogens and their general function in body with a focus on animal studies. Phytomedicine, 105, Article 154354. https://doi.org/10.1016/j.phymed.2022.154354; Gębalski, J., Małkowska, M., Graczyk, F., Słomka, A., Piskorska, E., Gawenda-Kempczyńska, D. et al. (2023). Phenolic compounds and antioxidant and antienzymatic activities of selected adaptogenic plants from South America, Asia, and Africa. Molecules, 28(16), Article 6004. https://doi.org/10.3390/molecules28166004; Oh, Y. J., Kim, Y.-S., Kim, J. W., Kim, D. W. (2023). Antibacterial and antiviral properties of Pinus densiflora essential oil. Foods, 12(23), Article 4279. https://doi.org/10.3390/foods12234279; Susa, F., Pisano, R. (2023). Advances in ascorbic acid (vitamin c) manufacturing: Green extraction techniques from natural sources. Processes, 11(11), Article 3167. https://doi.org/10.3390/pr11113167; Bolat, E., Sarıtaş, S., Duman, H., Eker, F., Akdaşçi, E., Karav, S. et al. (2024). Polyphenols: Secondary metabolites with a biological impression. Nutrients, 16(15), Article 2550. https://doi.org/10.3390/nu16152550; Руководство по проведению доклинических исследований лекарственных средств. Часть 1. (2012). М.: Гриф и К, 2012. [Guidance on conduction of pre-clinical trials of medical products. Part 1. (2012). Moscow: Grif and K, 2012. (In Russian); Буслович, С. Ю., Котеленец, А. И., Фридлянд, Р. М. (1989). Интегральный метод оценки поведения белых крыс в открытом поле. Журнал высшей нервной деятельности, 39(1), 168–170.; Коржевский, Д. Э., Гиляров, А. В. (2010). Основы гистологической техники. Санкт-Петербург: СпецЛит, 2010.; Трушина, Э. Н., Мустафина, О. К., Аксенов, И. В., Красуцкий, А. Г., Никитюк, Д. Б., Тутельян, В. А. (2023). Биологически активные вещества — антоцианы как фактор алиментарного восстановления адаптационного потенциала организма после интенсивной физической нагрузки в эксперименте: оценка иммунологических и гематологических показателей адаптации. Вопросы питания, 92(1), 6–15. [Trushina, E. N., Mustafina, O. K., Aksenov, I. V.; Корнякова, В. В., Бадтиева, В. А., Баландин, М. Ю. (2020). Использование биологически активных добавок с антиоксидантными свойствами при физическом утомлении и для повышения работоспособности в спорте. Вопросы питания, 89(3), 86–96. [Kornyakova, V. V., Badtieva, V. A., Balandin, M. Yu. (2020).; Пальчикова, Н. А., Селятицкая, В. Г., Воевода, М. И. (2024). Адаптогенные свойства манжетки обыкновенной (Alchemilla vulgaris L.) (обзор литературы). Сибирский научный медицинский журнал, 44(3), 16–28.; Канделинская, О. Л., Грищенко, Е. Р., Горецкий, Д. В., Янцевич, А. В., Огурцова, С. Э., Тумар, Е. М. и др. (2024). Эффективность применения комплекса флавоноидов сои, люцерны и клевера для повышения работоспособности крыс при экстремальных физических нагрузках. Прикладная спортивная наука, 1(19), 54–64.; Пантюхин, А. В., Крикова, А. В., Бычкова, Т.К., Пантюхина, К. И. (2021). Разработка и исследование тонизирующего напитка на основе растительных экстрактов. Международный научно-исследовательский журнал, 9–2(111), 97–100.; Лупанова, И. А., Мизина, П. Г., Ферубко, Е. В., Мясникова, С. Б. (2023). Изучение фармакологической активности экстрактов из суспензионных культур женьшеня обыкновенного и родиолы розовой. Патологическая физиология и экспериментальная терапия, 67(2), 77–85.; Дзампаева, Ж. В., Датиева, Ф. С., Такоева, Е. А., Нартикоева, М. И. (2024). Профилактика и коррекция нарушений поведенческой активности крыс с метаболическим синдромом комплексным фитоадаптогеном. Acta Biomedica Scientifica, 9(1), 233–240.; Цыренова, Д. З., Гуляев, С. М., Хобракова, В. Б. (2017). Влияние экстракта Phlomoides tuberosa (L.) Moench на структуру селезенки мышей при иммуносупрессии. Обзоры по клинической фармакологии и лекарственной терапии, 15 (1), 53–57.; Хобракова, В. Б., Разуваева, Я. Г., Будаева, Е. Р. (2020). Коррекция экстрактом Gentiana algida Pall структурных изменений в тимусе при экспериментальной азатиоприновой иммуносупрессии. Антибиотики и химиотерапия, 65(7–8), 18–22.; Рябоконева, Л. А., Сергеева, И. Ю., Аншуков, А. В., Пермякова, Л. В. (2024). Фитоадаптогены как функциональные ингредиенты для пищевых систем (обзор). АПК России, 31(1), 105–118.; Бочарова, О. А., Карпова, Р. В., Бочаров, Е. В., Вершинская, А. А., Барышникова, М. А., Казеев, И. В. и др. (2020). Изыскание фитоадаптогенов и возможности использования фитокомпозиций. Российский биотерапевтический журнал, 19(4), 35–44.; Новиков, В. С., Шустов, Е. Б. Оковитый, С. В. (2021). Методология исследования фундаментальных свойств адаптации и адаптогенной активности биологически активных веществ. Вестник образования и развития науки Российской академии естественных наук, 25(2), 99–114.; Panossian, A. G., Efferth, T., Shikov, A. N., Pozharitskaya, O. N., Kuchta, K., Mukherjee, P. K. et al. (2021). Evolution of the adaptogenic concept from traditional use to medical systems: Pharmacology of stress-and aging-relateddiseases. Medicinal Research Reviews, 41(1), 630–703. https://doi.org/10.1002/med.21743; https://www.fsjour.com/jour/article/view/714

Διαθεσιμότητα: https://www.fsjour.com/jour/article/view/714
https://doi.org/10.21323/2618-9771-2025-8-1-124-133

Functional indicators of peripheral arterial stiffness in solid organ recipients (literature review) ; Функциональные показатели жесткости стенки периферических артерий у реципиентов солидных органов (обзор литературы)

Συγγραφείς: M. M. Lysenko, I. Yu. Tyunyaeva, A. O. Shevchenko, М. М. Лысенко, И. Ю. Тюняева, А. О. Шевченко

Πηγή: Russian Journal of Transplantology and Artificial Organs; Том 26, № 3 (2024); 117-123 ; Вестник трансплантологии и искусственных органов; Том 26, № 3 (2024); 117-123 ; 1995-1191

Θεματικοί όροι: реципиенты, arterial stiffness, immunosuppression, recipients, ригидность стенки артерии, иммуносупрессия

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://journal.transpl.ru/vtio/article/view/1823/1671; https://journal.transpl.ru/vtio/article/downloadSuppFile/1823/1729; https://journal.transpl.ru/vtio/article/downloadSuppFile/1823/1733; https://journal.transpl.ru/vtio/article/downloadSuppFile/1823/1735; Mitchell GF, Parise H, Benjamin EJ, Larson MG, Keyes MJ, Vita JA et al. Changes in arterial stiffness and wave reflection with advancing age in healthy men and women: the Framingham Heart Study. Hypertension. 2004; 43 (6): 1239–1245.; Giudici A, Li Y, Yasmin, Cleary S, Connolly K, McEniery C et al. Time-course of the human thoracic aorta ageing process assessed using uniaxial mechanical testing and constitutive modelling. J Mech Behav Biomed Mater. 2022; 134: 105339.; Belhadjer Z, Ladouceur M, Soulat G, Legendre A, Gencer U, Dietenbeck T et al. Increased aortic pressures and pulsatile afterload components promote concentric left ventricular remodeling in adults with transposition of the great arteries and arterial switch operation. Int J Cardiol. 2024; 15 (405): 131969.; Mahmud A, Feely J. Arterial stiffness is related to systemic inflammation in essential hypertension. Hypertension. 2005; 46 (5): 1118–1122.; Elçioğlu BC, Baydar O, Helvacı F, Karataş C, Aslan G, Kılıç A et al. Evaluation of pulmonary arterial stiffness and comparison with right ventricular functions in patients with cirrhosis preparing for liver transplantation. J Clin Ultrasound. 2022; 50 (6): 749–755.; Alcici-Moreira AM, Vitarelli MO, Velloso TA, CarvalhoRibeiro IA, Dario DM, Polese JC et al. Aortic pulse wave analysis and functional capacity of heart transplantation candidates: a pilot study. Sci Rep. 2024; 14 (1): 10504.; Delahousse M, Chaignon M, Mesnard L, Boutouyrie P, Safar ME, Lebret T et al. Aortic stiffness of kidney transplant recipients correlates with donor age. J Am Soc Nephrol. 2008; 19 (4): 798–805.; Bahous SA, Khairallah M, Al Danaf J, Halaby R, Korjian S, Daaboul Y et al. Renal function decline in recipients and donors of kidney grafts: role of aortic stiffness. Am J Nephrol. 2015; 41 (1): 57–65.; Birdwell KA, Jaffe G, Bian A, Wu P, Ikizler TA. Assessment of arterial stiffness using pulse wave velocity in tacrolimus users the first year post kidney transplantation: a prospective cohort study. BMC Nephrol. 2015; 16: 93.; Strózecki P, Adamowicz A, Kozłowski M, Włodarczyk Z, Manitius J. Long graft cold ischemia time is associated with increased arterial stiffness in renal transplant recipients. Transplant Proc. 2009; 41 (9): 3580–3584.; Salib M, Girerd N, Simon A, Kearney-Schwartz A, Duarte K, Leroy C et al. Levels of Procollagen Type I CTerminal Pro-Peptide and Galectin-3, Arterial Stiffness Measured By Pulse Wave Velocity, and Cardiovascular Morbidity and Mortality in 44 Patients 2 Years After Kidney Transplantation. Ann Transplant. 2023; 28: e938137.; Van Laecke S, Maréchal C, Verbeke F, Peeters P, van Biesen W, Devuyst O et al. The relation between hypomagnesaemia and vascular stiffness in renal transplant recipients. Nephrol Dial Transplant. 2011; 26 (7): 2362– 2369.; Шевченко АО, Тюняева ИЮ, Насырова АА, Можейко НП, Готье СВ. Динамика показателя ригидности стенки общей сонной артерии на фоне лечения отторжения трансплантированного сердца. Вестник трансплантологии и искусственных органов. 2015; 17 (3): 8–13. doi:10.15825/1995-1191-2015-3-8-13.; Martínez-Castelao A, Sarrias X, Bestard O, Gil-Vernet S, Serón D, Cruzado JM et al. Arterial elasticity measurement in renal transplant patients under anticalcineurin immunosuppression. Transplant Proc. 2005; 37 (9): 3788–3790.; Laurent S, Cockcroft J, Van Bortel L, Boutouyrie P, Giannattasio C, Hayoz D et al. European Network for Noninvasive Investigation of Large Arteries. Expert consensus document on arterial stiffness: methodological issues and clinical applications. Eur Heart J. 2006; 27 (21): 2588–2605.; O’Brien E, Stergiou G, Palatini P, Asmar R, Ioannidis JP, Kollias A et al. Validation protocols for blood pressure measuring devices: the impact of the European Society of Hypertension International Protocol and the development of a Universal Standard. Blood Press Monit. 2019; 24 (4): 163–166.; Giudici A, Wilkinson IB, Khir AW. Review of the Techniques Used for Investigating the Role Elastin and Collagen Play in Arterial Wall Mechanics. IEEE Rev Biomed Eng. 2021; 14: 256–269.; Salvi P, Lio G, Labat C, Ricci E, Pannier B, Benetos A. Validation of a new non-invasive portable tonometer for determining arterial pressure wave and pulse wave velocity: the PulsePen device. J Hypertens. 2004; 22 (12): 2285–2293.; Mitchell GF, Hwang SJ, Vasan RS, Larson MG, Pencina MJ, Hamburg NM et al. Arterial stiffness and cardiovascular events: the Framingham Heart Study. Circulation. 2010; 121 (4): 505–511.; Segers P, Rietzschel ER, De Buyzere ML, Vermeersch SJ, De Bacquer D, Van Bortel LM et al. Asklepios investigators. Noninvasive (input) impedance, pulse wave velocity, and wave reflection in healthy middle-aged men and women. Hypertension. 2007; 49 (6): 1248–1255.; Van Bortel LM, Laurent S, Boutouyrie P, Chowienczyk P, Cruickshank JK, De Backer T et al. European Society of Hypertension Working Group on Vascular Structure and Function; European Network for Noninvasive Investigation of Large Arteries. Expert consensus document on the measurement of aortic stiffness in daily practice using carotid-femoral pulse wave velocity. J Hypertens. 2012; 30 (3): 445–448.; Elosua R, Toloba A, Arnold R, De Groot E, MartíLluch R, Degano IR et al. Carotid artery stiffness and risk of vascular events and mortality: the REGICOR study. Rev Esp Cardiol (Engl Ed). 2024; 77 (4): 314–323.; Park HW, Ozcan I, Toya T, Ahmad A, Kanaji Y, Kushwaha SS et al. Invasive aortic pulse pressure is linked to cardiac allograft vasculopathy after heart transplantation. Int J Cardiol. 2023; 370: 167–174.; Cameron K, El Hassan M, Sabbagh R, Freed DH, Nobes DS. Experimental investigation into the effect of compliance of a mock aorta on cardiac performance. PLoS One. 2020; 15 (10): e0239604.; Petrova M, Li Y, Gholipour A, Kiat H, McLachlan CS. The influence of aortic stiffness on carotid stiffness: computational simulations using a human aorta carotid model. R Soc Open Sci. 2024; 11 (3): 230264.; Laugesen E, Olesen KKW, Peters CD, Buus NH, Maeng M, Botker HE, Poulsen PL. Estimated pulse wave velocity is associated with all-cause mortality during 8.5 years follow-up in patients undergoing elective coronary angiography. J Am Heart Assoc. 2022; 11 (10): e025173.; Mancia G, De Backer G, Dominiczak A, Cifkova R, Fagard R, Germano G et al. Management of Arterial Hypertension of the European Society of Hypertension; European Society of Cardiology. 2007 Guidelines for the Management of Arterial Hypertension: The Task Force for the Management of Arterial Hypertension of the European Society of Hypertension (ESH) and of the European Society of Cardiology (ESC). J Hypertens. 2007; 25 (6): 1105–1187.; Sharkey EJ, Di Maria C, Klinge A, Murray A, Zheng D, O’Sullivan J, Allen J. Innovative multi-site photoplethysmography measurement and analysis demonstrating increased arterial stiffness in paediatric heart transplant recipients. Physiol Meas. 2018; 39 (7): 074007.; Spronck B, Terentes-Printzios D, Avolio AP, Boutouyrie P, Guala A, Jerončić A et al. 2024 Recommendations for Validation of Noninvasive Arterial Pulse Wave Velocity Measurement Devices. Hypertension. 2024; 81 (1): 183–192.; Katsuda SI, Hazama A. Estimation of Central Systolic Blood Pressure from Peripheral Pressure Waves using a Novel Second Systolic Pressure-Based Method in Normal and Heritable Hypercholesterolemic Rabbits. J Atheroscler Thromb. 2023; 30 (9): 1132–1141.; Nichols WW, O’Rourke MF, Hartley C. McDonald’s blood flow in arteries: theoretic, experimental, and clinical principles. 7-th ed. London: Arnold; New York: Oxford University Press, 2022: 320–384.; Ha E, Mun KC. Effects of cyclosporine on metalloproteinase in endothelial cells. Transplant Proc. 2012; 44 (4): 991–992.; Waller JR, Brook NR, Bicknell GR, Nicholson ML. Differential effects of modern immunosuppressive agents on the development of intimal hyperplasia. Transpl Int. 2004; 17 (1): 9–14.; Bianchi R, Rodella L, Rezzani R. Cyclosporine A upregulates expression of matrix metalloproteinase 2 and vascular endothelial growth factor in rat heart. Int Immunopharmacol. 2003; 3 (3): 427–433.; Mitchell IA, McKay H, Van Leuvan C, Berry R, McCutcheon C, Avard B et al. A prospective controlled trial of the effect of a multi-faceted intervention on early recognition and intervention in deteriorating hospital patients. Resuscitation. 2010; 81 (6): 658–666.; Verbeke F, Van Biesen W, Honkanen E, Wikström B, Jensen PB, Krzesinski JM et al. CORD Study Investigators. Prognostic value of aortic stiffness and calcification for cardiovascular events and mortality in dialysis patients: outcome of the calcification outcome in renal disease (CORD) study. Clin J Am Soc Nephrol. 2011; 6 (1): 153– 159.; Dahle DO, Eide IA, Åsberg A, Leivestad T, Holdaas H, Jenssen TG et al. Aortic Stiffness in a Mortality Risk Calculator for Kidney Transplant Recipients. Transplantation. 2015; 99 (8): 1730–1737.; Heleniak Z, Illersperger S, Dębska-Ślizień A, Budde K, Halleck F. Kidney graft function and arterial stiffness in renal transplant recipients. Acta Biochim Pol. 2021; 68 (2): 331–339.; Olczyk P, Małyszczak A, Gołębiowski T, Letachowicz K, Szymczak A, Mazanowska O et al. Arterial Stiffness Assessed by Oscillometric Method in Kidney Transplant, Predialysis, and Dialysis Patients. Transplant Proc. 2020; 52 (8): 2337–2340.; Coppola JA, Gupta D, Lopez-Colon D, DeGroff C, Vyas HV. Elevated Aortic Stiffness after Pediatric Heart Transplantation. Pediatr Cardiol. 2023; 10.1007/s00246-023-03245-3.; Zoungas S, Kerr PG, Chadban S, Muske C, Ristevski S, Atkins RC et al. Arterial function after successful renal transplantation. Kidney Int. 2004; 65 (5): 1882–1889.; Covic A, Gusbeth-Tatomir P, Goldsmith DJ. Arterial stiffness in renal patients: an update. Am J Kidney Dis. 2005; 45 (6): 965–977.; Ferro CJ, Savage T, Pinder SJ, Tomson CR. Central aortic pressure augmentation in stable renal transplant recipients. Kidney Int. 2002; 62 (1): 166–171.; Strózecki P, Adamowicz A, Włodarczyk Z, Manitius J. The influence of calcineurin inhibitors on pulse wave velocity in renal transplant recipients. Ren Fail. 2007; 29 (6): 679–684.; Strózecki P, Adamowicz A, Włodarczyk Z, Manitius J. Factors associated with increased arterial stiffness in renal transplant recipients. Med Sci Monit. 2010; 16 (6): CR301-6.; Gelens MA, Christiaans MH, v Hooff JP. Do blood pressure and arterial wall properties change after conversion from cyclosporine to tacrolimus? Transplant Proc. 2005; 37 (4): 1900–1901.; Seckinger J, Sommerer C, Hinkel UP, Hoffmann O, Zeier M, Schwenger V. Switch of immunosuppression from cyclosporine A to everolimus: impact on pulse wave velocity in stable de-novo renal allograft recipients. J Hypertens. 2008; 26 (11): 2213–2219.; Gungor O, Kircelli F, Carrero JJ, Hur E, Demirci MS, Asci G, Toz H. The effect of immunosuppressive treatment on arterial stiffness and matrix Gla protein levels in renal transplant recipients. Clin Nephrol. 2011; 75 (6): 491–496.; Cruzado JM, Pascual J, Sánchez-Fructuoso A, Serón D, Díaz JM, Rengel M et al. Controlled randomized study comparing the cardiovascular profile of everolimus with tacrolimus in renal transplantation. Transpl Int. 2016; 29 (12): 1317–1328.; Holdaas H, de Fijter JW, Cruzado JM, Massari P, Nashan B, Kanellis J et al. Cardiovascular Parameters to 2 years After Kidney Transplantation Following Early Switch to Everolimus Without Calcineurin Inhibitor Therapy: An Analysis of the Randomized ELEVATE Study. Transplantation. 2017; 101 (10): 2612–2620.; McEniery CM, Yasmin, Hall IR, Qasem A, Wilkinson IB, Cockcroft JR; ACCT Investigators. Normal vascular aging: differential effects on wave reflection and aortic pulse wave velocity: the Anglo-Cardiff Collaborative Trial (ACCT). J Am Coll Cardiol. 2005; 46 (9): 1753– 1760.; AlGhatrif M, Morrell CH, Becker LC, Chantler PD, Najjar SS, Ferrucci L et al. Longitudinal uncoupling of the heart and arteries with aging in a community-dwelling population. Geroscience. 2021; 43 (2): 551–561.; Cohen JB, Mitchell GF, Gill D, Burgess S, Rahman M, Hanff TC et al. Arterial Stiffness and Diabetes Risk in Framingham Heart Study and UK Biobank. Circ Res. 2022; 131 (6): 545–554.; Boutouyrie P, Chowienczyk P, Humphrey JD, Mitchell GF. Arterial Stiffness and Cardiovascular Risk in Hypertension. Circ Res. 2021; 128 (7): 864–886.; Xuereb RA, Magri CJ, Xuereb RG. Arterial Stiffness and its Impact on Cardiovascular Health. Curr Cardiol Rep. 2023; 25 (10): 1337–1349.; Regnault V, Lacolley P, Laurent S. Arterial Stiffness: From Basic Primers to Integrative Physiology. Annu Rev Physiol. 2024; 86: 99–121.; Banegas JR, Townsend RR. Arterial stiffness and reference values. Rev Esp Cardiol (Engl Ed). 2020; 73 (1): 11–13.; Oliveira AC, Cunha PMGM, Vitorino PVO, Souza ALL, Deus GD, Feitosa A et al. Vascular Aging and Arterial Stiffness. Arq Bras Cardiol. 2022; 119 (4): 604–615.; Alidadi M, Montecucco F, Jamialahmadi T, Al-Rasadi K, Johnston TP, Sahebkar A. Beneficial Effect of Statin Therapy on Arterial Stiffness. Biomed Res Int. 2021; 2021: 5548310.; Maruhashi T, Higashi Y. Is carotid arterial stiffness a therapeutic target of statin therapy? Hypertens Res. 2023; 46 (3): 768–770.; Heleniak Z, Illersperger S, Brakemeier S, Bach P, Dębska-Ślizień A, Budde K, Halleck F. The renin-angiotensin-aldosterone system blockade and arterial stiffness in renal transplant recipients – a cross-sectional prospective observational clinical study. Acta Biochim Pol. 2020; 67 (4): 613–622.; Lees JS, Mangion K, Rutherford E, Witham MD, Woodward R, Roditi G et al. Vitamin K for kidney transplant organ recipients: investigating vessel stiffness (ViKTORIES): study rationale and protocol of a randomised controlled trial. Open Heart. 2020; 7 (2): e001070.; https://journal.transpl.ru/vtio/article/view/1823

Διαθεσιμότητα: https://journal.transpl.ru/vtio/article/view/1823
https://doi.org/10.15825/1995-1191-2024-3-117-123

Immune correction in patients with sepsis (literature review) ; Иммунная коррекция у пациентов с сепсисом (обзор литературы)

Συγγραφείς: A. V. Stepanov, K. G. Shapovalov, А. В. Степанов, К. Г Шаповалов

Πηγή: Messenger of ANESTHESIOLOGY AND RESUSCITATION; Том 21, № 2 (2024); 103-111 ; Вестник анестезиологии и реаниматологии; Том 21, № 2 (2024); 103-111 ; 2541-8653 ; 2078-5658

Θεματικοί όροι: ингибиторы иммунных контрольных точек, immunotherapy, cytokine storm, immunosuppression, cytokines, immune checkpoint inhibitors, иммунотерапия, цитокиновый шторм, иммуносупрессия, цитокины

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://www.vair-journal.com/jour/article/view/972/711; Петрова М. В., Бутров А. В., Кулабухов В. В. и др. Аспекты формирования энцефалопатии и миокардиопатии при сепсисе // Вестник анестезиологии и реаниматологии. – 2023. – Т. 20, № 5. – С. 84‒91. DOI:10.24884/2078-5658-2023-20-5-84-91.; Bailly C., Thuru X., Goossens L. et al. Soluble TIM-3 as a biomarker of progression and therapeutic response in cancers and other of human diseases // Biochem. Pharmacol. – 2023. ‒ № 209. ‒ P. 115445. DOI:10.1016/j.bcp.2023.115445.; Berlot G., Zanchi S., Moro E. et al. The role of the intravenous IgA and IgM-enriched immunoglobulin preparation in the treatment of sepsis and septic shock // J. Clin. Med. – 2023. ‒ № 12. – P. 4614‒4645. DOI:10.3390/jcm12144645; Cai J., Zhang Z., Li C. et al. Bursal-derived BP7 induces the mirna molecular basis of chicken macrophages and promotes the differentiation of b cells // Vaccines (Basel). – 2022. ‒ Vol. 18, № 10. ‒ P. 1911‒1960. DOI:10.3390/vaccines10111960.; Cavaillon J. M. During sepsis and COVID-19, the pro-inflammatory and anti-inflammatory responses are concomitant // Clin. Rev. Allergy Immunol. – 2023. ‒ Vol. 65, № 2. ‒ P. 183‒187. DOI:10.1007/s12016-023-08965-1.; Chen Y., Dong P., Zhang X. Research advance on the role of pro-inflammatory cytokines in sepsis // Zhonghua Wei Zhong Bing Ji Jiu Yi Xue. ‒ 2023. ‒ Vol. 35, № 2. ‒ P. 212‒216. DOI:10.3760/cma.j.cn121430-20220919-00846.; Daix T., Mathonnet A., Brakenridge S. et al. Intravenously administered interleukin-7 to reverse lymphopenia in patients with septic shock: a double-blind, randomized, placebo-controlled trial // Ann Intensive Care. – 2023. ‒ Vol. 12, № 13. ‒ P. 1‒17. DOI:10.1186/s13613-023-01109-w.; Dutta P., Bishayi B. IL-10 in combination with IL-12 and TNF-α attenuates CXCL8/CXCR1 axis in peritoneal macrophages of mice infected with Staphylococcus aureus through the TNFR1-IL-1R-NF-κB pathway // Int. Immunopharmacol. – 2023. ‒ № 120. ‒ P. 110297. DOI:10.1016/j.intimp.2023.110297.; Ellis-Connell A. L., Balgeman A. J., Harwood O. E. et al. Control of simian immunodeficiency virus infection in prophylactically vaccinated, antiretroviral treatment-naive macaques is required for the most efficacious CD8 T Cell response during treatment with the interleukin-15 superagonist N-803 // J. Virol. – 2022. ‒ Vol. 96, № 20. ‒ P. e0118522. DOI:10.1128/jvi.01185-22.; Fu X., Liu Z., Wang Y. advances in the study of immunosupressive mechanisms in sepsis // J. Inflamm. Res. – 2023. – Vol. 8, № 16. – P. 3967‒3981. DOI:10.2147/JIR.S426007.; Gharamti A. A., Samara O., Monzon A. et al. Proinflammatory cytokines levels in sepsis and healthy Volunteers, and tumor necrosis factor-alpha associated sepsis mortality: A systematic review and meta-analysis // Cytokine. – 2022. – № 158. – P. 156006. DOI:10.1016/j.cyto.2022.156006.; Giamarellos-Bourboulis E. J., Dimopoulos G., Flohé S. et al. The European shoch society meets the immunosep consortium for personalizet sepsis treatment // Shock. – 2023. – Vol. 59, № 1. – P. 21‒25. DOI:10.1097/SHK.0000000000001955.; Gou X., Xu W., Liu Y. et al. IL-6 prevents lung macrophage death and lung inflammation injury by inhibiting GSDME- and GSDMD-mediated pyroptosis during pneumococcal pneumosepsis // Microbiol. Spectr. – 2022. – Vol. 10, № 2. – P. e0204921. DOI:10.1128/spectrum.02049-21.; Haak D. A. C., Otten L. S., Koenen H. J. P. M. et al. Evidence-based rationale for low dose niVolumab in critically ill patients with sepsis-induced immunosuPression // Clin. Transl. Sci. – 2023. – Vol. 16, № 6. – P. 978‒986. DOI:10.1111/cts.13503.; Hong T., Li S., Guo X. et al. IL-13 derived type 2 innate lymphocytes ameliorates cardiomyocyte apoptosis through STAT3 signaling pathway // Front. Cell Dev. Biol. – 2021. – Vol. 20, № 9. – P. 742662. DOI:10.3389/fcell.2021.742662.; Ibrahim R., Saleh K., Chahine C. et al. LAG-3 Inhibitors: Novel Immune Checkpoint Inhibitors Changing the Landscape of Immunotherapy // Biomedicines. – 2023. – Vol. 11, № 7. – P. 1878. DOI:10.3390/biomedicines11071878.; Joshi I., Carney W. P., Rock E. P. Utility of monocyte HLA-DR and rationale for therapeutic GM-CSF in sepsis immunoparalysis // Front Immunol. – 2023. – Vol. 7, № 14. – P. 1130214. DOI:10.3389/fimmu.2023.1130214.; Kim G. R., Choi J. M. Current understanding of cytotoxic T lymphocyte antigen-4 (CTLA-4) signaling in T-cell biology and disease therapyhttps://pubmed. ncbi.nlm.nih.gov/35950451/ // Mol. Cells. – 2022. – Vol. 45, № 8. – P. 513‒521. DOI:10.14348/molcells.2022.2056.; Kotsaki A., Pickkers P., Bauer M. et al. ImmunoSep (Personalised Immunotherapy in Sepsis) international double-blind, double-dummy, placebo-controlled randomised clinical trial: study protocol // BMJ Open. – 2022. – Vol. 12, № 12. – P. e067251. DOI:10.1136/bmjopen-2022-067251.; Lange A., Cajander S., Magnuson A. et al. Sustained elevation of soluble B- and T- lymphocyte attenuator predicts long-term mortality in patients with bacteremia and sepsis // PLoS One. – 2022. – Vol. 17, № 3. – P. e0265818. DOI:10.1371/journal.pone.0265818.; Leonard W. J., Lin J. X. Strategies to therapeutically modulate cytokine action // Nat. Rev. Drug. Discov. – 2023. – Vol. 22, № 10. – P. 827‒854. DOI:10.1038/s41573-023-00746-x.; Leśnik P., Janc J., Mierzchala-Pasierb M. et al. Interleukin-7 and interleukin-15 as prognostic biomarkers in sepsis and septic shock: Correlation with inflammatory markers and mortality // Cytokine. – 2023. – № 169. – P. 156277. DOI:10.1016/j.cyto.2023.156277.; Liang Y., Guan C., Meng H. et al. Effects of interleukin-17A on liver and kidney injury and prognosis in septic mice. Zhonghua Wei Zhong Bing. Ji Jiu Yi Xue, 2023, vol. 35, no. 6, pp. 592‒597. DOI: 10. 3760/cma.j.cn121430-20230110-00011.; Liu N., Pang X., Zhang H. et al. the cgas-sting pathway in bacterial infection and bacterial immunity // Front. Immunol. – 2022. ‒ № 12. – P. 814709. DOI:10.3389/fimmu.2021.814709.; Liu S., Wang C., Jiang Z. et al. Tim-3 blockade decreases the apoptosis of CD8+ T cells and reduces the severity of sepsis in mice // J. Surg. Res. – 2022. – № 279. – P. 8‒16. DOI:10.1016/j.jss.2022.05.014.; Liu D., Huang S. Y., Sun J. H. et al. Sepsis-induced immunosuPression: mechanisms, diagnosis and current treatment options // Mil. Med. Res. – 2022. – Vol. 9, № 1. – P. 56. DOI:10.1186/s40779-022-00422-y.; Loo G., Bertrand M. J. M. Death by TNF: a road to inflammation // Nat. Rev. Immunol. – 2023. – Vol. 23, № 5. – P. 289‒303. DOI:10.1038/s41577-022-00792-3.; Manchikalapati R., Schening J., Farias A. J. et al. Clinical utility of interleukin-1 inhibitors in pediatric sepsis // Shock. – 2023. – Vol. 59, № 9. – P. 21‒25. DOI:10.1097/SHK.0000000000002223.; Marques A., Torre C., Pinto R. et al. Treatment advances in sepsis and septic shock: modulating pro- and anti-inflammatory mechanisms // J. Clin. Med. – 2023. – Vol. 12, № 8. – P. 2892. DOI:10.3390/jcm12082892.; Martins Y. C., Ribeiro-Gomes F. L., Daniel-Ribeiro C. T. A short history of immunity // Mem. Inst. Oswaldo Cruz. – 2023. – № 118. – P. e230023. DOI:10.1590/0074-02760230023.; Morita N., Hoshi M., Tezuka H. et al. CD8+ Regulatory T cells induced by lipopolysaccharide improve mouse endotoxin shock // Immunohorizons. – 2023. – Vol. 7, № 5. – P. 353‒363. DOI:10.4049/immunohorizons.; Ostrand-Rosenberg S., Lamb T. J., Pawelec G. et al. There, and everywhere: myeloid-derived supressor cells in immunology // J. Immunol. – 2023. – Vol. 210, № 9. – P. 1183‒1197. DOI:10.4049/jimmunol.2200914.; Papathanakos G., Andrianopoulos I., Xenikakis M. et al. Clinical sepsis phenotypes in critically ill patients // Microorganisms. – 2023. – Vol. 11, № 9. – P. 2165. DOI:10.3390/microorganisms11092165.; Reizine F., Grégoire M., Lesouhaitier M. et al. Beneficial effects of citrulline enteral administration on sepsis-induced T cell mitochondrial dysfunction // Proc. Natl. Acad. Sci. U S A. – 2022. – Vol. 119, № 8. – P. e2115139119. DOI:10.1073/pnas.2115139119.; Rienzo M., Skirecki T., Monneret G. et al. Immune checkpoint inhibitors for the treatment of sepsis:insights from preclinical and clinical development // Expert Opin. Investig. Drugs. – 2022. – Vol. 31, № 9. – P. 885‒894. DOI:10.1080/13543784.2022.2102477.; Sawoo R., Dey R., Ghosh R. et al. Exogenous IL-10 posttreatment along with TLR4 and TNFR1 blockade improves tissue antioxidant status by modulating sepsis-induced macrophage polarization // J. APl. Toxicol. – 2023. – Vol. 43, № 10. – P. 1549‒1572. DOI:10.1002/jat.4496.; Saxton R. A., Glassman C. R., Garcia K. C. Emerging principles of cytokine pharmacology and therapeutics // Nat. Rev. Drug. Discov. – 2023. – Vol. 22, № 1. – P. 21‒37. DOI:10.1038/s41573-022-00557-6.; Silva E. E., Skon-Hegg C., Badovinac V. P. et al. The calm after the storm: implications of sepsis immunoparalysis on host immunity // J. Immunol. – 2023. – Vol. 211, № 5. – P. 711‒719. DOI:10.4049/jimmunol.2300171.; Sinha P., Meyer N. J., Calfee C. S. Biological phenotyping in sepsis and acute respiratory distress syndrome // Annu. Rev. Med. – 2023. – № 74. – P. 457‒471. DOI:10.1146/urev-med-043021-014005.; Su J., Tong Z., Wu S., Zhou F. et al. Research progress of DcR3 in the diagnosis and treatment of sepsis // Int. J. Mol. Sci. – 2023. – Vol. 24, № 16. – P. 12916. DOI:10.3390/ijms241612916.; Tao N., Xu X., Ying Y. et al. thymosin α1 and its role in viral infectious diseases: the mechanism and clinical aplication // Molecules. – 2023. – Vol. 28, № 8. – P. 3539. DOI:10.3390/molecules28083539.; Unar A., Bertolino L., Patauner F. et al. Decoding sepsis-induced disseminated intravascular coagulation: a comprehensive review of existing and emerging therapies // J. Clin. Med. – 2023. – Vol. 12, № 19. – P. 6128. DOI:10.3390/jcm12196128.; Vasconcelos I., Santos T. Nanotechnology applications in sepsis: essential knowledge for clinicianshttps://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/37376129/ // Pharmaceutics. – 2023. – Vol. 15, № 6. – P. 1682. DOI:10.3390/pharmaceutics15061682.; Yi M., Zheng X., Niu M. et al. Combination strategies with PD-1/PD-L1 blockade: current advances and future directions // Mol. Cancer. – 2022. – Vol. 21, № 1. ‒ P. 28. DOI:10.1186/s12943-021-01489-2.; Weber B., Sturm R., Henrich D. et al. Diagnostic and prognostic potential of exosomal cytokines IL-6 and IL-10 in polytrauma patients // Int. J. Mol. Sci. – 2023. – Vol. 24, № 14. – P. 11830. DOI:10.3390/ijms241411830.; Wiersinga W. J., van der Poll T. Immunopathophysiology of human sepsis // EBioMedicine. – 2022. – № 86. – P. 104363. DOI:10.1016/j.ebiom.2022.104363.; Winer H., Rodrigues G. O. L., Hixon J. A. et al. IL-7: Comprehensive review // Cytokine. – 2022. – № 160. – P. 156049. DOI:10.1016/j.cyto.2022.156049.; Wu H., Tang T., Deng H. et al. Immune checkpoint molecule Tim-3 promotes NKT cell apoptosis and predicts poorer prognosis in Sepsis // Clin. Immunol. – 2023. – № 254. – P. 109249. DOI:10.1016/j.clim.2023.109249.; Zhang W., Fang X., Gao C. et al. MDSCs in sepsis-induced immunosu pression and its potential therapeutic targets // Cytokine Growth. Factor Rev. – 2023. – № 69. – P. 90‒103. DOI:10.1016/j.cytogfr.2022.07.007.; Zheng X., Wu Y., Bi J. et al. The use of supercytokines, immunocytokines, engager cytokines, and other synthetic cytokines in immunotherapy // Cell Mol. Immunol. – 2022. – Vol. 19, № 2. – P. 192‒209. DOI:10.1038/s41423-021-00786-6.

Διαθεσιμότητα: https://www.vair-journal.com/jour/article/view/972
https://doi.org/10.24884/2078-5658-2024-21-2-103-111

Clinical and Immunological Analysis of Retinal Pigment Epithelium Transplantation Derived from Induced Pluripotent Stem Cells under Pharmacological Immunosuppression in Rabbits ; Клинико-иммунологический анализ трансплантации ретинального пигментного эпителия, полученного из индуцированных плюрипотентных стволовых клеток, в условиях фармакологической иммуносупрессии у кроликов

Συγγραφείς: N. V. Neroeva, N. V. Balatskaya, A. G. Brilliantova, L. A. Katargina, A. E. Kharitonov, M. A. Lagarkova, A. N. Bogomazova, Н. В. Нероева, Н. В. Балацкая, А. Г. Бриллиантова, Л. А. Катаргина, А. Е. Харитонов, М. А. Лагарькова, А. Н. Богомазова

Πηγή: Ophthalmology in Russia; Том 21, № 1 (2024); 193-204 ; Офтальмология; Том 21, № 1 (2024); 193-204 ; 2500-0845 ; 1816-5095 ; 10.18008/1816-5095-2024-1

Θεματικοί όροι: иммуносупрессия, atrophy, induced pluripotent stem cells, transplantation, immunoreactivity, cytokine, immunosuppression, атрофия, индуцированные плюрипотентные стволовые клетки, трансплантация, иммунореактивность, цитокины

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://www.ophthalmojournal.com/opht/article/view/2311/1205; Wong WL, Su X, Li X, Cheung CM, Klein R, Cheng CY, Wong TY. Global prevalence of age-related macular degeneration and disease burden projection for 2020 and 2040: a systematic review and meta-analysis. Lancet Glob Health. 2014 Feb;2(2):e106–116. doi:10.1016/S2214-109X(13)70145-1.; Jin ZB, Gao ML, Deng WL, Wu KC, Sugita S, Mandai M, Takahashi M. Stemming retinalregeneration with pluripotent stem cells. Prog Retin Eye Res. 2019 Mar;69:38–56. doi:10.1016/j.preteyeres.2018.11.003.; Klein R, Klein BE, Cruickshanks KJ. The prevalence of age-related maculopathy by geographic region and ethnicity. Prog Retin Eye Res. 1999 May;18(3):371–389. doi:10.1016/s1350-9462(98)00025-1.; Nita M, Strzałka-Mrozik B, Grzybowski A, Romaniuk W, Mazurek U. Ophthalmic transplantology: posterior segment of the eye-part II. Med Sci Monit. 2012 Jun;18(6):RA97–103. doi:10.12659/msm.882868.; Petrash CC, Palestine AG, Canto-Soler MV. Immunologic Rejection of Transplanted Retinal Pigmented Epithelium: Mechanisms and Strategies for Prevention. Front Immunol. 2021 May 12;12:621007. doi:10.3389/fimmu.2021.621007.; Харитонов А.Е., Сурдина А.В., Лебедева О.С., Богомазова А.Н., Лагарькова М.А. Возможности использования плюрипотентных стволовых клеток для восстановления поврежденного пигментного эпителия сетчатки глаза. Acta Naturae. 2018;10(3):31–41. doi:10.32607/20758251-2018-10-3-30-39.; Li L, Baroja ML, Majumdar A, Chadwick K, Rouleau A, Gallacher L, Ferber I, Lebkowski J, Martin T, Madrenas J, Bhatia M. Human embryonic stem cells possess immune-privileged properties. Stem Cells. 2004;22(4):448–456. doi:10.1634/stemcells.22-4-448.; Drukker M, Katchman H, Katz G, Even-Tov Friedman S, Shezen E, Hornstein E, Mandelboim O, Reisner Y, Benvenisty N. Human embryonic stem cells and their differentiated derivatives are less susceptible to immune rejection than adult cells. Stem Cells. 2006 Feb;24(2):221–229. doi:10.1634/stemcells.2005-0188. Epub 2005 Aug 18.; Zhou R, Caspi RR. Ocular immune privilege. F1000 Biol Rep. 2010 Jan 18;2:3. doi:10.3410/B2-3.; Sugita S, Futatsugi Y, Ishida M, Edo A, Takahashi M. Retinal Pigment Epithelial Cells Derived from Induced Pluripotent Stem (iPS) Cells Suppress or Activate T Cells via Costimulatory Signals. Int J Mol Sci. 2020 Sep 5;21(18):6507. doi:10.3390/ijms21186507.; Jiang LQ, Jorquera M, Streilein JW. Subretinal space and vitreous cavity as immunologically privileged sites for retinal allografts. Invest Ophthalmol Vis Sci. 1993 Nov;34(12):3347–3354.; Rajendran Nair DS, Zhu D, Sharma R, Martinez Camarillo JC, Bharti K, Hinton DR, Humayun MS, Thomas BB. Long-Term Transplant Effects of iPSC-RPE Monolayer in Immunodeficient RCS Rats. Cells. 2021 Oct 29;10(11):2951. doi:10.3390/cells10112951.; Rezai KA, Farrokh-Siar L, Godowski K, Patel SC, Ernest JT. A model for xenogenic immune response. Graefes Arch Clin Exp Ophthalmol. 2000 Apr;238(4):352–358. doi:10.1007/s004170050364.; Тихомирова АВ, Горячев ДВ, Меркулов ВА, Лысикова ИВ, Губенко АИ, Зебрев АИ, Соловьева АП, Ромодановский ДП, Мельникова ЕВ. Доклинические и клинические аспекты разработки биомедицинских клеточных продуктов. Ведомости Научного центра экспертизы средств медицинского применения. 2018;8(1): 23–35. doi:10.30895/1991-2919-20188-1-23-35.; Koster C, Wever KE, Wagstaff EL, Van den Hurk KT, Hooijmans CR, Bergen AA. A Systematic Review on Transplantation Studies of the Retinal Pigment EpitheliuminAnimal Models. Int J Mol Sci. 2020 Apr;21(8):2719. doi:10.3390/ijms21082719.; Newell KA, Turka LA. Tolerance signatures in transplant recipients. Curr Opin Organ Transplant. 2015 Aug;20(4):400–405. doi:10.1097/MOT.0000000000000207.; Нероева НВ, Нероев ВВ, Катаргина ЛА, Рябина МВ, Илюхин ПА, Кармокова АГ, Лосанова ОА, Майбогин АМ, Харитонов АЕ, Еремеев АВ, Лагарькова МА. Заместительная трансплантация стволовыми клетками при атрофии ретинального пигментного эпителия в эксперименте. Вестник офтальмологии. 2022;138(3):7–15.; Нероева НВ, Нероев ВВ, Катаргина ЛА, Рябина МВ, Илюхин ПА, Кармокова АГ, Лосанова ОА,, Майбогин АМ, Лагарькова МА, Еремеев АВ, Харитонов АЕ. Способ субретинальной трансплантации клеток ретинального пигментного эпителия (РПЭ), дифференцированных из индуцированных плюрипотентных стволовых клеток человека, при атрофии ретинального пигментного эпителия в эксперименте. Патент RU 2729937,15.11.2019.; Davis FA. The Anatomy and Histology of the Eye and Orbit of the Rabbit. Trans Am Ophthalmol Soc. 1929;27:400–441.; Zhou XX, Song YP, Zhao YX, Wu JG. Induction of Branch Retinal Vein Occlusion by Photodynamic Therapy with Rose Bengal in a Rabbit Model [Internet]. Advances in Ophthalmology. InTech; 2012. doi:10.5772/27623.; Гуляев ВА, Хубутия МШ, Новрузбеков МС, Миронов АС. Ксенотрансплантация: история, проблемы и перспективы развития. Трансплантология 2019; 11(1):37–54. doi 10.23873/2074-0506-2019-11-1-37-54.; Zhou T, Huang Z, Sun X, Zhu X, Zhou L, Li M, Cheng B, Liu X, He C. Microglia Polarization with M1/M2 Phenotype Changes in rd1 Mouse Model of Retinal Degeneration Front Neuroanat. 2017 Sep 5;11:77. doi:10.3389/fnana.2017.00077. eCollection 2017; Chan JL, Singh AK, Corcoran PC, Thomas ML, Lewis BG, Ayares DL, Vaught T, Horvath KA, Mohiuddin MM. Encouraging experience using multi-transgenic xenografts in a pig to baboon cardiac xenotransplantation mode. Xenotransplantation. 2017;24(6): e12330. doi:10.1111/xen.12330.; Cooper DKC, Pierson RN 3rd, Hering BJ, Mohiuddin MM, Fishman JA, Denner J, Ahn C, Azimzadeh AM, Buhler LH, Cowan PJ, Hawthorne WJ, Kobayashi T, Sachs DH. Regulation of clinical xenotransplantation — time for a reappraisal. Transplantation. 2017;101(8):1766–1769. doi:10.1097/TP.000000000000168332.; Ilmarinen T, Hiidenmaa H, Kööbi P, Nymark S, Sorkio A, Wang JH, Stanzel BV, Thieltges F, Alajuuma P, Oksala O, Kataja M, Uusitalo H, Skottman H. Ultrathin Polyimide Membrane as Cell Carrier for Subretinal Transplantation of Human Embryonic Stem Cell Derived Retinal Pigment Epithelium. PLoS One. 2015 Nov 25;10(11):e0143669. doi:10.1371/journal.pone.0143669.; Li MO, Wan YY, Flavell RA. T cell-produced transforming growth factor-beta1 controls T cell tolerance and regulates Th1and Th17-cell differentiation. Immunity. 2007 May;26(5):579–591. doi:10.1016/j.immuni.2007.03.014.; Hirsch L, Nazari H, Sreekumar PG, Kannan R, Dustin L, Zhu D, Barron E, Hinton DR. TGF-β2 secretion from RPE decreases with polarization and becomes apically oriented. Cytokine. 2015 Feb;71(2):394-6. doi:10.1016/j.cyto.2014.11.014.; Hamby ME, Hewett JA, Hewett SJ. Smad3-dependent signaling underlies the TGF-β1-mediated enhancement in astrocytic iNOS expression. Glia. 2010 Aug 15;58(11):1282–1291. doi:10.1002/glia.21005.; Flanders KC, Ren RF, Lippa CF. Transforming growth factor-betas in neurodegenerative disease. Prog Neurobiol. 1998 Jan;54(1):71–85. doi:10.1016/s0301-0082(97)00066-x.; Henrich-Noack P, Prehn JH, Krieglstein J. TGF-beta 1 protects hippocampal neurons against degeneration caused by transient global ischemia. Dose-response relationship and potential neuroprotective mechanisms. Stroke. 1996 Sep;27(9):1609– 1614; discussion 1615. doi:10.1161/01.str.27.9.1609.; Zhang JG, Walmsley MW, Moy JV, Cunningham AC, Talbot D, Dark JH, Kirby JA. Differential effects of cyclosporin A and tacrolimus on the production of TGF-beta: implications forthe development of obliterative bronchiolitis afterlung transplantation. Transpl Int. 1998;11 Suppl 1:S325–327. doi:10.1007/s001470050489.; Шевченко ОП, Цирульникова ОМ, Курабекова РМ, Цирульникова ИЕ, Олефиренко ГА, Готье СВ. Уровень трансформирующего фактора роста β1 в плазме крови детей-реципиентов печени и его связь с функцией трансплантата. Иммунология. 2015;36(6):343–347.; Masli S, Turpie B, Hecker KH, Streilein JW. Expression of thrombospondin in TGFbeta-treated APCs and its relevance to their immune deviation-promoting properties. J Immunol. 2002 Mar 1;168(5):2264–2273. doi:10.4049/jimmunol.168.5.2264.; Masli S, Turpie B, Streilein JW. Thrombospondin orchestrates the tolerancepromoting properties of TGFbeta-treated antigen-presenting cells. Int Immunol. 2006 May;18(5):689–699. doi:10.1093/intimm/dxl006.; Enzmann V, Faude F, Wiedemann P, Kohen L. The local and systemic secretion of the pro-inflammatory cytokine interleukin-6 after transplantation of retinal pigment epithelium cells in a rabbit model. Curr Eye Res. 2000 Jul;21(1):530–534.; Girard S, Larouche A, Kadhim H, Rola-Pleszczynski M, Gobeil F, Sébire G. Lipopolysaccharide and hypoxia/ischemia induced IL-2 expression by microglia in neonatal brain. Neuroreport. 2008 Jul 2;19(10):997–1002. doi:10.1097/WNR.0b013e3283036e88.; Serrano-Pérez MC, Martín ED, Vaquero CF, Azcoitia I, Calvo S, Cano E, Tranque P. Response of transcription factor NFATc3 to excitotoxic and traumatic brain insults: identification of a subpopulation of reactive astrocytes. Glia. 2011 Jan;59(1):94–107. doi:10.1002/glia.21079.; https://www.ophthalmojournal.com/opht/article/view/2311

Διαθεσιμότητα: https://www.ophthalmojournal.com/opht/article/view/2311
https://doi.org/10.18008/1816-5095-2024-1-193-204

Efficacy and safety of cladribine tablets in multiple sclerosis in real-world clinical practice ; Эффективность и безопасность кладрибина в таблетках при рассеянном склерозе в реальной клинической практике

Συγγραφείς: A. N. Peshkin, S. V. Kotov, G. T. Toniya, M. V. Sutormin, A. F. Eltayoury, А. Н. Пешкин, С. В. Котов, Г. Т. Тония, М. В. Сутормин, А. Ф. Элтайури

Συνεισφορές: The article is sponsored by Merck, Статья спонсируется компанией «Мерк»

Πηγή: Neurology, Neuropsychiatry, Psychosomatics; Vol 16, No 5 (2024); 54-59 ; Неврология, нейропсихиатрия, психосоматика; Vol 16, No 5 (2024); 54-59 ; 2310-1342 ; 2074-2711 ; 10.14412/2074-2711-2024-5

Θεματικοί όροι: иммуносупрессия, multiple sclerosis, NEDA, immunosuppression, рассеянный склероз

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://nnp.ima-press.net/nnp/article/view/2372/1725; Browne P, Chandraratna D, Angood C, et al. Atlas of Multiple Sclerosis 2013: A growing global problem with widespread inequity. Neurology. 2014 Sep 9;83(11):1022-4. doi:10.1212/WNL.0000000000000768; Amin M, Hersh CM. Updates and advances in multiple sclerosis neurotherapeutics. Neurodegener Dis Manag. 2023 Feb;13(1):47-70. doi:10.2217/nmt-2021-0058. Epub 2022 Oct 31.; Simpson A, Mowry EM, Newsome SD. Early Aggressive Treatment Approaches for Multiple Sclerosis. Curr Treat Options Neurol. 2021;23(7):19. doi:10.1007/s11940021-00677-1. Epub 2021 May 15.; Giovannoni G, Mathews J. Cladribine Tablets for Relapsing-Remitting Multiple Sclerosis: A Clinician's Review. Neurol Ther. 2022 Jun;11(2):571-95. doi:10.1007/s40120022-00339-7. Epub 2022 Mar 23.; Giovannoni G. Cladribine to Treat Relapsing Forms of Multiple Sclerosis. Neurotherapeutics. 2017 Oct;14(4):874-87. doi:10.1007/s13311-017-0573-4; Giovannoni G, Comi G, Cook S, et al; CLARITY Study Group. A placebo-controlled trial of oral cladribine for relapsing multiple sclerosis. N Engl J Med. 2010 Feb 4;362(5):41626. doi:10.1056/NEJMoa0902533. Epub 2010 Jan 20.; Giovannoni G, Soelberg Sorensen P, Cook S, et al. Safety and efficacy of cladribine tablets in patients with relapsing-remitting multiple sclerosis: Results from the randomized extension trial of the CLARITY study. Mult Scler. 2018 Oct;24(12):1594-604. doi:10.1177/1352458517727603. Epub 2017 Sep 5.; De Stefano N, Sormani MP, Giovannoni G, et al. Analysis of frequency and severity of relapses in multiple sclerosis patients treated with cladribine tablets or placebo: The CLARITY and CLARITY Extension studies. Mult Scler. 2022 Jan;28(1):111-20. doi:10.1177/13524585211010294. Epub 2021 May 10.; Бойко АН, Бойко ОВ, Гусев ЕИ. Выбор оптимального препарата для патогенетического лечения рассеянного склероза: современное состояние проблемы (обзор литературы). Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. Спецвыпуски. 2014;114(10-2):77-91.; Котов СВ, Якушина ТИ, Новикова ЕС и др. Применение моноклональных антител в лечении больных высокоактивным рассеянным склерозом в реальной клинической практике. Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. Спецвыпуски. 2023;123(72):77-83.; Елисеева ДД, Васильев АВ, Абрамова АА и др. Терапия моноклональными антителами быстропрогрессирующего и высокоактивного рассеянного склероза в эпоху пандемии COVID-19. Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. Спецвыпуски. 2021;121(7-2):31-6. doi:10.17116/jnevro202112107231; Журавлева МВ, Давыдовская МВ, Лучинина ЕВ и др. Сравнение клинических преимуществ препаратов второй линии, изменяющих течение рассеянного склероза. Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. 2020;120(8):148-53. doi:10.17116/jnevro2020120081148; Бойко АН, Гусева МР, Хачанова НВ, Гусев ЕИ. Вопросы современной терминологии при рассеянном склерозе. Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. Спецвыпуски. 2018;118(8-2):121-7. doi:10.17116/jnevro2018118082121; Giovannoni G, Comi G, Rammohan K, et al. Long-Term Disease Stability Assessed by the Expanded Disability Status Scale in Patients Treated with Cladribine Tablets 3.5 mg/kg for Relapsing Multiple Sclerosis: An Exploratory Post Hoc Analysis of the CLARITY and CLARITY Extension Studies. Adv Ther. 2021 Sep;38(9):4975-85. doi:10.1007/s12325-021-01865-w. Epub 2021 Aug 9.; Bartosik-Psujek H, Kaczynski L, Gorecka M, et al. Cladribine tablets versus other disease-modifying oral drugs in achieving no evidence of disease activity (NEDA) in multiple sclerosis-A systematic review and network meta-analysis. Mult Scler Relat Disord. 2021 Apr;49:102769. doi:10.1016/j.msard.2021.102769. Epub 2021 Jan 16.

Διαθεσιμότητα: https://nnp.ima-press.net/nnp/article/view/2372
https://doi.org/10.14412/2074-2711-2024-5-54-59

Functional characteristics of the gene promoters of anti-inflammatory cytokines TGF-b and IL-10 in B lymphocyte cell models ; Функциональная характеристика промоторов генов противовоспалительных цитокинов IL-10 и TGF-b в клеточных моделях B-лимфоцитов

Συγγραφείς: A. N. Uvarova, A. S. Ustiugova, E. A. Zheremyan, E. M. Stasevich, K. V. Korneev, D. V. Kuprash, А. Н. Уварова, А. С. Устюгова, Э. А. Жеремян, Е. М. Стасевич, К. В. Корнеев, Д. В. Купраш

Συνεισφορές: Работа выполнена при финансовой поддержке Российского научного фонда: грант № 22-14- 00398 (изучение промотора IL-10), грант № 21- 74-00106 (изучение промотора TGF-β).

Πηγή: Medical Immunology (Russia); Том 26, № 4 (2024); 701-706 ; Медицинская иммунология; Том 26, № 4 (2024); 701-706 ; 2313-741X ; 1563-0625

Θεματικοί όροι: SNP, immunosupression, B cells, IL-10, TGF-β, иммуносупрессия, В-лимфоциты

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/3038/1965; Brum da Silva Nunes V., Kehl Dias C., Nathali Scholl J., Nedel Sant’Ana A., de Fraga Dias A., Granero Farias M., Alegretti A.P., Sosnoski M., Esteves Daudt L., Bohns Michalowski M., Oliveira Battastini A.M. Lymphocytes from B-acute lymphoblastic leukemia patients present differential regulation of the adenosinergic axis depending on risk stratification. Discov. Oncol., 2022, Vol. 13, no. 1, 143. doi:10.1007/s12672-022-00602-1.; Celedon J.C., Lange C., Raby B.A., Litonjua A.A., Palmer L.J., DeMeo D.L., Reilly J.J., Kwiatkowski D.J., Chapman H.A., Laird N., Sylvia J.S. The transforming growth factor-β1 (TGFB1) gene is associated with chronic obstructive pulmonary disease (COPD). Hum. Mol. Genet., 2004, Vol. 13, no. 15, pp. 1649-1656.; Chekol Abebe E., Asmamaw Dejenie T., Mengie Ayele T., Dagnew Baye N., Agegnehu Teshome A., Tilahun Muche Z. The role of regulatory B cells in health and diseases: a systemic review. J. Inflamm. Res., 2021, Vol. 14, pp. 75-84.; Di Stefano A., Sangiorgi C., Gnemmi I., Casolari P., Brun P., Ricciardolo F.L., Contoli M., Papi A., Maniscalco P., Ruggeri P. Girbino G. TGF-β signaling pathways in different compartments of the lower airways of patients with stable COPD. Chest, 2018, Vol. 153, no. 4, pp. 851-862.; Frangogiannis, N.G., Transforming growth factor-β in tissue fibrosis. J. Exp. Med., 2020, Vol. 217, no. 3, e20190103. doi:10.1084/jem.20190103.; Grossberg A.J., Lei X., Xu T., Shaitelman S.F., Hoffman K.E., Bloom E.S., Stauder M.C., Tereffe W., Schlembach P.J., Woodward W.A., Buchholz T.A. Association of transforming growth factor β polymorphism C-509T with radiation-induced fibrosis among patients with early-stage breast cancer: a secondary analysis of a randomized clinical trial. JAMA Oncol., 2018, Vol. 4, no. 12, pp. 1751-1757.; Hartmann T.N., Leick M., Ewers S., Diefenbacher A., Schraufstatter I., Honczarenko M., Burger M. Human B cells express the orphan chemokine receptor CRAM-A/B in a maturation-stage-dependent and CCL5-modulated manner. Immunology, 2008, Vol. 125 no. 2, pp. 252-262.; Hou S., Zhao Y., Chen J., Lin Y., Qi X. Tumor-associated macrophages in colorectal cancer metastasis: molecular insights and translational perspectives. J. Transl. Med., 2024, Vol. 22, no. 1, 62. doi: org/ 10.1186/s12967-024-04856-x.; Li M., Jiang P., Wei S., Wang J., Li, C., The role of macrophages-mediated communications among cell compositions of tumor microenvironment in cancer progression. Front. Immunol., 2023, Vol. 14, 1113312. doi:10.3389/fimmu.2023.1113312.; Patel B., Mohammad R.M., Blaustein J., Al-Katib A. Induced expression of a monocytoid B lymphocyte antigen phenotype on the REH cell line. Am. J. Hematol., 1990, Vol. 33, no. 3, pp. 153-159.; Stanilova S., Stanilov N., Julianov A., Manolova I., Miteva L. Transforming growth factor-β1 gene promoter509C/T polymorphism in association with expression affects colorectal cancer development and depends on gender. PloS One, 2018, Vol. 13, no. 8, e0201775. doi:10.1371/journal.pone.0201775.; Uvarova A.N., Stasevich E.M., Ustiugova A.S., Mitkin N.A., Zheremyan E.A., Sheetikov S.A., Zornikova K.V., Bogolyubova A.V., Rubtsov M.A., Kulakovskiy I.V., Kuprash, D.V. rs71327024 Associated with COVID-19 hospitalization reduces CXCR6 promoter activity in Human CD4+ T cells via disruption of c-myb binding. Int. J. Mol. Sci., 2023, Vol. 24, no. 18, 13790. doi:10.3390/ijms241813790.; Zheremyan E.A., Ustiugova A.S., Karamushka N.M., Uvarova A.N., Stasevich E.M., Bogolyubova A.V., Kuprash D.V., Korneev K.V. Breg-mediated immunoregulation in the skin. Int. J. Mol. Sci., 2024, Vol. 25, no. 1, 583. doi:10.3390/ijms25010583.; Zheremyan E.A., Ustiugova A.S., Uvarova A.N., Karamushka N.M., Stasevich E.M., Gogoleva V.S., Bogolyubova A.V., Mitkin N.A., Kuprash D.V., Korneev, K.V. Differentially activated B cells develop regulatory phenotype and show varying immunosuppressive features: a comparative study. Front. Immunol., 2023, Vol. 14, 1178445. doi:10.3389/fimmu.2023.1178445.; Zheremyan E.A., Ustiugova A.S., Radko A.I., Stasevich E.M., Uvarova A.N., Mitkin N.A., Kuprash D.V., Korneev K.V. Novel potential mechanisms of regulatory B cell-mediated immunosuppression. Biochemistry (Moscow), 2023, Vol. 88, no. 1, pp. 13-21.; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/3038

Διαθεσιμότητα: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/3038
https://doi.org/10.15789/1563-0625-FCO-16940

Melanoma and basal cell skin cancer in a patient with HIV infection. Clinical observation ; Меланома и базальноклеточный рак кожи у пациента с ВИЧ-инфекцией. Клиническое наблюдение

Συγγραφείς: E. N. Efanova, I. N. Lakomova, E. V. Pavlova, A. N. Kazurova, Е. Н. Ефанова, И. Н. Лакомова, Е. В. Павлова, А. Н. Казурова

Πηγή: HIV Infection and Immunosuppressive Disorders; Том 16, № 1 (2024); 79-85 ; ВИЧ-инфекция и иммуносупрессии; Том 16, № 1 (2024); 79-85 ; 2077-9828 ; 10.22328/2077-9828-2024-16-1

Θεματικοί όροι: гигантский врожденный невус, immunosuppression, melanoma, basal cell carcinoma of the skin, malignant neoplasms of the skin, giant congenital nevus, иммуносупрессия, меланома, базальноклеточный рак кожи, злокачественные новообразования (ЗНО)

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://hiv.bmoc-spb.ru/jour/article/view/882/579; Титов К.С., Гомберг М.А., Неретин Е.Ю., Маркин А.А. Особенности прогноза и лечения у пациентов с ВИЧ-ассоциированными злокачественными опухолями кожи // Клиническая дерматология и венерология. 2022. Т. 21, № 4. С. 510–515; Павлов Ю.И., Волков В.В., Громов И.А., Холопов А.А. Клинический случай пациентки с подногтевой меланомой // Амбулаторная хирургия. 2020. № 3–4. С. 61–65.; Бахарева Ю.О., Тараканова В.О., Рубаняк М.Ю., Каменских Е.М. Меланома кожи (C43): анализ тенденций заболеваемости и смертности в свете пандемии COVID-19, молекулярная эпидемиология // Вопросы онкологии. 2023. Т. 69, № 4. С. 631–638.; Казаков С.В., Щербак С.Г. Клинический случай базальноклеточного рака кожи // Клиническая дерматология и венерология. 2017. Т. 16, № 2. С. 16–18.; Facciolà A., Venanzi Rullo E., Ceccarelli M., D’Andrea F., Coco M., Micali C., Cacopardo B., Marino A., Cannavò S.P., Di Rosa M., Condorelli F., Pellicanò G.F., Guarneri C., Nunnari G. Malignant melanoma in HIV: Epidemiology, pathogenesis, and management. Dermatol Ther. 2020, Vol. 33, No. 1.; Trunfio M., Ribero S., Bonora S., Di Perri G., Quaglino P., Calcagno A. Malignant Melanoma in People Living with HIV/AIDS: Can We Know More, Can We Do Better? // AIDS Rev. 2019. Vol. 21, No. 2. Р. 65–75.; Proietti I., Skroza N., Michelini S., Mambrin A., Tolino E., Bernardini N., Balduzzi V., Marchesiello A., Volpe S., Maddalena P., Bellini D., Vicini S., Potenza C. Efficacy of nivolumab in HIV patient with melanoma brain metastases // AIDS. 2020. Vol. 34, No. 9. Р. 1433–1435.; Рассохин В.В., Некрасова А.В., Михайлова Н.Б. Злокачественные опухоли при ВИЧ-инфекции. Эпидемиология, патогенез, формы опухолей // ВИЧ-инфекция и иммуносупрессии. 2017. № 9. С. 1–7.; Воробьева О.В., Ласточкин А.В. Клинико-морфологический случай рака шейки матки на фоне ВИЧ-ассоциированной инфекции // ВИЧинфекция и иммуносупрессии. 2021. № 13. С. 72–76.; Азовцева О.В., Трофимова Т.С., Архипов Г.С. Летальные исходы у больных с ВИЧ-инфекцией, параллели с адекватностью диагностики, диспансеризации и лечения // ВИЧ-инфекция и иммуносупрессии. 2018. № 3. С. 90–101; Рассохин В.В., Некрасова А.В., Беляков Н.А. Злокачественные опухоли при ВИЧ-инфекции. Локализация, профилактика, лечение // ВИЧ-инфекция и иммуносупрессии. 2017. № 2. С. 16–26.; Нелидова Н.В., Кузьмина Н.В., Русак Ю.Э., Ефанова Е.Н. Клиническое наблюдение саркомы Капоши, ассоциированной с ВИЧ, у больного диссеминированным туберкулезом легких, вирусными гепатитами В и С // Лечащий врач. 2021. Т. 11, № 24. С. 45–49. doi:10.51793/OS.2021.24.11.007

Διαθεσιμότητα: https://hiv.bmoc-spb.ru/jour/article/view/882
https://doi.org/10.22328/2077-9828-2024-16-1-79-85

Перспективы персонализированного лечения иммуноглобулин-А-нефропатии

Συγγραφείς: K.S. Komissarov

Πηγή: Počki, Vol 9, Iss 1, Pp 4-9 (2020)
Нирки-Počki; Том 9, № 1 (2020); 4-9
Почки-Počki; Том 9, № 1 (2020); 4-9
KIDNEYS; Том 9, № 1 (2020); 4-9

Θεματικοί όροι: immunoglobulin A-nephropathy, treatment, Oxford classification, risk factors, immunosuppression, review, oxford classification, імуноглобулін-А-нефропатія, лікування, Оксфордська класифікація, фактори ризику, імуносупресія, огляд, иммуноглобулин-А-нефропатия, лечение, Оксфордская классификация, факторы риска, иммуносупрессия, обзор, immunoglobulin a-nephropathy, RC870-923, Diseases of the genitourinary system. Urology, 3. Good health

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Σύνδεσμος πρόσβασης: http://kidneys.zaslavsky.com.ua/article/download/196910/198656
https://doaj.org/article/29968a0cd8f14693b00be86634668709
http://kidneys.zaslavsky.com.ua/article/download/196910/198656
http://kidneys.zaslavsky.com.ua/article/view/196910
http://kidneys.zaslavsky.com.ua/article/view/196910

ЛАТЕНТНЫЕ ВИРУСНЫЕ ИНФЕКЦИИ У ОБОЖЖЕННЫХ С ГЛУБОКИМИ ОЖОГАМИ, СОСТОЯНИЕ ПРОБЛЕМЫ

Πηγή: Российские биомедицинские исследования, Vol 8, Iss 2 (2023)

Θεματικοί όροι: Medicine (General), ожоги, вирусы, R5-920, ветряная оспа, вирус герпеса, глубокие ожоги, иммуносупрессия

Σύνδεσμος πρόσβασης: https://doaj.org/article/bd46356eab76446daf70a45ca6d82566

ЛАТЕНТНЫЕ ВИРУСНЫЕ ИНФЕКЦИИ У ОБОЖЖЕННЫХ С ГЛУБОКИМИ ОЖОГАМИ, СОСТОЯНИЕ ПРОБЛЕМЫ

Συγγραφείς: Е.В. Зиновьев, Л.П. Пивоварова, В.А. Мануковский, В.В. Солошенко, Д.В. Костяков, В.Н. Юрина, А.В. Семиглазов, С.Н. Пятаков, Р.В. Кораблев

Πηγή: Российские биомедицинские исследования, Vol 8, Iss 2 (2023)

Θεματικοί όροι: ожоги, глубокие ожоги, иммуносупрессия, вирусы, вирус герпеса, ветряная оспа, Medicine (General), R5-920

Περιγραφή αρχείου: electronic resource

Relation: http://ojs3.gpmu.org/index.php/biomedical-research/article/view/5623; https://doaj.org/toc/2658-6584; https://doaj.org/toc/2658-6576

Σύνδεσμος πρόσβασης: https://doaj.org/article/bd46356eab76446daf70a45ca6d82566

LUPUS ERITEMATOS SISTEMIC PRECOCE: DEBUT CU TROMBOZE

Συγγραφείς: Mazur-Nicorici, L.M., Vetrilă, S.B., Hangan, M., Garabajiu Pașalî, M., Șalaru, V.A., Sadovici-Bobeica, V., Loghin-Oprea, N., Mazur, M.V.

Πηγή: Buletinul Academiei de Ştiinţe a Moldovei: Ştiinţe Medicale, Vol 75, Iss 1, Pp 176-180 (2023)
Buletinul Academiei de Ştiinţe a Moldovei. Ştiinţe Medicale 75 (1) 176-180

Θεματικοί όροι: Medicine (General), immunosuppression, imunosupresie, sindrom antifosfolipidic, системная красная волчанка, RC31-1245, Other systems of medicine, R5-920, systemic lupus erythematosus, lupus eritematos sistemic, антифосфолипидный синдром, Public aspects of medicine, RA1-1270, antiphospholipid syndrome, Internal medicine, иммуносупрессия, RZ201-999

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Σύνδεσμος πρόσβασης: https://doaj.org/article/e0d68ae999954995b496ae2d803b73c7
https://ibn.idsi.md/vizualizare_articol/182227

Evaluation of the effect of the combination of glucosamine derivatives with quercetin on the morphofunctional state of the thymus and spleen of rats under the toxic effect of doxorubicin

Συγγραφείς: Vietrova, K. V., Sakharova, T. S.

Πηγή: Clinical pharmacy; Vol. 24 No. 4 (2020); 47-54
Клиническая фармация; Том 24 № 4 (2020); 47-54
Клінічна фармація; Том 24 № 4 (2020); 47-54
Клінічна фармація; Том 24, № 4 (2020); 47-54
Clinical pharmacy; Том 24, № 4 (2020); 47-54
Клиническая фармация; Том 24, № 4 (2020); 47-54

Θεματικοί όροι: 0301 basic medicine, УДК 547.455.623´233.1: 547.814.5: [615.277.3 + 615.099.092], quercetin, glucosamine hydrochloride, N-acetylglucosamine, doxorubicin, immunosuppression, cytoprotective action, 615.277.3 615.099.092, кверцетин, глюкозаміну гідрохлорид, N-ацетилглюкозамін, доксорубіцин, імуносупресія, цитопротекторна дія, N-ацетилглюкозамин, глюкозамина гидрохлорид, UDC 547.455.623´233.1, 03 medical and health sciences, доксорубицин, иммуносупрессия, цитопротекторное действие, УДК 547.455.623´233.1, 0303 health sciences, 3. Good health, UDC 547.455.623´233.1: 547.814.5: [615.277.3 + 615.099.092], 547.814.5

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Σύνδεσμος πρόσβασης: http://cphj.nuph.edu.ua/article/download/cphj.20.1540/217293
http://cphj.nuph.edu.ua/article/view/cphj.20.1540

Infection COVID-19 and Recipients of Renal Graft:Options of Correction Immunosuppression and Treatment

Πηγή: Рецепт. :502-507

Θεματικοί όροι: 0301 basic medicine, 03 medical and health sciences, immunosuppression, treatment, трансплантация почек, COVID-19, kidney transplantation, лечение, иммуносупрессия, 3. Good health