Search Results - "ЖИЗНЕСПОСОБНОСТЬ"

Relation: info:eu-repo/semantics/altIdentifier/isbn/978-5-907965-57-7; https://phsreda.com/e-articles/10740/Action10740-138824.pdf; Махнач А.В. Жизнеспособность человека и семьи: социально-психологическая парадигма / А.В. Махнач. – М.: Изд-во Института психологии РАН, 2016. – 459 с. EDN VZIWPX; Махнач А.В. Психологическая диагностика кандидатов в замещающие родители: практическое руководство / А.В. Махнач, А.М. Прихожан, Н.Н. Толстых. – М., 2013. EDN RRGMQB; Нестерова А.А. Семейные ресурсы как условие жизнеспособности семьи в кризисных ситуациях / А.А. Нестерова // Развитие личности. – 2016. – №1. – С. 156–173. EDN VUDENX; Овчарова Р.В. Психологическое сопровождение родительства / Р.В. Овчарова. – М.: Институт Психотерапии, 2003. – 319 с. EDN QXGIUL; Постылякова Ю.В. Индивидуальные и семейные ресурсы у кандидатов в замещающие родители / Ю.В. Постылякова // Проблема сиротства в современной России: психологический аспект. – М.: Институт психологии РАН, 2015. – С. 459–477. EDN TZZEVP; https://phsreda.com/article/138824/discussion_platform

Availability: https://phsreda.com/article/138824/discussion_platform
https://phsreda.com/files/Books/10740/Cover-10740.jpg?req=138824

View record from BASE

13

Academic Journal

Assessment of the Pinus Pallasiana Seed Material Quality in the Dry Steppe Zone of the Lower Volga Region

Source: Научно-агрономический журнал. :63-68

Subject Terms: жизнеспособность, семена, рентгенография, всхожесть семян, энергия прорастания семян, сосна Палласа

14

Academic Journal

СВОБОДНЫЕ РАДИКАЛЫ И ИХ РОЛЬ В ЖИЗНЕСПОСОБНОСТИ И РЕПРОДУКЦИИ ЖИВОТНЫХ

Source: Высшая школа: научные исследования.

Subject Terms: репродукция, жизнеспособность, митохондрии, COVID-19, свободнорадикальное окисление

15

Academic Journal

Influence of Explant Sterilization Conditions and Lighting on the Morphogenesis of Economically Valuable Forms of Birch and Aspen in vitro Culture

Source: Лесохозяйственная информация. :92-102

Subject Terms: clonal micropropagation, sterilizing agent, birch, береза, aspen, viability, условия освещения, explant, in vitro, стерилизующий агент, осина, побегообразование, клональное микроразмножение, жизнеспособность, lighting conditions, эксплант, light, shoot formation

16

Academic Journal

TEAM BUILDING IN ORGANIZATIONS: TEAM VITALITY AND PERFORMANCE

Source: Экономика и предпринимательство. :849-852

Subject Terms: команда, productivity, персонал, организация, team building, organization, управление, командообразование, team, производительность, personnel, management, жизнеспособность команды, team vitality

17

Academic Journal

METHOD FOR DETERMINING THE VIABILITY OF MESENCHYMAL STEM CELLS IN TISSUE-ENGINEERED STRUCTURES DURING REGENERATION – EXPERIMENTAL SUBSTANTIATION OF EFFICIENCY ; СПОСОБ ОПРЕДЕЛЕНИЯ ЖИЗНЕСПОСОБНОСТИ МЕЗЕНХИМАЛЬНЫХ СТВОЛОВЫХ КЛЕТОК В СОСТАВЕ ТКАНЕИНЖЕНЕРНЫХ КОНСТРУКТОВ В ПРОЦЕССЕ РЕГЕНЕРАЦИИ: ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНОЕ ОБОСНОВАНИЕ ЭФФЕКТИВНОСТИ

Authors: Marfa N. Egorikhina, Yulia P. Rubtsova, Irina N. Charykova, Daria D. Linkova, Ekaterina A. Farafontova, Ekaterina A. Levicheva, Diana Ya. Aleinik, Марфа Николаевна Егорихина, Юлия Павловна Рубцова, Ирина Николаевна Чарыкова, Дарья Дмитриевна Линькова, Екатерина Александровна Фарафонтова, Екатерина Андреевна Левичева, Диана Яковлевна Алейник

Contributors: Работа выполнена в рамках программы «Приоритет-2036» Министерства науки и высшего образования Российской Федерации.

Source: Complex Issues of Cardiovascular Diseases; Том 14, № 3 (2025); 51-61 ; Комплексные проблемы сердечно-сосудистых заболеваний; Том 14, № 3 (2025); 51-61 ; 2587-9537 ; 2306-1278 ; undefined

Subject Terms: Имиджинг, DiOC14(3) tracer, Mesenchymal stem cells, Viability, Morphology, Imaging, Трейсер DiOC14(3), Мезенхимальные стволовые клетки, Жизнеспособность, Морфология

File Description: application/pdf

Relation: https://www.nii-kpssz.com/jour/article/view/1648/1042; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/view/1648/1043; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1648/2006; Файзуллин А.Л., Шехтер А.Б., Истранов Л.П., Истранова Е.В., Руденко Т.Г., Гуллер А.Е., Абоянц Р.К., Тимашев П.С., Бутнару Д.В. Биорезорбируемые коллагеновые материалы в хирургии: 50 лет успеха. Сеченовский вестник. 2020; 11(1): 59–70. doi.org/10.47093/2218-7332.2020.11.1.59-70; Bian D., Wu Y., Song G., Azizi R., Zamani A. The application of mesenchymal stromal cells (MSCs) and their derivative exosome in skin wound healing: a comprehensive review. Stem Cell Res Ther. 2022;13(1):1-17. doi:10.1186/s13287-021-02697-9; Heldring N., Mäger I., Wood M.J.A., Le Blanc K, Andaloussi S.E.L. Therapeutic Potential of Multipotent Mesenchymal Stromal Cells and Their Extracellular Vesicles. Hum Gene Ther. 2015;26(8):506-517. doi:10.1089/hum.2015.072; Gomzikova M.О., James V., Rizvanov A. A. Therapeutic Application of Mesenchymal Stem Cells Derived Extracellular Vesicles for Immunomodulation. Front Immunol. 2019;10(November):1-9. doi:10.3389/fimmu.2019.02663; Dedier M., Magne B., Nivet M., Banzet S., Trouillas M. Anti-inflammatory effect of interleukin-6 highly enriched in secretome of two clinically relevant sources of mesenchymal stromal cells. Front Cell Dev Biol. 2023;11(September):1-8. doi:10.3389/fcell.2023.1244120; Mendt M., Rezvani K., Shpall E. Mesenchymal stem cell-derived exosomes for clinical use. Bone Marrow Transplant. 2019;54:789-792. doi:10.1038/s41409-019-0616-z; Lotfy A., AboQuella N.M., Wang H. Mesenchymal stromal/stem cell (MSC)-derived exosomes in clinical trials. Stem Cell Res Ther. 2023;14(1):1-18. doi:10.1186/s13287-023-03287-7; Lin Y., Marin-Argany M., Dick C.J., Redhage K.R., Blancas-Mejia L.M., Bulur P., Butler G.W., Deeds M.C., Madden B.J., Williams A., Wall J.S., Dietz A., Ramirez-Alvarado M. Mesenchymal stromal cells protect human cardiomyocytes from amyloid fibril damage. Cytotherapy. 2017;19(12). doi:10.1016/j.jcyt.2017.08.021; Hashemi S.S., Pourfath M.R., Derakhshanfar A., Behzad-Behbahani A., Moayedi J. The role of labeled cell therapy with and without scaffold in early excision burn wounds in a rat animal model. Iran J Basic Med Sci. 2020;23(5):673-679. doi:10.22038/ijbms.2020.34324.8156; Marino G., Moraci M., Armenia E., Orabona C., Sergio R., De Sena G., Capuozzo V., Barbarisi M., Rosso F., Giordano G., Iovino F., Barbarisi A. Therapy with autologous adipose-derived regenerative cells for the care of chronic ulcer of lower limbs in patients with peripheral arterial disease. J Surg Res. 2013 Nov;185(1):36-44. doi:10.1016/j.jss.2013.05.024; Зиновьев Е.В., Крайнюков П.Е., Асадулаев М.С., Костяков Д.В., Вагнер Д.О., Крылов П.К., Османов К.Ф. Клиническая оценка эффективности применения мезенхимальных стволовых клеток при термических ожогах Вестник Национального медико-хирургического Центра им. Н.И. Пирогова 2018;13(4): 62-67. doi:10.25881/bpnmsc.2018.88.91.011; Еремеев А.В., Пикина А.С., Владимирова Т.В., Богомазова А.Н. Методы оценки жизнеспособности клеток, культивируемых in vitro в 2D- и 3D-структурах. Гены и клетки. 2023;18(1):5-21. doi:10.23868/gc312198; Kamiloglu S., Sari G., Ozdal T., Capanoglu E. Guidelines for cell viability assays. Food Front. 2020;1(3):332-349. doi:10.1002/fft2.44; Debruyne A.C., Okkelman I.A., Dmitriev R.I. Balance between the cell viability and death in 3D. Semin Cell Dev Biol. 2023;144:55-66. doi:10.1016/J.SEMCDB.2022.09.005; Gantenbein-Ritter B., Potier E., Zeiter S., van der Werf M., Sprecher C.M., Ito K. Accuracy of three techniques to determine cell viability in 3D tissues or scaffolds. Tissue Eng - Part C Methods. 2008;14(4):353-358. doi:10.1089/ten.tec.2008.0313; Dominijanni A.J., Devarasetty M., Forsythe S.D., Votanopoulos K.I., Soker S. Cell Viability Assays in Three-Dimensional Hydrogels: A Comparative Study of Accuracy. Tissue Eng - Part C Methods. 2021;27(7):401-410. doi:10.1089/ten.tec.2021.0060; Dittmar R., Potier E., van Zandvoort M., Ito K. Assessment of cell viability in three-dimensional scaffolds using cellular auto-fluorescence. Tissue Eng - Part C Methods. 2012;18(3):198-204. doi:10.1089/ten.tec.2011.0334; Bonnier F., Keating M.E., Wróbel T.P., Majzner K., Baranska M., Garcia-Munoz A., Blanco A., Byrne H.J. Cell viability assessment using the Alamar blue assay: a comparison of 2D and 3D cell culture models. Toxicol In vitro. 2015;29(1):124-31. doi:10.1016/j.tiv.2014.09.014; Семенычева Л.Л., Кузнецова Ю.Л., Валетова, Н.Б., Гераськина Е.В., Таранкова О.А. Способ получения уксусной дисперсии высокомолекулярного рыбного коллагена. Патент RU2567171C1, 2015; Бюл. №31; Коржевский Д.Э., Гиляров А.В. Основы гистологической техники. Практическое руководство. СПб: СпецЛит; 2010. 95 с.; Guo S., Dipietro L.A. Factors affecting wound healing. J Dent Res. 2010;89(3):219-229. doi:10.1177/0022034509359125; Gonzalez A.C., Costa T.F., Andrade Z.A., Medrado A.R. Wound healing - A literature review. An Bras Dermatol. 2016;91(5):614-620. doi:10.1590/abd1806-4841.20164741; Юрова К.А., Мелащенко Е.С., Хазиахматова О.Г., Малащенко В.В., Мелащенко О.Б., Шунькин Е.О., Норкин И.К., Хлусов И.А., Литвинова Л.С. Мезенхимные стволовые клетки: краткий обзор классических представлений и новых факторовостеогенной дифференцировки (PDF) Мезенхимальные стволовые клетки: краткий обзор концепций классификации и новых факторов остеогенной дифференцировки. Медицинская иммунология, 2021;23(2):207-222. doi:10.15789/1563-0625-MSC-2128; Макаревич П.И. Клеточные пласты из мультипотентных мезенхимных стромальных клеток как платформа для тканевой инженерии в регенеративной медицине. Дисс. …д.м.н. М; 2024.; Nourian Dehkordi A., Mirahmadi Babaheydari F., Chehelgerdi M., Raeisi Dehkordi S. Skin tissue engineering: wound healing based on stem-cell-based therapeutic strategies. Stem Cell Res Ther. 2019;10(1):111. doi:10.1186/s13287-019-1212-2; Воротников А.В., Суздальцева Ю.Г., Рубцов Ю.П., Аниол Н.В., Горюнов К.В., Кудряшова Т.В., Тюрин-Кузьмин П.А., Ткачук В.А. Направленная миграция и мезенхимальные прогениторные клетки: участие в воспалении, репарации и регенерации ткани. В сборнике: Стволовые клетки и регенеративная медицина под ред. В.А Ткачука. М: Макс-пресс; 2012.; Бехало В.А., Горская Ю.Ф., Нестеренко В.Г. Иммунорегуляторный и иммунотерапевти-ческий потенциал мезенхимальных стволовых/стромальных клеток: перспективы и проблемы. Иммунология. 2024; 45 (3): 385–395. doi:10.33029/1816-2134-2024-45-3-385-395

Availability: https://www.nii-kpssz.com/jour/article/view/1648
https://doi.org/10.17802/2306-1278-2025-14-3-51-61

View record from BASE

18

Academic Journal

SENSITIVITY OF VARIOUS METHODS FOR ASSESSING THE CYTOTOXICITY OF MEDICAL DEVICES ; ЧУВСТВИТЕЛЬНОСТЬ РАЗЛИЧНЫХ МЕТОДОВ ОЦЕНКИ ЦИТОТОКСИЧНОСТИ МЕДИЦИНСКИХ ИЗДЕЛИЙ

Authors: Larisa V. Antonova, Vera G. Matveeva, Evgenia A. Torgunakova, Maryam Yu. Khanova, Marina S. Kolomeets, Evgenia A. Senokosova, Лариса Валерьевна Антонова, Вера Геннадьевна Матвеева, Евгения Александровна Торгунакова, Марьям Юрисовна Ханова, Марина Сергеевна Коломеец, Евгения Андреевна Сенокосова

Contributors: Исследование выполнено в рамках фундаментальной темы НИИ КПССЗ № 0419-2022-0001 «Молекулярные, клеточные и биомеханические механизмы патогенеза сердечно-сосудистых заболеваний в разработке новых методов лечения заболеваний сердечно-сосудистой системы на основе персонифицированной фармакотерапии, внедрения малоинвазивных медицинских изделий, биоматериалов и тканеинженерных имплантатов».

Source: Complex Issues of Cardiovascular Diseases; Том 14, № 4 (2025); 91-101 ; Комплексные проблемы сердечно-сосудистых заболеваний; Том 14, № 4 (2025); 91-101 ; 2587-9537 ; 2306-1278

Subject Terms: xCelligence, Endothelial cells, Fibroblasts, MTT, Viability, Proliferation, Эндотелиальные клетки, Фибробласты, Жизнеспособность, Пролиферация

File Description: application/pdf

Relation: https://www.nii-kpssz.com/jour/article/view/1607/1063; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1607/1918; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1607/1919; ГОСТ ISO 10993-5-2011. Изделия медицинские. Оценка биологического действия медицинских изделий. Часть 5. Исследования на цитотоксичность: методы in vitro. - Введ. 2013.01.01 – М.: Стандарт информ, 2014. – 10 с. – (Система стандартов по информации, библиотечному и издательскому делу).; Gruber S., Nickel A. Toxic or not toxic? The specifications of the standard ISO 10993-5 are not explicit enough to yield comparable results in the cytotoxicity assessment of an identical medical device. Front. Med. Technol. 2023;5:1195529. https://doi.org/10.3389/fmedt.2023.1195529.; Bellucci D., Salvatori R., Anesi A., Chiarini L., Cannillo V. SBF assays, direct and indirect cell culture tests to evaluate the biological performance of bioglasses and bioglass-based composites: Three paradigmatic cases. Materials Science and Engineering: C. 2019;96:757-764. https://doi.org/10.1016/j.msec.2018.12.006.; Braun K., Stürzel C.M., Biskupek J., Kaiser U., Kirchhoff F., Lindén M. Comparison of different cytotoxicity assays for in vitro evaluation of mesoporous silica nanoparticles. Toxicology in Vitro. 2018;52:214-221. https://doi.org/10.1016/j.tiv.2018.06.019.; Diemer F., Stark H., Helfgen E.H., Enkling N., Probstmeier R., Winter J., Kraus D. In vitro cytotoxicity of different dental resin-cements on human cell lines. J Mater Sci Mater Med. 2021;32(1):4. https://doi.org/10.1007/s10856-020-06471-w.; Wang Y., Ma B., Yin A., Zhang B., Luo R., Pan J., Wang Y. Polycaprolactone vascular graft with epigallocatechin gallate embedded sandwiched layer-by-layer functionalization for enhanced antithrombogenicity and anti-inflammation. J Control Release. 2020;320:226-238. https://doi.org/10.1016/j.jconrel.2020.01.043.; Zhou J., Wang M., Wei T., Bai L., Zhao J., Wang K., Feng Y. Endothelial cell-mediated gene delivery for in situ accelerated endothelialization of a vascular graft. ACS Appl Mater Interfaces. 2021;13(14):16097-16105. https://doi.org/10.1021/acsami.1c01869.; Kabirian F., Brouki Milan P., Zamanian A., Heying R., Mozafari M. Nitric oxide-releasing vascular grafts: A therapeutic strategy to promote angiogenic activity and endothelium regeneration. Acta Biomater. 2019;92:82-91. https://doi.org/10.1016/j.actbio.2019.05.002.; Lee S.J., Kim M.E., Nah H., Seok J.M., Jeong M.H., Park K., Kwon I.K., Lee J.S., Park S.A. Vascular endothelial growth factor immobilized on mussel-inspired three-dimensional bilayered scaffold for artificial vascular graft application: In vitro and in vivo evaluations. J Colloid Interface Sci. 2019;537:333-344. https://doi.org/10.1016/j.jcis.2018.11.039.; Daum R., Visser D., Wild C., Kutuzova L., Schneider M., Lorenz G., et al. Fibronectin adsorption on electrospun synthetic vascular grafts attracts endothelial progenitor cells and promotes endothelialization in dynamic in vitro culture. Cells. 2020;9(3):778. https://doi.org/10.3390/cells9030778.; Guan G., Yu C., Xing M., Wu Y., Hu X., Wang H., Wang L. Hydrogel small-diameter vascular graft reinforced with a braided fiber strut with improved mechanical properties. Polymers. 2019;11:810. https://doi.org/10.3390/polym11050810.; Jirofti N., Mohebbi-Kalhori D., Samimi A., Hadjizadeh A., Kazemzadeh G.H. Small-diameter vascular graft using co-electrospun composite PCL/PU nanofibers. Biomed Mater. 2018;13(5):055014. https://doi.org/10.1088/1748-605X/aad4b5.; Fiqrianti I.A., Widiyanti P., Manaf M.A., Savira C.Y., Cahyani N.R., Bella F.R. Poly-L-lactic Acid (PLLA)-chitosan-collagen electrospun tube for vascular graft Application. J Funct Biomater.2018;9(2):32. https://doi.org/10.3390/jfb9020032.; Rosellini E., Barbani N., Lazzeri L., Cascone M.G. Biomimetic and bioactive small diameter tubular scaffolds for vascular tissue engineering. Biomimetics (Basel). 2022;7(4):199. https://doi.org/10.3390/biomimetics7040199.; Jaffe E.A., Nachman R.L., Becker C.G., Minick C.R. Culture of human endothelial cells derived from umbilical veins. Identification by morphologic and immunologic criteria. Clin Invest. 1973; 52: 2745–2756. https://doi.org/10.1172/JCI107470.; Ghasemi M., Turnbull T., Sebastian S., Kempson I. The MTT Assay: utility, limitations, pitfalls, and interpretation in bulk and single-cell analysis. Int. J. Mol. Sci. 2021;22:12827. https://doi.org/10.3390/ijms222312827.; Великанова Е.А., Матвеева В.Г., Ханова М.Ю., Антонова Л.В. Влияние напряжения сдвига на свойства колониеформирующих эндотелиальных клеток в сравнении с эндотелиальными клетками коронарных артерий. Комплексные проблемы сердечно-сосудистых заболеваний. 2022; 11(4):90-97. https://doi.org/10.17802/2306-1278-2022-11-4-90-97.; Li W., Zhou J., Xu Y. Study of the in vitro cytotoxicity testing of medical devices. Biomed Rep. 2015;3(5):617-620. https://doi.org/10.3892/br.2015.481.