Showing 1 - 20 results of 228 for search '"ГОРМОНОВ"', query time: 0.77s Refine Results
  1. 1
  2. 2
  3. 3
    Academic Journal

    Source: Andrology and Genital Surgery; Том 25, № 1 (2024); 87-94 ; Андрология и генитальная хирургия; Том 25, № 1 (2024); 87-94 ; 2412-8902 ; 2070-9781

    File Description: application/pdf

    Relation: https://agx.abvpress.ru/jour/article/view/739/570; Dericks-Tan JS, Bradler H, Taubert HD. Evaluation of proteohormon concentrations in serum and seminal fluid and its relationship with sperm count. Andrologia. 1978 May-Jun;10(3):175-82. DOI:10.1111/j.1439-0272.1978.tb03013.x.; Bain J, Duthie M, Keene J. Relationship of seminal plasma testosterone and dihydrotestosterone to sperm count and motility in man. Arch Androl. 1979;2(1):35-9. DOI:10.3109/01485017908987289.; Zufferey F, Rahban R, Garcia A, Gagnebin Y, Boccard J, Tonoli D, Jeanneret F, Stettler E, Senn A, Nef S, Rudaz S, Rossier MF. Steroid profiles in both blood serum and seminal plasma are not correlated and do not reflect sperm quality: Study on the male reproductive health of fifty young Swiss men. Clin Biochem. 2018 Dec;62:39-46. DOI:10.1016/j.clinbiochem.2018.03.008.; Vitku J, Kolatorova L, Hampl R. Occurrence and reproductive roles of hormones in seminal plasma. Basic Clin Androl. 2017 Sep 8;27:19. DOI:10.1186/s12610-017-0062-y.; Hampl R, Kubatova J, Heracek J, Sobotka V, Starka L. Hormones and endocrine disruptors in human seminal plasma. Endocr Regul. 2013 Jul;47(3):149-58. DOI:10.4149/endo_2013_03_149.; Álvarez-Rodríguez M, Martinez-Pastor F. Molecular Determinants of Seminal Plasma on Sperm Biology and Fertility. Int J Mol Sci. 2021 Mar 30;22(7):3555. DOI:10.3390/ijms22073555.; Hudson RW, Hayes KA, Crawford VA, McKay DE. Seminal plasma testosterone and dihydrotestosterone levels in men with varicoceles. Int J Androl. 1983 Apr;6(2):135-42. DOI:10.1111/j.1365-2605.1983.tb00332.x.; Mićić S, Dotlić R, Ilić V, Genbaćev O. Seminal plasma hormone profile in infertile men with and without varicocele. Arch Androl. 1986;17(3):173-8. DOI:10.3109/01485018608990193.; Bujan L, Mieusset R, Audran F, Lumbroso S, Sultan C. Increased oestradiol level in seminal plasma in infertile men. Hum Reprod. 1993 Jan;8(1):74-7. DOI:10.1093/oxfordjournals.humrep.a137878.; Cooke PS, Nanjappa MK, Ko C, Prins GS, Hess RA. Estrogens in Male Physiology. Physiol Rev. 2017 Jul 1;97(3):995-1043. DOI:10.1152/physrev.00018.2016.; Akinloye O, Arowojolu AO, Shittu OB, Abbiyesuku FM, Adejuwon CA, Osotimehin B. Serum and seminal plasma hormonal profiles of infertile Nigerian male. Afr J Med Med Sci. 2006 Dec;35(4):468-73. PMID: 17722815.; Vigil P, Toro A, Godoy A. Physiological action of oestradiol on the acrosome reaction in human spermatozoa. Andrologia. 2008;40(3):146–151. DOI:10.1111/j.1439-0272.2007.00814.x.; Vigil P, Barrientos VM, Vargas GG, Machuca DA, Cortes ME. Assessment of the effect of testosterone on the acrosome reaction of human spermatozoa. Andrologia. 2012;44(Suppl 1):627–633. DOI:10.1111/j.1439-0272.2011.01241.x.; Zalata A, El-Mogy M, Abdel-Khabir A, El-Bayoumy Y, El-Baz M, Mostafa T. Seminal androgens, oestradiol and progesterone in oligoasthenoteratozoospermic men with varicocele. Andrologia. 2014;46(7):761–765. DOI:10.1111/and.12145.; Nesheim N, Ellem S, Dansranjavin T, Hagenkötter C, Berg E, Schambeck R, Schuppe HC, Pilatz A, Risbridger G, Weidner W, Wagenlehner F, Schagdarsurengin U. Elevated seminal plasma estradiol and epigenetic inactivation of ESR1 and ESR2 is associated with CP/CPPS. Oncotarget. 2018 Apr 13;9(28):19623-19639. DOI:10.18632/oncotarget.24714.; Kogan M, Naboka Y, Ferzauli A, Ibishev K, Gudima I, Ismailov R. Does the microbiota spectrum of prostate secretion affect the clinical status of patients with chronic bacterial prostatitis? IntJUrol. 2021 Dec;28(12):1254-1259. DOI:10.1111/iju.14685.; HoCH, FanCK, YuHJ, WuCC, ChenKC, LiuSP, ChengPC. Testosterone suppresses uropathogenic Escherichia coli invasion and colonization within prostate cells and inhibits inflammatory responses through JAK/STAT-1 signaling pathway. PLoSOne. 2017 Jun 30;12(6):e0180244. DOI:10.1371/journal.pone.0180244.; Mohamad NV, Wong SK, Wan Hasan WN, Jolly JJ, NurFarhana MF, Ima-Nirwana S, Chin KY. The relationship between circulating testosterone and inflammatory cytokines in men. Aging Male. 2019 Jun;22(2):129-140. DOI:10.1080/13685538.2018.1482487.; Ho CH, Lu YC, Fan CK, Yu HJ, Liu HT, Wu CC, Chen KC, Liu SP, Cheng PC. Testosterone regulates the intracellular bacterial community formation of uropathogenic Escherichia coli in prostate cells via STAT3. Int J Med Microbiol. 2020 Oct;310(7):151450. DOI:10.1016/j.ijmm.2020.151450.; Morgentaler A, Traish A. The History of Testosterone and the Evolution of its Therapeutic Potential. Sex Med Rev. 2020 Apr;8(2):286-296. DOI:10.1016/j.sxmr.2018.03.002.; Тюзиков И.А., Калинченко С.Ю., Ворслов Л.О., Греков Е.А. Коррекция андрогенного дефицита при хроническом инфекционном простатите как патогенетический метод преодоления неэффективности стандартной антибактериальной терапии на фоне растущей антибиотикорезистентности. Андрология и генитальная хирургия. 2013;14(1):55-63. DOI:10.17650/2070-9781-2013-1-55-63.; Черный А.А. Особенности клинического течения и лечения хронического бактериального простатита у пациентов с дефицитом тестостерона. Автореферат диссертации на соискание ученой степени кандидата медицинских наук. Ростов-на-Дону. 2015. C. 22.; Камалов А.А., Василевский Р.П., Охоботов Д.А., Неплохов Е.А. Сравнительная характеристика результатов лечения пациентов с доброкачественной гиперплазией предстательной железы в сочетании с гипогонадизмом. Урология. 2019; 4:58-61. DOI:10.18565/urology.2019.4.58-61.; Коган М.И., Авадиева Н.Э., Геворкян Л.С., Логинов Ю.А., Метелкин А.М., Митин А.А., Патрикеев А.А. Результаты многоцентрового проспективного сравнительного исследования препарата Андрогель® у мужчин с недостаточностью эндогенного тестостерона и симптомами нижних мочевыводящих путей при доброкачественной гиперплазии предстательной железы («ПОТОК»). Урология. 2023; 2:32-40. DOI:10.18565/urology.2023.2.32-40.; Сапожкова Ж.Ю., Милованова Г.А., Почерников Д.Г., Постовойтенко Н.Т. Диагностические возможности исследования осадка эякулята с помощью амплификации нуклеиновых кислот методом полимеразно-цепной реакции в режиме реального времени и микробиологического исследования при поиске причин нарушения мужской репродуктивной функции. Медицинские технологии. Оценка и выбор. 2022;44(2):62 71. DOI:10.17116/medtech20224402162.; Почерников Д.Г., Постовойтенко Н.Т., Давидова Ж.Ю. Результативность модификации преаналитического лабораторного этапа ПЦР с целью выявления скрытых урогенитальных инфекций у мужчин// Лабораторная и клиническая медицина. Фармация. 2023. Т. 3, № 2. С. 4–11. DOI:10.14489/lcmp.2023.02.pp.004-011.; Инструкция по применению набора реагентов для исследования микрофлоры урогенитального тракта мужчин методом ПЦР в режиме реального времени Андрофлор® (ООО НПО «ДНК-Технология»). Регистрационное удостоверение № РЗН 20164490. Доступно по ссылке: http:www.dnatechnology.ru/information/aboutamethod/.; Chung MC, Gombar S, Shi RZ. Implementation of Automated Calculation of Free and Bioavailable Testosterone in Epic Beaker Laboratory Information System. J Pathol Inform. 2017 Jul 25;8:28. DOI:10.4103/jpi.jpi_28_17.; https://agx.abvpress.ru/jour/article/view/739

  4. 4
  5. 5
  6. 6
    Academic Journal

    Subject Terms: типология лесорастительных условий, изучение комлевого сбега ствола, влияние синтетических гормонов на плодоношение, разорение яйцекладок непарного шелкопряда, подвяливание на корне, самолет для противопожарной охраны леса, как не следует проводить курсы, разведение бересклета бородавчатого зелеными черенками, роль рельефа и микрорельефа, пенсильванская вишня в условиях лесостепи, посев лоха, новые работы по лесной селекции в США и Канаде, эффективные методы лесовосстановления, гуттоносность бересклетов, редкие издания, плодоношение сосновых насаждений, объезчиков снабдить велосипедами, вред, причиняемые белкой и дятлом, о лесниках, лесное хозяйство, лесогидрологические наблюдения на реках, прореживание чистых культур дуба, 20-тие поволжского лесотехнического института, лесное образование, лесо-садовое хозяйство Кавказа, новый способ выращивания сосны

    File Description: application/pdf

  7. 7
    Academic Journal

    Subject Terms: Оценена частота встречаемости ожирения , неалкагольной жировой дистрофии печени ( НЖДП) при первичном гипотиреозе ( ПГ) у женщин в возрасте от 30 до 60 лет, проживающих в Андижанской области. Выявлено, у женщин с ( ПГ) индекс массы тела (ИМТ) и средние уровни общего холестерина (ОХС) , триглицеридов (ТГ) и индекса атерогенности (ИА) достоверно выше, а липопротеиды высокой плотности (ХСЛПВП) значимо ниже, чем у женщин без нарушений функции щитовидной железы (ЩЖ). Увеличение уровня тиреотропного гормона (ТТГ) в крови у женщин связано с возрастом, наличием нарушений в липидном спектре. У 68 % женщин с первичным гипотиреозом ( не регулярно получавших заместительную терапию левотироксином ), и у 89 % ( не получавших заместительную терапию левотироксином ) выявлена НЖДП. Исследование гормонов щитовидной железы и достижение целевых значений должна входит в перечень обязательных обследований пациентов с ожирением и НЖДП и быть строго индивидуальными, исходя из собраных данных

  8. 8
    Academic Journal

    Subject Terms: Оценена частота встречаемости ожирения , неалкагольной жировой дистрофии печени ( НЖДП) при первичном гипотиреозе ( ПГ) у женщин в возрасте от 30 до 60 лет, проживающих в Андижанской области. Выявлено, у женщин с ( ПГ) индекс массы тела (ИМТ) и средние уровни общего холестерина (ОХС) , триглицеридов (ТГ) и индекса атерогенности (ИА) достоверно выше, а липопротеиды высокой плотности (ХСЛПВП) значимо ниже, чем у женщин без нарушений функции щитовидной железы (ЩЖ). Увеличение уровня тиреотропного гормона (ТТГ) в крови у женщин связано с возрастом, наличием нарушений в липидном спектре. У 68 % женщин с первичным гипотиреозом ( не регулярно получавших заместительную терапию левотироксином ), и у 89 % ( не получавших заместительную терапию левотироксином ) выявлена НЖДП. Исследование гормонов щитовидной железы и достижение целевых значений должна входит в перечень обязательных обследований пациентов с ожирением и НЖДП и быть строго индивидуальными, исходя из собраных данных

  9. 9
  10. 10
    Academic Journal
  11. 11
    Academic Journal

    Source: Research and Practical Medicine Journal; Том 9, № 1 (2022); 23-32 ; Research'n Practical Medicine Journal; Том 9, № 1 (2022); 23-32 ; 2410-1893 ; 10.17709/2410-1893-2022-9-1

    File Description: application/pdf

    Relation: https://www.rpmj.ru/rpmj/article/view/705/468; https://www.rpmj.ru/rpmj/article/downloadSuppFile/705/471; https://www.rpmj.ru/rpmj/article/downloadSuppFile/705/472; Wu T, Yang F, Chan WWL, Lam CLK, Wong CKH. Healthcare utilization and direct medical cost in the years during and after cancer diagnosis in patients with type 2 diabetes mellitus. J Diabetes Investig. 2020 Nov;11(6):1661–1672. https://doi.org/10.1111/jdi.13308; Park Y, Colditz GA. Diabetes and adiposity: a heavy load for cancer. Lancet Diabetes Endocrinol. 2018 Feb;6(2):82–83. https://doi.org/10.1016/S2213-8587(17)30396-0; Shlomai G, Neel B, LeRoith D, Gallagher EJ. Type 2 Diabetes Mellitus and Cancer: The Role of Pharmacotherapy. J Clin Oncol. 2016 Dec 10;34(35):4261–4269. https://doi.org/10.1200/JCO.2016.67.4044; Noto H, Tsujimoto T, Noda M. Significantly increased risk of cancer in diabetes mellitus patients: A meta-analysis of epidemiological evidence in Asians and non-Asians. J Diabetes Investig. 2012 Feb 20;3(1):24–33. https://doi.org/10.1111/j.2040-1124.2011.00183.x; Ganguly S, Naik D, Muskara A, Mian OY. The Nexus of Endocrine Signaling and Cancer: How Steroid Hormones Influence Genomic Stability. Endocrinology. 2021 Jan 1;162(1):bqaa177. https://doi.org/10.1210/endocr/bqaa177; Yen PM. Classical nuclear hormone receptor activity as a mediator of complex biological responses: a look at health and disease. Best Pract Res Clin Endocrinol Metab. 2015 Aug;29(4):517–528. https://doi.org/10.1016/j.beem.2015.07.005; Sastre-Serra J, Valle A, Company MM, Garau I, Oliver J, Roca P. Estrogen down-regulates uncoupling proteins and increases oxidative stress in breast cancer. Free Radic Biol Med. 2010 Feb 15;48(4):506–512. https://doi.org/10.1016/j.freeradbiomed.2009.11.025; Haffner MC, Aryee MJ, Toubaji A, Esopi DM, Albadine R, Gurel B, et al. Androgen-induced TOP2B-mediated double-strand breaks and prostate cancer gene rearrangements. Nat Genet. 2010 Aug;42(8):668–675. https://doi.org/10.1038/ng.613; Nichol AM, Chan EK, Lucas S, Smith SL, Gondara L, Speers C, et al. The Use of Hormone Therapy Alone Versus Hormone Therapy and Radiation Therapy for Breast Cancer in Elderly Women: A Population-Based Study. Int J Radiat Oncol Biol Phys. 2017 Jul 15;98(4):829– 839. https://doi.org/10.1016/j.ijrobp.2017.02.094; Cagnacci A, Venier M. The Controversial History of Hormone Replacement Therapy. Medicina (Kaunas). 2019 Sep 18;55(9):E602. https://doi.org/10.3390/medicina55090602; Michmerhuizen AR, Chandler B, Olsen E, Wilder-Romans K, Moubadder L, Liu M, et al. Seviteronel, a Novel CYP17 Lyase Inhibitor and Androgen Receptor Antagonist, Radiosensitizes AR-Positive Triple Negative Breast Cancer Cells. Front Endocrinol (Lausanne). 2020;11:35. https://doi.org/10.3389/fendo.2020.00035; Патент № 2375758 C1 Российская Федерация. 10.12.2009. Заявка № 2008133091/14 от 11.08.2008. Сидоренко Ю. С., Франциянц Е. М., Комарова Е. Ф., Погорелова Ю. А., Шихлярова А. И. Способ получения экспериментальных злокачественных опухолей легких.; Кит О. И., Франциянц Е. М., Каплиева И. В., Трепитаки Л. К., Евстратова О. Ф. Способ получения метастазов печени в эксперименте. Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 2014;157(6):745–747.; Кит О. И., Франциянц Е. М., Димитриади С. Н., Шевченко А. Н., Каплиева И. В., Трепитаки Л. К. Экспрессия маркеров неоангиогенеза и фибринолитической системы в динамике экспериментальной ишемии почки у крыс. Экспериментальная и клиническая урология. 2015;(1):20–23.; Daniel AR, Hagan CR, Lange CA. Progesterone receptor action: defining a role in breast cancer. Expert Rev Endocrinol Metab. 2011 May 1;6(3):359–369. https://doi.org/10.1586/eem.11.25; Wang M, Yang Y, Liao Z. Diabetes and cancer: Epidemiological and biological links. World J Diabetes. 2020 Jun 15;11(6):227–238. https://doi.org/10.4239/wjd.v11.i6.227; Carnesecchi J, Malbouyres M, de Mets R, Balland M, Beauchef G, Vié K, et al. Estrogens induce rapid cytoskeleton re-organization in human dermal fibroblasts via the non-classical receptor GPR30. PLoS One. 2015;10(3):e0120672. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0120672; Coricovac D, Dehelean C, Moaca E-A, Pinzaru I, Bratu T, Navolan D, et al. Cutaneous Melanoma-A Long Road from Experimental Models to Clinical Outcome: A Review. Int J Mol Sci. 2018 May 24;19(6):E1566. https://doi.org/10.3390/ijms19061566; Noto H. Unfolding link between diabetes and cancer. J Diabetes Investig. 2017 Aug 8;9(3):473–474. https://doi.org/10.1111/jdi.12725; Suh S, Kim KW. Diabetes and Cancer: Cancer Should Be Screened in Routine Diabetes Assessment. Diabetes Metab J. 2019 Dec;43(6):733–743. https://doi.org/10.4093/dmj.2019.0177; Barclay AW, Petocz P, McMillan-Price J, Flood VM, Prvan T, Mitchell P, et al. Glycemic index, glycemic load, and chronic disease risk–a meta-analysis of observational studies. Am J Clin Nutr. 2008 Mar;87(3):627–637. https://doi.org/10.1093/ajcn/87.3.627; Williamson TT, Ding B, Zhu X, Frisina RD. Hormone replacement therapy attenuates hearing loss: Mechanisms involving estrogen and the IGF-1 pathway. Aging Cell. 2019 Jun;18(3):e12939. https://doi.org/10.1111/acel.12939; Shepard BD. Sex differences in diabetes and kidney disease: mechanisms and consequences. Am J Physiol Renal Physiol. 2019 Aug 1;317(2):F456–F462. https://doi.org/10.1152/ajprenal.00249.2019; Hong J, Stubbins RE, Smith RR, Harvey AE, Núñez NP. Differential susceptibility to obesity between male, female and ovariectomized female mice. Nutr J. 2009 Feb 17;8:11. https://doi.org/10.1186/1475-2891-8-11; Renoir J-M, Marsaud V, Lazennec G. Estrogen receptor signaling as a target for novel breast cancer therapeutics. Biochem Pharmacol. 2013 Feb 15;85(4):449–465. https://doi.org/10.1016/j.bcp.2012.10.018; Arnal J-F, Lenfant F, Metivier R, Flouriot G, Henrion D, Adlanmerini M, et al. Membrane and Nuclear Estrogen Receptor Alpha Actions: From Tissue Specificity to Medical Implications. Physiol Rev. 2017 Jul 1;97(3):1045–1087. https://doi.org/10.1152/physrev.00024.2016; Verma A, Schwartz N, Cohen DJ, Patel V, Nageris B, Bachar G, et al. Loss of Estrogen Receptors is Associated with Increased Tumor Aggression in Laryngeal Squamous Cell Carcinoma. Sci Rep. 2020 Mar 6;10(1):4227. https://doi.org/10.1038/s41598-020-60675-2; Roma A, Spagnuolo PA. Estrogen Receptors Alpha and Beta in Acute Myeloid Leukemia. Cancers (Basel). 2020 Apr 8;12(4):E907. https://doi.org/10.3390/cancers12040907; https://www.rpmj.ru/rpmj/article/view/705

  12. 12
    Academic Journal

    Source: Medical Genetics; Том 21, № 7 (2022); 4-7 ; Медицинская генетика; Том 21, № 7 (2022); 4-7 ; 2073-7998

    File Description: application/pdf

    Relation: https://www.medgen-journal.ru/jour/article/view/2095/1562; Баранов В.С., Баранова Е.В., Иващенко Т.Э., Асеев М.В. Геном человека и гены предрасположенности. Введение в предиктивную медицину. СПб.: Изд-во «Интермедика»; 2000:263.; Bahia W., Finan R.R., Al-Mutawa M. et al. Genetic variation in the progesterone receptor gene and susceptibility to recurrent pregnancy loss: a case-control study. BJOG. 2018; 125(6): 729-735.; Su M.T., Lin S.H. Chen Y.C. Association of sex hormone receptor gene polymorphisms with recurrent pregnancy loss: a systematic review and meta-analysis. Fertil Steril. 2011; 96(6): 1435-1444.; Cupisti S., Fasching P.A., Ekici A.B. et al. Polymorphisms in estrogen metabolism and estrogen pathway genes and the risk of miscarriage. Arch Obstet Gynaecol. 2009; 280: 395-400.; Cope D.I., Monsivais D. Progesterone Receptor Signaling in the Uterus Is Essential for Pregnancy Success. Cells. 2022; 11(9):1474.; Gadkar-Sable S., Shah C., Rosario G., Sachdeva G., Puri C. Progesterone receptors: various forms and functions in reproductive tissues. Front Biosci. 2005; 10: 2118-2130.; Yin X.-Q., Ju H.-M. Guo Q. et al. Association of Estrogen Receptor 1 Genetic Polymorphisms with Recurrent Spontaneous Abortion Risk. Chin Med J (Engl). 2018; 131(15): 1857-1865.

  13. 13
  14. 14
  15. 15
    Academic Journal

    Authors: Yakovlev, P. G.

    Source: Hospital Surgery. Journal named by L.Ya. Kovalchuk; No. 3 (2019); 75-83 ; Госпитальная хирургия. Журнал имени Л.А. Ковальчука; № 3 (2019); 75-83 ; Шпитальна хірургія. Журнал імені Л. Я. Ковальчука; № 3 (2019); 75-83 ; 2414-4533 ; 1681-2778 ; 10.11603/2414-4533.2019.3

    File Description: application/pdf

  16. 16
    Academic Journal

    Source: Siberian journal of oncology; Том 19, № 1 (2020); 73-81 ; Сибирский онкологический журнал; Том 19, № 1 (2020); 73-81 ; 2312-3168 ; 1814-4861 ; 10.21294/1814-4861-2020-19-1

    File Description: application/pdf

    Relation: https://www.siboncoj.ru/jour/article/view/1324/713; Rižner T.L., Thalhammer T., Özvegy-Laczka C. The Importance of Steroid Uptake and Intracrine Action in Endometrial and Ovarian Cancers. Front Pharmacol. 2017 Jun 19; 8: 346. doi:10.3389/fphar.2017.00346.; Konings G., Brentjens L., Delvoux B., Linnanen T., Cornel K., Koskimies P., Bongers M., Kruitwagen R., Xanthoulea S., Romano A. Intracrine Regulation of Estrogen and Other Sex Steroid Levels in Endometrium and Non‑gynecological Tissues; Pathology, Physiology, and Drug Discovery. Front Pharmacol. 2018 Sep 19; 9: 940. doi:10.3389/fphar.2018.00940.; Wang L., Nanayakkara G., Yang Q., Tan H., Drummer C., Sun Y., Shao Y., Fu H., Cueto R., Shan H., Bottiglieri T., Li Y.F., Johnson C., Yang W.Y., Yang F., Xu Y., Xi H., Liu W., Yu J., Choi E.T., Cheng X., Wang H., Yang X. A comprehensive data mining study shows that most nuclear receptors act as newly proposed homeostasis‑associated molecular pattern receptors. J Hematol Oncol. 2017 Oct 24; 10(1): 168. doi:10.1186/s13045‑017‑0526‑8.; Hewitt S.C., Korach K.S. Estrogen receptors: new directions in the new millennium. Endocr Rev. 2018 Oct 1; 39(5): 664–675. doi:10.1210/er.2018‑00087.; Hua H., Zhang H., Kong Q., Jiang Y. Mechanisms for estrogen receptor expression in human cancer. Exp Hematol Oncol. 2018 Sep 19; 7: 24. doi:10.1186/s40164‑018‑0116‑7.; Fox E.M., Davis R.J., Shupnik M.A. ERbeta in breast cancer onlooker, passive player, or active protector? Steroids. 2008 Oct; 73(11): 1039–51. doi:10.1016/j.steroids.2008.04.006.; Lee E., Hsu C., Haiman C.A., Razavi P., Horn-Ross P.L., Van Den Berg D., Bernstein L., Le Marchand L., Henderson B.E., Setiawan V.W., Ursin G. Genetic variation in the progesterone receptor gene and risk of endometrial cancer: a haplotype‑based approach. Carcinogenesis. 2010 Aug; 31(8): 1392–9. doi:10.1093/carcin/bgq113.; Tangen I.L., Werner H.M., Berg A., Halle M.K., Kusonmano K., Trovik J., Hoivik E.A., Mills G.B., Krakstad C., Salvesen H.B. Loss of progesterone receptor links to high proliferation and increases from primary to metastatic endometrial cancer lesions. Eur J Cancer. 2014 Nov; 50(17): 3003–10. doi:10.1016/j.ejca.2014.09.003.; Sinreih M., Hevir N., Rižner T.L. Altered expression of genes involved in progesterone biosynthesis, metabolism and action in endometrial cancer. Chem Biol Interact. 2013 Feb 25; 202(1–3): 210–7. doi:10.1016/j.cbi.2012.11.012.; Gibson D.A., Simitsidellis I., Collins F., Saunders P.T. Evidence of androgen action in endometrial and ovarian cancers. Endocr Relat Cancer. 2014 Aug; 21(4): T203–18. doi:10.1530/ERC‑13‑0551.; Козлова М.Б., Франциянц Е.М., Владимирова Л.Ю., Анапалян В.Х., Бандовкина В.А., Светицкая Я.В., Кучкина Л.П., Босенко Е.С., Логвиненко А.А. Тиреоидный и глюкокортикоидный статус у больных со злокачественной и доброкачественной патологией молочных желез. Сибирский онкологический журнал. 2009; 4: 52–56.; Шатова Ю.С., Франциянц Е.М., Новикова И.А., Ващенко Л.Н., Бандовкина В.А., Верескунова М.И., Хугаева А.Н., Токмаков В.В. Локальный гормональный фон опухоли и перифокальной зоны у больных раком молочной железы: данные и перспективы их применения. Опухоли женской репродуктивной системы. 2016; 12(3): 30–35.; Котиева И.М., Кит О.И., Франциянц Е.М., Бандовкина В.А., Каплиева И.В., Трепитаки Л.К., Черярина Н.Д., Погорелова Ю.А., Бликян М.В. Влияние хронической боли на уровень половых гормонов, пролактина и гонадотропных гормонов в сыворотке крови и патологически измененной коже у самок мышей в динамике роста злокачественной меланомы. Известия высших учебных заведений. Северо‑Кавказский регион. Естественные науки. 2018; 198(2): 106–116. doi:10.23683/0321‑3005.; Кит О.И., Франциянц Е.М., Котиева И.М., Каплиева И.В., Трепитаки Л.К., Бандовкина В.А., Розенко Л.Я. Некоторые механизмы повышения злокачественности меланомы на фоне хронической боли у самок мышей. Российский журнал боли. 2017; 53(2): 14–20.; Cairns B.E., Gazerani P. Sex‑related differences in pain. Maturitas. 2009 Aug 20; 63(4): 292–6. doi:10.1016/j.maturitas.2009.06.004.; Peng B., Lu B., Leygue E., Murphy L.C. Putative functional characteristics of human estrogen receptor‑beta isoforms. J Mol Endocrinol. 2003; 30: 13–29. doi:10.1677/jme.0.0300013.; Henderson B.E., Feigelson H.S. Hormonal carcinogenesis. Carcinogenesis 2000; 21: 427–433. doi:10.1093/carcin/21.3.427.; Akhmedkhanov A., Zeleniuch-Jacquotte A., Toniolo P. Role of exogenous and endogenous hormones in endometrial cancer: review of the evidence and research perspectives. Ann NY Acad Sci. 2001 Sep; 943: 296–315. doi:10.1111/j.1749‑6632.2001.tb03811.x.; Ikeda K., Horie-Inoue K., Inoue S. Identification of estrogen-responsive genes based on the DNA binding properties of estrogen receptors using high‑throughput sequencing technology. Acta Pharmacol Sin. 2015 Jan; 36(1): 24–31. doi:10.1038/aps.2014.123.; Finlay-Schultz J., Gillen A.E., Brechbuhl H.M., Ivie J.J., Matthews S.B., Jacobsen B.M., Bentley D.L., Kabos P., Sartorius C.A. Breast cancer suppression by progesterone receptors is mediated by their modulation of estrogen receptors and RNA polymerase III. Cancer Res. 2017 Sep 15; 77(18): 4934–4946. doi:10.1158/0008‑5472.CAN‑16‑3541; https://www.siboncoj.ru/jour/article/view/1324

  17. 17
    Academic Journal

    Source: Medical Visualization; Том 24, № 1 (2020); 119-132 ; Медицинская визуализация; Том 24, № 1 (2020); 119-132 ; 2408-9516 ; 1607-0763

    File Description: application/pdf

    Relation: https://medvis.vidar.ru/jour/article/view/895/595; Brooks P.C., Strömblad S., Sanders L.C., von Schalscha T.L., Aimes R.T., Stetler-Stevenson W.G., Quigley J.P., Cheresh D.A. Localization of matrix metalloproteinase; MMP-2 to the surface of invasive cells by interaction with integrin αvβ3. Cell. 1996; 85 (5): 683–693. https://doi.org/10.1016/s0092-8674(00)81235-0; Haubner R., Wester H.J., Reuning U., SenekowitschSchmidtke R., Diefenbach B., Kessler H., Stöcklin G., Schwaiger M. Radiolabeled αvβ3 Integrin Antagonists: A New Class of Tracers for Tumor Targeting. J. Nucl. Med. 1999; 40: 1061–1071.; Chen H., Niu G., Wu H., Chen X. Clinical application of radiolabeled RGD peptides for PET imaging of integrin αvβ3. Theranostics. 2016; 6 (1): 78–92. https://doi.org/10.7150/thno.13242; Karen A., Kurdziel M.D., Lindenberg L., Choyke P.L. Oncologic angiogenesis imaging in the clinic – how and why. Imaging Med. 2011; 3 (4): 445–457.; Haubner R., Wester H.J., Reuning U., SenekowitschSchmidtke R., Diefenbach B., Kessler H., Stöcklin G., Schwaiger M. Radiolabeled αvβ3 integrin antagonists: A new class of tracers for tumor targeting. J. Nucl. Med. 1999; 40 (6): 1061–1071.; Niu G., Chen X. RGD PET: From Lesion Detection to Therapy Response Monitoring. J. Nucl. Med. 2015; 57 (4): 501–502. https://doi.org/10.2967/jnumed.115.168278; Zhang H., Liu N., Gao S., Hu X., Zhao W., Tao R., Chen Z., Zheng J., Sun X., Xu L., Li W., Yu J., Yuan S. Can an 18F-AlF-NOTA-PRGD2 PET/CT scan predict the treatment sensitivity of concurrent chemoradiotherapy in patients with newly diagnosed glioblastoma? J. Nucl. Med. 2016; 57: 524–529. https://doi.org/10.2967/jnumed.115.165514; Cescato R., Schulz S., Waser B., Eltschinger V., Rivier J.E., Wester H.J., Culler M., Ginj M., Liu Q., Schonbrunn A., Reubi J.C. Internalization of sst2, sst3, and sst5 receptors: effects of somatostatin agonists and antagonists. J. Nucl. Med. 2006; 47 (3): 502–511. https://doi.org/10.1111/bph.12551; Sollini M., Erba P.A., Fraternali A. PET and PET/CT with 68Gallium-labeled somatostatin analogues in non GEPNETs tumors. Sci. Wld J. 2014; 2014: Article ID 194123. https://doi.org/10.1155/2014/194123; Hofland L.J., Lamberts S.W. The pathophysiological consequences of somatostatin receptor internalization and resistance. Endocr. Rev. 2003; 24: 28–47. https://doi.org/10.1210/er.2000-0001; Virgolini I., Ambrosini V., Bomanji J.B., Baum R.P., Fanti S., Gabriel M., Papathanasiou N.D., Pepe G., Oyen W., De Cristoforo C., Chiti A. Procedure guidelines for PET/CT tumour imaging with 68Ga-DOTA-conjugated peptides: 68Ga-DOTA-TOC, 68Ga-DOTA-NOC, 68Ga-DOTA-TATE. Eur. J. Nucl. Med. Mol. Imaging. 2010; 37: 2004–2010. https://doi.org/10.1007/s00259-010-1512-3; Geijer H., Breimer L.H. Somatostatin receptor PET/CT in neuroendocrine tumours: update on systematic review and meta-analysis. Eur J. Nucl. Med. Mol. Imaging. 2013; 40 (11): 1770–1780. https://doi.org/10.1007/s00259-013-2482-z; Fani M., Nicolas G.P., Wild D. Somatostatin Receptor Antagonists for Imaging and Therapy. J. Nucl. Med. 2017; 58 (Suppl. 2): 61S–66S. https://doi.org/10.2967/jnumed.116.186783; Chan D.L.H., Pavlakis N., Schembri G.P., Bernard E.J., Hsiao E., Hayes A., Barnes T., Diakos C., Khasraw M., Samra J., Eslick E., Roach P.J., Clarke S.J., Bailey D.L. Dual somatostatin receptor/FDG PET/CT imaging in metastatic neuroendocrine tumours: proposal for a novel grading scheme with prognostic significance. Theranostics. 2017; 7 (5): 1149–1158. https://doi.org/10.7150/thno.18068; Hindié E. The NETPET Score: Combining FDG and Somatostatin Receptor Imaging for Optimal Management of Patients with Metastatic Well-Differentiated Neuroendocrine Tumors. Theranostics. 2017; 7 (5): 1159–1163. https://doi.org/10.7150/thno.19588; Fani M., Nicolas G.P., Wild D. Somatostatin receptor antagonists for imaging and therapy. J. Nucl. Med. 2017; 58: 61S–66S. https://doi.org/10.2967/jnumed.116.186783; Fani M., Peitl P.K., Velikyan I. Current Status of Radiopharmaceuticals for the Theranostics of Neuroendocrine Neoplasms. Pharmaceuticals. 2017; 10 (1): 30. https://doi.org/10.3390/ph10010030; Ginj M., Zhang H., Waser B., Cescato R., Wild D., Wang X., Erchegyi J., Rivier J., Mäcke H.R., Reubi J.C. Radiolabeled somatostatin receptor antagonists are preferable to agonists for in vivo peptide receptor targeting of tumors. Proceedings of the National Academy of Sciences. 2006; 103 (44): 16436–16441. https://doi.org/10.1073/pnas.0607761103; Lenzo N., Cardaci J., Meyrick D., Henderson A., Crouch J., Yeo S., Turner H. Lu-177 OPS-201 (satareotide) Trial for Metastatic Neuroendocrine Tumour. Доступно по: http://theranostics.com.au/wp-content/uploads/2016/05/Lu-177-OPS-201-Satareotide-Trial-for-Metastatic-Neuroendocrine-Tumours.pdf. Ссылка активна на 01.07.2019г.; Rylova S.N., Stoykow C., Del Pozzo L., Abiraj K., Tamma M.L., Kiefer Y., Fani M., Maecke H.R. The somatostatin receptor 2 antagonist 64Cu-NODAGA-JR11 outperforms 64Cu-DOTA-TATE in a mouse xenograft model. PLoS One. 2018; 13 (4): e0195802. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0195802; Ginj M., Zhang H., Waser B., Cescato R., Wild D., Wang X., Erchegyi J., Rivier J.R. Mäcke H.R, Reubi J.C. Radiolabeled somatostatin receptor antagonists are preferable to agonists for in vivo peptide receptor targeting of tumors. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2006; 3 (44): 16436–16441. https://doi.org/10.1073/pnas.0607761103; Nicolas G.P., Schreiter N., Kaul F., Uiters J., Bouterfa H., Kaufmann J., Wild D. Sensitivity comparison of 68GaOPS202 and 68Ga-DOTATOC PET/CT in patients with gastroenteropancreatic neuroendocrine tumors: a prospec tive phase II imaging study. J. Nuclear Med. 2017; 59 (6): 915–921. https://doi.org/10.2967/jnumed.117.199760; Kunz P.L. Carcinoid and neuroendocrine tumors: building on success. J. Clin. Oncol. 2015; 33: 1855–1863. https://doi.org/10.1200/JCO.2014.60.2532; Эндокринология: Национальное руководство. Краткое издание / Под ред. И.И. Дедова, Г.А. Мельниченко. М.: ГЭОТАР-Медиа, 2013. 752 с.; Bozkurt M.F., Virgolini I., Balogova S., Beheshti M., Rubello D., Decristoforo C., Ambrosini V., Kjaer A., Delgado-Bolton R., Kunikowska J., Oyen W.J.G., Chiti A., Giammarile F., Sundin A., Fanti S. Guideline for PET/CT imaging of neuroendocrine neoplasms with 68Ga-DOTAconjugated somatostatin receptor targeting peptides and 18F-DOPA. Eur. J. Nucl. Med. Mol. Imaging. 2017; 44 (9): 1588–1601. https://doi.org/10.1007/s00259-017-3728-y; Khayum M.A., Doorduin J. Glaudemans A.W.J.M., Dierckx R.A.J.O. , E.F.J., de Vries R.A.J.O. PET and SPECT of Neurobiological Systems. Chapter 14. Berlin; Heidelberg: Springer-Verlag, 2014.; Liu C., Gong C., Liu S., Zhang Y., Zhang Y., Xu X., Yuan H., Wang B., Yang Z. 18F-FES PET/CT influences the staging and management of newly diagnosed Oestrogen Receptor positive Breast Cancer Patients: A Retrospective Comparative Study with 18F-FDG PET/CT. J. Nucl. Med. 2019; 60 (1): 596.; Sun Y., Yang Z., Zhang Y., Xue J., Wang M., Shi W., Zhu B., Hu S., Yao Z., Pan H., Zhang Y. The preliminary study of 16α-[18F]fluoroestradiol PET/CT in assisting the individualized treatment decisions of breast cancer patients. PLoS ONE. 2015; 10 (1): e0116341. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0116341; Nienhuis H.H., van Kruchten M., Elias S.G., Glaudemans A.W.J.M., de Vries E.F.J., Bongaerts A.H.H., Schröder C.P., de Vries E.G.E., Hospers G.A.P. 18F-Fluoroestradiol Tumor Uptake Is Heterogeneous and Influenced by Site of Metastasis in Breast Cancer Patients. J. Nucl. Med. 2018; 59 (8): 1212–1218. https://doi.org/10.2967/jnumed.117.198846; Gong C., Yang Z., Sun Y., Zhang J., Zheng C., Wang L., Zhang Y., Xue J., Yao Z., Pan H., Wang B., Zhang Y. A preliminary study of 18F-FES PET/CT in predicting metastatic breast cancer in patients receiving docetaxel or fulvestrant with docetaxel. Scientific Reports. 2017; 7: 6584. https://doi.org/10.1038/s41598-017-06903-8; Mertan F.V., Lindenberg L., Choyke P.L., Turkbey B. PET imaging of recurrent and metastatic prostate cancer with novel tracers. Future Oncol. 2016; 12 (21): 2463–2477. https://doi.org/10.2217/fon-2016-0270; Horoszewicz J.S., Kawinski E., Murphy G.P. Monoclonal antibodies to a new antigenic marker in epithelial prostatic cells and serum of prostatic cancer patients. Anticancer Res. 1987; C (7): 27–935.; Afshar-Oromieh A., Babich J.W., Giesel C.K.F.L., Eisenhut M., Kopka K., Haberkorn U. The Rise of PSMA Ligands for Diagnosis and Therapy of Prostate Cancer. J Nucl Med. 2016;57:79S–89S. https://doi.org/10.2967/jnumed.115.170720; Giesel F.L., Kesch C., Yun M., Cardinale J., Haberkorn U., Kopka K., Kratochwil C., Hadaschik B.A. 18F-PSMA-1007 PET/CT detects micrometastases in a patient with biochemically recurrent prostate cancer. Clin. Genitourin Cancer. 2017; 15 (3): 497–499. https://doi.org/10.1016/j.clgc.2016.12.029; Леонтьев А.В., Рубцова Н.А., Халимон А.И., Кулиев М.Т., Пылова И.В., Лазутина Т.Н., Хамадеева Г.Ф., Алексеев Б.Я., Костин А.А., Каприн А.Д. Применение радиомеченых лигандов к простатспецифическому мембранному антигену для определения локализации био химического рецидива рака предстательной железы методом ПЭТ/КТ (обзор литературы). Медицинская визуализация. 2018; 22 (3): 81–97. https://doi.org/10.24835/1607-0763-2018-3-81-97.; Afshar-Oromieh A., Holland-Letz T., Giesel F.L., Kratochwil C., Mier W., Haufe S., Debus N., Eder M., Eisenhut M., Schäfer M., Neels O., Hohenfellner M., Kopka K., Kauczor H.U., Debus J., Haberkorn U. Diagnostic performance of (68Ga-PSMA-11 (HBED-CC) PET/CT in patients with recurrent prostate cancer: Evaluation in 1007 patients. Eur. J. Nucl. Med. Mol. Imaging. 2017; 44 (8): 1258–1268. https://doi.org/10.1007/s00259-017-3711-7; Schwenck J., Rempp H., Reischl G., Kruck S., Stenzl A., Nikolaou K., Pfannenberg C., la Fougère C. Comparison of 68Ga-labelled PSMA-11 and 11C-choline in the detection of prostate cancer metastases by PET/CT. Eur. J. Nucl. Med. Mol. Imaging. 2017; 44 (1): 92–101. https://doi.org/10.1007/s00259-016-3490-6; Roach P.J., Francis R., Emmett L., Hsiao E., Kneebone A., Hruby G., Eade T., Nguyen Q.A., Thompson B.D., Cusick T., McCarthy M., Tang C., Ho B., Stricker P.D., Scott A.M. The impact of 68Ga-PSMA PET/CT on management intent in prostate cancer: Results of an Australian prospective multicenter study. J. Nucl. Med. 2018; 59 (1): 82–88. https://doi.org/10.2967/jnumed.117.197160; Albisinni S., Artigas C., Aoun F., Biaou I., Grosman J., Gil T., Hawaux E., Limani K., Otte F.X., Peltier A., Sideris S., Sirtaine N., Flamen P., van Velthoven R. Clinical impact of 68Ga-prostate-specific membrane antigen (PSMA) positron emission tomography/computed tomography (PET/CT) in patients with prostate cancer with rising prostate-specific antigen after treatment with curative intent: Preliminary analysis of a multidisciplinary approach. BJU Int. 2017; 120 (2): 197–203. https://doi.org/10.1111/bju.13739; Велиев Е.И., Томилов А.А., Богданов А.Б. Спасительная лимфаденэктомия у пациентов с подтвержденным ПЭТ/КТ олигометастатическим рецидивом рака предстательной железы. Онкоурология. 2018; 14 (4): 79–86. https://doi.org/10.17650/1726-9776-2018-14-4-79-86; Kabasakal L., Demirci E., Ocak M. et al. Evaluation of PSMA PET/CT imaging using a 68Ga- HBED-CC ligand in patients with prostate cancer and the value of early pelvic imaging. Nucl. Med. Commun. 2015; C-36 (6): 582–587.; Giesel F.L., Knorr K., Spohn F. et al. Detection efficacy of [18F]PSMA-1007 PET/CT in 251 Patients with biochemical recurrence after radical prostatectomy. J. Nucl. Med. 2018; 60 (3): 362–368. https://doi.org/10.2967/jnumed.118.212233; Сакаева Д.Д., Гордиев М. Г. Рецептор эпидермального фактора роста как мишень молекулярно-направленной терапии у непредлеченых пациентов с немелкоклеточным раком легкого. Злокачественные опухоли. 2016; 3 (19). https://doi.org/10.18027/2224-5057-2016-3-54-59; Горбунова В.А., Артамонова Е.В., Бредер В.В., Лактионов К.К., Моисеенко Ф.В., Реутова Е.В. и др. Практические рекомендации по лекарственному лечению немелкоклеточного рака легкого. Злокачественные опухоли: Практические рекомендации RUSSCO; 3s2, 2017 (т. 7): с. 28–42.; Sun X., Xiao Z.,Chen G. et al. A PET imaging approach for determining EGFR mutation status for improved lung cancer patient management. Sci Transl. Med. 2018: 7: 10 (431). https://doi.org/10.1126/scitranslmed.aan8840; https://medvis.vidar.ru/jour/article/view/895

  18. 18
  19. 19
  20. 20