Search Results - "ГЕРПЕТИЧЕСКАЯ ИНФЕКЦИЯ"

1

Academic Journal

Analysis of the epidemiological situation and dynamics of the incidence of sexually transmitted infections in the Russian Federation over a ten-year period (2012–2022) ; Анализ эпидемиологической ситуации и динамики заболеваемости инфекциями, передаваемыми половым путем, в Российской Федерации за десятилетний период (2012–2022 гг.)

Authors: Rakhmatulina M.R., Novoselova E.Y., Melekhina L.E.

Contributors: State Research Center of Dermatovenereology and Cosmetology, Государственный научный центр дерматовенерологии и косметологии

Source: Vestnik dermatologii i venerologii; Vol 100, No 1 (2024); 8-23 ; Вестник дерматологии и венерологии; Vol 100, No 1 (2024); 8-23 ; 2313-6294 ; 0042-4609 ; 10.25208/vdv.1001

Subject Terms: morbidity, sexually transmitted infections, syphilis, trichomoniasis, gonococcal infection, chlamydia infection, anogenital herpes infection, anogenital (venereal) wart, epidemiology, заболеваемость, инфекции, передаваемые половым путем, сифилис, трихомониаз, гонококковая инфекция, хламидийная инфекция, аногенитальная герпетическая инфекция, аногенитальная (венерическая) бородавка, эпидемиология

File Description: application/pdf

Availability: https://vestnikdv.ru/jour/article/view/16741
https://doi.org/10.25208/vdv16741

View record from BASE

2

Academic Journal

Interferon gamma as a trigger of chronic viral infections and inflammatory dermatoses ; Интерферон гамма как триггер хронических вирусных инфекций и воспалительных дерматозов

Authors: E. Yu. Evdokimov, E. V. Svechnikova, Zh. B. Ponezheva, Е. Ю. Евдокимов, Е. В. Свечникова, Ж. Б. Понежева

Source: Meditsinskiy sovet = Medical Council; № 5 (2024); 214-220 ; Медицинский Совет; № 5 (2024); 214-220 ; 2658-5790 ; 2079-701X

Subject Terms: вирус иммунодефицита человека, inflammatory dermatoses, herpetic infection, human immunodeficiency virus, воспалительные дерматозы, герпетическая инфекция

File Description: application/pdf

Relation: https://www.med-sovet.pro/jour/article/view/8240/7263; Cordeiro PAS, Assone T, Prates G, Tedeschi MRM, Fonseca LAM, Casseb J. The role of IFN-γ production during retroviral infections: an important cytokine involved in chronic inflammation and pathogenesis. Rev Inst Med Trop Sao Paulo. 2022;64:e64. https://doi.org/10.1590/s1678-9946202264064.; Danastas K, Miranda-Saksena M, Cunningham AL. Herpes Simplex Virus Type 1 Interactions with the Interferon System. Int J Mol Sci. 2020;21(14):5150. https://doi.org/10.3390/ijms21145150.; Tichauer JE, Arellano G, Acuña E, González LF, Kannaiyan NR, Murgas P et al. Interferon-gamma ameliorates experimental autoimmune encephalomyelitis by inducing homeostatic adaptation of microglia. Front Immunol. 2023;14:1191838. https://doi.org/10.3389/fimmu.2023.1191838.; Liu W, Li M, Wang Z, Wang J. IFN-γ Mediates the Development of Systemic Lupus Erythematosus. Biomed Res Int. 2020:7176515. https://doi.org/10.1155/2020/7176515.; Burke JD, Young HA. IFN-γ: A cytokine at the right time, is in the right place. Semin Immunol. 2019;43:101280. https://doi.org/10.1016/j.smim.2019.05.002.; De Gruijter NM, Jebson B, Rosser EC. Cytokine production by human B cells: role in health and autoimmune disease. Clin Exp Immunol. 2022;210(3):253–262. https://doi.org/10.1093/cei/uxac090.; Jorgovanovic D, Song M, Wang L, Zhang Y. Roles of IFN-γ in tumor progression and regression: a review. Biomark Res. 2020;8:49. https://doi.org/10.1186/s40364-020-00228-x.; Kling JC, Jordan MA, Pitt LA, Meiners J, Thanh-Tran T, Tran LS et al. Temporal Regulation of Natural Killer T Cell Interferon Gamma Responses by β-CateninDependent and -Independent Wnt Signaling. Front Immunol. 2018;9:483. https://doi.org/10.3389/fimmu.2018.00483.; Khan AUH, Ali AK, Marr B, Jo D, Ahmadvand S, Fong-McMaster C et al. The TNFα/TNFR2 axis mediates natural killer cell proliferation by promoting aerobic glycolysis. Cell Mol Immunol. 2023;20(10):1140–1155. https://doi.org/10.1038/s41423-023-01071-4.; Coulibaly A, Bettendorf A, Kostina E, Figueiredo AS, Velásquez SY, Bock HG et al. Interleukin-15 Signaling in HIF-1α Regulation in Natural Killer Cells, Insights Through Mathematical Models. Front Immunol. 2019;10:2401. https://doi.org/10.3389/fimmu.2019.02401.; Kim IY, Kim HY, Song HW, Park JO, Choi YH, Choi E. Functional enhancement of exosomes derived from NK cells by IL-15 and IL-21 synergy against hepatocellular carcinoma cells: The cytotoxicity and apoptosis in vitro study. Heliyon. 2023;9(6):e16962. https://doi.org/10.1016/j.heliyon.2023.e16962.; Bláha J, Skálová T, Kalousková B, Skořepa O, Cmunt D, Grobárová V et al. Structure of the human NK cell NKR-P1:LLT1 receptor:ligand complex reveals clustering in the immune synapse. Nat Commun. 2022;13(1):5022. https://doi.org/10.1038/s41467-022-32577-6.; Liao CM, Zimmer MI, Wang CR. The functions of type I and type II natural killer T cells in inflammatory bowel diseases. Inflamm Bowel Dis. 2013;19(6):1330–1338. https://doi.org/10.1097/MIB.0b013e318280b1e3.; Ramirez R, Herrera AM, Ramirez J, Qian C, Melton DW, Shireman PK, Jin YF. Deriving a Boolean dynamics to reveal macrophage activation with in vitro temporal cytokine expression profiles. BMC Bioinformatics. 2019;20(1):725. https://doi.org/10.1186/s12859-019-3304-5.; Seyhan H, Akkermann O, Dooley S, Arkudas A, Horch RE, Fuchs PC et al. Transforming growth factor beta 1 induces endogenous expression of Interferon gamma in palmar connective tissues. Research Square. 2020. https://doi.org/10.21203/rs.3.rs-17190/v1.; Bian Y, Walter DL, Zhang C. Efficiency of Interferon-γ in Activating Dendritic Cells and Its Potential Synergy with Toll-like Receptor Agonists. Viruses. 2023;15(5):1198. https://doi.org/10.3390/v15051198.; Yanagawa Y, Iwabuchi K, Onoé K. Co-operative action of interleukin-10 and interferon-gamma to regulate dendritic cell functions. Immunology. 2009;127(3):345–353. https://doi.org/10.1111/j.1365-2567.2008.02986.x.; Kannan Y, Yu J, Raices RM, Seshadri S, Wei M, Caligiuri MA, Wewers MD. IκBζ augments IL-12- and IL-18-mediated IFN-γ production in human NK cells. Blood. 2011;117(10):2855–2863. https://doi.org/10.1182/blood-2010-07-294702.; Strengell M, Matikainen S, Sirén J, Lehtonen A, Foster D, Julkunen I, Sareneva T. IL-21 in synergy with IL-15 or IL-18 enhances IFN-gamma production in human NK and T cells. J Immunol. 2003;170(11):5464–5469. https://doi.org/10.4049/jimmunol.170.11.5464.; Hosking MP, Flynn CT, Whitton JL. Antigen-specific naive CD8+ T cells produce a single pulse of IFN-γ in vivo within hours of infection, but without antiviral effect. J Immunol. 2014;193(4):1873–1885. https://doi.org/10.4049/jimmunol.1400348.; Alspach E, Lussier DM, Schreiber RD. Interferon γ and Its Important Roles in Promoting and Inhibiting Spontaneous and Therapeutic Cancer Immunity. Cold Spring Harb Perspect Biol. 2019;11(3):a028480. https://doi.org/10.1101/cshperspect.a028480.; Kumar P. IFNγ-producing CD4+ T lymphocytes: the double-edged swords in tuberculosis. Clin Transl Med. 2017;6(1):21. https://doi.org/10.1186/s40169-017-0151-8.; Zhang J, Marotel M, Fauteux-Daniel S, Mathieu AL, Viel S, Marçais A, Walzer T. T-bet and Eomes govern differentiation and function of mouse and human NK cells and ILC1. Eur J Immunol. 2018;48(5):738–750. https://doi.org/10.1002/eji.201747299.; Szabo SJ, Kim ST, Costa GL, Zhang X, Fathman CG, Glimcher LH. A novel transcription factor, T-bet, directs Th1 lineage commitment. Cell. 2000;100(6):655–669. https://doi.org/10.1016/s0092-8674(00)80702-3.; Wang X, Wang L, Wen X, Zhang L, Jiang X, He G. Interleukin-18 and IL-18BP in inflammatory dermatological diseases. Front Immunol. 2023;14:955369. https://doi.org/10.3389/fimmu.2023.955369.; Gocher AM, Workman CJ, Vignali DAA. Interferon-γ: teammate or opponent in the tumour microenvironment? Nat Rev Immunol. 2022;22(3):158–172. https://doi.org/10.1038/s41577-021-00566-3.; Mercurio L, Albanesi C, Madonna S. Recent Updates on the Involvement of PI3K/AKT/mTOR Molecular Cascade in the Pathogenesis of Hyperproliferative Skin Disorders. Front Med (Lausanne). 2021;8:665647. https://doi.org/10.3389/fmed.2021.665647.; Lee AJ, Ashkar AA. The Dual Nature of Type I and Type II Interferons. Front Immunol. 2018;9:2061. https://doi.org/10.3389/fimmu.2018.02061.; Gutierrez MJ, Kalra N, Horwitz A, Nino G. Novel Mutation of Interferon-γ Receptor 1 Gene Presenting as Early Life Mycobacterial Bronchial Disease. J Investig Med High Impact Case Rep. 2016;4(4):2324709616675463. https://doi.org/10.1177/2324709616675463.; Pollard KM, Cauvi DM, Toomey CB, Morris KV, Kono DH. Interferon-γ and systemic autoimmunity. Discov Med. 2013;16(87):123–131. Available at: https://www.discoverymedicine.com/Kenneth-M-Pollard/2013/08/26/interferon-gamma-and-systemic-autoimmunity/.; Тарасова ЛВ, Бусалаева ЕИ. Болезнь Крона с поражением кожи в виде гангренозной пиодермии (клинический случай). Лечащий врач. 2022;(7-8):57–61. https://doi.org/10.51793/OS.2022.25.8.009.; Wang F, Zhang S, Jeon R, Vuckovic I, Jiang X, Lerman A et al. Interferon Gamma Induces Reversible Metabolic Reprogramming of M1 Macrophages to Sustain Cell Viability and Pro-Inflammatory Activity. EBioMedicine. 2018;30:303–316. https://doi.org/10.1016/j.ebiom.2018.02.009.; Su X, Yu Y, Zhong Y, Giannopoulou EG, Hu X, Liu H et al. Interferon-γ regulates cellular metabolism and mRNA translation to potentiate macrophage activation. Nat Immunol. 2015;16(8):838–849. https://doi.org/10.1038/ni.3205.; Rojas D, Krishnan R. IFN-gamma generates maturation-arrested dendritic cells that induce T cell hyporesponsiveness independent of Foxp3+ T-regulatory cell generation. Immunol Lett. 2010;132(1-2):31–37. https://doi.org/10.1016/j.imlet.2010.05.003.; Zhang L, Ying Y, Chen S, Arnold PR, Tian F, Minze LJ et al. The transcription factor RelB restrains group 2 innate lymphoid cells and type 2 immune pathology in vivo. Cell Mol Immunol. 2021;18(1):230–242. https://doi.org/10.1038/s41423-020-0404-0.; Huang JB, Chen ZR, Yang SL, Hong FF. Nitric Oxide Synthases in Rheumatoid Arthritis. Molecules. 2023;28(11):4414. https://doi.org/10.3390/molecules28114414.; Santus P, Rizzi M, Radovanovic D, Airoldi A, Cristiano A, Conic R et al. Psoriasis and Respiratory Comorbidities: The Added Value of Fraction of Exhaled Nitric Oxide as a New Method to Detect, Evaluate, and Monitor Psoriatic Systemic Involvement and Therapeutic Efficacy. Biomed Res Int. 2018:3140682. https://doi.org/10.1155/2018/3140682.; Bao Y, Liu X, Han C, Xu S, Xie B, Zhang Q et al. Identification of IFN-γ-producing innate B cells. Cell Res. 2014;24(2):161–176. https://doi.org/10.1038/cr.2013.155.; Olatunde AC, Hale JS, Lamb TJ. Cytokine-skewed Tfh cells: functional consequences for B cell help. Trends Immunol. 2021;42(6):536–550. https://doi.org/10.1016/j.it.2021.04.006.; Kiritsy MC, Ankley LM, Trombley J, Huizinga GP, Lord AE, Orning P et al. A genetic screen in macrophages identifies new regulators of IFNγ-inducible MHCII that contribute to T cell activation. Elife. 2021;10:e65110. https://doi.org/10.7554/eLife.65110.; Петрова НВ, Емельянова АГ, Ковальчук АЛ, Тарасов СА. Роль молекул MHC I и II в антибактериальном иммунитете и лечении бактериальных инфекций. Антибиотики и химиотерапия. 2022;67(7-8):71–81. https://doi.org/10.37489/0235-2990-2022-67-7-8-71-81.; Cazzaniga A, Miranda V, Castiglioni S, Maier JA. The Different Effects of Pharmacological or Low-Doses of IFN-γ on Endothelial Cells are Mediated by Distinct Intracellular Signalling Pathways. J Biol Regul Homeost Agents. 2024;38(1):111–122. https://doi.org/10.23812/j.biol.regul.homeost.agents.20243801.8.; Ng CT, Fong LY, Abdullah MNH. Interferon-gamma (IFN-γ): Reviewing its mechanisms and signaling pathways on the regulation of endothelial barrier function. Cytokine. 2023;166:156208. https://doi.org/10.1016/j.cyto.2023.156208.; Kang S, Brown HM, Hwang S. Direct Antiviral Mechanisms of InterferonGamma. Immune Netw. 2018;18(5):e33. https://doi.org/10.4110/in.2018.18.e33.; Shao H, Kaplan HJ, Sun D. Bidirectional Effect of IFN-γ on Th17 Responses in Experimental Autoimmune Uveitis. Front Ophthalmol (Lausanne). 2022;2:831084. https://doi.org/10.3389/fopht.2022.831084.; Kato H, Endres J, Fox DA. The roles of IFN-γ versus IL-17 in pathogenic effects of human Th17 cells on synovial fibroblasts. Mod Rheumatol. 2013;23(6):1140–1150. https://doi.org/10.1007/s10165-012-0811-x.; Ong PY. Atopic dermatitis: Is innate or adaptive immunity in control? A clinical perspective. Front Immunol. 2022;13:943640. https://doi.org/10.3389/fimmu.2022.943640.; Brar K, Leung DY. Recent considerations in the use of recombinant interferon gamma for biological therapy of atopic dermatitis. Expert Opin Biol Ther. 2016;16(4):507–514. https://doi.org/10.1517/14712598.2016.1135898.; Kanoh H, Ishitsuka A, Fujine E, Matsuhaba S, Nakamura M, Ito H et al. IFN-γ Reduces Epidermal Barrier Function by Affecting Fatty Acid Composition of Ceramide in a Mouse Atopic Dermatitis Model. J Immunol Res. 2019:3030268. https://doi.org/10.1155/2019/3030268.; Bin L, Edwards MG, Heiser R, Streib JE, Richers B, Hall CF, Leung DY. Identification of novel gene signatures in patients with atopic dermatitis complicated by eczema herpeticum. J Allergy Clin Immunol. 2014;134(4):848–855. https://doi.org/10.1016/j.jaci.2014.07.018.; Damour A, Garcia M, Seneschal J, Lévêque N, Bodet C. Eczema Herpeticum: Clinical and Pathophysiological Aspects. Clin Rev Allergy Immunol. 2020;59(1):1–18. https://doi.org/10.1007/s12016-019-08768-3.; Fagundes BO, de Sousa TR, Nascimento A, Fernandes LA, Sgnotto FDR, Orfali RL et al. IgG from Adult Atopic Dermatitis (AD) Patients Induces Nonatopic Neonatal Thymic Gamma-Delta T Cells (γδT) to Acquire IL-22/IL-17 Secretion Profile with Skin-Homing Properties and Epigenetic Implications Mediated by miRNA. Int J Mol Sci. 2022;23(12):6872. https://doi.org/10.3390/ijms23126872.; Cao Y, Song Z, Guo Z, Zhao X, Gong Y, Zhao K et al. Cytokines in the Immune Microenvironment Change the Glycosylation of IgG by Regulating Intracellular Glycosyltransferases. Front Immunol. 2022;12:724379. https://doi.org/10.3389/fimmu.2021.724379.; Machado NR, Fagundes BO, Fernandes LA, de Oliveira ACP, Nukui Y, Casseb J et al. Differential modulation of IL-4, IL-10, IL-17, and IFN-γ production mediated by IgG from Human T-lymphotropic virus-1 (HTLV-1) infected patients on healthy peripheral T (CD4+, CD8+, and γδ) and B cells. Front Med (Lausanne). 2023;10:1239706. https://doi.org/10.3389/fmed.2023.1239706.; Ghalili S, David E, Ungar B, Tan K, Lang CCV, Meariman M et al. IL-12/23- targeting in seborrheic dermatitis patients leads to long-lasting response. Arch Dermatol Res. 2023;315(10):2937–2940. https://doi.org/10.1007/s00403-023-02680-9.; Kobayashi T, Voisin B, Kim DY, Kennedy EA, Jo JH, Shih HY et al. Homeostatic Control of Sebaceous Glands by Innate Lymphoid Cells Regulates Commensal Bacteria Equilibrium. Cell. 2019;176(5):982–997.e16. https://doi.org/10.1016/j.cell.2018.12.031.; Ito A, Sugita K, Goto H, Yamamoto O. Implication of Perifollicular Clusters and Folliculotropic Distribution of Dendritic Cells in the Pathogenesis of Seborrhoeic Dermatitis. Acta Derm Venereol. 2020;100(13):adv00183. https://doi.org/10.2340/00015555-3519.; Dall’Oglio F, Nasca MR, Gerbino C, Micali G. An Overview of the Diagnosis and Management of Seborrheic Dermatitis. Clin Cosmet Investig Dermatol. 2022;15:1537–1548. https://doi.org/10.2147/CCID.S284671.; Барило АА, Смирнова СВ. Аллергия и себорейный дерматит – причинноследственная взаимосвязь. Бюллетень сибирской медицины. 2022;21(2):13–18. https://doi.org/10.20538/1682-0363-2022-2-13-18.; Jahan I, Islam MR, Islam MR, Ali R, Rahman SMM, Nahar Z et al. Altered serum elements, antioxidants, MDA, and immunoglobulins are associated with an increased risk of seborrheic dermatitis. Heliyon. 2021;7(3):e06621. https://doi.org/10.1016/j.heliyon.2021.e06621.; Mahlangeni GM, Tod BM, Jordaan HF, Schneider JW. Clinicopathological Features of Seborrheic-Like Dermatitis in HIV-Infected Adults: A Single Institutional Descriptive Cross-Sectional Study. Am J Dermatopathol. 2021;43(1):27–34. https://doi.org/10.1097/DAD.0000000000001670.; Watanabe D, Uehira T, Suzuki S, Matsumoto E, Ueji T, Hirota K et al. Clinical characteristics of HIV-1-infected patients with high levels of plasma interferon-γ: a multicenter observational study. BMC Infect Dis. 2019;19(1):11. https://doi.org/10.1186/s12879-018-3643-2.; Sun Y, Zhou J, Jiang Y. Negative Regulation and Protective Function of Natural Killer Cells in HIV Infection: Two Sides of a Coin. Front Immunol. 2022;13:842831. https://doi.org/10.3389/fimmu.2022.842831.; Ivison GT, Vendrame E, Martínez-Colón GJ, Ranganath T, Vergara R, Zhao NQ et al. Natural Killer Cell Receptors and Ligands Are Associated With Markers of HIV-1 Persistence in Chronically Infected ART Suppressed Patients. Front Cell Infect Microbiol. 2022;12:757846. https://doi.org/10.3389/fcimb.2022.757846.; Dang LVP, Pham VH, Nguyen DM, Dinh TT, Nguyen TH, Le TH et al. Elevation of immunoglobulin levels is associated with treatment failure in HIV-infected children in Vietnam. HIV AIDS (Auckl). 2018;11:1–7. https://doi.org/10.2147/HIV.S181388.; Wang H, Peng W, Wang J, Zhang C, Zhao W, Ran Y et al. Human Cytomegalovirus UL23 Antagonizes the Antiviral Effect of Interferon-γ by Restraining the Expression of Specific IFN-Stimulated Genes. Viruses. 2023;15(4):1014. https://doi.org/10.3390/v15041014.; Jangra S, Bharti A, Lui WY, Chaudhary V, Botelho MG, Yuen KS, Jin DY. Suppression of JAK-STAT Signaling by Epstein-Barr Virus Tegument Protein BGLF2 through Recruitment of SHP1 Phosphatase and Promotion of STAT2 Degradation. J Virol. 2021;95(20):e0102721. https://doi.org/10.1128/JVI.01027-21.; Shahnazaryan D, Khalil R, Wynne C, Jefferies CA, Ní Gabhann-Dromgoole J, Murphy CC. Herpes simplex virus 1 targets IRF7 via ICP0 to limit type I IFN induction. Sci Rep. 2020;10(1):22216. https://doi.org/10.1038/s41598-020-77725-4.

Availability: https://www.med-sovet.pro/jour/article/view/8240
https://doi.org/10.21518/ms2024-057

View record from BASE

3

Academic Journal

Non-immune hydrops fetalis: etiology, pathogenesis, features of diagnosis and treatment in the fetus and newborn ; Неиммунная водянка плода: этиология, патогенез, особенности диагностики и лечения у плода и новорожденного

Authors: S. V. Dumova, H. A. Sarkisyan, O. L. Chugunova, I. D. Prokhorov, M. I. Nikolaeva, M. R. Globa, D. I. Nam, I. V. Zhuravleva, P. V. Shumilov, С. В. Думова, Е. А. Саркисян, О. Л. Чугунова, И. Д. Прохоров, М. И. Николаева, М. Р. Глоба, Д. И. Нам, И. В. Журавлева, П. В. Шумилов

Source: CHILDREN INFECTIONS; Том 23, № 1 (2024); 35-43 ; ДЕТСКИЕ ИНФЕКЦИИ; Том 23, № 1 (2024); 35-43 ; 2618-8139 ; 2072-8107

Subject Terms: врожденные пороки развития, parvovirus infection, herpetic infection, toxoplasmosis, syphilis, “mirror” syndrome, cardiac conduction disorder in the fetus, fetal hepatitis, fetal myocarditis, congenital malformations, парвовирусная инфекция, герпетическая инфекция, токсоплазмоз, сифилис, «зеркальный» синдром, нарушение сердечной проводимости у плода, фетальный гепатит, фетальный миокардит

File Description: application/pdf

Relation: https://detinf.elpub.ru/jour/article/view/914/653; Кадырбердиева Ф.З., Шмаков Р.Г., Бокерия Е.Л. Неиммунная водянка плода: современные принципы диагностики и лечения. Акушерство и гинекология. 2019; 10:28—34. https://dx.doi.org/10.18565/aig.2019.10.28-34; Guo D, He S, Lin N, Dai Y, Li Y, Xu L at al. Genetic disorders and pregnancy outcomes of non-immune hydrops fetalis in a tertiary referral center. BMC Med Genomics. 2023 Apr 20; 16(1):83. DOI:10.1186/s12920-023-01505-y; Society for Maternal-Fetal Medicine (SMFM); Norton ME, Chauhan SP, Dashe JS. Society for maternal-fetal medicine (SMFM) clinical guideline 7: nonimmune hydrops fetalis. Am J Obstet Gynecol. 2015 Feb; 212(2):127— 39. DOI:10.1016/j.ajog.2014.12.018; Bellini C, Donarini G, Paladini D, Calevo MG, Bellini T, Ramenghi LA at al. Etiology of non-immune hydrops fetalis: An update. Am J Med Genet A. 2015 May; 167A(5):1082—8. DOI:10.1002/ajmg.a.36988; Quinn AM, Valcarcel BN, Makhamreh MM, Al-Kouatly HB, Berger SI. A systematic review of monogenic etiologies of nonimmune hydrops fetalis. Genet Med. 2021 Jan; 23(1):3—12. DOI:10.1038/s41436-020-00967-0; Tolia VN, Hunter Clark R Jr, Perelmuter B, Frankfurt JA, Ahmad KA, Abrams ME at al. Hydrops fetalis-trends in associated diagnoses and mortality from 1997—2018. J Perinatol. 2021 Oct; 41(10):2537—2543. DOI:10.1038/s41372-021-01179-3; Steurer MA, Peyvandi S, Baer RJ, MacKenzie T, Li BC, Norton ME at al. Epidemiology of Live Born Infants with Nonimmune Hydrops Fetalis-Insights from a Population-Based Dataset. J Pediatr. 2017 Aug; 187:182—188.e3. DOI:10.1016/j.jpeds.2017.04.025; Vanaparthy R, Mahdy H. Hydrops Fetalis. [Updated 2022 Sep 26]. In: StatPearls [Internet]. Treasure Island (FL): StatPearls Publishing; 2023 Jan-. Available from: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/NBK563214/; Derderian SC, Jeanty C, Fleck SR, Cheng LS, Peyvandi S, Moon-Grady AJ at al. The many faces of hydrops. J Pediatr Surg. 2015 Jan; 50(1):50—4; discussion 54. DOI:10.1016/j.jpedsurg.2014.10.027; Kearney, H.M., et al., American College of Medical Genetics standards and guidelines for interpretation and reporting of postnatal constitutional copy number variants. Genet Med. 2011; 13(7):680—5.; Sileo FG, Kulkarni A, Branescu I, Homfray T, Dempsey E, Mansour S at al. Non-immune fetal hydrops: etiology and outcome according to gestational age at diagnosis. Ultrasound Obstet Gynecol. 2020 Sep; 56(3):416— 421. DOI:10.1002/uog.22019; Laterre M, Bernard P, Vikkula M, Sznajer Y. Improved diagnosis in nonimmune hydrops fetalis using a standardized algorithm. Prenat Diagn. 2018 Apr; 38(5):337—343. DOI:10.1002/pd.5243; Hartge DR, Weichert J, Gembicki M, Krapp M. Confirmation of etiology in fetal hydrops by sonographic evaluation of fluid allocation patterns. Eur J Obstet Gynecol Reprod Biol. 2015 Dec; 195:128—132. DOI:10.1016/j.ejogrb.2015.09.006; He S, Wang L, Pan P, Wei H, Meng D, Du J at al. Etiology and Perinatal Outcome of Nonimmune Hydrops Fetalis in Southern China. AJP Rep. 2017 Apr; 7(2):e111-e115. DOI:10.1055/s-0037-1603890; Кадырбердиева Ф.З., Шмаков Р.Г., Бокерия Е.Л., Тетруашвили Н.К., Костюков К.В., Донников А.Е. и др. Неиммунная водянка плода: основные причины. Акушерство и гинекология. 2019; 11:186—91. https://dx.doi.org/10.18565/aig.2019.11.186-191; Yuan SM. Cardiac Etiologies of Hydrops Fetalis. Z Geburtshilfe Neonatol. 2017 Apr; 221(2):67—72. DOI:10.1055/s-0042-123825; Козлов П.В., Кузнецов П.А., Леонова Е.И., Константинова К.И. Неиммунная водянка плода. Современный взгляд на проблемы этиологии, патогенеза и перинатального исхода. Проблемы репродукции. 2014; (6):83-87.; Aryal K, Regmi PR, Adhikari G, Bhhattarai U, Sedhain SP. Congenital pulmonary airway malformation (CPAM): A case report and review of the literature. Radiol Case Rep. 2023 Jul 25; 18(10):3483—3486. DOI:10.1016/j.radcr.2023.07.018; Дубова Е.А., Павлов К.А., Кучеров Ю.И., Жиркова Ю.В., Кулабухова Е.А., Щёголев А.И. Внелегочная секвестрация легкого. Российский вестник детской хирургии, анестезиологии и реаниматологии. 2011; 2:53—59.; Holden KI, Harting MT. Recent advances in the treatment of complex congenital diaphragmatic hernia-a narrative review. Transl Pediatr. 2023 Jul 31; 12(7):1403—1415. DOI:10.21037/tp-23-240; Suzumura H, Arisaka O. Cerebro-oculo-facio-skeletal syndrome. Adv Exp Med Biol. 2010; 685:210—4. DOI:10.1007/978-1-4419-6448-9_19; Mohtisham FS, Sallam A, Shawli A. Lethal multiple pterygium syndrome. BMJ Case Rep. 2019 May 8; 12(5):e229045. DOI:10.1136/bcr-2018-229045; Bellini C, Hennekam RC. Non-immune hydrops fetalis: a short review of etiology and pathophysiology. Am J Med Genet A. 2012 Mar; 158A(3):597— 605. DOI:10.1002/ajmg.a.34438; Swearingen C, Colvin ZA, Leuthner SR. Nonimmune Hydrops Fetalis. Clin Perinatol. 2020 Mar; 47(1):105—121. DOI:10.1016/j.clp.2019.10.001; Essary L.R. et aL. Frequency of parvovirus B19 infection in nonimmune hydrops fetaLis and utiLity of three diagnostic methods. Hum. PathoL. 1998; 29(7):696—701.; Faye-Petersen OM, Heller DS. Pathology of the stillborn infant for the general pathologist: part 2. Adv Anat Pathol. 2015 Mar; 22(2):71—93. DOI:10.1097/PAP.0000000000000060; Pfister KM, Schleiss MR, Reed RC, George TN. Non-immune hydrops fetalis caused by herpes simplex virus type 2 in the setting of recurrent maternal infection. J Perinatol. 2013 Oct; 33(10):817—20. DOI:10.1038/jp.2013.68; Garcia-Manau P, Garcia-Ruiz I, Rodo C, Sulleiro E, Maiz N, Catalan M at al. Fetal Transient Skin Edema in Two Pregnant Women With Coronavirus Disease 2019 (COVID-19). Obstet Gynecol. 2020 Nov; 136(5):1016— 1020. DOI:10.1097/AOG.0000000000004059; Diehl W, Diemert A, Hecher K. Twin-twin transfusion syndrome: treatment and outcome. Best Pract Res Clin Obstet Gynaecol. 2014 Feb; 28(2):227— 38. DOI:10.1016/j.bpobgyn.2013.12.001; Fan M, Skupski DW. Placental chorioangioma: literature review. J Perinat Med. 2014 May; 42(3):273—9. DOI:10.1515/jpm-2013-0170; Al-Kouatly HB, Felder L, Makhamreh MM, Kass SL, Vora NL, Berghella V at al. Lysosomal storage disease spectrum in nonimmune hydrops fetalis: a retrospective case control study. Prenat Diagn. 2020 May; 40(6):738— 745. DOI:10.1002/pd.5678; Фаассен М.В. RAS-патии: синдром Нунан и другие родственные заболевания. Обзор литературы. Проблемы Эндокринологии. 2014; 60(6):45—52.; Kim SA, Lee SM, Hong JS, Lee J, Park CW, Kim BJ at al. Ultrasonographic severity scoring of non-immune hydrops: a predictor of perinatal mortality. J Perinat Med. 2015 Jan; 43(1):53—9. DOI:10.1515/jpm-2013-0208; An X, Wang J, Zhuang X, Dai J, Lu C, Li X at al. Clinical Features of Neonates with Hydrops Fetalis. Am J Perinatol. 2015 Nov; 32(13):1231—9. DOI:10.1055/s-0035-1552934; Huang HR, Tsay PK, Chiang MC, Lien R, Chou YH. Prognostic factors and clinical features in liveborn neonates with hydrops fetalis. Am J Perinatol. 2007 Jan; 24(1):33—8. DOI:10.1055/s-2006-958158; Abdellatif M, Alsinani S, Al-Balushi Z, Al-Dughaishi T, Abuanza M, Al-Riyami N. Spontaneous resolution of fetal and neonatal ascites after birth. Sultan Qaboos Univ Med J. 2013 Feb; 13(1):175—8. DOI:10.12816/0003216; Dreux S, Salomon LJ, Rosenblatt J, Favre R, Houfflin-Debarge V, Broussin B at al. Biochemical analysis of ascites fluid as an aid to etiological diagnosis: a series of 100 cases of nonimmune fetal ascites. Prenat Diagn. 2015 Mar; 35(3):214—20. DOI:10.1002/pd.4522; Teles Abrao Trad A, Czeresnia R, Elrefaei A, Ibirogba ER, Narang K, Ruano R. What do we know about the diagnosis and management of mirror syndrome? J Matern Fetal Neonatal Med. 2022 Oct; 35(20):4022—4027. DOI:10.1080/14767058.2020.1844656; Khairudin, D., Alfirevic Z., Mone F., Navaratnam, K. Non-immune hydrops fetalis: a practical guide for obstetricians. Obstet Gynecol, 2023; 25:110— 120. https://DOI.org/10.1111/tog.12862; Yeom W, Paik ES, An JJ, Oh SY, Choi SJ, Roh CR at al. Clinical characteristics and perinatal outcome of fetal hydrops. Obstet Gynecol Sci. 2015 Mar; 58(2):90—7. DOI:10.5468/ogs.2015.58.2.90; Kosinski P, Krajewski P, Wielgos M, Jezela-Stanek A. Nonimmune Hydrops Fetalis-Prenatal Diagnosis, Genetic Investigation, Outcomes and Literature Review. J Clin Med. 2020 Jun 8; 9(6):1789. DOI:10.3390/jcm9061789; Sparks TN, Thao K, Lianoglou BR, Boe NM, Bruce KG, Datkhaeva I, et al.; University of California Fetal-Maternal Consortium (UCfC). Nonimmune hydrops fetalis: identifying the underlying genetic etiology. Genet Med. 2019 Jun; 21(6):1339—1344. DOI:10.1038/s41436-018-0352-6; Cömert HSY, Kader Ş, Osmanağaoğlu MA, Ural DA, Yaşar ÖF, İmamoğlu M at al. Prenatal and Postnatal Management of Intrauterine Pleural Effusions Associated with Nonimmune Hydrops Fetalis. Am J Perinatol. 2022 Oct; 39(13):1405—1409. DOI:10.1055/s-0040-1721689; Вахитова Л.Ф., Казакова Ф.М., Абдульмянова Г.Ф., Ишкина Ф.А. Клинический случай врожденной парвовирусной инфекции у новорожденного ребенка. Практическая медицина, 2019; 17(8):125—128.; Долгих Т.И. Токсоплазмоз: современная стратегия лабораторной диагностики. Инфекция и иммунитет, 2011; 1(1):43-50.; Bouthry E, Picone O, Hamdi G, Grangeot-Keros L, Ayoubi JM, Vauloup-Fellous C. Rubella and pregnancy: diagnosis, management and outcomes. Prenat Diagn. 2014 Dec; 34(13):1246—53. DOI:10.1002/pd.4467; Fowler KB, Boppana SB. Congenital cytomegalovirus infection. Semin Perinatol. 2018 Apr; 42(3):149—154. DOI:10.1053/j.semperi.2018.02.002; Фриго Н.В., Жукова О.В., Сапожникова Н.А. Современные лабораторные методы и алгоритмы диагностики сифилиса. Клиническая дерматология и венерология. 2015; 14(6):56-61. https://DOI.org/10.17116/klinderma201514656-61; Wagner T, Fahham D, Frumkin A, Shaag A, Yagel S, Yanai N at al. The many etiologies of nonimmune hydrops fetalis diagnosed by exome sequencing. Prenat Diagn. 2022 Jun; 42(7):881—889. DOI:10.1002/pd.5977; Овсянников Д.Ю., Володин Н.Н. Заболевания легких у новорожденных: трудности диагностики, диагностические критерии и последствия. Педиатрия им. Г.Н. Сперанского. 2022; 101(3):170—177. DOI:10.24110/0031-403X-2022-101-3-170-177; Кудакова А.М., Литвинов Н.И., Каленова И.Е., Казанцева И.В., Зубанов А.Г. Врожденная гигантская артериовенозная мальформация. Анналы клинической и экспериментальной неврологии, 2010; 4(1):49—52.; Gonçalves FG, Caschera L, Teixeira SR, Viaene AN, Pinelli L, Mankad K at al. Intracranial calcifications in childhood: Part 1. Pediatr Radiol. 2020 Sep; 50(10):1424—1447. DOI:10.1007/s00247-020-04721-1; Поляев Ю.А., Гарбузов Р.В., Мыльников А.А., Нарбутов А.Г., Поляев А.Ю. Дифференцированный подход к диагностике и лечению гемангиом печени у детей. Детская хирургия, 2017; 21(2):77—81.; Павлова В.С., Крючко Д.С., Подуровская Ю.Л., Пекарева Н.А. Врожденные пороки развития почек и мочевыводящих путей: анализ современных принципов диагностики и прогностически значимых маркеров поражения почечной ткани. Неонатология: Новости. Мнения. Обучение, 2018; 2(20):78—86. DOI:10.24411/2308-2402-2018-00020; Кадырбердиева Ф.З., Шмаков Р.Г., Бокерия Е.Л., Костюков К.В., Тетруашвили Н.К. Сравнительный анализ активной и выжидательной тактики ведения беременных с неиммунной водянкой плода. Акушерство и гинекология. 2021; 2:55—60. doi.org/10.18565/aig.2021.2.55-60; Бокерия Е.Л., Беспалова Е.Д. Фетальные аритмии: результаты диагностики и лечения. Анналы аритмологии, 2008; 5(2):19—27.; Hill GD, Kovach JR, Saudek DE, Singh AK, Wehrheim K, Frommelt MA. Transplacental treatment of fetal tachycardia: A systematic review and metaanalysis. Prenat Diagn. 2017 Nov; 37(11):1076—1083. DOI:10.1002/pd.5144; Котлукова Н.П., Рыбалко Н.А., Казанцева И.А., Симонова Л.В., Крутова А.В. Особенности диагностики, течение и исходы атриовентрикулярных блокад у новорожденных и детей раннего возраста. Педиатрия им. Г.Н. Сперанского. 2015; 94(1):45—50.; Peeples ES. An evaluation of hydrocortisone dosing for neonatal refractory hypotension. J Perinatol. 2017 Aug; 37(8):943—946. DOI:10.1038/jp.2017.68; Prefumo F, Fichera A, Fratelli N, Sartori E. Fetal anemia: Diagnosis and management. Best Pract Res Clin Obstet Gynaecol. 2019 Jul; 58:2—14. DOI:10.1016/j.bpobgyn.2019.01.001; Schrey S, Kelly EN, Langer JC, Davies GA, Windrim R, Seaward PG at al. Fetal thoracoamniotic shunting for large macrocystic congenital cystic adenomatoid malformations of the lung. Ultrasound Obstet Gynecol. 2012 May; 39(5):515—20. DOI:10.1002/uog.11084; Czernik C, Proquitté H, Metze B, Bührer C. Hydrops fetalis — has there been a change in diagnostic spectrum and mortality? J Matern Fetal Neonatal Med. 2011 Feb; 24(2):258—63. DOI:10.3109/14767058.2010.483522; Unal ET, Bulbul A, Bas EK, Uslu HS. Frequency and Prognosis of Hydrops Fetalis: A 10-Year Single-Center Experience. Sisli Etfal Hastan Tip Bul. 2021 Sep 24; 55(3):366—373. DOI:10.14744/SEMB.2021.65632; https://detinf.elpub.ru/jour/article/view/914

Availability: https://detinf.elpub.ru/jour/article/view/914
https://doi.org/10.22627/2072-8107-2024-23-1-35-43

View record from BASE

4

Academic Journal

Особенности клинического течения инфекции, вызванной вирусом герпеса человека 6 типа у детей ; Features of the clinical course of infection caused by the human herpes virus type 6 in children

Authors: Shikhabidova, I. M., Kusajko, A. N., Kozhevnikova, L. A., Шихабидова, И. М., Кусайко, А. Н., Кожевникова, Л. А.

Source: Сборник статей

Subject Terms: HERPES INFECTIONS, HERPES VIRUS HUMAN 6 TYPE, HHV-6, CLINICAL COURSE, DIAGNOSTICS, CHILDREN, ГЕРПЕТИЧЕСКАЯ ИНФЕКЦИЯ, ВИРУС ГЕРПЕСА ЧЕЛОВЕКА 6 ТИПА, ВГЧ-6, КЛИНИЧЕСКОЕ ТЕЧЕНИЕ, ДИАГНОСТИКА, ДЕТИ

File Description: application/pdf

Relation: Актуальные вопросы современной медицинской науки и здравоохранения: сборник статей VIII Международной научно-практической конференции молодых учёных и студентов, Екатеринбург, 19-20 апреля 2023 г.; http://elib.usma.ru/handle/usma/14375

Availability: http://elib.usma.ru/handle/usma/14375

View record from BASE

5

Academic Journal

Influence of pre-gravid preparation on the course and outcomes of the pregnancy in genital herpes ; Влияние прегравидарной подготовки на течение и исходы беременности при рецидивирующем генитальном герпесе

Authors: O. I. Mikhailova, N. E. Kan, D. D. Mirzabekova, V. L. Tyutyunnik, О. И. Михайлова, Н. Е. Кан, Д. Д. Мирзабекова, В. Л. Тютюнник

Source: Meditsinskiy sovet = Medical Council; № 16 (2022); 108-115 ; Медицинский Совет; № 16 (2022); 108-115 ; 2658-5790 ; 2079-701X

Subject Terms: Галавит, immune modulator, pregravid preparation, virus, herpes infection, aminodihydroph thalazinedione sodium, Galavit, иммуномодулирующая терапия, прегравидарная подготовка, вирус, герпетическая инфекция, аминодигидрофталазиндион натрия

File Description: application/pdf

Relation: https://www.med-sovet.pro/jour/article/view/7097/6371; Management of Genital Herpes in Pregnancy: ACOG Practice Bulletinacog Practice Bulletin, Number 220. Obstet Gynecol. 2020; 135 (5): e193-e202. https://doi.org/10.1097/AOG.0000000000003840.; Алимбалова Л. М. Простой герпес (ПГ) у взрослых: клинические рекомендации / Л. М. Алимбалова [и др.] – М., 2016. – 44 с. Режим доступа: http://neovir.info/wp-content/uploads/2020/05/%D0%9A%D0%A0492_%D0%BF%D1%80%D0%BE%D1%81%D1%82%D0%BE%D0%B9-%D0%B3%D0%B5%D1%80%D0%BF%D0%B5%D1%81-2016.pdf. – Alimbarova L. M., Barinsky I. F., Shestakova I. V., Esaulenko E. V., Sukhoruk A. A. Herpes simplex (HS) in adults: Clinical guidelines. Moscow; 2016. 44 p. (In Russ.) Available at: http://neovir.info/wp-content/uploads/2020/05/%D0%9A%D0%A0492_%D0%BF%D1%80%D0%BE%D1%81%D1%82%D0%BE%D0%B9-%D0%B3%D0%B5%D1%80%D0%BF%D0%B5%D1%81-2016.pdf.; Белова А. В. Генитальный герпес и беременность / А. В. Белова [и др.] // Архив акушерства и гинекологии им. В. Ф. Снегирева. – 2017. – (3): 124–130. https://doi.org/10.18821/2313-8726-2017-4-3-124-130. – Belova A. V., Ascaturova O. R., Naumenko N. S., Nikonov A. P. Genital herpes and pregnancy. V. F. Snegirev Archives of Obstetrics and Gynecology. 2017; (3): 124–130. (In Russ.) https://doi.org/10.18821/2313-8726-2017-4-3-124-130.; Савельева Г. М. Гинекология: национальное руководство / Г. М. Савельева [и др.]; под ред. И. Б. Манухина. – 2017. – 1007 с. – Savelyeva G. M., Sukhikh G. T., Serov V. N., Radzinsky V. E., Manukhin I. B. (eds.). Gynecology: National leadership. Moscow; 2017. 1007 p. (In Russ.); Cухих Г. Т. Гинекология. Фармакотерапия без ошибок / Г. Т. Сухих [и др.] под ред. И. И. Баранова. – М., 2020. – 544 с. – Sukhikh G. T., Serov V. N., Prilepskaya V. N., Baranov I. I. (eds.). Gynecology. Pharmacotherapy without mistakes. Moscow; 2020. 544 p. (In Russ.); Дворянкова Е. В. Особенности генитального герпеса у женщин / Е. В. Дворянкова [и др.] // Гинекология. – 2018. – (4): 55–59. https://doi.org/10.26442/2079-5696_2018.4.55-59. – Dvoryankova E. V., Sakania L. R., Babaev O. R., Shakhzadov V. V., Korsunskaya I. M. Features of genital herpes in women. Gynecology. 2018; (4): 55–59. (In Russ.) https://doi.org/10.26442/2079-5696_2018.4.55-59.; Богатырева Л. Н. Врожденная инфекция, вызванная вирусом простого герпеса (herpes simplex): этиология, патогенез, клиническая картина, диагностика, лечение, профилактика / Л. Н. Богатырева, М. Х. Албакова, Х. А. Албакова // Медицина. Социология. Философия. Прикладные исследования. – 2019. – (1): 46–49. Режим доступа: http://medsociofil.ru/upload/iblock/b9b/%E2%84%961%202019%20%D0%A4%D0%90%D0%9F%D0%97.pdf. – Bogatyreva L. N., Albakova M. Kh., Albakova Kh. A. Congenital infection caused by the herpes simplex virus (Herpes simplex): etiology, pathogenesis, clinical presentation, diagnosis, treatment, prevention. Medicine. Sociology. Philosophy. Applied research. 2019; (1): 46–49. (In Russ.) Available at: http://medsociofil.ru/upload/iblock/b9b/%E2%84%961%202019%20%D0%A4%D0%90%D0%9F%D0%97.pdf.; Иванова Р. А. Врожденная герпетическая инфекция: современные подходы к профилактике, диагностике, лечению / Р. А. Иванова [и др.] // Детские инфекции. – 2021. –(4): 47–52. https://doi.org/10.22627/2072-8107-2021-20-4-47-52. – Ivanova R. A., Vasilyev V. V., Rogozina N. V., Grineva A. A., Ushakova G. M. Congenital herpes simpleх: modern approach to prevention, diagnosis, and treatment. Children Infections. 2021; (4): 47–52. (In Russ.) https://doi.org/10.22627/2072-8107-2021-20-4-47-52.; Hammad W. A. B., Konje J. C. Herpes simplex virus infection in pregnancy – An update. Eur J Obstet Gynecol Reprod Biol. 2021; 259: 38–45. https://doi.org/10.1016/j.ejogrb.2021.01.055.; Samies N. L., James S. H., Kimberlin D. W. Neonatal Herpes Simplex Virus Disease: Updates and Continued Challenges. Clin Perinatol. 2021; 48 (2): 263–274. https://doi.org/10.1016/j.clp.2021.03.003.; Pinninti S. G., Kimberlin D. W. Neonatal herpes simplex virus infections. Semin Perinatol. 2018; 42 (3): 168–175. https://doi.org/10.1053/j.semperi.2018.02.004.; Cole S. Herpes Simplex Virus: Epidemiology, Diagnosis, and Treatment. Nurs Clin North Am. 2020; 55 (3): 337–345. https://doi.org/10.1016/j.cnur.2020.05.004.; Sun B., Wang Q., Pan D. Mechanisms of herpes simplex virus latency and reactivation. Zhejiang Da Xue Xue Bao Yi Xue Ban. 2019; 48 (1): 89–101. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/31102363/; Parra-Sánchez M. Genital ulcers caused by herpes simplex virus. Enferm Infecc Microbiol Clin (Engl Ed). 2019; 37 (4): 260–264. https://doi.org/10.1016/j.eimc.2018.10.020.; Черноусов Ф. А. Профилактика послеоперационных осложнений с применением иммуномодулятора галавита: метаанализ исследований / Ф. А. Черноусов, Л. И. Винницкий // Consilium Мedicum. Хирургия (Прил.). – 2012. –(2): 25–31. Режим доступа: https://www.elibrary.ru/item.asp?id=21260329. – Chernousov F. A., Vinnitskiy L. I. Prevention of postoperative complications using the immunomodulator galavit: a meta-analysis of studies. Consilium Medicum. Surgery (Suppl.). 2012; (2): 25–31. (In Russ.) Available at: https://www.elibrary.ru/item.asp?id=21260329.; Рахматулина М. Р. Герпесвирусная инфекция: современные подходы к диагностике и терапии / М. Р. Рахматулина // Акушерство и гинекология. – 2019. – (11): 216–220. https://doi.org/10.18565/aig.2019.11.216-220. – Rakhmatulina M. R. Herpesvirus infection: modern approaches to diagnosis and therapy. Akusherstvo i Ginekologiya (Russian Federation). 2019; (11): 216–220. (In Russ.) https://doi.org/10.18565/aig.2019.11.216-220.

Availability: https://www.med-sovet.pro/jour/article/view/7097
https://doi.org/10.21518/2079-701X-2022-16-16-108-115

View record from BASE

6

Academic Journal

Infections of the TORCH group: the risk of fetal affection and the strategy of laboratory monitoring during the period of planning and during the term of pregnancy ; Инфекции группы TORCH: риск поражения плода и стратегия лабораторного мониторинга в период планирования и во время беременности ; Інфекції групи TORCH: ризик ураження плода та стратегія лабораторного моніторингу в період планування і під час вагітності

Authors: Рандюк, Ю., Москалюк, В., Сокол, А.

Source: Bukovinian Medical Herald; Vol. 15 No. 1(57) (2011); 164-170 ; Буковинский медицинский вестник; Том 15 № 1(57) (2011); 164-170 ; Буковинський медичний вісник; Том 15 № 1(57) (2011); 164-170 ; 2413-0737 ; 1684-7903

File Description: application/pdf

Relation: http://e-bmv.bsmu.edu.ua/article/view/239091/237620

Availability: http://e-bmv.bsmu.edu.ua/article/view/239091

View record from BASE

7

Academic Journal

Infections of the TORCH group: the risk of fetal affection and the strategy of laboratory monitoring during the period of planning and during the term of pregnancy

Source: Буковинський медичний вісник; Том 15 № 1(57) (2011); 164-170
Буковинский медицинский вестник; Том 15 № 1(57) (2011); 164-170
Bukovinian Medical Herald; Vol. 15 No. 1(57) (2011); 164-170

File Description: application/pdf

Access URL: http://e-bmv.bsmu.edu.ua/article/view/239091

View record at OpenAIRE

8

Academic Journal

КОМОРБИДНОСТЬ ПРИ ХРОНИЧЕСКОЙ ПЕРСИСТЕНЦИИ ГЕРПЕТИЧЕСКОЙ ИНФЕКЦИИ: КОМПЛЕКСНЫЕ ПОДХОДЫ К ЛЕЧЕНИЮ БОЛЬНЫХ

Authors: Ирина Анатольевна Горбачева, Юлия Александровна Фоминых, Юлия Анатольевна Сычева, Юлия Ринатовна Куликова, Сабир Насреддинович Мехтиев, Алексей Николаевич Соколов, Владислав Андреевич Ивановский

Source: University Therapeutic Journal, Vol 2, Iss 2 (2020)

Subject Terms: коморбидность, герпетическая инфекция, иммуносупрессия, рекомбинантные препараты интерферона, Medicine

File Description: electronic resource

Relation: http://ojs3.gpmu.org/index.php/Un-ther-journal/article/view/2446; https://doaj.org/toc/2713-1912; https://doaj.org/toc/2713-1920

Access URL: https://doaj.org/article/473d3cda1ce04dfcba7ca81e98cb10c3

View record in DOAJ

9

Academic Journal

Клинический случай врожденного герпетического менингоэнцефалита ; A clinical case of congenital herpetic meningoencephalitis

Authors: Kovalenko, K. E., Policarpova, I. I., Коваленко, К. Е., Поликарпова, И. И.

Subject Terms: HERPES SIMPLEX VIRUS, HERPES-VIRAL INFECTION, CONGENITAL HERPETIC INFECTION, HERPETIC MENINGOENCEPHALITIS, ВИРУС ПРОСТОГО ГЕРПЕСА, ГЕРПЕС-ВИРУСНАЯ ИНФЕКЦИЯ, ВРОЖДЕННАЯ ГЕРПЕТИЧЕСКАЯ ИНФЕКЦИЯ, ГЕРПЕТИЧЕСКИЙ МЕНИНГОЭНЦЕФАЛИТ

File Description: application/pdf

Relation: Уральский медицинский журнал. 2020. № 4(187).; http://elib.usma.ru/handle/usma/18982

Availability: http://elib.usma.ru/handle/usma/18982

View record from BASE

10

Academic Journal

Treatment of patients with herpetic infection on the principles of evidence-based medicine ; Лечение пациентов с герпетической инфекцией по принципам доказательной медицины ; Лікування пацієнтів із герпетичною інфекцією за принципами доказової медицини

Authors: Mateiko, H. B., Vepryk, T. V., Horbal, N. B.

Source: Zaporozhye Medical Journal; Vol. 22 No. 3 (2020) ; Запорожский медицинский журнал; Том 22 № 3 (2020) ; Запорізький медичний журнал; Том 22 № 3 (2020) ; 2310-1210 ; 2306-4145

Subject Terms: герпетична інфекція, лікування, доказова медицина, herpes simplex virus infection, drug therapy, evidence-based medicine, герпетическая инфекция, лечение, доказательная медицина

File Description: application/pdf

Relation: http://zmj.zsmu.edu.ua/article/view/204958/206002; http://zmj.zsmu.edu.ua/article/view/204958

Availability: http://zmj.zsmu.edu.ua/article/view/204958

View record from BASE

11

Academic Journal

THE STATE OF THE ANTIOXYDANT SYSTEM AND POL AT PREGNANT WITH PREGNANCY INDUCED HYPERTENSION ON A BACKGROUND HERPETIC AND CHLAMIDIAL INFECTION ; СОСТОЯНИЕ СИСТЕМЫ АНТИОКСИДАНТНОЙ ЗАЩИТЫ И ПОЛ У БЕРЕМЕННЫХ С ПОЗДНИМИ ГЕСТОЗАМИ НА ФОНЕ ГЕРПЕТИЧЕСКОЙ ИХЛАМИДИЙНОЙ ИНФЕКЦИИ ; СТАН СИСТЕМИ АНТИОКСИДАНТНОГО ЗАХИСТУ ТА ПОЛ У ВАГІТНИХ З ПІЗНІМИ ГЕСТОЗАМИ НА ТЛІ ГЕРПЕТИЧНО ТАХЛАМІДІЙНО ІНФЕКЦІ

Authors: Malanchyn, I. M.

Source: Actual Problems of Pediatry, Obstetrics and Gynecology; No. 1 (2009) ; Актуальные вопросы педиатрии, акушерства и гинекологии; № 1 (2009) ; Актуальні питання педіатрії, акушерства та гінекології; № 1 (2009) ; 2415-301X ; 2411-4944 ; 10.11603/24116-4944.2009.1

Subject Terms: pregnancy, preeclampsia lipid peroxydation, antioxydant system, herpetic infection, chlamidial infection, беременность, преэклампсия, перекисное окисление липидов, антиоксидантная система, герпетическая инфекция, хламидийная инфекция, вагітність, прееклампсія, перекисне окислення ліпідів, антиоксидантна система, герпетична інфекція, хламідійна інфекція

File Description: application/pdf

Relation: https://ojs.tdmu.edu.ua/index.php/act-pit-pediatr/article/view/9682/9338; https://repository.tdmu.edu.ua//handle/123456789/14850

Availability: https://repository.tdmu.edu.ua//handle/123456789/14850
https://ojs.tdmu.edu.ua/index.php/act-pit-pediatr/article/view/9682
https://doi.org/10.11603/24116-4944.2009.1.9682

View record from BASE

12

Academic Journal

DIAGNOSTIC CRITERIA OF FETAL DISTRESS DEVELOPMENT IN PREGNANTS WITH DIFFERENT TYPES OF HERPETIC INFECTION. ; ДИАГНОСТИЧЕСКИЕ КРИТЕРИИ РАЗВИТИЯ ДИСТРЕССА ПЛОДА У БЕРЕМЕННЫХ С РАЗНЫМИ ТИПАМИ ГЕРПЕТИЧЕСКОЙ ИНФЕКЦИИ. ; ДІАГНОСТИЧНІ КРИТЕРІЇ РОЗВИТКУ ДИСТРЕСУ ПЛОДА У ВАГІТНИХ З РІЗНИМИ ТИПАМИ ГЕРПЕТИЧНОЇ ІНФЕКЦІЇ.

Authors: Bulavenko, A. V., Klyvak, V. V.

Source: Actual Problems of Pediatry, Obstetrics and Gynecology; No. 2 (2015) ; Актуальные вопросы педиатрии, акушерства и гинекологии; № 2 (2015) ; Актуальні питання педіатрії, акушерства та гінекології; № 2 (2015) ; 2415-301X ; 2411-4944 ; 10.11603/24116-4944.2015.2

Subject Terms: herpetic infection, lipid peroxidation and proteins, nitric oxide, герпетическая инфекция, пероксидация липидов и белков, оксид азота, герпетична інфекція, пероксидація ліпідів та білків, оксид азоту

File Description: application/pdf

Relation: https://ojs.tdmu.edu.ua/index.php/act-pit-pediatr/article/view/4779/4416; https://repository.tdmu.edu.ua//handle/123456789/14422

Availability: https://repository.tdmu.edu.ua//handle/123456789/14422
https://ojs.tdmu.edu.ua/index.php/act-pit-pediatr/article/view/4779
https://doi.org/10.11603/24116-4944.2015.2.4779

View record from BASE

13

Academic Journal

On the histological structure of Kaposi’s sarcoma ; К вопросу о гистологическом строении саркомы Капоши

Authors: I. S. Derizhanova, O. O. Balyshev, И. С. Дерижанова, О. О. Балышев

Source: Medical Herald of the South of Russia; Том 11, № 2 (2020); 122-128 ; Медицинский вестник Юга России; Том 11, № 2 (2020); 122-128 ; 2618-7876 ; 2219-8075 ; 10.21886/2219-8075-2020-11-2

Subject Terms: морфогенетические потенции опухолевых клеток, herpetic infection, morphogenetic potencies of tumor cells, герпетическая инфекция

File Description: application/pdf

Relation: https://www.medicalherald.ru/jour/article/view/1049/577; Kaposi M. Idiopathisches multiples Pigmentsarkom der Haut. // Arch. f. Dermat. – 1872. – V. 4. – P. 265-273. https://doi.org/10.1007/BF01830024; Казанцева К. В., Молочков А. В., Молочков В. А., Сухова Т. Е., Прокофьев А. А. и др. Саркома Капоши: патогенез, клиника, диагностика и современные принципы лечения. // Российский журнал кожных и венерических болезней. – 2015. – Т. 18, №1. – c. 7-15. eLIBRARY ID: 22968819; Nestor M.S., Berman B., Goldberg D., Cognetta Jr A.B., Gold M., et al. Consensus Guidelines on the Use of Superfi cial Radiation Th erapy for Treating Nonmelanoma Skin Cancers and Keloids. // J. Clin. Aesthet. Dermatol. – 2019. – V. 12(2). – P. 12-18. PMID: 30881578; Основы патологии заболеваний по Роббинсу и Котрану. Под ред. Е.А. Коган, Р.А. Серова, Е.А. Дубовой, К.А. Павлова. — М.: Логосфера; 2016.; Цинзерлинг А.В., Цинзерлинг В.А., Ариэль Б.М., Индикова М.Г., Мельникова В.Ф. и др. Современные инфекции. Патологическая анатомия и вопросы патогенеза. Руководство для врачей. –СПб.: СОТИС-Мед, 1993. eLIBRARY ID: 21666807; Beyrer C., Wirtz A.L., O’Hara G., Léon N., Kazatchkine M. The expanding epidemic of HIV-1 in the Russian Federation. // PLoS Med. – 2017. – 14(11). https://doi.org/10.1371/journal.pmed.1002462; Непомнящая Е.М., Гусарев С.А., Кириченко Ю.Г. Генерализованная саркома Капоши после аллогенной трансплантации трупной почки. // Архив патологии. - 2004. – Т.66, N6. - С. 55-57. eLIBRARY ID: 17034100; Lever W.F., Schaumburg-Lever G. Histopathology of the skin. – Zippincoft : J. B. Company; 1975.; Хэм А. Кормак Д. Гистология: Пер. с англ. – М.: Мир; 1983.; https://www.medicalherald.ru/jour/article/view/1049

Availability: https://www.medicalherald.ru/jour/article/view/1049
https://doi.org/10.21886/2219-8075-2020-11-2-122-128

View record from BASE

14

Academic Journal

КОМОРБИДНОСТЬ ПРИ ХРОНИЧЕСКОЙ ПЕРСИСТЕНЦИИ ГЕРПЕТИЧЕСКОЙ ИНФЕКЦИИ: КОМПЛЕКСНЫЕ ПОДХОДЫ К ЛЕЧЕНИЮ БОЛЬНЫХ

Authors: Юлия Анатольевна Сычева, Юлия Ринатовна Куликова

Source: University Therapeutic Journal, Vol 2, Iss 2 (2020)

Subject Terms: коморбидность, герпетическая инфекция, иммуносупрессия, рекомбинантные препараты интерферона, Medicine

Relation: http://ojs3.gpmu.org/index.php/Un-ther-journal/article/view/2446; https://doaj.org/toc/2713-1912; https://doaj.org/toc/2713-1920; https://doaj.org/article/473d3cda1ce04dfcba7ca81e98cb10c3

Availability: https://doaj.org/article/473d3cda1ce04dfcba7ca81e98cb10c3

View record from BASE

15

Academic Journal

Proteflazid®: clinical and economic substantiation for use in therapy of herpes infection

Authors: T. S. Sakharova, I. A. Zupanets

Source: Clinical pharmacy; Vol. 20 No. 3 (2016); 6-12
Клиническая фармация; Том 20 № 3 (2016); 6-12
Клінічна фармація; Том 20 № 3 (2016); 6-12

File Description: application/pdf

Access URL: http://cphj.nuph.edu.ua/article/download/cphj.16.1396/85893
http://cphj.nuph.edu.ua/article/view/cphj.16.1396
http://cphj.nuph.edu.ua/article/view/cphj.16.1396
http://cphj.nuph.edu.ua/article/view/cphj.16.1396/85893

View record at OpenAIRE

16

Academic Journal

КОМОРБИДНОСТЬ ПРИ ХРОНИЧЕСКОЙ ПЕРСИСТЕНЦИИ ГЕРПЕТИЧЕСКОЙ ИНФЕКЦИИ: КОМПЛЕКСНЫЕ ПОДХОДЫ К ЛЕЧЕНИЮ БОЛЬНЫХ

Source: University Therapeutic Journal, Vol 2, Iss 2 (2020)

Subject Terms: коморбидность, Medicine, герпетическая инфекция, иммуносупрессия, рекомбинантные препараты интерферона

Access URL: https://doaj.org/article/473d3cda1ce04dfcba7ca81e98cb10c3

View record at OpenAIRE

17

Academic Journal

КЛИНИЧЕСКИЙ СЛУЧАЙ ВРОЖДЕННОГО ГЕРПЕТИЧЕСКОГО МЕНИНГОЭНЦЕФАЛИТА

Subject Terms: congenital herpetic infection, herpetic meningoencephalitis, Вирус простого герпеса, Herpes simplex virus, герпес-вирусная инфекция, врожденная герпетическая инфекция, герпетический менингоэнцефалит, 3. Good health, herpes-viral infection

18

Academic Journal

Синдром Джанотти-Крости ; Gianotti-Crosti syndrome

Authors: Ufimtseva, M. А., Nikolaeva, K. I., Sorokina, K. N., Zakharov, M. A., Krechetova, A. B., Уфимцева, М. А., Николаева, К. И., Сорокина, К. Н., Захаров, М. А., Кречетова, А. Б.

Source: Вопросы практической педиатрии

Subject Terms: GIANOTTI-CROSTI SYNDROME, HERPETIC INFECTION, CLINICAL MANIFESTATIONS, DIAGNOSTICS, СИНДРОМ ДЖАНОТТИ-КРОСТИ, ГЕРПЕТИЧЕСКАЯ ИНФЕКЦИЯ, КЛИНИЧЕСКАЯ КАРТИНА, ДИАГНОСТИКА

File Description: application/pdf

Relation: Вопросы практической педиатрии. 2019. №14 (1); http://elib.usma.ru/handle/usma/1662

Availability: http://elib.usma.ru/handle/usma/1662

View record from BASE

19

Academic Journal

Патологічні зміни головного мозку мишей на тлі моделювання ішемії з асоційованою вірусною інфекцією

Authors: Тurchynа, N. S., Sаvоskо, S. I., Chеrеnkо, Т. М., Ribаlkо, S. L., Stаrоsilа, D. B.

Source: Ukrainian Neurological Journal; № 2—3 (2019); 57—65
Украинский неврологический журнал; № 2—3 (2019); 57—65
Український неврологічний журнал; № 2—3 (2019); 57—65

Subject Terms: brain cortex of mice, atherosclerosis, high‑fat diet, herpes infection, ischemia, кора головного мозга мышей, атеросклероз, жировая диета, герпетическая инфекция, ишемизация, кора головного мозку мишей, жирова дієта, герпетична інфекція, ішемізація, 3. Good health