-
1Academic Journal
Authors: 1Ваккосова Ш, 2Исмоилова М
-
2Academic Journal
Authors: Ходжаева , М.Э
Source: Eurasian Journal of Medical and Natural Sciences; Vol. 5 No. 11 Special Issue (2025): International Scientific and Practical Conference on Medical Tourism, Public Health and Management: Problems, Opportunities, and Innovations; 115-119 ; Евразийский журнал медицинских и естественных наук; Том 5 № 11 Special Issue (2025): International Scientific and Practical Conference on Medical Tourism, Public Health and Management: Problems, Opportunities, and Innovations; 115-119 ; Yevrosiyo tibbiyot va tabiiy fanlar jurnali; Jild 5 Nomeri 11 Special Issue (2025): International Scientific and Practical Conference on Medical Tourism, Public Health and Management: Problems, Opportunities, and Innovations; 115-119 ; 2181-287X
Subject Terms: Гепатит Д, гепатоцеллюлярная карцинома (ГЦК), Цирроз печени (ЦП)
File Description: application/pdf
Availability: https://in-academy.uz/index.php/EJMNS/article/view/65794
-
3Academic Journal
Authors: O. M. Zamorshchikova, S. S. Sleptsova, S. S. Sleptsov, О. М. Заморщикова, С. С. Слепцова, С. С. Слепцов
Source: Journal Infectology; Том 16, № 4 (2024); 105-111 ; Журнал инфектологии; Том 16, № 4 (2024); 105-111 ; 2072-6732 ; undefined
Subject Terms: Якутия, HDV infection, family foci of infection, liver cirrhosis, hepatocellular carcinoma, Yakutia, HDV-инфекция, семейные очаги инфекции, цирроз печени, гепатоцеллюлярная карцинома
File Description: application/pdf
Relation: https://journal.niidi.ru/jofin/article/view/1716/1176; Алексеева, М.Н. Вирусные гепатиты в Республике Саха (Якутия) : автореф. дис. … канд. мед. наук / М.Н. Алексеева. – СПб., 2002. – 37 с.; Семенов, С.И. Эпидемиологические особенности и клиническая характеристика вирусных гепатитов B, C и дельта в Республике Саха (Якутия) : автореф. дис. … д-ра мед. наук / С.И. Семенов. – М., 2007. – 48 с.; Слепцова, С.С. Парентеральные вирусные гепатиты и их исходы в Республике Саха (Якутия) / С.С. Слепцова. – М., 2017. – 208 с.; Генотипы вируса гепатита B у пациентов с гепатитом D, определенные с помощью панели моноклональных антител собственной разработки / Л.В. Безуглова [и др.] // Молекулярная генетика, микробиология и вирусология. – 2022. – Т. 40, № 2. – С. 43–50.; Хронический гепатит дельта: современное состояние проблемы и перспективы лечения / Д.Т. Абдурахманов [и др.] // Клиническая фармакология и терапия. – 2019. – Т. 28, № 1. – С. 26–34.; Wedemeyer H, Heidrich В, Mann M.P. Hepatitis D virus infection – not a vanishing disease in Europe! Hepatology. 2007;45(5):1331-32; Hadziyannis S.J, Review: hepatitis delta. Gastroenterol. Hepatology. 1997;12(4):289-98.; Erhardt A, Hoernke M, Heinzel-Pleines U, et al. Retrospective analysis of chronic hepatitis D in a West German University Clinic over two decades: migratory pattern, prevalence and clinical outcome. Gastroenterology. 2010;48(8):813-7; Romeo A, de Ninno E, Rumi M, et al. 28-year study of the course of HDV infection-A risk factor for cirrhosis and HCC. Gastroenterology 2009;136(5):1629–38; Эффективность и безопасность противовирусной терапии у пациентов с компенсированным циррозом печени HDV-этиологии / П.О. Богомолов [и др.] // Терапевтический архив. – 2021. – Т. 93, № 11. – С. 1290–1299.; Каприн А.Д. Состояние онкологической помощи населению России в 2023 году / А.Д. Каприн, В.В. Старинский, А.О. Шахзадова. – М.: МНИОИ им. П.А. Герцена, 2024. – 262 с.; Рахманова, А.Г. Хронические вирусные гепатиты и цирроз печени: руководство для врачей. / А.Г. Рахманова [и др.] – СПб.: СпецЛит, 2006. – 413 с.; Шахгильдян, И.В. Эпидемиологическая характеристика хронических гепатитов В и С в Российской Федерации/ И.В. Шахгильдян [и др.] // Мир вирусных гепатитов. – 2008. – № 5. – С. 11–13.; Кузин, С.Н. Гепатиты в различных популяционных группах в Республике Саха (Якутия) / С.Н. Кузин [и др.] // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. – 2004. – № 1. – С. 18–22.; Лобзин, Ю.В. Клинико-эпидемиологическая характеристика гепатита В в Республике Саха (Якутия) / Ю.В. Лобзин [и др.] // Инфекционные болезни. – 2004. – Т. 2, № 2. – C. 13–16.; Слепцова, С.С. Вирусные гепатиты в Республике Саха (Якутия) и их роль в развитии первичного рака печени: дис.… д-ра мед. наук / С.С. Слепцова. – СПб., 2013. – 314 с.; https://journal.niidi.ru/jofin/article/view/1716
-
4Academic Journal
Authors: Orucov, М.Т., Şamdancı, E.T., Həsənov, Ə.B.
Source: Azerbaijan Medical Journal. :172-178
Subject Terms: molekulyar patologiya, fibrolamelyar hepatosellulyar karsinoma, фиброламеллярная гепатоцеллюлярная карцинома, molecular pathology, immunohistochemistry, гистопатология, histopathology, fibrolamellar hepatocellular carcinoma, молекулярная патология, иммуногистохимия, immunhistokimya, 3. Good health, histopatologiya
-
5Academic Journal
Authors: Cavadzadə, V.N.
Source: Azerbaijan Medical Journal. :50-54
Subject Terms: гепатоцеллюлярная карцинома, xronik hepatit, цирроз печени, qaraciyər sirrozu, liver cirrhosis, хронический гепатит, chronic hepatitis, hepatocellular carcinoma, hepatosellülyar karsinoma, 3. Good health
-
6Academic Journal
Authors: Hüseynova, M.R., Bayramov, N.Y., Məmmədova, M.H.
Source: Azerbaijan Medical Journal. :164-171
Subject Terms: искусственный интеллект, гепатоцеллюлярная карцинома, diagnosis, dərin öyrənmə, süni intellekt, диагностика, deep learning, hepatocellular carcinoma, глубокое обучение, artificial intelligence, hepatosellülyar karsinoma, diaqnostika
-
7Academic Journal
Authors: Ol’ga V. Krasnikova, Mikhail A. Shabalin, Ol’ga V. Kondrashina, Marina S. Piskunova, Anastasiya R. Kondrat’eva, Natal’ya V. Kol’tyukova, Ol’ga M. Moskovtseva
Source: Журнал медико-биологических исследований, Vol 12, Iss 1, Pp 80-88 (2024)
Subject Terms: злокачественные опухоли печени, гепатоцеллюлярная карцинома, пчелиный яд, лечебная гипертермия, энергетический обмен, инфракрасная спектроскопия плазмы крови, Sports medicine, RC1200-1245, Biology (General), QH301-705.5
File Description: electronic resource
-
8
-
9Academic Journal
Source: Наука и здравоохранение. :211-218
Subject Terms: гепатоцеллюлярная карцинома, гепатоцеллюлярлы карцинома, дислипидемия, dyslipidemia, вирусты гепатит, вирусные гепатиты, viral hepatitis, risk factors, факторы риска, hepatocellular carcinoma, қауіп-қатер факторлары, 3. Good health
-
10Academic Journal
Authors: E. V. Reznik, M.H. E. Laouar, V. Yu. Voinova, G. N. Golukhov, Е. В. Резник, М.Х. Э. Лауар, В. Ю. Воинова, Г. Н. Голухов
Contributors: The authors declare no funding for this study, Авторы заявляют об отсутствии финансирования при проведении исследования
Source: The Russian Archives of Internal Medicine; Том 14, № 6 (2024); 442-456 ; Архивъ внутренней медицины; Том 14, № 6 (2024); 442-456 ; 2411-6564 ; 2226-6704
Subject Terms: эритроцитаферез, heart, heart failure, arrhythmia, phlebotomy, liver fibrosis, liver cirrhosis, hepatocellular carcinoma, diabetes mellitus, iron chelation, erythrocytapheresis, сердце, сердечная недостаточность, аритмия, флеботомия, фиброз печени, цирроз печени, гепатоцеллюлярная карцинома, сахарный диабет, хелатирование железа
File Description: application/pdf
Relation: https://www.medarhive.ru/jour/article/view/1880/1370; https://www.medarhive.ru/jour/article/view/1880/1377; Barton JC., Parker CJ. HFE-Related Hemochromatosis. 2000 Apr 3 [updated 2024 Apr 11]. In: Adam MP., Feldman J., Mirzaa GM. et al. editors. GeneReviews® [Internet]. Seattle (WA): University of Washington, Seattle; 1993–2024. PMID: 20301613.; Brissot P., Pietrangelo A., Adams PC. et al. Haemochromatosis. Nat Rev Dis Primers. 2018 Apr 5; 4: 18016. doi:10.1038/nrdp.2018.16.; Малаева В.Г., Адаменко Е.И., Жарская О.М. и др. Полиорганное поражение при гемохроматозе. Проблемы здоровья и экологии. 2022; 19(1): 139-144. doi:10.51523/2708-6011.2022-19-1-18.; Sandhu K., Flintoff K., Chatfield MD. et al. Phenotypic analysis of hemochromatosis subtypes reveals variations in severity of iron overload and clinical disease. Blood. 2018 Jul 5; 132(1): 101-110. doi:10.1182/blood-2018-02-830562.; Kemppinen L., Mattila M., Ekholm E. et al. Gestational iron deficiency anemia is associated with preterm birth, fetal growth restriction, and postpartum infections. J Perinat Med. 2020 Dec 21; 49(4): 431-438. doi:10.1515/jpm-2020-0379.; Merryweather-Clarke AT., Pointon JJ., Jouanolle AM. et al. Geography of HFE C282Y and H63D mutations. Genet Test. 2000; 4(2): 183-98. doi:10.1089/10906570050114902.; Wallace DF., Subramaniam VN. The global prevalence of HFE and non-HFE hemochromatosis estimated from analysis of next-generation sequencing data. Genet Med. 2016 Jun; 18(6): 618-26. doi:10.1038/gim.2015.140. Epub 2015 Dec 3.; Kang W., Barad A., Clark AG. et al. Ethnic Differences in Iron Status. Adv Nutr. 2021 Oct 1; 12(5): 1838-1853. doi:10.1093/advances/nmab035.; Pilling LC., Tamosauskaite J., Jones G. et al. Common conditions associated with hereditary haemochromatosis genetic variants: cohort study in UK Biobank. BMJ. 2019 Jan 16; 364: k5222. doi:10.1136/bmj.k5222. Erratum in: BMJ. 2019 Oct 23; 367: l6157.; Cheng CF., Lian WS. Prooxidant mechanisms in iron overload cardiomyopathy. Biomed Res Int. 2013; 2013: 740573. doi:10.1155/2013/740573. Epub 2013 Nov 19.; Trousseau A. Glycosurie; diabete sucre. Clinique Med de l’Hotel-dieu de Paris (2 nd ed) 1865; 2: 663–698. doi:10.1007/s12072-023-10510-3.; Von Recklinghausen FD. Uber haemochromatose. Tageblatt der (62) Versammlung Deutscher Naturforscher und Arzte Heidelberg 1889; 62: 324–325. doi:10.1007/s12072-023-10510-3.; Atkins JL., Pilling LC., Masoli JAH. et al. Association of Hemochromatosis HFE p.C282Y Homozygosity With Hepatic Malignancy. JAMA. 2020 Nov 24; 324(20): 2048-2057. doi:10.1001/jama.2020.21566.; Atkins JL., Pilling LC., Heales CJ. et al. Hemochromatosis mutations, brain iron imaging, and dementia in the UK Biobank Cohort. J Alzheimers Dis. 2021;79:1203–1211. doi:10.3233/JAD-201080.; Tamosauskaite J., Atkins JL., Pilling LC. et al. Hereditary hemochromatosis associations with frailty, sarcopenia and chronic pain: evidence from 200,975 older UK Biobank participants. J Gerontol A Biol Sci Med Sci. 2019; 74: 337–342. doi:10.1093/gerona/gly270.; Powell LW., Seckington RC., Deugnier Y. et al. Haemochromatosis. Lancet. 2016 Aug 13 ;388(10045): 706-16. doi:10.1016/S0140-6736(15)01315-X. Epub 2016 Mar 12.; Doyard M., Chappard D., Leroyer P. et al. Decreased Bone Formation Explains Osteoporosis in a Genetic Mouse Model of Hemochromatosiss. PloS One. 2016; 11: e0148292. doi:10.1371/journal.pone.0148292.; Girelli D., Busti F., Brissot P. et al. Hemochromatosis classification: update and recommendations by the BIOIRON Society. Blood. 2022 May 19; 139(20): 3018-3029. doi:10.1182/blood.2021011338.; Kowdley KV., Brown KE., Ahn J. et al. ACG Clinical Guideline: Hereditary Hemochromatosis. Am J Gastroenterol. 2019 Aug; 114(8): 1202-1218. doi:10.14309/ajg.0000000000000315.; Chin J., Powell L.W. Utility of hepatic or total body iron burden in the assessment of advanced hepatic fibrosis in HFE hemochromatosis. Sci Rep 9, 20234 (2019). doi:10.1038/s41598-019-56732-0.; Bardou-Jacquet E., Morandeau E., Anderson GJ. et al. Regression of Fibrosis Stage With Treatment Reduces Long-Term Risk of Liver Cancer in Patients With Hemochromatosis Caused by Mutation in HFE. Clin Gastroenterol Hepatol. 2020 Jul; 18(8): 1851-1857. doi:10.1016/j.cgh.2019.10.010.; Bardou-Jacquet E., Lainé F., Guggenbuhl P. et al. Worse Outcomes of Patients With HFE Hemochromatosis With Persistent Increases in Transferrin Saturation During Maintenance Therapy. Clin Gastroenterol Hepatol. 2017 Oct; 15(10): 1620-1627. doi:10.1016/j.cgh.2016.12.039.; Calori S., Comisi C., Mascio A. et al. Overview of Ankle Arthropathy in Hereditary Hemochromatosis. Med Sci (Basel). 2023 Aug 15; 11(3): 51. doi:10.3390/medsci11030051.; Ravasi G., Pelucchi S., Bertola F. et al. Identification of Novel Mutations by Targeted NGS Panel in Patients with Hyperferritinemia. Genes (Basel). 2021 Nov 9; 12(11): 1778. doi:10.3390/genes12111778.; Legros L., Bardou-Jacquet E., Latournerie M. et al. Non-invasive assessment of liver fibrosis in C282Y homozygous HFE hemochromatosis. Liver Int. 2015 Jun; 35(6): 1731-8. doi:10.1111/liv.12762.; Malvarosa I., Massaroni C., Liguori C. et al. Estimation of liver iron concentration by dual energy CT images: influence of X-ray energy on sensitivity. Annu Int Conf IEEE Eng Med Biol Soc. 2014; 2014: 5129-32. doi:10.1109/EMBC.2014.6944779.; Bazzocchi A., Ponti F., Albisinni U. et al. DXA: Technical aspects and application. Eur J Radiol. 2016; 85(8): 1481–1492. doi:10.1016/j.ejrad.2016.04.004.; Yancy CW., Jessup M., Bozkurt B. et al. 2013 ACCF/AHA guidelines for the management of heart failure: executive summary. A report of the American College of Cardiology Foundation/American Heart Association Task Force on Practice Guidelines. Developed in collaboration with the American College of Chest Physicians, Heart Rhythm Society, and International Society for Heart and Lung Transplantation. Endorsed by the American Association of Cardiovascular and Pulmonary Rehabilitation. J Am Coll Cardiol. 2013; 62: 1495–539. doi:10.1161/CIR.0b013e31829e8807.; Husar-Memmer E., Stadlmayr A., Datz C. et al. HFE-related hemochromatosis: an update for the rheumatologist. Curr Rheumatol Rep. 2014 Jan; 16(1): 393. doi:10.1007/s11926-013-0393-4.; Rombout-Sestrienkova E., Koek GH., Neslo R. et al. Course of iron parameters in HFE-hemochromatosis patients during initial treatment with erythrocytapheresis compared to phlebotomy. J Clin Apher. 2016 Dec; 31(6): 564-570. doi:10.1002/jca.21451.; West KA., Eder AF. Accepting hereditary hemochromatosis blood donors: ask not why, ask why not. Transfusion 56, 2907–2909 (2016). doi:10.1038/nrdp.2018.16.; Bardou-Jacquet E. Worse outcomes of patients with HFE hemochromatosis with persistent increases in transferrin saturation during maintenance therapy. Clin. Gastroenterol. Hepatol 15, 1620–1627 (2017). doi:10.1016/j.cgh.2016.12.039.; Rombout-Sestrienkova E., De Jonge N., Martinakova K. et al. Endstage cardiomyopathy because of hereditary hemochromatoss successfully treated with erythrocytapheresis in combination with left ventricular assist device support. Circ Heart Fail. 2014; 7: 541–3. doi:10.1161/CIRCHEARTFAILURE.114.001198.; Pennell D., Carpenter J., Roughton M. et al. On improvement in ejection fraction with iron chelation in thalassemia major and the risk of future heart failure. J Cardiovasc Magn Reson 13, 45 (2011). doi:10.1186/1532-429X-13-45.; El Sayed SM., Abou-Taleb A., Mahmoud HS. et al. Percutaneous excretion of iron and ferritin (through Al-hijamah) as a novel treatment for iron overload in beta-thalassemia major, hemochromatosis and sideroblastic anemia. Med Hypotheses. 2014; 83: 238–46. doi:10.1016/j.mehy.2014.04.001.; Gelderman MP., Baek JH., Yalananoglu A. et al. Reversal of hemochromatosis by apotransferrin in non-transfused and transfused Hbbth3/+ (heterozygous B1/B2 globin gene deletion) mice. Haematologica. 2015; 100: 611–22. doi:10.3324/haematol.2014.117325.; Lucijanić M., Pejša V., Mitrović Z. et al. Hemochromatosis gene mutations may affect the survival of patients with myelodysplastic syndrome. Hematology. 2016 Apr; 21(3): 170-4. doi:10.1080/10245332.2015.1101964.; Резник Е.В., Нгуен Т.Л., Устюжанин Д.В. и др. «Красные флаги» диагностики инфильтративных заболеваний сердца. Российский кардиологический журнал. 2023; 28(1S): 5259. doi:10.15829/1560-4071-2023-5259.; Lakhal-Littleton S., Wolna M., Carr CA. et al. Cardiac ferroportin regulates cellular iron homeostasis and is important for cardiac function. Proc Natl Acad Sci USA. 2015; 112: 3164–9. doi:10.1073/pnas.1422373112.; Daniłowicz-Szymanowicz L., Świątczak M., Sikorska K. et al. Pathogenesis, Diagnosis, and Clinical Implications of Hereditary Hemochromatosis-The Cardiological Point of View. Diagnostics. 2021; 16: 1279. doi:10.3390/diagnostics11071279.; Aronow WS. Management of cardiac hemochromatosis. Arch Med Sci. 2018; 14(3): 560–568. doi:10.5114/aoms.2017.68729.; Carpenter JP., Grasso AE., Porter JB. et al. On myocardial siderosis and left ventricular dysfunction in hemochromatosis. J Cardiovasc Magn Reson 2013; 15: 24. doi:10.1186/1532-429X-15-24.; Balkan C., Tuluce SY., Basol G. et al. Relation between NT-proBNP levels, iron overload, and early stage of myocardial dysfunction in beta-thalassemia major patients. Echocardiography. 2012; 29: 318–25. doi:10.1111/j.1540-8175.2011.01584.x.; Kirk P., Roughton M., Porter JB. et al. Cardiac T2* magnetic resonance for prediction of cardiac complications in thalassemia major. Circulation. 2009; 120: 1961–8. doi:10.1161/CIRCULATIONAHA.109.874487.; Caines AE., Kpodonu J., Massad MG. et al. Cardiac transplantation in patients with iron overload cardiomyopathy. J Heart Lung Transplant. 2005 Apr; 24(4): 486-8. doi:10.1016/j.healun.2004.02.009.; Jermyn R., Soe E., D’Alessandro D. et al. Cardiac failure after liver transplantation requiring a biventricular assist device. Case Rep Transplant. 2014; 2014: 946961. doi:10.1155/2014/946961.; Kumfu S., Chattipakorn S., Chinda K. et al. T-type calcium channel blockade improves survival and cardiovascular function in thalassemic mice. Eur J Haematol. 2012 Jun; 88(6): 535-48. doi:10.1111/j.1600-0609.2012.01779.x.; https://www.medarhive.ru/jour/article/view/1880
-
11Academic Journal
Authors: Zaitsev, I.A., Novak, I.M., Zaitseva, O.Ye., Kiriienko, V.T.
Source: Aktualʹnaâ Infektologiâ, Vol 7, Iss 2, Pp 63-70 (2019)
ACTUAL INFECTOLOGY; Том 7, № 2 (2019); 63-70
Актуальная инфектология-Aktualʹnaâ Infektologiâ; Том 7, № 2 (2019); 63-70
Актуальна інфектологія-Aktualʹnaâ Infektologiâ; Том 7, № 2 (2019); 63-70Subject Terms: HBV infection, HBV genotype, natural progression of HBV infection, liver cirrhosis, hepatocellular carcinoma, hepatitis B transmission routes, chronic hepatitis B, HBV-інфекція, генотип HBV, природний перебіг HBV-інфекції, цироз печінки, гепатоцелюлярна карцинома, шляхи передачі гепатиту В, хронічний гепатит В, Infectious and parasitic diseases, RC109-216, HBV-инфекция, естественное течение HBV-инфекции, цирроз печени, гепатоцеллюлярная карцинома, пути передачи гепатита В, хронический гепатит В, 3. Good health
File Description: application/pdf
Access URL: http://ai.zaslavsky.com.ua/article/download/161150/163968
https://doaj.org/article/5ce46cce10f24371ac1082a6c7c80dfa
http://ai.zaslavsky.com.ua/article/download/161150/163968
https://paperity.org/p/241979152/significance-of-hepatitis-b-virus-genotypes-in-clinical-practice
http://ai.zaslavsky.com.ua/article/view/161150
http://ai.zaslavsky.com.ua/article/view/161150 -
12Academic Journal
Source: Клиническая инфектология и паразитология. :422-430
Subject Terms: comorbidity, гепатоцеллюлярная карцинома, цирроз печени, chronic viral hepatitis C, коморбидность, liver cirrhosis, хронический вирусный гепатит С, hepatocellular carcinoma, Charlson Comorbidity Index, индекс коморбидности Чарлсона, 3. Good health
-
13Academic Journal
Authors: Khayrutdinov, E. R., Gromov, D. G., Arablinskiy, A. V., Vorontsov, I. M., Leonov, O. V., Kalchenko, E. A., Ignatev, Yu. T., Хайрутдинов, Е. Р., Громов, Д. Г., Араблинский, А. В., Воронцов, И. М., Леонов, О. В., Кальченко, Е. А., Игнатьев, Ю. Т.
Subject Terms: HEPATOCELLULARCARCINOMA, HEPATIC ARTERY CHEMOEMBOLIZATION, TRANSRADIAL APPROACH, TRANSFEMORAL APPROACH, ГЕПАТОЦЕЛЛЮЛЯРНАЯ КАРЦИНОМА, ХИМИОЭМБОЛИЗАЦИЯ ПЕЧЕНОЧНОЙ АРТЕРИИ, ТРАНСРАДИАЛЬНЫЙ ДОСТУП, ТРАНСФЕМОРАЛЬНЫЙ ДОСТУП
File Description: application/pdf
Relation: Уральский медицинский журнал. 2023. Т. 22, № 5.; http://elib.usma.ru/handle/usma/17396
Availability: http://elib.usma.ru/handle/usma/17396
-
14Academic Journal
Authors: S. A. Ivanov, L. O. Petrov, V. V. Kucherov, A. G. Isaeva, A. P. Petrosian, A. A. Izmailov, С. А. Иванов, Л. О. Петров, В. В. Кучеров, А. Г. Исаева, А. П. Петросян, А. А. Измаилов
Source: Research and Practical Medicine Journal; Том 10, № 1 (2023); 134-142 ; Research'n Practical Medicine Journal; Том 10, № 1 (2023); 134-142 ; 2410-1893 ; 10.17709/2410-1893-2023-10-1
Subject Terms: трансартериальная химиоэмболизация, hepatocellular carcinoma, liver chemoembolization, treatment complications, transarterial chemoembolization, гепатоцеллюлярная карцинома, химиоэмболизация печени, осложнения лечения
File Description: application/pdf
Relation: https://www.rpmj.ru/rpmj/article/view/815/545; Злокачественные новообразования в России в 2019 году (заболеваемость и смертность). Под ред. А. Д. Каприна, В. В. Старинского, А. О. Шахзадовой. М.: МНИОИ им. П.А. Герцена − филиал ФГБУ «НМИЦ радиологии» Минздрава России, 2020, 252 с. Доступно по: https://glavonco.ru/cancer_register/Забол_2019_Электр.pdf, Дата обращения: 29.10.2022.; Bray F, Ferlay J, Soerjomataram I, Siegel RL, Torre LA, Jemal A. Global cancer statistics 2018: GLOBOCAN estimates of incidence and mortality worldwide for 36 cancers in 185 countries. CA Cancer J Clin. 2018 Nov;68(6):394–424. https://doi.org/10.3322/caac.21492. Erratum in: CA Cancer J Clin. 2020 Jul;70(4):313; Raoul JL, Gilabert M, Piana G. How to define transarterial chemoembolization failure or refractoriness: a European perspective. Liver Cancer. 2014 May;3(2):119–124. https://doi.org/10.1159/000343867; Forner A, Reig M, Bruix J. Hepatocellular carcinoma. Lancet. 2018 Mar 31;391(10127):1301–1314. https://doi.org/10.1016/s0140‑6736(18)30010‑2; Yau T, Tang VY, Yao TJ, Fan ST, Lo CM, Poon RT. Development of Hong Kong Liver Cancer staging system with treatment stratification for patients with hepatocellular carcinoma.Gastroenterology.2014 Jun;146(7):1691–700.e3.https://doi.org/10.1053/j.gastro.2014.02.032; Forner A, Gilabert M, Bruix J, Raoul JL. Treatment of intermediate‑stage hepatocellular carcinoma. Nat Rev Clin Oncol. 2014 Sep;11(9):525–535. https://doi.org/10.1038/nrclinonc.2014.122; Yamada R, Nakamura K. [Transcatheter arterial embolization therapy (author’s transl)]. Nihon Rinsho. 1982;40(1):183–190. Japanese.; Lencioni R, de Baere T, Soulen MC, Rilling WS, Geschwind JF. Lipiodol transarterial chemoembolization for hepatocellular carcinoma: A systematic review of efficacy and safety data. Hepatology. 2016 Jul;64(1):106–116. https://doi.org/10.1002/hep.28453; Angle JF, Siddiqi NH, Wallace MJ, Kundu S, Stokes L, Wojak JC, Cardella JF; Society of Interventional Radiology Standards of Practice Committee. Quality improvement guidelines for percutaneous transcatheter embolization: Society of Interventional Radiology Standards of Practice Committee. J Vasc Interv Radiol. 2010 Oct;21(10):1479–1486. https://doi.org/10.1016/j.jvir.2010.06.014; Grover I, Ahmad N, Googe AB. Hepatogastric Fistula following Transcatheter Arterial Chemoembolization of Hepatocellular Carcinoma. Case Rep Gastroenterol. 2014 Oct 3;8(3):286–290. https://doi.org/10.1159/000368302; Chen LT, Chen CY, Jan CM, Wang WM, Lan TS, Hsieh MY, Liu GC. Gastrointestinal tract involvement in hepatocellular carcinoma: clinical, radiological and endoscopic studies. Endoscopy. 1990 May;22(3):118–123. https://doi.org/10.1055/s‑2007‑1012815; Hashimoto M, Watanabe G, Matsuda M, Yamamoto T, Tsutsumi K, Tsurumaru M: Case report: gastrointestinal bleeding from a hepatocellular carcinoma invading the transverse colon. J Gastroenterol Hepatol. 1996;11(8):765–767. https://doi.org/10.1111/j.1440‑1746.1996.tb00328.x; Park MS, Kim KW, Yu JS, Kim MJ, Yoon SW, Chung KW, et al. Radiologic findings of gastrointestinal tract involvement in hepatocellular carcinoma. J Comput Assist Tomogr. 2002 Jan‑Feb;26(1):95–101. https://doi.org/10.1097/00004728‑200201000‑00014; Sayana H, Yousef O, Clarkston WK. Massive upper gastrointestinal hemorrhage due to invasive hepatocellular carcinoma and hepato‑gastric fistula. World J Gastroenterol. 2013 Nov 14;19(42):7472–7475. https://doi.org/10.3748/wjg.v19.i42.7472; https://www.rpmj.ru/rpmj/article/view/815
-
15Academic Journal
Authors: E. A. Petrash, M. A. Shorikov, E. V. Mikhailova, T. R. Panferova, A. L. Nikulina, A. A. Petrash, Е. А. Петраш, М. А. Шориков, Е. В. Михайлова, Т. Р. Панферова, А. Л. Никулина, А. А. Петраш
Source: Russian Journal of Pediatric Hematology and Oncology; Том 10, № 2 (2023); 63-70 ; Российский журнал детской гематологии и онкологии (РЖДГиО); Том 10, № 2 (2023); 63-70 ; 2413-5496 ; 2311-1267
Subject Terms: фокальная нодулярная гиперплазия, oncology, pediatric, liver lesions, radiodiagnosis, hepatoblastoma, haemangioma, hepatocellular carcinoma, focal nodular hyperplasia, онкология, педиатрия, образования печени, лучевая диагностика, гепатобластома, гемангиома, гепатоцеллюлярная карцинома
File Description: application/pdf
Relation: https://journal.nodgo.org/jour/article/view/937/825; Litten J.B., Tomlinson G.E. Liver tumors in children. Oncologist. 2008;13(7):812–20. doi:10.1634/theoncologist.2008-0011.; Никулина А.Л., Петраш Е.А., Панфёрова Т.Р., Михайлова Е.В., Кошечкина Н.А., Захарова Е.В. Комплексная лучевая диагностика опухолей печени у детей. Онкопедиатрия. 2015;2(3):313.; Никулина А.Л., Петраш Е.А., Михайлова Е.В., Панфёрова Т.Р., Близнюков О.П. Комплексная лучевая диагностика недифференцированной эмбриональной саркомы печени у детей: собственный опыт и обзор литературы. Онкопедиатрия. 2017;4(1):68–73. doi:10.15690/onco.v4i1.1686.; Высоцкий Ю.Б., Пашков Ю.В., Турабов И.А. Первичные опухоли печени у детей. Вестник РОНЦ им. Н.Н. Блохина РАМН. 1992;3(2):25–30.; Близнюков О.П., Шабанов М.А., Перевозчиков А.Г. Эмбриональная саркома печени у детей: вопросы морфологической диагностики. Архив патологии. 2007;69(1):40–7.; Пименов Р.И., Никулина А.Л., Рыбакова Д.В., Петраш Е.А., Рубанский М.А., Рубанская М.В., Керимов П.А., Казанцев А.П., Рябов А.Б. Результаты лечения детей с гепатобластомой: анализ опыта одного центра. Материалы IV Международного онкологического форума «Белые ночи 2018». С. 84.; Петраш Е.А., Михайлова Е.В., Сергеева О.Н., Никулина А.Л., Севрюков Д.Д., Шеланкова А.В. Лучевая диагностика фасциолеза печени у детей. Российский электронный журнал лучевой диагностики. 2018;8(4):269–81. doi:10.21569/2222-7415-2018-8-4- 269-281.; Багненко С.С. Комплексное магнитно-резонансное исследование в выявлении и дифференциальной диагностике очаговых поражений печени. Дис. … д-ра мед. наук: 14.01.13. СПб., 2014. 310 с.; Петраш Е.А., Шориков М.А., Михайлова Е.В., Никулина А.Л. Дифференциальная диагностика доброкачественных и злокачественных опухолей печени у детей методом количественной МРТ с внутриклеточным контрастирующим препаратом. Онкологический журнал: лучевая диагностика, лучевая терапия. 2021;4(3):56–63. doi:10.37174/2587-7593-2021-4-3-56-63.; Caseiro-Alves F., Brito J., Eiras Araujo A., Belo-Soares P., Rodrigues H., Cipriano A., Sousa D., Mathieu D. Liver haemangioma: common and uncommon fi ndings and how to improve the diff erential diagnosis. Euro Radiol. 2007;17(6):1544–54. doi:10.1007/s00330-006-0503-z.; Тарачкова Е.В. , Шориков М.А., Логунова Т.А., Коссов Ф.А., Панов В.О., Тюрин И.Е. Возможности динамической MPT с контрастным усилением в определении гистологического типа рака шейки матки. Вестник Российского государственного медицинского университета. 2016;4:29–35.; Лаптева М.Г., Сергеева О.Н., Шориков М.А., Францев Д.Ю., Любимова Н.В., Тарачкова Е.В., Виршке Э.Р., Долгушин Б.И. Диффузионно-взвешенные МР-изображения в оценке эффективности трансартериальной химиоэмболизации печени у пациентов с метастазами нейроэндокринных опухолей. Российский электронный журнал лучевой диагностики. 2018;8(4):103–10. doi:10.21569/2222-7415-2018-8-4-103-110.; Ахвердиева Г.И., Санай Э.Б., Панов В.О., Тюрин И.Е., Губский И.Л., Камолов Б.Ш., Хачатурян А.В. Роль мультипараметрической МРТ в выявлении и локализации раннего рака предстательной железы. Онкоурология. 2013;4:25–36.; Тарачкова Е.В., Шориков М.А., Панов В.О., Кузнецов В.В., Усманова Л.Ш., Тюрин И.Е. Возможности мультипараметрической магнитно-резонансной томографии в дифференциальной диагностике гистологического типа рака шейки матки на дооперационном этапе. Опухоли женской репродуктивной системы. 2016;12(2):60–9. doi:10.17650/1994-4098-2016-12-2-60-69.; Preisser J.S., Das K., Benecha H., Stamm J.W. Logistic regression for dichotomized counts. Stat Methods Med Res. 2016;25(6):3038–56. doi:10.1177/0962280214536893.; Топоркова Д.И., Спичак И.И. Неинфекционная патология печени в практике врача онкогематологического отделения. Педиатрический вестник Южного Урала. 2018;1:70–81.; Kelgeri C., Sharif K., Baumann U. Liver Tumours and Nodular Lesions. In: Pediatric Hepatology and Liver Transplantation. D’Antiga L. (eds). Springer, Cham, 2019. doi:10.1007/978-3-319-96400-3_21.; Chavhan G.B., Siddiqui I., Ingley K.M., Gupta A.A. Rare malignant liver tumors in children. Pediatr Radiol. 2019;49(11):1404–21. doi:10.1007/s00247-019-04402-8.; Chavhan G.B., Humphries P.D. Functional MRI: DWI and DCE-MRI. In: Imaging in Pediatric Oncology. Voss S., McHugh K. (eds). Springer, Cham, 2019. doi:10.1007/978-3-030-03777-2_6.; Daldrup-Link H. Artificial intelligence applications for pediatric oncology imaging. Pediatr Radiology. 2019;49(11):1384–90. doi:10.1007/s00247-019-04360-1.; https://journal.nodgo.org/jour/article/view/937
-
16Academic Journal
Source: Наука и здравоохранение. 21:11-23
Subject Terms: гепатоцеллюлярная карцинома, hemodialysis, гепатоцеллюлярлы карцинома, бауыр циррозы, цирроз печени, chronic renal failure, генотипы, генотиптер, хронический вирусный гепатит В, созылмалы вирусты гепатит В, mortality, survival, 3. Good health
-
17Academic Journal
Authors: Dyakov L.M., Krivtsova O.M., Khesina P.A., Kustova I.F., Dyakova N.A., Muge N.S., Kudashkin N.E., Patyutko Y.I., Lazarevich N.L.
Contributors: The work was carried out with the financial support of the Russian Foundation for Basic Research (grant No. 18-29-09164)., Работа выполнена при финансовой поддержке Российского фонда научных исследований (грант № 18-29-09164).
Source: Advances in Molecular Oncology; Vol 9, No 3 (2022); 24-37 ; Успехи молекулярной онкологии; Vol 9, No 3 (2022); 24-37 ; 2413-3787 ; 2313-805X
Subject Terms: hepatocellular carcinoma, circulating DNA, somatic mutations, liquid biopsy, гепатоцеллюлярная карцинома, циркулирующая ДНК, соматические мутации, жидкостная биопсия
File Description: application/pdf
Relation: https://umo.abvpress.ru/jour/article/view/457/269; https://umo.abvpress.ru/jour/article/view/457
-
18Academic Journal
Authors: U. R. Salimov, I. O. Stoma, A. E. Scherba, A. M. Fedoruk, A. A. Kovalev, O. O. Rummo, У. Р. Салимов, И. О. Стома, А. Е. Щерба, А. М. Федорук, А. А. Ковалев, О. О. Руммо
Source: Russian Journal of Transplantology and Artificial Organs; Том 24, № 2 (2022); 8-22 ; Вестник трансплантологии и искусственных органов; Том 24, № 2 (2022); 8-22 ; 1995-1191
Subject Terms: кишечная микробиота, bacterial complications, gutliver axis, hepatocellular carcinoma, acute cellular rejection, sequencing, gut microbiota, бактериальные осложнения, печеночно-интестинальная ось, гепатоцеллюлярная карцинома, острое клеточное отторжение, секвенирование
File Description: application/pdf
Relation: https://journal.transpl.ru/vtio/article/view/1490/1305; https://journal.transpl.ru/vtio/article/view/1490/1366; Volta U, Bonazzi C, Bianchi FB, Baldoni AM, Zoli M, Pisi E. IgA antibodies to dietary antigens in liver cirrhosis. Ric Clin Lab. 1987 Jul-Sep; 17 (3): 235–242. doi:10.1007/BF02912537. PMID: 3671996.; Milosevic I, Vujovic A, Barac A, Djelic M, Korac M, Radovanovic Spurnic A et al. Gut-Liver Axis, Gut Microbiota, and Its Modulation in the Management of Liver Diseases: A Review of the Literature. Int J Mol Sci. 2019 Jan 17; 20 (2): 395. doi:10.3390/ijms20020395. PMID: 30658519; PMCID: PMC6358912.; Tilg H, Burcelin R, Tremaroli V. Liver tissue microbiome in NAFLD: next step in understanding the gut-liver axis? Gut. 2020 Aug; 69 (8): 1373–1374. doi:10.1136/gutjnl-2019-320490. Epub 2020 Feb 14. PMID: 32060128.; Miele L, Marrone G, Lauritano C, Cefalo C, Gasbarrini A, Day C et al. Gut-liver axis and microbiota in NAFLD: insight pathophysiology for novel therapeutic target. Curr Pharm Des. 2013; 19 (29): 5314–5324. PMID: 23432669.; Solé C, Guilly S, Da Silva K, Llopis M, Le-Chatelier E, Huelin P et al. Alterations in Gut Microbiome in Cirrhosis as Assessed by Quantitative Metagenomics: Relationship with Acute-on-Chronic Liver Failure and Prognosis. Gastroenterology. 2021 Jan; 160 (1): 206–218. e13. doi:10.1053/j.gastro.2020.08.054. Epub 2020 Sep 14. PMID: 32941879.; Lee GH. Hepatic encephalopathy in acute-on-chronic liver failure. Hepatol Int. 2015 Oct; 9 (4): 520–526. doi:10.1007/s12072-015-9626-0. Epub 2015 May 28. PMID: 26016460.; Стома ИО. Микробиом человека; Белорус. гос. мед. ун-т, Мин. науч.-практ. центр хирургии, трансплантологии и гематологии. Минск: Доктор Дизайн, 2018; 122.; Blesl A, Stadlbauer V. The Gut-Liver Axis in Cholestatic Liver Diseases. Nutrients. 2021 Mar 21; 13 (3): 1018. doi:10.3390/nu13031018. PMID: 33801133; PMCID: PMC8004151.; Wang P, Chen K. Gut microbiota and hepatocellular carcinoma. Hepatobiliary Surg Nutr. 2020 Jun; 9 (3): 345–347. doi:10.21037/hbsn.2019.10.34. PMID: 32509825; PMCID: PMC7262609.; Xie Y, Luo Z, Li Z, Deng M, Liu H, Zhu B et al. Structural shifts of fecal microbial communities in rats with acute rejection after liver transplantation. Microb Ecol. 2012 Aug; 64 (2): 546–554. doi:10.1007/s00248-012-0030-1. Epub 2012 Mar 21. PMID: 22430504.; Ancona G, Alagna L, Lombardi A, Palomba E, Castelli V, Renisi G et al. The Interplay between Gut Microbiota and the Immune System in Liver Transplant Recipients and Its Role in Infections. Infect Immun. 2021 Oct 15; 89 (11): e0037621. doi:10.1128/IAI.00376-21.; Albillos A, Gottardi A, Rescigno M. The gut-liver axis in liver disease: pathophysiological basis for therapy. J Hepatol. 2020 Mar; 72 (3): 558–577. doi:10.1016/j.jhep.2019.10.003.; Kim S-I. Bacterial infection after liver transplantation. World J Gastroenterol. 2014 May 28; 20 (20): 6211–6220. doi:10.3748/wjg.v20.i20.6211. PMID: 24876741; PMCID: PMC4033458.; Singh N, Paterson DL, Chang FY, Gayowski T, Squier C, Wagener MM et al. Methicillin-resistant Staphylococcus aureus: the other emerging resistant gram-positive coccus among liver transplant recipients. Clin Infect Dis. 2000; 30: 322–327.; Lin M, Mah A, Wright A. Infectious complications of liver transplantation. AME Medical Journal. 2018; 3 (1). Retrieved from https://amj.amegroups.com/article/view/4228.; Хлебникова ЕП, Чжао АВ. Инфекционные осложнения у пациентов, подвергшихся пересадке печени. Трансплантология. 2011; (2–3): 57–62.; Camus C. Complications infectieuses chez le transplanté hépatique. Réanimation. 2014; 23: 317–326. doi:10.1007/s13546-014-0888-7.; Pedersen MR, Choi M, Brink JA, Seetharam AB. Pretransplant factors and & associations with postoperative respiratory failure, ICU length of stay, and short-term survival after liver transplantation in a high MELD population. J Transplant. 2016; 2016: 6787854.; Petrowsky H, Rana A, Kaldas FM, Sharma A, Hong JC, Agopian VG et al. Liver transplantation in highest acuity recipients: identifying factors to avoid futility. Ann Surg. 2014; 259: 1186–1194.; Chen C, Yang D, Gao S, Zhang Y, Chen L, Wang B et al. Development and performance assessment of novel machine learning models to predict pneumonia after liver transplantation. Respir Res. 2021 Mar 31; 22 (1): 94. doi:10.1186/s12931-021-01690-3. PMID: 33789673; PMCID: PMC8011203.; Savier E, Lim C, Rayar M, Orlando F, Boudjema K, Mohkam K et al. Favorable Outcomes of Liver Transplantation from Controlled Circulatory Death Donors Using Normothermic Regional Perfusion Compared to Brain Death Donors. Transplantation. 2020 Sep; 104 (9): 1943–1951. doi:10.1097/TP.0000000000003372.; Zheng D, Liwinski T, Elinav E. Interaction between microbiota and immunity in health and disease. Cell Res. 2020 Jun; 30 (6): 492–506. doi:10.1038/s41422-020-0332-7. Epub 2020 May 20. PMID: 32433595; PMCID: PMC7264227.; Yang X, Lu D, Zhuo J, Lin Z, Yang M, Xu X. The Gutliver Axis in Immune Remodeling: New insight into Liver Diseases. Int J Biol Sci. 2020; 16 (13): 2357–2366. Published 2020 Jun 23. doi:10.7150/ijbs.46405.; Ait Faqih S, Guebre-Egziabher F. Microbiote en transplantation d’organe solide. Le Courrier de la Transplantation. 2016 avril-mai-juin; XVI (2): 66–69.; Acharya C, Sahingur SE. Microbiota, cirrhosis, and the emerging oral-gut-liver axis. JCI Insight. 2017 Oct 5; 2 (19): e94416. doi:10.1172/jci.insight.94416. PMID: 28978799; PMCID: PMC5841881.; Arab JP, Martin-Mateos RM, Shah VH. Gut-liver axis, cirrhosis, and portal hypertension: the chicken and the egg. Hepatol Int. 2018 Feb; 12 (Suppl 1): 24–33. doi:10.1007/s12072-017-9798-x. Epub 2017 May 26. PMID: 28550391; PMCID: PMC6876989.; Hackstein CP, Assmus LM, Welz M, Klein S, Schwandt T, Schultze J et al. Gut microbial translocation corrupts myeloid cell function to control bacterial infection during liver cirrhosis. Gut. 2017; 66: 507–518. https://doi.org/10.1136/gutjnl-2015-311224.; Zigmond E, Bernshtein B, Friedlander G, Walker CR, Yona S, Kim KW et al. Macrophage-restricted interleukin-10 receptor deficiency, but not IL-10 deficiency, causes severe spontaneous colitis. Immunity. 2014 May 15; 40 (5): 720–733. doi:10.1016/j.immuni.2014.03.012. Epub 2014 May 1. PMID: 24792913.; Zhang Y, Xie B, Chen X, Zhang J, Yuan S. A key role of gut microbiota-vagus nerve/spleen axis in sleep deprivation-mediated aggravation of systemic inflammation after LPS administration. Life Sci. 2021 Jan 15; 265: 118736. doi:10.1016/j.lfs.2020.118736. Epub 2020 Nov 8. PMID: 33176177.; Wu Y, Wang M, Zhu Y, Lin S. Serum interleukin-6 in the diagnosis of bacterial infection in cirrhotic patients: A meta-analysis. Medicine (Baltimore). 2016 Oct; 95 (41): e5127. doi:10.1097/MD.0000000000005127. PMID: 27741137; PMCID: PMC5072964.; Kato K, Nagao M, Miyamoto K, Oka K, Takahashi M, Yamamoto M. Longitudinal Analysis of the Intestinal Microbiota in Liver Transplantation. Transplant Direct. 2017 Mar 10; 3 (4): e144. doi:10.1097/TXD.0000000000000661. PMID: 28405600; PMCID: PMC5381737.; Schwenger KJ, Clermont-Dejean N, Allard JP. The role of the gut microbiome in chronic liver disease: the clinical evidence revised. JHEP Rep. 2019 Jul 31; 1 (3): 214–226. doi:10.1016/j.jhepr.2019.04.004. PMID: 32039372; PMCID: PMC7001555.; Brandl K, Kumar V, Eckmann L. Gut-liver axis at the frontier of host-microbial interactions. Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol. 2017 May 1; 312 (5): G413–G419. doi:10.1152/ajpgi.00361.2016. Epub 2017 Feb 23. PMID: 28232456; PMCID: PMC5451561.; Bawa M, Saraswat VA. Gut-liver axis: role of inflammasomes. J Clin Exp Hepatol. 2013 Jun; 3 (2): 141–149. doi:10.1016/j.jceh.2013.03.225. Epub 2013 Apr 15. PMID: 25755488; PMCID: PMC4216435.; Hakansson A, Molin G. Gut microbiota and inflammation. Nutrients. 2011; 3: 637–682.; Palmblad J. The role of granulocytes in inflammation. Scand J Rheumatol. 1984; 13: 163–172.; Fujiwara N, Kobayashi K. Macrophages in inflammation. Curr Drug Targets Inflamm Allergy. 2005; 4: 281–286.; Anderson CF, Mosser DM. A novel phenotype for an activated macrophage: the type 2 activated macrophage. J Leukoc Biol. 2002; 72: 101–106.; Gordon S. Alternative activation of macrophages. Nat Rev. 2003; 3: 23–35.; Chen D, Le TH, Shahidipour H, Read SA, Ahlenstiel G. The Role of Gut-Derived Microbial Antigens on Liver Fibrosis Initiation and Progression. Cells. 2019; 8 (11): 1324. Published 2019 Oct 27. doi:10.3390/cells8111324.; Stärkel P, De Saeger C, Strain AJ, Leclercq I, Horsmans Y. NFκB, cytokines, TLR3 and 7 expressions in human end-stage HCV and alcoholic liver disease. Eur J Clin Investig. 2010; 40: 575–584. doi:10.1111/j.1365-2362.2010.02295.x.; Miao EA, Mao DP, Yudkosky N. Innate immune detection of the type III secretion apparatus through the NLRC4 inflammasome. Proc Natl Acad Sci USA. 2010; 107: 3076–3080.; Kubicek-Sutherland JZ, Vu DM, Noormohamed A, Mendez HM, Stromberg LR, Pedersen CA et al. Direct detection of bacteremia by exploiting host-pathogen interactions of lipoteichoic acid and lipopolysaccharide. Sci Rep. 2019 Apr 17; 9 (1): 6203. doi:10.1038/s41598-019-42502-5. PMID: 30996333; PMCID: PMC6470174.; Byun JS, Suh YG, Yi HS, Lee YS, Jeong WI. Activation of toll-like receptor 3 attenuates alcoholic liver injury by stimulating Kupffer cells and stellate cells to produce interleukin-10 in mice. J Hepatol. 2013 Feb; 58 (2): 342–349. doi:10.1016/j.jhep.2012.09.016.; Aragonès G, Colom-Pellicer M, Aguilar C, Guiu-Jurado E, Martínez S, Sabench F et al. Circulating microbiota-derived metabolites: A «liquid biopsy? Int J Obes. 2020 Apr; 44 (4): 875–885. doi:10.1038/s41366-019-0430-0.; Queck A, Carnevale R, Uschner FE, Schierwagen R, Klein S, Jansen C et al. Role of portal venous platelet activation in patients with decompensated cirrhosis and TIPS. Gut. 2020 Aug; 69 (8): 1535–1536.; Dattaroy D, Seth RK, Sarkar S, Kimono D, Albadrani M, Chandrashekaran V et al. Sparstolonin B (SSnB) attenuates liver fibrosis via a parallel conjugate pathway involving P53-P21 axis, TGF-beta signaling and focal adhesion that is TLR4 dependent. Eur J Pharmacol. 2018 Dec 15; 841: 33–48. doi:10.1016/j.ejphar.2018.08.040.; Xiao Y, Liu F, Yang J, Zhong M, Zhang E, Li Y et al. Over-activation of TLR5 signaling by high-dose flagellin induces liver injury in mice. Cell Mol Immunol. 2015; 12: 729–742. doi:10.1038/cmi.2014.110.; Massey VL, Qin L, Cabezas J, Caballeria J, SanchoBru P, Bataller R et al. TLR7-let-7 Signaling Contributes to Ethanol-Induced Hepatic Inflammatory Response in Mice and in Alcoholic Hepatitis. Alcohol Clin Exp Res. 2018 Nov; 42 (11): 2107–2122. doi:10.1111/acer.13871.; Conti P, Ronconi G, Caraffa A, Gallenga CE, Ross R, Frydas I et al. Induction of pro-inflammatory cytokines (IL-1 and IL-6) and lung inflammation by Coronavirus-19 (COVI-19 or SARS-CoV-2): anti-inflammatory strategies. J Biol Regul Homeost Agents. 2020 MarApr; 34 (2): 327–331. doi:10.23812/CONTI-E. PMID: 32171193.; Yahfoufi N, Alsadi N, Jambi M, Matar C. The Immunomodulatory and Anti-Inflammatory Role of Polyphenols. Nutrients. 2018 Nov 2; 10 (11): 1618. doi:10.3390/nu10111618. PMID: 30400131; PMCID: PMC6266803.; Juhas U, Ryba-Stanisławowska M, Szargiej P, Myśliwska J. Different pathways of macrophage activation and polarization. Postepy Hig Med Dosw (Online). 2015 Apr 22; 69: 496–502. doi:10.5604/17322693.1150133. PMID: 25983288.; Scheenstra MR, van Harten RM, Veldhuizen EJA, Haagsman HP, Coorens M. Cathelicidins Modulate TLR-Activation and Inflammation. Front Immunol. 2020 Jun 9; 11: 1137. doi:10.3389/fimmu.2020.01137. PMID: 32582207; PMCID: PMC7296178.; Møller DL, Sørensen SS, Wareham NE, Rezahosseini O, Knudsen AD, Knudsen JD et al. Bacterial and fungal bloodstream infections in pediatric liver and kidney transplant recipients. BMC Infectious Diseases. 2021; 21: 541. https://doi.org/10.1186/s12879-021-06224-2.; Ohtani N, Kawada N. Role of the Gut-Liver Axis in Liver Inflammation, Fibrosis, and Cancer: A Special Focus on the Gut Microbiota Relationship. Hepatol Commun. 2019; 3 (4): 456–470. Published 2019 Mar 1. doi:10.1002/hep4.1331.; Lee EY, Lee MW, Wong GCL. Modulation of toll-like receptor signaling by antimicrobial peptides. Semin Cell Dev Biol. 2019 Apr; 88: 173–184. doi:10.1016/j.semcdb.2018.02.002. Epub 2018 Feb 12. PMID: 29432957; PMCID: PMC6087683.; De Muynck K, Vanderborght B, Van Vlierberghe H, Devisscher L. The Gut-Liver Axis in Chronic Liver Disease: A Macrophage Perspective. Cells. 2021 Oct 30; 10 (11): 2959. doi:10.3390/cells10112959. PMID: 34831182; PMCID: PMC8616442.; Kronsten VT, Tranah TH, Pariante C, Shawcross DL. Gut-derived systemic inflammation as a driver of depression in chronic liver disease. J Hepatol. 2021 Nov 17: S0168-8278(21)02180-2. doi:10.1016/j.jhep.2021.11.008. Epub ahead of print. PMID: 34800610.; Marra F, Svegliati-Baroni G. Lipotoxicity and the gutliver axis in NASH pathogenesis. J Hepatol. 2018 Feb; 68 (2): 280–295. doi:10.1016/j.jhep.2017.11.014. Epub 2017 Nov 14. PMID: 29154964.; Robinson MW, Harmon C, O’Farrelly. Liver immunology and its role in inflammation and homeostasis. Cell Mol Immunol. 2016 May; 13 (3): 267–276.; Yu LX, Schwabe RF. The gut microbiome and liver cancer: mechanisms and clinical translation. Nat Rev Gastroenterol Hepatol. 2017; 14: 527–539.; Liu D, Cao S, Zhou Y, Xiong Y. J Recent advances in endotoxin tolerance. Cell Biochem. 2019 Jan; 120 (1): 56–70.; Milani C, Duranti S, Bottacini F, Casey E, Turroni F, Mahony J et al. The First Microbial Colonizers of the Human Gut: Composition, Activities, and Health Implications of the Infant Gut Microbiota. Microbiol Mol Biol Rev. 2017 Nov 8; 81 (4): e00036-17. doi:10.1128/MMBR.00036-17. PMID: 29118049; PMCID: PMC5706746.; Yatsunenko T, Rey FE, Manary MJ, Trehan I, Dominguez-Bello MG, Contreras M et al. Human Gut Microbiome Viewed Across Age and Geography. Nature. 2012; 486: 222–227. doi:10.1038/nature11053.; Tripathi A, Debelius J, Brenner DA, Karin M, Loomba R, Schnabl B et al. The gut-liver axis and the intersection with the microbiome. Nat Rev Gastroenterol Hepatol. 2018 Jul; 15 (7): 397–411. doi:10.1038/s41575-018-0011-z. Erratum in: Nat Rev Gastroenterol Hepatol. 2018 May 21; PMID: 29748586; PMCID: PMC6319369.; Inamine T, Schnabl B. Immunoglobulin A and liver diseases. J Gastroenterol. 2018; 53 (6): 691–700. doi:10.1007/s00535-017-1400-8.; Rayes N, Seehofer D, Theruvath T, Schiller RA, Langrehr JM, Jonas S et al. Supply of pre- and probiotics reduces bacterial infection rates after liver transplantation – a randomized, double-blind trial. Am J Transplant. 2005 Jan; 5 (1): 125–130. doi:10.1111/j.1600-6143.2004.00649.x. PMID: 15636620.; Mirpuri J, Raetz M, Sturge CR, Wilhelm CL, Benson A, Savani RC et al. Proteobacteria-specific IgA regulates maturation of the intestinal microbiota. Gut Microbes. 2014; 5: 28–39. doi:10.4161/gmic.26489.; Kabat AM, Srinivasan N, Maloy KJ. Modulation of immune development and function by intestinal microbiota. Trends in immunology. 2014; 35: 507–517.; Spencer SP, Fragiadakis GK, Sonnenburg JL. Pursuing Human-Relevant Gut Microbiota-Immune Interactions. Immunity. 2019; 51 (2): 225–239. doi:10.1016/j.immuni.2019.08.002.; Chen WLK, Edington C, Suter E, Yu J, Velazquez JJ, Velazquez JG et al. Integrated gut/liver microphysiological systems elucidates inflammatory inter-tissue crosstalk. Biotechnol Bioeng. 2017 Nov; 114 (11): 2648–2659. doi:10.1002/bit.26370. Epub 2017 Jul 27. PMID: 28667746; PMCID: PMC5614865.; Bozward AG, Ronca V, Osei-Bordom D, Oo YH. Gut-Liver Immune Traffic: Deciphering Immune-Pathogenesis to Underpin Translational Therapy. Front Immunol. 2021; 12: 711217. Published 2021 Aug 25. doi:10.3389/fimmu.2021.711217.; Kriss M, Verna EC, Rosen HR, Lozupone CA. Functional Microbiomics in Liver Transplantation: Identifying Novel Targets for Improving Allograft Outcomes. Transplantation. 2019; 103 (4): 668–678. doi:10.1097/TP.0000000000002568.; Щерба АЕ, Коротков СВ, Минов АФ, Слободин ЮВ, Савчук ММ., Дзядзько АМ и др. Влияние севофлюрана и ацетилцистеина на ишемически-реперфузионное повреждение печени донора со смертью мозга. Вестник трансплантологии и искусственных органов. 2013; 15 (1): 39–44. https://doi.org/10.15825/1995-1191-2013-1-39-44.; Rao J, Cheng F, Zhou H, Yang W, Qiu J, Yang C et al. Nogo-B is a key mediator of hepatic ischemia and reperfusion injury. Redox Biol. 2020 Oct; 37: 101745. doi:10.1016/j.redox.2020.101745. Epub 2020 Oct 8. PMID: 33099216; PMCID: PMC7582106.; Romanque UP, Uribe MM, Videla LA. Mecanismos moleculares en el daño por isquemia-reperfusión hepática y en el preacondicionamiento isquémico [Molecular mechanisms in liver ischemic-reperfusion injury and ischemic preconditioning]. Rev Med Chil. 2005 Apr; 133 (4): 469–476. Spanish. doi:10.4067/s0034-98872005000400012. Epub 2005 Jun 8. PMID: 15953956.; Nastos C, Kalimeris K, Papoutsidakis N, Tasoulis MK, Lykoudis PM, Theodoraki K et al. Global consequences of liver ischemia/reperfusion injury. Oxid Med Cell Longev. 2014; 2014: 906965. doi:10.1155/2014/906965. Epub 2014 Apr 1. PMID: 24799983; PMCID: PMC3995148.; Zhou J, Chen J, Wei Q, Saeb-Parsy K, Xu X. The Role of Ischemia/Reperfusion Injury in Early Hepatic Allograft Dysfunction. Liver Transpl. 2020 Aug; 26 (8): 1034–1048. doi:10.1002/lt.25779. PMID: 32294292.; Xia VW, Worapot A, Huang S, Dhillon A, Gudzenko V, Backon A et al. Postoperative atrial fibrillation in liver transplantation. Am J Transplant. 2015; 15: 687–694.; Pareja E, Cortes M, Hervás D, Mir J, Valdivieso A, Castell JV et al. A score model for the continuous grading of early allograft dysfunction severity. Liver Transpl. 2015; 21: 38–46.; Ali JM, Davies SE, Brais RJ, Randle LV, Klinck JR, Allison ME et al. Analysis of ischemia/reperfusion injury in time-zero biopsies predicts liver allograft outcomes. Liver Transpl. 2015 Apr; 21 (4): 487–499. doi:10.1002/lt.24072. PMID: 25545865.; Lu L, Zhou H, Ni M, Wang X, Busuttil R, Kupiec-Weglinski J et al. Innate Immune Regulations and Liver Ischemia-Reperfusion Injury. Transplantation. 2016 Dec; 100 (12): 2601–2610. doi:10.1097/TP.0000000000001411. PMID: 27861288; PMCID: PMC5141614.; Bajaj JS, Kakiyama G, Cox IJ, Nittono H, Takei H, White M et al. Alterations in gut microbial function following liver transplant. Liver Transpl. 2018 Jun; 24 (6): 752–761.; Xing HC, Li LJ, Xu KJ, Shen T, Chen YB, Sheng JF et al. Protective role of supplement with foreign Bifidobacterium and Lactobacillus in experimental hepatic ischemia-reperfusion injury. J Gastroenterol Hepatol. 2006 Apr; 21 (4): 647–656. doi:10.1111/j.1440-1746.2006.04306.x. PMID: 16677148.; Xie Y, Chen H, Zhu B, Qin N, Chen Y, Li Z et al. Effect of intestinal microbiota alteration on hepatic damage in rats with acute rejection after liver transplantation. Microb Ecol. 2014 Nov; 68 (4): 871–880. doi:10.1007/s00248-014-0452-z. Epub 2014 Jul 9. PMID: 25004996.; Salminen S, Benno Y, de Vos W. Intestinal colonisation, microbiota and future probiotics? Asia Pac J Clin Nutr. 2006; 15 (4): 558–562. PMID: 17077076.; Ren Z, Jiang J, Lu H, Chen X, He Y, Zhang H et al. Intestinal microbial variation may predict early acute rejection after liver transplantation in rats. Transplantation. 2014 Oct 27; 98 (8): 844–852. doi:10.1097/TP.0000000000000334. PMID: 25321166; PMCID: PMC4206351.; Sawas T, Al Halabi S, Hernaez R, Carey WD, Cho WK. Patients Receiving Prebiotics and Probiotics Before Liver Transplantation Develop Fewer Infections Than Controls: A Systematic Review and Meta-Analysis. Clin Gastroenterol Hepatol. 2015 Sep; 13 (9): 1567-74. e3; quiz e143-4. doi:10.1016/j.cgh.2015.05.027. Epub 2015 Jun 2. PMID: 26044318.; Rayes N, Seehofer D, Hansen S, Boucsein K, Müller AR, Serke S et al. Early enteral supply of lactobacillus and fiber versus selective bowel decontamination: a controlled trial in liver transplant recipients. Transplantation. 2002 Jul 15; 74 (1): 123–127. doi:10.1097/00007890-200207150-00021. PMID: 12134110.; Okubo H, Kushiyama A, Nakatsu Y, Yamamotoya T, Matsunaga Y, Fujishiro M et al. Roles of Gut-Derived Secretory Factors in the Pathogenesis of Non-Alcoholic Fatty Liver Disease and Their Possible Clinical Applications. Int J Mol Sci. 2018 Oct 8; 19 (10): 3064. doi:10.3390/ijms19103064. PMID: 30297626; PMCID: PMC6213237.; Aragonès G, González-García S, Aguilar C, Richart C, Auguet T. Gut Microbiota-Derived Mediators as Potential Markers in Nonalcoholic Fatty Liver Disease. Biomed Res Int. 2019 Jan 2; 2019: 8507583. doi:10.1155/2019/8507583. PMID: 30719448; PMCID: PMC6334327.; Boursier J, Mueller O, Barret M, Machado M, Fizanne L, Araujo-Perez F et al. The severity of nonalcoholic fatty liver disease is associated with gut dysbiosis and shift in the metabolic function of the gut microbiota. Hepatology. 2016 Mar; 63 (3): 764–775. doi:10.1002/hep.28356. Epub 2016 Jan 13. PMID: 26600078; PM-CID: PMC4975935.; Kalhan SC, Guo L, Edmison J, Dasarathy S, McCullough AJ, Hanson RW et al. Plasma metabolomic profile in nonalcoholic fatty liver disease. Metabolism. 2011 Mar; 60 (3): 404–413. doi:10.1016/j.metabol.2010.03.006. Epub 2010 Apr 27. PMID: 20423748; PMCID: PMC2950914.; Allen K, Jaeschke H, Copple BL. Bile acids induce inflammatory genes in hepatocytes: a novel mechanism of inflammation during obstructive cholestasis. The American Journal of Pathology. 2011; 178 (1): 175–186. doi:10.1016/j.ajpath.2010.11.026.; Svegliati-Baroni G, Ridolfi F, Hannivoort R, Saccomanno S, Homan M, De Minicis S et al. Bile acids induce hepatic stellate cell proliferation via activation of the epidermal growth factor receptor. Gastroenterology. 2005 Apr; 128 (4): 1042–1055. doi:10.1053/j.gastro.2005.01.007. PMID: 15825085.; Greenhalgh K, Meyer KM, Aagaard KM, Wilmes P. The human gut microbiome in health: establishment and resilience of microbiota over a lifetime. Environ Microbiol. 2016; 18: 2103–2116. https://doi.org/10.1111/1462-2920.13318.; Porras D, Nistal E, Martínez-Flórez S, Pisonero-Vaquero S, Olcoz JL, Jover R et al. Protective effect of quercetin on high-fat diet-induced non-alcoholic fatty liver disease in mice is mediated by modulating intestinal microbiota imbalance and related gut-liver axis activation. Free Radic Biol Med. 2017 Jan; 102: 188–202. doi:10.1016/j.freeradbiomed.2016.11.037. Epub 2016 Nov 25. PMID: 27890642.; Giorgio V, Miele L, Principessa L, Ferretti F, Villa MP, Negro V et al. Intestinal permeability is increased in children with non-alcoholic fatty liver disease, and correlates with liver disease severity. Dig Liver Dis. 2014 Jun; 46 (6): 556–560. doi:10.1016/j.dld.2014.02.010. Epub 2014 Mar 12. PMID: 24631029.; Langille MG, Zaneveld J, Caporaso JG, McDonald D, Knights D, Reyes JA et al. Predictive functional profiling of microbial communities using 16S rRNA marker gene sequences. Nat Biotechnol. 2013 Sep; 31 (9): 814–821. doi:10.1038/nbt.2676. Epub 2013 Aug 25. PMID: 23975157; PMCID: PMC3819121.; Børsting C, Morling N. Next generation sequencing and its applications in forensic genetics. Forensic Sci Int Genet. 2015 Sep; 18: 78–89. doi:10.1016/j.fsigen.2015.02.002. Epub 2015 Feb 14. PMID: 25704953.; McGinn S, Gut IG. DNA sequencing – spanning the generations. N Biotechnol. 2013 May 25; 30 (4): 366–372. doi:10.1016/j.nbt.2012.11.012. Epub 2012 Nov 16. PMID: 23165096.; Cullum R, Alder O, Hoodless PA. The next generation: using new sequencing technologies to analyse gene regulation. Respirology. 2011 Feb; 16 (2): 210–222. doi:10.1111/j.1440-1843.2010.01899.x. PMID: 21077988.; Ruggles KV, Fenyö D. Next Generation Sequencing Data and Proteogenomics. Adv Exp Med Biol. 2016; 926: 11–19. doi:10.1007/978-3-319-42316-6_2. PMID: 27686803.; Halperin RF, Hegde A, Lang JD, Raupach EA. Improved methods for RNAseq-based alternative splicing analysis. Sci Rep. 2021 May 24; 11 (1): 10740. doi:10.1038/s41598-021-89938-2. PMID: 34031440; PM-CID: PMC8144374.; https://journal.transpl.ru/vtio/article/view/1490
-
19Academic Journal
Authors: O. D. Olisov, M. S. Novruzbekov, V. A. Gulyaev, K. N. Lutsyk, О. Д. Олисов, М. С. Новрузбеков, В. А. Гуляев, К. Н. Луцык
Source: Transplantologiya. The Russian Journal of Transplantation; Том 14, № 3 (2022); 292-300 ; Трансплантология; Том 14, № 3 (2022); 292-300 ; 2542-0909 ; 2074-0506 ; 10.23873/2074-0506-2022-14-3
Subject Terms: циклоспорин A, hepatocellular carcinoma, immunosuppressive therapy, tacrolimus, cyclosporine A, гепатоцеллюлярная карцинома, иммуносупрессивная терапия, такролимус
File Description: application/pdf
Relation: https://www.jtransplantologiya.ru/jour/article/view/685/707; https://www.jtransplantologiya.ru/jour/article/view/685/724; Mazzaferro V, Regalia E, Doci R, Andreola S, Pulvirenti A, Bozzetti F, et al. Liver transplantation for the treatment of small hepatocellular carcinomas in patients with cirrhosis. N Engl J Med. 1996;334(11):693–699. PMID: 8594428 https://doi.org/10.1056/NEJM199603143341104; Clavien PA, Lesurtel M, Bossuyt PM, Gores GJ, Langer B, Perrier A. OLT for HCC Consensus Group. Recommendations for liver transplantation for hepatocellular carcinoma: an international consensus conference report. Lancet Oncol. 2012;13(1):e11–e22. PMID: 22047762 https://doi.org/10.1016/S1470-2045(11)70175-9; Восканян С.Э., Найденов Е.В., Артемьев А.И., Колышев И.Ю., Забежинский Д.А., Губарев К.К. и др. Отдаленные результаты трансплантации печени при гепатоцеллюлярном раке. Анналы хирургической гепатологии. 2021;26(2):68–82. https://doi.org/10.16931/10.16931/1995-5464.2021-2-68-82; Готье С.В., Монахов А.Р., Цирульникова О.М., Зубенко С.И., Ситникова Е.В., Умрик Д.В. и др. Результаты трансплантации печени при гепатоцеллюлярном раке: опыт одного центра. Анналы хирургической гепатологии. 2020;25(2):67–76. https://doi.org/10.16931/1995-5464.2020267-76; Vivarelli M, Cucchetti A, Piscaglia F, La Barba G, Bolondi L, Cavallari A, et al. Analysis of risk factors for tumor recurrence after liver transplantation for hepatocellular carcinoma: key role of immunosuppression. Liver Transpl. 2005;11(5):497–503. PMID: 15838913 https://doi.org/10.1002/lt.20391; Vivarelli M, Cucchetti A, La Barba G, Ravaioli M, Del Gaudio M, Lauro A, et al. Liver transplantation for hepatocellular carcinoma under calcineurin inhibitors: reassessment of risk factors for tumor recurrence. Ann Surg. 2008;248(5):857–862. PMID: 18948815 https://doi.org/10.1097/SLA.0b013e3181896278; Vivarelli M, Dazzi A, Zanello M, Cucchetti A, Cescon M, Ravaioli M, et al. Effect of different immunosuppressive schedules on recurrence-free survival after liver transplantation for hepatocellular carcinoma. Transplantation. 2010;89(2):227–231. PMID: 20098287 https://doi.org/10.1097/TP.0b013e3181c3c540; Rodríguez-Perálvarez M, Tsochatzis E, Naveas MC, Pieri G, García-Caparrós C, O'Beirne J, et al. Reduced exposure to calcineurin inhibitors early after liver transplantation prevents recurrence of hepatocellular carcinoma. J Hepatol. 2013;59(6):1193–1199. PMID: 23867318 https://doi.org/10.1016/j.jhep.2013.07.012; Rodríguez-Perálvarez M, De la Mata M, Burroughs AK. Liver transplantation: immunosuppression and oncology. Curr Opin Organ Transplant. 2014;19(3):253–260. PMID: 24685671 https://doi.org/10.1097/MOT.0000000000000069; Lerut J, Iesari S, Foguenne M, Lai Q. Hepatocellular cancer and recurrence after liver transplantation: what about the impact of immunosuppression? Transl Gastroenterol Hepatol. 2017;2:80. PMID: 29167827 https://doi.org/10.21037/tgh.2017.09.06 eCollection 2017.; Ossami Saidy RR, Postel MP, Pflüger MJ, Schoening W, Öllinger R, Gül-Klein S, et al. Minimization of immunosuppressive therapy is associated with improved survival of liver transplant patients with recurrent hepatocellular carcinoma. Cancers (Basel). 2021;13(7):1617. PMID: 33807392 https://doi.org/10.3390/cancers13071617; Verna EC, Patel YA, Aggarwal A, Desai AP, Frenette C, Pillai AA, et al. Liver transplantation for hepatocellular carcinoma: management after the transplant. Am J Transplant. 2020;20(2):333-347. PMID: 31710773 https://doi.org/10.1111/ajt.15697; https://www.jtransplantologiya.ru/jour/article/view/685
-
20Academic Journal
Authors: A. N. Katrich, S. V. Polshikov, E. P. Fisenko, А. Н. Катрич, С. В. Польшиков, Е. П. Фисенко
Source: Medical Visualization; Том 26, № 1 (2022); 104-118 ; Медицинская визуализация; Том 26, № 1 (2022); 104-118 ; 2408-9516 ; 1607-0763
Subject Terms: цирроз печени, liver neoplasms, hepatocellular carcinoma, liver metastases, liver cirrhosis, новообразования печени, гепатоцеллюлярная карцинома, метастазы печени
File Description: application/pdf
Relation: https://medvis.vidar.ru/jour/article/view/1020/715; https://medvis.vidar.ru/jour/article/downloadSuppFile/1020/1158; https://medvis.vidar.ru/jour/article/downloadSuppFile/1020/1159; https://medvis.vidar.ru/jour/article/downloadSuppFile/1020/1160; https://medvis.vidar.ru/jour/article/downloadSuppFile/1020/1161; https://medvis.vidar.ru/jour/article/downloadSuppFile/1020/1162; https://medvis.vidar.ru/jour/article/downloadSuppFile/1020/1163; Weskott H.P. Контрастная сонография. Бремен: UNIMED, 2014. 284 c.; Vidili G., De Sio I., D’Onofrio M. et al.; The SIUMB experts committee. SIUMB guidelines and recommendations for the correct use of ultrasound in the management of patients with focal liver disease. J. Ultrasound. 2019; 22: 41–51. https://doi.org/10.1007/s40477-018-0343-0; Strobel D., Seitz K., Blank W. et al. Tumor-specific vascularization pattern of liver metastasis, hepatocellular carcinoma, hemangioma and focal nodular hyperplasia in the differential diagnosis of 1,349 liver lesions in contrastenhanced ultrasound (CEUS). Ultraschall. Med. 2009; 30 (4): 376–382. https://doi.org/10.1055/s-0028-1109672; Соновью. Научная монография. Динамическое контрастное усиление в режиме реального времени. M.: Bracco, 2014. 45 c.; Christopher M., Sulaiman N., Xuejiao W. Management and outcome of colorectal cancer liver metastases in elderly patients: a population-based stud. JAMA Oncol. 2015; 1 (8): 1111–19. https://doi.org/10.1001/jamaoncol.2015.2943; Cantisani V., Ricci P., Grazhdani H. et al. Prospective comparative analysis of colour-Doppler ultrasound, contrast-enhanced ultrasound, computed tomography and magnetic resonance in detecting endoleak after endovascular abdominal aortic aneurysm repair. Eur. J. Endovasc. Surg. 2011; 41 (2): 186–192. https://doi.org/10.1016/j.ejvs.2010.10.003; Dietrich C., Ignee A., Hocke M. et al. Pitfalls and artefacts using contrast enhanced ultrasound. J. Gastroenterol. 2011; 49: 350–356. https://doi.org/10.1055/s-0029-1245851; Schuessler G., Fellbaum C., Fauth F. et al. Der inflammatorische Pseudotumor – eine schwierige Differen zialdiagnose. Ultraschall Med. 2006; 27: 273–279. https://doi.org/10.1055/s-2005-858530; Спиральная и многослойная компьютерная томография: Учебное пособие. В 2-х томах / М. Прокоп, М. Галански: Пер. с англ. под общей ред. А.В. Зубарева, Ш.Ш. Шотемора. 3- е изд. М.: МЕДпресс-информ, 2011; т. 2. 712 c.; Подымова С.Д. Болезни печени: Руководство для врачей. Изд. 5-е, перераб. и доп. М.: ООО Медицинское информационное агентство, 2018. 984 с.; Petrick J., Kelly S., Altekruse S. et al. Future of Hepatocellular Carcinoma Incidence in the United States Forecast Through 2030. J. Clin. Oncol. 2016; 34 (15): 1787–1794. https://doi.org/10.1200/JCO.2015.64.7412; Claudon M., Dietrich C.F., Choi B.I. et al. Клинические рекомендации по ультразвуковому исследованию печени с применением контрастных препаратов. Пере смотр от 2012 г. Инициатива WFUMB-EFSUMB с представительством AFSUMB, AIUM, ASUM, FLAUS и ICUS. Ультразвуковая и функциональная диагностика. 2017; 1: 81–116.; Bruix J., Sherman M. Management of hepatocellular carcinoma: an update. Hepatology. 2011; 53: 1020–1022. https://doi.org/10.1002/hep.24199; D'Onofrio M., Crosara S., De Robertis R. et al. Contrastenhanced ultrasound of focal liver lesions. Am. J. Roentgenol. 2015; 205 (1): 56–66. https://doi.org/10.2214/AJR.14.14203; Камалов Ю.Р., Крыжановская Е.Ю., Любивый Е.Д. Печеночный кровоток при циррозе печени в зависимости от стадии по Child–Turcotte–Pugh и степени варикозного расширения вен пищевода. Ультразвуковая и функциональная диагностика. 2013; 2: 55–60.; Grgurevic I., Drinkovic I., Pinzani M. Multiparametric ultrasound in liver diseases: an overview for the practising clinician. Postgrad. Med. J. 2019; 95 (1126): 425–432. https://doi.org/10.1136/postgradmedj-2018-136111; Митьков В.В. Допплерография в диагностике заболеваний печени, желчного пузыря, поджелудочной железы и их сосудов. М.: Видар, 2000. 146 с.; Forner A., Llovet J., Brux J. Hepatocellular carcinoma. Lancet. 2012; 397 (9822): 1245–1255. https://doi.org/10.1016/S0140-6736(11)61347-0; Xu H., Xie X., Lu M. et al. Contrast-enhanced sonography in the diagnosis of small hepatocellular carcinoma < or = 2 cm. J. Clin. Ultrasound. 2008; 36 (5): 257–266. https://doi.org/10.1002/jcu.20433; International Consensus Group for Hepatocellular Neoplasia. Pathologic diagnosis of early hepatocellular carcinoma: a report of the international consensus group for hepatocellular neoplasia. Hepatology. 2009; 49 (2): 658–664. https://doi.org/10.1002/hep.22709; Matsui O. Detection and characterization of hepatocellular carcinoma by imaging. Clin. J. Gastroenterol. & Hepatol. 2005; 3 (10); Suppl. 2: 136–140.; Wyatt J., Hubscher S., Goldin R. Standards and datasets for reporting cancers. Dataset for histopathology reporting of liver resection specimens (including gall bladder) and liver biopsies for primary and metastatic carcinoma (2nd ed.). 2012. The Royal College of Pathologists.; Loughrey M., Quirke P., Shepherd N. Standards and datasets for reporting cancers. Dataset for histopathological reporting of colorectal cancer. 2018. The Royal College of Pathologists.; Агаева З.А., Авхадов Т.С., Горбов Л.В., Каранадзе Е.Н. Опыт применения контрастной сонографии в дифференциальной диагностике опухолевых образований печени. Медицинская визуализация. 2017; 21 (1): 13–19. https://doi.org/10.24835/1607-0763-2017-1-13-19; https://medvis.vidar.ru/jour/article/view/1020