-
1Academic Journal
Authors: M. U. Utebayev, S. M. Dashkevich, O. O. Kradetskaya, I. V. Chilimova, N. A. Bome, М. У. Утебаев, С. М. Дашкевич, О. О. Крадецкая, И. В. Чилимова, Н. А. Боме
Contributors: This study has financial support from the Ministry of Agriculture of the Republic of Kazakhstan: BR10764908 “To develop an agriculture system for the cultivation of agricultural crops (cereals, legumes, oilseeds and industrial crops) with the use of cultivation technology elements, differentiated nutrition, plant protection products and equipment for cost-effective production based on a comparative study of various cultivation technologies for the regions of Kazakhstan”.
Source: Vavilov Journal of Genetics and Breeding; Том 28, № 3 (2024); 263-275 ; Вавиловский журнал генетики и селекции; Том 28, № 3 (2024); 263-275 ; 2500-3259 ; 10.18699/vjgb-24-30
Subject Terms: электрофорез, genetic diversity, genetic similarity, common wheat, electrophoresis, генетическое разнообразие, генетическое сходство, мягкая пшеница
File Description: application/pdf
Relation: https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/4140/1833; Autran J.C., Bushuk W., Wrigley C.W., Zillman R.R. Wheat cultivar identification by gliadin electrophoregrams. IV. Comparison of international methods. Cereal Foods World. 1979;24(9):471-475; Barley. UPOV Code(s): HORDE_VUL, Hordeum vulgare L. Guidelines for the conduct of tests for distinctness, uniformity and stability. Geneva: International Union for the Protection of New Varieties of Plants, 2018. Available at: https://www.upov.int/edocs/tgdocs/en/tg019.pdf; Branlard G., Dardevet M., Amiour N., Igrejas G. Allelic diversity of HMW and LMW glutenin subunits and omega-gliadins in French bread wheat (Triticum aestivum L.). Genet. Resour. Crop Evol. 2003; 50:669-679. DOI 10.1023/A:1025077005401; Chebotar S.V., Blagodarova E.M., Kurakina E.A., Semenyuk I.V., Polishchuk A.M., Kozub N.A., Sozinov I.A., Khokhlov A.N., Ribalka A.I., Sivolap Yu.M. Genetic polymorphism of loci determining bread making quality in Ukrainian wheat varieties. Vavilovskii Zhurnal Genetiki i Selektsii = Vavilov Journal of Genetics and Breeding. 2012;16(1):87-98 (in Russian); Chernakov V.M., Metakovsky E.V. Diversity of gliadin-coding locus allelic variants and evaluation of genetic similarity of common wheat varieties from different breeding centers. Genetika = Genetics (Moscow). 1994;30(4):509-517 (in Russian); Cox T.S., Raupp W.J., Gill B.S. Leaf rust-resistance genes Lr41, Lr42, and Lr43 transferred from Triticum tauschii to common wheat. Crop Sci. 1994;34(2):339-343. DOI 10.2135/cropsci1994.0011183 X003400020005x; Czarnecki E.M., Lukow O.M. Linkage of stem rust resistance gene Sr33 and the gliadin (Gli-D1) locus on chromosome 1DS. Genome. 1992;35(4):565-568. DOI 10.1139/g92-084; Demichelis M., Vanzetti L.S., Crescente J.M., Nisi M.M., Pflüger L., Bainotti C.T., Helguera M. Significant effects in bread-making quali ty associated with the gene cluster Glu-D3/Gli-D1 from the bread wheat cultivar Prointa Guazú. Cereal Res. Commun. 2019; 47(1):111-122. DOI 10.1556/0806.46.2018.055; Dobrotvorskaya T.V., Dragovich A.Yu., Martynov S.P., Pukhal’skii V.A. Genealogical and statistical analyses of the inheritance of gliadincoding alleles in a model set of common wheat Triticum aestivum L. cultivars. Russ. J. Genet. 2009;45(6):685-695. DOI 10.1134/S1022795409060088; GRIS – Genetic Resources Information System for Wheat and Triticale. 2017. Avialiable at: http://www.wheatpedigree.net/; Hsam N.O., Kowalczyk K., Zeller F.J., Hsam S.L. Characterization of powdery mildew resistance and linkage studies involving the Pm3 locus on chromosome 1A of common wheat (Triticum aestivum L.). J. Appl. Genet. 2015;56(1):37-44. DOI 10.1007/s13353-014-0236-7; Kakaei M., Ahmadian S. Genetic diversity study of some Iranian alfalfa genotypes based on seed storage proteins patterns. Iran. J. Sci. Technol. Trans. A Sci. 2021;45(4):1223-1228. DOI 10.1007/s40995-021-01142-z; Kaur R., Kaur R., Sharma N., Kumari N., Khanna R., Singh G. Protein profiling in a set of wild rice species and rice cultivars: a stepping stone to protein quality improvement. Cereal Res. Commun. 2023; 51:163-177. DOI 10.1007/s42976-022-00273-2; Khrunov A.A., Fisenko A.V., Beletsky S.L., Dragovich A.Yu. Study of the relationship between the composition of gliadins and economically valuable traits of common wheat. Izvestiya Timiryazevskoj Sel’skohozyajstvennoj Akademii = Izvestiya of Timiryazev Agricultural Academy. 2011;2:11-19 (in Russian); Kozub N.A., Sozinov I.A., Sobko T.A., Kolyuchii V.T., Kuptsov S.V., Sozinov A.A. Variation at storage protein loci in winter common wheat cultivars of the Central Forest-Steppe of Ukraine. Cytol. Genet. 2009;43(1):55-62. DOI 10.3103/S0095452709010101; Kozub N.A., Sozinov I.A., Sobko T.A., Dedkova O.S., Badaeva E.D., Netsvetaev V.P. Rye translocations in the varieties of winter common wheat. Sel’skokhozyaistvennaya Biologiya = Agricultural Biology. 2012;47(3):68-74. DOI 10.15389/agrobiology.2012.3.68eng; Kunanbayev K., Churkina G., Filonov V., Utebayev M., Rukavitsina I. Influence of cultivation technology on the productivity of spring wheat and the humus state of Southern carbonate soils of N orthern Kazakhstan. J. Ecol. Eng. 2022;23(3):49-58. DOI 10.12911/22998993/145459; Laboratory Analysis of Wheat Seed Proteins. Technological instruction. Moscow, 2013 (in Russian); Li Y., Song Y., Zhou R., Branlard G., Jia J. Detection of QTLs for breadmaking quality in wheat using a recombinant inbred line population. Plant Breed. 2009;128(3):235-243. DOI 10.1111/j.1439-0523.2008.01578.x; Lyubimova A.V., Tobolova G.V., Eremin D.I., Loskutov I.G. Dynamics of genetic diversity of oat varieties in the Tyumen region at avenincoding loci. Vavilovskii Zhurnal Genetiki i Selektsii = Vavilov Journal of Genetics and Breeding. 2020;24(2):123-130. DOI 10.18699/VJ20.607; Ma G., Li Q., Li S., Liu Z., Cui Y., Zhang J., Liu D. Genetic diversity and classification of chinese elite foxtail millet [Setaria italica (L.) P. Beauv.] revealed by acid-PAGE prolamin. Agric. Sci. 2022;13(3); 428. DOI 10.4236/as.2022.133028; Masci S., Rovelli L., Kasarda D.D., Vensel W.H., Lafiandra D. Characterisation and chromosomal localisation of C-type low-molecular-weight glutenin subunits in the bread wheat cultivar Chinese Spring. Theor. Appl. Genet. 2002;104(2-3):422-428. DOI 10.1007/s001220100761; McIntosh R.A., Devos K.M., Dubkovsky J., Morris C.F., Rogers W.J. Catalogue of Gene Symbols for Wheat. Supplement. 2003. Available at: https://wheat.pw.usda.gov/ggpages/wgc/2003upd.html; Melnikova N.V., Kudryavtseva A.V., Kudryavtsev A.M. Catalogue of alleles of gliadin-coding loci in durum wheat (Triticum durum Desf.). Biochimie. 2012;94(2):551-557. DOI 10.1016/j.biochi.2011.09.004; Metakovsky E.V. Gliadin allele identification in common wheat. II. Cataloque of gliadin alleles in common wheat. J. Genet. Breed. 1991; 45(4):325-344; Metakovsky E.V., Branlard G. Genetic diversity of French common wheat germplasm based on gliadin alleles. Theor. Appl. Genet. 1998; 96:209-218. DOI 10.1007/s001220050729; Metakovsky E.V., Novoselskaya A.Yu. Gliadin allele identification in common wheat. I. Methodological aspects of the analysis of gliadin pattern by one-dimensional polyacrylamide gel electrophoresis. J. Genet Breed. 1991;45(4):317-324; Metakovsky E.V., Wrigley C.W., Bekes F., Gupta R.B. Gluten polypeptides as useful genetic markers of dough quality in Australian wheats. Aust. J. Agric. Res. 1990;41(2):289-306. DOI 10.1071/AR9900289; Metakovsky E.V., Pogva N.E., Blancardi A.M., Redaelli R. Gliadin allele composition of common wheat cultivars grown in Italy. J. Gen. Breed. 1994;48(1):55-66; Metakovsky E.V., Annicchiarico P., Boggini G.E., Pogna N.E. Relationship between gliadin alleles and dough strength in Italian bread wheat cultivars. J. Cereal Sci. 1997;25(3):229-236. DOI 10.1006/jcrs.1996.0088; Metakovsky E.V., Gómez M., Vázquez J.F., Carrillo J.M. High genetic diversity of Spanish common wheats as judged from gliadin alleles. Plant Breed. 2000;119(1):37-42. DOI 10.1046/j.1439-0523.2000.00450.x; Metakovsky E., Melnik V., Rodriguez-Quijano M., Upelniek V., Carrillo J.M. A catalog of gliadin alleles: polymorphism of 20th-century common wheat germplasm. Crop J. 2018;6(6):628-641. DOI 10.1016/j.cj.2018.02.003; Metakovsky E., Melnik V.A., Pascual L., Wrigley C.W. Gliadin genotypes worldwide for spring wheats (Triticum aestivum L.) 1. Genetic diversity and grain-quality gliadin alleles during the 20th century. J. Cereal Sci. 2019;87:172-177. DOI 10.1016/j.jcs.2019.03.008; Metakovsky E., Melnik V., Pascual L., Wrigley C.W. Over 40 % of 450 registered wheat cultivars (Triticum aestivum) worldwide are composed of multiple biotypes. J. Cereal Sci. 2020;96:103088. DOI 10.1016/j.jcs.2020.103088; MN-01-03/001:2000 – Blé – Identification des varieties par électrophorèse. In: Les projets de normes, adoptés par le Conseil National de Normalisation et de Contrôle de Qualité lors de la session du 20 décembre 2000, sont homologués comme normes maliennes. Bamako, 2001; Nei M. Analysis of gene diversity in subdivided populations. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1973;70(12):3321-3323. DOI 10.1073/pnas.70.12.3321; Nieto-Taladriz M.T., Perretant M.R., Rousset M. Effect of gliadins and HMW and LMW subunits of glutenin on dough properties in the F6 recombinant inbred lines from a bread wheat cross. Theor. Appl. Genet. 1994;88(1):81-88. DOI 10.1007/BF00222398; Nikolaev A.A., Pukhal’sky V.A., Upelniek V.P. Genetic diversity of local spring bread wheats (Triticum aestivum L.) of West and East Siberia in gliadin genes. Russ. J. Genet. 2009;45(2):189-197. DOI 10.1134/S1022795409020094; Noma S., Hayakawa K., Abe C., Suzuki S., Kawaura K. Contribution of α-gliadin alleles to the extensibility of flour dough in Japanese wheat cultivars. J. Cereal Sci. 2019;86:15-21. DOI 10.1016/j.jcs.2018.12.017; Novoselskaya-Dragovich A.Y., Krupnov V.A., Saifulin R.A., Pukhalskiy V.A. Dynamics of genetic variation at gliadin-coding loci in Saratov cultivars of common wheat Triticum aestivum L. over eight decades of scientific breeding. Russ. J. Genet. 2003;39(10):11301137. DOI 10.1023/A:1026170709964; Novoselskaya-Dragovich A.Y., Fisenko A.V., Yankovsky N.K., Kudryavtsev A.M., Yang Q., Lu Z., Wang D. Genetic diversity of storage protein genes in common wheat (Triticum aestivum L.) cultivars from China and its comparison with genetic diversity of cultivars from other countries. Genet. Resour. Crop Evol. 2011;58(4):533-543. DOI 10.1007/s10722-010-9596-y; Novoselskaya-Dragovich A.Y., Fisenko A.V., Puhal’skii V.A. Genetic differentiation of common wheat cultivars using multiple alleles of gliadin coding loci. Russ. J. Genet. 2013;49(5):487-496. DOI 10.1134/S1022795413020087; Novoselskaya-Dragovich A.Yu., Bespalova L.A., Shishkina A.A., Melnik V.A., Upelniek V.P., Fisenko A.V., Dedova L.V., Kudryavtsev A.M. Genetic diversity of common wheat varieties at the gliadin-coding loci. Russ. J. Genet. 2015;51(3):323-333. DOI 10.1134/ S1022795415030102; Salavati A., Sameri H., Boushehri A.A.S., Yazdi-Samadi B. Evaluation of genetic diversity in Iranian landrace wheat Triticum aestivum L. by using gliadin alleles. Asian J. Plant Sci. 2008;7(5):440-446. DOI 10.3923/ajps.2008.440.446; Sharma A., Sheikh I., Kumar R., Kumar K., Vyas P., Dhaliwal H.S. Evaluation of end use quality and root traits in wheat cultivars associated with 1RS.1BL translocation. Euphytica. 2018;214(4):62. DOI 10.1007/s10681-018-2144-0; Shavrukov Y., Suchecki R., Eliby S., Abugalieva A., Kenebayev S., Langridge P. Application of next-generation sequencing technology to study genetic diversity and identify unique SNP markers in bread wheat from Kazakhstan. BMC Plant Biol. 2014;14:258. DOI 10.1186/s12870-014-0258-7; Sozinov A.A. Protein Polymorphism and its Significance in Genetics and Breeding. Moscow, 1985 (in Russian); Sozinov A.A., Poperelya F.A. Genetic classification of prolamins and its use for plant breeding. Ann. Technol. Agric. 1980;29(2):229-245; ST RK 3323-2018. Seeds of Wheat. Identification of varieties by electrophoresis. Astana, 2018 (in Russian); Upelniek V.P., Brezhneva T.A., Dadashev S.Y., Novozhilova O.A., Molkanova O.I., Semikhov V.F. On the use of alleles of gliadincoding loci as possible adaptability markers in the spring wheat (Triticum aestivum L.) cultivars during seed germination. Russ. J. Genet. 2003;39(12):1680-1686. DOI 10.1023/B:RUGE.0000009158.41760.67; Utebayev M., Dashkevich S., Babkenov A., Shtefan G., Fahrudenova I., Bayahmetova S., Sharipova B., Kaskarbayev Zh., Shavrukov Y. Application of gliadin polymorphism for pedigree analysis in common wheat (Triticum aestivum L.) from Northern Kazakhstan. Acta Physiol. Plant. 2016;38:204. DOI 10.1007/s11738-016-2209-4; Utebayev M., Dashkevich S., Bome N., Bulatova K., Shavrukov Y. Genetic diversity of gliadin-coding alleles in bread wheat (Triticum aestivum L.) from Northern Kazakhstan. PeerJ. 2019а;7:e7082. DOI 10.7717/peerj.7082; Utebayev M., Dashkevich S., Kunanbayev K., Bome N., Sharipova B., Shavrukov Y. Genetic polymorphism of glutenin subunits with high molecular weight and their role in grain and dough qualities of spring bread wheat (Triticum aestivum L.) from Northern Kazakhstan. Acta Physiol. Plant. 2019b;41(5):71. DOI 10.1007/s11738-019-2862-5; Utebayev M.U., Bome N.A., Zemtsova E.S., Kradetskaya O.O., Chilimova I.V. Diversity of high-molecular-weight glutenin subunits and evaluation of genetic similarities in spring bread wheats from different breeding centers. Trudy po Prikladnoy Botanike, Genetike i Selektsii = Proceedings on Applied Botany, Genetics and Breeding. 2021;182(1):99-109. DOI 10.30901/2227-8834-2021-1-99-109 (in Russian); Utebayev M.U., Dolinny Y.Y., Dashkevich S.M., Bome N.A. Allelic composition of gliadin-coding loci as a ‘portrait’ in spring soft wheat selections of Russian and Kazakh origins. SABRAO J. Breed. Genet. 2022;54(4):755-766. DOI 10.54910/sabrao2022.54.4.7; Watry H., Zerkle A., Laudencia-Chingcuanco D. Modified acid-PAGE method for rapid screening and phenotyping of wheat gliadin mutant lines. MethodsX. 2020;7:100858. DOI 10.1016/j.mex.2020.100858; Wheat. UPOV Code(s): TRITI_AES, Triticum aestivum L. emend. Fiori et Paol. Guidelines for the conduct of tests for distinctness, uniformity and stability. Geneva: International Union for the Protection of New Varieties of Plants, 2022. Available at: https://www.upov.int/edocs/tgdocs/en/tg003.pdf; Xynias I.N., Kozub N.O., Sozinov I.A. Seed storage protein composition of Hellenic bread wheat cultivars. Plant Breed. 2006;125(4): 408-410. DOI 10.1111/j.1439-0523.2006.01242.x; Zhivotovsky L.A. Population similarity measure for polymorphic characters. Zhurnal Obshchey Biologii = Journal of General Biol ogy. 1979;40(4):587-602 (in Russian); Zhivotovsky L.A. Population Biometry. Moscow, 1991 (in Russian); https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/4140
-
2Academic Journal
Source: Зоотехния.
Subject Terms: 2. Zero hunger, генетическое сходство, группа крови, иммуногенетика, овцы, генетическое расстояние, маркер
-
3Academic Journal
Contributors: Работа выполнена при финансовой поддержке Министерства науки и высшего образования России, номер государственного учёта НИОКТР: АААА-А19–119012290066–7.
Source: Bulletin of NSAU (Novosibirsk State Agrarian University); № 4 (2019); 32-39 ; Вестник НГАУ (Новосибирский государственный аграрный университет); № 4 (2019); 32-39 ; 2072-6724
Subject Terms: молочная продуктивность, incidence, blood systems, genetic similarity, immunogenetic features, polymorphism, dairy productivity, частота встречаемости, системы крови, генетическое сходство, иммуногенетические особенности, полиморфизм
File Description: application/pdf
Relation: https://vestngau.elpub.ru/jour/article/view/1260/643; Шендаков А.И. Иммуногенетические сходства и различия быков производителей разных пород // Биология в сел. хоз-ве. – 2017. – № 3 (16). – С. 15–19.; Кулумаева Н.Я. Характеристика крупного рогатого скота Республики Хакасия по системам групп крови // Альманах современной науки и образования. – 2008. – № 5. – С. 80–82.; Холодова Л.В., Новоселова К.С. Использование иммуногенетики в селекции молочного стада Республики Марий Эл // Вестн. Марий. ун-та. – 2018. – Т. 4, № 3. – С. 69–76.; Шукюрова Е.Б. Генетическая структура стад черно-пестрого крупного рогатого скота, разводимого в Хабаровском крае, по группам крови // Дальневост. аграр. вестн. – 2017. – № 2 (42). – С. 111–119.; Еремина И.Ю.,Коростелева Д.А.Анализ состояния гетерогенности красно-пестрой породы енисейского типа по эритроцитарным антигенам // Проблемы современной аграрной науки: материалы Междунар. заоч. науч. конф. – 2015. – С. 43–45.; Сердюк Г.Н. Группы крови и их значение в организме млекопитающих // Генетика и разведение животных. – 2018. – № 2. – С. 94–100.; Камалдинов Е.В., Себежко О.И., Короткевич О.С. Фонд эритроцитарных антигенов крупного рогатого скота Сибири // Фундаментальные исследования. – 2015. – № 2–19. – С. 4197–4202.; Клименок И.И., Яранцева С.Б., Шишкина М.А. Продуктивность и племенные качества черно-пестрого скота сибирского региона // Генетика и разведение животных. – 2014. – № 2. – С. 30–33.; Петухов В.Л., Короткевич О.С., Станбеков С.Ж. Генетика: учебник. – 2-е изд., испр. и доп. – Новосибирск: СемГПИ, 2007. – С. 250–251.; Васильева Л.А. Статистические методы в биологии, медицине и сельском хозяйстве. – Новосибирск, 2007. – С. 86–88.; Лакин Г.Ф. Биометрия: учебник. – М.: Высш. шк., 1973. – С. 157–158.; Прокопив Л.Н., Александрова С.С. Мониторинг антигенной структуры стада скота чернопестрой породы в зависимости от линейной принадлежности // Аграр. вестн. Урала. – 2014. – № 11 (129). – С 36–39.; Новоселова К.С., Холодова Л.В., Киселев А.А. Анализ частоты распространения эритроцитарных антигенов систем крови у коров черно-пестрой породы // Уч. зап. Казан. гос. акад. вет. медицины им. Н.Э. Баумана. Сел. и лесн. хоз-во. – 2014. – Т. 218, № 2. – С.203–206.; https://vestngau.elpub.ru/jour/article/view/1260
-
4Academic Journal
Authors: E. I. Anisimova, Е. И. Анисимова
Contributors: The research was carried out within the state assignment of the Agriculture Research Institute of the South-East Region (theme № 0751-2016-0004), Работа выполнена в рамках Государственного задания ФГБНУ НИИСХ Юго-Востока (тема № 0751-2016-0004)
Source: Agricultural Science Euro-North-East; Том 20, № 4 (2019); 398-406 ; Аграрная наука Евро-Северо-Востока; Том 20, № 4 (2019); 398-406 ; 2500-1396 ; 2072-9081
Subject Terms: генетическое сходство, allele, blood group, line, family, genetic similarity, аллель, группа крови, линия, семейство
File Description: application/pdf
Relation: https://www.agronauka-sv.ru/jour/article/view/369/338; Недава В. Е., Подоба Б. Е., Буркат В. П., Власов В. Н. Повышение эффективности селекции крупного рогатого скота. Киев: изд-во «Урожай», 1985. С. 144-166.; Долматова И. Ю., Зиновьева Н. А., Горелов П. В., Ильясов А. Д., Гладырь Е. А., Траспов А. А., Сельцов В. И. Особенности аллелофонда башкирской популяции симментальского скота по микросателлитам. Сельскохозяйственная биология. 2011;(6):70-74. Режим доступа: http://www.agrobiology.ru/6-2011dolmatov.pdf; Анисимова Е. И., Джунельбаев Е. Т. Влияние линейной принадлежности ремонтных телок на их рост и развитие. Зональные особенности научного обеспечения сельскохозяйственного производства: материалы II регион. научн.-практ. конф. Саратов, 2010. С. 446-448.; Дмитриев Н. Г., Бойков Ю. В., Басовский Н. З., Логинов Ж. Г., Прохоренко П. Н. Разведение скота по линиям необходимо совершенствовать. Животноводство. 1985;(8):42-45.; Анисимова Е. И., Катмаков П. С. Взаимосвязь между селекционными признаками у симментальских коров разных внутрипородных типов. Вестник Ульяновской государственной сельскохозяйственной академии. 2018;42(2):104-109. Режим доступа: http://vestnik.ulsau.ru/upload/iblock/b52/vestnik-2018-2(42).pdf; Бугаев С. П., Волобуев В. В. Иммуногенетические маркеры молочной продуктивности в селекции крупного рогатого скота молочных и комбинированных пород. Вестник Курской государственной сельскохозяйственной академии. 2016;(9):135-140. Режим доступа: http://www.journal-kgsha.ru/data/documents/2016-09.pdf; Попов Н. А., Марзанова Л. К. Аллелофонд крупного рогатого скота голштинской породы в племенных стадах Российской Федерации. Зоотехния. 2017;(6):9-14. Режим доступа: https://elibrary.ru/item.asp?id=29422039; Попов Н .А., Марзанова Л. К., Некрасов А. А., Федотова Е. Г. Аллелофонд голштинской породы и его использование для совершенствования молочности крупного рогатого скота Российской Федерации. Молочное и мясное скотоводство. 2018;(4):14-20. Режим доступа: https://elibrary.ru/item.asp?id=35325824; Всяких А. С. Генетика и продуктивность молочного скотоводства. Новое в жизни, науке и технике. Серия: «Сельское хозяйство». М., Знание. 1982. С. 32-45.; Шуайбов Т. М., Сердюк Г. Н., Бахарчиев Ш. З. Оценка генетической структуры популяций по иммуногенетическим маркерам при выведении породных групп зебувидного молочного скота. Сельскохозяйственная биология. 2008;(2):35-39. Режим доступа: http://www.agrobiology.ru/articles/shuaibov_2_2008.html; Воронцова А. А., Шукюрова Е. Б. Использование иммуногенетических маркеров при племенном подборе в молочном скотоводстве. Растениеводство. Животноводство. Труды ДВНИИСХ. Т. 2. Хабаровск, 2001. С. 164-169.; Боев М. М., Колышкина Н. С. Совершенствование методов селекции симментальского скота при разведении по линиям и семействам. Курск, 2001. С. 159-172.; Шукюрова Е. Б. Иммунобиохимические гены маркеры воспроизводительной способности голштинского крупного рогатого скота, разводимого в Хабаровском крае. Инновационные технологии в сельском хозяйстве: материалы III Междунар. научн. конф. г. Казань, май 2017 г. Казань, Бук. 2017. С. 9-21.; Вельматов А. П., Гурьянов А. М., Харитонов Д. Н., Вельматов А. А. Использование голштинских производителей голландской и датской селекции при совершенствовании красно-пестрого скота. Аграрная наука Евро-Северо-Востока. 2009;12(1):85-88.
-
5Academic Journal
Authors: N. I. Rabazanov, A. K. Kadiev
Source: Юг России: экология, развитие, Vol 4, Iss 1, Pp 127-132 (2015)
Subject Terms: группы крови, антигены, индекс сходства, частота встречаемости, генетическое сходство, Ecology, QH540-549.5
File Description: electronic resource
-
6Academic Journal
Subject Terms: 2. Zero hunger, herd genetic passport, генетическое сходство, ЕАВ-локус, региональные популяции, regional populations, голштинская порода, семейный анализ (отец—мать—потомок), family analysis (father – mother – offspring), аллелофонд, immunogenetics, cattle, EAB locus, крупный рогатый скот, alleles, аллели, Holstein breed, allele pool, genetic similarity, генетический паспорт стада, иммуногенетика
-
7Academic Journal
Authors: Focşa, V.F., Foksha, V., Focsha, V., Фокша, В.Ф., Constandoglo, A.G., Konstandoglo, A.G., Констандогло, А.Г., Констандогло, О.Г.
Source: Розведення і генетика тварин (51) 213-224
Subject Terms: телочка, бык-производитель, антиген, Аллель, генетическое сходство, heifer, bull, antigene, allele, genetical resemblance, теличка, бугай-плідник, генетична схожість
File Description: application/pdf
Relation: https://ibn.idsi.md/vizualizare_articol/149745; urn:issn:23120223
Availability: https://ibn.idsi.md/vizualizare_articol/149745
-
8Academic Journal
Authors: ЖМУР А.Й., БОДНАРУК В.Є.
File Description: text/html
-
9Academic Journal
Authors: ИЛЬНИЦКАЯ Е.Т., ТОКМАКОВ С.В., СУПРУН И.И., НАУМОВА Л.Г., ГАНИЧ В.А.
File Description: text/html
-
10Academic Journal
Source: Сельскохозяйственная биология.
Subject Terms: АБОРИГЕННЫЙ ГЕНОФОНД,SSR-МАРКЕРЫ,АМПЕЛОГРАФИЧЕСКИЕ ПРИЗНАКИ ЛИСТА,VITIS VINIFERA L,ДОНСКИЕ СОРТА ВИНОГРАДА,ГЕНЕТИЧЕСКОЕ СХОДСТВО,NATIVE GENE POOL,SSR-MARKERS,AMPELOGRAPHIC LEAF TRAITS,DON GRAPE VARIETIES,THE GENETIC SIMILARITY, 15. Life on land
File Description: text/html
-
11Academic Journal
Source: Науковий вісник Львівського національного університету ветеринарної медицини та біотехнологій імені С.З. Ґжицького.
File Description: text/html
-
12
-
13Academic Journal
Authors: Долганов, Владимир, Кравченко, Александра
Subject Terms: КОЛЮШКИ, ФИЛОГЕНЕТИЧЕСКИЕ ОТНОШЕНИЯ, ФЕНОГРАММА, ГЕНЕТИЧЕСКОЕ СХОДСТВО, СЕВЕРО-ЗАПАДНАЯ ЧАСТЬ ТИХОГО ОКЕАНА
File Description: text/html
-
14Academic Journal
Authors: Рабазанов, Н., Кадиев, А.
File Description: text/html
-
15Academic Journal
Authors: Малаева, Елена, Рыжова, Наталья, Молканова, Ольга, Кочиева, Елена
Subject Terms: АКТИНИДИЯ, ДНК, ГЕНЕТИЧЕСКОЕ СХОДСТВО, ПОЛИМОРФИЗМ
File Description: text/html
-
16Academic Journal
Contributors: Томский государственный университет Институт биологии, экологии, почвоведения, сельского и лесного хозяйства (Биологический институт) Кафедра экологического менеджмента, Томский государственный университет НИИ биологии и биофизики Научные подразделения НИИ ББ
Source: Вестник Томского государственного университета. Биология. 2011. № 4. С. 55-65
Subject Terms: внешние транскрибируемые спейсеры (ETS), генетическое сходство, мятлики, систематика, филогенетические исследования
File Description: application/pdf
-
17Academic Journal
Source: Известия ТИНРО (Тихоокеанского научно-исследовательского рыбохозяйственного центра).
Subject Terms: КОЛЮШКИ, ФИЛОГЕНЕТИЧЕСКИЕ ОТНОШЕНИЯ, ФЕНОГРАММА, ГЕНЕТИЧЕСКОЕ СХОДСТВО, СЕВЕРО-ЗАПАДНАЯ ЧАСТЬ ТИХОГО ОКЕАНА, 14. Life underwater
File Description: text/html
-
18Academic Journal
Source: Юг России: экология, развитие.
File Description: text/html
-
19Academic Journal
Source: Ecological genetics.
Subject Terms: АКТИНИДИЯ, ДНК, ГЕНЕТИЧЕСКОЕ СХОДСТВО, ПОЛИМОРФИЗМ
File Description: text/html
-
20Report
Subject Terms: дикий кабан, формы оs lakrimale, различия зверей разных подвидов, интродукция, череп кабана, достоверные различия, аллотипов λM5 и G1, аллель Bdfi, генетическое сходство, генетическая информация
File Description: application/pdf
Relation: Структура и функциональная роль животного населения в природных и трансформированных экосистемах : тезисы доклада I-й Международной научной конференции;С. 124 -125; http://elar.tsatu.edu.ua/handle/123456789/4104
Availability: http://elar.tsatu.edu.ua/handle/123456789/4104
