Showing 1 - 20 results of 44 for search '"ГЕНЕТИЧЕСКИЕ ДЕТЕРМИНАНТЫ"', query time: 0.66s Refine Results
  1. 1
    Academic Journal

    Source: Meditsinskiy sovet = Medical Council; № 4 (2025); 21-25 ; Медицинский Совет; № 4 (2025); 21-25 ; 2658-5790 ; 2079-701X

    File Description: application/pdf

    Relation: https://www.med-sovet.pro/jour/article/view/9020/7837; Yang Q, Ciebiera M, Bariani MV, Ali M, Elkafas H, Boyer TG et al. Comprehensive Review of Uterine Fibroids: Developmental Origin, Pathogenesis, and Treatment. Endocr Rev. 2022;43(4):678–719. https://doi.org/10.1210/endrev/bnab039.; Koltsova AS, Efimova OA, Pendina AA. A View on Uterine Leiomyoma Genesis through the Prism of Genetic, Epigenetic and Cellular Heterogeneity. Int J Mol Sci. 2023;24(6):5752. https://doi.org/10.3390/ijms24065752.; Alsudairi HN, Alrasheed AT, Dvornyk V. Estrogens and uterine fibroids: an integrated view. Res Result Biomed. 2021;7(2):156–163. https://doi.org/10.18413/2658-6533-2021-7-2-0-6.; Stewart EA, Nowak RA. Uterine Fibroids: Hiding in Plain Sight. Physiology (Bethesda). 2022;37(1):16–27. https://doi.org/10.1152/physiol.00013.2021.; Ящук АГ, Мусин ИИ, Гумерова ИА. Современные аспекты в изучении этиологии миомы матки. Российский вестник акушера-гинеколога. 2019;19(3):49–56. https://doi.org/10.17116/rosakush20191903149.; Аганезова НВ, Аганезов СС, Шило ММ. Миома матки: современные практические аспекты заболевания. Проблемы репродукции. 2022;28(4):97–105. https://doi.org/10.17116/repro20222804197.; Lou Z, Huang Y, Li S, Luo Z, Li C, Chu K et al. Global, regional, and national time trends in incidence, prevalence, years lived with disability for uterine fibroids, 1990-2019: an age-period-cohort analysis for the global burden of disease 2019 study. BMC Public Health. 2023;23(1):916. https://doi.org/10.1186/s12889-023-15765-x.; Пономаренко ИВ, Чурносов МИ. Современные представления об этиопатогенезе и факторах риска лейомиомы матки. Акушерство и гинекология. 2018;(8):27–32. https://doi.org/10.18565/aig.2018.8.27-32.; Välimäki N, Kuisma H, Pasanen A, Heikinheimo O, Sjöberg J, Bützow R et al. Genetic predisposition to uterine leiomyoma is determined by loci for genitourinary development and genome stability. Elife. 2018;18(7):e37110. https://doi.org/10.7554/eLife.37110.; Cha PC, Takahashi A, Hosono N, Low SK, Kamatani N, Kubo M et al. A genomewide association study identifies three loci associated with susceptibility to uterine fibroids. Nat Genet. 2011;43(5):447–450. https://doi.org/10.1038/ng.805.; Hellwege JN, Jeff JM, Wise LA, Gallagher CS, Wellons M, Hartmann KE et al. A multi-stage genome-wide association study of uterine fibroids in African Americans. Hum Genet. 2017;136(10):1363–1373. https://doi.org/10.1007/s00439-017-1836-1.; Rafnar T, Gunnarsson B, Stefansson OA, Sulem P, Ingason A, Frigge ML et al. Variants associating with uterine leiomyoma highlight genetic background shared by various cancers and hormone-related traits. Nat Commun. 2018;9(1):3636. https://doi.org/10.1038/s41467-018-05428-6.; Edwards TL, Giri A, Hellwege JN, Hartmann KE, Stewart EA, Jeff JM et al. A Trans-Ethnic Genome-Wide Association Study of Uterine Fibroids. Front Genet. 2019;12(10):511. https://doi.org/10.3389/fgene.2019.00511.; Masuda T, Low SK, Akiyama M, Hirata M, Ueda Y, Matsuda K et al. GWAS of five gynecologic diseases and cross-trait analysis in Japanese. Eur J Hum Genet. 2020;28(1):95–107. https://doi.org/10.1038/s41431-019-0495-1.; Gallagher CS, Mäkinen N, Harris HR, Rahmioglu N, Uimari O, Cook JP et al. Genome-wide association and epidemiological analyses reveal common genetic origins between uterine leiomyomata and endometriosis. Nat Commun. 2019;10(1):4857. https://doi.org/10.1038/s41467-019-12536-4.; Sakaue S, Kanai M, Tanigawa Y, Karjalainen J, Kurki M, Koshiba S et al. A cross- - population atlas of genetic associations for 220 human phenotypes. Nat Genet. 2021;53(10):1415–1424. https://doi.org/10.1038/s41588-021-00931-x.; Wise LA, Ruiz-Narvaez EA, Palmer JR, Cozier YC, Tandon A, Patterson N et al. African ancestry and genetic risk for uterine leiomyomata. Am J Epidemiol. 2012;176(12):1159–1168. https://doi.org/10.1093/aje/kws276.; Edwards TL, Michels KA, Hartmann KE, Velez Edwards DR. BET1L and TNRC6B associate with uterine fibroid risk among European Americans. Hum Genet. 2013;132(8):943–953. https://doi.org/10.1007/s00439-013-1306-3.; Bondagji NS, Morad FA, Al-Nefaei AA, Khan IA, Elango R, Abdullah LS et al. Replication of GWAS loci revealed the moderate effect of TNRC6B locus on susceptibility of Saudi women to develop uterine leiomyomas. J Obstet Gynaecol Res. 2017;43(2):330–338. https://doi.org/10.1111/jog.13217.; Liu B, Wang T, Jiang J, Li M, Ma W, Wu H et al. Association of BET1L and TNRC6B with uterine leiomyoma risk and its relevant clinical features in Han Chinese population. Sci Rep. 2018;8(1):7401. https://doi.org/10.1038/s41598-018-25792-z.; Lee SC, Chou YH, Tantoh DM, Hsu SY, Nfor ON, Tyan YS et al. Risk of uterine leiomyoma based on BET1L rs2280543 single nucleotide polymorphism and vegetarian diet. BMC Womens Health. 2022;22(1):139. https://doi.org/10.1186/s12905-022-01721-1.; Edwards TL, Hartmann KE, Velez Edwards DR. Variants in BET1L and TNRC6B associate with increasing fibroid volume and fibroid type among European Americans. Hum Genet. 2013;132(12):1361–1369. https://doi.org/10.1007/s00439-013-1340-1.; Tyan YS, Shen CY, Tantoh DM, Hsu SY, Chou YH, Nfor ON et al. Association between ESR1 rs2234693 single nucleotide polymorphism and uterine fibroids in Taiwanese premenopausal and postmenopausal women. J Health Popul Nutr. 2023;42(1):16. https://doi.org/10.1186/s41043-023-00357-7.; Ponomarenko I, Reshetnikov E, Polonikov A, Verzilina I, Sorokina I, Yermachenko A et al. Candidate Genes for Age at Menarche Are Associated With Uterine Leiomyoma. Front Genet. 2021;11:512940. https://doi.org/10.3389/fgene.2020.512940.; Пономаренко ИВ, Полоников АВ, Чурносов МИ. Полиморфные локусы гена LHCGR, ассоциированные с развитием миомы матки. Акушерство и гинекология. 2018;(10):86–91. https://doi.org/10.18565/aig.2018.10.86-91; Демакова НА. Молекулярно-генетические характеристики пациенток с гиперплазией и полипами эндометрия. Научные результаты биомедицинских исследований. 2018;4(2):26–39. https://doi.org/10.18413/2313-8955-2018-4-2-0-4.; Ponomarenko MS, Reshetnikov EA, Churnosova MM, Reshetnikova YN, Churnosov VI, Ponomarenko IV. Comorbidity and syntropy of benign proliferative diseases of the female reproductive system: non-genetic, genetic, and epigenetic factors (review). Res Result Biomed. 2023;9(4):544–556. https://doi.org/10.18413/2658-6533-2023-9-4-0-9.; Радзинский ВЕ, Алтухова ОБ. Молекулярно-генетические детерминанты бесплодия при генитальном эндометриозе. Научные результаты биомедицинских исследований. 2018;4(3):28–37. https://doi.org/10.18413/2313-8955-2018-4-3-0-3.

  2. 2
    Academic Journal

    Source: Scientific studies and modern education; 9-12 ; Научные исследования и современное образование; 9-12

    File Description: text/html

    Relation: info:eu-repo/semantics/altIdentifier/isbn/978-5-6049492-4-5; https://interactive-plus.ru/e-articles/855/Action855-559440.pdf; Александров А.А. Психогенетика: учеб. пособ. / А.А. Александров. – СПб.: Питер, 2008. – 192 с.; Вайдо А.И. Физиолого-генетический анализ возбудимости нервной системы и поведения лабораторной крысы: дис. … д-ра биол. наук: 03.00.13. – Институт физиологии им.И.П.Павлова. – 2000. – 198 с.; Конарева И.Н. Исследование черт личности в психогенетике. Факты и гипотезы / И.Н. Конарева //Ученые записки Федерального университета имени В.И. Вернадского. Биология. Химия. – 2017. [Электронный ресурс]. – Режим доступа: file:///C:/Users/щ/Downloads/issledovanie-chert-lichnosti-v-psihogenetike-fakty-i-gipotezy.pdf (дата обращения: 25.01.2023).; Циркин В.И. Нейрофизиология: основы психофизиологии: учеб. для вузов / В.И. Циркин, С.И. Трухин. – М.: Юрайт, 2020. – 577 с.; Никифорова О.Д. Межродовая интрогрессивная гибридизация в семействе Boraginaceae: роды Trigonotis Stev и Myosotis L / О.Д. Никифорова // Сибирский ботанический журнал. – 2000.; Савватеева-Попова Е.В. От нейрогенетики к эпигенетике / Е.В. Савватеева-Попова, Е.А. Никитина, А.В. Медведева // Институт физиологии им.И.П. Павлова Российской академии наук. – 2015. – №5. – 613 с.; Юров И.Ю. Геномные и хромосомные болезни центральной нервной системы / И.Ю. Юров, С.Г. Ворсанова, Ю.Б. Юров. – М.: Медпрактика-М, 2014.

  3. 3
    Academic Journal

    Source: Russian Journal of Infection and Immunity; Vol 13, No 6 (2023); 1109-1116 ; Инфекция и иммунитет; Vol 13, No 6 (2023); 1109-1116 ; 2313-7398 ; 2220-7619

    File Description: application/pdf

  4. 4
  5. 5
  6. 6
    Academic Journal

    Contributors: The study was supported by the Russian Foundation for Basic Research, project 18-29-08015, and State Budgeted Project 0245-2021-0008 for the Institute of Chemical Biology and Fundamental Medicine, Novosibirsk. The strains tested were taken from the Collection of Extremophilic Microorganisms and Type Cultures, ICBFM.

    Source: Vavilov Journal of Genetics and Breeding; Том 25, № 2 (2021); 234-245 ; Вавиловский журнал генетики и селекции; Том 25, № 2 (2021); 234-245 ; 2500-3259 ; 10.18699/VJ21.016

    File Description: application/pdf

    Relation: https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/2887/1501; Иванов Д.В., Егоров А.М. Распространение и механизмы резистентности микроорганизмов, продуцирующих бета­лактамазы. Молекулярные механизмы устойчивости к бета­лактамным антибиотикам штаммов клебсиелл, выделенных при внутрибольничных инфекциях. Биомед. химия. 2008;54(1):104­113. DOI 10.1134/S1990750808030141.; Козлова Н.С., Баранцевич Н.Е., Баранцевич Е.П. Чувствительность к антибиотикам штаммов Klebsiella pneumoniae, выделенных в многопрофильном стационаре. Инфекция и иммунитет. 2018; 8(1):79­84. DOI 10.15789/2220­7619­2018­1­79­84.; Козлова Ю.Н., Фоменко Н.В., Морозова В.В., Саранина И.В., Тикунов А.Ю., Ганичев Д.А., Самохин А.Г., Павлов В.В., Рожнова О.М., Бондарь И.А., Зенкова Е.В., Нимаев В.В., Климонтов В.В., Тикунова Н.В. Идентификация стафилококков, включая метицилинрезистентные штаммы, биохимическими и генетическими методами. Вавиловский журнал генетики и селекции. 2017;21(8):952­958. DOI 10.18699/VJ17.318.; Машковский М.Д. Лекарственные средства. М.: Новая Волна, 2005.; Сухорукова М.В., Эйдельштейн М.В., Иванчик Н.В., Склеенова Е.Ю., Шайдуллина Э.Р., Азизов И.С., Шек Е.А., Кузьменков А.Ю., Дехнич А.В., Козлов Р.С., Семенова Н.В., … Звонарева О.В., Корнилова П.А., Крянга В.Г., Портнягина У.С., Шамаева С.Х., Попов Д.А., Вострикова Т.Ю. Антибиотикорезистентность нозокомиальных штаммов Enterobacterales в стационарах России: результаты многоцентрового эпидемиологического исследования «МАРАФОН 2015–2016». Клин. микробиология и антимикробная химиотерапия. 2019;21(2): 147­159. DOI 10.36488/cmac.2019.2.147­159.; Тапальский Д.В., Осипов В.А., Жаворонок С.В. Карбапенемазы грамотрицательных бактерий: распространение и методы детекции. Мед. журн. 2012;2(40):10­15.; Чеботарь И.В., Бочарова Ю.А., Подопригора И.В., Шагин Д.А. Почему Klebsiella pneumoniae становится лидирующим оппортунистическим патогеном. Клин. микробиология и антимикробная химиотерапия. 2020;22(1):4­19. DOI 10.36488/cmac.2020.1.4­19.; Эйдельштейн М.В. Выявление β­лактамаз расширенного спектра у грамотрицательных бактерий с помощью фенотипических методов. Клин. микробиология и антимикробная химиотерапия. 2001;3(2):183­189.; Brisse S., Passet V., Haugaard A.B., Babosan A., Kassis­Chikhani N., Struve C., Decré D. wzi gene sequencing, a rapid method for determination of capsulartype for Klebsiella strains. J. Clin. Microbiol. 2013;51:4073­4078. DOI 10.1128/JCM.01924­13.; Broberg C.A., Palacios M., Miller V.L. Klebsiella: a long way to go towards understanding this enigmatic jet­setter. F1000Prime Rep. 2014;6:64. DOI 10.12703/P6­64.; Bush K., Jacoby G.A. Updated functional classification of beta­lactamases. Antimicrob. Agents Chemother. 2010;54(3):969­976. DOI 10.1128/AAC.01009­09.; Galal L., Abdel Aziz N.A., Hassan W.M. Defining the relationship between phenotypic and genotypic resistance profiles of multidrugresistant enterobacterial clinical isolates. Adv. Exp. Med. Biol. 2019; 1214:9­21. DOI 10.1007/5584_2018_208.; Gharrah M.M., El­Mahdy A.M., Barwa R.F. Association between virulence factors and extended spectrum beta­lactamase producing Kleb siella pneumoniae compared to nonproducing isolates. Interdiscip. Perspect. Infect. Dis. 2017:7279830. DOI 10.1155/2017/7279830.; Hoa P.L., Chowa K.H., Yuena K.Y., Ngb W.S., Chaua P.Y. Comparison of a novel, inhibitor­potentiated disc­diffusion test with other methods for the detection of extended­spectrum beta­lactamases in Escherichia coli and Klebsiella pneumoniae. J. Antimicrob. Chemother. 1998;42:49­54.; Hooper D.C., Jacoby G.A. Mechanisms of drug resistance: quinolone resistance. Ann. N.Y. Acad. Sci. 2015;1354(1):12­31. DOI 10.1111/nyas.12830.; Lee H.C., Chuang Y.C., Yu W.L., Lee N.Y., Chang C.M., Ko N.Y., Wang L.R., Ko W.C. Clinical implications of hypermucoviscosity phenotype in Klebsiella pneumoniae isolates: association with invasive syndrome in patients with community­acquired bacteraemia. J. Intern. Med. 2006;259(6):606­614. DOI 10.1111/j.1365­2796.2006.01641.x.; Lee K., Chong Y., Shin H.B., Kim Y.A., Yong D., Yum J.H. Modified Hodge and EDTA­disk synergy tests to screen metallo­lactamaseproducing strains of Pseudomonas and Acinetobacter species. Clin. Microbiol. Infect. 2001;7:88­91.; Liakopoulos A., Mevius D., Ceccarelli D. A review of SHV extendedspectrum β­lactamases: neglected yet ubiquitous. Front. Microbiol. 2016;5(7):1374. DOI 10.3389/fmicb.2016.01374.; Morozova V.V., Babkin I.V., Kozlova Y.N., Baykov I.K., Bokovaya O.V., Tikunov A.Yu., Ushakova T.А., Bardasheva A.V., Ryabchikova E.I., Zelentsova E., Tikunova N.V. Isolation and characterization of a novel Klebsiella pneumoniae N4­like bacteriophage KP8. Viruses. 2019;11(12):1115. DOI 10.3390/v11121115.; Mukherjee S., Naha S., Bhadury P., Saha B., Dutta M., Dutta S., Basu S. Emergence of OXA­232­producing hypervirulent Klebsiella pneumoniae ST23 causing neonatal sepsis. J. Antimicrob. Chemother. 2020;75(7):2004­2006. DOI 10.1093/jac/dkaa080.; Podschun R., Ullmann U. Klebsiella spp. as nosocomial pathogens: epidemiology, taxonomy, typing methods, and pathogenicity factors. Clin. Microbiol. Rev. 1998;11(4):589­603.; Ramirez M.S., Tolmasky M.E. Aminoglycoside modifying enzymes. Drug. Resist. Updat. 2010;13(6):151­171.; Robicsek A., Jacoby G.A., Hooper D.C. The worldwide emergence of plasmid­mediated quinolone resistance. Lancet Infect. Dis. 2006;6: 629­640.; Walsh T.R., Toleman M.A., Poirel L., Nordmann P. Metallo­beta­lactamases: the quiet before the storm? Clin. Microbiol. Rev. 2005;18(2): 306­325.; Yang H.Y., Nam Y.S., Lee H.J. Prevalence of plasmid­mediated quinolone resistance genes among ciprofloxacin­nonsusceptible Escherichia coli and Klebsiella pneumoniae isolated from blood cultures in Korea. Can. J. Infect. Dis. Med. Microbiol. 2014;25(3): 163­169.; Yong D., Lee K., Yum J.H., Shin H.B., Rossolini G.M., Chong Y. Imipenem­EDTA disk method for differentiation of metallo­betalactamase­producing clinical isolates of Pseudomonas spp. and Acinetobacter spp. J. Clin. Microbiol. 2002;40(10):3798­3801.; https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/2887

  7. 7
  8. 8
    Academic Journal

    Source: Buletinul Academiei de Ştiinţe a Moldovei. Ştiinţe Medicale 65 (1) 122-128

    File Description: application/pdf

    Relation: info:eu-repo/grantAgreement/EC/FP7/17156/EU/Studiul comparativ al impactului unor abordări diverse în tratamentul hipertensiunii arteriale rezistente la pacienții cu sau fără diabet zaharat/20.80009.8007.04; https://ibn.idsi.md/vizualizare_articol/114998; urn:issn:18570011

  9. 9
  10. 10
    Academic Journal

    Source: Acta Biomedica Scientifica; Том 3, № 5 (2018); 60-65 ; 2587-9596 ; 2541-9420

    File Description: application/pdf

    Relation: https://www.actabiomedica.ru/jour/article/view/708/669; Бухарова Е.В., Долгих В.В., Попкова С.М., Ракова Е.Б., Шабанова Н.М., Немченко У.М., Иванова Е.И., Сердюк Л.В. Патогенный потенциал Klebsiella spp. и Staphylococcus aureus при ассоциативном симбиозе у детей первого года жизни // Успехи современного естествознания. – 2014. – № 12-2. – С. 20–24.; Бухарова Е.В., Попкова С.М., Ракова Е.Б., Джиоев Ю.П., Иванова Е.И., Шабанова Н.М., Немченко У.М. Детекция некоторых генетических маркеров факторов патогенности в аутоштаммах Klebsiella spp. у детей первого года жизни // Acta biomedica scientifica. – 2014. – № 2. – С. 58–62.; Волгина С.Я., Асанов А.Ю. Галактоземия у детей // Практическая медицина. – 2014. – № 9 (85). – С. 32–41.; Леонов В.В., Курлович Н.А., Леонова Л.В., Фатеева Н.М. О возможности влияния микроорганизмов на гомеостаз железа в организме хозяина (обзор литературы) // Acta biomedica scientifica. – 2014. – № 1. – С. 120–124.; Поздеев О.К. Молекулярно-генетические основы патогенности энтеробактерий // Практическая медицина. – 2010. – № 2 . – С. 84–88.; Рабочий протокол диагностики и лечения функциональных заболеваний органов пищеварения у детей // ГастроNews. – 2010. – С. 3–15.; Савилов Е.Д., Мамонтова Л.М., Анганова Е.В., Астафьев В.А. Условно-патогенные микроорганизмы в водных экосистемах Восточной Сибири и их роль в оценке качества вод // Acta biomedica scientifica. – 2008. – № 1. – С. 47–51.; Цветаева Н.В., Левина А.А., Мамукова Ю.И. Основы регуляции обмена железа // Клиническая онкогематология. – 2010. – Т. 3, № 3. – С. 278–283.; Ikeda M, Mizoguchi M, Oshida Y, Tatsuno K, Saito R, Okazaki M, Okugawa S, Moriya K. (2018). Clinical and microbiological characteristics and occurrence of Klebsiella pneumoniae infection in Japan. Int J Gen Med, 11, 293-299. DOI:10.2147/IJGM.S166940; Ivanova EI, Popkova SM, Dzhioev YuP, Rakova EB, Nemchenko UM, Rychkova LV. (2014). The detection of strains of Escherichia coli producing shiga toxin in populations of normal intestinal microbiota in children with functional disorders of gastrointestinal tract. Klinichescheskaya laboratornaya diagnostika, (11), 56-60.; Ivanova EI, Rychkova LV, Nemchenko UM, Bukharova EB, Savelkaeva MV, Dzhioev YuР. (2017). The structure of the intestinal microbiota of the intestine and the frequency of detection of pathogenicity genes (stx1, stx2, bfp) in Escherichia coli with normal enzymatic activity isolated from children during the first year of life. Mol Gen Microbiol Virol, 35 (1), 36-40. DOI:10.3103/S0891416817110062; Kuş H, Arslan U, Türk Dağı H, Fındık D. (2017). Investigation of various virulence factors of Klebsiella pneumoniae strains isolated from nosocomial infections. Mikrobiyol Bul. 51 (4), 329-339. DOI:10.5578/mb.59716; Lam MMC, Wick RR, Wyres KL, Gorrie CL, Judd LM, Jenney AWJ, Brisse S, Holt KE. (2018). Genetic diversity, mobilization and spread of the yersinia bactin-encoding mobile element ICEKp in Klebsiella pneumoniae populations. Microb Genom, 4, 1-14. DOI:10.1099/mgen.0.000196; Lin JC, Koh TH, Lee N, Fung CP, Chang FY, Tsai YK, Ip M, Siu LK. (2014). Genotypes and virulence in serotype K2 Klebsiella pneumoniae from liver abscess and non-infectious carriers in Hong Kong, Singapore and Taiwan. Gut Pathog, 6, 21.; Martin RM, Cao J, Wu W, Zhao L, Manthei DM, Pirani A, Snitkin E, Malani PN, Rao K, Bachman MA. (2018). Identification of Pathogenicity-Associated Loci in Klebsiella pneumoniae from Hospitalized Patients. mSystems, 3, e00015-18. DOI:10.1128/mSystems.00015-18; Osman KM, Hassan HM, Orabi A, Abdelhafez AST. (2014). Phenotypic, antimicrobial susceptibility profile and virulence factors of Klebsiella pneumoniae isolated from buffalo and cow mastitic milk. Pathog Glob Health, 108, 191-199. DOI:10.1179/2047773214Y.0000000141; Zhang S, Yang G, Ye Q, Wu Q, Zhang J, Huang Y. (2018). Phenotypic and genotypic characterization of Klebsiella pneumoniae isolated from retail foods in China. Front Microbiol, 9, 289. DOI:10.3389/fmicb.2018.00289; https://www.actabiomedica.ru/jour/article/view/708

  11. 11
  12. 12
  13. 13
  14. 14
  15. 15
    Academic Journal

    Source: Journal Infectology; Том 5, № 4 (2013); 55-60 ; Журнал инфектологии; Том 5, № 4 (2013); 55-60 ; 2072-6732 ; 10.22625/2072-6732-2013-5-4

    File Description: application/pdf

    Relation: https://journal.niidi.ru/jofin/article/view/201/195; King, C.К. Managing acute gastroenteritis among children: oral rehydration, maintenance, and nutritional therapy /C.K. King [et al.] // MMWR Recomm Rep. – 2003. – V. 52, № 16. – P. 1–16.; WHO’s annual World Health Statistics report 2012.; О санитарно-эпидемиологической обстановке в Российской Федерации в 2010 году: государственный доклад. – М.: Федеральный центр гигиены и эпидемиологии Роспотребнадзора, 2011. – C. 431.; Иванов, К.С. Медицинская помощь инфекционным больным в Афганистане (1979–1989) / К.С. Иванов, Ю.В. Лобзин, В.М. Волжанин // Журнал инфектологии. – 2009. – Т. 1, № 1. – С. 18–22.; Яковлев, А.А. Инфекционная заболеваемость мигрантов и туристов в Санкт Петербурге / А.А. Яковлев [и др.] // Журнал инфектологии – 2011. – Т. 3, № 4. – С. 49–55.; Яковлев, А.А. Возможности высокотехнологичной идентификации возбудителей острых кишечных инфекций в Санкт-Петербурге / А.А. Яковлев [и др.] // Вестник Санкт- Петербургской медицинской академии последипломного образования. – 2010. – Т. 2, № 3. – С. 5–8.; Impact of migration on infectious diseases in Europe. http://www.easac.eu/fileadmin/PDF_s/reports_statements/Migration.pdf; https://journal.niidi.ru/jofin/article/view/201

  16. 16
  17. 17
  18. 18
  19. 19
  20. 20