-
1Academic Journal
Source: Клиническая онкогематология, Vol 17, Iss 2 (2024)
-
2Academic Journal
Source: Scientific and practical specialized journal "Rheumatology of Kazakhstan". :26-30
Subject Terms: reactive arthritis, spontaneous immunoglobulin-synthesizing activity, B-lymphocytes, спонтанная иммуноглобулинсинтезирующая активность, В-лимфоциты, реактивный артрит, 3. Good health
-
3
-
4
-
5
-
6
-
7Academic Journal
Authors: S. S. Benevolenskaya, I. V. Kudriavtsev, M. K. Serebriakova, I. N. Grigor’yeva, E. S. Kuvardin, A. I. Budkova, S. V. Koniakhin, D. B. Zammoeva, D. B. Motorin, A. Yu. Zaritskey, I. Z. Gaydukova, E. K. Gaydukova, S. V. Lapin, A. L. Maslyanskiy, С. С. Беневоленская, И. В. Кудрявцев, М. К. Серебрякова, И. Н. Григорьева, Е. С. Кувардин, А. И. Будкова, С. В. Коняхин, Д. Б. Заммоева, Д. Б. Моторин, А. Ю. Зарицкий, И. З. Гайдукова, Е. К. Гайдукова, С. В. Лапин, А. Л. Маслянский
Contributors: Исследование выполнено при финансовой поддержке Министерства науки и высшего образования Российской Федерации (соглашение № 075-15-2022-301 от 20.04.2022)
Source: Rheumatology Science and Practice; Vol 62, No 5 (2024); 501-512 ; Научно-практическая ревматология; Vol 62, No 5 (2024); 501-512 ; 1995-4492 ; 1995-4484
Subject Terms: проточная цитометрия, B cells, systemic lupus erythematosus, primary Sjogren’s syndrome, flow cytometry, В-лимфоциты, системная красная волчанка, болезнь Шегрена
File Description: application/pdf
Relation: https://rsp.mediar-press.net/rsp/article/view/3636/2404; Насонов ЕЛ (ред.). Ревматология. Российские клинические рекомендации. М.:ГЭОТАР-Медиа;2017.; Pasoto SG, Adriano de Oliveira Martins V, Bonfa E. Sjögren’s syndrome and systemic lupus erythematosus: Links and risks. Open Access Rheumatol. 2019;11:33-45. doi:10.2147/OARRR.S167783; Ambrus JL, Suresh L, Peck A. Multiple roles for B-lymphocytes in Sjogren’s syndrome. J Clin Med. 2016;5(10):87. doi:10.3390/jcm5100087; Groom J, Kalled SL, Cutler AH, Olson C, Woodcock SA, Schneider P, et al. Association of BAFF/BLyS overexpression and altered B cell differentiation with Sjögren’s syndrome. J Clin Invest. 2002;109(1):59-68. doi:10.1172/JCI14121; Nocturne G, Seror R, Fogel O, Belkhir R, Boudaoud S, Saraux A, et al. CXCL13 and CCL11 serum levels and lymphoma and disease activity in primary Sjögren’s syndrome. Arthritis Rheumatol. 2015;67(12):3226-3233. doi:10.1002/art.39315; Carvajal Alegria G, Gazeau P, Hillion S, Daïen CI, Cornec DYK. Could lymphocyte profiling be useful to diagnose systemic autoimmune diseases? Clin Rev Allergy Immunol. 2017;53(2):219-236. doi:10.1007/s12016-017-8608-5; Aringer M, Costenbader K, Daikh D, Brinks R, Mosca M, Ramsey-Goldman R, Smolen JS, et al. 2019 European League Against Rheumatism/American College of Rheumatology classification criteria for systemic lupus erythematosus. Arthritis Rheumatol. 2019;71(9):1400-1412. doi:10.1002/art.40930; Shiboski CH, Shiboski SC, Seror R, Criswell LA, Labetoulle M, Lietman TM, et al.; International Sjögren’s Syndrome Criteria Working Group. 2016 American College of Rheumatology/European League Against Rheumatism classification criteria for primary Sjögren’s syndrome: A consensus and data-driven methodology involving three international patient cohorts. Arthritis Rheumatol. 2017;69(1):35-45. doi:10.1002/art.39859; Petri M, Kim MY, Kalunian KC, Grossman J, Hahn BH, Sammaritano LR, et al.; OC-SELENA Trial. Combined oral contraceptives in women with systemic lupus erythematosus. N Engl J Med. 2005;353(24):2550-2558. doi:10.1056/NEJMoa051135; Seror R, Bowman SJ, Brito-Zeron P, Theander E, Bootsma H, Tzioufas A, et al. EULAR Sjögren’s syndrome disease activity index (ESSDAI): A user guide. RMD Open. 2015;1(1):e000022. doi:10.1136/rmdopen-2014-000022; Seror R, Ravaud P, Mariette X, Bootsma H, Theander E, Hansen A, et al.; EULAR Sjögren’s Task Force. EULAR Sjogren’s syndrome patient reported index (ESSPRI): Development of a consensus patient index for primary Sjogren’s syndrome. Ann Rheum Dis. 2011;70(6):968-972. doi:10.1136/ard.2010.143743; Зурочка АВ, Хайдуков СВ, Кудрявцев ИВ, Чернышев ВА. Проточная цитометрия в биомедицинских исследованиях. Екатеринбург:УрО РАН;2018.; Будкова АИ, Лапин СВ, Серебрякова МК, Кудрявцев ИВ, Тришина ИН, Маслянский АЛ, и др. Субпопуляционный состав В-клеток периферической крови у больных системной красной волчанкой. Медицинская иммунология. 2017;19(2):175-184.; Меснянкина АА, Соловьев СК, Александрова ЕН, Алексанкин АП, Супоницкая ЕВ, Елонаков АВ, и др. Динамика субпопуляции В-лимфоцитов у больных системной красной волчанкой на фоне терапии генно-инженерными биологическими препаратами. Научно-практическая ревматология. 2017;55(3):252-260.; Cornec D, Saraux A, Pers JO, Jousse-Joulin S, Marhadour T, Roguedas-Contios AM, et al. Diagnostic accuracy of blood B-cell subset profiling and autoimmunity markers in Sjögren’s syndrome. Arthritis Res Ther. 2014;16(1):R15. doi:10.1186/ar4442; Barcelos F, Martins C, Papoila A, Geraldes C, Cardigos J, Nunes G, et al. Association between memory B-cells and clinical and immunological features of primary Sjögren’s syndrome and Sicca patients. Rheumatol Int. 2018;38(6):1063-1073. doi:10.1007/s00296-018-4018-0; Ishioka-Takei E, Yoshimoto K, Suzuki K, Nishikawa A, Yasuoka H, Yamaoka K, et al. Increased proportion of a CD38highIgD+ B cell subset in peripheral blood is associated with clinical and immunological features in patients with primary Sjögren’s syndrome. Clin Immunol. 2018;187:85-91. doi:10.1016/j.clim.2017.10.008; Roberts ME, Kaminski D, Jenks SA, Maguire C, Ching K, Burbelo PD, et al. Primary Sjögren’s syndrome is characterized by distinct phenotypic and transcriptional profiles of IgD+ unswitched memory B cells. Arthritis Rheumatol. 2014;66(9):2558-2569. doi:10.1002/art.38734; Odendahl M, Jacobi A, Hansen A, Feist E, Hiepe F, Burmester GR, et al. Disturbed peripheral B lymphocyte homeostasis in systemic lupus erythematosus. J Immunol. 2000;165(10):5970-5979. doi:10.4049/jimmunol.165.10.5970; Hansen A, Odendahl M, Reiter K, Jacobi AM, Feist E, Scholze J, et al. Diminished peripheral blood memory B cells and accumulation of memory B cells in the salivary glands of patients with Sjögren’s syndrome. Arthritis Rheum. 2002;46(8):2160-2171. doi:10.1002/art.10445; Aqrawi LA, Brokstad KA, Jakobsen K, Jonsson R, Skarstein K. Low number of memory B cells in the salivary glands of patients with primary Sjögren’s syndrome. Autoimmunity. 2012;45(7):547-555. doi:10.3109/08916934.2012.712170; Mingueneau M, Boudaoud S, Haskett S, Reynolds TL, Nocturne G, Norton E, et al. Cytometry by time-of-flight immunophenotyping identifies a blood Sjögren’s signature correlating with disease activity and glandular inflammation. J Allergy Clin Immunol. 2016;137(6):1809-1821.e12. doi:10.1016/j.jaci.2016.01.024; Wardowska A, Komorniczak M, Skoniecka A, Bułło-Piontecka B, Lisowska KA, Dębska-Ślizień MA, et al. Alterations in peripheral blood B cells in systemic lupus erythematosus patients with renal insufficiency. Int Immunopharmacol. 2020;83:106451. doi:10.1016/j.intimp.2020.106451; Супоницкая ЕВ, Алексанкин АП, Меснянкина АА, Александрова ЕН, Панафидина ТА, Соловьев СК. Характеристика субпопуляций В-лимфоцитов периферической крови у больных активной системной красной волчанкой. Клиническая лабораторная диагностика. 2017;62(7):418-422.; Enocsson H, Karlsson J, Li HY, Wu Y, Kushner I, Wetterö J, et al. The complex role of C-reactive protein in systemic lupus erythematosus. J Clin Med. 2021;10(24):5837. doi:10.3390/jcm10245837
-
8Academic Journal
Authors: A. N. Uvarova, A. S. Ustiugova, E. A. Zheremyan, E. M. Stasevich, K. V. Korneev, D. V. Kuprash, А. Н. Уварова, А. С. Устюгова, Э. А. Жеремян, Е. М. Стасевич, К. В. Корнеев, Д. В. Купраш
Contributors: Работа выполнена при финансовой поддержке Российского научного фонда: грант № 22-14- 00398 (изучение промотора IL-10), грант № 21- 74-00106 (изучение промотора TGF-β).
Source: Medical Immunology (Russia); Том 26, № 4 (2024); 701-706 ; Медицинская иммунология; Том 26, № 4 (2024); 701-706 ; 2313-741X ; 1563-0625
Subject Terms: SNP, immunosupression, B cells, IL-10, TGF-β, иммуносупрессия, В-лимфоциты
File Description: application/pdf
Relation: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/3038/1965; Brum da Silva Nunes V., Kehl Dias C., Nathali Scholl J., Nedel Sant’Ana A., de Fraga Dias A., Granero Farias M., Alegretti A.P., Sosnoski M., Esteves Daudt L., Bohns Michalowski M., Oliveira Battastini A.M. Lymphocytes from B-acute lymphoblastic leukemia patients present differential regulation of the adenosinergic axis depending on risk stratification. Discov. Oncol., 2022, Vol. 13, no. 1, 143. doi:10.1007/s12672-022-00602-1.; Celedon J.C., Lange C., Raby B.A., Litonjua A.A., Palmer L.J., DeMeo D.L., Reilly J.J., Kwiatkowski D.J., Chapman H.A., Laird N., Sylvia J.S. The transforming growth factor-β1 (TGFB1) gene is associated with chronic obstructive pulmonary disease (COPD). Hum. Mol. Genet., 2004, Vol. 13, no. 15, pp. 1649-1656.; Chekol Abebe E., Asmamaw Dejenie T., Mengie Ayele T., Dagnew Baye N., Agegnehu Teshome A., Tilahun Muche Z. The role of regulatory B cells in health and diseases: a systemic review. J. Inflamm. Res., 2021, Vol. 14, pp. 75-84.; Di Stefano A., Sangiorgi C., Gnemmi I., Casolari P., Brun P., Ricciardolo F.L., Contoli M., Papi A., Maniscalco P., Ruggeri P. Girbino G. TGF-β signaling pathways in different compartments of the lower airways of patients with stable COPD. Chest, 2018, Vol. 153, no. 4, pp. 851-862.; Frangogiannis, N.G., Transforming growth factor-β in tissue fibrosis. J. Exp. Med., 2020, Vol. 217, no. 3, e20190103. doi:10.1084/jem.20190103.; Grossberg A.J., Lei X., Xu T., Shaitelman S.F., Hoffman K.E., Bloom E.S., Stauder M.C., Tereffe W., Schlembach P.J., Woodward W.A., Buchholz T.A. Association of transforming growth factor β polymorphism C-509T with radiation-induced fibrosis among patients with early-stage breast cancer: a secondary analysis of a randomized clinical trial. JAMA Oncol., 2018, Vol. 4, no. 12, pp. 1751-1757.; Hartmann T.N., Leick M., Ewers S., Diefenbacher A., Schraufstatter I., Honczarenko M., Burger M. Human B cells express the orphan chemokine receptor CRAM-A/B in a maturation-stage-dependent and CCL5-modulated manner. Immunology, 2008, Vol. 125 no. 2, pp. 252-262.; Hou S., Zhao Y., Chen J., Lin Y., Qi X. Tumor-associated macrophages in colorectal cancer metastasis: molecular insights and translational perspectives. J. Transl. Med., 2024, Vol. 22, no. 1, 62. doi: org/ 10.1186/s12967-024-04856-x.; Li M., Jiang P., Wei S., Wang J., Li, C., The role of macrophages-mediated communications among cell compositions of tumor microenvironment in cancer progression. Front. Immunol., 2023, Vol. 14, 1113312. doi:10.3389/fimmu.2023.1113312.; Patel B., Mohammad R.M., Blaustein J., Al-Katib A. Induced expression of a monocytoid B lymphocyte antigen phenotype on the REH cell line. Am. J. Hematol., 1990, Vol. 33, no. 3, pp. 153-159.; Stanilova S., Stanilov N., Julianov A., Manolova I., Miteva L. Transforming growth factor-β1 gene promoter509C/T polymorphism in association with expression affects colorectal cancer development and depends on gender. PloS One, 2018, Vol. 13, no. 8, e0201775. doi:10.1371/journal.pone.0201775.; Uvarova A.N., Stasevich E.M., Ustiugova A.S., Mitkin N.A., Zheremyan E.A., Sheetikov S.A., Zornikova K.V., Bogolyubova A.V., Rubtsov M.A., Kulakovskiy I.V., Kuprash, D.V. rs71327024 Associated with COVID-19 hospitalization reduces CXCR6 promoter activity in Human CD4+ T cells via disruption of c-myb binding. Int. J. Mol. Sci., 2023, Vol. 24, no. 18, 13790. doi:10.3390/ijms241813790.; Zheremyan E.A., Ustiugova A.S., Karamushka N.M., Uvarova A.N., Stasevich E.M., Bogolyubova A.V., Kuprash D.V., Korneev K.V. Breg-mediated immunoregulation in the skin. Int. J. Mol. Sci., 2024, Vol. 25, no. 1, 583. doi:10.3390/ijms25010583.; Zheremyan E.A., Ustiugova A.S., Uvarova A.N., Karamushka N.M., Stasevich E.M., Gogoleva V.S., Bogolyubova A.V., Mitkin N.A., Kuprash D.V., Korneev, K.V. Differentially activated B cells develop regulatory phenotype and show varying immunosuppressive features: a comparative study. Front. Immunol., 2023, Vol. 14, 1178445. doi:10.3389/fimmu.2023.1178445.; Zheremyan E.A., Ustiugova A.S., Radko A.I., Stasevich E.M., Uvarova A.N., Mitkin N.A., Kuprash D.V., Korneev K.V. Novel potential mechanisms of regulatory B cell-mediated immunosuppression. Biochemistry (Moscow), 2023, Vol. 88, no. 1, pp. 13-21.; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/3038
-
9Academic Journal
Authors: G. Ch. Javadova, Г. Ч. Джавадова
Source: National Journal glaucoma; Том 23, № 2 (2024); 64-69 ; Национальный журнал Глаукома; Том 23, № 2 (2024); 64-69 ; 2311-6862 ; 2078-4104
Subject Terms: IgE, glaucoma, leukocytes, neutrophils, total hemolytic complement activity, T-lymphocytes, B-lymphocytes, глаукома, лейкоциты, нейтрофилы общая гемолитическая способность комплемента, Т-лимфоциты, В-лимфоциты
File Description: application/pdf
Relation: https://www.glaucomajournal.ru/jour/article/view/525/468; Kalogeropoulos D, Barry R, Kalogeropoulos C. La asociación entre microbioma intestinal y uveítis autoimmune. Arch Soc Esp Oftalmol 2022; 97(5):264-275. https://doi.org/10.1016/j.oftal.2021.01.019; Paladino R., Miller S., Kleiber K., Byers D. Resveratrol reverses the effect of TNF-α on inflammatory markers in a model of autoimmune uveitis. European Journal of Integrative Medicine. 2020; 36:101137. https://doi.org/10.1016/j.eujim.2020.101137; Еричев В.П., Петров С.Ю., Суббот А.М., Волжанин А.В. и др. Роль цитокинов в патогенезе глазных болезней. Национальный журнал глаукома 2017; 16(1):85-99.; Zhou M., Qu R., Yin X. Qiu V. еt al. Prednisone acetate modulates Th1/Th2 and Th17/Treg cell homeostasis in experimental autoimmune uveitis via orchestrating the Notch signaling pathway. International Immunopharmacology 2023; 116:109809 https://doi.org/10.1016/j.intimp.2023.109809; Ильинская Е.В., Ядыкина Е.В. Патогенез развития макулярного отека при воспалительных заболеваниях глаз (обзор литературы). Вестник Совета молодых ученых и специалистов Челябинской области 2015; 4(11):24-27.; Tomkins-Netzer O., Lightman S., Drye L. Kempen J. et al. Outcome of treatment of uveitic macular edema. The multicenter uveitis steroid treatment trial: 2-year results. Ophthalmology 2015; 122: 2351-2359. https://doi.org/10.1016/j.ophtha.2015.07.036; Еричев В.П. Простагландины в офтальмологии. Вестник офтальмологии 2022; 138(1):107114. https://doi.org/10.17116/oftalma2022138011107; Martinez L., Shiga Y., Villafranca-Baughman D., Cueva Vargas Jorge L. еt al. Neurovascular dysfunction in glaucoma. Progress in Retinal and Eye Research 2023; 97:101217. https://doi.org/10.1016/j.preteyeres.2023.101217; Аксенова С.В., Пятаев Н.А., Малькина М.В., Лакштанкина Н.В. и др. Сравнительная оценка двух методов моделирования аутоиммунного увеита. Вестник Мордовского Университета 2017; 27(3):428-438.; Fini M.E., Schwartz S.G. Gao X. Jeong Sh. et al. Steroid-induced ocular hypertension/glaucoma: Focus on pharmacogenomics and implications for precision medicine. Progress in Retinal and Eye Research 2017; 56:58-83. https://doi.org/10.1016/j.preteyeres.2016.09.003; Yazici D., Ogulur I., Pat Y. The epithelial barrier: The gateway to allergic, autoimmune, and metabolic diseases and chronic neuropsychiatric conditions. Seminars in Immunology 2023; 70:101846 https://doi.org/10.1016/j.smim.2023.101846; Bielory L. Allergic and immunologic disorders of the eye. Part I: Immunology of the eye. Journal of Allergy and Clinical Immunology 2000; 106(5):805-816. https://doi.org/10.1067/mai.2000.111029; https://www.glaucomajournal.ru/jour/article/view/525
-
10Academic Journal
Authors: A.E. Abaturov, A.A. Nikulinà
Source: Zdorovʹe Rebenka, Vol 13, Iss 1, Pp 129-141 (2018)
CHILD`S HEALTH; Том 13, № 1 (2018); 129-141
Здоровье ребенка-Zdorovʹe rebenka; Том 13, № 1 (2018); 129-141
Здоров'я дитини-Zdorovʹe rebenka; Том 13, № 1 (2018); 129-141Subject Terms: пневмония, иммунный ответ, Staphylococcus aureus, Т-лимфоциты, В-лимфоциты, пневмонія, імунна відповідь, Т-лімфоцити, В-лімфоцити, pneumonia, immune response, T-lymphocytes, B-lymphocytes, Pediatrics, RJ1-570, 3. Good health
File Description: application/pdf
-
11Academic Journal
Authors: A.E. Abaturov, A.А. Nikulina
Source: Zdorovʹe Rebenka, Vol 16, Iss 1, Pp 60-74 (2021)
CHILD`S HEALTH; Vol. 16 No. 1 (2021); 60-74
Здоровье ребенка-Zdorovʹe rebenka; Том 16 № 1 (2021); 60-74
Здоров'я дитини-Zdorovʹe rebenka; Том 16 № 1 (2021); 60-74Subject Terms: 2. Zero hunger, ожирение, жировая ткань, метавоспаление, дендритные клетки, В-лимфоциты, обзор, obesity, adipose tissue, metainflammation, dendritic cells, B-lymphocytes, review, ожиріння, жирова тканина, метазапалення, дендритні клітини, В-лімфоцити, огляд, obesity, adipose tissue, metainflammation, dendritic cells, b-lymphocytes, review, Pediatrics, RJ1-570, 3. Good health
File Description: application/pdf
Access URL: http://childshealth.zaslavsky.com.ua/article/download/226459/227676
https://doaj.org/article/56ea3901872b4a2c8dfa16bdfabaddc8
http://childshealth.zaslavsky.com.ua/article/download/226459/227676
http://childshealth.zaslavsky.com.ua/article/view/226459
http://childshealth.zaslavsky.com.ua/article/view/226459 -
12Academic Journal
Authors: A.-P. S. Shurygina, K. A. Vasilyev, E. A. Varyushina, M. D. Ladygina, T. G. Zubkova, Zh. V. Buzitskaya, M. A. Stukova, D. A. Lioznov, А.-П. С. Шурыгина, К. А. Васильев, Е. А. Варюшина, М. Д. Ладыгина, Т. Г. Зубкова, Ж. В. Бузицкая, М. А. Стукова, Д. А. Лиознов
Contributors: Работа выполнена в рамках государственного задания Министерства здравоохранения Российской Федерации по теме «Оценка напряженности коллективного иммунитета и эпидемиологической эффективности гриппозных вакцин в Российской Федерации» 2019-2021 гг.
Source: Medical Immunology (Russia); Том 26, № 1 (2024); 191-202 ; Медицинская иммунология; Том 26, № 1 (2024); 191-202 ; 2313-741X ; 1563-0625
Subject Terms: В-клетки памяти, вирус гриппа, B-lymphocytes, flow cytometry, plasmablasts, memory B cells, influenza virus, В-лимфоциты, проточная цитометрия, плазмобласты
File Description: application/pdf
Relation: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/2609/1824; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2609/10299; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2609/10300; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2609/10301; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2609/10302; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2609/10303; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2609/10304; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2609/10305; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2609/10306; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2609/10307; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2609/10308; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2609/10397; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2609/10398; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2609/12931; Лиознов Д. А., Харит С. М., Ерофеева М. К., Зубкова Т.Г., Горчакова О.В., Николаенко С.Л. Оценка реактогенности и иммуногенности вакцины гриппозной четырехвалентной инактивированной субъединичной // Эпидемиология и Вакцинопрофилактика, 2018, Т. 17, №3, С. 57–62.; Никифорова А.Н., Исакова-Сивак И.Н., Ерофеева М.К., Фельдблюм И.В., Руденко Л.Г. Результаты изучения безопасности и иммуногенности отечественной субъединичной адъювантной вакцины Совигрипп у добровольцев 18 – 60 лет // Эпидемиология и вакцинопрофилактика, 2014, №2 (75), С. 72-78.; Селькова Е.П., Гренкова Т.А., Алешкин В.А., Гудова Н.В., Лыткина И.Н., Михайлова Е.В., Яшина А.Я., Федякина И.Т. Изучение иммуногенности, эффективности и переносимости отечественной вакцины «Ультрикс®» среди лиц повышенного риска инфицирования и заболеваемости гриппом и острыми респираторными вирусными инфекциями // Эпидемиология и инфекционные болезни. Актуальные вопросы, 2016. №4, С.59-66.; Cossarizza A., Chang H.-D., Radbruch A., Acs A., Adam D., Adam-Klages S., Agace W.W., AghaeepourN., Akdis M., Allez M., Almeida L.N., Alvisi G., Anderson G., Andrä I., Annunziato F., Anselmo A., Bacher P., Baldari C.T., Bari S., Barnaba V., Barros-Martins J., Battistini L., Bauer W., Baumgart S., Baumgarth N., Baumjohann D., Baying B., Bebawy M., Becher B., Beisker W., Benes V., Beyaert R., Blanco A., Boardman D.A., Bogdan C., Borger J.G., Borsellino G., Boulais P.E., Bradford J.A., Brenner D., Brinkman R.R., Brooks A.E.S., Busch D.H., Büscher M., Bushnell T.P., Calzetti F., Cameron G., Cammarata I., Cao X., Cardell S.L., Casola S., Cassatella M.A., Cavani A., Celada A., Chatenoud L., Chattopadhyay P.K., Chow S., Christakou E., Čičin-Šain L., Clerici M., Colombo F.S., Cook L., Cooke A., Cooper A.M., Corbett A.J., Cosma A., Cosmi L., Coulie P.G., Cumano A., Cvetkovic L., Dang V.D., Dang-Heine C., Davey M.S., Davies D., de Biasi S., del Zotto G., dela Cruz G.V., Delacher M., Bella S.D., Dellabona P., Deniz G., Dessing M., di Santo J.P., Diefenbach A., Dieli F., Dolf A., Dörner T., Dress R.J., Dudziak D., Dustin M., Dutertre C. A., Ebner F., Eckle S.B.G., Edinger M., Eede P., Ehrhardt G.R.A., Eich M., Engel P., Engelhardt B., Erdei A., Esser C., Everts B., Evrard M., Falk C.S., Fehniger T.A., Felipo-Benavent M., Ferry H., Feuerer M., Filby A., Filkor K., Fillatreau S., Follo M., Förster I., Foster J., Foulds G.A., Frehse B., Frenette P.S., Frischbutter S., Fritzsche W., Galbraith D.W., Gangaev A., Garbi N., Gaudilliere B., Gazzinelli R.T., Geginat J., Gerner W., Gherardin N.A., Ghoreschi K., Gibellini L., Ginhoux F., Goda K., Godfrey D.I., Goettlinger C., González-Navajas J.M., Goodyear C.S., Gori A., Grogan J.L., Grummitt D., Grützkau A., Haftmann C., Hahn J., Hammad H., Hämmerling G., Hansmann L., Hansson G., Harpur C.M., Hartmann S., Hauser A., Hauser A.E., Haviland D.L., Hedley D., Hernández D.C., Herrera G., Herrmann M., Hess C., Höfer T., Hoffmann P., Hogquist K., Holland T., Höllt T., Holmdahl R., Hombrink P., Houston J.P., Hoyer B.F., Huang B., Huang F.-P., Huber J.E., Huehn J., Hundemer M., Hunter C.A., Hwang W.Y.K., Iannone A., Ingelfinger F., Ivison S.M., Jäck H.-M., Jani P.K., Jávega B., Jonjic S., Kaiser T., Kalina T., Kamradt T., Kaufmann S.H.E., Keller B., Ketelaars S.L.C., Khalilnezhad A., Khan S., Kisielow J., Klenerman P., Knopf J., Koay H.-F., Kobow K., Kolls J.K., Kong W.T., Kopf M., Korn T., Kriegsmann K., Kristyanto H., Kroneis T., Krueger A., Kühne J., Kukat C., Kunkel D., Kunze-Schumacher H., Kurosaki T., Kurts C., Kvistborg P., Kwok I., Landry J., Lantz O., Lanuti P., LaRosa F., Lehuen A., LeibundGutLandmann S., Leipold M.D., Leung L.Y.T., Levings M.K., Lino A.C., Liotta F., Litwin V., Liu Y., Ljunggren H. G., Lohoff M., Lombardi G., Lopez L., López-Botet M., Lovett-Racke A.E., Lubberts E., Luche H., Ludewig B., Lugli E., Lunemann S., Maecker H.T., Maggi L., Maguire O., Mair F., Mair K.H., Mantovani A., Manz R.A., Marshall A.J., Martínez-Romero A., Martrus G., Marventano I., Maslinski W., Matarese G., Mattioli A.V., Maueröder C., Mazzoni A., McCluskey J., McGrath M., McGuire H.M., McInnes I.B., Mei H.E., Melchers F., Melzer S., Mielenz D., Miller S.D., Mills K.H.G., Minderman H., MjösbergJ., Moore J., Moran B., Moretta L., Mosmann T.R., Müller S., Multhoff G., Muñoz L.E., Münz C., Nakayama T., Nasi M., Neumann K., Ng L.G., Niedobitek A., Nourshargh S., Núñez G., O'Connor J. E., Ochel A., Oja A., Ordonez D., Orfao A., Orlowski-Oliver E., Ouyang W., Oxenius A., Palankar R., Panse I., Pattanapanyasat K., Paulsen M., Pavlinic D., Penter L., Peterson P., Peth C., Petriz J., Piancone F., Pickl W.F., Piconese S., Pinti M., Pockley A.G., Podolska M.J., Poon Z., Pracht K., Prinz I., Pucillo C.E.M., Quataert S.A., Quatrini L., Quinn K.M., Radbruch H., Radstake T.R.D.J., Rahmig S., Rahn H. P., Rajwa B., Ravichandran G., Raz Y., Rebhahn J.A., Recktenwald D., Reimer D., Sousa C.R., Remmerswaal E.B.M., Richter L., Rico L.G., Riddell A., Rieger A.M., Robinson J.P., Romagnani C., Rubartelli A., Ruland J., Saalmüller A., Saeys Y., Saito T., Sakaguchi S., Sala-de-Oyanguren F., Samstag Y., Sanderson S., Sandrock I., Santoni A., Sanz R.B., Saresella M., Sautes-Fridman C., Sawitzki B., Schadt L., Scheffold A., Scherer H.U., Schiemann M., Schildberg F.A., Schimisky E., Schlitzer A., Schlosser J., Schmid S., Schmitt S., Schober K., Schraivogel D., Schuh W., Schüler T., Schulte R., Schulz A.R., Schulz S.R., Scottá C., Scott-Algara D., Sester D.P., Shankey T.V., Silva-Santos B., Simon A.K., Sitnik K.M., Sozzani S., Speiser D.E., Spidlen J., Stahlberg A., Stall A.M., Stanley N., Stark R., Stehle C., Steinmetz T., Stockinger H., Takahama Y., Takeda K., Tan L., Tárnok A., Tiegs G., Toldi G., Tornack J., Traggiai E., Trebak M., Tree T.I.M., Trotter J., Trowsdale J., Tsoumakidou M., Ulrich H., Urbanczyk S., van de Veen W., van den Broek M., van der Pol E., van Gassen S., van Isterdael G., van Lier R.A.W., Veldhoen M., Vento-Asturias S., Vieira P., Voehringer D., Volk H.-D., von Borstel A., von Volkmann K., Waisman A., Walker R.V., Wallace P.K., Wang S.A., Wang X.M., Ward M.D., Ward-Hartstonge K.A., Warnatz K., Warnes G., Warth S., Waskow C., Watson J.V., Watzl C., Wegener L., Weisenburger T., Wiedemann A., Wienands J., Wilharm A., Wilkinson R.J., Willimsky G., Wing J.B., Winkelmann R., Winkler T.H., Wirz O.F., Wong A., Wurst P., Yang J.H.M., Yang J., Yazdanbakhsh M., Yu L., Yue A., Zhang H., Zhao Y., Ziegler S.M., Zielinski C., Zimmermann J., Zychlinsky A. Guidelines for the use of flow cytometry and cell sorting in immunological studies (second edition). Eur. J. Immunol., 2019, Vol. 49, no. 10, pp. 1457-1973.; Halliley J.L., Kyu S., Kobie J.J., Walsh E.E., Falsey A.R., Randall T.R., Treanor J., Feng C., Sanz I., Lee F.E.-H. Peak frequencies of circulating human influenza specific antibody secreting cells correlate with serum antibody response after immunization. Vaccine, 2010, Vol. 28, no. 20, pp. 3582-3587.; Peteranderl C., Herold S., Schmoldt C. Human influenza virus infections. Semin. Respir. Crit. Care Med., 2016, Vol. 37, no. 4, pp. 487-500.; Piedra-Quintero Z.L., Wilson Z., Nava P., Guerau-de-Arellano M. CD38: An immunomodulatory molecule in inflammation and autoimmunity. Front. Immunol., 2020, Vol. 11, 597959. doi:10.3389/fimmu.2020.597959.; Ruschil C., Gabernet G., Lepennetier G. Heumos S., Kaminski M., Hracsko Z., Irmler M., JBeckers J., Ziemann U., Nahnsen S., Owens G.P., Bennett J.L., Hemmer B., Kowarik M.C. Specific induction of double negative B cells during protective and pathogenic immune responses. Front. Immunol., 2020, Vol. 11, 606338. doi:10.3389/fimmu.2020.606338.; Sanyal M., Holmes T.H., Maecker H.T., Randy A., Albrecht R.A., Dekker C.L., He X.-S., Greenberg H.B. Diminished B-cell response after repeat influenza vaccination. J. Infect. Dis., 2019, Vol. 219, no. 10, pp. 1586-1595.; Sanza I., Weia C., Leeb F.E.-H., Anolik J. Phenotypic and functional heterogeneity of human memory B cells. Semin. Immunol., 2008, Vol. 20, no. 1, pp. 67-82.; Sasaki S., Jaimes M.C., Holmes T.H., Dekker C.L., Mahmood K., Kemble G.W., Arvin A.M., Greenberg H.B. Comparison of the influenza virus-specific effector and memory B-cell responses to immunization of children and adults with live attenuated or inactivated influenza virus vaccines. J. Virol., 2007, Vol. 81, no. 1 pp. 215-228.; Sasaki S., Sullivan M., Narvaez C.F., Holmes T.H., Furman D., Zheng N.-Y., Nishtala M., Wrammert J., Smith K., James J.A., Dekker C.L., Davis M.M., Wilson P.C., Greenberg H.B., He X.-S. Limited efficacy of inactivated influenza vaccine in elderly individuals is associated with decreased production of vaccine-specific antibodies. J. Clin. Invest., 2011, Vol. 121, no. 8, pp. 3109-3119.; Taylor J.J., Jenkins M.K., Pape K. A. Heterogeneity in the differentiation and function of memory B cells. Trends Immunol., 2012, Vol. 33, no. 12, pp. 590-597.; Turner J.S., Zhou J.Q., Han J., Schmitz A.J., Rizk A.A., Alsoussi W.B., Lei T., Amor M., McIntire K.M., Meade P., Strohmeier S., Brent R.I., Richey S.T., Haile A., Yang Y.R., Klebert M.K., Suessen T., Teefey S., Presti R.M., Krammer F., Kleinstein S.H., Ward A.B., Ellebedy A.H. Human germinal centers engage memory and naïve B cells after influenza vaccination. Nature, 2020, Vol. 586, no. 7827, pp. 127-132.; Wu Y.C.B., Kipling D., Dunn-Walters D.K. The relationship between CD27 negative and positive B cell populations in human peripheral blood. Front. Immunol., 2011, Vol. 2, 81. doi:10.3389/fimmu.2011.00081.; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/2609
-
13Academic Journal
Authors: Dobrynina M.A., Zurochka A.V., Komelkova M.V., Zurochka V.A., Praskurnichiy E.A., Ryabova L.V., Sarapultsev A.P.
Contributors: 1
Source: Russian Journal of Infection and Immunity; Vol 13, No 5 (2023); 864-872 ; Инфекция и иммунитет; Vol 13, No 5 (2023); 864-872 ; 2313-7398 ; 2220-7619
Subject Terms: SARS-CoV-2 infection, post-COVID patients, immune system, natural killer cells (NK cells), T cells, T lymphocytes, TNK lymphocytes, B lymphocytes, CD46, SARS-CoV-2 инфекция, постковидные пациенты, иммунная система, натуральные киллеры (NK-клетки), Т-клетки, Т-лимфоциты, ТNK-лимфоциты, В-лимфоциты
File Description: application/pdf
Relation: https://iimmun.ru/iimm/article/view/9641/1788; https://iimmun.ru/iimm/article/view/9641/1835; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/9641/73494; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/9641/73495; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/9641/73496; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/9641/73497; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/9641/73498; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/9641/73499; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/9641/73500; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/9641/73501; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/9641/73502; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/9641/73503; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/9641/73504; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/9641/132184; https://iimmun.ru/iimm/article/view/9641
-
14Academic Journal
Authors: L. A. Tashireva, A. Yu. Kalinchuk, T. S. Gerashchenko, O. E. Savelyeva, V. M. Perelmuter, Л. А. Таширева, А. Ю. Калинчук, Т. С. Геращенко, О. Е. Савельева, В. М. Перельмутер
Contributors: The study was supported by the Russian Science Foundation (project No. 20-75-10033)., Работа выполнена при финансовой поддержке РНФ (проект № 20-75-10033).
Source: Bulletin of Siberian Medicine; Том 22, № 1 (2023); 88-95 ; Бюллетень сибирской медицины; Том 22, № 1 (2023); 88-95 ; 1819-3684 ; 1682-0363 ; 10.20538/1682-0363-2023-22-1
Subject Terms: PD-L1, tumor microenvironment, B lymphocytes, микроокружение, В-лимфоциты
File Description: application/pdf
Relation: https://bulletin.ssmu.ru/jour/article/view/5138/3353; Haslam A., Prasad V. Estimation of the percentage of US patients with cancer who are eligible for and respond to checkpoint inhibitor immunotherapy drugs. JAMA Netw. Open. 2019;2(5):e192535. DOI:10.1001/jamanetworkopen.2019.2535.; Adashek J.J., Subbiah I.M., Matos I., Garralda E., Menta A.K., Ganeshan D.M. et al. Hyperprogression and Immunotherapy: fact, fiction, or alternative fact? Trends Cancer. 2020;6(3):181– 191. DOI:10.1016/j.trecan.2020.01.005.; Tray N., Weber J.S., Adams S. Predictive biomarkers for checkpoint ummunotherapy: current status and challenges for clinical application. Cancer Immunol. Res. 2018;6(10):1122– 1128. DOI:10.1158/2326-6066.CIR-18-0214.; Dong H.P., Elstrand M.B., Holth A., Silins I., Berner A., Trope C.G. et al. NKand B-cell infiltration correlates with worse outcome in metastatic ovarian carcinoma. Am. J. Clin. Pathol. 2006;125(3):451–458.; Tan T.T., Coussens LM. Humoral immunity, inflammation and cancer. Curr. Opin. Immunol. 2007;19(2):209–216. DOI:10.1016/j.coi.2007.01.001.; Olkhanud P.B., Damdinsuren B., Bodogai M., Gress R.E., Sen R., Wejksza K. et al. Tumor-evoked regulatory B cells promote breast cancer metastasis by converting resting CD4⁺ T cells to T-regulatory cells. Cancer Res. 2011;71(10):3505– 3515. DOI:10.1158/0008-5472.CAN-10-4316.; Barbera-Guillem E., Nelson M.B., Barr B., Nyhus J.K., May K.F Jr., Feng L. et al. B lymphocyte pathology in human colorectal cancer. Experimental and clinical therapeutic effects of partial B cell depletion. Cancer Immunol. Immunother. 2000;48(10):541–549. DOI:10.1007/pl00006672.; Qin Y., Peng F., Ai L., Mu S., Li Y., Yang C. et al. Tumorinfiltrating B cells as a favorable prognostic biomarker in breast cancer: a systematic review and meta-analysis. Cancer Cell Int. 2021;21(1):310. DOI:10.1186/s12935-021-02004-9.; Nielsen J.S., Sahota R.A., Milne K., Kost S.E., Nesslinger N.J., Watson P.H. et al. CD20+ tumor-infiltrating lymphocytes have an atypical CD27memory phenotype and together with CD8+ T cells promote favorable prognosis in ovarian cancer. Clin. Cancer Res. 2012;18(12):3281–3292. DOI:10.1158/1078-0432.CCR-12-0234.; Germain C., Gnjatic S., Tamzalit F., Knockaert S., Remark R., Goc J. et al. Presence of B cells in tertiary lymphoid structures is associated with a protective immunity in patients with lung cancer. Am. J. Respir. Crit. Care Med. 2014;189(7):832–844. DOI:10.1164/rccm.201309-1611OC.; Nishimura H., Minato N., Nakano T., Honjo T. Immunological studies on PD-1 deficient mice: implication of PD-1 as a negative regulator for B cell responses. Int. Immunol. 1998;10(10):1563–1572. DOI:10.1093/intimm/10.10.1563.; Dieci M.V., Radosevic-Robin N., Fineberg S., van den Eynden G., Ternes N., Penault-Llorca F. et al. International Immuno-Oncology Biomarker Working Group on Breast Cancer. Update on tumor-infiltrating lymphocytes (TILs) in breast cancer, including recommendations to assess TILs in residual disease after neoadjuvant therapy and in carcinoma in situ: A report of the International Immuno-Oncology Biomarker Working Group on Breast Cancer. Semin. Cancer Biol. 2018;52(Pt2):16–25. DOI:10.1016/j.semcancer.2017.10.003.; Aran D. Cell-type enrichment analysis of bulk transcriptomes using xCell. Methods Mol. Biol. 2020;2120:263–276. DOI:10.1007/978-1-0716-0327-7_19.; https://bulletin.ssmu.ru/jour/article/view/5138
-
15Academic Journal
Authors: Болтаева , К.Ш., Резяпова , Д.Р., Умарова, Х.М.
Source: Pedagogy and psychology in the modern world: theoretical and practical research; Vol. 4 No. 17 (2025): Pedagogy and psychology in the modern world: theoretical and practical research; 82-83 ; Педагогика и психология в современном мире: теоретические и практические исследования; Том 4 № 17 (2025): Педагогика и психология в современном мире: теоретические и практические исследования; 82-83 ; 2181-2020
Subject Terms: адаптивный иммунитет, Т-лимфоциты, В-лимфоциты, антитела, антиген, иммунологическая память, вакцинация
File Description: application/pdf
Availability: https://in-academy.uz/index.php/zdpp/article/view/62034
-
16
-
17Academic Journal
Authors: Morozov Sg, Kulchikov Ae, R. S. Musin, Grinenko Ea
Source: Nauchno-prakticheskii zhurnal «Patogenez». :56-65
Subject Terms: 2. Zero hunger, phases of the cell cycle, пролиферативная активность, stroke, 3. Good health, фазы клеточного цикла, 03 medical and health sciences, 0302 clinical medicine, B-lymphocytes, proliferative activity, Т-лимфоциты, В-лимфоциты, острое нарушение мозгового кровообращения, T-lymphocytes
-
18
-
19Academic Journal
Authors: Н.А.Орипова
Subject Terms: Ключевые слова: Эпителиальные клетки, внутриэпителиальные лимфоциты (ВЭЛ), Т- и В-лимфоциты, плазматические клетки, пейеровы бляшки
Relation: https://zenodo.org/records/6227283; oai:zenodo.org:6227283; https://doi.org/10.5281/zenodo.6227283
-
20Academic Journal
Authors: R. F. Zibirov, S. A. Mozerov, V. V. Polkin, F. E. Sevrukov, V. S. Medvedev, A. P. Raykova, M. E. Riss, Р. Ф. Зибиров, С. А. Мозеров, В. В. Полькин, Ф. Е. Севрюков, В. С. Медведев, А. П. Райкова, М. Е. Рисс
Source: Head and Neck Tumors (HNT); Том 11, № 4 (2021); 73-80 ; Опухоли головы и шеи; Том 11, № 4 (2021); 73-80 ; 2411-4634 ; 2222-1468 ; 10.17650/2222-1468-2017-0-4
Subject Terms: CD20+-В-лимфоциты, neoadjuvant chemoradiotherapy, CD8+T-lymphocytes, CD57+NK-cells, CD20+B-lymphocytes, неоадъювантная химиолучевая терапия, CD8+-T-лимфоциты, CD57+NK-клетки
File Description: application/pdf
Relation: https://ogsh.abvpress.ru/jour/article/view/719/505; Torre L.A., Bray F., Siegel R.L. et al. Global cancer statistics, 2012. CA Cancer J Clin 2015;65(2):87–108. DOI:10.3322/caac.21262.; Злокачественные новообразования в России в 2017 году (заболеваемость и смертность). Под ред. А.Д. Каприна, В.В. Старинского, Г.В. Петровой. М.: МНИОИ им. П.А. Герцена филиал ФГБУ «НМИЦ радиологии» Минздрава России, 2018.; Bello I.O., Soini Y., Salo T. Prognostic evaluation of oral tongue cancer: means, markers and perspectives (I). Oral Oncol 2010;46(9):630–5. DOI:10.1016/j.oraloncology.2010.06.006.; Koontongkaew S. The tumor microenvironment contribution to development, growth, invasion and metastasis of head and neck squamous cell carcinomas. J Cancer 2013;4(1):66–83.; Balermpas P., Michel Y., Wagenblast J. et al. Tumour-infiltrating lymphocytes predict response to definitive chemoradiotherapy in head and neck cancer. Br J Cancer 2014;110(2):501–9. DOI:10.1038/bjc.2013.640.; Motohashi S., Nakayama T. Clinical applications of natural killer T cell-based immunotherapy for cancer. Cancer Sci 2008;99(4):638–45. DOI:10.1111/j.1349-7006.2008.00730.x.; Schmidt M., Hellwig B., Hammad S. et al. A comprehensive analysis of human gene expression profiles identifies stromal immunoglobulin κ C as a compatible prognostic marker in human solid tumors. Clin Cancer Res 2012;18(9):2695–703. DOI:10.1158/1078-0432.CCR-11-2210.; Miyauchi S., Kim S.S., Pang J. et al. Immune modulation of head and neck squamous cell carcinoma and the tumor microenvironment by conventional therapeutics. Clin Cancer Res 2019;25(14):421123. DOI:10.1158/1078-0432.CCR-18-0871.; Vincent J., Mignot G., Chalmin F. et al. 5-Fluorouracil selectively kills tumorassociated myeloid-derived suppressor cells resulting in enhanced T cell-dependent antitumor immunity. Cancer Res 2010;70(8):3052–61. DOI:10.1158/0008-5472.CAN-09-3690.; Mondini M., Nizard M., Tran T. et al. Synergy of radiotherapy and a cancer vaccine for the treatment of HPV-Associated head and neck cancer. Mol Cancer Ther 2015;14(6):1336–45. DOI:10.1158/1535-7163.MCT-14-1015.; Yoon M.S., Pham C.T., Phan M.T. et al. Irradiation of breast cancer cells enhances CXCL16 ligand expression and induces the migration of natural killer cells expressing the CXCR6 receptor. Cytotherapy 2016;18(12):1532–42. DOI:10.1016/j.jcyt.2016.08.006.; Wirsdörfer F., Cappuccini F., Niazman M. et al. Thorax irradiation triggers a local and systemic accumulation of immunosuppressive CD4+ FoxP3+ regulatory T cells. Radiat Oncol 2014;9:98. DOI:10.1186/1748-717X-9-98.; Kelly R.J., Zaidi A.H., Smith M.A. et al. The Dynamic and transient immune micro-environment in locally advanced esophageal adenocarcinoma post chemoradiation. Ann Surg 2018;268(6):992–9. DOI:10.1097/SLA.0000000000002410.; Lim Y.J., Koh J., Kim S. et al. Chemoradiation-induced alteration of programmed death-ligand 1 and CD8+tumor-infiltrating lymphocytes identified patients with poor prognosis in rectal cancer: a matched comparison analysis. Int J Radiat Oncol Biol Phys 2017;99(5):1216–24. DOI:10.1016/j.ijrobp.2017.07.004.; Ogura A., Akiyoshi T., Yamamoto N. et al. Pattern of programmed cell death-ligand 1 expression and CD8-positive T-cell infiltration before and after chemoradiotherapy in rectal cancer. Eur J Cancer 2018;91:11–20. DOI:10.1016/j.ejca.2017.12.005.; Park S., Joung J.G., Min Y.W. et al. Paired whole exome and transcriptome analyses for the Immunogenomic changes during concurrent chemoradiotherapy in esophageal squamous cell carcinoma. J Immunother Cancer 2019;7(1):128. DOI:10.1186/s40425-019-0609-x.; Zhou S., Yang H., Zhang J. et al. Changes in indoleamine 2,3-dioxygenase 1 expression and CD8+ tumor-Infiltrating lymphocytes after neoadjuvant chemoradiation therapy and prognostic significance in esophageal squamous cell carcinoma. Int J Radiat Oncol Biol Phys 2020;108(1):286–94. DOI:10.1016/j.ijrobp.2020.01.020.; Yoneda K., Kuwata T., Mori M. et al. Alteration in tumor immune microenvironment after chemoradiotherapy for locally advanced non-small cell lung cancer. J Clin Oncol 2019;37(15):8530. DOI:10.1200/JCO.2019.37.15.; Berntsson J., Nodin B., Eberhard J. et al. Prognostic impact of tumour-infiltrating B cells and plasma cells in colorectal cancer. Int J Cancer 2016;139(5):1129–39. DOI:10.1002/ijc.30138.; Fu S.L., Pierre J., Smith-Norowitz T.A. et al. Immunoglobulin E antibodies from pancreatic cancer patients mediate antibody-dependent cell-mediated cytotoxicity against pancreatic cancer cells. Clin Exp Immunol 2008;153(3):401–9. DOI:10.1111/j.1365-2249.2008.03726.x.; Agarwal R., Chaudhary M., Bohra S. et al. Evaluation of natural killer cell (CD57) as a prognostic marker in oral squamous cell carcinoma: An immunohistochemistry study. J Oral Maxillofac Pathol 2016;20(2):173–7. DOI:10.4103/0973-029X.185933.; Fang J., Li X., Ma D. et al. Prognostic significance of tumor infiltrating immune cells in oral squamous cell carcinoma. BMC Cancer 2017;17(1):375. DOI:10.1186/s12885-017-3317-2.; Zancope E., Costa N.L., JunqueiraKipnis A.P. et al. Differential infiltration of CD8+ and NK cells in lip and oral cavity squamous cell carcinoma. J Oral Pathol Med 2010;39(2):162–7. DOI:10.1111/j.1600-0714.2009.00792.x.; https://ogsh.abvpress.ru/jour/article/view/719