-
1Academic Journal
Source: Azerbaijan Medical Journal. :150-155
Subject Terms: женский таз, pelviometriya, пельвиометрия, age-related variability, qadın çanağı, возрастная изменчивость, pelviometry, yaşla əlaqəli dəyişmələr, female pelvis
-
2Academic Journal
Authors: Пермякова Е.Ю., Хомякова И.А., Айыжы Е.В.
Source: Вестник Московского Университета. Серия XXIII: Антропология, Iss 4, Pp 101-113 (2024)
Subject Terms: биологическая антропология, этническая антропология, антропологическая изменчивость, географическая изменчивость, возрастная изменчивость, Ethnology. Social and cultural anthropology, GN301-674, Physical anthropology. Somatology, GN49-298, Human ecology. Anthropogeography, GF1-900
File Description: electronic resource
-
3Academic Journal
Authors: Маурер А.М, Чумакова А.М
Source: Вестник Московского Университета. Серия XXIII: Антропология, Iss 4, Pp 90-100 (2024)
Subject Terms: биологическая антропология, антропологическая изменчивость, этническая антропология, обобщенный фотопортрет, географическая изменчивость, популяции человека, возрастная изменчивость, Ethnology. Social and cultural anthropology, GN301-674, Physical anthropology. Somatology, GN49-298, Human ecology. Anthropogeography, GF1-900
File Description: electronic resource
-
4Academic Journal
Authors: Бацевич В.А., Пермякова Е.Ю., Маурер А.М.
Source: Вестник Московского Университета. Серия XXIII: Антропология, Iss 3, Pp 5-14 (2023)
Subject Terms: антропология, кефалометрические признаки, возрастная изменчивость, взрослые, чуваши, Ethnology. Social and cultural anthropology, GN301-674, Physical anthropology. Somatology, GN49-298, Human ecology. Anthropogeography, GF1-900
File Description: electronic resource
-
5Academic Journal
Source: Biology bulletin. 2021. Vol. 48, № 5. P. 607-615
Subject Terms: 0106 biological sciences, пение птиц, 05 social sciences, 11. Sustainability, городские условия, 0501 psychology and cognitive sciences, мухоловка-пеструшка, возрастная изменчивость, природные условия, 01 natural sciences
-
6Academic Journal
Authors: E. E. Tyagunova, V. Z. Dobrokhotova, A. O. Dushina, Е. Е. Тягунова, В. З. Доброхотова, А. О. Душина
Source: Head and Neck Tumors (HNT); Том 13, № 2 (2023); 57-64 ; Опухоли головы и шеи; Том 13, № 2 (2023); 57-64 ; 2411-4634 ; 2222-1468 ; 10.17650/2222-1468-2023-13-2
Subject Terms: темозоломид, glioblastomas, reactive astrocytes, chemoresistance, radioresistance, age variability of astrocytes, temozolomide, глиобластомы, реактивные астроциты, химиорезистентность, радиорезистентность, возрастная изменчивость астроцитов
File Description: application/pdf
Relation: https://ogsh.abvpress.ru/jour/article/view/889/586; Brotchi J., Bonnal J., Gerebtzoff M.A. Astroblaste tumoral et astrocyte réactionnel: distinction histochimique par l’activité de la déshydrogénase du glutamate. Neurochirurgie 1972;18(2):150–4.; Brotchi J. Astrocytes réactionnels et épilepsie. Acta Neurol Belg 1972;72(3):137–45.; Van Meir E.G., Hadjipanayis C.G., Norden A.D. et al. Exciting new advances in neuro-oncology. CA Cancer J Clin 2010;60(3):166–93. DOI:10.3322/caac.20069; Тягунова Е.Е., Захаров А.С., Глухов А.И. и др. Особенности эпилептиформной активности у пациентов с диагностированной глиобластомой: от генетических и биохимических механизмов к клиническим аспектам. Опухоли головы и шеи 2022;12(3):102–13. DOI:10.17650/2222-1468-2022-12-3-102-113; Darmanis S., Sloan S.A., Croote D. et al. Single-cell RNA-Seq analysis of infiltrating neoplastic cells at the migrating front of human glioblastoma. Cell Rep 2017;21(5):1399–410. DOI:10.1016/j.celrep.2017.10.030; Zhang L., Zhang Y. Tunneling nanotubes between rat primary astrocytes and C6 glioma cells alter proliferation potential of glioma cells. Neurosci Bull 2015;31(3):371–8. DOI:10.1007/s12264-014-1522-4; Umare M.D., Wankhede N.L., Bajaj K.K. et al. Interweaving of reactive oxygen species and major neurological and psychiatric disorders. Ann Pharm Fr 2022;80(4):409–25. DOI:10.1016/j.pharma.2021.11.004; Liddelow S.A., Barres B.A. Reactive astrocytes: production, function, and therapeutic potential. Immunity 2017;46(6):957–67. DOI:10.1016/j.immuni.2017.06.006; Heiland H.D., Ravi V.M., Behringer S.P. et al. Tumor-associated reactive astrocytes aid the evolution of immunosuppressive environment in glioblastoma. Nat Commun 2019;10(1):2541. DOI:10.1038/s41467-019-10493-6; Shlapakova T.I., Kostin R.K., Tyagunova E.E. Reactive oxygen species: participation in cellular processes and progression of pathology. Russian Journal of Bioorganic Chemistry 2020;46(5):657–74. DOI:10.1134/s1068162020050222; Zhang Y., Chen K., Sloan S.A. et al. An RNA-sequencing transcriptome and splicing database of glia, neurons, and vascular cells of the cerebral cortex. J. Neurosci 2014;34(36):11929–47. DOI:10.1523/JNEUROSCI.1860-14.2014; Zhang Y., Sloan S.A., Clarke L.E. et al. Purification and characterization of progenitor and mature human astrocytes reveals transcriptional and functional differences with mouse. Neuron 2016;89(1):37–53. DOI:10.1016/j.neuron.2015.11.013; Liddelow S.A., Guttenplan K.A., Clarke L.E. et al. Neurotoxic reactive astrocytes are induced by activated microglia. Nature 2017;541(7638):481–7. DOI:10.1038/nature21029; Zamanian J.L., Xu L., Foo L.C. et al. Genomic analysis of reactive astrogliosis. J Neurosci 2012;32(18):6391–410. DOI:10.1523/JNEUROSCI.6221-11.2012; Guan X., Hasan M.N., Maniar S. et al. Reactive astrocytes in glioblastoma multiforme. Mol Neurobiol 2018;55(8):6927–38. DOI:10.1007/s12035-018-0880-8; Herculano-Houzel S. The glia/neuron ratio: how it varies uniformly across brain structures and species and what that means for brain physiology and evolution. Glia 2014;62(9):1377–91. DOI:10.1002/glia.22683; Butt A.M., Fern R.F., Matute C. Neurotransmitter signaling in white matter. Glia 2014;62(11):1762–79. DOI:10.1002/glia.22674; Haroutunian V., Katsel P., Roussos P. et al. Myelination, oligodendrocytes, and serious mental illness. Glia 2014;62(11):1856–77. DOI:10.1002/glia.22716; Banker G.A. Trophic interactions between astroglial cells and hippocampal neurons in culture. Science 1980;209(4458):809–10. DOI:10.1126/science.7403847; Ullian E.M., Sapperstein S.K., Christopherson K.S. et al. Control of synapse number by glia. Science 2001;291(5504):657–61. DOI:10.1126/science.291.5504.657; Christopherson K.S., Ullian E.M., Stokes C.C. et al. Thrombospondins are astrocyte-secreted proteins that promote CNS synaptogenesis. Cell 2005;120(3):421–33. DOI:10.1016/j.cell.2004.12.020; Kucukdereli H., Allen N.J., Lee A.T. et al. Control of excitatory CNS synaptogenesis by astrocyte-secreted proteins Hevin and SPARC. Proc Natl Acad Sci USA 2011;108(32):E440–9. DOI:10.1073/pnas.1104977108; Allen N.J., Bennett M.L., Foo L.C. et al. Astrocyte glypicans 4 and 6 promote formation of excitatory synapses via GluA1 AMPA receptors. Nature 2012;486(7403):410–4. DOI:10.1038/nature11059; Singh S.K., Stogsdill J.A., Pulimood N.S. et al. Astrocytes assemble thalamocortical synapses by bridging NRX1alpha and NL1 via Hevin. Cell 2016;164(1–2):183–96. DOI:10.1016/j.cell.2015.11.034; Farhy-Tselnicker I., van Casteren A.C., Lee A. et al. Astrocytesecreted glypican 4 regulates release of neuronal pentraxin 1 from axons to induce functional synapse formation. Neuron 2017;96(2):428–45.e413. DOI:10.1016/j.neuron.2017.09.053; Krencik R., Seo K., van Asperen J.V. et al. Systematic three-dimensional coculture rapidly recapitulates interactions between human neurons and astrocytes. Stem Cell Rep 2017;9(6):1745–53. DOI:10.1016/j.stemcr.2017.10.026; Stogsdill J.A., Ramirez J., Liu D. et al. Astrocytic neuroligins control astrocyte morphogenesis and synaptogenesis. Nature 2017;551(7679):192–7. DOI:10.1038/nature24638; Blanco-Suarez E., Liu T.F., Kopelevich A. et al. Astrocyte-secreted chordin-like 1 drives synapse maturation and limits plasticity by increasing synaptic GluA2 AMPA receptors. Neuron 2018;100(5):1116–32.e1113. DOI:10.1016/j.neuron.2018.09.043; Chung W.S., Clarke L.E., Wang G.X. et al. Astrocytes mediate synapse elimination through MEGF10 and MERTK pathways. Nature 2013;504(7480):394–400. DOI:10.1038/nature12776; Tasdemir-Yilmaz O.E., Freeman M.R. Astrocytes engage unique molecular programs to engulf pruned neuronal debris from distinct subsets of neurons. Genes Dev 2014;28(1):20–33. DOI:10.1101/gad.229518.113; Vainchtein I.D., Chin G., Cho F.S. et al. Astrocyte-derived interleukin-33 promotes microglial synapse engulfment and neural circuit development. Science 2018;359(6381):1269–73. DOI:10.1126/science.aal3589; Lee J.H., Kim J.Y., Noh S. et al. Astrocytes phagocytose adult hippocampal synapses for circuit homeostasis. Nature 2021;590(7847):612–7. DOI:10.1038/s41586-020-03060-3; Kuffler S.W., Nicholls J.G., Orkand R.K. Physiological properties of glial cells in the central nervous system of amphibia. J Neurophysiol 1966;29(4):768–87. DOI:10.1152/jn.1966.29.4.768; Olsen M.L., Sontheimer H. Functional implications for Kir4.1 channels in glial biology: from K+ buffering to cell differentiation. J Neurochem 2008;107(3):589–601. DOI:10.1111/j.1471-4159.2008.05615.x; Kelley K.W., Ben Haim L., Schirmer L. et al. Kir4.1-dependent astrocyte-fast motor neuron interactions are required for peak strength. Neuron 2018;98(2):306–19.e307. DOI:10.1016/j.neuron.2018.03.010; Bazargani N., Attwell D. Astrocyte calcium signaling: the third wave. Nat Neurosci 2016;19(2):182–9. DOI:10.1038/nn.4201; Шлапакова Т.И., Костин Р.К., Тягунова Е.Е. Активные формы кислорода: участие в клеточных процессах и развитии патологии. Биоорганическая химия 2020;46(5):466–85. DOI:10.31857/S013234232005022X; Yu X., Nagai J., Marti-Solano M. et al. Context-specific striatal astrocyte molecular responses are phenotypically exploitable. Neuron 2020;108(6):1146–62.e1110. DOI:10.1016/j.neuron.2020.09.021; Placone A.L., Quinones-Hinojosa A., Searson P.C. The role of astrocytes in the progression of brain cancer: complicating the picture of the tumor microenvironment. Tumour Biol 2016;37(1):61–9. DOI:10.1007/s13277-015-4242-0; Burda J.E., Bernstein A.M., Sofroniew M.V. Astrocyte roles in traumatic brain injury. Exp Neurol 2016;275(3):305–15. DOI:10.1016/j.expneurol.2015.03.020; Heneka M.T., Carson M.J., El Khoury J. et al. Neuroinflammation in Alzheimer’s disease. Lancet Neurol 2015;14(4):388–405. DOI:10.1016/s1474-4422(15)70016-5; Krawczyk M.C., Haney J.R., Pan L. et al. Human astrocytes exhibit tumor microenvironment-, age-, and sex-related transcriptomic signatures. J Neurosci 2022;42(8):1587–603. DOI:10.1523/JNEUROSCI.0407-21.2021; Diaz-Castro B., Bernstein A.M., Coppola G. et al. Molecular and functional properties of cortical astrocytes during peripherally induced neuroinflammation. Cell Rep 2021;36(6):109508. DOI:10.1016/j.celrep.2021.109508; Pinter A., Hevesi Z., Zahola P. et al. Chondroitin sulfate proteoglycan-5 forms perisynaptic matrix assemblies in the adult rat cortex. Cell Signal 2020;74:109710. DOI:10.1016/j.cellsig.2020.109710; Chen W., Wang D., Du X. et al. Glioma cells escaped from cytotoxicity of temozolomide and vincristine by communicating with human astrocytes. Med Oncol 2015;32(3):43. DOI:10.1007/s12032-015-0487-0; Biasoli D., Sobrinho M.F., da Fonseca A.C. et al. Glioblastoma cells inhibit astrocytic p53-expression favoring cancer malignancy. Oncogene 2014;3(10):e123. DOI:10.1038/oncsis.2014.36; Shlapakova T.I., Tyagunova E.E., Kostin R.K. et al. Targeted antitumor drug delivery to glioblastoma multiforme cells. Russ J Bioorg Chem 2021;47(2):376–9. DOI:10.1134/S1068162021020254; Шлапакова Т.И., Тягунова Е.Е., Костин Р.К. и др. Адресная доставка противоопухолевых препаратов к клеткам мультиформной глиобластомы. Биоорганическая химия 2021;47(3):299–303. DOI:10.31857/S0132342321020251; Bogoyavlenskaya T.A., Tyagunova E.E., Kostin R.K. et al. Glioblastoma break-in; try something new. Int J Cancer Manag 2021;14(1):e109054. DOI:10.5812/ijcm.109054; Esteban F.J., Horcajadas A., El-Rubaidi O. et al. El monóxido de nitrógeno en los astrocitomas malignos. Rev Neurol 2005;40(7):437–40.; Campos J.C., Campos P.T., Bona N.P. et al. Synthesis and Biological Evaluation of Novel 2-imino-4-thiazolidinones as Potential Antitumor Agents for Glioblastoma. Med Chem 2022;18(4):452–62. DOI:10.2174/1573406417666210806094543; Grant R., Ironside J.W. Glutathione S-transferases and cytochrome P450 detoxifying enzyme distribution in human cerebral glioma. J Neurooncol 1995;25(1):1–7. DOI:10.1007/BF01054717; Han X., Yoon S.H., Ding Y. et al. Cyclosporin A and sanglifehrin A enhance chemotherapeutic effect of cisplatin in C6 glioma cells. Oncol Rep 2010;23(4):1053–62. DOI:10.3892/or_00000732; Fletcher-Sananikone E., Kanji S., Tomimatsu N. et al. Elimination of radiation-induced senescence in the brain tumor microenvironment attenuates glioblastoma recurrence. Cancer Res 2021;81(23):5935–47. DOI:10.1158/0008-5472.CAN-21-0752; Nikolenko V.N., Gridin L.A., Oganesyan M.V. The posterior perforated substance: a brain mystery wrapped in an enigma. Curr Top Med Chem 2019;19(32):2991–8. DOI:10.2174/1568026619666191127122452; https://ogsh.abvpress.ru/jour/article/view/889
-
7Academic Journal
Source: Эндодонтия Today, Vol 12, Iss 2, Pp 39-43 (2020)
Subject Terms: возрастная изменчивость в строении вне-внутриорганных структур нижней челюсти детей, краниометрия, рентгено-радиология, age variability in the structure of off-intraorgan structures, mandible, children craniometry, x-ray radiology, Dentistry, RK1-715
File Description: electronic resource
-
8Academic Journal
Source: Вестник Томского государственного университета. Биология. 2022. № 57. С. 46-66
Subject Terms: песенные репертуары, возрастная изменчивость, типы песенных фигур, мухоловки-пеструшки, песенная структура
File Description: application/pdf
-
9Academic Journal
Source: Сибирский психологический журнал. 2021. № 82. С. 137-152
Subject Terms: половая и возрастная изменчивость популяции, Краткая оценка когнитивных функций у пациентов с шизофренией (BACS), когнитивные функции, связанность когнитивных функций
File Description: application/pdf
-
10Academic Journal
Source: Эндодонтия Today, Vol 12, Iss 2, Pp 39-43 (2020)
Subject Terms: возрастная изменчивость в строении вне-внутриорганных структур нижней челюсти детей, краниометрия, рентгено-радиология, age variability in the structure of off-intraorgan structures, mandible, children craniometry, x-ray radiology, Dentistry, RK1-715
-
11Academic Journal
Authors: Левых, А. Ю., Усольцева, Ю. А., Цаликова, И. К., Levykh, A. Yu., Usoltseva, Yu. A., Tsalikova, I. K.
Subject Terms: инвазивные популяции, морфометрические признаки, меристические признаки, возрастная изменчивость, стабильность развития, Perccottus glenii, invasive populations, morphometric signs, meristic signs, age variation, developmental stability
File Description: application/pdf
Relation: Вестник Тюменского государственного университета; Экология и природопользование; https://openrepository.ru/article?id=356501
-
12Academic Journal
Authors: K. N. Belogay, I. S. Morozova, К. Н. Белогай, И. С. Морозова
Source: SibScript; № 1 (2017); 94-98 ; СибСкрипт; № 1 (2017); 94-98 ; 2949-2092 ; 2949-2122 ; 10.21603/2078-8975-2017-1
File Description: application/pdf
Relation: https://www.sibscript.ru/jour/article/view/2119/2021; Белогай К. Н. Материнство и телесность женщины: монография. Кемерово: КемГУ, 2014. 240 с.; Белогай К. Н. Телесность женщины в связи с реализацией репродуктивной функции // Вестник Кемеровского государственного университета. 2013. № 2. Т. 1. С. 137 – 143.; Белогай К. Н. Эмпирическое исследование телесности женщины в связи с реализацией репродуктивной функции // Вестник Кемеровского государственного университета. 2014. № 1. Т. 1. С. 108 – 116.; Морозова И. С., Белогай К. Н., Борисенко Ю. В., Отт Т. О. Регуляция репродуктивного поведения и репродуктивное здоровье: монография. М.: ЛЕНАНД, 2015. 240 с.; Психосоматика: телесность и культура: учебное пособие для вузов / под ред. В. В. Николаевой. М.: Академический Проект, 2009. 311 с.; Тхостов А. Ш. Психология телесности. М.: Смысл, 2002. 287 с.; Rozin P., Fallon A. Body Image, Attitudes to weight, and misperceptions of figure preferences of the opposite sex: A comparison of men and women in two generations // Journal of Abnormal Psychology. 1988. Vol. 97. P. 342 – 345.; https://www.sibscript.ru/jour/article/view/2119
-
13Academic Journal
Authors: БЕЛОГАЙ К.Н., МОРОЗОВА И.С.
Subject Terms: BODY IMAGE,AGE VARIABILITY OF BODY IMAGE OF WOMEN,ОБРАЗ ТЕЛА,ВОЗРАСТНАЯ ИЗМЕНЧИВОСТЬ ОБРАЗА ТЕЛА ЖЕНЩИНЫ
File Description: text/html
-
14Academic Journal
Authors: D. V. Zlotnik, V. I. Romanov, Д. В. Злотник, В. И. Романов
Source: Bulletin of NSAU (Novosibirsk State Agrarian University); № 1 (2015); 132-137 ; Вестник НГАУ (Новосибирский государственный аграрный университет); № 1 (2015); 132-137 ; 2072-6724
Subject Terms: размерно-возрастная изменчивость, the river Chulym, morphometry, meristic features and plastic features, age and length variations, река Чулым, морфометрия, меристические и пластические признаки
File Description: application/pdf
Relation: https://vestngau.elpub.ru/jour/article/view/598/283; Попков В. К., Попкова Л. А., Рузанова А. И. Особенности экологии леща Abramis brama (L.) и последствия его акклиматизации в бассейне Средней Оби // Вестн. ТГУ. – Томск, 2008. – С. 154–157.; Биологические ресурсы водоемов бассейна реки Чулыма / Е. И. Глазырина, А. Н. Гундризер, Н. А. Залозный [и др.]. – Томск: Изд-во ТГУ, 1980. – 165 с.; Годовой отчет о деятельности ФГБУ «Енисейрыбвод» за 2012 г. – С. 165–166. [Электрон. ресурс]. – Режим доступа: http://www.enisey-rosfish.ru/sub-org/eniseyribvod/.; Иоганзен Б. Г., Петкевич А. Н. Итоги и перспективы акклиматизации рыб в водоемах Западной Сибири // Акклиматизация рыб и беспозвоночных в водоемах СССР. – М., 1968. – С. 208–216.; Бабуева Р. В. К динамике численности леща в Новосибирском водохранилище // Оценка природ-ных ресурсов Сибири и Дальнего Востока: Материалы к симпоз. 4-го совещ. географов Сибири и Дальнего Востока. – Новосибирск, 1969. – Вып. 2. – С. 197–199.; Бабуева Р. В. Лещ Новосибирского водохранилища: автореф. дис. … канд. биол. наук. – Томск, 1970. – 23 с.; Бабуева Р. В. Лещ Abramis brama L. в разнотипных водоемах юга Западной Сибири (итоги аккли-матизации) // Рыбоводство и рыбное хозяйство. – 2007. – № 6. – С. 12–17.; Соловов В. П. Биология леща (Abramis brama L.) верховий Оби // Вопр. ихтиологии. – 1970. – Т. 10, вып. 5 (65). – С. 790–795.; Исмуханов Х. К. Морфологическая характеристика восточного леща Abramis brama orientalis (Berg), акклиматизированного в Бухтарминском водохранилище // Вопр. ихтиологии. – 1979. – Т. 19, вып. 1 (66). – С. 44–45.; Новоселов В. А. Эколого-морфологические особенности акклиматизантов леща и судака и пути ра-ционального использования их запасов в верховьях Оби: автореф. дис. … канд. биол. наук. – М., 1986. – 24 с.; Журавлев В. Б. Рыбы бассейна Верхней Оби: монография. – Барнаул: Изд-во Алт. ун-та. – 2003. – 292 с.; Рыбы водохранилищ и крупных озер региона / А. А. Ростовцев, О. В. Трифонова, Е. В. Егоров [и др.] // Экология рыб Обь-Иртышского бассейна. – М., 2006. – С. 234–251.; Карманова О. Г., Фатеев Е. В. Морфо-экологические показатели леща (Abramis brama L.) бассейна Средней Оби // Биологические аспекты рационального использования и охраны водоемов Сибири: материалы Всерос. конф. / под ред. В. И. Романова. – Томск: Лито-Принт, 2007. – С. 160–164.; Дорогин М. А., Морузи И. В., Ростовцев А. А. Дифференциация морфометрических показателей и темпа роста леща Верхней и Средней Оби // Вестн. НГАУ. – 2011. – № 1 (17). – С. 60–64.; Федоров Е. Ф., Калиненко Н. А. Морфоэкологическая характеристика ихтиофауны реки Ишим на юге Тюменской области // Вестн. Тюмен. гос. ун-та. – 2011. – № 6. – С. 70–77.; Правдин И. Ф. Руководство по изучению рыб. – Л., 1966. – 337 с.; Лакин Г. Ф. Биометрия. – М.: Высш. шк., 1980. – 293 с.; Backiel T., Zawisza J. Synopsis of biological data on the bream Abramis brama (Linnaeus, 1758) // FAO Fisheries Synopsis. – Rome, 1968. – N 36. – P. 121.; https://vestngau.elpub.ru/jour/article/view/598
Availability: https://vestngau.elpub.ru/jour/article/view/598
-
15Conference
Authors: Kuzmina, T. V.
Subject Terms: ПРОЦЕСС ПОТРЕБЛЕНИЯ, CONSUMER BEHAVIOR, CONSUMPTION FUNCTIONS, ПОТРЕБИТЕЛЬСКОЕ ПОВЕДЕНИЕ, ФУНКЦИИ ПОТРЕБЛЕНИЯ, ВОЗРАСТНАЯ ИЗМЕНЧИВОСТЬ ПОТРЕБИТЕЛЬСКИХ ПРЕДПОЧТЕНИЙ, AGE VARIABILITY OF CONSUMER PREFERENCES, ПЕРВИЧНАЯ И ВТОРИЧНАЯ СОЦИАЛИЗАЦИЯ, PRIMARY AND SECONDARY SOCIALIZATION, CONSUMPTION PROCESS
File Description: application/pdf
Access URL: http://elar.urfu.ru/handle/10995/39026
-
16Academic Journal
Source: Вестник Кемеровского государственного университета.
Subject Terms: 5. Gender equality, BODY IMAGE,AGE VARIABILITY OF BODY IMAGE OF WOMEN,ОБРАЗ ТЕЛА,ВОЗРАСТНАЯ ИЗМЕНЧИВОСТЬ ОБРАЗА ТЕЛА ЖЕНЩИНЫ
File Description: text/html
-
17Academic Journal
Authors: Окушко, В., Алешкина, О., Чепендюк, Т.
File Description: text/html
-
18Academic Journal
Authors: Черных, А., Любых, Е., Малеев, Ю., Закурдаев, Е.
Subject Terms: ПОПЕРЕЧНАЯ ФАСЦИЯ ЖИВОТА, ГЛУБОКОЕ ПАХОВОЕ КОЛЬЦО, ВОЗРАСТНАЯ ИЗМЕНЧИВОСТЬ
File Description: text/html
-
19Academic Journal
Subject Terms: ВИДЫ-ДВОЙНИКИ, ВОЗРАСТНАЯ ИЗМЕНЧИВОСТЬ, ПОЛИМОРФИЗМ, ПОЛОВОЙ ДИМОРФИЗМ, СЕЗОННАЯ ИЗМЕНЧИВОСТЬ, ГЕОГРАФИЧЕСКАЯ ИЗМЕНЧИВОСТЬ
File Description: text/html
-
20Academic Journal
Authors: Фомкина, Ольга, Гладилин, Ю.
Subject Terms: СРЕДНЯЯ МОЗГОВАЯ АРТЕРИЯ,ПЕРЕДНЯЯ МОЗГОВАЯ АРТЕРИЯ,ВОЗРАСТНАЯ ИЗМЕНЧИВОСТЬ,ВАРИАНТЫ СТРОЕНИЯ
File Description: text/html
