-
1Academic Journal
Συγγραφείς: Kalantar Neyestanaki M., Mehdipour A.
Συνεισφορές: 1
Πηγή: Russian Journal of Infection and Immunity; Vol 15, No 3 (2025); 465-475 ; Инфекция и иммунитет; Vol 15, No 3 (2025); 465-475 ; 2313-7398 ; 2220-7619
Θεματικοί όροι: bacterial infection, co-infection, herpes simplex virus, host microbial interactions, public health, viral infections, бактериальная инфекция, коинфекция, вирус простого герпеса, взаимодействия микробы–хозяин, общественное здравоохранение, вирусные инфекции
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Relation: https://iimmun.ru/iimm/article/view/17749/2268; https://iimmun.ru/iimm/article/view/17749/2294; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/17749/137752; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/17749/137753; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/17749/137754; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/17749/137755; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/17749/137756; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/17749/137759; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/17749/137760; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/17749/137761; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/17749/137763; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/17749/137764; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/17749/137765; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/17749/137766; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/17749/137767; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/17749/138930; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/17749/138931; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/17749/138932; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/17749/138933; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/17749/138934; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/17749/138935; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/17749/138936; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/17749/139464; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/17749/140150; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/17749/140151; https://iimmun.ru/iimm/article/view/17749
-
2Academic Journal
Συγγραφείς: M. N. Repkova, V. F. Zarytova, O. Yu. Mazurkov, N. A. Mazurkova, E. V. Makarevich, E. I. Filippova, M. D. Nekrasov, M. S. Kupryushkin, A. S. Levina, М. Н. Репкова, В. Ф. Зарытова, О. Ю. Мазурков, Н. А. Мазуркова, Е. В. Макаревич, Е. И. Филиппова, М. Д. Некрасов, М. С. Купрюшкин, А. С. Левина
Συνεισφορές: The research was funded by the Russian Science Foundation, project number 23-24-00184., Исследование выполнено при финансовой поддержке Российского научного фонда (проект №23-24-00184).
Πηγή: Vestnik Moskovskogo universiteta. Seriya 16. Biologiya; Том 79, № 4 (2024); 338-345 ; Вестник Московского университета. Серия 16. Биология; Том 79, № 4 (2024); 338-345 ; 0137-0952
Θεματικοί όροι: вирус простого герпеса, antisense oligonucleotides, TiO2 nanoparticles (anatase), antiviral effect, herpes simplex virus, антисмысловые олигонуклеотиды, TiO2-наночастицы (анатаз), противовирусный эффект
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Relation: https://vestnik-bio-msu.elpub.ru/jour/article/view/1442/707; Belikova A.M., Zarytova V.F., Grineva N.I. Synthesis of ribonucleosides and diribonucleoside phosphates containing 2-chloroethylamine and nitrogen mustard residues. Tetrahedron Lett. 1967;8(37):3557–3562.; Zamecnik P., Stephenson M. Inhibition of Rous sarcoma virus replication and cell transformation by a specific oligodeoxynucleotide. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 1978;75(1):280–284.; Amado D.A., Davidson B.L. Gene therapy for ALS: A review. Mol. Ther. 2021;29(12):3345–3358.; Kulkarni J.A., Witzigmann D., Chen S., Cullis P.R., van der Meel R. Lipid nanoparticle technology for clinical translation of siRNA therapeutics. Acc. Chem. Res. 2019;52(9):2435–2444.; Draper K.G., Ecker D.J., Mirabelli C.K., Crooke S.T. Oligonucleotide therapies for modulating the effects of herpesviruses. Patent US 6310044 B1, 2001;30.10.2001.; Eide K., Moerdyk-Schauwecker M., Stein D.A., Bildfell R., Koelle D.M., Jin L. Reduction of herpes simplex virus type-2 replication in cell cultures and in rodent models with peptide-conjugated morpholino oligomers. Antivir. Ther. 2010;15(8):1141–1149.; Moerdyk-Schauwecker M., Stein D.A., Eide K., Blouch R.E., Bildfell R., Iversen P., Jin L. Inhibition of HSV-1 ocular infection with morpholino oligomers targeting ICP0 and ICP27. Antiviral Res. 2009;84(2):131–141.; Weng Y., Huang Q., Li C., Yang Y., Wang X., Yu J., Huang Y., Liang X.J. Improved nucleic acid therapy with advanced nanoscale biotechnology. Mol. Ther. Nucleic Acids 2020;19(1):581–601.; Haghighi F.H., Mercurio M., Cerra S., Salamone T.A., Bianymotlagh R., Palocci C., Spica V.R., Fratoddi I. Surface modification of TiO 2 nanoparticles with organic molecules and their biological applications. J. Mater. Chem. B. 2023;11(11):2334–2366.; Chelobanov B.P., Repkova M.N., Bayborodin S.I., Ryabchikova E.I., Stetsenko D.A. Nuclear delivery of oligonucleotides via nanocomposites based on TiO2 nanoparticles and polylysine. Mol. Biol. (Mosс.). 2017;51(5):797–808.; Levina A.S., Repkova M.N., Shatskaya N.V., Zarytova V.F., Ismagilov Z.R., Shikina N.V., Zagrebelnyi S.N., Baiborodin S.I. Design of TiO2~DNA nanocomposites for penetration into cells. Russ. J. Bioorg. Chem. 2013;39(1):77–86.; Zharkov T.D., Markov O.V., Zhukov S.A., Khodyreva S.N., Kupryushkin M.S. Influence of combinations of lipophilic and phosphate backbone modifications on cellular uptake of modified oligonucleotides. Molecules. 2024;29(2):452.; Osano E., Kishi J., Takahashi Y. Phagocytosis of titanium particles and necrosis in TNF-alpha-resistant mouse sarcoma L929 cells. Toxicol. In Vitro. 2003;17(1):41–47.; Smee D.F., Morrison A.C., Barnard D.L., Sidwell R.W. Comparison of colorimetric and visual methods for determining anti-influenza (H1N1 and H3N2) virus activities and toxicities of compounds. J. Virol. Methods. 2002;106(1):71–79.; Levina A.S., Repkova M.N., Bessudnova E.V., Filippova E.I., Zarytova V.F. High antiviral effect of TiO2·PL-DNA nanocomposites targeted to conservative regions of (-)RNA and (+)RNA of influenza A virus in cell culture. Beilstein J. Nanotechnol. 2016;7(4):1166–1173.; Levina A., Repkova M., Shikina N., Ismagilov Z., Kupryushkin M., Pavlova A., Mazurkova N., Pyshnyi D., Zarytova V. Pronounced therapeutic potential of oligonucleotides fixed on inorganic nanoparticles against highly pathogenic H5N1 influenza A virus in vivo. Eur. J. Pharm. Biopharm. 2021;162:92–98.; Repkova M.N., Levina A.S., Ismagilov Z R., Mazurkova N.A., Mazurkov O.Ju., Zarytova V.F. Effective inhibition of newly emerged A/H7N9 virus with oligonucleotides targeted to conserved regions of the virus genome. Nucleic Acid Ther. 2021;31(6):436–442.; Repkova M.N., Levina A.S., Seryapina A.A., Shikina N.V., Bessudnova E.V., Zarytova V.F., Markel A.L. Toward gene therapy of hypertension: experimental study on hypertensive ISIAH rats. Biochemistry (Mosc.). 2017;82(4):454–457.; Shen X., Corey D.R. Chemistry, mechanism and clinical status of antisense oligonucleotides and duplex RNAs. Nucleic Acids Res. 2018;46(4):1584–1600.; Levina A.S., Repkova M.N., Zarytova V.F. Therapeutic nucleic acids against Herpes simplex viruses (a review). Russ. J. Bioorg. Chem. 2023;49(6):1243–1262.; Shoji Y., Norimatsu M., Shimada J., Mizushima Y. Limited use of cationic liposomes as tools to enhance the antiherpetic activities of oligonucleotides in Vero cells infected with herpes simplex virus Type 1. Antisense Nucleic Acid Drug Dev. 1998;8(4):255–263.; Birch-Hirschfeld E., Knorre C.M., Stelzner A., Schmidtke M. Antiviral activity of antisense oligonucleotides against various targets of herpes simplex virus 1 (Hsv1) and Coxsackievirus B3 (Cvb3) genome. Nucleos. Nucleot. 1997;16(5–6):623–628.; Blumenfeld M., Meguenni S., Poddevin B., Vasseur M. Antisense oligonucleotides against herpes simplex virus types 1 and 2. Patent WO1995004141A1, 1995;09.02.1995.; Hoke G.D., Draper K., Freier S.M., Gonzalez C., Driver V.B., Zounes M.C., Ecker D.J. Effects of phosphorothioate capping on antisense oligonucleotide stability, hybridization and antiviral efficacy versus herpes simplex virus infection. Nucleic Acids Res. 1991;19(20):5743–5748.; Shoji Y., Ishige H., Tamura N., Iwatani W., Norimatsu M., Shimada J., Mizushima Y. Enhancement of anti-Herpetic activity of antisense phosphorothioate oligonucleotides 5’-end modified with geraniol. J. Drug Target. 1998;5(4):261–273.; Vinogradov S.V., Suzdaltseva Y., Alakhov V.Y., Kabanov A.V. Inhibition of herpes simplex virus 1 reproduction with hydrophobized antisense oligonucleotides. Biochem. Biophys. Res. Commun. 1994;203(2):959–966.; Miroshnichenko S.K., Patutina O.A., Burakova E.A., Chelobanov B.P., Fokina A.A., Vlassov V.V., Altman S., Zenkova M.A., Stetsenko D.A. Mesyl phosphoramidate antisense oligonucleotides as an alternative to phosphorothioates with improved biochemical and biological properties. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 2019;116(4):1229–1234.; Kandasamy P., McClorey G., Shimizu M., et al. Control of backbone chemistry and chirality boost oligonucleotide splice switching activity. Nucleic Acids Res. 2022;50(10):5443–5466.
-
3Academic Journal
Συγγραφείς: Issanguzhina, Zh., Mamyrbayeva, M., Kim, S., Zhumagaliyeva, G., Shilmanova, A., Ismambetova, G., Pukhovikova, N., Kuldeyeva, G., Zhalgasbayeva, Zh.
Πηγή: Наука и здравоохранение. :160-165
Θεματικοί όροι: hemorrhagic vasculitis (HV), цитомегаловирус (CMV), цитомегаловирус (ЦМВ), II), II (HSV-I, 2), вирус Эпштейна-Барра (ВЭБ), геморрагический васкулит (ГВ), вирус простого герпеса I, II типті қарапайым герпес вирусы (HSV-I, дети, геморрагиялық васкулит (ГВ), 6 типті адамның герпес вирусы (HHV-6), 3. Good health, Epstein-Barr virus (EBV), II типа (ВПГ-1, Эпштейн-Барр вирусы (EBV), children, cytomegalovirus (CMV), herpes simplex virus types I, вирус герпеса человека 6 типа (ВГЧ-6), human herpes virus type 6 (HHV-6), балалар
-
4Academic Journal
Συγγραφείς: Алиев , Ахмаджон, Абдуллаев , Дониёр, Камалов , Зайнитдин
Πηγή: International Journal of Scientific Pediatrics; Vol. 3 No. 4 (2024): April; 557-561 ; Международный журнал научной педиатрии; Том 3 № 4 (2024): Апрел; 557-561 ; Xalqaro ilmiy pediatriya jurnali; Nashr soni. 3 No. 4 (2024): Aprel; 557-561 ; 2181-2926
Θεματικοί όροι: дети раннего возраста, пневмония, стоматит, вирус простого герпеса, цитокины, иммунитет, young children, pneumonia, stomatitis, herpes simplex virus, cytokines, immunity, yosh bolalar, pnevmoniya, stomatit, gerpes simplex virusi, sitokinlar, immunitet
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Relation: https://ijsp.uz/index.php/journal/article/view/240/195; https://ijsp.uz/index.php/journal/article/view/240
-
5Academic Journal
Συγγραφείς: Maltsev, D. V.
Πηγή: Ukrainian Neurological Journal; № 3 (2020); 47—56
Украинский неврологический журнал; № 3 (2020); 47—56
Український неврологічний журнал; № 3 (2020); 47—56Θεματικοί όροι: рseudotumor cerebri, вірус простого герпесу 1 типу, скроневий енцефаліт, вторинний імунодефіцит, pseudotumorcerebri, herpes simplex virus type 1, temporal encephalitis, secondary immunodeficiency, вирус простого герпеса 1 типа, височный энцефалит, вторичный иммунодефицит, 3. Good health
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Σύνδεσμος πρόσβασης: http://ukrneuroj.com.ua/article/view/UNJ2020-3-47
-
6Academic Journal
Συγγραφείς: Chushenko, V., Yarnykh, T., Levachkova, Yu., Litvinova, O.
Πηγή: Український біофармацевтичний журнал; № 1(62) (2020); 12-17
Ukrainian biopharmaceutical journal; № 1(62) (2020); 12-17
Украинский биофармацевтический журнал; № 1(62) (2020); 12-17Θεματικοί όροι: 9. Industry and infrastructure, acyclovir, Tea tree and Thyme essential oils, vaginal suppositories, genital herpes, virus of simple herpes, stability, ацикловир, эфирное масло чайного дерева, эфирное масло чабреца, вагинальные суппозитории, генитальный герпес, вирус простого герпеса, стабильность, UDC 615.014.4 : 615.454.2 : 547.913 : 615.281.8, УДК 615.014.4 : 615.454.2 : 547.913 : 615.281.8, ацикловір, ефірна олія чайного дерева, ефірна олія чебрецю, генітальний герпес, вірус простого герпесу, вагінальні супозиторії, стабільність, 3. Good health
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
-
7Report
Θεματικοί όροι: Herpesviruses, Virus replication, Герпесвирусы, Репликация вирусов, DNA-containing viruses, Вирус простого герпеса (HSV), Цитомегаловирус, Cytomegalovirus, Вирусология, Семейство Herpesviridae, ДНК-содержащие вирусы, Herpesviridae family, Вирус Эпштейна-Барр, Herpes simplex virus (HSV), Virology, Epstein-Barr virus
-
8Report
Θεματικοί όροι: Вирус простого герпеса (ВПГ), Viral infections, герпесвирусы, Генитальный герпес, Тип 1 ВПГ, Clinical manifestations of herpes simplex, инфекции, оральный герпес, Infections, Genital herpes, Microbiology, микробиология, Тип 2 ВПГ, Herpes simplex virus (HSV), FOS: Biological sciences, Virology, Herpesviruses, Oral herpes, клинические проявления простого герпеса, HSV Type 1, HSV Type 2, вирусология, вирусные инфекции
-
9Academic Journal
Συγγραφείς: E. V. Kulchavenya, S. Yu. Shevchenko, A. A. Baranchukova, Е. В. Кульчавеня, С. Ю. Шевченко, А. А. Баранчукова
Πηγή: Urology Herald; Том 11, № 1 (2023); 42-51 ; Вестник урологии; Том 11, № 1 (2023); 42-51 ; 2308-6424 ; 10.21886/2308-6424-2023-11-1
Θεματικοί όροι: хронический абактериальный простатит, abacterial, herpes simplex virus, treatment, antimicrobial peptides, superlymph, вирус простого герпеса, лечение, суперлимф, антимикробные пептиды
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Relation: https://www.urovest.ru/jour/article/view/668/444; Wald A. Genital HSV-1 infections. Sex Transm Infect. 2006;82(3):189-90. DOI:10.1136/sti.2006.019935; Roberts CM, Pfister JR, Spear SJ. Increasing proportion of herpes simplex virus type 1 as a cause of genital herpes infection in college students. Sex Transm Dis. 2003;30(10):797-800. DOI:10.1097/01.OLQ.0000092387.58746.C7; Johnston C. Diagnosis and Management of Genital Herpes: Key Questions and Review of the Evidence for the 2021 Centers for Disease Control and Prevention Sexually Transmitted Infections Treatment Guidelines. Clin Infect Dis. 2022;74(Suppl_2):S134-S143. DOI:10.1093/cid/ciab1056; Freeman EE, Weiss HA, Glynn JR, Cross PL, Whitworth JA, Hayes RJ. Herpes simplex virus 2 infection increases HIV acquisition in men and women: systematic review and meta-analysis of longitudinal studies. AIDS. 2006;20(1):73- 83. DOI:10.1097/01.aids.0000198081.09337.a7; WHO report on 10 March 2022. Herpes simplex virus. Accessed on Feb. 20, 2023. https://www.who.int/news-room/fact-sheets/detail/herpes-simplex-virus; Wald A, Zeh J, Selke S, Ashley RL, Corey L. Virologic characteristics of subclinical and symptomatic genital herpes infections. N Engl J Med. 1995;333(12):770-5. DOI:10.1056/NEJM199509213331205; Gupta R, Wald A, Krantz E, Selke S, Warren T, VargasCortes M, Miller G, Corey L. Valacyclovir and acyclovir for suppression of shedding of herpes simplex virus in the genital tract. J Infect Dis. 2004;190(8):1374-81. DOI:10.1086/424519; Карахалис Л.Ю., Стебло Е.И., Пономарева Ю.С., Кононенко Т.С., Петренко В.С., Петренко С.И. Повышение эффективности лечения заболеваний, вызванных вирусом простого герпеса. Проблемы репродукции. 2020;26(2):79-86. DOI:10.17116/repro20202602179; Крупин В.Н., Белова А.Н., Крупин А.В. Лечение больных хроническим бактериальным простатитом. Вестник урологии. 2019;7(1):26-37. DOI:10.21886/2308-6424-2019-7-1-26-37; Khattak AS, Raison N, Hawazie A, Khan A, Brunckhorst O, Ahmed K. Contemporary Management of Chronic Prostatitis. Cureus. 2021;13(12):e20243. DOI:10.7759/cureus.20243; Miyake M, Tatsumi Y, Ohnishi K, Fujii T, Nakai Y, Tanaka N, Fujimoto K. Prostate diseases and microbiome in the prostate, gut, and urine. Prostate Int. 2022;10(2):96-107. DOI:10.1016/j.prnil.2022.03.004; Евдокимов В.В., Ковалык В.П., Малиновская В.В., Шувалов А.Н., Кущ А.А. Диагностика и лечение абактериального ХП/СХТБ III, ассоциированного с герпесвирусами. Урология. 2019;3:23-30. DOI:10.18565/urology.2019.3.23-30; Строцкий А.В., Гаврусев А.А., Рубаник Л.В., Полещук Н.Н. Является ли абактериальный простатит абактериальным? Урология. 2015;(4):102-106. eLIBRARY ID: 24344580; Ковалык В.П., Юрлов К.И., Гомберг М.А., Шувалов А.Н., Малиновская В.В., Кущ А.А. Ассоциация вируса герпеса человека 6 типа с синдромом хронической тазовой боли: клиническое наблюдение. РМЖ. 2021;29(6):53-55. eLIBRARY ID: 46433903; Xiao J, Ren L, Lv H, Ding Q, Lou S, Zhang W, Dong Z. Atypical microorganisms in expressed prostatic secretion from patients with chronic prostatitis/chronic pelvic pain syndrome: microbiological results from a case-control study. Urol Int. 2013;91(4):410-6. DOI:10.1159/000350934; Naumenko V, Tyulenev Y, Kurilo L, Shileiko L, Sorokina T, Evdokimov V, Yakovleva V, Kovalyk V, Malolina E, Kulibin A, Gomberg M, Kushch A. Detection and quantification of human herpes viruses types 4-6 in sperm samples of patients with fertility disorders and chronic inflammatory urogenital tract diseases. Andrology. 2014;2(5):687-94. DOI:10.1111/j.2047-2927.2014.00232.x; Zhu S, Viejo-Borbolla A. Pathogenesis and virulence of herpes simplex virus. Virulence. 2021;12(1):2670-2702. DOI:10.1080/21505594.2021.1982373; Sadowski LA, Upadhyay R, Greeley ZW, Margulies BJ. Current Drugs to Treat Infections with Herpes Simplex Viruses-1 and -2. Viruses. 2021;13(7):1228. DOI:10.3390/v13071228; Rocha MP, Amorim JM, Lima WG, Brito JCM, da Cruz Nizer WS. Effect of honey and propolis, compared to acyclovir, against Herpes Simplex Virus (HSV)-induced lesions: A systematic review and meta-analysis. J Ethnopharmacol. 2022;287:114939. DOI:10.1016/j.jep.2021.114939; Баркевич О.А. Противовирусные эффекты комплекса природных цитокинов (препарат Суперлимф) на модели герпесвирусной инфекции in vitro: Дис. …канд. мед. наук. Москва; 2005. https://www.dissercat.com/content/protivovirusnye-effekty-kompleksa-prirodnykh-tsitokinov-preparat-superlimfna-modeli-gerpes; https://www.urovest.ru/jour/article/view/668
-
10Academic Journal
Συγγραφείς: M. A. Levkovich, L. V. Kravchenko, I. I. Кrukier, N. V. Ermolova, V. V. Avrutskaya, L. V. Kaushanskaya, A. Yu. Levkovich, М. А. Левкович, Л. В. Кравченко, И. И. Крукиер, Н. В. Ермолова, В. В. Авруцкая, Л. В. Каушанская, А. Ю. Левкович
Πηγή: Rossiyskiy Vestnik Perinatologii i Pediatrii (Russian Bulletin of Perinatology and Pediatrics); Том 68, № 2 (2023); 47-52 ; Российский вестник перинатологии и педиатрии; Том 68, № 2 (2023); 47-52 ; 2500-2228 ; 1027-4065
Θεματικοί όροι: вирус простого герпеса, immunity, TLR receptors, congenital infection, herpes simplex virus, иммунитет, TLR-рецепторы, врожденная инфекция
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Relation: https://www.ped-perinatology.ru/jour/article/view/1800/1360; Дегтярев Д.Н., Заплатников А.Л., Рюмина И.М. Врожденные иперинатальные инфекции. Неонатология: Национальное руководство. Под ред. Н.Н. Володина. Москва: ГЭОТАР-Медиа, 2020: 566–597.; Иванова Р.А., Васильев В.В., Рогозина Н.В., Гринева А.А., Ушакова Г.М. Врожденная герпетическая инфекция: современные подходы к профилактике, диагностике, лечению. Детские инфекции 2021; 20(4): 47–52. DOI:10.22627/2072–8107–2021–20–4–47–52; Neuberger I., Garcia J., Meyers M.L., Feygin T., Bulas D.I., Mirsky D.M. Imaging of congenital central nervous system infections. Pediatr Radiol 2018; 48(4): 513–523. DOI:10.1007/s00247–018–4092–1; Poole C.L., Kimberlin D.W. Antiviral Drugs in Newborn and Children. Pediatr Clin North Am 2017; 64(6): 14031415. DOI:10.1016/j.pcl.2017.08.014; Исаков Д.В., Исаков В.А. Простой и опоясывающий герпес (клиника, лечение и профилактика): руководство для врачей. Под ред. В.А. Исакова. Санкт-Петербург: СпецЛит, 2021; 539.; James S.H., Kimberlin D.W. Neonatal Herpes Simplex Virus Infection. Infect Dis Clin North Am 2015; 29(3): 391–400. DOI:10.1016/j.idc.2015.05.001; Drumm C.M., Caufield M.C., DeKlotz C.M., Pasieka H.B., Abubakar K.M. Intrauterine Herpes Simplex Virus Infection Presenting as a Zosteriform Eruption in a Newborn. AJP Rep 2018; 8(1): e33–e36. DOI:10.1055/s-0038–1635100; Voekt C.A., Rinderknecht T., Hirsch H.H., Blaich A., Hösli I.M. Ultrasound indications for maternal STORCH testing in pregnancy. Swiss Med Wkly 2017; 147: w14534. DOI:10.4414/smw.2017.14534; Кравченко Л.В., Левкович М.А. Механизмы иммуносупрессии при частых ОРВИ у детей раннего возраста после неонатальной цитомегаловирусной инфекции. ВИЧ-инфекция и иммуносупрессии 2017; 2(9): 34–38. DOI:10.22328/2077–9828–2017–9–3–34–38; Кравченко Л.В., Левкович М.А., Пятикова М.В. Роль полиморфизма гена интерферон-γ и интерферонопродукции в патогенезе инфекции, вызванной вирусом герпеса 6-го типа у детей раннего возраста. Клиническая лабораторная диагностика 2018; 63(6): 357–361. DOI:10.18821/0869–2084–2018–63–6–357–361; Иванова О.Н. Особенности иммунитета у детей с герпетической инфекцией. Современные проблемы науки и образования 2018; 5. https://science-education.ru/ru/article/view?id=27910 / Ссылка активна на 24.08.2022.; Левкович М.А., Кравченко Л.В., Левкович А.Ю., Пятикова М.В. Цитокиновый профиль новорожденных детей с генерализованной герпетической инфекцией. Российский иммунологический журнал 2019; 22(2–1): 368–370. DOI:10.31857/S102872210006630–8; Чурюкина Э.В. Роль и место интраназальных кортикостероидов в лечении аллергического ринита на современном этапе. РМЖ 2019; 27(3): 51–56.; Senat M.V., Anselem O., Picone O., Renesme L., Sananes N., Vauloup-Fellous C. et al. Prevention andmanagement of genital herpes simplex infection during pregnancyand delivery: Guidelines from the French College of Gynaecologists and Obstetricians (CNGOF). Eur J Obstet Gynecol Reprod Biol 2018; 224: 93–101. DOI:10.1016/j.ejogrb.2018.03.011; Клинические рекомендации [проект] по диагностике, лечению и профилактике врожденной инфекции, вызванной вирусами простого герпеса. http://www.raspm.ru/files/gerpes.pdf / Ссылка активна на 14.02.2023.; Sen J., Liu X., Roller R. Herpes simplex virus US3 tegument protein inhibits Toll-like receptor 2 signaling at or before TRAF6 ubiquitination. Virology 2013; 439(2): 65–73. DOI:10.1016/j.virol.2013.01.026; Giraldo D., Wilcox D.R., Longnecker R. The Innate Immune Response to Herpes Simplex Virus 1 Infection Is Dampened in the Newborn Brain and Can Be Modulated by Exogenous Interferon Beta To Improve Survival. mBio 2020; 11(3): e00921–20. DOI:10.1128/mBio.00921–20; Samies N.L., James S.H. Prevention and treatment of neonatal herpessimplex virus infection. Antiviral Res 2020; 176: 104721. DOI:10.31857/S102872210006630–8; Zhu S.,Viejo-Borbolla A. Pathogenesis and virulence of herpes simplex virus. Virulence 2021; 12(1): 2670–2702. DOI:10.1080/21505594.2021.1982373
-
11Academic Journal
Συγγραφείς: E. V. Venev, D. A. Lioznov, A. B. Komissarov, A. V. Fadeev, K. S. Komissarova, N. D. Yolshin, D. A. Gusev, Е. В. Венев, Д. А. Лиознов, А. Б. Комиссаров, А. В. Фадеев, К. С. Комиссарова, Н. Д. Ёлшин, Д. А. Гусев
Πηγή: Journal Infectology; Том 15, № 2 (2023); 162-164 ; Журнал инфектологии; Том 15, № 2 (2023); 162-164 ; 2072-6732 ; 10.22625/2072-6732-2023-15-2
Θεματικοί όροι: секвенирование, herpes simplex virus type 1, co-infection, sequencing, вирус простого герпеса 1-го типа, ко-инфекция
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Relation: https://journal.niidi.ru/jofin/article/view/1516/1071; Farahat, R. A., Sah, R., El-Sakka, A. A. et al. Human monkeypox disease (MPX) // Le Infezioni in Medicina.–2022.–Vol. 30, No. 3.–P. 372–391.; Bonilla-Aldana, D. K., Rodriguez-Morales, A. J. (б. д.). Is monkeypox another reemerging viral zoonosis with many animal hosts yet to be defined? // The Veterinary Quarterly.–2022.–Vol. 42, No. 1.–P. 148–150.; Magnus, P. von, Andersen, E. K., Petersen, K. B., Birch-Andersen, A. A Pox-Like Disease in Cynomolgus Monkeys // Acta Pathologica Microbiologica Scandinavica.–1959.–Vol. 46, No. 2.–P. 156–176.; Ladnyj, I. D., Ziegler, P., & Kima, E. (1972). A human infection caused by monkeypox virus in Basankusu Territory, Democratic Republic of the Congo // Bulletin of the World Health Organization.–1972.–Vol. 46, No. 5.–P. 593–597.; Bunge, E. M., Hoet, B., Chen, L. et al. The changing epidemiology of human monkeypox-A potential threat? // A systematic review. PLoS Neglected Tropical Diseases.–2022.–Vol. 16, No. 2.–P. 1/20-20/20.; Nolasco, S., Vitale, F., Geremia, A. et al. First case of monkeypox virus, SARS-CoV-2 and HIV co-infection // The Journal of Infection.–2022.; Ramoni, S., Maronese, C. A., Morini, N. et al. Syphilis and monkeypox co-infection: Coincidence, synergy or asymptomatic carriage? // Travel Medicine and Infectious Disease.–2022.–No. 50.; Zlámal, M., Bartovská, Z., Burantová, A. et al. Monkeypox and Herpes Simplex Virus Type 2 Coinfection: Case Report of Perianal Lesions in HIV-Positive Patient // Sexually Transmitted Diseases.–2022.–Vol. 49, No. 11.–P. 769–770.; URL:https://www.cdc.gov/poxvirus/monkeypox/response/2022/world-map.html (дата обращения: 23.04.2023).; URL:https://www.protocols.io/view/monkeypox-virus-qpcr-assay-ce96th9e (дата обращения: 10.12.2022).; URL:https://www.protocols.io/private/974ACB78F83911EC998C0A58A9FEAC02?step=5 (дата обращения: 10.04.2022).; https://journal.niidi.ru/jofin/article/view/1516
-
12Academic Journal
Συγγραφείς: Vasilev V.V., Rogozina N.V., Grineva A.A.
Συνεισφορές: The reported study was funded by Russian Foundation for Basic Research within research project No. 20-115-50439 “Expansion”., Статья подготовлена при финансовой поддержке гранта РФФИ по реализации научного проекта № 20-115-50439 «Экспансия».
Πηγή: Russian Journal of Infection and Immunity; Vol 11, No 4 (2021); 635-648 ; Инфекция и иммунитет; Vol 11, No 4 (2021); 635-648 ; 2313-7398 ; 2220-7619
Θεματικοί όροι: congenital infections, intrauterine infections, pregnancy, children, newborns, antenatal mortality, neonatal mortality, herpes simplex virus 1, herpes simplex virus 2, human herpes virus 6, cytomegalovirus, parvovirus B19, врожденные инфекции, внутриутробные инфекции, беременность, дети, новорожденные, антенатальная смертность, неонатальная смертность, вирус простого герпеса 1 типа, вирус простого герпеса 2 типа, вирус герпеса человека 6 типа, цитомегаловирус, парвовирус В19
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
-
13Academic Journal
Συγγραφείς: M.Ye. Fesenko, О.I. Melashchenko, M.M. Pyeshyi, V.I. Pokhylko, S.M. Tsvirenko
Πηγή: Сучасна педіатрія. Україна; № 6(102) (2019): Сучасна педіатрія. Україна; 49-54
Modern Pediatrics. Ukraine; No. 6(102) (2019): Modern pediatrics. Ukraine; 49-54
Современная педиатрия. Украина; № 6(102) (2019): Современная педиатрия. Украина; 49-54Θεματικοί όροι: Herpes simplex virus type I (HSV-1), 2. Zero hunger, вірус простого герпесу І типу, цитомегаловирус, захворюваність, morbidity, діти, дети, 16. Peace & justice, 3. Good health, цитомегаловірус, заболеваемость, children, Cytomegalovirus (CMV), вирус простого герпеса I типа
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
-
14Academic Journal
Συγγραφείς: Dyachenko, P.A., Dyachenko, A.G.
Πηγή: Tuberculosis, Lung Diseases, HIV Infection; № 3 (2018): Tuberculosis, lung diseases, HIV infection; 32-35
Туберкулез, легочные болезни, ВИЧ-инфекция; № 3 (2018): Туберкулез, легочные Болезни, ВИЧ-инфекция; 32-35
Туберкульоз, легеневі хвороби, ВІЛ-інфекція; № 3 (2018): Туберкульоз, легеневі хвороби, ВІЛ-інфекція; 32-35Θεματικοί όροι: туберкулез, менингоэнцефалит, вирус простого герпеса, tuberculosis, meningoencephalitis, herpes simplex virus, туберкульоз, менінгоенцефаліт, вірус простого герпесу, 3. Good health
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Σύνδεσμος πρόσβασης: http://tubvil.com.ua/article/view/TB2018-3-32
-
15Academic Journal
Συγγραφείς: Maltsev, D. V., Gorbenko, V. Yu.
Πηγή: Український неврологічний журнал; № 2 (2018); 74—80
Ukrainian Neurological Journal; № 2 (2018); 74—80
Украинский неврологический журнал; № 2 (2018); 74—80Θεματικοί όροι: вірус простого герпесу 2 типу, попереково‑крижовий мієліт, природні кілери, дефіцит фолатного циклу, вирус простого герпеса 2 типа, пояснично‑крестцовый миелит, естественные киллеры, дефицит фолатного цикла, herpes simplex virus type 2, lumbar‑sacral myelitis, natural killers, deficiency of folate cycle, 3. Good health
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Σύνδεσμος πρόσβασης: http://ukrneuroj.com.ua/article/view/UNZ2018274
-
16Academic Journal
Συγγραφείς: E. E. Bragina, Е. Е. Брагина
Πηγή: Andrology and Genital Surgery; Том 21, № 4 (2020); 20-30 ; Андрология и генитальная хирургия; Том 21, № 4 (2020); 20-30 ; 2412-8902 ; 2070-9781 ; 10.17650/2070-9781-2020-21-4
Θεματικοί όροι: интрагаметное инфицирование, human immunodeficiency virus, hepatitis C viruses, herpes simplex virus, cytomegalovirus, Zika virus, intragametal infection, обнаружены вирус иммунодефицита человека, вирус гепатита С, вирус простого герпеса, цитомегаловирус, вирус Зика
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Relation: https://agx.abvpress.ru/jour/article/view/454/383; Centifanto Y.M., Drylie D.M. Deardourff S.L. et al. Herpesvirus type 2 in the male genitourinary tract. Science 1972;178(4058):318–9. DOI:10.1126/science.178.4058.318.; Deture F.A., Drylie D.M., Kaufman H.E. et al. Herpesvirus type 2: study of semen in male subjects with recurrent infections. J Urol 1978;120(4):449–51. DOI:10.1016/s0022-5347(17)57225-0.; Csata S., Kulcsar G. Virus-host studies in human seminal and mouse testicular cells. Acta Chir Hung 1991;32(1):83–90.; Moore D.E., Ashley R.L., Zarutskie P.W. et al. Transmission of genital herpes by donor insemination. JAMA 1989;261(23):3441–3.; El Borai N., Inoue M., Lefevre C. et al. Detection of herpes simplex DNA in semen and menstrual blood of individuals attending an infertility clinic. J Obstet Gynaecol Res 1997;23(1):17–24. DOI:10.1111/j.1447-0756.1997.tb00799.x.; Kapranos N., Petrakou E., Anastasiadou C., Kotronias D. Detection of herpes simplex virus, cytomegalovirus, and Epstein–Barr virus in the semen of men attending an infertility clinic. Fertil Steril 2003;79 Suppl 3:1566–70. DOI:10.1016/s0015-0282(03)00370-4.; Neofytou E., Sourvinos G., Asmarianaki M. et al. Prevalence of human herpes virus types 1–7 in the semen of men attending an infertility clinic and correlation with semen parameters. Fertil Steril 2009;91(6):2487–94. DOI:10.1016/j.fertnstert.2008.03.074.; Абдулмеджидова А.Г., Торганова И.Г., Витязева И.И. и др. Влияние бессимптомной формы герпесвирусной инфекции на результаты лечения бесплодия методами вспомогательных репродуктивных технологий. Акушерство и гинекология 2009;(1):45–8.; Chen M., Cai L.Y., Kanno N. et al. Detection of human herpesviruses (HHVs) in semen of human male infertile patients. J Reprod Dev 2013;59(5):457–62. DOI:10.1262/jrd.2013-023.; Кущ А.А., Науменко В.А., Климова P.P. и др. Герпесвирусная инфекция мужских гамет и бесплодие: от экспериментальных моделей к разработке клинических рекомендаций. Вопросы вирусологии 2013;(S1):132–44.; Климова Р.Р., Чичев Е.В., Науменко В.А. и др. Вирус простого герпеса и цитомегаловирус в эякуляте мужчин: вирус простого герпеса чаще встречается при идиопатическом бесплодии и коррелирует со снижением показателей спермы. Вопросы вирусологии 2010;55(1):27–31.; Бочарова Е.Н., Шилейко Л.В., Брагина Е.Е. и др. Нарушение сперматогенеза человека: количественное исследование состава незрелых половых клеток при инфицировании сперматозоидов вирусом простого герпеса. Проблемы репродукции 2006;12(6):75–80.; Monavari S.H., Vaziri M.S., Khalili M. et al. Asymptomatic seminal infection of herpes simplex virus: impact on male infertility. J Biomed Res 2013;27(1):56–61. DOI:10.7555/JBR.27.20110139.; Kurscheidt F.A., Damke E., Bento J.C. et al. Effects of herpes simplex virus infections on seminal parameters in male partners of infertile couples. Urology 2018;113:52–8. DOI:10.1016/j.urology.2017.11.050.; Malolina E.A., Kulibin A.Y., Naumenko V.A. et al. Herpes simplex virus inoculation in murine rete testis results in irreversible testicular damage. Int J Exp Pathol 2014;95(2):120–30. DOI:10.1111/iep.12071.; Шушакова Е.К., Рублева О.В. Вирус простого герпеса как причина мужского бесплодия (клинический случай). Здоровье и образование в XXI веке 2017;19(10):146–48.; Cai L.Y., Kato T., Nakayama M. et al. HSV type 1 thymidine kinase protein accumulation in round spermatids induces male infertility by spermato-genesis disruption and apoptotic loss of germ cells. Reprod Toxicol 2009;27(1):14–21. DOI:10.1016/j.reprotox.2008.11.052.; Kulcsar G., Csata S., Nasz I. Investigations into virus carriership in human semen and mouse testicular cells. Acta Microbiol Hung 1991;38(2):127–32.; Kotronias D., Kapranos N. Detection of herpes simplex virus DNA in human spermatozoa by in situ hybridization technique. In Vivo 1998;12(4):391–4.; Науменко В.А., Климова Р.Р., Курило Л.Ф. Выявление вируса простого герпеса в мужских половых клетках при экспериментальной инфекции органной культуры семенника и в эякуляте мужчин с нарушениями фертильности. Акушерство и гинекология 2010;(3):42–6.; Брагина Е.Е., Абдумаликов Р.А., Бочарова Е.Н. и др. Внутриклеточное инфицирование сперматозоидов человека вирусами группы герпеса. Андрология и генитальная хирургия 2002;(3):81–2.; Бочарова Е.Н., Абдумаликов Р.А., Брагина Е.Е. и др. Обнаружение белков и капсидов вируса простого герпеса в сперматозоидах человека. Доклады академии наук 2003;391(6):836–41.; Бочарова Е.Н. Завалишина Л.Э., Брагина Е.Е. и др. Выявление геномной ДНК вируса простого герпеса методом гибридизации in situ в сперматозоидах человека при нарушении фертильности. Доклады академии наук 2007;412(3):417–21.; Pallier С., Tebourbi L., Chopineau-Proust S. et al. Herpesvirus, cytomegalovirus, human sperm and assisted fertilization. Hum Reprod 2002;17(5):1281–87. DOI:10.1093/humrep/17.5.1281.; Грибенча С.В., Брагина Е.Е., Абдумаликов Р.А. и др. Выявление антигена вируса простого герпеса второго типа в клетках сперматогенного эпителия инфицированных тестикул морских свинок. Бюллетень экспериментальной биологии и медицины 2007;144(7):79–83.; Бочарова Е.Н., Брагина Е.Е., Гусак Ю.К. и др. Герпетическое инфицирование сперматозоидов при неудачах использования репродуктивных технологий и спонтанном прерывании беременности. Урология 2007;(3):59–63.; Брагина Е.Е., Виноградов И.В, Сухомлинова М.Ю. и др. Улучшение результатов ИКСИ у пациентов с внутригаметным герпетическим инфицированием сперматозоидов. Андрология и генитальная хирургия 2012;(1): 65–9.; Eggert-Kruse W., Reuland M., Johannsen W. et al. Cytomegalovirus (CMV) infection-related to male and/or female infertility factors? Fertil Steril 2009;91(1):67–82. DOI:10.1016/j.fertnstert.2007.11.014.; Bresson J.L., Clavequin M.C, Mazeron M.C. et al. Risk of cytomegalovirus transmission by cryopreserved semen: a study of 635 semen samples from 231donors. Hum Reprod 2003;18(9):1881–86. DOI:10.1093/humrep/deg362.; Lang D.J., Kummer J.F., Hartley D.P. Cytomegalovirus in semen. Persistence and demonstration in extracellular fluids. N Engl J Med 1974;291(3):121–3. DOI:10.1056/NEJM197407182910303.; Wu K.H., Zhou Q.K., Huang J.H. et al. [Infection of cytomegalovirus and herpes simplex virus and morphology of the infected spermatogenic cells in infertile men (In Chinese)]. Zhonghua Nan Ke Xue 2007;13(12):1075–9.; Naumenko V., Tyulenev Y., Kurilo L. et al. Detection and quantification of human herpes viruses types 4–6 in sperm samples of patients with fertility disorders and chronic inflammatory urogenital tract diseases. Andrology 2014;2(5):687–94. DOI:10.1111/j.2047-2927.2014.00232.x.; Neighbour P.A., Fraser L.R. Murine cytomegalovirus and fertility: potential sexual transmission and the effect of this virus on fertilization in vitro. Fertil Steril 1978;30(2):216–22. DOI:10.1016/s0015-0282(16)43463-1.; Heggie A.D., Gaddis L. Effects of viral exposure of the two-cell mouse embryo on cleavage and blastocyst formation in vitro. Pediatr Res 1979;13(8):937–41. DOI:10.1203/00006450-197908000-00013.; Naumenko V.A., Tyulenev Y.A., Yakovenko S.A. et al. Detection of human cytomegalovirus in motile spermatozoa and spermatogenic cells in testis organo-typic culture. Herpesviridae 2011;2(1):7. DOI:10.1186/2042-4280-2-7.; Евдокимов В.В., Науменко В.А., Тюленев Ю.А. и др. Количественная оценка ДНК вирусов папилломы человека высокого канцерогенного риска и герпесвирусов человека у мужчин при нарушении фертильности. Вопросы вирусологии 2016;61(2):63–8.; Benova L., Mohamoud Y.A., Calvert C. et al. Vertical transmission of hepatitis C virus: systematic review and meta-analysis. Clin Infect Dis 2014;59(6):765–73. DOI:10.1093/cid/ciu447.; Debono E., Halfon P., Bourliere M. et al. Absence of hepatitis C genome in semen of infected men by polymerase chain reaction, branched DNA and in situ hybridization. Liver 2000;20(3):257–61. DOI:10.1034/j.1600-0676.2000.020003257.x.; Levy R., Bourlet T., Maertens A. et al. Pregnancy after safe IVF with hepatitis C virus RNA-positive sperm. Hum Reprod 2002;17(10):2650–53. DOI:10.1093/humrep/17.10.2650.; Bourlet T., Levy R., Maertens A. et al. Detection and characterization of hepatitis C virus RNA in seminal plasma and spermatozoon fractions of semen from patients attempting medically assisted conception. J Clin Microbiol 2002;40(9):3252–55. DOI:10.1128/jcm.40.9.3252-3255.2002.; Durazzo M., Premoli A., Di Bisceglie C. et al. Alterations of seminal and hormonal parameters: an extrahepatic manifestation of HCV infection? World J Gastroenterol 2006;12(19):3073–76. DOI:10.3748/wjg.v12.i19.3073.; Karamolahi S., Yazdi R.S., Zangeneh M. et al. Impact of hepatitis B virus and hepatitis C virus infection on sperm parameters of infertile men. Int J Reprod Biomed (Yazd) 2019;17(8):551–56. DOI:10.18502/ijrm.v17i8.4820.; Moretti E., Federico M.G., Giannerini V. et al. Sperm ultrastructure and meiotic segregation in a group of patients with chronic hepatitis B and C. Andrologia 2008;40(3):173–8. DOI:10.1111/j.1439-0272.2007.00818.x.; La Vignera S., Condorelli R.A., Vicari E. et al. Sperm DNA damage in patients with chronic viral C hepatitis. Eur J Intern Med 2012;23(1):e19–24. DOI:10.1016/j.ejim.2011.08.011.; Meseguer M., Garrido N., Gimeno C. et al. Comparison of polymerase chain reaction-dependent methods for determining the presence of human immunodeficiency virus and hepatitis C virus in washed sperm. Fertil Steril 2002;78(6):1199–202. DOI:10.1016/s0015-0282(02)04275-9.; Pasquier C., Daudin M., Righi L. et al. Sperm washing and virus nucleic acid detection to reduce HIVand hepatitis C virus transmission in serodiscordant couples wishing to have children. AIDS 2000;14(14):2093–99. DOI:10.1097/00002030-200009290-00004.; Ma M., Zhu Y., Wang D. et al. Research on the vertical transmission of hepatitis C gene from father-to-child via human sperm. Clin Lab 2016;62(1–2):1–6. DOI:10.7754/clin.lab.2015.150706.; Zhu Y., Ma M., Huang J. et al. Effects of hepatitis C virus infection on human sperm chromosomes. Clin Lab 2016;62(3):373–79. DOI:10.7754/clin.lab.2015.150705.; Foster G.R. Past, present, and future of hepatitis C treatments. Semin Liver Dis 2004;24(Suppl 2):97–104. DOI:10.7754/clin.lab.2015.150705.; Levy J.A. HIV pathogenesis: 25 years of progress and persistent challenges. AIDS 2009;23(2):147–60. DOI: 0.1097/QAD.0b013e3283217f9f.; Galvin S.R., Cohen M.S. The role of sexually transmitted diseases in HIV transmission. Nat Rev Microbiol 2004;2(1):33–42. DOI:10.1038/nrmicro794.; Ho D.D., Schooley R.T., Rota T.R. et al. HTLV-III in the semen and blood of a healthy homosexual man. Science 1984;226(4673):451–53. DOI:10.1126/science.6208608.; Ceballos A., Remes Lenicov F., Sabatté J. et al. Spermatozoa capture HIV-1 through heparansulfate and efficiently transmit the virus to dendritic cells. J Exp Med 2009;206(12):2717–33. DOI:10.1084/jem.20091579.; Muller C.H., Coombs R.W., Krieger J.N. Effects of clinical stage and immunological status on semen analysis results in human immunodeficiency virus type 1-seropositive men. Andrologia 1998;30(Suppl 1):15–22. DOI:10.1111/j.1439-0272.1998.tb02821.x.; Cito G., Coccia M.E., Fucci R. et al. Influence of male human immunodeficiency virus (HIV) and hepatitis C virus (HCV) infection on the reproductive outcomes in serodiscordant couples: a case-control study. Andrology 2019;7(6):852–58. DOI:10.1111/andr.12623.; Kehl S., Weigel M., Müller D. et al. HIV-infection and modern antiretroviral therapy impair sperm quality. Arch Gynecol Obstet 2011;284(1):229–33. DOI:10.1007/s00404-011-1898-6.; Young C.D., Tatieng S., Kongmanas K. et al. Sperm can act as vectors for HIV-1 transmission into vaginal and cervical epithelial cells. Am J Reprod Immunol 2019;82(1):e13129. DOI:10.1111/aji.13129.; Muciaccia B., Corallini S., Vicini E. et al. HIV-1 viral DNA is present in ejaculated abnormal spermatozoa of seropositive subjects. Hum Reprod 2007;22(11):2868–78. DOI:10.1093/humrep/dem288.; Zafer M., Horvath H., Mmeje O. et al. Effectiveness of semen washing to prevent human immunodeficiency virus(HIV) transmission and assist pregnancy in HIV-discordant couples: a systematic review and meta-analysis. Fertil Steril 2016;105(3):645–55.e2. DOI:10.1016/j.fertnstert.2015.11.028.; Cardona-Maya W., Velilla P., Montoya C.J. et al. Presence of HIV-1 DNA in sper matozoa from HIV-positive patients: changes in the semen parameters. Curr HIV Res 2009;7(4):418–24. DOI:10.2174/157016209788680570.; Dussaix E., Guetard D., Dauguet C. et al. Spermatozoa as potential carriers of HIV. Res Virol 1993;144(6):487–95. DOI:10.1016/s0923-2516(06)80064-6.; Baccetti B., Benedetto A., Burrini A.G. et al. HIV-particles in spermatozoa of patients with AIDS and their transfer into the oocyte. J Cell Biol 1994;127(4):903–14. DOI:10.1083/jcb.127.4.903.; Piomboni P., Baccetti B. Spermatozoon as a vehicle for HIV-1 and other viruses: a review. Mol Reprod Dev 2000;56(2 Suppl):238–42.; Wang D., Kang X.J., Li L.B. et al. In vitro study on vertical transmission of the HIV-1 gag gene by human sperm. J Med Virol 2011;83(1):16–23. DOI:10.1002/jmv.21767.; Wang D., Li L.B., Hou Z.W. et al. The integrated HIV-1 provirus in patient sperm chromosome and its transfer into the early embryo by fertilization. PLoS One 2011;6(12):e28586. DOI:10.1371/journal.pone.0028586.; Li F., Li L., Zhong Y. et al. Relationship between LTR methylation and gag expression of HIV-1 in human spermatozoa and sperm-derived embryos. PLoS One 2013;8(1):e54801. DOI:10.1371/journal.pone.0054801.; Gao Y.S., Huang T.H., Wang D. et al. In vivo study on vertical transmission of the HIV-1 gag gene via mouse oocytes. Curr HIV Res 2009;7(5):562–8. DOI:10.2174/157016209789346237.; Carvalho W.A., Catafesta E., Rodart I.F. et al. Prevention of HIV transmission with sperm washing within fertile serodiscordant couples undergoing non-stimulated intrauterine insemination. AIDS Care 2020;16:1–8. DOI:10.1080/09540121.2020.1739201.; Ezeonwumelu I., Bártolo I., Martin F. et al. Accidental father-to-son HIV-1 transmission during the seroconversion period. AIDS Res Hum Retroviruses 2018;34(10):857–62. DOI:10.1089/AID.2018.0060.; Murugan S., Anburajan R. Father to child transmission of human immunodeficiency virus disease while sero-discordant status of the mother is maintained. Indian J Sex Transm Dis AIDS 2013;34(1):60–1. DOI:10.4103/0253-7184.112945.; Cardona Maya W.D., Rugeles M.T. Father-to-child HIV transmission: do not forget sperm cells as vectors. AIDS Res Hum Retroviruses 2019;35(9):785. DOI:10.1089/AID.2019.0055.; Mlakar J., Korva M., Tul N. et al. Zika virus associated with microcephaly. N Engl J Med 2016;374(10):951–8. DOI:10.1056/NEJMoa1600651.; Halabi J., Jagger B.W., Salazar V. et al. Zika Virus causes acute and chronic prostatitis in mice and macaques. J Infect Dis 2020;221(9):1506–17. DOI:10.1093/infdis/jiz533.; Siemann D.N., Strange D.P., Maharaj P.N. et al. Zika virus infects human sertoli cells and modulates the integrity of the in vitro blood-testis barrier model. J Virol 2017;91(22): e00623-17. DOI:10.1128/JVI.00623-17.; Peregrine J., Gurung S., Lindgren M.C. et al. Zika virus infection, reproductive organ targeting, and semen transmission in the male olive baboon. J Virol 2019;94(1):e01434-19. DOI:10.1128/JVI.01434-19.; Mansuy J.M., Suberbielle E., Chapuy-Regaud S. et al. Zika virus in semen and spermatozoa. Lancet Infect Dis 2016;16(10):1106–7. DOI:10.1016/S1473-3099(16)30336-X.; Oliveira D.B., Durigon G.S., Mendes É.A. et al. Persistence and intra-host genetic evolution of Zika virus infection in symptomatic adults: a special view in the male reproductive system. Viruses 2018;10(11):E615. DOI:10.3390/v10110615.; Atkinson B., Hearn P., Afrough B. et al. Detection of Zika virus in semen. Emerg Infect Dis 2016;22(5):940. DOI:10.3201/eid2205.160107.; Cohen J. Where has all the Zika gone? Science 2017;357(6352):631–2. DOI:10.1126/science.357.6352.631.; Borges E.D., Vireque A.A., Berteli T.S. et al. An update on the aspects of Zika virus infection on male reproductive system. J Assist Reprod Genet 2019;36(7):1339–49. DOI:10.1007/s10815-019-01493-y.; Hoffmann M., Kleine-Weber H., Schroeder S. et al. SARS-CoV-2 cell entry depends on ACE2 and TMPRSS2 and is blocked by a clinically proven protease inhibitor. Cell 2020;181(2):271–80. DOI:10.1016/j.cell.2020.02.052.; Pan F., Xiao X., Guo J. et al. No evidence of SARS-CoV-2 in semen of males recovering from COVID-19. Fertil Steril 2020;113(6):1135–9. DOI:10.1016/j.fertnstert.2020.04.024.; Yang M., Chen S., Huang B. et al. Pathological findings in the testes of COVID-19 patients: clinical implications. Eur Urol Focus 2020;6:1124–29. DOI:10.1016/j.euf.2020.05.009.; Bian X.W. Autopsy of COVID-19 patients in China. Natl Sci Rev 2020;7:1414–8. DOI:10.1093/nsr/nwaa123.; Achua J.K., Chu K.Y., Ibrahim E. et al. Histopathology and ultrastructural finding of fatal COVID-19 infection on testis. World J Mens Health 2021;39(1):65–74. DOI:10.5534/wjmh.200170.; Li D., Jin M., Bao P. et al. Clinical characteristics and results of semen tests among men with coronavirus disease 2019. JAMA Netw Open 2020;3:e208292.; Zafar M.I., Li H. COVID-19 and impairment of spermatogenesis: Implications drawn from pathological alterations in testicles and seminal parameters. EClinicalMedicine 2020;29:100671. DOI:10.1016/j.eclinm.2020.100671.; Selvaraj K., Ravichandran S., Krishnan S. et al. Testicular atrophy and hypothalamic pathology in COVID-19: possibility of the incidence of male infertility and HPG axis abnormalities. Reprod Sci 2021 Jan 7;1-8. DOI:10.1007/s43032-020-00441-x.; Cardona Maya W.D., Du Plessis S.S., Velilla P.A. SARS-CoV-2 and the testis: similarity to other viruses and routes of infection. Reprod Biomed Online 2020;40(6):763–4. DOI:10.1016/j.rbmo.2020.04.009.; Ali B.A., Huang T.H., Xie Q.D. Detection and expression of hepatitis B virus X gene in one and two-cell embryos from golden hamster oocytes in vitro fertilized with human spermatozoa carrying HBV DNA. Mol Reprod Dev 2005;70(1):30–6. DOI:10.1002/mrd.20185.; Foresta C., Patassini C., Bertoldo A. et al. Mechanism of human papillomavirus binding to human spermatozoa and fertilizing ability of infected spermatozoa. PLoS One 2011;6(3):e15036. DOI:10.1371/journal.pone.0015036.; Garolla A., Engl B., Pizzol D. et al. Spontaneous fertility and in vitro fertilization outcome: new evidence of human papillomavirus sperm infection. Fertil Steril 2016;105(1):65–72.e1. DOI:10.1016/j.fertnstert.2015.09.018.; Kong Y., Liu Y., Liu. X. et al. Relationship between the mechanism of hepatitis B virus father-infant transmission and pregnancy outcome. Arch Gynecol Obstet 2017;295(1):253–57. DOI:10.1007/s00404-016-4231-6.; Hao S.L., Ni F.D., Yang W.X. The dynamics and regulation of chromatin remodeling during spermiogenesis. Gene 2019;706:201–10. DOI:10.1016/j.gene.2019.05.027.; Colaco S., Sakkas D. Paternal factors contributing to embryo quality. J Assist Reprod Genet 2018;35(11):1953–68. DOI:10.1007/s10815-018-1304-4.; https://agx.abvpress.ru/jour/article/view/454
-
17Academic Journal
Συγγραφείς: V. V. Neroev, O. S. Slepova, L. A. Kovaleva, G. I. Krichevskaya
Πηγή: Российский офтальмологический журнал, Vol 10, Iss 3, Pp 56-61 (2018)
Θεματικοί όροι: бактериальные язвы роговицы, вирус простого герпеса, вирус эпштейна-барр, вирус герпеса человека 6 типа, вирус герпеса человека 7 типа, пцр, corneal bacterial ulcers, herpes simplex virus, human herpes virus type 6, human herpes virus type 7, pcr, epstein-barr virus, Ophthalmology, RE1-994
Περιγραφή αρχείου: electronic resource
Relation: https://roj.igb.ru/jour/article/view/109; https://doaj.org/toc/2072-0076; https://doaj.org/toc/2587-5760
Σύνδεσμος πρόσβασης: https://doaj.org/article/51fcd854f80f4657a0d22836c7c5eab7
-
18Academic Journal
Συγγραφείς: Kovalenko, K. E., Policarpova, I. I., Коваленко, К. Е., Поликарпова, И. И.
Θεματικοί όροι: HERPES SIMPLEX VIRUS, HERPES-VIRAL INFECTION, CONGENITAL HERPETIC INFECTION, HERPETIC MENINGOENCEPHALITIS, ВИРУС ПРОСТОГО ГЕРПЕСА, ГЕРПЕС-ВИРУСНАЯ ИНФЕКЦИЯ, ВРОЖДЕННАЯ ГЕРПЕТИЧЕСКАЯ ИНФЕКЦИЯ, ГЕРПЕТИЧЕСКИЙ МЕНИНГОЭНЦЕФАЛИТ
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Relation: Уральский медицинский журнал. 2020. № 4(187).; http://elib.usma.ru/handle/usma/18982
Διαθεσιμότητα: http://elib.usma.ru/handle/usma/18982
-
19Academic Journal
Συγγραφείς: Khudobyak, V. О.
Πηγή: Actual Problems of Pediatry, Obstetrics and Gynecology; No. 2 (2015) ; Актуальные вопросы педиатрии, акушерства и гинекологии; № 2 (2015) ; Актуальні питання педіатрії, акушерства та гінекології; № 2 (2015) ; 2415-301X ; 2411-4944 ; 10.11603/24116-4944.2015.2
Θεματικοί όροι: treatmant of cervix pathology, human papillomavirus, herpes simplex virus, cytomegalovirus, Epstein- Barr virus, лечение патологии шейки матки, вирус папилломы человека, цитомегаловирус, вирус простого герпеса 1/2 типов, вирус Эпштейн-Барр, лікування патології шийки матки, вірус папіломи людини, цитомегаловірус, вірус простого герпесу 1/2 типів, вірус Епштейн-Барр
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Relation: https://ojs.tdmu.edu.ua/index.php/act-pit-pediatr/article/view/4818/4455; https://repository.tdmu.edu.ua//handle/123456789/14452
-
20Academic Journal
Συγγραφείς: Michal Drobný, Dušan Krkoška, Gabriela Sobolová, Martin Babušík, Silvia Učňová, Beata Drobná Sániová, Lenka Tulejová, Daniel Priadka, М. Дробни, Д. Кркошка, Г. Соболова, М. Бабушик, С. Учнова, Б. Дробна Саниова, Л. Тулейова, Д. Прядка
Πηγή: General Reanimatology; Том 16, № 2 (2020); 41-51 ; Общая реаниматология; Том 16, № 2 (2020); 41-51 ; 2411-7110 ; 1813-9779 ; 10.15360/1813-9779-2020-2
Θεματικοί όροι: вирус простого герпеса, encephalitis, power spectral analysis, brain mapping, HSV1, HSV2, Herpes Simplex Encephalitis, энцефалит, спектральный анализ мощности, картирование мозга
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Relation: https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1883/1392; Mayer V., Drobný M., Mittrová E. Pomalé vírusové neuroinfekcie. Edition, Osveta, Martin, 1983, 407p.; Xu F., Sternburg M., Kottiri B., McQuilan G., Lee F., Nahmias A. Berman S., Markowitz L. Trends in Herpes Simplex Virus Type1 and Type 2 Seroprevalence in the United States. AMA. 2006; 8. 296 (8): 964–973. PMID: 16926356 DOI:10.1001/jama.296.8.964; Whitley R.J. Herpes simplex encephalitis: adolescents and adults. Antiviral Res. 2006; 71 (2–3): 141–148. PMID: 16675036 DOI:10.1016/j.antiviral.2006.04.002; Whitley R.J., Gnann J.W. Viral encephalitis: familiar infections and emerging pathogens. Lancet. 2002; 359 (9305): 507–513. PMID: 11853816 DOI:10.1016/S0140-6736(02)07681-X; Pandian J.D., Thomas S.V., Santoshkumar B., Radhakrishnan K., Sarma P.S., Joseph S., Kesavadas C. Epilepsia partialis continua-a clinical and electroencephalography study. Seizure. 2002; 11 (7): 437–441.; Varatharaj A., Nicoll James A.R., Pelosi E., Pinto A.A. Corticosteroid-responsive focal granulomatous herpes simplex type-1 encephalitis in adults. Practical Neurology. 2017; 17 (2): 140–144. PMID: 28153849 DOI:10.1136/practneurol-2016-001474; Sániová B., — Drobný M., Lehotský J., Šulaj M., Schudichová J: Biochemical and clinical improvement of cytotoxic state by amantadine sulphate In: Cellular and Molecular Neurobiology. 2006; 26 (7–8): 1473–1480. PMID: 16710757 DOI:10.1007/s10571-006-9033-0; Saniova B., Drobny M., Kneslova L., Minarik M. The outcome of patients with severe head injuries treated with amantadine sulphate. J Neural Transm. 2004; 111 (4): 511–514. PMID: 15057520 DOI:10.1007/s00702-004-0112-4; Wang Y., Qin Z.H. Molecular and cellular mechanisms of excitotoxic neuronal death. Apoptosis. 2010; 15: 1382–1402. DOI:10.1007/s10495-010-0481-0; Bien C.G., Bauer J., Deckwerth T.L., Wiendl H., Deckert M., Wiestler O.D., Schramm J., Elger C.E., Lassmann H. Destruction of neurons by cytotoxic T cells: a new pathogenic mechanism in Rasmussen’s encephalitis. Ann Neurol. 2002; 51 (3): 11–18. DOI:10.1002/ana.10100; O’Rourke D.J., Bergin A., Rotenberg A., Peters J., Gorman M., Poduri A., Cryan J., Lidov H., Madsen J., Harini C. Rasmussen’s encephalitis presenting as focal cortical dysplasia. Epilepsy Behav Case Rep 2014; 2, 86–89. PMID: 25667877 PMCID: PMC4307873 DOI:10.1016/j.ebcr.2014.01.009; Frigeri T., Hemb M., Paglioli E., Hoefel J.R., Silva V., Vinters H., Palmini A. Bilateral Rasmussen’s encephalitis associated with type II focal cortical dysplasia: dormant ‘second’ epileptogenic zone in contralateral disease. Epilepsy Behav Case Rep. 2013; 1: 66–68. PMID: 21216675 DOI:10.1016/j.yebeh.2010.12.004; Prayson R.A. Dual pathology in Rasmussen’s encephalitis: a report of coexistent focal cortical dysplasia and review of the literature. Case Rep Pathol. 2012; 2012: 1–4. PMID: 23056977 PMCID: PMC3465884 DOI:10.1155/2012/569170; Palmer C.A., Geyer J.D., Keating J.M., Gilliam F., Kuzniecky R.I., Morawetz R.B., Bebin E.M. Rasmussen’s encephalitis with concomitant cortical dysplasia: the role of GluR3. Epilepsia. 1999; 40: 242–247. PMID: 9952274 DOI:10.1111/j.1528-1157.1999.tb02082.x; Buzsáki G., Wang X. J. Mechanisms of Gamma Oscillations. Annu. Rev. Neurosci. 2012; 35: 203–225. PMID: 22443509 PMCID: PMC4049541 DOI:10.1146/annurev-neuro-062111-150444; Mukamel E. A., Pirondini Elvira., Babadi B.W., Kin F. K., Pierce E. T. P., Harrell P.G., Walsh J. L., Salazar-Gomez A. F., Cash S. S., Eskandar E. N., Weiner V. S., Brown E. N., Purdon. P.L. A Transition in Brain State during Propofol-Induced Unconsciousness. Journal of Neuroscience. 2014, 34 (3) 839–845. DOI:10.1523/JNEUROSCI.5813-12.2014; Cannon J., McCarthy M.M., Lee S., Lee J., Börgers Ch., Whittington M., Kopell N. Review Neurosystems; brain rhythms and cognitive processing. Eur J Neurosci. 2014; 39 (5): 705–719. PMID: 24329933 PMCID: PMC4916881 DOI:10.1111/ejn.12453; Fischer M., Drobny M., Saniova B., Bakosova E., Hamzik J., Schnierer M.,Osinova D. Electrical changes in deeper cortical structures during balanced general anesthesia with the aim on inhalation anesthetics effects. Acta Medica Martiniana. 2015; 15 (3): 21–29. DOI:10.1515/acm-2015-0014; Press C., Wallace A., Chapman K.E. The Janus-faced nature of Rasmussen’s encephalitis. Semin Pediatr Neurol. 2014; 21, 129–136. PMID: 25149947 DOI:10.1016/j.spen.2014.04.018; Castellano J.F., Meyer J.A., Lado F.A. A Case Series of Adult-Onset Rasmussen’s Encephalitis: Diagnostic and Therapeutic Challenges, Front Neurol. 2017; 8, 564. PMID: 29118737 PMCID: PMC5660978 DOI:10.3389/fneur.2017.00564; Bien C.G., Widman G., Urbach H., Sassen R., Kuczaty S., Wiestler O.D., Schramm J., Elger C.E. The natural history of Rasmussen’s encephalitis. Brain. 2002; 125 (8): 1751–1759. DOI:10.1093/brain/awf176; Eggers C., Burghaus L., Fink G.R., Dohmen C. Epilepsia partialis continua responsive to intravenous levetiracetam. Seizure. 2009; 18 (10): 716–718. PMID: 19836263 DOI:10.1016/j.seizure.2009.09.005; Pardo C.A., Vining E.P., Guo L., Skolasky R.L., Carson B.S., Freeman J.M. The pathology of Rasmussen syndrome: stages of cortical involvement and neuropathological studies in 45 hemispherectomies. Epilepsia. 2004; 45 (5): 516–526. DOI:10.1111/j.0013-9580.2004.33103.x; Bien C.G., Granata T., Antozzi C., Cross J.H., Dulac O., Kurthen M., Lassmann H., Mantegazza R., Villemure J.-G., Spreafico R., Elger C.E. Pathogenesis, diagnosis and treatment of Rasmussen encephalitis: a European consensus statement. Brain. 2005; 128 (3): 454-471. PMID: 15689357; Takei H., Wilfong A., Malphrus A., Yoshor D., Hunter J.V., Armstrong D.L., Bhattacharjee M.B. Dual pathology in Rasmussen’s encephalitis: a study of seven cases and review of the literature. Neuropathology. 2009; 30: 381–391. PMID: 20051019 DOI:10.1111/j.1440-1789.2009.01079.x; Cheong J.Y., Wong C., Bleasel A., Varikatt W., Ng T., Dexter M.A. Late onset Rasmussen’s encephalitis with triple pathology. J Clin Neurosci. 2009; 16: 1677–1681. PMID: 19800797 DOI:10.1016/j.jocn.2009.02.042; Yacubian E.M., Rosemberg S., Marie S.K., Valério R.M., Jorge C.L., Cukiert A. Double pathology in Rasmussen’s encephalitis: etiologic considerations. Epilepsia. 1996; 37 (5): 495–500. PMID: 8617180 DOI:10.1111/j.1528-1157.1996.tb00597.x; Robitaille Y. Neuropathologic aspects of chronic encephalitis. In: Andermann F., editor. Chronic encephalitis and epilepsy Rasmussen’s syndrome. Boston: Butterworth-Heinemann; 1991: 79–110.; Varadkar S., Bien C.G., Kruse C.A., Jensen F.E., Pardo C.A., Vincent A., Mathern G.W., Cross J.H. Rasmussen’s encephalitis: clinical features, pathobiology, and treatment advances. Lancet Neurol. 2014; 13 (2): 195–205. DOI:10.1016/S1474-4422(13)70260-6; Eggers C., Burghaus L., Fink G.R., Dohmen Ch. Epilepsia partialis continua responsive to intravenous levetiracetam. Seizure. 2009; 18 (10): 716–718. PMID: 19836263 DOI:10.1016/j.seizure.2009.09.005; https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1883