A pilot study of the clinical significance and outcomes of infections in the ICU caused by colistin-resistant Klebsiella pneumoniae ; Пилотное исследование клинического значения и исходов инфекций в ОРИТ, вызванных колистин-резистентной Klebsiella pneumoniae

Authors: I. N. Sychev, O. V. Ignatenko, S. V. Yakovlev, L. V. Fedina, E. N. Burmistrova, M. P. Suvorova, T. D. Rastvorova, E. V. Strigunkova, R. Kh. Mukhamadiev, И. Н. Сычев, О. В. Игнатенко, С. В. Яковлев, Л. В. Федина, Е. Н. Бурмистрова, М. П. Суворова, Т. Д. Растворова, Е. В. Стригункова, Р. Х. Мухамадиев

Contributors: The work was supported by the grant Autonomous non-commercial organization «Moscow Center for Innovative Technologies in Healthcare» № 1612-2/22, «Development of a decision support system for anesthesiologists-resuscitators when prescribing antibiotic therapy in case of infection caused by extremely resistant strains of Gram-negative bacteria – Klebsiella pneumoniae, Acinetobacter baumannii, Pseudomonas aeruginosa »., Работа выполнена при поддержке гранта Автономная некоммерческая организация «Московский центр инновационных технологий в здравоохранении» № 1612-2/22, «Разработка системы поддержки принятия решений для врачей анестезиологов-реаниматологов при назначении антибактериальной терапии в случае инфекции, вызванной экстремально резистентными штаммами грамотрицательных бактерий – Klebsiella pneumoniae, Acinetobacter baumannii, Pseudomonas aeruginosa».

Source: Messenger of ANESTHESIOLOGY AND RESUSCITATION; Том 21, № 1 (2024); 24-34 ; Вестник анестезиологии и реаниматологии; Том 21, № 1 (2024); 24-34 ; 2541-8653 ; 2078-5658

Subject Terms: антибактериальная терапия, antimicrobial resistance, colistin resistance, Enterobacterales, carbapenemases, polymyxins, antibiotic therapy, антимикробная резистентность, колистинорезистентность, карбапенемазы, полимиксины

File Description: application/pdf

Relation: https://www.vair-journal.com/jour/article/view/925/687; Агеевец В. А., Сулян О. С., Авдеева А. А. и др. Сравнительная активность карбапенемных антибиотиков в отношении грамотрицательных продуцентов карбапенемаз различных групп // Антибиотики и Химиотерапия. – 2022. – T. 67, № 1–2. – C. 9–15. DOI:10.37489/0235-2990-2022-67-1-2-9-15.; Быков А. О., Суворова М. П., Проценко Д. Н. и др. Анализ структуры бактериемий и чувствительности к антибиотикам микроорганизмов, выделенных в отделениях реанимации и интенсивной терапии в скоропомощном стационаре в период с 2003 по 2021 г.: ретроспективное наблюдательное исследование // Вестник интенсивной терапии имени А. И. Салтанова. – 2023. – № 2. – С. 55–65. DOI:10.21320/1818-474X-2023-2-55-65.; Лазарева И. В., Агеевец В. А., Ершова Т. А. и др. Распространение и антибактериальная резистентность грамотрицательных бактерий, продуцентов карбапенемаз, в Санкт-Петербурге и некоторых других регионах Российской Федерации // Антибиотики и Химиотерапия. – 2016. – T. 61, № 11–12. – С. 28–38.; Яковлев С. В., Суворова М. П., Белобородов В. Б. и др. Распространенность и клиническое значение нозокомиальных инфекций в лечебных учреждениях России: исследование ЭРГИНИ //Антибиотики и химиотерапия. – 2016. – Т. 61, № 5–6. – С. 32–42.; Яковлев С. В., Суворова М. П., Быков А. О. Инфекции, вызванные карбапенеморезистентными энтеробактериями: эпидемиология, клиническое значение и возможности оптимизации антибактериальной терапии // Антибиотики и химиотерапия. – 2020. – Т. 65, № 5–6. – С. 41–69. DOI:10.37489/0235-2990-2020-65-5-6-41-69.; Ageevets V. A., Partina I. V., Lisitsyna E. S. et al. Emergence of carbapenemase-producing Gram-negative bacteria in Saint Petersburg, Russia // International Journal of Antimicrobial Agents. – 2014. – Vol. 44, № 2. – P. 152–155. DOI:10.1016/j.ijantimicag.2014.05.004.; Aghapour Z., Gholizadeh P., Ganbarov K. et al. Molecular mechanisms related to colistin resistance in Enterobacteriaceae // Infection and Drug Resistance. – 2022. – Vol. 10, № 10. – P. 2034. DOI:10.2147/IDR.S199844.; Attalla E. T., Khalil A. M., Zakaria A. S. et al. Genomic characterization of colistin-resistant Klebsiella pneumoniae isolated from intensive care unit patients in Egypt // Annals of Clinical Microbiology and Antimicrobials. – 2023. – Vol. 22, № 1. – P. 82. DOI:10.1186/s12941-023-00632-9.; Balkan I. I., Alkan M., Aygun G. et al. Colistin resistance increases 28-day mortality in bloodstream infections due to carbapenem-resistant Klebsiella pneumoniae // European Journal of Clinical Microbiology & Infectious Diseases: Official Publication of the European Society of Clinical Microbiology. – 2021. – Vol. 40, № 10. – P. 2161–2170. DOI:10.1007/s10096-020-04124-y.; Balkhair A., Saadi K. A., Adawi B. A. Epidemiology and mortality outcome of carbapenem- and colistin-resistant Klebsiella pneumoniae, Escherichia coli, Acinetobacter baumannii, and Pseudomonas aeruginosa bloodstream infections // IJID regions. – 2023. – Vol. 7. – P. 1–5. DOI:10.1016/j.ijregi.2023.01.002.; Ben-Chetrit E., Mc Gann P., Maybank R. et al. Colistin-resistant Klebsiella pneumoniae bloodstream infection: old drug, bad bug // Archives of Microbiology. – 2021. – Vol. 203, № 6. – P. 2999–3006. DOI:10.1007/s00203-021-02289-4.; Brink A. J. Epidemiology of carbapenem-resistant Gram-negative infections globally // Current Opinion in Infectious Diseases. – 2019. – Vol. 32, № 6. – P. 609–616. DOI:10.1097/QCO.0000000000000608.; Bush K., Bradford P. A. Epidemiology of β-lactamase-producing pathogens // Clinical Microbiology Reviews. – 2020. – Vol. 33, № 2. – P. e00047–19. DOI:10.1128/CMR.00047-19.; Conceicao-Neto O. C., da Costa B. S., Pontes L. da S. et al. Polymyxin resistance in clinical isolates of K. pneumoniae in Brazil: update on molecular mechanisms, clonal dissemination and relationship with KPC-producing strains // Frontiers in Cellular and Infection Microbiology. – 2022. – Vol. 12. – P. 898125. DOI:10.3389/fcimb.2022.898125.; Das S. The crisis of carbapenemase-mediated carbapenem resistance across the human-animal-environmental interface in India // Infectious Diseases Now. – 2023. – Vol. 53, № 1. – P. 104628. DOI:10.1016/j.idnow.2022.09.023.; El-Mahallawy H. A., El Swify M., Abdul Hak A. et al. Increasing trends of colistin resistance in patients at high-risk of carbapenem-resistant Enterobacteriaceae // Annals of Medicine. – 2022. – Vol. 54, № 1. – P. 1–9. DOI:10.1080/07853890.2022.2129775.; Falagas M. E., Tansarli G. S., Karageorgopoulos D. E. et al. Deaths attributable to carbapenem-resistant Enterobacteriaceae infections // Emerging Infectious Diseases. – 2014. – Vol. 20, № 7. – P. 1170–1175. DOI:10.3201/eid2007.121004.; Hays J. P., Safain K. S., Almogbel M. S. et al. Extended spectrum- and carbapenemase-based β-lactam resistance in the Arabian Peninsula – a descriptive review of recent years // Antibiotics (Basel, Switzerland). – 2022. – Vol. 11, № 10. – P. 1354. DOI:10.3390/antibiotics11101354.; Huang P.-H., Chen W.-Y., Chou S.-H. et al. Risk factors for the development of colistin resistance during colistin treatment of carbapenem-resistant Klebsiella pneumoniae Infections // Microbiology Spectrum. – 2022. – Vol. 10, № 3. – P. e0038122. DOI:10.1128/spectrum.00381-22.; Kaur A., Gandra S., Gupta P. et al. Clinical outcome of dual colistin- and carbapenem-resistant Klebsiella pneumoniae bloodstream infections: A single-center retrospective study of 75 cases in India // American Journal of Infection Control. – 2017. – Vol. 45, № 11. – P. 1289–1291. DOI:10.1016/j.ajic.2017.06.028.; Livermore D. M., Mushtaq S., Morinaka A. et al. Activity of carbapenems with ME1071 (disodium 2,3-diethylmaleate) against Enterobacteriaceae and Acinetobacter spp. with carbapenemases, including NDM enzymes // The Journal of Antimicrobial Chemotherapy. – 2013. – Vol. 68, № 1. – P. 153–158. DOI:10.1093/jac/dks350.; Mariappan S., Sekar U., Kamalanathan A. Carbapenemase-producing Enterobacteriaceae: Risk factors for infection and impact of resistance on outcomes // International Journal of Applied & Basic Medical Research. – 2017. – Vol. 7, № 1. – P. 32–39. DOI:10.4103/2229-516X.198520.; Narimisa N., Goodarzi F., Bavari S. Prevalence of colistin resistance of Klebsiella pneumoniae isolates in Iran: a systematic review and meta-analysis // Annals of Clinical Microbiology and Antimicrobials. – 2022. – Vol. 21, № 1. – P. 29. DOI:10.1186/s12941-022-00520-8.; O’Driscoll N. H., Cushnie T. P. T., Matthews K. H. et al. Colistin causes profound morphological alteration but minimal cytoplasmic membrane perforation in populations of Escherichia coli and Pseudomonas aeruginosa // Archives of Microbiology. – 2018. – Vol. 200, № 5. – P. 793–802. DOI:10.1007/s00203-018-1485-3.; Panigrahi K., Pathi B. K., Poddar N. et al. Colistin Resistance among multi-drug resistant gram-negative bacterial isolates from different clinical samples of ICU patients: prevalence and clinical outcomes // Cureus. – 2022. – Vol. 14, № 8. – P. e28317. DOI:10.7759/cureus.28317.; Park S., Choi J., Shin D., Kwon K. T. et al. Conversion to colistin susceptibility by tigecycline exposure in colistin-resistant Klebsiella pneumoniae and its implications to combination therapy // International Journal of Antimicrobial Agents. – 2023. – P. 107017. DOI:10.1016/j.ijantimicag.2023.107017.; Pruss A., Kwiatkowski P., Masiuk H. et al. Analysis of the prevalence of colistin resistance among clinical strains of Klebsiella pneumoniae // Annals of agricultural and environmental medicine: AAEM. – 2022. – Vol. 29, № 4. – P. 518–522. DOI:10.26444/aaem/155253.; Ramashia M., Phofa T. D., Nkawane G. M. et al. Investigation of carbapenem-resistant Enterobacterales isolates at a tertiary laboratory in Pretoria, South Africa // Acta Microbiologica Et Immunologica Hungarica. – 2023. – Vol. 70, № 4. – P. 295–303. DOI:10.1556/030.2023.02157.; Sampaio J. L. M., Gales A. C. Antimicrobial resistance in Enterobacteriaceae in Brazil: focus on β-lactams and polymyxins // Brazilian Journal of Microbiology. – 2016. – Vol. 47. – P. 31–37. DOI:10.1016/j.bjm.2016.10.002.; Shapovalova V., Shaidullina E., Azizov I. et al. Molecular epidemiology of mcr-1-positive Escherichia coli and Klebsiella pneumoniae isolates: results from russian sentinel surveillance (2013–2018) // Microorganisms. – 2022. – Vol. 10, № 10. – P. 2034. DOI:10.3390/microorganisms10102034.; Uzairue L. I., Rabaan A. A., Adewumi F. A. et al. Global prevalence of Colistin resistance in Klebsiella pneumoniae from bloodstream infection: a systematic review and meta-analysis // Pathogens (Basel, Switzerland). – 2022. – Vol. 11, № 10. – P. 1092. DOI:10.3390/pathogens11101092.; Yousfi H., Hadjadj L., Dandachi I. et al. Colistin- and Carbapenem-resistant Klebsiella pneumoniae clinical isolates: Algeria // Microbial Drug Resistance. – 2019. – Vol. 25, № 2. – P. 258–263. DOI:10.1089/mdr.2018.0147.; Zhang H. L., Han J.H., Lapp Z. et al. Risk factors for colistin-resistant carbapenem-resistant Klebsiella pneumoniae in the postacute care setting // Open Forum Infectious Diseases. – 2022. – Vol. 9. – № 9. – P. ofac452. DOI:10.1093/ofid/ofac452.

Availability: https://www.vair-journal.com/jour/article/view/925
https://doi.org/10.24884/2078-5658-2024-21-1-24-34

Rezistența la antimicrobiene a E. coli și K. pneumoniaeizolate de la pacienții cu infecții ale tractului urinar

Authors: Anton Bivol, M., Burduniuc, A., Croitoru, C.A., Behta, E., Balan, G.G.

Source: Sănătate Publică, Economie şi Management în Medicină 97_S (4) 145-149

Subject Terms: инфекции мочевыводящих путей, E. coli, антимикробная резистентность, rezistența la antimicrobiene, antimicrobial resistance, urinary tract infection, K. pneumoniae, infecția tractului urinar

File Description: application/pdf

Access URL: https://ibn.idsi.md/vizualizare_articol/194498

Анализ структуры бактериемий и чувствительности к антибиотикам микроорганизмов, выделенных в отделениях реанимации и интенсивной терапии в скоропомощном стационаре в период с 2003 по 2021 г.: ретроспективное наблюдательное исследование

Authors: А. О. Bykov, M. P. Suvorova, D. N. Protsenko, Sergey V. Yakovlev, O. V. Ignatenko, E. N. Burmistrova, I. N. Sychev, N. P. Krotenko

Source: Вестник интенсивной терапии, Iss 2 (2023)

Subject Terms: Acinetobacter baumannii, Klebsiella pneumoniae, RC86-88.9, бактериемия, антимикробная резистентность, Medical emergencies. Critical care. Intensive care. First aid, карбапенемазы, антибиотики

Access URL: https://doaj.org/article/6bb48c2cfb8f437e84cd2716b712720d

ИНФЕКЦИОННЫЕ ОСЛОЖНЕНИЯ У ПАЦИЕНТОВ С ОНКОГЕМАТОЛОГИЧЕСКИМИ ЗАБОЛЕВАНИЯМИ НА ФОНЕ ХИМИОТЕРАПИИ: СПЕКТР ВОЗБУДИТЕЛЕЙ И ФАКТОРЫ РИСКА

Subject Terms: neutropenic fever, иммуносупрессия, oncohematological diseases, infection prevention, антимикробная резистентность, opportunistic infections, chemotherapy, оппортунистические инфекции, infectious complications, химиотерапия, immunosuppression, инфекционные осложнения, профилактика инфекций, antimicrobial resistance, нейтропеническая лихорадка, онкогематологические заболевания

КЛИНИКО-ЭПИДЕМИОЛОГИЧЕСКАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА ИНФЕКЦИЙ КРОВОТОКА, ВЫЗВАННЫХ КАРБАПЕНЕМРЕЗИСТЕНТНЫМИ ENTEROBACTERIACEAE (CRE)

Subject Terms: Epidemiology, Эпидемиология, Антимикробная резистентность, CRE, Bacteremia, Карбапенемазы, Bloodstream infection, Грам-отрицательные бактерии, Antimicrobial resistance, Carbapenemases, Бактериемия, Факторы риска, Инфекция кровотока, KPC, Carbapenem-resistant Enterobacteriaceae, Gram-negative bacteria, Clinical outcomes, Sepsis, Nosocomial infections, Risk factors, Сепсис, Карбапенемрезистентные Enterobacteriaceae, Нозокомиальные инфекции, OXA-48, Клинические исходы

ОЦЕНКА ЭФФЕКТИВНОСТИ ПРОГРАММЫ ANTIMICROBIAL STEWARDSHIP (ASP) В СНИЖЕНИИ ПОТРЕБЛЕНИЯ РЕЗЕРВНЫХ АНТИБИОТИКОВ В МНОГОПРОФИЛЬНОМ СТАЦИОНАРЕ

Subject Terms: antibiotic consumption, multidisciplinary hospital, антимикробная резистентность (АМР), DDD/100 bed-days, glycopeptides, reserve antibiotics, потребление антибиотиков, fourth generation cephalosporins, многопрофильный стационар, antimicrobial resistance (AMP), rational antibiotic therapy, гликопептиды, DDD/100 койко-дней, Antimicrobial Stewardship (ASP), резервные антибиотики, carbapenems, рациональная антибиотикотерапия, карбапенемы, цефалоспорины IV поколения

Analysis of the dynamics of Neisseria gonorrhоeaе resistance to antimicrobial drugs in the Russian Federation for the period 2005–2021 ; Анализ динамики устойчивости Neisseria gonorrhоeaе к антимикробным препаратам в РФ за период 2005–2021 гг.

Authors: Shagabieva J.Z., Nosov N.Y., Shpilevaya M.V., Deryabin D.G., Obraztsova O.A., Nikonorova E.R., Solomka V.S., Kubanov A.A.

Contributors: This research was funded by Ministry of health of Russian Federation, government assignment No. 056-00002-23-00., Исследование выполнено за счет средств государственного задания Министерства здравоохранения Российской Федерации № 056-00002-23-00.

Source: Vestnik dermatologii i venerologii; Vol 99, No 3 (2023); 53-62 ; Вестник дерматологии и венерологии; Vol 99, No 3 (2023); 53-62 ; 2313-6294 ; 0042-4609 ; 10.25208/vdv.993

Subject Terms: Neisseria gonorrhoeae, antibiotic resistance, antimicrobial agents, monitoring, антимикробная резистентность, антимикробные препараты, мониторинг

File Description: application/pdf

Relation: https://vestnikdv.ru/jour/article/view/1410/pdf; https://vestnikdv.ru/jour/article/view/1410/pdf_1; https://vestnikdv.ru/jour/article/view/1410/pdf_2; https://vestnikdv.ru/jour/article/view/1410/pdf_3; https://vestnikdv.ru/jour/article/downloadSuppFile/1410/1626; https://vestnikdv.ru/jour/article/downloadSuppFile/1410/1627; https://vestnikdv.ru/jour/article/downloadSuppFile/1410/1628; https://vestnikdv.ru/jour/article/downloadSuppFile/1410/1629; https://vestnikdv.ru/jour/article/downloadSuppFile/1410/1630; https://vestnikdv.ru/jour/article/downloadSuppFile/1410/1631; https://vestnikdv.ru/jour/article/downloadSuppFile/1410/1632; https://vestnikdv.ru/jour/article/downloadSuppFile/1410/1633; https://vestnikdv.ru/jour/article/downloadSuppFile/1410/131150; https://vestnikdv.ru/jour/article/downloadSuppFile/1410/131151; https://vestnikdv.ru/jour/article/downloadSuppFile/1410/131152; https://vestnikdv.ru/jour/article/downloadSuppFile/1410/131153; https://vestnikdv.ru/jour/article/downloadSuppFile/1410/131154; https://vestnikdv.ru/jour/article/downloadSuppFile/1410/131155; https://vestnikdv.ru/jour/article/downloadSuppFile/1410/158552; https://vestnikdv.ru/jour/article/downloadSuppFile/1410/158553; https://vestnikdv.ru/jour/article/downloadSuppFile/1410/158554; https://vestnikdv.ru/jour/article/downloadSuppFile/1410/158555; https://vestnikdv.ru/jour/article/downloadSuppFile/1410/158556; https://vestnikdv.ru/jour/article/downloadSuppFile/1410/158557; https://vestnikdv.ru/jour/article/view/1410

Availability: https://vestnikdv.ru/jour/article/view/1410
https://doi.org/10.25208/vdv1410

Antimicrobial Resistance: A Risk Factor for the Biosafety System ; Устойчивость к антимикробным средствам — фактор риска системы биобезопасности

Authors: S. N. Orekhov, A. A. Mokhov, A. N. Yavorsky, С. Н. Орехов, А. А. Мохов, А. Н. Яворский

Contributors: The study reported in this publication was carried out as part of the federal academic leadership programme Priority 2030., Работа выполнена в рамках программы Стратегического академического лидерства «Приоритет-2030»

Source: Safety and Risk of Pharmacotherapy; Том 11, № 3 (2023); 336-347 ; Безопасность и риск фармакотерапии; Том 11, № 3 (2023); 336-347 ; 2619-1164 ; 2312-7821

Subject Terms: биобезопасность, antimicrobial resistance, risk factors, legal and regulatory framework, innovative antibiotics, organisational arrangements, biosafety, антимикробная резистентность, факторы риска, нормативноправовая база, организационные мероприятия, инновационные антибиотики

File Description: application/pdf

Relation: https://www.risksafety.ru/jour/article/view/371/883; https://www.risksafety.ru/jour/article/downloadSuppFile/371/395; Супотницкий МВ. COVID-19: трудный экзамен для человечества. М.: Русская панорама; 2021.; Колбин АС, Гомон ЮМ, Балыкина ЮЕ, Белоусов ДЮ, Стрижелецкий ВВ, Иванов ИГ. Социально-экономическое и глобальное бремя COVID-19. Качественная клиническая практика. 2021;(1):24–34. https://doi.org/10.37489/2588-0519-2021-1-24-34; Орехов СН, Яворский АН. Пандемия коронавируса: риски для биобезопасности на лечебном и лабораторном уровнях. В кн.: Синюков ВН, Мохов АА, ред. Право и противодействие пандемии: возможности и перспективы: монография. М.: Проспект; 2021. С. 416–33.; Zaniboni D, Ceretti E, Gelatti U, Pezzotti M, Covolo L. Antibiotic resistance: is knowledge the only driver for awareness and appropriate use of antibiotics? Ann Ig. 2021;33(1):21–30. https://doi.org/10.7416/ai.2021.2405; Van Boeckel TP, Gandra S, Ashok A, Caudron Q, Grenfell BT, Levin SA, Laxminarayan R. Global antibiotic consumption 2000 to 2010: an analysis of national pharmaceutical sales data. Lancet Infect Dis. 2014;14(8):742–50. https://doi.org/10.1016/S1473-3099(14)70780-7; Козлов РС, Голуб АВ. Остановить темпы роста антибиотикорезистентности микроорганизмов сегодня — дать шанс на выживание человечества завтра. Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия, 2019;21(4):310–15. https://doi.org/10.36488/cmac.2019.4.310-315; Hanberger H, Diekema D, Fluit A, Jones R, Struelens M, Spencer R, Wolff M. Surveillance of antibiotic resistance in European ICUs. J Hosp Infect. 2001;48(3):161–76. https://doi.org/10.1053/jhin.2001.0987; Dolecek C, Shakoor S, Basnyat B, Okwor T, Sartorius B. Drug-resistant bacterial infections: We need urgent action and investment that focus on the weakest link. PLoS Biol. 2022;20(11):e3001903. https://doi.org/10.1371/journal.pbio.3001903; Pariente N; PLOS Biology Staff Editors. The antimicrobial resistance crisis needs action now. PLoS Biol. 2022;20(11):e3001918. https://doi.org/10.1371/journal.pbio.3001918; Aslam B, Wang W, Arshad MI, Khurshid M, Muzammil S, Rasool MH, et al. Antibiotic resistance: a rundown of a global crisis. Infect Drug Resist. 2018;11:1645–58. https://doi.org/10.2147/IDR.S173867; Давыдов ДС. Национальная стратегия Российской Федерации по предупреждению распространения устойчивости патогенных микроорганизмов к антимикробным препаратам: трудности и перспективы сдерживания одной из глобальных биологических угроз XXI века. БИОпрепараты. Профилактика, диагностика, лечение. 2018;18(1):50–6. https://doi.org/10.30895/2221-996X-2018-18-1-50-56; Кисиль ОВ, Габриэлян НИ, Малеев ВВ. Устойчивость к антибиотикам — что можно сделать? Терапевтический архив. 2023;95(1):90–5. https://doi.org/10.26442/00403660.2023.01.202040; Кузьменков АЮ, Виноградова АГ, Трушин ИВ, Эйдельштейн МВ, Авраменко АА, Дехнич АВ, Козлов РС. AMRmap — система мониторинга антибиотикорезистентности в России. Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия. 2021;23(2):198–204. https://doi.org/10.36488/cmac.2021.2.198-204; Мохов АА. Антибактериальная терапия в медицине и биологическая безопасность. В кн.: Мохов А.А., Сушкова О.В., ред. Правовые основы биоэкономики и биобезопасности: монография. М.: Проспект; 2020. С. 171–7.; Ефименко ТА, Терехова ЛП, Ефременкова ОВ. Современное состояние проблемы антибиотикорезистентности патогенных бактерий. Антибиотики и химиотерапия. 2019;64(5–6):64–8.; Hollis A., Ahmed Z. Preserving antibiotics, rationally. N Engl J Med. 2013:369(26):2474–6. https://doi.org/10.1056/nejmp1311479; Khare A. Achilles’ heel of antibiotic resistance. Nat Microbiol. 2021;6(11):1339–40. https://doi.org/10.1038/s41564-021-00985-x; Spivak ES, Cosgrove SE, Srinivasan A. Measuring appropriate antimicrobial use: attempts at opening the black box. Clin Infect Dis. 2016;63(12):1639–44. https://doi.org/10.1093/cid/ciw658; Munita JM, Arias CA. Mechanisms of antibiotic resistance. Microbiol Spectr. 2016;4(2):10.1128/microbiolspec.VMBF0016-2015. https://doi.org/10.1128/microbiolspec.VMBF-0016-2015; Reygaert WC. An overview of the antimicrobial resistance mechanisms of bacteria. AIMS Microbiol. 2018;4(3):482-501. https://doi.org/10.3934/microbiol.2018.3.482; Perry JA, Wright GD. The antibiotic resistance “mobilome”: searching for the link between environment and clinic. Front Microbiol. 2013;4:138. https://doi.org/10.3389/fmicb.2013.00138; Bennett P.M. Plasmid encoded antibiotic resistance: acquisition and transfer of antibiotic resistance genes in bacteria. Br J Pharmacol. 2009:153(Suppl. 1): S347–S357. https://doi.org/10.1038%2Fsj.bjp.0707607; Chen J, Quiles-Puchalt N, Chiang YN, Bacigalupe R, Fillol-Salom A, Juan Chee MS, et al. Genome hypermobility by lateral transduction. Science. 2018:362(6411):207–12. https://doi.org/10.1126/science.aat5867; Ringel PD, Hu D, Basler M. The role of type VI secretion system effectors in target cell lysis and subsequent horizontal gene transfer. Cell Rep. 2017:21(13):3927–40. https://doi.org/10.1016/j.celrep.2017.12.020; Van Boeckel TP, Brower C, Gilbert M, Grenfell BT, Levin SA, Robinson TP, et al. Global trends in antimicrobial use in food animals. Proc Natl Acad Sci USA. 2015;112(18):5649–54. https://doi.org/10.1073/pnas.1503141112; Ventola CL. The antibiotic resistance crisis: part 1: causes and threats. PT. 2015;40(4):277–83. PMID: 25859123; Захарова ОИ, Лискова ЕА, Михалева ТВ, Блохин АА. Антибиотикорезистентность: эволюционные предпосылки, механизмы, последствия. Аграрная наука Евро-Северо-Востока. 2018;64(3):13–21. https://doi.org/10.30766/2072-9081.2018.64.3.13-21; Ковальчук СН, Федорова ЛС, Ильина ЕН. Молекулярные механизмы микробной устойчивости к дезинфицирующим средствам. Антибиотики и химиотерапия. 2023;68(1–2):45–56. https://doi.org/10.37489/0235-2990-2023-68-1-2-45-56; Мохов АА. Стратегически значимые медицинские технологии: правовой аспект. Государство и право. 2020;(11):106–14. https://doi.org/10.31857/S102694520012528-1; Супотницкий МВ. Биологическая война. Введение в эпидемиологию искусственных эпидемических процессов и биологических поражений: монография. М.: Русская панорама; 2013.; Jansen HJ, Breeveld FJ, Stijnis C, Grobusch MP. Biological warfare, bioterrorism, and biocrime. Clin Microbiol Infect. 2014;20(6):488–96. https://doi.org/10.1111/1469-0691.12699; Кириллов ИА. Мир вступил в эпоху синтетического биологического оружия. Вестник войск РХБ защиты. 2022;6(4):303.; Miethke M, Pieroni M, Weber T, Broenstrup M, Hammann P, Halby L, et al. Towards the sustainable discovery and development of new antibiotics. Nat Rev Chem. 2021;5(10):726–49. https://doi.org/10.1038/s41570-021-00313-1; Супотницкий МВ. Механизмы развития резистентности к антибиотикам у бактерий. БИОпрепараты. Профилактика, диагностика, лечение. 2011;(2):4–13.; Ling LL, Schneider T, Peoples AJ, Spoering AL, Engels I, Conlon BP, et al. A new antibiotic kills pathogens without detectable resistance. Nature. 2015;517(7535):455–9. https://doi.org/10.1038/nature14098; Mitcheltree MJ, Pisipati A, Syroegin EA, Silvestre KJ, Klepacki D, Mason JD, et al. A synthetic antibiotic class overcoming bacterial multidrug resistance. Nature. 2021;599(7885):507–12. https://doi.org/10.1038/s41586-021-04045-6; Wang Z, Koirala B, Hernandez Y, Zimmerman M, Brady SF, et al. Bioinformatic prospecting and synthesis of a bifunctional lipopeptide antibiotic that evades resistance. Science. 2022;376(6596):991–6. https://doi.org/10.1126/science.abn4213; Ottonello A, Wyllie JA, Yahiaoui O, Sun S, Koelln RA, Homer JA, et al. Shapeshifting bullvalene-linked vancomycin dimers as effective antibiotics against multidrug-resistant gram-positive bacteria. Proc Natl Acad Sci USA. 2023;120(15):e2208737120. https://doi.org/10.1073/pnas.2208737120; Tsarenko SV, Zigangirova NA, Soloveva AV, Bondareva NE, Koroleva EA, Sheremet AB, et al. A novel antivirulent compound fluorothiazinone inhibits Klebsiella pneumoniae biofilm in vitro and suppresses model pneumonia. J Antibiot (Tokyo). 2023;76:397–405. https://doi.org/10.1038/s41429-023-00621-2; Sadykova VS, Gavryushina IA, Kuvarina AE, Markelova NN, Sedykh NG, Georgieva ML, et al. Antimicrobic activity of the lipopeptide emericellipsin A isolated from Emericellopsis alkalina against biofilm-forming bacteria. Appl Biochem Microbiol. 2020;56:292–7. https://doi.org/10.1134/S0003683820030102; Tyurin AP, Alferova VA, Paramonov AS, Shuvalov MV, Kudryakova GK, Rogozhin EA, et al. Gausemycins A,B: cyclic lipoglycopeptides from Streptomyces sp. Angew Chem Int Ed Engl. 2021;60(34):18694–703. https://doi.org/10.1002/anie.202104528; https://www.risksafety.ru/jour/article/view/371

Availability: https://www.risksafety.ru/jour/article/view/371
https://doi.org/10.30895/2312-7821-2023-11-3-336-347

Vaccination as a strategy to overcome antimicrobial resistance: a fresh look on a well-known problem ; Вакцинация как стратегия преодоления антимикробной резистентности: свежий взгляд на известную проблему

Authors: I. O. Stoma, И. О. Стома

Source: Journal Infectology; Том 15, № 1 (2023); 5-15 ; Журнал инфектологии; Том 15, № 1 (2023); 5-15 ; 2072-6732 ; 10.22625/2072-6732-2023-15-1

Subject Terms: антибиотики, antimicrobial resistance, pneumococcus, influenza, antibiotics, антимикробная резистентность, пневмококк, грипп

File Description: application/pdf

Relation: https://journal.niidi.ru/jofin/article/view/1465/1033; Clatworthy A.E., Pierson E., Hung D.T. Targeting virulence: a new paradigm for antimicrobial therapy // Nat Chem Biol. 2007. Vol. 3, N9. P. 541–548.; Baker S.J., Payne D.J., Rappuoli R., et al. Technologies to address antimicrobial resistance // Proc Natl Acad Sci U S A. 2018. Vol. 115, N51. P. 12887–12995.; Lipsitch M., Siber G.R. How Can Vaccines Contribute to Solving the Antimicrobial Resistance Problem? // mBio. 2016. Vol. 7, N3. P. e00428-e00436.; Jansen K.U., Knirsch C., Anderson A.S. The role of vaccines in preventing bacterial antimicrobial resistance. // Nat Med. 2018. Vol. 24, N1. P.10–19.; Ten health issues WHO will tackle this year [Internet]. Доступно по: https://www.who.int/news-room/spotlight/ ten-threats-to-global-health-in-2019. Ссылка активна на 15 октября 2022.; The role of vaccination in reducing antimicrobial resistance (AMR) [Internet]. Доступно по: http://www.vaccineseurope.eu/wp-content/uploads/2016/11/VE-policy-paper-on-the-role-of-vaccines-in-reducing-AMR-2016-FIN.pdf. Ссылка активна на 29 октября 2022.; Стома, И.О. Общая вакцинология: учеб.- практическое пособие / И.О. Стома // Минск: Профессиональные издания. – 2022. – 235 с.; Kennedy D.A, Read A.F. Why the evolution of vaccine resistance is less of a concern than the evolution of drug resistance // Proc Natl Acad Sci. 2018. Vol. 115, N51. P. 12878–12886.; Mallory M.L., Lindesmith L.C., Baric R.S. Vaccinationinduced herd immunity: Successes and challenges // J Allergy Clin Immunol. 2018. Vol. 142, N1. P. 64–66.; Bloom D.E., Black S., Salisbury D., et al. Antimicrobial resistance and the role of vaccines // Proc Natl Acad Sci U S A. 2018. Vol. 115, N51. P. 12868–12871.; Стома, И.О. Микробиом в медицине : руководство для врачей / И.О. Стома. – М.: ГЭОТАР-Медиа, 2020.; Lange K., Buerger M., Stallmach A., Bruns T. Effects of Antibiotics on Gut Microbiota // Dig Dis Basel Switz. 2016. Vol. 34, N3. P. 260–268.; Langdon A., Crook N., Dantas G. The effects of antibiotics on the microbiome throughout development and alternative approaches for therapeutic modulation // Genome Med. 2016. Vol. 8. P. 39.; Francino M.P. Antibiotics and the Human Gut Microbiome: Dysbioses and Accumulation of Resistances // Front Microbiol. 2016. Vol. 6. P. 1543.; Стома, И.О. Микробиом человека: монография / И.О. Стома, И.А. Карпов. – Минск: Доктор Дизайн, 2018. – 122 с.; Kennedy D.A., Read A.F. Why does drug resistance readily evolve but vaccine resistance does not? // Proc R Soc B Biol Sci. 2017. Vol. 284, N1851: 20162562.; Cohen R., Biscardi S., Levy C. The multifaceted impact of pneumococcal conjugate vaccine implementation in children in France between 2001 to 2014 // Hum Vaccines Immunother. 2016. Vol. 12, N2. P. 277–284.; Kempf M., Varon E., Lepoutre A., et al. Decline in antibiotic resistance and changes in the serotype distribution of Streptococcus pneumoniae isolates from children with acute otitis media; a 2001-2011 survey by the French Pneumococcal Network // Clin Microbiol Infect Off Publ Eur Soc Clin Microbiol Infect Dis. 2015. Vol. 21, N1. P. 35–42.; Zhou F., Shefer A., Kong Y., Nuorti J.P. Trends in acute otitis media-related health care utilization by privately insured young children in the United States, 1997-2004 // Pediatrics. 2008. Vol. 121, N2. P. 253–260.; Fireman B., Black S.B., Shinefield H.R., et al. Impact of the pneumococcal conjugate vaccine on otitis media // Pediatr Infect Dis J. 2003. Vol. 22, N1. P. 10–16.; Ginsburg A.S., Klugman K.P. Vaccination to reduce antimicrobial resistance // Lancet Glob Health. 2017. Vol. 5, N12. P. e1176– e1177.; Wang L.M., Cravo Oliveira Hashiguchi T., Cecchini M. Impact of vaccination on carriage of and infection by antibiot ic-resistant bacteria: a systematic review and meta-analysis // Clin Exp Vaccine Res. 2021. Vol. 10, N2. P. 81–92.; Tomczyk S., Lynfield R., Schaffner W., et al. Prevention of Antibiotic-Nonsusceptible Invasive Pneumococcal Disease With the 13-Valent Pneumococcal Conjugate Vaccine // Clin Infect Dis Off Publ Infect Dis Soc Am. 2016. Vol. 62, N9. P. 1119–1125.; Hampton L.M, Farley M.M, Schaffner W., et al. Prevention of antibiotic-nonsusceptible Streptococcus pneumoniae with conjugate vaccines // J Infect Dis. 2012. Vol. 205, N3. P. 401–411.; Rappuoli R., Bloom D.E., Black S. Deploy vaccines to fight superbugs // Nature. 2017. Vol. 552, N7684. P.165–167.; Peltola H., Aavitsland P., Hansen K.G., et al. Perspective: A Five-Country Analysis of the Impact of Four Different Haemophilus influenzae Type b Conjugates and Vaccination Strategies in Scandinavia // J Infect Dis. 1999. Vol. 179, N1. P. 223–229.; Hoban D., Felmingham D. The PROTEKT surveillance study: antimicrobial susceptibility of Haemophilus influenzae and Moraxella catarrhalis from community-acquired respiratory tract infections // J Antimicrob Chemother. 2002. Vol. 50, Suppl S1. P. 49–59.; Jorgensen J.H, Doern G.V, Maher L.A, et al. Antimicrobial resistance among respiratory isolates of Haemophilus influenzae, Moraxella catarrhalis, and Streptococcus pneumoniae in the United States. // Antimicrob Agents Chemother. ноябрь 1990. Vol. 34, N11. P. 2075–2080.; Buchy P., Ascioglu S., Buisson Y., et al. Impact of vaccines on antimicrobial resistance // Int J Infect Dis IJID Off Publ Int Soc Infect Dis. 2020. Vol. 90. P. 188–196.; Andrews J.R., Baker S., Marks F. Typhoid conjugate vaccines: a new tool in the fight against antimicrobial resistance // Lancet Infect Dis. 2019. Vol. 19, N1. P. e26–e30.; Kwong J.C., Maaten S., Upshur R.E.G., et al. The effect of universal influenza immunization on antibiotic prescriptions: an ecological study // Clin Infect Dis Off Publ Infect Dis Soc Am. 2009. Vol. 49, N5. P. 750–756.; Neuzil K.M., Mellen B.G., Wright P.F., et al. The effect of influenza on hospitalizations, outpatient visits, and courses of antibiotics in children // N Engl J Med. 2000. Vol. 342, N4. P. 225–231.; Buckley B.S, Henschke N., Bergman H., et al. Impact of vaccination on antibiotic usage: a systematic review and metaanalysis // Clin Microbiol Infect Off Publ Eur Soc Clin Microbiol Infect Dis. 2019. Vol. 25, N10. P. 1213–1225.; Johansson N., Kalin M., Tiveljung-Lindell A., et al. Etiology of community-acquired pneumonia: increased microbiological yield with new diagnostic methods // Clin Infect Dis Off Publ Infect Dis Soc Am. 2010. Vol. 50, N2. P. 202–209.; Kash J.C, Taubenberger J.K. The Role of Viral, Host, and Secondary Bacterial Factors in Influenza Pathogenesis // Am J Pathol. 2015. Vol. 185, N6. P. 1528–1536.; Klein E.Y., Monteforte B., Gupta A., et al. The frequency of influenza and bacterial coinfection: a systematic review and meta-analysis // Influenza Other Respir Viruses. 2016. Vol. 10, N5. P. 394–403.; Yang Y., Yao K., Ma X., et al. Variation in Bordetella pertussis Susceptibility to Erythromycin and Virulence-Related Genotype Changes in China (1970-2014). Hozbor DF, ed. // PLOS ONE. 2015. Vol. 10, N9. P. e0138941.; Liu X, Wang Z, Zhang J, Li F, Luan Y, Li H, et al. Pertussis Outbreak in a Primary School in China: Infection and Transmission of the Macrolide-resistant Bordetella pertussis // Pediatr Infect Dis J. 2018. Vol. 37, N6. P. e145– e148.; Fu P., Wang C., Tian H., et al. Bordetella pertussis Infection in Infants and Young Children in Shanghai, China 2016-2017: Clinical Features, Genotype Variations of Antigenic Genes and Macrolides Resistance // Pediatr Infect Dis J. 2019. Vol. 38, N4. P. 370–376.; Chen Z., He Q. Immune persistence after pertussis vaccination // Hum Vaccines Immunother. 2017. Vol. 13, N4. P. 744–756.; Van Effelterre T., Moore M.R., Fierens F, et al. A dynamic model of pneumococcal infection in the United States: implications for prevention through vaccination // Vaccine. 2010. Vol. 28, N21. P. 3650–3660.; Mitchell P.K., Lipsitch M., Hanage W.P. Carriage burden, multiple colonization and antibiotic pressure promote emergence of resistant vaccine escape pneumococci // Philos Trans R Soc B Biol Sci. 2015. Vol. 370, N1670: 20140342.; Temime L., Boëlle P.Y, Valleron A.J., et al. Penicillinresistant pneumococcal meningitis: high antibiotic exposure impedes new vaccine protection // Epidemiol Infect. 2005. Vol. 133, N3. P. 493–501.; Tekle Y.I., Nielsen K.M, Liu J, et al. Controlling antimicrobial resistance through targeted, vaccine-induced replacement of strains // PloS One. 2012. Vol. 7, N12. P. e50688.; Levy S.B., Marshall B. Antibacterial resistance worldwide: causes, challenges and responses // Nat Med. 2004. Vol. 10, 12 Suppl. P. S122-129.; Sherman R.E., Anderson S.A., Dal Pan G.J., et al. RealWorld Evidence – What Is It and What Can It Tell Us? // N Engl J Med. 2016. Vol. 375, N23. P. 2293–2297.; Feldman M.F, Mayer Bridwell A.E., Scott N.E., et al. A promising bioconjugate vaccine against hypervirulent Klebsiella pneumoniae // Proc Natl Acad Sci U S A. 2019. Vol. 116, N37. P.18655–18663.; Hegerle N., Choi M., Sinclair J., et al. Development of a broad spectrum glycoconjugate vaccine to prevent wound and disseminated infections with Klebsiella pneumoniae and Pseudomonas aeruginosa // PloS One. 2018. Vol. 13, N9. P. e0203143.; Bröker M., Berti F., Schneider J., et al. Polysaccharide conjugate vaccine protein carriers as a “neglected valency” – Potential and limitations // Vaccine. 2017. Vol. 35, N25. P. 3286–3294.; Ghasemi A, Mohammad N, Mautner J., et al. Immunization with a recombinant fusion protein protects mice against Helicobacter pylori infection // Vaccine. 2018. Vol. 36, N34. P. 5124–1532.; Zeng M, Mao XH, Li JX., et al. Efficacy, safety, and immunogenicity of an oral recombinant Helicobacter pylori vaccine in children in China: a randomised, double-blind, placebocontrolled, phase 3 trial. // Lancet Lond Engl. 2015. Vol. 386, N 10002. P. 1457–1464.; Riddle MS, Guerry P. Status of vaccine research and development for Campylobacter jejuni. // Vaccine. 2016. Vol. 34, N26. P. 2903–2906.; Naveed M, Jabeen K, Naz R., et al. Regulation of Host Immune Response against Enterobacter cloacae Proteins via Computational mRNA Vaccine Design through Transcriptional Modification. // Microorganisms. 2022. Vol. 10, N8. P.1621.; Lewnard J.A., Lo N.C., Arinaminpathy N., et al. Childhood vaccines and antibiotic use in low- and middle-income countries // Nature. 2020. Vol. 581, N7806. P. 94–99.; Birger R., Antillón M., Bilcke J., et al. Estimating the effect of vaccination on antimicrobial-resistant typhoid fever in 73 countries supported by Gavi: a mathematical modelling study // Lancet Infect Dis. 2022. Vol. 22, N5. P. 679–691.; Hamilton A., Haghpanah F., Hasso-Agopsowicz M., et al. Malaria Vaccine Impact on Drug-Susceptible and Resistant Cases and Deaths: A Modeling Study [Internet]. Roch ster, NY; 2022. Доступно по: https://papers.ssrn.com/abstract=4231231. Ссылка активна на 19 ноябрь 2022 г.; Kim C., Holm M., Frost I., et al. Global and Regional Burden of Attributable and Associated Bacterial Antimicrobial Resistance Avertable by Vaccination: Modelling Study [Internet]. Rochester, NY; 2022. Доступно по: https://papers.ssrn.com/ abstract=4105587. Ссылка активна на 19 ноябрь 2022 г.; https://journal.niidi.ru/jofin/article/view/1465

Availability: https://journal.niidi.ru/jofin/article/view/1465
https://doi.org/10.22625/2072-6732-2023-15-1-5-15

Analysis of the modern approaches for the prevention of antimicrobial resistance: role and place of physical and chemical research methods in vitro and the investigation of bioequivalence

Authors: Dobrova, A. O., Popov, O. S., Zupanets, I. A., Georgiyants, V. A.

Source: Upravlìnnâ, ekonomìka ta zabezpečennâ âkostì v farmacìï; № 3 (59) (2019); 18-26
Управление, экономика и обеспечение качества в фармации; № 3 (59) (2019); 18-26
Управління, економіка та забезпечення якості в фармації; № 3 (59) (2019); 18-26

Subject Terms: антимікробна резистентність, фізико-хімічні методи аналізу лікарських за- собів, дослідження біоеквівалентності, раціональна антибіотикотерапія, антимикробная резистентность, физико-химические методы анализа ле- карственных средств, изучение биоэквивалентности, рациональная антибиотикотерапия, 13. Climate action, УДК 615.011:615.035.1, antimicrobial resistance, physicochemical research of medicines, bioequivalence studies, sustainable antibiotic therapy, UDC 615.011:615.035.1, 12. Responsible consumption, 3. Good health

File Description: application/pdf

Access URL: http://uekj.nuph.edu.ua/article/download/uekj.19.25/177696
http://uekj.nuph.edu.ua/article/view/uekj.19.25/177696
http://uekj.nuph.edu.ua/article/view/uekj.19.25
http://uekj.nuph.edu.ua/article/view/uekj.19.25

Antimicrobial resistance monitoring of potential pathogens causing bloodstream infections ; Микробиологический мониторинг антимикробной резистентности потенциальных возбудителей инфекций кровотока

Authors: Zakhvatova A.S., Daryina M.G., Svetlichnaya Y.S., Zueva L.P., Aslanov B.I., Chervyakova M.A.

Source: Russian Journal of Infection and Immunity; Vol 12, No 1 (2022); 185-192 ; Инфекция и иммунитет; Vol 12, No 1 (2022); 185-192 ; 2313-7398 ; 2220-7619

Subject Terms: antimicrobial resistance of microorganisms, pathogens of bloodstream infections, epidemiological safety of medical activity, healthcare-associated infections, polyresistance of pathogens, antimicrobial therapy, антимикробная резистентность микроорганизмов, возбудители инфекций кровотока, эпидемиологическая безопасность, инфекции, связанные с оказанием медицинской помощи, полирезистентность возбудителей, антимикробная терапия

File Description: application/pdf

Relation: https://iimmun.ru/iimm/article/view/1552/1446; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/1552/5742; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/1552/5744; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/1552/5745; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/1552/5746; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/1552/5747; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/1552/5748; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/1552/5749; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/1552/5750; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/1552/5751; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/1552/5752; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/1552/5753; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/1552/5756; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/1552/5757; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/1552/5758; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/1552/5759; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/1552/5760; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/1552/5761; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/1552/7343; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/1552/7344; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/1552/7345; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/1552/7566; https://iimmun.ru/iimm/article/view/1552

Availability: https://iimmun.ru/iimm/article/view/1552
https://doi.org/10.15789/2220-7619-ARM-1552

Vaccination as a solution of the issue of resistance S. pneumoniae ; Вакцинация как вариант решения вопроса резистентности S. pneumoniae

Authors: H. P. Ruban, S. V. Struch, А. П. Рубан, С. В. Струч

Contributors: The publication was prepared with financial support by Pfizer, Moscow, Публикация подготовлена при финансовой поддержке компании Пфайзер, Москва

Source: Epidemiology and Vaccinal Prevention; Том 20, № 2 (2021); 83-92 ; Эпидемиология и Вакцинопрофилактика; Том 20, № 2 (2021); 83-92 ; 2619-0494 ; 2073-3046

Subject Terms: пневмококковая инфекция, antimicrobial resistance, pneumococcus, vaccine, pneumococcal infection, антимикробная резистентность, пневмококк, вакцина

File Description: application/pdf

Relation: https://www.epidemvac.ru/jour/article/view/1229/736; O’Neill J. Review on Antimicrobial Resistance. Antimicrobial Resistance: Tackling a Crisis for the Health and Wealth of Nations. 2014. Доступно на: https://amr-review.org/sites/default/files/AMR%20Review%20Paper%20-%20Tackling%20a%20crisis%20for%20the%20health%20and%20wealth%20of%20nations_1.pdf; ВОЗ. Глобальный план действий по борьбе с устойчивостью к противомикробным препаратам. Доступно на: https://apps.who.int/iris/bitstream/handle/10665/254884/9789244509760-rus.pdf?sequence=1.; WHO. GLASS country enrollment status, as of 16 October 2019. Доступно на: https://www.who.int/glass/country-participation/map-participation-AMR-20191016.jpg; The role of vaccination in reducing antimicrobial resistance (AMR). Доступно на: http://www.vaccineseurope.eu/wp-content/uploads/2016/11/VE-policy-paper-on-therole-of-vaccines-in-reducing-AMR-2016-FIN.pdf . Accessed: 26 Dec 2020.; Таточенко В. К., Озерецковский Н. А. Иммунопрофилактика-2018: справочник, 13-е изд., расширенное. М: Боргес; 2018. 272 с.; Kennedy DA, Read AF. 2017 Why does drug resistance readily evolve but vaccine resistance does not? Proc. R. Soc. B284: 20162562. http://dx.doi.org/10.1098/rspb.2016.2562; O’Neill J. The review on antimicrobial resistance [Internet]. Vaccines and alternative approaches: reducing our dependence on antimicrobials. February 2016. Доступно на: https://amr-review.org/sites/default/files/Vaccines%20and%20alternatives_v4_LR.pdf Accessed: 26 Dec 2020.; Claire Janoir, Agnès Lepoutre, et al. Insight Into Resistance Phenotypes of Emergent Non 13-valent Pneumococcal Conjugate Vaccine Type Pneumococci Isolated From Invasive Disease After 13-valent Pneumococcal Conjugate Vaccine Implementation in France. Open Forum Infect Dis. 2016 Feb 2;3(1) https://doi.org/10.1093/ofid/ofw020; ECDC. Invasive pneumococcal disease. Annual Epidemiological Report for 2018 Доступно на: https://www.ecdc.europa.eu/sites/default/files/documents/AER_for_2018_IPD.pdf. Accessed: 26 Dec 2020.; ECDC [Internet]. Surveillance of antimicrobial resistance in Europe 2017. Annual report of the EARS-Net. Available at: http://www.belriem.by/images/docs/problemtitov/EARS-NET2017.pdf. Accessed: 26 Dec 2020.; Намазова-Баранова Л.С., Федосеенко М.В., Вишнёва Е.А. и др. Теоретические основы и реальные результаты: обзор материалов по вакцинопрофилактике пневмококковой инфекции в мире. Педиатрическая фармакология. 2018; 15 (1): 58–74. doi:10.15690/pf.v15i1.1844).; Чучалин А.Г., Брико Н.И., Авдеев С.Н. и др. Федеральные клинические рекомендации по вакцинопрофилактике пневмококковой инфекции у взрослых. Пульмонология. 2019; 29(1): 19–34. DOI:10.18093/0869-0189-2019-29-1-19-34; Таточенко В.К., Озерецковский Н.А. Иммунопрофилактика-2020: справочник. М: ПедиатрЪ, 2020.; Fein A.M. Pneumonia in the elderly: overview of diagnostic and therapeutic approaches. Clin Infect Dis.1999; 28(4):726–729 https://doi.org/10.1086/515218.; Бобылев А. А., Рачина С. А., Авдеев С. Н. и др. Этиология внебольничной пневмонии улиц с хронической сердечной недостаточностью. Пульмонология. 2019;29(3):293–301. DOI: 10. 18093/0869-0189-2019-29-3-293-301.; CDC. Active Bacterial Core surveillance (ABCs). Доступно на: https://www.cdc.gov/abcs/reports-findings/survreports/spneu-types.html. Accessed: 26 Dec 2020.; Tomczyk S., Lynfield R., Schaffner W., et al. Prevention of Antibiotic-Nonsusceptible Invasive Pneumococcal Disease With the 13-Valent Pneumococcal Conjugate Vaccine. Clin Infect Dis. 2016;62(9):1119–1125. doi:10.1093/cid/ciw067.; Dagan R., Klugman K. Impact of Conjugate Pneumococcal Vaccines on Antibiotic Resistance, Lancet Infect Dis. 2008Dec;8(12):785–95. doi:10.1016/S1473-3099(08)70281-0.; Berezin E.N., Jarovsky D., Cardoso M.R., et al. Invasive pneumococcal disease among hospitalized children in Brazil before and after the introduction of a pneumococcal conjugate vaccine. Vaccine. 38 (2020) 1740–1745. https://doi.org/10.1016/j.vaccine.2019.12.038.; Moreno G.C., Imbachi L.F., Leal A.L., et al. (2020) Emergence of Streptococcus pneumoniae serotype 19A (Spn19A) in the pediatric population in Bogotá, Colombia as the main cause of invasive pneumococcal disease after the introduction of PCV10, Human Vaccines & Immunotherapeutics, 16:9, 2300–2306, DOI:10.1080/21645515.2019.1710411.; Shalom Ben-Shimol, Noga Givon-Lavi, Eugene Leibovitz, et al. Impact of Widespread Introduction of Pneumococcal Conjugate Vaccines on Pneumococcal and Nonpneumococcal Otitis Media, Clinical Infectious Diseases, Volume 63, Issue 5, 1 September 2016, Pages 611–618, https://doi.org/10.1093/cid/ciw347.; Ben-Shimol S, et al. Presented at: 33rd Annual Meeting of the European Society for Paediatric Infectious Diseases (ESPID); May 12–16, 2015; Leipzig, Germany. Abstract 0225.; Dagan R., Avital D., Givon-Lavi N., et al. Rates dynamics of chest radiography examination (CRE) as a marker of pneumococcal conjugate vaccine (PCV) impact on pediatric lower respiratory tract infections. Presented at: 36rd Annual Meeting of the European Society for Paediatric Infectious Diseases (ESPID); May 28 – June, 2015; Malmo; Sweden. May Abstract 0266.; Geller D., Almog R., Geffen Y., et al. The pneumococcal vaccine effect on the epidemiology of community acquired bacteremia (CAB) among children in Israel during the years 2004-2016. Presented at: 36rd Annual Meeting of the European Society for Paediatric Infectious Diseases (ESPID); May 28 – June, 2015; Malmo; Sweden. May Abstract 0449.; Angoulvant F, Cohen R., Doitet C., et al. Trends in antibiotic resistance of Streptococcus pneumoniae and Haemophilus influenzae isolated from nasopharyngeal flora in children with acute otitis media in France before and after 13 valent pneumococcal conjugate vaccine introduction. BMC Infect Dis. 2015;15:236. DOI 10.1186/s12879-015-0978-9.; Kempf M., Varon E., Lepoutre A., et al. Decline in antibiotic resistance and changes in the serotype distribution of Streptococcus pneumoniae isolates from children with acute otitis media; a 2001–2011 survey by the French Pneumococcal Netw.ork. Clin Microbiol Infect. 2015;21(1):35–42. https://doi.org/10.1016/j.cmi.2014.08.009; Janoir C, Lepoutre A., Gutmann L., et al. Insight into resistance phenotypes of emergent non-PCV13 type pneumococci isolated from invasive disease after PCV13 implementation in France. Open Forum Infect Dis. 2016;3(1): ofw020. DOI:10.1093/ofid/ofw020; Ouldali N., Levy C., Minodier P., et al. Long-term association of 13-valent pneumococcal conjugate vaccine implementation with rates of community-acquired pneumonia in children. JAMA Pediatr. doi:10.1001/jamapediatrics.2018.5273.; Azzari C., Serranti D., Nieddu F., et al. Significant impact of pneumococcal conjugate vaccination on pediatric parapneumonic effusion: Italy 2006–2018. Vaccine 37 (2019) 2704–2711 DOI:10.1016/j.vaccine.2019.04.012.; Imohl M, Reinert R.R., van der Linden M., et al. Antibiotic susceptibility rates of invasive pneumococci before and after the introduction of pneumococcal conjugate vaccination in Germany. Int J Med Microbiol. 2015;305(7):776–783. https://doi.org/10.1016/j.ijmm.2015.08.031.; Richter L., Schmid D., Kanitz E.E., et al. Invasive pneumococcal diseases in children and adults before and after introduction of the 10-valent pneumococcal conjugate vaccine into the Austrian national immunization program. PLoS ONE 14(1): e0210081. DOI:10.1371/journal.pone.0210081.; Smith AJ, et al. Presented at: 10th International Symposium on Pneumococci and Pneumococcal Disease (ISPPD); June 28, 2016; Glasgow, Scotland. Poster 285.; Waight P.A., Andrews N.J., Ladhani S.N., et al., Effect of the 13-valent pneumococcal conjugate vaccine on invasive pneumococcal disease in England and Wales 4 years after its introduction: an observational cohort study. Lancet Infect Dis 2015; 15: 535–43. DOI:10.1016/S1473-3099(15)70044-7.; Palmu A., Rinta-Kokko H., Nohynek H. Long-term impact of ten-valent pneumococcal conjugate vaccine (PCV10) on pneumonia among vaccine-eligible children in Finland. Presented at: 36rd Annual Meeting of the European Society for Paediatric Infectious Diseases (ESPID); May 28 – June, 2015; Malmo; Sweden. May Abstract 0405.; Rinta-Kokko H., Auranen K., Toropainen M., et al. Effectiveness of 10-valent pneumococcal conjugate vaccine estimated with three parallel study designs among vaccine-eligible children in Finland. Vaccine 38 (2020) 1559–1564 https://doi.org/10.1016/j.vaccine.2019.11.049.; Dagan R. Relationship between immune response to pneumococcal conjugate vaccines in infants and indirect protection after vaccine implementation. Expert Review of Vaccines, 18:6, 641–661, DOI:10.1080/14760584.2019.1627207.; Отчет НИР «Бремя пневмококковой инфекции в Республике Беларусь с позиции здравоохранения и общественного здоровья» № госрегистрации 20181898, 2019 г. С 527, подготовлен ГУ «Республиканский научно-практический центр медицинских технологий, информатизации, управления и экономики здравоохранения» МЗРБ при финансовой поддержке компании Пфайзер.; Горбич О. А., Чистенко Г. Н., Дашкевич А. М. и др. Эпидемиологическая характеристика инфекционных агентов, ассоциируемых с внебольничными пневмониями. Мед. Журн. 2017. №4. С. 42–46.; Л. П. Титов, А. Н. Хархаль, В. А. Горбунов и др. Микрофлора нижних отделов дыхательных путей и резистентность к антибиотикам у детей: результаты мониторинга 2016–2017 гг. Здравоохранение. 2020. №5. С. 5–16.; Титов Л. П., Давыдов А. В., Хархаль А. Н. Молекулярно-генетический мониторинг и резистентность к антибиотикам Streptococcus pneumoniae в республике Беларусь. Материалы 3-го Евро-Азиатского саммита специалистов по пневмококковой инфекции 24–25 августа 2019. Доступно на: https://congress-ph.ru/common/htdocs/upload/fm/pnevmokoki/19/prez/11.pdf Ссылка активна на 26 декабря 2020.; Давыдов А. В., Титов Л. П., Хархаль А. Н. и др. Чувствительность к антибиотикам штаммов Streptococcus pneumoniae, выделенных от пациентов с менингитом в Беларуси. Здравоохранение. 2018;1:22–32.; Давыдов А. В., Титов Л. П. Чувствительность к антибиотикам и связь с серотипами штаммов Streptococcus pneumoniae у детей с острым средним отитом и острым синуситом в Беларуси. КМАХ. 2018. Т. 20, №3. С. 206–2015.; Давыдов А. В., Титов Л. П., Хархаль А. Н. и др. Связь механизмов генотипической резистентности Streptococcus pneumoniae к антибиотикам с фенотипической резистентностью и серотипами. Известия Национальной академии наук Беларуси. Серия медицинских наук. 2019;16(4):454-467. https://doi.org/10.29235/1814-6023-2019-16-4-454-467; ECDC. Surveillance of antimicrobial resistance in Europe 2017. Annual report of the European Antimicrobial Resistance Surveillance Network (EARS-Net); Титов Л. П., Давыдов А. В., Хархаль А. Н. Молекулярно-генетический мониторинг и резистентность к антибиотикам Streptococcus pneumoniae в республике Беларусь. Материалы 3-го Евро-Азиатского саммита специалистов по пневмококковой инфекции 24-25августа 2019. Доступно на: https://congress-ph.ru/common/htdocs/upload/fm/pnevmokoki/19/prez/11.pdf. Ссылка активна на 26 декабря 2020.; Постановление МЗ Республики Беларусь от 18 июля 2012 г. № 106 «Об установлении Национального календаря профилактических прививок, перечня профилактических прививок по эпидемическим показаниям, порядка и сроков их проведения и признании утратившими силу постановлений Министерства здравоохранения Республики Беларусь» от 29 сентября 2006 г. Доступно на: https://pravo.by/upload/docs/op/W21226238_1344546000.pdf. Ссылка активна на 26 декабря 2020.; Приказ МЗ Республики Беларусь от 27 февраля 2014 г. №191 «Об утверждении Инструкции по тактике проведения профилактических прививок среди населения в Республике Беларусь». Доступно на: https://normativka.by/lib/document/48859. Ссылка активна на 26 декабря 2020.; Постановление МЗ Республики Беларусь, 17 мая 2018 г. №42. «О профилактических прививках». Доступно на: http://minzdrav.gov.by/upload/dadvfiles/Нацкалендарь.pdf. Ссылка активна на 26 декабря 2020.; https://www.epidemvac.ru/jour/article/view/1229

Availability: https://www.epidemvac.ru/jour/article/view/1229
https://doi.org/10.31631/2073-3046-2021-20-2-83-92

Clinical case of therapeutic treatment of a tooth cyst

Source: Эндодонтия Today, Vol 10, Iss 2, Pp 57-59 (2020)

Subject Terms: апикальная гранулема, корневая киста, гидроксид кальция, антимикробная резистентность, эндофлас, apical granuloma, radicular cyst, calcium hydroxide, antimicrobial resistance, endoflas, Dentistry, RK1-715

File Description: electronic resource

Relation: https://www.endodont.ru/jour/article/view/637; https://doaj.org/toc/1683-2981; https://doaj.org/toc/1726-7242

Access URL: https://doaj.org/article/b722239f3c7d4f19803f9611bd85fe1b

Clinical case of therapeutic treatment of a tooth cyst

Source: Эндодонтия Today, Vol 10, Iss 2, Pp 57-59 (2020)

Subject Terms: апикальная гранулема, корневая киста, гидроксид кальция, антимикробная резистентность, эндофлас, apical granuloma, radicular cyst, calcium hydroxide, antimicrobial resistance, endoflas, Dentistry, RK1-715

Relation: https://www.endodont.ru/jour/article/view/637; https://doaj.org/toc/1683-2981; https://doaj.org/toc/1726-7242; https://doaj.org/article/b722239f3c7d4f19803f9611bd85fe1b

Availability: https://doaj.org/article/b722239f3c7d4f19803f9611bd85fe1b

ОТЗЫВ НА МОНОГРАФИЮ Н.Р. ЕФИМОЧКИНОЙ «БАКТЕРИАЛЬНЫЕ ПИЩЕВЫЕ ПАТОГЕНЫ РОДА CAMPYLOBACTER»

Authors: V V Kartsev, L V Belova

Source: Voprosy pitaniia. 89(2)

Subject Terms: 2. Zero hunger, 0301 basic medicine, 0303 health sciences, EMERGENT INFECTIONS, ANTIMICROBIAL RESISTANCE, Book Reviews as Topic, БЕЗОПАСНОСТЬ ПРОДУКТОВ, ЭМЕРДЖЕНТНЫЕ ИНФЕКЦИИ, Campylobacter, CAMPYLOBACTER, 3. Good health, БАКТЕРИАЛЬНЫЕ ПИЩЕВЫЕ ПАТОГЕНЫ, Foodborne Diseases, 03 medical and health sciences, АНТИМИКРОБНАЯ РЕЗИСТЕНТНОСТЬ, Campylobacter Infections, Food Microbiology, Humans, BACTERIAL FOOD PATHOGENS, FOOD SAFETY

Access URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/32459912
https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/32459912/
https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/32459912
https://europepmc.org/article/MED/32459912

Prevalence and antimicrobial resistance profiles of salmonella spp. and campylobacter spp. in human and broiler chicken in Republic of Moldova

Authors: Halacu, A., Burduniuc Popa, O.S., Prudnicionoc, S., Dupouy, E., Ilgunova, T., Bivol, M.A., Coteţ, O.

Source: Sănătate Publică, Economie şi Management în Medicină 82 (4) 316-324

Subject Terms: Salmonella spp, Campylobacter spp, antimicrobial resistance, rezistență la preparatele antimicrobiene, антимикробная резистентность

File Description: application/pdf

Relation: https://ibn.idsi.md/vizualizare_articol/99696; urn:issn:17298687

Availability: https://ibn.idsi.md/vizualizare_articol/99696

Таксономическая структура и резистентность к антибиотикам возбудителей инфекций кровотока у онкогематологических больных

Source: Клиническая онкогематология, Vol 8, Iss 2 (2015)

Subject Terms: рак, бактериемия, Neoplasms. Tumors. Oncology. Including cancer and carcinogens, инфекции кровотока, антимикробная резистентность, инфекции, онкогематологические заболевания, RC254-282

Access URL: https://doaj.org/article/0ef1aa9633234dacb2eec44d051fae7b

Non-antibacterial alternative measures for urinary tract infection in children. Part 1. Suppression of the microbial initiation of the inflammation ; Неантибактериальные альтернативные мероприятия при инфекции мочевых путей у детей. Часть 1. Подавление микробной инициации воспаления

Authors: V. I. Kirillov, N. A. Bogdanova, S. L. Morozov, В. И. Кириллов, Н. А. Богданова, С. Л. Морозов

Source: Rossiyskiy Vestnik Perinatologii i Pediatrii (Russian Bulletin of Perinatology and Pediatrics); Том 63, № 1 (2018); 106-112 ; Российский вестник перинатологии и педиатрии; Том 63, № 1 (2018); 106-112 ; 2500-2228 ; 1027-4065 ; 10.21508/1027-4065-2018-63-1

Subject Terms: антимикробная резистентность, urinary tract infection, treatment, biocenosis and mucin layer recovery, receptor therapy, antimicrobial resistance, инфекция мочевой системы, лечение, восстановление биоценоза и муцинового слоя, рецепторная терапия

File Description: application/pdf

Relation: https://www.ped-perinatology.ru/jour/article/view/628/603; Harambat J., van Stralen K.J., Kim J.J., Tizard E.J. Epidemiology of chronic kidney disease in children. Pediatr Nephrol 2012; 27(2): 363–373. DOI:10.1007/s00467-011-1939-1.; Doganis D., Siafas K., Mavrikou M., Issaris G., Martirosova A., Perperidis G. et al. Does early treatment of urinary tract infection prevent renal damage? Pediatrics 2007; 120(4): 922–928. DOI:10.1542/peds.2006-2417.; Chen P.C., Chang L.Y., Lu C.Y., Shao P.L., Tsai I.J., Tsau Y.K. et al. Drug suseptibility and treatment response of common urinary tract infection pathogens in children. J Micro-biol Immunol Infect 2014; 47(6): 478–483. DOI:10.1016/ j.jmii.2013.07.011.; Возрастающая угроза антимикробной резистентности. Возможные меры. ВОЗ, 2013. http: apps.who. int/iris/bistrem110665144812/16/97892445503188-rus. pdf; Стратегия и тактики применения антимикробных средств в лечебных учреждениях России. Российские национальные рекомендации. Под ред. В.С. Савельева, Б.Р. Гельфанда, С.В. Яковлева. М: ООО «Компания БОРГЭС» 2012; 92.; Ferry S.A., Holm S.E. Stenlund H., Lundholm R., Monsen T.J. Clinical and bacteriological outcome of different doses and duration of piv-mecillinam compared with placebo therapy of uncompicated lower urinary tract infection in women: the LUTIW project. Scand J Prim Health Care 2007; 25(1): 49–57. DOI:10.1080/02813430601183074.; Bleidorn J., Gagyor L., Kochen M.M., Wegscheider K., Hummers-Pradier E. Symptomatic treatment (ibuprofen) or antibiotics (ciprofloxacin) for uncumplicated urinary tract infection? Results of a randomized controlled pilot trial. BMC Medicine 2010; 8: 30-37. DOI:10.1186/1741-7015-8-30.; Кириллов В.И., Богданова Н.А., Никитина С.Ю. Альтернативные подходы к лечению инфекций мочевой системы у детей. Рос вестн перинатол и педиатр 2015; 60(4): 205– 206.; Naber R., Stendl H., Abramov-Sommariva D., Es Koetter H. Non-antibiotic herbal therapy of un complicated lower urinary tract infections in women – a pilot study (Abstr). 61 st International Congress and Annual Meeting of the Society for Medicinal Plant and Natural Product Research, Muenster. Planta Medica 2013; 79: 1140.; Антимикрoбная терапия и профилактика инфекций почек, мочевыводящих путей и мужских половых органов. Российские национальные рекомендации. Под ред. О.И. Аполихина, Д.Ю. Пушкарь, А.А. Камалиева, Т.С. Перепановой. М 2015; 64.; Vega P.J.M., Pascual L.A. High-pressure blader an underlying factror mediating renal damage in the absense of reflux. Brit J Urol 2001; 87(4): 581–584.; Зоркин С.Н., Гусарова Т.Н., Борисова С.А. М-холинолитики в предоперационной подготовке у детей с обструктивными уропатиями. Педиатрич фармакол 2008; 5(6): 62–66.; Кириллов В.И., Богданова Н.А. Инфекция мочевой системы у детей: патогенетические сдвиги и их коррекция с целью профилактики обострений. Вопр соврем педиатр 2011; 10(4): 100–104.; Shreedar B., Yeung Ch. The natural history of transient urodynamic abnormality of infancy with high-grade primary vesicoureteral reflux: follow-up to early childhood. J Pediatr Urol 2008; 4: 218–219.; Лопаткин Н.А., Пугачев А.Г., Москалева Н.Г. Интремитт-тирующий пузырно-мочеточниковый рефлюкс у детей. М: ОАО «Издательство “Медицина”» 2004; 136.; Франц М., Хорл У. Наиболее частые ошибки диагностики и ведения инфекции мочевых путей. Нефрология и диализ 2000; 2(4): 340–347.; Winberg J., Herthelius-Elman M., Mollby R., Nord C.E. Pathogenesis of urinary tract infection experimental studies of vaginal resistance to colonization. Pediatr Nephrol 1993; 7(5): 509–514.; Marild S., Jodal V., Mangelius L. Medical history among children with acute pyelonepritis compared to controls. Pediatr Infect Dis J 1989; 8: 511–515.; Salvador E., Wagenlehner F., Köhler C.D., Mellmann A., Hacker J., Svanborg C., Dobrindt U. Comparison of symptomatic bacteriuria Escherichia coli isolates from healthy individuals versus those from hospital patients shows that long-term bladder colonization selects for attenuated virulence phenotypes. Infect Immun 2012; 80(2): 668–678. DOI:10.1128/ IAI.06191-11.; Fraga M., Scavone P., Zunino P. Preventive and therapeutic administration of an indigenous Lactobacillus sp. strain againist Proteus mirabilis ascending urinary in a mouse model. Antonie Van Leeuwen-hock 2005; 88(1): 25–34.; Anukam K.C., Osazuwa E., Osemene G.I., Ehigiagbe F., Bruce A.W., Reid G. Clinical study comparing probiotic Lac-tobacillus GR-1 and RC-14 with metronidazole vaginal gel to treat symptomatic bacterial vaginosis. Microb Infect 2006; 8(12–13): 2772–2776. DOI:10.1016/j.micinf.2006.08.008.; Stapleton A.E., Au-Yeung M., Hooton T.M., Fredricks D.N., Rob-erts P.L., Czaja C.A. et al. Randomised placebo-controlled phase 2 trial of Lactobacillus crispatum probiotic given intravaginally for prevent of recurrent urinary tract infection. Clin Infect Dis 2011; 52(10): 1212–1217. DOI:10.1093/cid/cir183.; Вялкова А.А., Гриценко В.А., Данилова Е.И., Седашкина О.А. Обоснование клинико-микробиологических подходов к лечению и профилактике рецидивов пиелонефрита у детей. Педиатр фармакол 2009; 6(2): 94–98.; Кириллов В.И., Теблоева Л.Т., Алексеев Е.Б. Идентификация возбудителей инфекций мочевыводящих путей у детей. Педиатрия 1997; 6: 8–13.; Sudo N, Sawamura S.A. TanaKa K., Aiba Y., Kubo C., Koga Y. The requirement of intestinal bacterial flora for the development of an IgE production system fully susceptible to oral tolerance induction. J Immunol 1997; 159: 1739–1745.; Кузьмин М.Д., Титов Р.В., Кузьмин А.М. Комплексный подход к лечению хронического первичного пиелонефрита. Тезисы научно-практической конференции «Рациональная фармакотерапия в урологии». М 2015; 19–21.; Перепанова Т.С. Проблема лечения и профилактики рецидивирующих инфекций нижних мочевых путей. Роль иммунопрофилактики. Эффективная фармакотерапия. Урология и нефрология 2014; 54: 4–16.; Liu Y., Black M.A., Caron L., Camesano T.A. Role of cranberry juice on molecular scale surface charakteristics and adhesion behavior of Escherichia coli. Biotechnol Biong 2006; 93(2): 297–305. DOI:10.1002/bit.20675.; Jepson R.G., Williams G., Craig J.C. Cranberries for preventing urinary tract infections. Cochrane Database Syst Rev 2012; 10: CD001321. DOI:10.1002/14651858.CD001321.pub5.; Kunstle G., Brenneis C., Haunschild J. Efficacy of Canephron N against bacterial adhesion, inflamation and blader hyperactivity. Poster 28 th Annual Congress of European Association of Urology (EUA). Mailand 2013; 112.; Guidelines on urological infections. EUA 2015; 88.; Ruggieri M.R., Levin R.M., Hanno P.M., Witkowski B.A., Gill H.S., Steinhardt G.F. Defective antiadherence activity of bladder extracts from patients with recurrent urinary tract infection. J Urol 1988; 140: 157–159.; Constantinides C., Manousakas T., Nikoioponlos P. Stanitsas A. Prevention o recurrent bacterial cystitis by intravesical administration of hyaloronic acid: pilot Study. Brit J Urol Intern 2004; 93(9): 1262–1266.; Mannhardt W., Becker A., Putzer M., Bork M., Zepp F., Hacker J., Schulte-Wissermann H. Host defense within the urinary tract. I Bacterial adhesion initiates an uroepithelial defense mechanism. Pediatr Nephrol 1996; 10(5): 568–572.; De Smet K., Contreras R. Human antimicrobial peptides: defensins, cathelicidins and histatins. Boitechnol Letters 2005; 27: 1337–1347.

Availability: https://www.ped-perinatology.ru/jour/article/view/628
https://doi.org/10.21508/1027-4065-2018-63-1-106-112

DIFFICULTIES IN IDENTIFICATION OF СOMAMONAS KERSTERSII STRAINS ISOLATED FROM INTESTINAL MICROBIOTA OF RESIDENTS OF REPUBLIC OF GUINEA AND RUSSIAN FEDERATION ; ВЫДЕЛЕНИЕ И ОСОБЕННОСТИ ИДЕНТИФИКАЦИИ СOMAMONAS KERSTERSII ПРИ ИЗУЧЕНИИ МИКРОБИОТЫ КИШЕЧНИКА ЖИТЕЛЕЙ РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ И ГВИНЕЙСКОЙ РЕСПУБЛИКИ

Authors: Voitenkova E.V., Matveeva Z.N., Makarova M.A., Egorova S.A., Zabrovskaia A.V., Suzhaeva L.V., Zueva E.V., Kaftyreva L.A.

Source: Russian Journal of Infection and Immunity; Vol 8, No 2 (2018); 164-168 ; Инфекция и иммунитет; Vol 8, No 2 (2018); 164-168 ; 2313-7398 ; 2220-7619 ; 10.15789/2220-7619-2018-2

Subject Terms: microbiome of the intestines, non-fermenting bacteria, Comamonas kerstersii, MALDI-TOF, antimicrobial resistance, микробиота кишечника, неферментирующие бактерии, антимикробная резистентность

File Description: application/pdf

Relation: https://iimmun.ru/iimm/article/view/734/377; https://iimmun.ru/iimm/article/view/734

Availability: https://iimmun.ru/iimm/article/view/734
https://doi.org/10.15789/2220-7619-2018-2-163-168

PROBLEMATIC ISSUES OF CAUSAL TREATMENT FOR URINARY TRACT INFECTIONS IN CHILDREN ; ПРОБЛЕМНЫЕ ВОПРОСЫ ЭТИОТРОПНОЙ ТЕРАПИИ ИНФЕКЦИЙ МОЧЕВЫВОДЯЩИХ ПУТЕЙ У ДЕТЕЙ

Authors: V. I. Kirillov, N. A. Bogdanova, В. И. Кириллов, Н. А. Богданова

Source: Rossiyskiy Vestnik Perinatologii i Pediatrii (Russian Bulletin of Perinatology and Pediatrics); Том 61, № 6 (2016); 32-37 ; Российский вестник перинатологии и педиатрии; Том 61, № 6 (2016); 32-37 ; 2500-2228 ; 1027-4065 ; 10.21508/1027-4065-2016-61-6

Subject Terms: верификация возбудителей, urinary tract infection, antimicrobial resistance, side effects, biofilm, bacteriuria, verification of causative agents, инфекция мочевой системы, антимикробная резистентность, побочные эффекты, биофильм, бактериурия

File Description: application/pdf

Relation: https://www.ped-perinatology.ru/jour/article/view/412/435; Игнатова М.С. Патология органов мочевой системы у детей (современные аспекты). Нефрология и диализ 2004; 6: 2: 127-132. (Ignatova M.S. Pathology of urinary tract in children (new aspects). Nefrologiya i dializ 2004; 6: 2: 127–132. (in Russ.)); Winberg J., Bollgren L., Kallenius G. et al. Clinical pyelonephritis and focal scarring. A selected review of pathogenesis, prevention and prognosis. Pediatr Clin North Am 1982; 29: 801–814.; Федеральная служба государственной статистики Рос-стат. 2016; http://www.gks.ru. (Federal service of state statistics Rosstat. 2016; http://www.gks.ru. (in Russ.)); Bhat R.G., Katy T.A., Place F.C. Pediatric urinary tract infections. Emerg Med Clin North Am 2011; 29: 3: 637–653.; Winberg J., Bergstrom T., Jacobsson B. Mortality, age and sex distribution, recurrens and renal scarring in distribution, re-currens and renal scarring in symptomatic urinary tract infection in childhood. Kidney Int 1975; Suppl: S101–S106.; Nuutinen M., Uhari M. recurrence and follow-up after urinary tract infection under the age of 1 year. Pediatr Nephrol 2001; 16: 1: 69–72.; Garin E.H. Campos A., Homsy Y. Primary vesico-ureteral reflux: review of current concepts. Pediatr Nephrol 1998; 12: 2: 249–256.; Silva J.M.P., Diniz J.S.S., Silva A.C.S. et al. Predictive factors of chronic kidney disease in severe vesicoureteral reflux. Pediatr Nephrol 2006; 21: 1285–1292.; Молчанова Е.А., Валов А.Л. Каабак М.М. Первые результаты формирования Российского регистра хронической почечной недостаточности у детей. Нефрология и диализ 2003; 5: 1: 64–68. (Molchanova E.A., Valov A.L., Kaabak M.M. The first results of keeping chronic renal failure registry for children in Russia. Nefrologiya i dializ 2003; 5: 1: 64–68. (in Russ.)); Хрущева Н.А., Макарова Ю.В., Маслов О.Г. и др. К вопросу об эпидемиологии и структуре хронической почечной недостаточности у детей Свердловской области (тезисы). Нефрология и диализ 2007; 9: 3: 263–264. (Khrushova N.A., Makarova Yu.V., Maslov O.G. et al. About of epidemiology and structure of chronic renal failure in children of Sverdlovsk region (Abstr. (in Russ.)). Nefrologiya i dializ 2007; 9: 3: 263–264. (in Russ.)); Учайкин В.Ф., Зверев В.В. Роль инфекции в соматической патологии у детей. Вестник РАМН 2000; 11: 40–47. (Uchaykin V.F., Zverev V.V. Role of infection in somatic pathology of children. Vestnik RАMN 2000; 11: 40–47. (in Russ.)); Сафина А.И. Дифференцированный подход к антибактериальной терапии пиелонефрита у детей г. Казани с учетом течения заболевания и возраста. Нефрология и диализ 2004; 6: 3: 253–261. (Safina A.I. Differential approach to antibacterial therapy of pyelonephritis in children from Kazan according the disease and age. Nefrologiya i dializ 2004; 6: 3: 253–261. (in Russ.)); Вялкова А.А., Данилова Е.И., Гриценко В.А. Региональный регистр и особенности антибиотикорезистентности возбудителей хронического пиелонефрита у детей. V Российский конгресс по детской нефрологии. Cборник тезисов. Воронеж, 2006; 47–48. (Vialkova A.A., Danilova Ye.I., Gritsenko V.A. The regional register of features and drugresistance of causal agents in children with chronic pyelonephritis (abstr. (in Russ.)). Russian congress for Pediatr Nephrology. Voronegh, 2006; 47–48. (in Russ.)); Летифов Г.М., Каплиева О.В., Бурова И.Я. и др. Изменчивость этиологической структуры и антибиотикочувствительность уропатологической флоры при пиелонефрите у детей. Медицинский вестник Юга России 2012; Приложение: 50. (Letifov G.M., Kaplieva O.V., Burova I.Ja. et al. The variability of antibioticosensibility of uropatthologens for pyelonephritis in children. Meditsinskij vestnik YUga Rossii 2012; Suppl: 50. (in Russ.)); Антимикробная терапия и профилактика инфекций почек, мочевыводящих путей и мужских половых органов. Российские национальные рекомендации. М 2014; 62. (Antimicrobial therapy and prophylaxis of renal infections, urinary tract infections and male genital tract infection: Russian national recommendations. Moscow 2014; 62. (in Russ.)); Вагенлехнер Ф.М.Е., Набер К.Г. Лечение инфекций мочеполовой системы: настоящее и будущее. РМЖ 2009; 17: 9: 655-660. (Wagenlehner F.M.E., Naber K.G. Treatment of urinary tract infections: presence and future. RMZH 2009; 17: 9: 655–660. (in Russ.)); Возрастающая угроза антимикробной резистентности. Возможные меры. ВОЗ, 2013; http:apps.who. int/iris/bistrem/10665/44812/16/9789244503188_rus. pdf. (The evoling threat of antimicrobial resistanse: options for action. WHO, 2013; http:apps.who.int/iris/bis-trem/10665/44812/16/9789244503188_rus.pdf (in Russ.)); Козлов Р.С. Проблема антибиотикорезистентности в педиатрии. РМЖ 2014; 3; 238. (Kozlov R.S. Problem of antibiotic resistance in pediatrics. RMZH 2014; 3: 238. (in Russ.)); Стратегия и тактика применения антимикробной средств в лечебных учереждениях России. Российские национальные рекомендации. Под ред. В.С. Савельева, Б.Р. Гельфанда, С.В.Яковлева. М: ООО «Компания БОРГ-ЭС» 2012; 92. (Strategies and tactis of antimicrobial therapy in medical department of Russia. Russian national recommendations. Saveljev V.S., Gelfand B.R., Yakovlev S.V. (Eds). Mos-cow: OOO «Compania BORGES», 2012; 92. (in Russ.)); Winberg J., Herthelius-Elman M., Mollby R., Nord C.E. Pathogenesis of urinary tract infection-experemental studies of vaginal resistance to colonization. Pediatr Nephrol 1993; 7: 5: 509–514.; Bollgren I., Winberg J. The periurethral aerobic bacterial flora in girls highly susceptible to urinary infections. Acta Paediatr Seand 1976; 65: 81–87.; Hansson S., Jodal V. Treatment of other infections in patients with untreatment asymptomatic bacteriuria (Abstr). XXI Ann Meet Europ Sos Paediatric Nephrol. Budapest, 1987; F5.1.3.; Лукьянов А.В., Долгих В.Г., Турица А.А. Инфекции мочевой системы у детей – от Вальтера Бирка до наших дней. Нефрология и диализ 2006; 8: 3: 272–277. (Lukjanov A.V., Dolgikh V.T., Turitsa A.A. Urinary tract infection in children – from Walter Birk to now. Nefrologiya i dializ 2006; 8: 3: 272–277. (in Russ.)); Мельникова М.В., Федосов Е.Ф., Авдеева Т.Г. Характеристика микрофлоры препуциального мешка, кишечника и мочевых путей при баланопоститах у детей. Рос конгресс по детской нефрологии. Воронеж, 2006; 146–147. (Melnikova M.V., Fedosov E.F., Avdeeva T.G. Microbial characterization of prepucial sac, gut and urinary tract for balanopostits in children (Abstr). Russian Congress for pediatric nephrology. Voronezh, 2006; 146–147. (in Russ.)); Вялкова А.А., Бухарин О.В., Гриценко В.А. и др. Современное представление об этиологии микробно-воспалительных заболеваний органов мочевой системы у детей. Актуальные проблемы нефрологии. Мат. научно-практической конференции. Оренбург, 2001; 32–47. (Vialkova A.A., Bukharin O.V., Gritsenko V.A. et al. Modern view of aethiology for inflammatory disease of urinary organs in children. Actual problems of nephrology. Orenburg, 2001; 32–47. (in Russ.)); Nagler-Anderson R., Walker W.A. Механизмы управления реактивностью к пищевым антигенам. Аллергические заболевания у детей и окружающая среда. М: ООО «Нью Информ» 2005; 78–89. (Nagler-Anderson R., Walker W.A. The stewarship mechanisms of reactivity to food antigens. Allergic disease in children and environment. Moscow: OOO «Nestle Fud» 2005; 78–89. (in Russ.)); Hoberman A., Wald E.R., Hickey R.W. et al. Oral versus initial intravenous therapy for urinary tract infections in young febrile children. Pediatrcs 1999; 104: 79–86.; Montini G., Tofsolo A., Lucchetta P. et al. Antibiotic treatment for pyelonephritis children: multicentre randomised non-inferiority trial. BMJ 2007; 25: 335–386.; Земсков А.М., Караулов А.В., Земсков В.М. Комбинированная иммунокоррекция. М: «Наука» 1994; 260. (Zemskov A.M., Karaulov A.V., Zemskov V.M. Combinatorial immunocorrection. Moscow: Nauka 1994; 260. (in Russ.)); Горемыкин В.И., Протопопов А.А., Егорова И.А. и др. Дезадаптирующие факторы в индивидуализации программ лечения пиелонефрита у детей. III Ежегодный нефрологический семинар. СПб 1995; 77–78. (Goremikin; V.L., Protopopov A.A., Egorova L.A. Disadaptation in personal programs treatment for pyelonephritis in children. III Annual nephrological seminar. SPb 1995; 77–78. (in Russ.)); El-Mouedden M., Guy Lauret G., Mingeot-Leclerq M. et al. Apoptosis in renal proximal fubules of rats treated with low doses of aminoglycosides. Antimicr Agents Chemother 2000; 44: 3: 665–675.; Smoyer W.E., Kelly C.J., Kaplan B.S. Tubulointerstitial nefhri-tis. Pediatric Nephrology. M.A. Hollidаy, T.M. Barrat, E.D. Avner (Eds). Baltimore: Williams and Wilkins 1994; 890–907.; Smith J., Finn A. Antimicrobial prophylaxis. Arch Dis Child 1999; 80: 388–392.; Smellie J.M., Gruneberg R.N., Leakey A., Atkins W.S. Long-term low-dose co-trimoxazole in prophilaxis of child hood urinary tract infection: clinical aspects. Br Med J 1976; 2: 2003–2006.; Lohr J.A., Nunley D.H., Howaards S.S., Ford R.F. Prevention of ruccerrent urinary tract infections in girls. Pediatrics 1977; 59: 562–565.; Morton S.C., Shekelle P.G., Adams J.L. et al. Antimicrobial prophylaxis for urinary tract infection in persons with spinal cord disfunction. Arch Phys Med Renabil 2002; 83: 129–138.; Mattoo T.K. Evidence for and against urinary prophylaxis in vesicoureteral reflux. Pediatr Nephrol 2010; 25: 2379–2382.; Drlica K. Antibiotic resistance: can we beat the bugs? Drug Disco Today 2001; 14/6: 714–715.; Beetz R. May we go on with antibacterial prophylaxis for urinary tract infection? Pediatr Nephrol 2006; 21: 1: 5–13.; Бекмурзаева Г.Б., Османов И.М., Захарова И.Н. и др. Перспективный метод диагностики инфекции мочевой системы. Рос вестн перинатол и педиатр 2015; 60: 4: 198– 199. (Bekmurzaeva G.B., Osmanov I.M., Zakharova I.N. et al. Prospective method for diagnosis of urinary tract infection. Ros vestn perinatol i pediatr 2015; 60: 4: 198–199. (in Russ.)); Maxam A.M., Gilbert W.A. A new method of sequencing DNA. Proc Natl Acad Sci USA 1977; 74: 560–564.; Коган М.И., Набока Ю.Л., Ибишев Х.С. и др. Сравнительный анализ микробного спектра мочи, исследованного при стандартном и расширенном микробиологическом исследованиях при остром пиелонефрите. Рациональная фармакотерапия в урологии. М 2012; 51–52. (Kogan M.I., Naboka Yu.L., Ibishev H.S. et al. Evaluation of urinary microbial spectrum studied by standart and spread microbiological analysis in acute pyelonephritis (Abstr). Rational pharmacotherapy in urology. Moscow 2012; 51–52. (in Russ.)); Naber K.G., Bergman B., Bishop M.C. et al. Guidelines on urinary and male genital tract infections. European Association of urology, 2013; 84.; Синякова Л.А., Жуховицкий В.Г., Сухина М.А., Штейнберг М.Л. Pоль биопленкоoбразующих возбудителей в этиологии и патогенезе рецидивирующих инфекций нижних мочевых путей. Рациональная фармакотерапия в урологии. М 2012; 103–104. (Sinjakova L.A., Zhuhovitskij V.G., Suhina M.A., Shtejnberg M.L. Role of biofilm-forming bacteriums in aetiopathogenesis of recurrent lower urinary tract infections. Rational pharmacotherapy in urology. Moscow 2012; 103–104. (in Russ.)); Длин В.В., Османов И.М., Корсунский А.А., Малкоч А.В. Пиелонефрит. В кн.: Инфекция мочевой системы у детей. Руководство для врачей. Под ред. В.В. Длина, И.М. Османова, О.Л.Чугуновой, А.А.Корсунского. М.: «М-Арт» 2011; 133–174. (Dlin V.V., Osmanov I.M., Korsunskij A.A., Malcotch A.V. Pyelonephritis. In: Urinary tract infection in children. Guidebook for medical practitioners. V.V. Dlin, I.M.Osmanov, O.L.Chugunova, A.A.Korsunsky (Eds). Moscow: OOO «M-Art» 2011; 133–174. (in Russ.)); Мухин Н.А., Козловская Л.В., Шилов Е.М. и др. Рациональная фармакотерапия в нефрологии. Руководство для практикующих врачей. М: «Литтерра» 2006; 895. (Mukhin N.A., Kozlovskaya L.V., Shilov E.M. et al. Rationale for drug therapy in nephrology: a guidebook for medical practitioners. M: Litterra 2006; 895. (in Russ.)); Франц М., Хорл У. Наиболее частые ошибки диагностики и ведения инфекции мочевых путей. Нефрология и диализ 2000; 2: 4: 340–347. (Franz M., Horl W.H. Common errors in diagnosis and management of urinary tract infection. Nefrologiya i dializ 2000; 2: 4: 340–347. (in Russ.)); Топтун М.Д., Василевский И.В., Скепьян Е.Н. Анализ спектра возбудителей инфекций мочевых путей у детей на амбулаторном этапе. Материалы конгресса «Инновационные технологии в педиатрии и детской хирургии». М 2013; 140–141. (Toptun M.D., Vasilevskiy I.V., Skepyjan E.N. Etiology spectrum for urinary tract infections in children on ambulatory stage. Сongress «Innovative technologies in pediatrics and children’s surgery». Moscow 2013; 140–141. (in Russ.)); Петухова И.Н. Роль биопленок в хронизации мочевых инфекций. Урология сегодня 2013; 24: 2: 2–4. (Petuhova I.N. Role of biofilm for chronic urinary infections. Urologia today 2013; 24: 2: 2–4. (in Russ.)); Tapiainen T., Hanni A.M., Salo J. et al. Escherichia coli biofilm formation and recurrences of urinary tract infection in children. Eur J. Clin Microbiol Infect Dis 2013; 33: 1: 111–115.; Пытель А.Я., Голигорский С.Д. Избранные главы нефрологии и урологии. Л: «Медицина» 1973; 300. Pitel A.Ja., Goligorskij S.D. The diverse chapters of nephrology and urology. L: «Meditsina» 1973; 300.; Ferry S.A., Holm S.E. Stenlund H. Clinical and bacteriological outcome of different doses and duration of piv-mecillinam compared with placebo therapy of uncomlicated lower urinary tract infection in women. Scand J Prim Health Care 2007; 25: 49–57.; Шабад А.Л., Гусев Б.С., Соловьев Н.К., Кузнецов В.М. Аллергено-ренографический провокационный тест как метод диагностики хронического пиелонефрита. Урол и нефрол 1987; 2: 15–19. (Shabad A.L. Gusev B.S., Solo-viev N.K., Kuznetsov V.M. Allergen-renographic provocative test us method of dianosies for chronic pyelonephritis. Urol i nefrol 1987; 2: 15–19. (in Russ.)); Кириллов В.И., Теблоева Л.Т., Алексеев Е.Б. и др. Иден-тификация возбудителей инфекций мочевыводящих путей у детей. Педиатрия 1997; 6: 8–13. (Kirillov V.I., Tebloeva L.T., Alekseev E.B. et al. The aetiology identification of urinary tract infections in children. Pediatriya 1997; 6: 8–13. (in Russ.)); Зайкова Н., Длин В., Петрович В. и др. Динамика патологических изменений в паренхиме почек при инфицированном и неинфицированном пузырно-мочетончиковом рефлюксе у крыс. Клин нефрология 2011; 5: 64–71. (Zajkova N., Dlin V., Petrovich V. et al. Dinamics of pathologic changes in renal parenchyma for infective and non-infective vesicoureteral reflux in rats. Clinicheskaya Nefrogia 2011; 5: 64–71. (in Russ.)); Christiaens T.C., De Meyere M., Verchraegen G. et al. Randomised controlled trial of nitrofurantion versus placebo in the treatment of uncomplicated urinary tract infection in adult women. Br J Gen Pract 2002; 52: 729–734.; Прилепская Е.А., Зайцев А.В. Инфекции нижних мочевыводящих путей: альтернативный подход к терапии. РМЖ 2014; 29: 2108–2110. (Prilepskaya E.A., Zaitsev A.V. Lower urinary tract infections: alternative therapy. RMZH 2014; 29: 2108–2110. (in Russ.)); Кириллов В.И., Богданова Н.А., Никитина С.Ю. Альтернативные подходы к лечению инфекций мочевой системы у детей. Рос вестн перинатол и педиатр 2015; 60: 4: 205–206. (Kirillov V.I., Bogdanova N.A., Nikitina S.Yu. Alternative approachs to treatment of urinary tract infections in children. Ros vestn perinatol i pediatr 2015; 60: 4: 205–206. (in Russ.)); Dellit T.H., Owens R.C., McGowan J.E. et al. Infectious Diseases Society of America and the Society for Healthcare Epidemiology of America Guidelines for developing an Institutional program of enhance antimicrobial stewardship. Clin Infect Dis 2007; 44: 159–177.

Availability: https://www.ped-perinatology.ru/jour/article/view/412
https://doi.org/10.21508/1027-4065-2016-61-6-32-37