Showing 1 - 12 results of 12 for search '"флуоресцентная визуализация"', query time: 0.52s Refine Results
  1. 1
    Academic Journal

    Contributors: Работа выполнена при финансовой поддержке Российского научного фонда (проект № 23-15-00472).

    Source: Medical Immunology (Russia); Том 26, № 4 (2024); 657-662 ; Медицинская иммунология; Том 26, № 4 (2024); 657-662 ; 2313-741X ; 1563-0625

    File Description: application/pdf

    Relation: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/3030/1959; Albakova Z., Armeev G.A., Kanevskiy L.M., Kovalenko E.I., Sapozhnikov A.M. HSP70 multi-functionality in cancer. Cells, 2020, Vol. 9, no. 3, 587. doi:10.3390/cells9030587.; Alekseeva L.G., Ovsyanikova O.V., Schulga A.A., Grechikhina M.V., Shustova O.A., Kovalenko E.I., Svirshchevskaya E.V., Deyev S.M., Sapozhnikov A.M. Targeted delivery of HSP70 to tumor cells via supramolecular complex based on HER2-specific DARPin9_29 and the barnase:barstar pair. Cells, 2024, Vol. 13, 317. doi:10.3390/cells13040317.; Gastpar R., Gehrmann M., Bausero M.A., Asea A., Gross C., Schroeder J.A., Multhoff G. Heat shock protein 70 surface-positive tumor exosomes stimulate migratory and cytolytic activity of natural killer cells. Cancer Res., 2005, Vol. 65, no. 2, pp. 5238-5247.; Gehrmann M., Liebisch G., Schmitz G., Anderson R., Steinem C., de Maio A., Pockley G., Multhoff G. Tumor-specific Hsp70 plasma membrane localization is enabled by the glycosphingolipid Gb3. PLoS One, 2008, Vol. 3, no. 4, e1925. doi:10.1371/journal.pone.0001925.; Mayer M.P., Bukau B. Hsp70 chaperones: cellular functions and molecular mechanism. Cell Mol. Life Sci., 2005, Vol. 62, no. 6, pp. 670-684.; Molter C.W., Muszynski E.F., Tao Y., Trivedi T., Clouvel A., Ehrlicher A.J. Prostate cancer cells of increasing metastatic potential exhibit diverse contractile forces, cell stiffness, and motility in a microenvironment stiffness-dependent manner. Front. Cell Dev. Biol., 2022, Vol. 10, 932510. doi:10.3389/fcell.2022.932510.; Multhoff G., Botzler C., Wiesnet M., Müller E., Meier T., Wilmanns W., Issels R.D. A Stress-inducible 72- kda heat-shock protein (Hsp72) is expressed on the surface of human tumor cells, but not on normal cells. Int. J. Cancer, 1995, Vol. 61, no. 2, pp. 272-279.; Murphy M.E. The HSP70 family and cancer. Carcinogenesis, 2013, Vol. 34, no. 6, pp: 1181-1188.; Pfister K., Radons J., Busch R., Tidball J.G., Pfeifer M., Freitag L., Feldmann H.-J., Milani V., Issels R., Multhoff G. Patient survival by Hsp70 membrane phenotype: association with different routes of metastasis. J. Cancer, 2007, Vol. 110, pp. 926-935.; Shevtsov M.A., Komarova E.Y., Meshalkina D.A., Bychkova N.V., Aksenov N.D., Abkin S.V., Margulis B.A., Guzhova I.V. Exogenously delivered heat shock protein 70 displaces its endogenous analogue and sensitizes cancer cells to lymphocytes-mediated cytotoxicity. Oncotarget, 2014, Vol. 5, pp. 3101-3114.; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/3030

  2. 2
  3. 3
    Academic Journal

    Contributors: The study was funded by Russian Science Foundation, grant numbers 23-15-00472 and 19-14-00167.

    Source: Medical Immunology (Russia); Том 25, № 3 (2023); 447-452 ; Медицинская иммунология; Том 25, № 3 (2023); 447-452 ; 2313-741X ; 1563-0625

    File Description: application/pdf

    Relation: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/2837/1743; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2837/11969; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2837/11970; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2837/11971; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2837/11972; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2837/11975; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2837/11977; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2837/11982; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2837/12311; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2837/12312; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2837/12315; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2837/12369; Arispe N., Doh M., Simakova O., Kurganov B., de Maio A. Hsc70 and HSP70 interact with phosphatidylserine on the surface of PC12 cells resulting in a decrease of viability. FASEB J., 2004, Vol. 18, no. 14, pp. 1636-1345.; Evgen’ev M., Bobkova N., Krasnov G., Garbuz D., Funikov S., Kudryavtseva A., Kulikov A., Samokhin A., Maltsev A., Nesterova I. The Effect of Human HSP70 Administration on a Mouse Model of Alzheimer’s Disease Strongly Depends on Transgenicity and Age. J. Alzheimers Dis., 2019, Vol. 67, no. 4, pp.1391-1404.; Gurskiy Y.G., Garbuz D.G., Soshnikova N.V., Krasnov A.N., Deikin A., Lazarev V.F., Sverchinskyi D., Margulis B.A., Zatsepina O.G., Karpov V.L., Belzhelarskaya S.N., Feoktistova E., Georgieva S.G., Evgen’ev M.B. The development of modified human HSP70 (HSPA1A) and its production in the milk of transgenic mice. Cell Stress Chaperones, 2016, Vol. 21, no. 6, pp. 1055-1064.; Guzhova I., Kislyakova K., Moskaliova O., Fridlanskaya I., Tytell M., Cheetham M., Margulis B. In vitro studies show that HSP70 can be released by glia and that exogenous HSP70 can enhance neuronal stress tolerance. Brain Res,. 2001, Vol. 914, no. 1-2, pp. 66-73.; Guzhova I.V., Arnholdt A.C., Darieva Z.A., Kinev A.V., Lasunskaia E.B., Nilsson K., Bozhkov V.M., Voronin A.P., Margulis B.A. Effects of exogenous stress protein 70 on the functional properties of human promonocytes through binding to cell surface and internalization. Cell Stress Chaperones, 1998, Vol. 3, no. 1, pp. 67-77.; Hunter-Lavin C., Davies E.L., Bacelar M.M., Marshall M.J., Andrew S.M., Williams J.H. HSP70 release from peripheral blood mononuclear cells. Biochem. Biophys. Res. Commun., 2004, Vol. 324, no. 2, pp. 511-517.; Johnson J.D., Fleshner M. Releasing signals, secretory pathways, and immune function of endogenous extracellular heat shock protein 72. J. Leukoc. Biol, 2006, Vol. 79, pp. 425-434.; Moseley P.L. Heat shock proteins and the inflammatory response. Ann. N. Y. Acad. Sci., 1998, Vol. 856, pp. 206-213.; Multhoff G. Activation of natural killer cells by heat shock protein 70. Int. J. Hyperthermia, 2002, Vol. 18, no. 6, pp. 576-585.; Njemini R., Bautmans I., Onyema O.O., van Puyvelde K., Demanet C., Mets T. Circulating Heat Shock protein 70 in health, aging and disease. BMC Immunol., 2011, Vol. 12, 24. doi:10.1186/1471-2172-12-24.; Pockley A.G. Heat shock proteins in health and disease: therapeutic targets or therapeutic agents? Exp. Rev. Mol. Med., 2001, Vol. 21, pp. 1-21.; Shevtsov M., Pitkin E., Ischenko A., Stangl S., Khachatryan W., Galibin O., Edmond S., Lobinger D., Multhoff G. Ex vivo HSP70-Activated NK Cells in Combination With PD-1 Inhibition Significantly Increase Overall Survival in Preclinical Models of Glioblastoma and Lung Cancer. Front. Immunol., 2019, Vol. 10, 454. doi:10.3389/fimmu.2019.00454.; Srivastava P. Roles of heat-shock proteins in innate and adaptive immunity. Nat. Rev. Immunol., 2002, Vol. 2, no. 3, pp. 185-194.; Tsan M.F., Gao B. Cytokine function of heat shock proteins. Am. J. Physiol. Cell Physiol., 2004, Vol. 286, no. 4, pp. C739-C744.; Yurinskaya M., Zatsepina O.G., Vinokurov M.G., Bobkova N.V., Garbuz D.G., Morozov A.V., Kulikova D.A., Mitkevich V.A., Makarov A.A., Funikov S.Yu., Evgen’ev M.B. The fate of exogenous human HSP70 introduced into animal cells by different means. Curr. Drug Deliv., 2015, Vol. 12, no. 5, pp. 524-532.; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/2837

  4. 4
  5. 5
  6. 6
    Academic Journal

    Source: Biomedical Photonics; Том 7, № 1 (2018); 13-20 ; 2413-9432 ; 10.24931/2413-9432-2018-7-1

    File Description: application/pdf

    Relation: https://www.pdt-journal.com/jour/article/view/214/180; Александров М.Т. Лазерная клиническая биофотометрия (теория, эксперимент, практика). – М.: Техносфера, 2008. – 584 с.; Лакович Дж. Основы флуоресцентной спектроскопии. – М.: Мир, 1986. – 496 с.; Горенков Р.В., Карпов В.Н, Рогаткин Д.А., Шумский В.И. Хроническая гипоксия как один из факторов повышенной флуоресценции эндогенных порфиринов в живых биологических тканях // Биофизика. – 2007. – Т. 52, № 4. – С. 711-717.; Рогаткин Д.А., Быченков О.А., Поляков П.Ю. Неинвазивная спектрофотометрия в современной радиологии: вопросы точности и информативности результатов измерений // Альманах клинической медицины. – 2008. – Т. 17-1. – С. 83-87.; Schor N. Correlation between autofluorescence intensity and tumor area in mice bearing renal cell carcinoma // J Fluoresc. – 2008. – No. 18(6). – Р. 1163-1168.; Дронова О.Б., Третьяков А.А., Мищенко А.Н., Булгакова Н.Н. Исследование возможностей лазер-индуцированной аутофлуоресценции в диагностике пищевода Баррета // Сибирский онкологический журнал. – 2008. – № 4. – С. 11-12.; Лощенов В.Б., Линьков К.Г., Савельева Т.А. и др. Аппаратурное и инструментальное обеспечение флуоресцентной диагностики и фотодинамической терапии // Biomedical photonics. – 2013. – № 3. – С. 17-25.; Соколов В.В., Русаков И.Г., Булгакова Н.Н. и др. Флуоресцентные методы исследования в диагностике поверхностного рака мочевого пузыря (обзор литературы) // Сибирский онкологический журнал. – 2007. – № 4. – С. 117-126.; Чиссов В.И., Соколов В.В., Булгакова Н.Н., Филоненко Е.В. Флуоресцентная эндоскопия, дерматоскопия, спектрофотометрия в диагностике злокачественных опухолей основных локализаций // Российский биотерапевтический журнал. – 2003. – Т. 5, № 4. – С. 42-56.; Филоненко Е.В, Лощенов В.Б., Сотников В.Н. и др. Аутофлуоресцентная диагностика у больных с эпителиальными новообразованиями толстой кишки // Сибирский онкологический журнал. – 2010. – № 5. – С. 17-21.; Rotomskis R., Streckyte G. Fluorescence diagnostics of tumors // Medicina (Kaunas). – 2004. – 40(12). – Р. 1219-1230.; Zhao J., Lui H., McLean D.I., Zeng H. Real-time raman spectroscopy for non-invasive skin cancer detection – preliminary results // ConfProc IEEE Eng Med Biol Soc. – 2008. – 2008. – Р. 3107-3109. doi:10.1109/IEMBS.2008.4649861; Moan J., Bech O., Peng Q., Berg K. Use of 5-aminolevulinic acid in photochemotherapy and fluorescence diagnostics // Tidsskr Nor Laegeforen. – 1998. – 118(8). – Р. 1206-1211.; Гамаюнов С.В., Корчагина К.С., Скребцова Р.Р., Каров В.А. Изучение возможности флуоресцентного мониторинга ФДТ // Сибирский онкологический журнал. – 2015. – № S1. – С. 24.

  7. 7
  8. 8
  9. 9
  10. 10
  11. 11
  12. 12