Recombinant Analogue of Envelope Glycoprotein Domain III of the Tick-Borne Encephalitis Virus and its Application for the Differential Diagnosis of Flavivirus Infections ; Рекомбинантный аналог домена III оболочечного гликопротеина вируса клещевого энцефалита и его применение для дифференциальной диагностики флавивирусных инфекций

Authors: A. G. Poltavchenko, A. V. Ersh, P. V. Filatov, N. D. Ushkalenko, D. V. Shan’shin, D. N. Shcherbakov, А. Г. Полтавченко, А. В. Ерш, П. В. Филатов, Н. Д. Ушкаленко, Д. В. Шаньшин, Д. Н. Щербаков

Contributors: The study was carried out as part of the implementation of the state assignment of the Federal Service for Surveillance on Consumers’ Rights Protection and Human Well-being., Исследование проведено в рамках выполнения государственного задания Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека.

Source: Problems of Particularly Dangerous Infections; № 3 (2024); 154-162 ; Проблемы особо опасных инфекций; № 3 (2024); 154-162 ; 2658-719X ; 0370-1069

Subject Terms: дот-иммуноанализ, tick-borne encephalitis virus, recombinant proteins, serological markers, ELISA, dot immunoassay, вирус клещевого энцефалита, рекомбинантные белки, серологические маркеры, иммуноферментный анализ

File Description: application/pdf

Relation: https://journal.microbe.ru/jour/article/view/2054/1512; Wilson M.E., Weld L.H., Boggild A., Keystone J.S., Kain K.C., von Sonnenburg F., Schwartz E.; GeoSentinel Surveillance Network. Fever in returned travelers: results from the GeoSentinel Surveillance Network. Clin. Infect. Dis. 2007; 44(12):1560–8. DOI:10.1086/518173.; Cleton N., Koopmans M., Reimerink J., Godeke G.-J., Reusken C. Come fly with me: review of clinically important arboviruses for global travelers. J. Clin. Virol. 2012; 55(3):191–203. DOI:10.1016/j.jcv.2012.07.004.; Cleton N.B., Godeke G.-J., Reimerink J., Beersma M.F., van Doorn H.R., Franco L., Goeijenbier M., Jiménez-Clavero M.A., Johnson B.W., Niedrig M., Papa A., Sambri V., Tami A., Velasco-Salas Z.I., Koopmans M.P., Reusken C.B. Spot the differencedevelopment of a syndrome based protein microarray for specific serological detection of multiple flavivirus infections in travelers. PLoS Negl. Trop. Dis. 2015; 9(3):e0003580. DOI:10.1371/journal.pntd.0003580.; Sips G.J., Wilschut J., Smit J.M. Neuroinvasive flavivirus infections. Rev. Med. Virol. 2012; 22(2):69–87. DOI:10.1002/rmv.712.; О состоянии санитарно-эпидемиологического благополучия населения в Российской Федерации в 2021 году: Государственный доклад. [Электронный ресурс]. URL: https://www.rospotrebnadzor.ru/upload/iblock/594/sqywwl4tg5arqff6xvl5dss0l7vvuank/Gosudarstvennyy-doklad.-O-sostoyanii-sanitarno_epidemiologicheskogo-blagopoluchiya-naseleniya-v-Rossiyskoy-Federatsii-v-2021-godu.pdf (дата обращения 21.04.2023).; Darwish N., Alias Y., Khor S. An introduction to denguedisease diagnostics. Trends in Analytical Chemistry. 2015; 67:45–55. DOI:10.1016/j.trac.2015.01.005.; Poltavchenko A.G., Nechitaylo O.V., Filatov P.V., Ersh A.V., Gureyev V.N. Multiplex method for initial complex testing of antibodies to blood transmitted diseases agents. J. Virol. Methods. 2016; 236:231–6. DOI:10.1016/j.jviromet.2016.08.003.; Guzmán M.G., Kourí G. Dengue diagnosis, advances and challenges. Int. J. Infect. Dis. 2004; 8(2):69–80. DOI:10.1016/j.ijid.2003.03.003.; Holbrook M.R., Shope R.E., Barrett A.D.T. Use of recombinant E protein domain III-based enzyme-linked immunosorbent assays for differentiation of tick-borne encephalitis serocomplex flaviviruses from mosquito-borne flaviviruses. J. Clin. Microbiol. 2004; 42(9):4101–10. DOI:10.1128/JCM.42.9.4101-4110.2004.; Терновой В.А., Плясунова И.В., Семенцова А.О., Карташов М.Ю., Швалов А.Н., Чаусов Е.В., Еремеева Л.И., Протопопова Е.В., Чуб Е.В., Баяндин Р.Б., Пьянков О.В., Локтев В.Б., Агафонов А.П., Максютов Р.А. Выявление маркеров лихорадки денге у пациентов после посещения эндемичных по денге стран. Молекулярная генетика, микробиология и вирусология. 2019; 37(3):140–8. DOI:10.17116/molgen201937031140.; Niedrig M., Vaisviliene D., Teichmann A., Klockmann U., Biel S.S. Comparison of six different commercial IgG-ELISA kits for the detection of TBEV-antibodies. J. Clin. Virol. 2001; 20(3):179–82. DOI:10.1016/s1386-6532(00)00178-5.; Weissbach F.H., Hirsch H.H. Comparison of two commercial tick-borne encephalitis virus igg enzyme-linked immunosorbent assays. Clin. Vaccine Immunol. 2015; 22(7):754–60. DOI:10.1128/CVI.00096-15.; Ackermann-Gäumann R., Tritten M.L., Hassan M., Lienhard R. Comparison of three commercial IgG and IgM ELISA kits for the detection of tick-borne encephalitis virus antibodies. Ticks Tick Borne Dis. 2018; 9(4):956–62. DOI:10.1016/j.ttbdis.2018.03.031.; Барышникова В.С., Турченко Ю.В., Шишова А.А., Климентов А.С., Тучинская К.К., Карганова Г.Г. Рекомбинантный гликопротеин E вируса клещевого энцефалита для создания дифференцирующей тест-системы. Биотехнология. 2022; 38(6):72–83. DOI:10.56304/S0234275822060023.; Heinz F.X., Stiasny K. Flaviviruses and their antigenic structure. J. Clin. Virol. 2012; 55(4):289–95. DOI:10.1016/j.jcv.2012.08.024.; Pulkkinen L.I.A., Barrass S.V., Domanska A., Överby A.K., Anastasina M., Butcher S.J. Molecular organisation of tickborne encephalitis virus. Viruses. 2022; 14(4):792. DOI:10.3390/v14040792.; Inagaki E., Sakai M., Hirano M., Muto M., Kobayashi S., Kariwa H., Yoshii K. Development of a serodiagnostic multispecies ELISA against tick-borne encephalitis virus using subviral particles. Ticks Tick Borne Dis. 2016; 7(5):723–9. DOI:10.1016/j.ttbdis.2016.03.002.; Ludolfs D., Reinholz M., Schmitz H. Highly specific detection of antibodies to tick-borne encephalitis (TBE) virus in humans using a domadewsin III antigen and a sensitive immune complex(IC) ELISA. J. Clin. Virol. 2009; 45(2):125–8. DOI:10.1016/j.jcv.2009.03.016.; Sanina N., Chopenko N., Mazeika A., Davydova L., Leonova G., Stenkova A., Uversky V.N., Kostetsky E. Immunogenicity and protective activity of a chimeric protein based on the domain III of the tick-borne encephalitis virus E protein and the OmpF porin of Yersinia pseudotuberculosis incorporated into the TI-complex. Int. J. Mol. Sci. 2018; 19(10):2988. DOI:10.3390/ijms19102988.; Jarmer J., Zlatkovic J., Tsouchnikas G., Vratskikh O., Strauß J., Aberle J.H., Chmelik V., Kundi M., Stiasny K., Heinz F.X. Variation of the specificity of the human antibody responses after tick-borne encephalitis virus infection and vaccination. J. Virol. 2014; 88(23):13845–57. DOI:10.1128/JVI.02086-14.; Кривошеина Е.И., Карташов М.Ю., Найденова Е.В., Ушкаленко Н.Д., Пьянков С.А., Терновой В.А., Локтев В.Б. Разработка способа выявления специфических антител к белку Е вируса жёлтой лихорадки (Flaviviridae: Flavivirus) методом иммуноферментного анализа. Вопросы вирусологии. 2022; 67(4):341–50. DOI:10.36233/0507-4088-123.; Маниатис Т., Фрич Э., Сэмбрук Дж. Методы генетической инженерии. Молекулярное клонирование. М.: Мир; 1984. 479 с.; Laemmli U.K. Cleavage of structural proteins during the assembly of the head of bacteriophage T4. Nature. 1970; 227(5259):680–5. DOI:10.1038/227680a0.; Poltavchenko A., Zaitsev B., Ersh A., Korneev D., Taranov O., Filatov P., Nechitaylo O. The selection and optimization of the detection system for self-contained multiplexed dot-immunoassay. J. Immunoassay Immunochem. 2016; 37(5):540–54. DOI:10.1080/15321819.2016.1174134.; Кунгурцев К.С., Гунгер А.К., Филатов П.В. Программа для инструментального учета результатов дот-иммуноанализа «DOTREADER 2000». Программа для ЭВМ. Свидетельство РФ № 2020611545, опубл. 04.02.2020. Бюл. № 2.; Полтавченко А.Г., Ерш А.В., Филатов П.В., Баяндин Р.Б., Ушкаленко Н.Д. Разработка метода одновременного выявления серологических маркеров лихорадки денге. Инфекционные болезни: новости, мнения, обучение. 2023; 12(1):75–83. DOI:10.33029/2305-3496-2023-12-1-75-83.; Lindblom P., Wilhelmsson P., Fryland L., Matussek A., Haglund M., Sjöwall J., Vene S., Nyman D., Forsberg P., Lindgren P.-E. Factors determining immunological response to vaccination against tick-borne encephalitis virus in older individuals. PLoS One. 2014; 9(6):e100860. DOI:10.1371/journal.pone.0100860.; Kuno G. Serodiagnosis of flaviviral infections and vaccinations in humans. Adv. Virus Res. 2003; 61:3–65. DOI:10.1016/s0065-3527(03)61001-8.; https://journal.microbe.ru/jour/article/view/2054

Availability: https://journal.microbe.ru/jour/article/view/2054
https://doi.org/10.21055/0370-1069-2024-3-154-162

Prevalence of Serological and Molecular-Biological HIV-Infection, HBV and HCV Markers among Medical Workers ; Распространенность серологических и молекулярно-биологических маркеров ВИЧ-инфекции и вирусных гепатитов В и С среди медицинских работников

Authors: E. V. Anufrieva, Yu. V. Ostankova, E. N. Serikova, A. N. Shchemelev, V. S. Davydenko, D. E. Reingardt, E. B. Zueva, Areg A. Totolian, Е. В. Ануфриева, Ю. В. Останкова, Е. Н. Серикова, А. Н. Щемелев, В. С. Давыденко, Д. Э. Рейнгардт, Е. Б. Зуева, Арег А. Тотолян

Source: Problems of Particularly Dangerous Infections; № 4 (2024); 54-62 ; Проблемы особо опасных инфекций; № 4 (2024); 54-62 ; 2658-719X ; 0370-1069

Subject Terms: лабораторная диагностика, HCV, HBV, HIV infection, serological markers, molecular-biological markers, health care workers, laboratory diagnosis, вирус гепатита С, вирус гепатита В, ВИЧ-инфекция, серологические маркеры, молекулярно-биологические маркеры, медицинские работники

File Description: application/pdf

Relation: https://journal.microbe.ru/jour/article/view/2079/1525; Gooch C.M., Wadhwa R. Body Fluid Exposures. 2023. Bookshelf ID: NBK557850.; Denault D., Gardner H. OSHA Bloodborne Pathogen Standards. 2023. Bookshelf ID: NBK570561.; US Public Health Service. Updated US Public Health Service guidelines for the management of occupational exposures to HBV, HCV, and HIV and recommendations for postexposure prophylaxis. MMWR. Recomm. Rep. 2001; 50(RR-11):1–52. PMID: 11442229.; Петрухин Н.Н. Профессиональная заболеваемость мед работников в России и за рубежом (обзор литературы). Гигиена и санитария. 2021; 100(8):845–50. DOI:10.47470/0016-9900-2021-100-8-845-850.; Останкова Ю.В., Семенов А.В., Тотолян А.А. Выявление вируса гепатита В в плазме крови при низкой вирусной нагрузке. Клиническая лабораторная диагностика. 2019; 64(10):635–40. DOI:10.18821/0869-2084-2019-64-10-635-640.; Kao J. Diagnosis of hepatitis B virus infection through serological and virological markers. Expert Rev. Gastroenterol. Hepatol. 2008; 4(2):553–62. DOI:10.1586/17474124.2.4.553.; Bhattarai S., Gyawali M., Sapkota S., Subedi P., Karki D., Lamsal S. Knowledge, attitude and practice of hepatitis B vaccination among clinical medical students at a medical college in Nepal. Europasian J. Med. Sci. 2020; 2(2):17–23. DOI:10.46405/ejms.v2i2.113.; Schillie S., Wester C., Osborne M., Wesolowski L., Ryerson A.B. CDC recommendations for hepatitis C screening among adults – United States, 2020. MMWR. Recomm. Rep. 2020; 69(2):1–17. DOI:10.15585/mmwr.rr6902a1.; Калинина З.П., Мовчан К.Н., Дарьина М.Г., Техова И.Г., Захватова А.С., Мамичева О.Ю., Русакевич К.И. Вопросы профилактики гемоконтактных гепатитов у медицинских работников в стационарах Санкт-Петербурга. Фундаментальные исследования. 2014; 10-5:882–7.; Останкова Ю.В., Валутите Д.Э., Зуева Е.Б., Серикова Е.Н., Щемелев А.Н., Boumbaly S., Balde T.A.L., Семенов А.В. Первичные мутации лекарственной устойчивости вируса гепатита С у пациентов с впервые выявленной ВИЧ-инфекцией. Проблемы особо опасных инфекций. 2020; 3:97–105. DOI:10.21055/0370-1069-2020-3-97-105.; Рейнгардт Д.Э., Останкова Ю.В., Лялина Л.В., Ануфриева Е.В., Семенов А.В., Тотолян А.А. Распространенность мутаций лекарственной устойчивости вируса гепатита С среди пациентов с рецидивом заболевания на терапии препаратами прямого противовирусного действия. ВИЧ-инфекция и иммуносупрессии. 2023; 15(4):86–93. DOI:10.22328/2077-9828-2023-15-4-86-93.; Shchemelev A.N., Boumbaly S., Ostankova Yu.V., Zueva E.B., Semenov A.V., Totolian A.A. Prevalence of drug resistant HIV-1 forms in patients without any history of antiretroviral therapy in the Republic of Guinea. J. Med. Virol. 2022; 95(1):e28184. DOI:10.1002/jmv.28184.; Ilyas F., Burbridge B., Babyn P. Health care-associated infections and the radiology department. J. Med. Imaging Radiat. Sci. 2019; 50(4):596–606.e1. DOI:10.1016/j.jmir.2019.07.011.; Останкова Ю.В., Серикова Е.Н., Семенов А.В., Тотолян А.А. Метод выявления в биологическом материале ДНК вируса гепатита В при низкой вирусной нагрузке на основе гнездовой ПЦР с детекцией по трем вирусным мишеням в режиме реального времени. Клиническая лабораторная диагностика. 2022; 67(9):530–7. DOI:10.51620/0869-2084-2022-67-9-530-537.; Gańczak M., Bohatyrewicz A., Korzeń M., Karakiewicz B. The comparison of sharps injuries reported by doctors versus nurses from surgical wards in the context of the prevalence of HBV, HCV and HIV infections. Pol. Przegl. Chir. 2012; 84(4):190–5. DOI:10.2478/v10035-012-0031-2.; Abalkhail A., Kabir R., Elmosaad Y.M., Alwashmi A.S.S., Alhumaydhi F.A., Alslamah T., Almoammar K.A., Alsalamah Y.A., Mahmud I. Needle-stick and sharp injuries among hospital healthcare workers in Saudi Arabia: a cross-sectional survey. Int. J. Environ. Res. Public Health. 2022; 19(10):6342. DOI:10.3390/ijerph19106342.; Ostankova Yu.V., Shchemelev A.N., Boumbaly S., Balde T.A.L., Zueva E.B., Valutite D.E., Serikova E.N., Davydenko V.S., Skvoroda V.V., Vasileva D.A., Semenov A.V., Esaulenko E.V., Totolian A.A. Prevalence of HIV and viral hepatitis markers among healthcare workers in the Republic of Guinea. Diagnostics (Basel). 2023; 13(3):378. DOI:10.3390/diagnostics13030378.; Якупова Ф.М., Гарипова Р.В., Гилмуллина Ф.С., Созинова Ю.М., Загидов М.М. Вирусные гепатиты В и С как профессиональные заболевания. Медицинский вестник Юга России. 2022; 13(4):39–44. DOI:10.21886/2219-8075-2022-13-4-39-44.; Петрухин Н.Н., Андреенко О.Н., Бойко И.В. Распространённость парентеральных вирусных гепатитов как профессионального заболевания у медицинских работников в Северо-Западном федеральном округе. Медицина труда и промышленная экология. 2021; 61(5):324–9.; Информационный бюллетень «ВИЧ-инфекция в Санкт-Петербурге по состоянию на 01.01.2024 г.» / СПб ГБУЗ «Центр по профилактике и борьбе со СПИД и инфекционными заболеваниями». [Электронный ресурс]. URL: https://www.hiv-spb.ru/lsn/informaczionnyie-byulleteni.html (дата обращения 18.06.2024).; Федеральная служба по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека. Требования санитарного законодательства по вопросу организации вакцинопрофилактики персонала медицинских организаций. [Электронный ресурс]. URL: https://www.rospotrebnadzor.ru/ (дата обращения 25.04.2024).; Araújo S.D.R., Malheiros A.P., Sarmento V.P., Nunes H.M., Freitas P.E.B. Molecular investigation of occult hepatitis B virus infection in a reference center in Northern Brazil. Braz. J. Infect. Dis. 2022; 26(3):102367. DOI:10.1016/j.bjid.2022.102367.; Manuylov V., Chulanov V., Bezuglova L., Chub E., Karlsen A., Kyuregyan K., Ostankova Yu., Semenov A., Osipova L., Tallo T., Netesova I., Tkachuk A., Gushchin V., Netesov S., Magnius L.O., Norder H. Genetic diversity and possible origins of the hepatitis B virus in Siberian Natives. Viruses. 2022; 14(11):2465. DOI:10.3390/v14112465.; Raimondo G., Locarnini S., Pollicino T., Levrero M., Zoulim F., Lok A.S.; Taormina Workshop on Occult HBV Infection Faculty Members. Update of the statements on biology and clinical impact of occult hepatitis B virus infection. J. Hepatol. 2019; 71(2):397–408. DOI:10.1016/j.jhep.2019.03.034.; Rastegarvand N., Makvandi M., Samarbafzadeh A., Rasti M., Neisi N., Pouremamali A., Teimoori A., Shabani A. Molecular characterization of pre-core/core and S region of hepatitis B virus in hemodialysis patients with occult hepatitis B infection. Jundishapur J. Microbiol. 2015; 8(10):e23686. DOI:10.5812/jjm.23686.; https://journal.microbe.ru/jour/article/view/2079

Availability: https://journal.microbe.ru/jour/article/view/2079
https://doi.org/10.21055/0370-1069-2024-4-54-62

Prevalence of parenteral viral hepatitis B and C markers among migrants in the North-West Federal District ; Распространенность маркеров парентеральных вирусных гепатитов В и С среди мигрантов в Северо-Западном федеральном округе

Authors: E. N. Serikova, Yu. V. Ostankova, E. V. Anufrieva, D. E. Reingardt, A. N. Schemelev, E. B. Zueva, A. R. Ivanova, A. V. Semenov, A. A. Totolian, Е. Н. Серикова, Ю. В. Останкова, Е. В. Ануфриева, Д. Э. Рейнгардт, А. Н. Щемелев, Е. Б. Зуева, А. Р. Иванова, А. В. Семенов, А. А. Тотолян

Source: HIV Infection and Immunosuppressive Disorders; Том 16, № 3 (2024); 94-106 ; ВИЧ-инфекция и иммуносупрессии; Том 16, № 3 (2024); 94-106 ; 2077-9828 ; 10.22328/2077-9828-2024-16-3

Subject Terms: лабораторная диагностика, hepatitis C virus, serological markers, molecular biological markers, labor migrants, laboratory diagnostics, вирус гепатита С, серологические маркеры, молекулярно-биологические маркеры, трудовые мигранты

File Description: application/pdf

Relation: https://hiv.bmoc-spb.ru/jour/article/view/940/605; Lampimukhi M., Qassim T., Venu R., Pakhala N., Mylavarapu S., Perera T., Sathar B.S., Nair A. A Review of Incidence and Related Risk Factors in the Development of Hepatocellular Carcinoma // Cureus. 2023. Vol. 15, No. 11. e49429. doi:10.7759/cureus.49429.; World Health Organization. Hepatitis B. Key facts. http://www.who.int/news-room/fact-sheets/detail/hepatitis-b (access date: 12.03.2024); Global Hepatitis Report. World Health Organization. 2023. https://www.who.int/ru/news-room/fact-sheets/detail/hepatitis-c (access date: 01.02.2024).; Струин Н.Л., Шубина А.С. Социальные инфекции у мигрантов, факторы, способствующие заболеваемости: обзор литературы // Международный журнал прикладных и фундаментальных исследований. 2015. Т. 11, № 5. С. 676–679. https://elibrary.ru/uzmssv.; Aguilar R., Cruz A., Jiménez A., Almuedo A., Saumell C.R., Lopez M.G., Gasch O., Falcó G., Jiménez-Lozano A., Martínez-Perez A., Sanchez-Collado C., Tedesco A., López M.C., Pinazo M.J., Leonel T., Bisoffi Z., Färnert A., Dobaño C., Requena-Méndez A. Evaluation of the accuracy of a multi-infection screening test based on a multiplex immunoassay targeting imported diseases common in migrant populations // Travel. Med. Infect. Dis. 2024. Vol. 57. Р. 102681. doi:10.1016/j.tmaid.2023.102681.; Abbas M., Aloudat T., Bartolomei J., Carballo M., Durieux-Paillard S., Gabus L., Jablonka A., Jackson Y., Kaojaroen K., Koch D., Martinez E., Mendelson M., Petrova-Benedict R., Tsiodras S., Christie D., Saam M., Hargreaves S., Pittet D. Migrant and refugee populations: a public health and policy perspective on a continuing global crisis // Antimicrob Resist Infect Control. 2018. Vol. 7. Р. 113. doi:10.1186/s13756-018-0403-4.; Baggaley R.F., Nazareth J., Divall P., Pan D., Martin C.A., Volik M., Seguy N.S., Yedilbayev A., Reinap M., Vovc E., Mozalevskis A., Dadu A., Waagensen E., Kruja K., Sy T.R., Nellums L., Pareek M. National policies for delivering tuberculosis, HIV and hepatitis B and C virus infection services for refugees and migrants among Member States of the WHO European Region // J. Travel. Med. 2023. Vol. 30, No. 1. taac136. doi:10.1093/jtm/taac136.; ECDC. Hepatitis B and C Epidemiology in Selected Population Groups in the EU/EEA. Published 11 September 2018. 2018. https://www.ecdc.europa.eu/en/publications-data/hepatitis-b-and-c-epidemiology-selected-population-groups-eueea (access date: 10.03.2024).; ECDC. Epidemiological Assessment of Hepatitis B and C among Migrants in the EU/EEA. Stockholm: European Centre for Disease Prevention and Control, 2016. https://www.ecdc.europa.eu/en/publications-data/epidemiological-assessment-hepatitis-b-and-c-among-migrants-eueea (access date: 10.03.2024).; Останкова Ю.В., Семенов А.В., Тотолян Арег А. Выявление вируса гепатита В в плазме крови при низкой вирусной нагрузке // Клиническая лабораторная диагностика. 2019. Т. 64, № 10. С. 635–640. doi:10.18821/0869-2084-2019-64-10-635-640.; Лифшиц М.Л., Неклюдова Н.П. Влияние международной и внутренней миграции на распространение некоторых инфекционных заболеваний и наркомании в регионах РФ // Экономика региона. 2019. Т. 15, № 4. С. 1184–1198. https://doi.org/10.17059/2019-4-17.; Исполнительный комитет СНГ. Государства — участники СНГ. https://cis.minsk.by/map (access date: 12.02.2024); Health Organization (2016) Hepatitis B. WHO. Combating hepatitis B and C to reach elimination by 2030. 20 p. 2016a. https://apps.who.int/iris/bitstream/handle/10665/206453/WHO_HIV_2016.04_eng.pdf (access date: 12.02.2024).; Gomes C., Wong R.J., Gish R.G. Global perspective on hepatitis B virus infections in the era of effective vaccines // Clinics in Liver Disease. 2019. Vol. 23, No. 3. Р. 383–399. https://doi.org/10.1016/j.cld.2019.04.001.; Ануфриева Е.В., Серикова Е.Н., Останкова Ю.В., Щемелев А.Н., Давыденко В.С., Рейнгардт Д.Э., Зуева Е.Б., Тотолян А.А. Структура распределения маркеров некоторых гемоконтактных инфекций среди лиц изпенитенциарных учреждений // ВИЧ-инфекция ииммуносупрессии. 2023. Т. 15, № 3. С. 95–104. https://doi.org/10.22328/2077-9828-2023-15-3-95-104.; Останкова Ю.В., Серикова Е.Н., Семенов А.В., Банцевич М.Д., Филипович-Вигньевич С.Б., Зуева Е.Б., Васильева Г.В., Заря Я.В., Сайтгалина М.А., Иванова А.Р., Жабасова А.С., Тотолян Арег А. Характеристика связанных сHBsAg-негативной формой заболевания мутаций вируса гепатита Вупациентов гемодиализных центров // Проблемы особо опасных инфекций. 2021. № 4. С. 96–104. https://doi.org/10.21055/0370-1069-2021-4-96-104.; Семёнов А.В., Останкова Ю.В., Серикова Е.Н., Зуева Е.Б., Тотолян Арег А. Оптимизация алгоритма диагностики маркеров хронического гепатита В у пациентов с впервые выявленной ВИЧ-инфекцией // Клиническая лабораторная диагностика. 2020. Т. 65, № 9. С. 574–579. doi:10.18821/0869-2084-2020-65-9-574-579.; Соболева Н.В., Карлсен А.А., Кожанова Т.В., Кичатова В.С., Клушкина В.В., Исаева О.В., Игнатьева М.Е., Романенко В.В., Ооржак Н.Д., Малинникова Е.Ю., Кюрегян К.К., Михайлов М.И. Распространенность вируса гепатита С среди условно здорового населения Российской Федерации // Журнал инфектологии. 2017. Т. 9, № 2. С. 56–64. doi:10.22625/2072-6732-2017-9-2-56-64.; Shi Y.H., Shi C.H. Molecular characteristics and stages of chronic hepatitis B virus infection // World J. Gastroenterol. 2009. Vol. 15. Р. 3099– 3105. https://doi.org/10.3748/wjg.15.30991.; Araújo S.D.R., Malheiros A.P., Sarmento V.P., Nunes H.M., Freitas P.E.B. Molecular investigation of occult hepatitis B virus infection in a reference center in Northern Brazil // Braz. J. Infect. Dis. 2022. Vol. 26, No. 3. Р. 102367. https://doi.org/10.1016/j.bjid.2022.102367.; Алсалих Н.Д., Сычев Д.А., Потемкин И.А., Кюрегян К.К., Михайлов М.И. Распространенность серологических маркеров вирусных гепатитов среди трудовых мигрантов, прибывающих в Российскую Федерацию // Журнал инфектологии. 2017. Т. 9, № 2. С. 80–85. doi:10.22625/2072-6732-2017-9-2-80-85.; Infektion sepidemiologisches Jahrbuch meldepflichtiger Krankheiten fur 2016. Robert Koch-Institut. Berlin. 2017. URL:http://www.rki.de/DE/Content/Infekt/Jahrbuch/Jahrbuch_2016.pdf?__blob=publicationFile (access date: 10.03.2024).; Noori T., Hargreaves S., Greenaway C., van der Werf M., Driedger M., Morton R.L., Hui C., Requena-Mendez A., Agbata E., Myran D.T., Pareek M., Campos-Matos I., Nielsen R.T., Semenza J., Nellums L.B., Pottie K.; ECDC ad hoc scientific panel. Strengthening screening for infectious diseases and vaccination among migrants in Europe: What is needed to close the implementation gaps? // Travel. Med. Infect. Dis. 2021. Vol. 39. Р. 101715. doi:10.1016/j.tmaid.2020.101715.; Rossi C., Shrier I, Marshall L., Cnossen S., Schwartzman K., Klein M.B., Schwarzer G., Greenaway C. Seroprevalence of chronic hepatitis B virus infection and prior immunity in immigrants and refugees: a systematic review and meta-analysis // PLoS One. 2012. Vol. 7, No. 9. Р. e44611. doi:10.1371/journal.pone.0044611.; Семенов А.В., Останкова Ю.В. Оккультный (скрытый) гепатит В: проблемы лабораторной диагностики // Инфекционные болезни: новости, мнения, обучение. 2019. Т. 8, № 3. С. 60–69. doi:10.24411/2305-3496-2019-13010.

Availability: https://hiv.bmoc-spb.ru/jour/article/view/940
https://doi.org/10.22328/2077-9828-2024-16-3-94-106

Evaluation of the Intensity of Post-Vaccination Immunity to Hepatitis B among HIV-infected and Conditionally Healthy Persons in Western Siberia ; Оценка напряженности поствакцинального иммунитета к гепатиту В среди ВИЧ­инфицированных и условно­здоровых лиц на территории Западной Сибири

Authors: M. Yu. Kartashov, K. A. Svirin, E. I. Krivosheina, E. V. Chub, V. A. Ternovoi, G. V. Kochneva, М. Ю. Карташов, К. А. Свирин, Е. И. Кривошеина, Е. В. Чуб, В. А. Терновой, Г. В. Кочнева

Source: Epidemiology and Vaccinal Prevention; Том 22, № 6 (2023); 139-147 ; Эпидемиология и Вакцинопрофилактика; Том 22, № 6 (2023); 139-147 ; 2619-0494 ; 2073-3046

Subject Terms: серологические маркеры, HIV infection, vaccination, serological markers, ВИЧ-инфекция, вакцинопрофилактика

File Description: application/pdf

Relation: https://www.epidemvac.ru/jour/article/view/1914/998; Revill P.A., Chisari F.V., Block J.M., et al. A global scientific strategy to cure hepatitis B. Lancet Gastroenterol.Hepatol. 2019; 4(7): 545–558. https/doi.org/10.1016/S2468-1253(19)30119-0; Nguyen M.H., Wong G., Gane E., et al. Hepatitis B Virus: Advances in Prevention, Diagnosis, and Therapy. Clin.Microbiol. Rev. 2020; 33(2): 1–19. https/doi.org/10.1128/CMR.00046-19.; Cheng Z., Lin P., Cheng N. HBV/HIV coinfection: impact on the development and clinical treatment of liver diseases. Front. Med. (Lausanne). 2021; 8: 713–734. https://doi.org/10.3389/fmed.2021.713981; Chemin I., Trépo C. Clinical impact of occult HBV infections. J. Clin. Virol.2005; 34:15–21. https://doi.org/10.1016/s1386-6532(05)80005-8; Liaw Y.F., Brunetto M.R., Hadziyannis S. The natural history of chronic HBV infection and geographical differences.AntivirTher. 2010; 15:25–33. https://doi.org/10.3851/IMP1621; Lara-Pezzi E., Gómez-Gaviro M.V., et al. The hepatitis B virus X protein promotes tumor cell invasion by inducing membrane-type matrix metalloproteinase-1 and cyclooxygenase2 expression. J. Clin. Investig. 2002; 110(12): 1831–1838. https://doi.org/10.1172/JCI15887; Mohammed N.A., Abd El-Aleem S.A., El-Hafiz H.A., McMahon R.F. Distribution of constitutive (COX-1) and inducible (COX-2) cyclooxygenase in postviral human liver cirrhosis: a possible role for COX-2 in the pathogenesis of liver cirrhosis. J. Clin. Pathol. 2004; 57(4): 350–354. https://doi.org/10.1136/jcp.2003.012120; Qadir M.I. Hepatitis in AIDS patients. Rev. Med. Virol. 2018; 28(1). https://doi.org/10.1002/rmv.1956; Sulkowski M.S. Viral hepatitis and HIV coinfection. J. Hepatol. 2008; 48(2): 353–367. https://doi.org/10.1016/j.jhep.2007.11.009; Базыкина Е. А., Троценко О. Е., Котова В. О. и др. Парентеральные вирусные гепатиты В, С и D у ВИЧ-инфицированных пациентов (обзор литературы). Дальневосточный Журнал Инфекционной Патологии. 2016; 31:38–47.; Карташов М. Ю., Свирин К. А., Кривошеина Е. И. и др. Распространенность и молекулярно-генетическая характеристика вирусов парентеральных гепатитов B, C и D у ВИЧ-позитивных лиц в Новосибирской области.Вопросывирусологии. 2022; 67(5): 423–438. https://doi.org/10.36233/0507-4088-133; Dasgupta P., Henshaw C., Youlden D.R., et al. Global Trends in Incidence Rates of Primary Adult Liver Cancers: A Systematic Review and Meta-Analysis. Front. Oncol.2020; 10:171. https://doi.org/10.3389/fonc.2020.00171; Elbahrawy A., Atalla H., Alboraie M., et al. Recent Advances in Protective Vaccines against Hepatitis Viruses: A Narrative Review. Viruses. 2023;15(1):214. https://doi.org/10.3390/v15010214; Nayagam S., Thursz M., Sicuri E., et al. Requirements for global elimination of hepatitis B: a modelling study. Lancet Infect. Dis. 2016; 16(12): 1399–1408. https://doi.org/10.1016/S1473-3099(16)30204-3; Pattyn J., Hendrickx G., Vorsters A., Van Damme P. Hepatitis B Vaccines. J. Infect. Dis. 2021; 224(12 Suppl 2):343–351. https://doi.org/10.1093/infdis/jiaa668; Chang M.H., Chen D.S. Prevention of hepatitis B. Cold Spring HarbPerspect Med. 2015; 5(3):a021493 https://doi.org/10.1101/cshperspect.a021493; Kao J.H. Diagnosis of hepatitis B virus infection through serological and virological markers.Expert Rev. Gastroenterol. Hepatol. 2008; 2(4): 553–62. https://doi.org/10.1586/17474124.2.4.553.; Кюрегян К. К., Дьяррассуба А, Михайлов М. А. Лабораторнаядиагностикавирусныхгепатитов. Инфекционные болезни: новости, мнения обучение. 2015; 5: 26–36.; Locarnini S.A., Yuen L. Molecular genesis of drug-resistant and vaccine-escape HBV mutants. AntivirTher. 2010; 15(3): 451–461. https://doi.org/10.3851/IMP1499; Cooreman M.P., Leroux-Roels G., Paulij W.P. Vaccine- and hepatitis B immune globulin-induced escape mutations of hepatitis B virus surface antigen. J. Biomed. Sci. 2001; 8(3): 237–47. https://doi.org/10.1007/BF02256597; Tabor E. Infections by hepatitis B surface antigen gene mutants in Europe and North America. J. Med. Virol. 2006; 78 (1): 43–47. https://doi.org/10.1002/jmv.20606; Калинина З. П., Дарьина М. Г., Мовчан К. Н. и др. и др. О поствакцинальном иммунитете против вирусного гепатита B у медицинских работников СанктПетербурга Инфекция и иммунитет. 2015; 5(1): 89–92. https://doi.org/10.15789/2220-7619-2015-1-89-92; Еремеева Ж. Г., Минуллин И. К., Платонова О. В. и др. Диагностика и специфическая профилактика вирусного гепатита в условиях специализированного лечебно-профилактического учреждения. Казанский медицинский журнал. 2015; 96(6): 923–929. https://doi.org/10.17750/KMJ2015-923; Полянина А. В., Быстрова Т. Н., Залесских А. А. Оценка популяционного иммунитета к вирусу гепатита Ву населения крупного города европейской части России. Здоровье населения и среда обитания (ЗНиСО). 2019;12 (321):62–65. http://doi.org/10.35627/2219-5238/2019-321-12-62-65; Озерецковский Н. А. Вакцинация ВИЧ-инфицированных детей и взрослых. Эпидемиология и Вакцинопрофилактика. 2014; 3 (76): 56–62.; Власенко Н. В., Чурилова Н. С., Лоскутова Т. А. и др. Оценка эпидемиологической значимости молекулярногенетических факторов в отношении напряженности поствакцинального иммунитета против гепатита B. Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии.2022; 2 (99): 149–159. http://doi:10.36233/0372-9311-246; https://www.epidemvac.ru/jour/article/view/1914

Availability: https://www.epidemvac.ru/jour/article/view/1914
https://doi.org/10.31631/2073-3046-2023-22-6-139-147

Prevalence of Markers of Certain Blood-Borne Viral Infections in Pregnant Women and Their Partners in the Republic of Guinea ; Распространенность маркеров некоторых гемоконтактных вирусных инфекций у беременных женщин и их партнеров в Гвинейской Республике

Authors: T.A. L. Balde, Yu. V. Ostankova, S. Boumbaly, D. E. Valutite, V. S. Davydenko, A. N. Shchemelev, E. N. Shchemelev, E. B. Zueva, E. V. Anufrieva, E. V. Astapchik, O. V. Arbuzova, V. V. Skvoroda, D. A. Vasil’eva, E. V. Esaulenko, A. V. Semenov, Areg A. Totolian, Ю. В. Останкова, Д. Э. Валутите, В. С. Давыденко, А. Н. Щемелев, Е. Н. Серикова, Е. Б. Зуева, Е. В. Ануфриева, Е. В. Астапчик, О. В. Арбузова, В. В. Скворода, Д. А. Васильева, Е. В. Эсауленко, А. В. Семенов, Арег А. Тотолян

Source: Problems of Particularly Dangerous Infections; № 3 (2023); 51-58 ; Проблемы особо опасных инфекций; № 3 (2023); 51-58 ; 2658-719X ; 0370-1069

Subject Terms: Гвинейская Республика, HCV, HIV, serological markers, molecular-genetic markers, laboratory diagnostics, pregnant women, partners of pregnant women, Republic of Guinea, ВГС, ВИЧ, серологические маркеры, молекулярно-генетические маркеры, лабораторная диагностика, беременные женщины, партнеры беременных женщин

File Description: application/pdf

Relation: https://journal.microbe.ru/jour/article/view/1854/1405; World Health Organization. Hepatitis B. Key facts. [Электронный ресурс]. URL: http://www.who.int/news-room/factsheets/detail/hepatitis-b (дата обращения 08.09.2022).; World Health Organization. Hepatitis C. Key facts. [Электронный ресурс]. URL: https://www.who.int/news-room/fact-sheets/detail/hepatitis-c (дата обращения 08.09.2022).; World Health Organization. HIV. Key facts. [Электронный ресурс]. URL: https://cdn.who.int/media/docs/default-source/hq-hiv-hepatitis-and-stis-library/key-facts-hiv-2020.pdf?sfvrsn=582c3f6e_3 (дата обращения 08.09.2022).; Raizada A., Dwivedi S., Bhattacharya S. The hepatitis B, hepatitis C and HIV co-infection at an antiretroviral centre in Delhi. Trop. Doct. 2011; 41(3):154–6. DOI:10.1258/td.2011.100440.; Degenhardt L., Charlson F., Stanaway J., Larney S., Alexander L.T., Hickman M., Cowie B., Hall W.D., Strang J., Whiteford H., Vos T. Estimating the burden of disease attributable to injecting drug use as a risk factor for HIV, hepatitis C, and hepatitis B: findings from the Global Burden of Disease Study 2013. Lancet Infect. Dis. 2016; 16(12):1385–98. DOI:10.1016/S1473-3099(16)30325-5.; Roser М., Ritchie Н. HIV/AIDS. [Электронный ресурс]. URL: https://ourworldindata.org/hiv-aids (дата обращения 08.09.2022).; GBD 2019 Hepatitis B Collaborators. Global, regional, and national burden of hepatitis B, 1990–2019: a systematic analysis for the Global Burden of Disease Study 2019. Lancet Gastroenterol Hepatol. 2022; 7(9):796–829. DOI:10.1016/S2468-1253(22)00124-8.; The Polaris Observatory HCV Collaborators. Global change in hepatitis C virus prevalence and cascade of care between 2015 and 2020: a modelling study. Lancet Gastroenterol Hepatol. 2022; 7(5):396–415. DOI:10.1016/S2468-1253(21)00472-6.; Nkuoh G.N., Meyer D.J., Nshom E.M. Women’s attitudes toward their partners’ involvement in antenatal care and prevention of mother-to-child transmission of HIV in Cameroon, Africa. J. Midwifery Womens Health. 2013; 58(1):83–91. DOI:10.1111/j.1542-2011.2012.00208.x.; Hershow R.B., Zimba C.C., Mweemba O., Chibwe K.F., Phanga T., Dunda W., Matenga T., Mutale W., Chi B.H., Rosenberg N.E., Maman S. Perspectives on HIV partner notification, partner HIV self-testing and partner home-based HIV testing by pregnant and postpartum women in antenatal settings: a qualitative analysis in Malawi and Zambia. J. Int. AIDS Soc. 2019; 22 Suppl 3(Suppl Suppl 3):e25293. DOI:10.1002/jia2.25293.; Amano A., Musa A. Male involvement in PMTCT and associated factors among men whom their wives had ANC visit 12 months prior to the study in Gondar town, North west Ethiopia, December, 2014. Pan Afr. Med. J. 2016; 24:239. DOI:10.11604/pamj.2016.24.239.8460.; Drammeh B., Medley A., Dale H., De A.K., Diekman S., Yee R., Aholou T., Lasry A., Auld A., Baack B., Duffus W., Shahul E., Wong V., Grillo M., Al-Samarrai T., Ally S., Nyangulu M; MCHD2; Nyirenda R., Olivier J., Chidarikire T., Khanyile N., Kayange A.A., Rwabiyago O.E., Kategile U., Bisimba J., Weber R.A., Ncube G., Maguwu O., Pietersen I., Mali D., Dzinotyiweyi E., Nelson L., Bosco M.J., Dalsone K., Apolot M., Anangwe S., Soo L.K., Mugambi M., Mbayiha A., Mugwaneza P., Malamba S.S., Phiri A.; MCD28; Chisenga T., Boyd M., Temesgan C., Shimelis M., Weldegebreal T., Getachew M., Balachandra S., Eboi E., Shasha W., Doumatey N., Adjoua D., Meribe C., Gwamna J., Gado P., John-Dada I., Mukinda E., Lukusa L.F.K., Kalenga L., Bunga S., Achyut V., Mondi J., Loeto P., Mogomotsi G., Ledikwe J., Ramphalla P., Tlhomola M., Mirembe J.K., Nkwoh T., Eno L., Bonono L., Honwana N., Chicuecue N., Simbine A., Malimane I., Dube L., Mirira M., Mndzebele P., Frawley A., Cardo Y.M.R., Behel S. Sex differences in HIV testing – 20 PEPFAR-supported sub-Saharan African countries, 2019. MMWR Morb. Mortal. Wkly Rep. 2020; 69(48):1801–6. DOI:10.15585/mmwr.mm6948a1.; Guinea Population. [Электронный ресурс]. URL: https://countrymeters.info/en/Guinea (дата обращения 18.08.2022).; Chersich M.F., Gray G., Fairlie L,, Eichbaum Q., Mayhew S., Allwood B., English R., Scorgie F., Luchters S., Simpson G., Haghighi M.M., Pham M.D., Rees H. COVID-19 in Africa: care and protection for frontline healthcare workers. Global. Health. 2020; 16(1):46. DOI:10.1186/s12992-020-00574-3.; Найденова Е.В., Лопатин A.A., Сафронов В.A., Коломоец Е.В., Левковский A.E., Силла А.Л., Старшинов В.A., Щербакова С.А., Малеев В.В. Обеспечение биологической безопасности при проведении противоэпидемических мероприятий в период ликвидации эпидемии лихорадки Эбола в Гвинейской Республике. Инфекционные болезни: новости, мнения, обучение. 2018; 7(3):102–8. DOI:10.24411/2305-3496-2018-13015.; Коломоец Е.В., Ицков Я.Ю., Найденова Е.В., Konomou V., Keita S., Lamah R. Создание и обеспечение функционирования госпитальной сети для лечения больных COVID-19 в Гвинейской Республике. Проблемы особо опасных инфекций. 2021; 3:66–71. DOI:10.21055/0370-1069-2021-3-66-71.; Annuaire Statistique 2021. [Электронный ресурс]. URL: http://www.stat-guinee.org/images/Documents/Publications/INS/annuelles/annuaire/Annuaire_Statistique_2021_vf.pdf (дата обращения 20.08.2022).; Leno N.N., Delamou A., Koita Y., Diallo T.S., Kaba A., Delvaux T., Van Damme W., Laga M. Ebola virus disease outbreak in Guinea: what effects on prevention of mother-to-child transmission of HIV services? Reprod. Health. 2018; 15(1):60. DOI:10.1186/s12978-018-0502-y.; Camara B.S., Delamou A., Diro E., Béavogui A.H., El Ayadi A.M., Sidibé S., Grovogui F.M., Takarinda K.C., Bouedouno P., Sandouno S.D., Okumura J., Baldé M.D., Van Griensven J., Zachariah R. Effect of the 2014/2015 Ebola outbreak on reproductive health services in a rural district of Guinea: an ecological study. Trans. R. Soc. Trop. Med. Hyg. 2017; 111(1):22–9. DOI:10.1093/trstmh/trx009.; Balde T.A.L., Boumbaly S., Серикова Е.Н., Валутите Д.Э., Щемелев А.Н., Останкова Ю.В., Зуева Е.Б., Семенов А .В. Сравнительный анализ вертикального риска передачи некоторых гемоконтактных инфекций в Гвинейской Республике. Проблемы особо опасных инфекций. 2021; 1:87–94. DOI:10.21055/0370-1069-2021-1-87-94.; Останкова Ю.В., Серикова Е.Н., Семенов А.В., Тотолян А рег А . Метод выявления в биологическом материале ДНК вируса гепатита В при низкой вирусной нагрузке на основе гнездовой ПЦР с детекцией по трем вирусным мишеням в режиме реального времени. Клиническая лабораторная диагностика. 2022; 67(9):530–7. DOI:10.51620/0869-2084-2022-67-9-530-537.; Mbange A.E., Kaba D., Diouara A.A.M., Diop-Ndiaye H., Ngom-Ngueye N.F., Dieng A., Lo S., Toure K.N., Fall M., Mbacham W.F., Diallo M.S., Cisse M., Mboup S., Kane C.T. Surveillance of transmitted HIV-1 antiretroviral drug resistance in the context of decentralized HIV care in Senegal and the Ebola outbreak in Guinea. BMC Res. Notes. 2018; 11(1):723. DOI:10.1186/s13104-018-3804-9.; Ingasia L.A.O., Kostaki E.G., Paraskevis D., Kramvis A. Global and regional dispersal patterns of hepatitis B virus genotype E from and in Africa: A full-genome molecular analysis. PLoS One. 2020; 15(10):e0240375. DOI:10.1371/journal.pone.0240375.; Clifford G.M., Waterboer T., Dondog B., Qiao Y.L., Kordzaia D., Hammouda D., Keita N., Khodakarami N., Raza S.A., Sherpa A.T., Zatonski W., Pawlita M., Plummer M., Franceschi S. Hepatitis C virus seroprevalence in the general female population of 9 countries in Europe, Asia and Africa. Infect. Agent. Cancer. 2017; 12:9. DOI:10.1186/s13027-017-0121-1.; Naughton B., Bulterys M.A., Mugisha J., Mujugira A., Boyer J., Celum C., Weiner B., Sharma M. ‘If there is joy… I think it can work well’: a qualitative study investigating relationship factors impacting HIV self-testing acceptability among pregnant women and male partners in Uganda. BMJ Open. 2023; 13(2):e067172. DOI:10.1136/bmjopen-2022-067172.; UNAIDS data 2020. UNAIDS. Jul 2020. [Электронный ресурс]. URL: https://www.unaids.org/en/resources/documents/2020/unaids-data (дата обращения 18.08.2022).; Bekolo C.E., Soumah M.M., Tiemtore O.W., Diallo A., Yuma J.D., Di Stefano L., Metcalf C., Cisse M. Assessing the outcomes of HIV-infected persons receiving treatment for Kaposi sarcoma in Conakry-Guinea. BMC Cancer. 2017; 17(1):806. DOI:10.1186/s12885-017-3771-x.; Shchemelev A.N., Boumbaly S., Ostankova Y.V., Zueva E.B., Semenov A.V., Totolian A.A. Prevalence of drug resistant HIV-1 forms in patients without any history of antiretroviral therapy in the Republic of Guinea. J. Med. Virol. 2022; 95(1):e28184. DOI:10.1002/jmv.28184.; Бумбали С., Серикова Е.Н., Семенов А.В., Останкова Ю.В., Валутите Д.Э., Щемелев А.Н., Зуева Е.Б., Балде Т.А.Л., Баимова Р.Р., Тотолян А .А. Значимость лабораторной диагностики парентеральных вирусных гепатитов в Гвинейской Республике. Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2021; 98(4):440–9. DOI:10.36233/0372-9311-116.; Sanjuán R. The social life of viruses. Annu. Rev. Virol. 2021; 8(1):183–99. DOI:10.1146/annurev-virology-091919-071712.; Huy B.V., Vernavong K., Kính N.V. HBV and HCV coinfection among HIV/AIDS patients in the National hospital of tropical diseases, Vietnam. AIDS Res. Treat. 2014; 2014:581021. DOI:10.1155/2014/581021.; https://journal.microbe.ru/jour/article/view/1854

Availability: https://journal.microbe.ru/jour/article/view/1854
https://doi.org/10.21055/0370-1069-2023-3-51-58

Clinical and Diagnostic Value of Inflammatory Bowel Diseases' Serological Markers in Children (Literature Review) ; Клинико-диагностическая ценность серологических маркеров воспалительных заболеваний кишечника у детей (обзор литературы)

Authors: Aelita A. Kamalova, Marina A. Khanafina, Galina A. Garina, А. А. Камалова, М. А. Ханафина, Г. А. Гарина

Contributors: Not specified., Отсутствует.

Source: Pediatric pharmacology; Том 20, № 4 (2023); 309-317 ; Педиатрическая фармакология; Том 20, № 4 (2023); 309-317 ; 2500-3089 ; 1727-5776

Subject Terms: дети, serological markers, biomarkers, children, серологические маркеры, биомаркеры

File Description: application/pdf

Relation: https://www.pedpharma.ru/jour/article/view/2346/1524; Hammer T, Langholz E. The epidemiology of inflammatory bowel disease: balance between East and West? A narrative review. Dig Med Res. 2020;3:48. doi: https://doi.org/10.21037/dmr-20-149; Burisch J, Munkholm P. The epidemiology of inflammatory bowel disease. Scand J Gastroenterol. 2015;50(8):942-951. doi: https://doi.org/10.1097/MOG.0b013e32836229fb; Корниенко Е.А., Хавкин А.И., Федулова Е.Н. и др. Проект рекомендаций российского общества детских гастроэнтерологов, гепатологов и нутрициологов по диагностике и лечению болезни Крона у детей // Экспериментальная и клиническая гастроэнтерология. — 2019. — № 11. — С. 100-134. — doi: https://doi.org/10.31146/1682-8658-ecg-171-11-100-134; Алхасов А.Б., Батаев С.М., Бельмер С.В. и др. Детская гастроэнтерология: национальное руководство. — М.: ГЭОТАР-Медиа; 2022. — С. 391-433. — (Национальные руководства). — doi: https://doi.org/10.33029/9704-6990-3-GAS-2022-1-864; Вахитов Т.Я., Кононова С.В., Демьянова Е.В. и др. Выявление потенциальных биомаркеров воспалительных заболеваний кишечника с помощью нецелевой метаболомики сыворотки крови // Вопросы детской диетологии. — 2022. — Т. 20. — № 6. — С. 21-32. — doi: https://doi.org/10.20953/1727-5784-2022-6-21-32; Ashton JJ, Versteegh HP, Batra A, et al. Colectomy in pediatric ulcerative colitis: A single center experience of indications, outcomes, and complications. J Pediatr Surg. 2016;51(2):277-281. doi: https://doi.org/10.1016/j.jpedsurg.2015.10.077; Loftus EV Jr, Feagan BG, Panaccione R, et al. Long-term safety of vedolizumab for inflammatory bowel disease. Aliment Pharmacol Ther. 2020;52(8):1353-1365. doi: https://doi.org/10.1111/apt.16060; Conrad MA, Kelsen JR. The Treatment of Pediatric Inflammatory Bowel Disease with Biologic Therapies. Curr Gastroenterol Rep. 2020;22(8):36. doi: https://doi.org/10.1007/s11894-020-00773-3; Aardoom MA, Veereman G, de Ridder L. A Review on the Use of Anti-TNF in Children and Adolescents with Inflammatory Bowel Disease. Int J Mol Sci. 2019;20(10):2529. doi: https://doi.org/10.3390/ijms20102529; Akpunonu B, Hummell J, Akpunonu JD, Ud Din S. Capsule endoscopy in gastrointestinal disease: Evaluation, diagnosis, and treatment. Cleve Clin J Med. 2022;89(4):200-211. doi: https://doi.org/10.3390/ijms20102529; Ликутов А.А., Веселов В.В., Притула Н.А. и др. Возможности видеокапсульной эндоскопии в диагностике воспалительных заболеваний кишечника // Эндоскопическая хирургия. — 2017. — № 2. — С. 23-28. — doi: https://doi.org/10.17116/endoskop201723223-27; Maaser C, Sturm A, Vavricka SR, et al. ECCO-ESGAR Guideline for Diagnostic Assessment in IBD Part 1: Initial diagnosis, monitoring of known IBD, detection of complications. J Crohns Colitis. 2019;13(2):144-164. doi: https://doi.org/10.1093/ecco-jcc/jjy113; Совалкин В.И., Бикбавова Г.Р., Емельянова Ю.А. Современный взгляд на патогенез и лабораторную диагностику язвенного колита (обзор литературы) // Архивъ внутренней медицины. — 2017. — Т. 7. — № 4. — C. 252-259. — doi: https://doi.org/10.20514/2226-6704-2017-7-4-252-259; Sakurai T, Saruta M. Positioning and Usefulness of Biomarkers in Inflammatory Bowel Disease. Digestion. 2023;104(1):30-41. doi: https://doi.org/10.1159/000527846; Алхасов А.Б., Бехтерева М.К., Волынец Г.В. и др. Болезни кишечника у детей / под общ. ред. С.В. Бельмера, А.Ю. Разумовского, А.И. Хавкина. — М.: Медпрактика-М; 2018. — Т. 1. — 435 с.; Dubinsky MC, Kugathasan S, Mei L, et al. Increased immune reactivity predicts aggressive complicating Crohn's disease in children. Clin Gastroenterol Hepatol. 2008;6(10):1105-1111. doi: https://doi.org/10.1016/j.cgh.2008.04.032; Steiner CA, Berinstein JA, Louissaint J, et al. Biomarkers for the Prediction and Diagnosis of Fibrostenosing Crohn's Disease: A Systematic Review. Clin Gastroenterol Hepatol. 2022;20(4):817-846.e10. doi: https://doi.org/10.1016/j.cgh.2021.05.054; Yang W, Yu T, Cong Y. Induction of Intestinal Inflammation by Adoptive Transfer of CBir1 TCR Transgenic CD4+ T Cells to Immunodeficient Mice. J Vis Exp. 2021;(178). doi: https://doi.org/10.3791/63293; Pang Y, Ruan H, Wu D, et al. Assessment of clinical activity and severity using serum ANCA and ASCA antibodies in patients with ulcerative colitis. Allergy Asthma Clin Immunol. 2020;16:37. doi: https://doi.org/10.1186/s13223-020-00433-1; Liu X, Guo D, Li X, et al. Value of combined detection of PCA, ANCA, ASCA, AGA and ANA in early diagnosis of Gastrointestinal Diseases. Pak J Med Sci. 2022;38(1):227-231. doi: https://doi.org/10.12669/pjms.38.1.4682; Iltanen S, Tervo L, Halttunen T, et al. Elevated serum anti-I2 and anti-OmpW antibody levels in children with IBD. Inflamm Bowel Dis. 2006;12(5):389-394. doi: https://doi.org/10.1097/01.MIB.0000218765.84087.42; Wang H, Demirkan G, Bian X, et al. Identification of Antibody Against SNRPB, Small Nuclear Ribonucleoprotein-Associated Proteins B and B‘, as an Autoantibody Marker in Crohn's Disease using an Immunoproteomics Approach. J Crohns Colitis. 2017;11(7):848-856. doi: https://doi.org/10.1093/ecco-jcc/jjx019; Kovacs M, Lakatos PL, Papp M, et al. Pancreatic autoantibodies and autoantibodies against goblet cells in pediatric patients with inflammatory bowel disease. J Pediatr Gastroenterol Nutr. 2012;55(4):429-435. doi: https://doi.org/10.1097/MPG.0b013e318256b516; Hanzel J, Ma C, Casteele NV, et al. Vedolizumab and Extraintestinal Manifestations in Inflammatory Bowel Disease. Drugs. 2021;81(3):333-347. doi: https://doi.org/10.1007/s40265-020-01460-3; Rieder F, Hahn P, Finsterhoelzl L, et al. Clinical utility of anti-glycan antibodies in pediatric Crohn's disease in comparison with an adult cohort. Inflamm Bowel Dis. 2012;18(7):1221-1231. doi: https://doi.org/10.1002/ibd.21854; Tian Y, Wang HH. The application value of serological detection of ASCA and ANCA serum level in the diagnosis and treatment of inflammatory bowel disease. Chinese J Lab Med. 2018;41(10):708-711. doi: https://doi.org/10.3760/cma.j.issn.1009-9158.2018.10.002; Mitsuyama K, Niwa M, Takedatsu H, et al. Antibody markers in the diagnosis of inflammatory bowel disease. World J Gastroenterol. 2016;22(3):1304-1310. doi: https://doi.org/10.3748/wjg.v22.i3.1304; Александрова Е.Н., Новиков А.А., Лукина Г.В., Парфенов А.И. Клиническое значение антител при воспалительных заболеваниях кишечника // Терапевтический архив. — 2021. — Т. 93. — № 2. — С. 228-235. — doi: https://doi.org/10.26442/00403660.2021.02.200610; Кузнецова Д.А., Лапин С.В., Щукина О.Б. Диагностическая и прогностическая значимость серологических маркеров воспалительных заболеваний кишечника (обзор литературы) // Альманах клинической медицины. — 2020. — Т. 48. — № 6. — C. 364-374. — doi: https://doi.org/10.18786/2072-0505-2020-48-061; Hashash JG, Koutroumpakis F, Anderson AM, et al. Elevated serum globulin fraction as a biomarker of multiyear disease severity in inflammatory bowel disease. Ann Gastroenterol. 2022;35(6):609-617. doi: https://doi.org/10.20524/aog.2022.0748; Chen P, Zhou G, Lin J, et al. Serum Biomarkers for Inflammatory Bowel Disease. Front Med (Lausanne). 2020;7:123. doi: https://doi.org/10.3389/fmed.2020.00123; Smids C, Horjus Talabur Horje CS, Groenen MJM, et al. The value of serum antibodies in differentiating inflammatory bowel disease, predicting disease activity and disease course in the newly diagnosed patient. Scand J Gastroenterol. 2017;52(10):1104-1112. doi: https://doi.org/10.1080/00365521.2017.1344875; Быков А.С., Караулов А.В., Цомартова Д.А. и др. М-клетки — один из важных компонентов в инициации иммунного ответа в кишечнике // Инфекция и иммунитет. — 2018. — Т. 8. — № 3. — C. 263-272. — doi: https://doi.org/10.15789/2220-7619-2018-3-263-272; Shpoliansky M, Roggenbuck D, Pinsker M, et al. Antibodies Against Glycoprotein 2 Are Specific Biomarkers for Pediatric Crohn's Disease. Dig Dis Sci. 2021;66(8):2619-2626. doi: https://doi.org/10.1007/s10620-020-06589-5; Kuwada T, Shiokawa M, Kodama Y, et al. Identification of an Anti-Integrin ave6 Autoantibody in Patients With Ulcerative Colitis. Gastroenterology. 2021;160(70):2383-2394.e21. doi: https://doi.org/10.1053/j.gastro.2021.02.019; Venkateswaran S, Denson LA, Jurickova I, et al. Neutrophil GM-CSF signaling in inflammatory bowel disease patients is influenced by non-coding genetic variants. Sci Rep. 2019;9(1):9168. doi: https://doi.org/10.1038/s41598-019-45701-2; Зурочка А.В., Зурочка В.А., Добрынина М.А., Гриценко В.А. Иммунобиологические свойства гранулоцитарно-макрофагального колониестимулирующего фактора и синтетических пептидов его активного центра // Медицинская иммунология. — 2021. — Т. 23. — № 5. — С. 1031-1054. — doi: https://doi.org/10.15789/1563-0625-IPO-2216; Duryee MJ, Ahmad R, Eichele DD, et al. Identification of Immunoglobulin G Autoantibody Against MalondialdehydeAcetaldehyde Adducts as a Novel Serological Biomarker for Ulcerative Colitis. Clin Transl Gastroenterol. 2022;13(4):e00469. doi: https://doi.org/10.14309/ctg.0000000000000469; Kovacs M, Muller KE, Papp M, et al. New serological markers in pediatric patients with inflammatory bowel disease. World J Gastroenterol. 2014;20(17):4873-4882. doi: https://doi.org/10.3748/wjg.v20.i17.4873; Ricciuto A, Aardoom M, Orlanski-Meyer E, et al. Predicting Outcomes in Pediatric Crohn's Disease for Management Optimization: Systematic Review and Consensus Statements From the Pediatric Inflammatory Bowel Disease-Ahead Program. Gastroenterology. 2021;160(1):403-436. doi: https://doi.org/10.1053/j.gas-tro.2020.07.065; Abu-Freha N, Badarna W, Sigal-Batikoff I, et al. ASCA and ANCA among Bedouin Arabs with inflammatory bowel disease, the frequency and phenotype correlation. BMC Gastroenterol. 2018;18(1):153. doi: https://doi.org/10.1186/s12876-018-0884-x; Li BH, Guan X, Vittinghoff E, Gupta N. Comparison of the presentation and course of pediatric inflammatory bowel disease in South Asians with Whites: a single center study in the United States. J Pediatr. 2013;163(4):1211-1213. doi: https://doi.org/10.1016/j.jpeds.2013.04.017; Duarte-Silva M, Afonso PC, de Souza PR, et al. Reappraisal of antibodies against Saccharomyces cerevisiae (ASCA) as persistent biomarkers in quiescent Crohn's disease. Autoimmunity. 2019;52(1):37-47. doi: https://doi.org/10.1080/08916934.2019.1588889; Yorulmaz E, Adali G, Yorulmaz H, et al. The Correlation between New Serological Markers and Disease Phenotype and Activation in Inflammatory Bowel Disease. Middle East J Dig Dis. 2022;14(3):294-303. doi: https://doi.org/10.34172/mejdd.2022.286; Chandrakumar A, Georgy M, Agarwal P, et al. Anti-Saccharomyces cerevisiae Antibodies as a Prognostic Biomarker in Children With Crohn Disease. J Pediatr Gastroenterol Nutr. 2019;69(1):82-87. doi: https://doi.org/10.1097/MPG.0000000000002311; Olbj0rn C, Cvancarova Smastuen M, Thiis-Evensen E, et al. Serological markers in diagnosis of pediatric inflammatory bowel disease and as predictors for early tumor necrosis factor blocker therapy. Scand J Gastroenterol. 2017;52(4):414-419. doi: https://doi.org/10.1080/00365521.2016.1259653; Kugathasan S, Denson LA, Walters TD, et al. Prediction of complicated disease course for children newly diagnosed with Crohn's disease: a multicentre inception cohort study. Lancet. 2017;389(10080):1710-1718. doi: https://doi.org/10.1016/S0140-6736(17)30317-3; Torres J, Petralia F, Sato T, et al. Serum Biomarkers Identify Patients Who Will Develop Inflammatory Bowel Diseases Up to 5 Years Before Diagnosis. Gastroenterology. 2020;159(1):96-104. doi: https://doi.org/10.1053/j.gastro.2020.03.007; Dykes DM, Towbin AJ, Bonkowski E, et al. Increased prevalence of luminal narrowing and stricturing identified by enterography in pediatric Crohn's disease patients with elevated granulocytemacrophage colony stimulating factor autoantibodies. Inflamm Bowel Dis. 2013;19(10):2146-2154. doi: https://doi.org/10.1097/MIB.0b013e31829706e0; Kristensen VA, Cvancarova M, H0ivik ML, et al. Serological antibodies and surgery in a population-based inception cohort of Crohn's disease patients — the IBSEN study. Scand J Gastroenterol. 2020;55(4):436-441. doi: https://doi.org/10.1080/00365521.2020.1745879; https://www.pedpharma.ru/jour/article/view/2346

Availability: https://www.pedpharma.ru/jour/article/view/2346
https://doi.org/10.15690/pf.v20i4.2605

Prevalence of occult hepatitis B infection among blood donors in Saint Petersburg ; Распространенность скрытой формы хронического гепатита В у доноров крови в Санкт-Петербурге

Authors: Ostankova Y.V., Serikova E.N., Shirshova N.Y., Kusevitskaya M.B., Gorskaya O.A., Basina V.V., Mashkov I.A., Zueva E.B., Schemelev A.N., Reingardt D.E., Davydenko V.S., Mukkel D.А., Totolian A.A.

Source: Russian Journal of Infection and Immunity; Vol 13, No 6 (2023); 1129-1140 ; Инфекция и иммунитет; Vol 13, No 6 (2023); 1129-1140 ; 2313-7398 ; 2220-7619

Subject Terms: hepatitis B virus, occult hepatitis B, serological markers, molecular biological markers, HBV variability, genotypes, clinically significant mutations, blood safety, laboratory diagnostics, вирус гепатита В, скрытый гепатит В, серологические маркеры, молекулярно-биологические маркеры, вариабельность ВГВ, генотипы, клинически значимые мутации, безопасность крови, лабораторная диагностика

File Description: application/pdf

Relation: https://iimmun.ru/iimm/article/view/14480/1776; https://iimmun.ru/iimm/article/view/14480/1905; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/14480/109461; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/14480/109462; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/14480/109463; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/14480/109464; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/14480/109465; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/14480/109466; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/14480/109467; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/14480/109468; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/14480/109469; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/14480/119709; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/14480/136527; https://iimmun.ru/iimm/article/view/14480

Availability: https://iimmun.ru/iimm/article/view/14480
https://doi.org/10.15789/2220-7619-POO-14480

HIV in pregnant women group in the Republic of Guinea: frequency and genetic characteristics ; ВИЧ у беременных женщин Гвинейской Республики: частота встречаемости и молекулярно-генетические особенности

Authors: T.A.L. Balde, A. N. Shchemelev, Yu. V. Ostankova, S. Boumbaly, D. E. Valutite, V. S. Davydenko, E. N. Serikova, E. B. Zueva, E. V. Anufrieva, V. V. Skvoroda, D. A. Vasileva, E. V. Esaulenko, A. V. Semenov, Areg A. Totolian, T.A.Л. Балде, А. Н. Щемелев, Ю. В. Останкова, С. Бумбали, Д. Э. Валутите, В. С. Давыденко, Е. Н. Серикова, Е. Б. Зуева, Е. В. Ануфриева, В. В. Скворода, Д. А. Васильева, Е. В. Эсауленко, А. В. Семенов, А. А. Тотолян

Source: HIV Infection and Immunosuppressive Disorders; Том 15, № 2 (2023); 48-58 ; ВИЧ-инфекция и иммуносупрессии; Том 15, № 2 (2023); 48-58 ; 2077-9828 ; 10.22328/2077-9828-2023-15-2

Subject Terms: Гвинейская Республика, HIV serological markers, HIV molecular genetic markers, HIV drug resistance, Republic of Guinea, серологические маркеры ВИЧ, молекулярно-генетические маркеры ВИЧ, лекарственная устойчивость ВИЧ

File Description: application/pdf

Relation: https://hiv.bmoc-spb.ru/jour/article/view/809/546; Greener R. AIDS and macroeconomic impact. State of The Art; AIDS and Economics // IAEN. 2002. P. 49–55.; Walker N., Grassly N.C., Gamett G.P. et al. Estimating the global burden of HIV/AIDS: What do we really know about the HIV pandemic? // Lancet. 2004. Nо. 363. P. 2180–2185. doi:10.1016/S0140-6736(04)16511-2.; UNAIDS data 2020. UNAIDS. Jul 2020. https://www.unaids.org/en/resources/documents/2020/unaids-data.; Taylor B.S., Sobieszczyk M.E., McCutchan F.E. The challenge of HIV-1 subtype diversity // N. Engl. J. Med. 2008. Vol. 358. P. 1590–1602. doi:10.1056/NEJMc086373.; Trover R.M., Collins K.R., Abhara A. et al. Changes in human immunodeficiency virus type 1 fitness and genetic diversity during disease progression // J. Virol. 2005. Vol. 79. P. 9006–9018. doi:10.1128/JVI.79.14.9006-9018.2005.; Sackto N., Nakasujja N., Skolasky R.L. et al. HIV subtype D is associated with dementia, compared with subtype A, in immunosuppressed individuals at risk of cognitive impairment in Kampala, Uganda // Clin. Infect. Dis. 2009. Vol. 49, No. 5. P. 780–786. doi:10.1086/605284.; Perno C.F., Moyle G., Tsoukas C. et al. Overcoming resistance to existing therapies in HIV-infected patients: The role of new antiretroviral drugs // J. Med. Virol. 2008. Vol. 80. P. 565–576. doi:10.1002/jmv.21034. PMID: 18297706.; Bobkova M.R. HIV drug resistance (Drug-resistant HIV). Moscow: Chelovek, 2014. 288 р. (In Russ.).; WHO. HIV DRUG RESISTANCE REPORT 2021 https://www.who.int/publications/i/item/9789240038608.; Aghokeng A.F., Monleau M., Eymard-Duvernay S. et al. Extraordinary heterogeneity of virological outcomes in patients receiving highly antiretroviral therapy and monitored with the World Health Organization public health approach in sub-Saharan Africa and Southeast Asia // Clin. Infect. Dis. 2014. Vol. 58. Р. 99–109; doi:10.1093/cid/cit627.; Boender T.S., Kityo C.M., Boerma R.S. et al. Accumulation of HIV-1 drug resistance after continued virological failure on first-line ART in adults and children in sub-Saharan Africa // J. Antimicrob Chemother. 2016. Vol. 71. Р. 2918–2927. doi:10.1093/jac/dkw218.; Avila-Rios S., Garcia-Morales C., Matias-Florentino M. et al. Pretreatment HIV-drug resistance in Mexico and its impact on the effectiveness of first-line antiretroviral therapy: a nationally representative 2015 WHO survey // Lancet HIV. 2016. Vol. 3. Р. e579–e91; doi:10.1016/S2352-3018(16)30119-9.; Bissio E., Barbás M.G., Bouzas M.B. et al. Pretreatment HIV-1 drug resistance in Argentina: results from a surveillance study performed according to WHO-proposed new methodology in 2014–15 // J. Antimicrob. Chemother. 2017. Vol. 72. Р. 504–510. doi:10.1093/jac/dkw445.; Aghokeng A.F., Kouanfack C., Laurent C. et al. Scale-up of antiretroviral treatment in sub-Saharan Africa is accompanied by increasing HIV-1 drug resistance mutations in drug-naive patients // AIDS. 2011. Vol. 25. Р. 2183–2188. doi:10.1093/jac/dkw445.; Chung M.H., Silverman R., Beck I.A. et al. Increasing HIV-1 pretreatment drug resistance among antiretroviral-naïve adults initiating treatment between 2006 and 2014 in Nairobi, Kenya // AIDS. 2016. Vol. 30. Р. 1680–1682. doi:10.1097/QAD.0000000000001110.; Gupta R.K., Gregson J., Parkin N. et al. HIV-1 drug resistance before initiation or re-initiation of first-line antiretroviral therapy in low-income and middle-income countries: a systematic review and meta-regression analysis // Lancet Infect Dis. 2018. Vol. 18. Р. 346–355. doi:10.1016/S1473–3099(17)30702-8.; Bekolo C.E., Soumah M.M., Tiemtore O.W. et al. Assessing the outcomes of HIV-infected persons receiving treatment for Kaposi sarcoma in Conakry-Guinea // BMC Cancer. 2017. Vol. 17, No. 1. Р. 806. doi:10.1186/s12885-017-3771-x.; Bbosa N., Kaleebu P., Ssemwanga D. HIV subtype diversity worldwide // Curr. Opin HIV AIDS. 2019. Vol. 14, No. 3. Р. 153–160. doi:10.1097/COH.0000000000000534.; Lihana R.W., Ssemwanga D., Abimiku A., Ndembi N. Update on HIV-1 diversity in Africa: a decade in review // AIDS Rev. 2012. Vol. 14. Р. 83–100.; Nii-Trebi N.I., Brandful J.A.M., Ibe S. et al. Dynamic HIV-1 genetic recombination and genotypic drug resistance among treatment-experienced adults in northern Ghana // J. Med Microbiol. 2017. Vol. 66, No. 11. Р. 1663–1672. doi:10.1099/jmm.0.000621.; Shchemelev A.N., Boumbaly S., Ostankova Y.V. et al. Prevalence of drug resistant HIV-1 forms in patients without any history of antiretroviral therapy in the Republic of Guinea // J. Med. Virol. 2023. Jan; Vol. 95, No. 1. e28184. doi:10.1002/jmv.28184. Epub 2022 Oct 6. PMID: 36175006.; Mugo N.R., Heffron R., Donnell D. et al. Increased risk of HIV-1 transmission in pregnancy: a prospective study among African HIV-1-serodiscordant couples // AIDS. 2011. Vol. 25. Р. 1887–1895. doi:10.1097/QAD.0b013e32834a9338.; Sheffield J.S., Wendel G.D.J., McIntire D.D., Norgard M.V. The effect of progesterone levels and pregnancy on HIV-1 coreceptor expression // Reprod. Sci. 2009. Vol. 16. Р. 20–31. doi:10.1177/1933719108325510.; Weiser S.D., Young S.L., Cohen C.R. et al. Conceptual framework for understanding the bidirectional links between food insecurity and HIV/AIDS // Am. J. Clin. Nutr. 2011. Vol. 94. Р. 1729S–1739S. doi:10.3945/ajcn.111.012070.; UNAIDS. UNAIDS 2019 Data [Internet]. Joint United Nations Programme on HIV/AIDS (UNAIDS). 2019. Р. 1–248. Available.; Weiser S.D., Leiter K., Bangsberg D.R. et al. Food insufficiency is associated with high-risk sexual behavior among women in Botswana and Swaziland // PLoS Med. 2007. Vol. 4. Р1589–1597. doi:10.1371/journal.pmed.0040260. from: https://www.unaids.org/sites/default/files/media_asset/2019-UNAIDS-data_en.pdf.; World Health Organization (WHO). Antiretroviral Therapy for HIV Infection in Adults and Adolescents: Recommendations for a Public Health Approach: 2010 Revision. 2010. P. 14. from: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/NBK138528.; Diouara A.A., Ndiaye H.D., Guindo I. et al. Antiretroviral treatment outcome in HIV-1-infected patients routinely followed up in capital cities and remote areas of Senegal, Mali and Guinea-Conakry // J. Int. AIDS Soc. 2014. Dec 18; Vol. 17, No. 1. Р; 19315. doi:10.7448/IAS.17.1.19315.; Start Free, Stay Free, AIDS Free [website]. Geneva: UNAIDS; 2020 [cited: 21/12/20]. from: https://www.unaids.org/sites/default/files/media_asset/Stay_free_vision_mission_En.pdf.; Kumar S., Stecher G., Tamura K. MEGA7: Molecular Evolutionary Genetics Analysis version 7.0 for bigger datasets // Molecular Biology and Evolution. 2016. Vol. 33, No. 7. P. 1870–1874. doi:10.1093/molbev/msw054.; Vingerhoets J., Peeters M., Azijn H. et al. An update of the list of NNRTI mutations associated with decreased virological response to etravirine: multivariate analyses on the pooled DUET-1 and DUET-2 clinical trial data [abstract 24] // Antiviral Therapy. 2008. Vol. 13, Suppl. 3. A26.; Flor-Parra F., Pérez-Pulido A.J., Pachón J., Pérez-Romero P. The HIV type 1 protease L10I minor mutation decreases replication capacity and confers resistance to protease inhibitors // AIDS Res Hum Retroviruses. 2011; Vol. 27, No. 1. Р. 65–70; doi:10.1089/aid.2010.0072.; Barnard J.P., Huber K.D., Sluis-Cremer N. Nonnucleoside Reverse Transcriptase Inhibitor Hypersusceptibility and Resistance by Mutation of Residue 181 in HIV-1 Reverse Transcriptase // Antimicrob. Agents Chemother. 2019. Jul 25; Vol. 63, No. 8. Р. e00676–19; doi:10.1128/AAC.00676-19.; Tambuyzer L., Azijn H., Rimsky L.T. et al. Compilation and prevalence of mutations associated with resistance to non-nucleoside reverse transcriptase inhibitors // Antivir. Ther. 2009. Vol. 14, No. 1. Р. 103–109.; Moorhouse M., Maartens G., Venter W.D.F. et al. Third-Line Antiretroviral Therapy Program in the South African Public Sector: Cohort Description and Virological Outcomes // J. Acquir. Immune Defic. Syndr. 2019. Jan 1; Vol. 80, No. 1. Р. 73–78. doi:10.1097/QAI.0000000000001883.; Mo H., King M.S., King K. et al. Selection of resistance in protease inhibitor-experienced, human immunodeficiency virus type 1-infected subjects failing lopinavirand ritonavir-based therapy: mutation patterns and baseline correlates // J. Virol. 2005. Vol. 79. Р. 3329–3338. 10.1128/JVI.79.6.3329-3338.2005.; Yendewa G.A., Sahr F., Lakoh S. et al. Prevalence of drug resistance mutations among ART-naive and -experienced HIV-infected patients in Sierra Leone // J. Antimicrob. Chemother. 2019. Vol. 74, No. 7. Р. 2024–2029.; Boyce C.L., Sils T., Ko D. et al. Maternal Human Immunodeficiency Virus (HIV) Drug Resistance Is Associated With Vertical Transmission and Is Prevalent in Infected Infants // Clin. Infect. Dis. 2022. Jun 10; Vol. 74, No. 11. Р. 2001–2009. doi:10.1093/cid/ciab744.; World Health Organization. Update of Recommendations on First- and Second-Line Antiretroviral Regimens Geneva, Switzerland: World Health Organization, 2019. Report No: Licence: CC BY-NC-SA 3.0 IGO.; Scarsi K.K., Havens J.P., Podany A.T. et al. HIV-1 Integrase Inhibitors: A Comparative Review of Efficacy and Safety // Drugs. 2020. Nov; Vol. 80, No. 16. Р. 1649–1676. doi:10.1007/s40265-020-01379-9.

Availability: https://hiv.bmoc-spb.ru/jour/article/view/809
https://doi.org/10.22328/2077-9828-2023-15-2-48-58

Profile of Hepatitis B Virus Mutations Associated with HBsAg-Negative Disease in Patients of Hemodialysis Centers ; Характеристика связанных с HBsAg-негативной формой заболевания мутаций вируса гепатита В у пациентов гемодиализных центров

Authors: Yu. V. Ostankova, E. N. Serikova, A. V. Semenov, M. D. Bancevic, S. B. Filipovic-Vignjevic, E. B. Zueva, G. V. Vasil’eva, Ya. V. Zarya, M. A. Saitgalina, A. R. Ivanova, A. S. Zhabasova, A. A. Totolian, Ю. В. Останкова, Е. Н. Серикова, А. В. Семенов, М. Д. Банцевич, С. Б. Филипович-Вигньевич, Е. Б. Зуева, Г. В. Васильева, Я. В. Заря, М. А. Сайтгалина, А. Р. Иванова, А. С. Жабасова, А. А. Тотолян

Source: Problems of Particularly Dangerous Infections; № 4 (2021); 96-104 ; Проблемы особо опасных инфекций; № 4 (2021); 96-104 ; 2658-719X ; 0370-1069

Subject Terms: гемодиализ, occult hepatitis B infection, latent hepatitis B serological markers, molecular-biological markers, clinically significant mutations, laboratory diagnostics, hemodialysis, оккультный гепатит В, скрытый гепатит В, серологические маркеры, молекулярно-биологические маркеры, клинически значимые мутации, лабораторная диагностика

File Description: application/pdf

Relation: https://journal.microbe.ru/jour/article/view/1597/1260; Строков А.Г., Гуревич К.Я., Ильин А.П., Денисов А.Ю., Земченков А.Ю., Андрусев А.М., Шутов Е.В., Котенко О.Н., Злоказов В.Б. Лечение пациентов с хронической болезнью почек 5 стадии (ХБП 5) методами гемодиализа и гемодиафильтрации. Клинические рекомендации. Нефрология. 2017; 21(3):92–111. DOI:10.24884/1561-6274-2017-3-92-111.; Bernieh B. Viral hepatitis in hemodialysis: An update. J. Transl. Int. Med. 2015; 3(3):93–105. DOI:10.1515/jtim-2015-0018.; Lezaic V., Stosovic M., Marinkovic J., Rangelov V., Djukanovic L. Hepatitis B and hepatitis C virus infection and outcome of hemodialysis and kidney transplant patients. Ren. Fail. 2008; 30(1):81–7. DOI:10.1080/08860220701742211.; Raimondo G., Locarnini S., Pollicino T., Levrero M., Zoulim F., Lok A.S.; Taormina Workshop on Occult HBV Infection Faculty Members. Update of the statements on biology and clinical impact of occult hepatitis B virus infection. J. Hepatol. 2019; 71(2):397–408. DOI:10.1016/j.jhep.2019.03.034.; Awad G., Roch T., Stervbo U., Kaliszczyk S., Stittrich A., Hörstrup J., Cinkilic O., Appel H., Natrus L., Gayova L., Seibert F., Bauer F., Westhoff T., Nienen M., Babel N. Robust hepatitis B vaccine-reactive T cell responses in failed humoral immunity. Mol. Ther. Methods Clin. Dev. 2021; 21:288–98. DOI:10.1016/j.omtm.2021.03.012.; Edey M., Barraclough K., Johnson D.W. Review article: Hepatitis B and dialysis. Nephrology (Carlton). 2010; 15(2):137–45. DOI:10.1111/j.1440-1797.2009.01268.x.; Adane T., Getawa S. The prevalence and associated factors of hepatitis B and C virus in hemodialysis patients in Africa: A systematic review and meta-analysis. PLoS One. 2021. 16(6):e0251570. DOI:10.1371/journal.pone.0251570.; Tang Y., Liu X., Lu X., He Q., Li G., Zou Y. Occult Hepatitis B Virus Infection in Maintenance Hemodialysis Patients: Prevalence and Mutations in “a” Determinant. Int. J. Med. Sci. 2020; 17(15):2299–305. DOI:10.7150/ijms.49540.; Серикова Е.Н., Семенов А. В., Останкова Ю.В., Тотолян Арег А. Метод выявления вируса гепатита В в плазме крови при низкой вирусной нагрузке с использованием ПЦР в режиме реального времени. Клиническая лабораторная диагностика. 2021; 66(1):59–64. DOI:10.18821/0869-2084-2021-66-1-59-64.; Ostankova Yu.V., Semenov A.V., Zueva E.B., Totolian Areg A. The First Cases of Hepatitis B Virus Subgenotype D4 Detection in Patients with Chronic, Acute, and Occult Hepatitis B in the Russian Federation. Mol. Genet. Microbiol. Virol. 2020; 35(4):221–8. DOI:10.3103/S0891416820040072.; Lazarevic I., Cupic M., Delic D., Svirtlih N.S., Simonovic J., Jovanovic T. Distribution of HBV genotypes, subgenotypes and HBsAg subtypes among chronically infected patients in Serbia. Arch. Virol. 2007; 152(11):2017–25. DOI:10.1007/s00705-007-1031-0.; Мукомолов С.Л., Левакова И.А., Синайская Е.В., Сулягина Л.Г., Кислый П.Н., Тимаховская Г.Ю., Иванова Н.В., Старосельский К.Г., Ряснянский В.Ю. Эпидемиологическая характеристика вирусных гепатитов В и С в отделениях гемодиализа в Санкт-Петербурге в современный период. Часть 1. Регистрация гемоконтактных вирусных гепатитов и серологические маркеры вирусных гепатитов В и С у пациентов отделений гемодиализа. Инфекция и иммунитет. 2011; 1(2):143–50. DOI:10.15789/2220-7619-2011-2-143-150.; Aghakhani A., Banifazl M., Kalantar E., Eslamifar A., Ahmadi F., Razeghi E., Atabak S., Amini M., Khadem-Sadegh A., Ramezani A. Occult hepatitis B virus infection in hemodialysis patients with isolated hepatitis B core antibody: a multicenter study. Ther. Apher. Dial. 2010; 14(3):349–53. DOI:10.1111/j.1744-9987.2009.00798.x.; Samadi E., Mirshahabi H., Motamed N., Sadeghi H. Prevalence of Occult Hepatitis B Virus Infection in Hemodialysis Patients Using Nested PCR. Rep. Biochem. Mol. Biol. 2020; 9(1):82–8. DOI:10.29252/rbmb.9.1.82.; Hashemi S.J., Hajiani E., Masjedizadeh A.R., Makvandi M., Shahbazian H., Shayesteh A.A., Karimi M. A case-control study on occult hepatitis B infection in chronic hemodialysis patients from South-West of Iran. Govaresh. 2015; 20(2):135–40.; Zerbini A., Pilli M., Boni C., Fisicaro P., Penna A., Di Vincenzo P., Giuberti T., Orlandini A., Raffa G., Pollicino T., Raimondo G., Ferrari C., Missale G. The characteristics of the cell-mediated immune response identify different profiles of occult hepatitis B virus infection. Gastroenterology. 2008; 134(5):1470–81. DOI:10.1053/j.gastro.2008.02.017.; Minuk G.Y., Sun D.F., Greenberg R., Zhang M., Hawkins K., Uhanova J., Gutkin A., Bernstein K., Giulivi A., Osiowy C. Occult hepatitis B virus infection in a North Americanadult hemodialysis patient population. Hepatology. 2004; 40(5):1072–7. DOI:10.1002/hep.20435.; Colagrossi L., Hermans L.E., Salpini R., Di Carlo D., Pas S.D., Alvarez M., Ben-Ari Z., Boland G., Bruzzone B., Coppola N., Seguin-Devaux C., Dyda T., Garcia F., Kaiser R., Köse S., Krarup H., Lazarevic I., Lunar M.M., Maylin S., Micheli V., Mor O., Paraschiv S., Paraskevis D., Poljak M., Puchhammer-Stöckl E., Simon F., Stanojevic M., Stene-Johansen K., Tihic N., Trimoulet P., Verheyen J., Vince A., Lepej S.Z., Weis N., Yalcinkaya T., Boucher C.A.B., Wensing A.M.J., Perno C.F., Svicher V.; HEPVIR working group of the European Society for translational antiviral research (ESAR). Immune-escape mutations and stop-codons in HBsAg develop in a large proportion of patients with chronic HBV infection exposed to anti-HBV drugs in Europe. BMC Infect. Dis. 2018; 18(1):251. DOI:10.1186/s12879-018-3161-2.; Chaouch H., Taffon S., Villano U., Equestre M., Bruni R., Belhadj M., Hannachi N., Aouni M., Letaief A., Ciccaglione A.R. Naturally occurring surface antigen variants of hepatitis B virus in Tunisian patients. Intervirology. 2016; 59(1):36–47. DOI:10.1159/000445894.; Almeida R.W., Mello F.C.D.A., Menegoy I.V., Santo M.P.D.E., Ginuíno C.F., Sousa P.S.F., Villar L.M., Lampe E., Lewis-Ximenez L.L. Detection and molecular characterisation of a diagnosis escape variant associated with occult hepatitis B virus in Brazil. Mem. Inst. Oswaldo Cruz. 2017; 112(7):485–91. DOI:10.1590/0074-02760160477.; Lazarevic I. Clinical implications of hepatitis B virus mutations: recent advances. World J. Gastroenterol. 2014; 20(24):7653–64. DOI:10.3748/wjg.v20.i24.7653.; https://journal.microbe.ru/jour/article/view/1597

Availability: https://journal.microbe.ru/jour/article/view/1597
https://doi.org/10.21055/0370-1069-2021-4-96-104

Comparative Analysis of the Vertical Risk of Transmission of Some Blood-Borne Infections in the Republic of Guinea ; Сравнительный анализ вертикального риска передачи некоторых гемоконтактных инфекций в Гвинейской Республике

Authors: T.A.L. Balde, S. Boumbaly, E. N. Serikova, D. E. Valutite, A. N. Shchemelev, Yu. V. Ostankova, E. B. Zueva, A. V. Semenov, Е. Н. Серикова, Д. Э. Валутите, А. Н. Щемелев, Ю. В. Останкова, Е. Б. Зуева, А. В. Семенов

Source: Problems of Particularly Dangerous Infections; № 1 (2021); 87-94 ; Проблемы особо опасных инфекций; № 1 (2021); 87-94 ; 2658-719X ; 0370-1069

Subject Terms: Гвинейская Республика, hepatitis В virus, serological markers, molecular-biological markers, laboratory diagnostics, Republic of Guinea, вирус гепатита B, серологические маркеры, молекулярно-биологические маркеры, лабораторная диагностика

File Description: application/pdf

Relation: https://journal.microbe.ru/jour/article/view/1442/1193; World Health Organization. Hepatitis B. Key facts. 2020. [Электронный ресурс]. URL: http://www.who.int/news-room/factsheets/detail/hepatitis-b (дата обращения 26.12.2020).; World Health Organization. Hepatitis C. Key facts. 2020. [Электронный ресурс]. URL: http://www.who.int/news-room/factsheets/detail/hepatitis-c (дата обращения 26.12.2020).; CDC: How viral hepatitis impacts millions of people worldwide. [Электронный ресурс]. URL: https://www.cdc.gov/hepatitis/awareness/worldhepday.htm (дата обращения 26.12.2020).; UNAIDS. Global HIV and AIDS statistics-2020 fact sheet (Online) 2020. [Электронный ресурс]. URL: http://www.unaids. org/en/resources/fact-sheet/ (дата обращения 10.12.2020).; UNAIDS. UNAIDS strategy development (Online) 2020. [Электронный ресурс]. URL: https://www.unaids.org/en/Global_ AIDS_strategy/ (дата обращения 10.12.2020).; Raizada A., Dwivedi S., Bhattacharya S. Hepatitis B, hepatitis C and HIV co-infection at an antiretroviral centre in Delhi. Trop. Doct. 2011; 41(3):154–6. DOI:10.1258/td.2011.100440.; Tse K.Y., Ho L.F., Lao T. The impact of maternal HBsAg carrier status on pregnancy outcomes: a case-control study. J. Hepatol. 2005; 43(5):771–5. DOI:10.1016/j.jhep.2005.05.023.; Dafallah S.E., El-Agib F.H., Bushra G.O. Maternal mortality in a teaching hospital in Sudan. Saudi Med. J. 2003; 24(4):369–72.; Cui A.M., Cheng X.Y., Shao J.G., Li H.B., Wang X.L., Shen Y., Mao L.J., Zhang S., Liu H.Y., Zhang L., Qin G. Maternal hepatitis B virus carrier status and pregnancy outcomes: a prospective cohort study. BMC Pregnancy and Childbirth. 2016; 16:87. DOI:10.1186/s12884-016-0884-1.; Deressa T., Damtie D., Fonseca K., Gao S., Abate E., Alemu S., Aleka Y., Swain M.G., van Marle G., Coffin C.S. The burden of hepatitis B virus (HBV) infection, genotypes and drug resistance mutations in human immunodeficiency virus-positive patients in Northwest Ethiopia. PLoS One. 2017; 12(12):e0190149. DOI:10.1371/journal.pone.0190149.; Население Гвинеи. Countrymeters. [Электронный ресурс]. URL: http://countrymeters.info/ru/guinea (дата обращения 04.03.2021).; Гвинейская Республика. Republic of Guinea. [Электронный ресурс]. URL: https://gtmarket.ru/countries/guinea (дата обращения 20.12.2020).; Найденова Е.В., Лопатин А.А., Сафронов В.А., Коломоец Е.В., Левковский А.Е., Силла А.Л., Старшинов В.А., Щербакова С.А., Малеев В.В. Обеспечение биологической безопасности при проведении противоэпидемических мероприятий в период ликвидации эпидемии лихорадки Эбола в Гвинейской Республике. Инфекционные болезни: новости, мнения, обучение. 2018; 7(3):102–8. DOI:10.24411/2305-3496-2018-13015.; Annuaire Statistique 2019. [Электронный ресурс]. URL: http://www.stat-guinee.org. (дата обращения 20.12.2020).; Camara B.S., Delamou A., Diro E., Béavogui A.H., El Ayadi A.M., Sidibé S., Grovogui F.M., Takarinda K.C., Bouedouno P., Sandouno S.D., Okumura J., Baldé M.D., Van Griensven J., Zachariah R. Effect of the 2014/2015 Ebola outbreak on reproductive health services in a rural district of Guinea: an ecological study. Trans. R. Soc. Trop. Med. Hyg. 2017; 111(1):22–9. DOI:10.1093/trstmh/trx009.; Leno N.N., Delamou A., Koita Y., Diallo T.S., Kaba A., Delvaux T., Van Damme W., Laga M. Ebola virus disease outbreak in Guinea: what effects on prevention of mother-to-child transmission of HIV services? Reprod. Health. 2018; 15(1):60. DOI:10.1186/s12978-018-0502-y.; Останкова Ю.В., Семенов А.В., Тотолян Арег А. Выяв­ ление вируса гепатита В в плазме крови при низкой вирусной нагрузке. Клиническая лабораторная диагностика. 2019. 64(10):635–40. DOI:10.18821/0869-2084-2019-64-10-635-640.; Adolescent pregnancy. 31.01.2020. [Электронный ресурс]. URL: https://www.who.int/en/news-room/fact-sheets/detail/adolescent-pregnancy. (дата обращения 20.12.2020).; Zampino R., Boemio A., Sagnelli C., Alessio L., Adinolfi L.E., Sagnelli E., Coppola N. Hepatitis B virus burden in developing countries. World J. Gastroenterol. 2015; 21(42):11941–53. DOI:10.3748/wjg.v21.i42.11941.; Wang C.C., Cheng P.N., Kao J.H. Systematic review: chronic viral hepatitis and metabolic derangement. Aliment. Pharmacol. Ther. 2020; 51(2):216–30. DOI:10.1111/apt.15575.; Domínguez-Rodríguez S., Prieto L., Fernández McPhee C., Illán-Ramos M., Beceiro J., Escosa L., Muñoz E., Olabarrieta I., Regidor F.J., Roa M.Á., Viñuela Beneítez M.D.C., Guillén S., Navarro-Gómez M.L., Ramos Amador J.T. Perinatal HCV transmission rate in HIV/HCV co-infected women with access to ART in Madrid, Spain. PLoS One. 2020; 15(4):e0230109. DOI:10.1371/journal.pone.0230109.; Попова А.Ю., Кутырев В.В., редакторы. Россия – Гвинея: итоги и перспективы сотрудничества в области обеспечения санитарно-эпидемиологического благополучия населения. Саратов: Амирит; 2020. 272 с.; Mora N., Adams W.H., Kliethermes S., Dugas L., Balasubramanian N., Sandhu J., Nde H., Small C., Jose J., Scaglione S., Layden J.E. A synthesis of hepatitis C prevalence estimates in sub-Saharan Africa: 2000–2013. BMC Infect. Dis. 2016; 16:283. DOI:10.1186/s12879-016-1584-1.; Ofori-Asenso R., Agyeman A.A. Hepatitis B in Ghana: a systematic review & meta-analysis of prevalence studies (1995–2015). BMC Infect. Dis. 2016; 16:130. DOI:10.1186/s12879-016-1467-5.; Sonderup M.W., Afihene M., Ally R., Apica B., Awuku Y., Cunha L., Dusheiko G., Gogela N., Lohouès-Kouacou M.J., Lam P., Lesi O., Mbaye P.S., Musabeyezu E., Musau B., Ojo O., Rwegasha J., Scholz B., Shewaye A.B., Tzeuton C., Kassianides C., Spearman C.W. Hepatitis C in sub-Saharan Africa: the current status and recommendations for achieving elimination by 2030. Lancet Gastroenterol. Hepatol. 2017; 2(12):910–9. DOI:10.1016/S2468-1253(17)30249-2.; Kaba D., Bangoura M.A., Sylla M.M., Sako F.B., Diallo M.S., Diallo I., Kolié O.Y., Keita A.S., Diané B.F., Keita F., Diakité M., Kanté M.D., Savané M., Sylla D., Kaké A., Diallo K., Touré M., Cissé M. Prevalence and factors associated with hepatitis B in a cohort of HIV-infected children in the Pediatric Department at Donka National Hospital, Guinea. Pan Afr. Med. J. 2019; 34:182. DOI:10.11604/pamj.2019.34.182.16275.; Frempong M.T., Ntiamoah P., Annani-Akollor M.E., Owiredu W.K.B.A., Addai-Mensah O., Owiredu E.W., Adu-Gyasi D., Agyapong E.O., Sallah L. Hepatitis B and C infections in HIV-1 and non-HIV infected pregnant women in the Brong-Ahafo Region, Ghana. PLoS One. 2019; 14(7):e0219922. DOI:10.1371/journal. pone.0219922.; Olayinka A.T., Oyemakinde A., Balogun M.S., Ajudua A., Nguku P., Aderinola M., Egwuenu-Oladejo A., Ajisegiri S.W., Sha'aibu S., Musa B.O., Gidado S., Nasidi A. Seroprevalence of hepatitis B infection in Nigeria: a national survey. Am. J. Trop. Med. Hyg. 2016; 95(4):902–7. DOI:10.4269/ajtmh.15-0874.; Opaleye O.O., Igboama M.C., Ojo J.A., Odewale G. Seroprevalence of HIV, HBV, and HCV and HTLV among pregnant women in Southwestern Nigeria. J. Immunoassay Immunochem. 2016; 37(1):29–42. DOI:10.1080/15321819.2015.1040160.; Bittaye M., Idoko P., Ekele B.A., Obed S.A., Nyan O. Hepatitis B virus sero-prevalence amongst pregnant women in the Gambia. BMC Infect. Dis. 2019. 19(1):259–67. DOI:10.1186/s12879-019-3883-9.; Rouet F., Chaix M.L., Inwoley A., Msellati P., Viho I., Combe P., Leroy V., Dabis F., Rouzioux C. HBV and HCV prevalence and viraemia in HIV-positive and HIV-negative pregnant women in Abidjan, Côte d'Ivoire: the ANRS 1236 study. J. Med. Virol. 2004; 74(1):34–40. DOI:10.1002/jmv.20143.; MacLean B., Hess R.F., Bonvillain E., Kamate J., Dao D., Cosimano A., Hoy S. Seroprevalence of hepatitis B surface antigen among pregnant women attending the Hospital for Women & Children in Koutiala, Mali. S. Afr. Med. J. 2011; 102(1):47–9.; Bouare N., Vaira D., Gothot A., Delwaide J., Bontems S., Seidel L., Gerard P., Gerard C. Prevalence of HIV and HCV infections in two populations of Malian women and serological assays performances. World J. Hepatol. 2012; 4(12):365–73. DOI:10.4254/wjh.v4.i12.365.; Hønge B.L., Olesen J.S., Jensen M.M., Jespersen S., da Silva Z.J., Rodrigues A., Laursen A.L., Wejse C., Krarup H., Aaby P., Erikstrup C. Hepatitis B and C in the adult population of Bissau, Guinea-Bissau: a cross-sectional survey. Trop. Med. Int. Health. 2020; 25(2):255–63. DOI:10.1111/tmi.13335.; Bordeaux Call 2018 for the Fight against Viral Hepatitis B and C. [Электронный ресурс]. URL: http://www.afravih2018.org/appel-de-bordeaux (дата обращения 20.12.2020).; Kwadzokpui P.K., Akorsu E.E., Abaka-Yawson A., Quarshie S.S., Amankwah S.A., Tawiah P.A. Prevalence and knowledge of hepatitis B virus infection among pregnant women in the NingoPrampram District, Ghana. Int. J. Hepatol. 2020; 2020:7965146. DOI:10.1155/2020/7965146.; Graber-Stiehl I. The silent epidemic killing more people than HIV, malaria or TB. Nature. 2018; 564:24–6. DOI:10.1038/d41586-018-07592-7.; Importance of hepatitis elimination and hepatitis B vaccination. Remarks of WHO Regional Director for Africa at the High-level Global Talk Show: Towards a “Hepatitis-free future”. [Электронный ресурс]. URL: https://www.afro.who.int/regional-director/speeches-messages/importance-hepatitis-elimination-andhepatitis-b-vaccination#_ftn1 (дата обращения 20.12.2020).; https://journal.microbe.ru/jour/article/view/1442

Availability: https://journal.microbe.ru/jour/article/view/1442
https://doi.org/10.21055/0370-1069-2021-1-87-94

Seroprevalence to herpesviruses in patients with primary brain gliomas ; Серопревалентность к герпесвирусам среди больных с первичными глиомами головного мозга

Authors: T. A. Zykova, O. I. Kit, E. E. Rostorguev, E. A. Shevyakova, N. S. Kuznetsova, Т. А. Зыкова, О. И. Кит, Э. Е. Росторгуев, Е. А. Шевякова, Н. С. Кузнецова

Source: Research and Practical Medicine Journal; Том 6, № 4 (2019); 45-53 ; Research'n Practical Medicine Journal; Том 6, № 4 (2019); 45-53 ; 2410-1893 ; 10.17709/2409-2231-2019-6-4

Subject Terms: антитела, infection, herpes viruses, seroprevalence, serological markers, antibodies, инфекция, герпесвирусы, серопревалентность, серологические маркеры

File Description: application/pdf

Relation: https://www.rpmj.ru/rpmj/article/view/460/329; Hawkins C, Croul S. Viruses and human brain tumors: cytomegalovirus enters the fray. J Clin Invest. 2011 Oct;121 (10):3831—3833. DOI:10.1172/1060005; Lin CT, Leibovitch EC, Almira-Suarez MI, Jacobson S. Human herpesvirus multiplex ddPCR detection in brain tissue from low- and high-grade astrocytoma cases and controls. Infect Agent Cancer. 2016 Jul 26; 11(1):32. DOI:10.1186/s13027-016-0081-x; Cobbs С. Cytomegalovirus and brain tumor: epidemiology, biology and therapeutic aspects. Curr Opin Oncol. 2013 Nov; 25 (6):682-688. DOI:10.1097/CCO.0000000000000005; Dziurzynski K, Chang SM, Heimberger AB, Kalejta RF, McGregor Dallas SR, Smit M, et al. Consensus on the role of human cytomegalovirus in glioblastoma. Neuro Oncol. 2012 Mar 1; 14(3):246-255. DOI:10.1093/neuonc/nor227; Sjostrom S, Hjalmars U, Juto P, Wadell G, Hallmans G, Tjonneland A, et al. Human immunoglobulin G levels of viruses and associated glioma risk. Cancer Causes Control. 2011 Sep 1; 22 (9):1259-1266. DOI:10.1007/s10552-011-9799-3; Tang KW, Hellstrand K, Larsson E. Absence of cytomegalovirus in high-coverage DNA sequencing of human glioblastoma multiforme. Int J Cancer. 2015; 136(4):977-981. DOI:10.1002/ijc.29042; Yamashita Y, Ito Y, Isomura H, Takemura N, Okamoto A, Motomura K, et al. Lack of presence of the human cytomegalovirus in human glioblastoma. Mod Pathol. 2014 Jul; 27(7):922-929. DOI:10.1038/modpathol.2013.219; Khoury JD, Tannir NM, Williams MD, Chen Y, Yao H, Zhang J, et al. Landscape of DNA Virus Associations across Human Malignant Cancers — Analysis of 3,775 Cases Using RNA-Seq. J Virol. 2013 Aug 15; 87(16):8916-8926. DOI:10.1128/JVI.00340-13; Wrensch M, Minn Y, Chew T, Bondy M, Berger MS. Epidemiology of primary brain tumors: Current concepts and review of the literature. Neuro Oncol. 2002 Oct 1; 4(4):278-299. DOI:10.1093/neuonc/4.4.278; Ходак Л. А., Книженко О. В., Захарченко Н. М. Герпес-вирусные заболевания. Международный медицинский журнал. 2003; 3(9):103-106.; Буштырева И. О., Гайда О. В., Курочка М. П., Феоктистова Т. Е., Лебеденко Е. Ю., Какурина В. С. и др. Триггерные механизмы при гестозе в реализации исходов для плода. Кубанский научный медицинский вестник. 2009; 2(107):56-59.; Bondy ML, Scheurer ME, Malmer B, Barnholtz-Sloan JS, Davis FG, Il'yasova D, et al. Brain tumor epidemiology: consensus from the Brain Tumor Epidemiology Consortium. Cancer. 2008; 113(S7):1953-1968. DOI:10.1002/cncr.23741; Герпеовирусные инфекции человека: руководство для врачей. Под ред. В. А. Исакова. СПб.: СпецЛит, 2-е издание, переработана и дополнена. 2013, 670 с. Доступно по: https://speclit.su/image/catalog/978-5-299-00454-0/978-5-299-00454-0.pdf; Владимирова Л. Ю., Зыкова Т. А., Рядинская Л. А., Льянова А. А., Шевякова E. А., Богомолова О. А., и др. Влияние вирусной инфекции на эффективность противоопухолевой терапии при раке гортани. Злокачественные опухоли. 2018; 8(3):49-56.; Louis DN, Perry A, Reifenberger G, von Deimling A, Figarella-Branger D, Cavenee WK, et al. The 2016 World Health Organization Classification of Tumors of the Central Nervous System: a summary. Acta Neuropathol. 2016; 131 (6):803-820. DOI:10.1007/s00401-016-1545-1; Akhtar S, Vranic S, Cyprian FS, Al Moustafa A-E. Epstein-Barr Virus in Gliomas: Cause, Association, or Artifact? Front. Oncol. 2018; 8:123. DOI:10.3389/fonc.2018.00123; Limam S, Missaoui N, Mestiri S, Yacoubi MT, Krifa H, Selmi B, et al. Epstein-Barr virus infection in gliomas. Current Research in Translational Medicine. 2019 Nov 1;67(4):129-133. DOI:10.1016/j.retram.2019.06.002; Piper K, Foster H, Gabel B, Nabors B, Cobbs C. Glioblastoma Mimicking Viral Encephalitis Responds to Acyclovir: A Case Series and Literature Review. Front. Oncol. 2019; 9:8. DOI:10.3389/fonc.2019.00008; Saddawi-Konefka R, Crawford JR. Chronic Viral Infection and Primary Central Nervous System Malignancy. J Neuroimmune Pharmacol. 2010 Sep 1; 5(3):387-403. DOI:10.1007/s11481-010-9204-0; Cuomo L, Trivedi P, Cardillo MR, Gagliardi FM, Vecchione A, Caruso R, et al. Human herpesvirus 6 infection in neoplastic and normal brain tissue. J Med Virol. 2001; 63(1):45-51. DOI:10.1002/1096-9071 (200101)63:13.0.CO;2-K; Лисяный Н. И., Гнедкова И. А., Станецкая Д. Н., Розуменко В. Д., Кваша М. С., Бельская Л. Н. и др. Связь цитомегаловируса со злокачественными глиомами головного мозга. Украинский нейрохирургический журнал. 2016; 1:44-49.; https://www.rpmj.ru/rpmj/article/view/460

Availability: https://www.rpmj.ru/rpmj/article/view/460
https://doi.org/10.17709/2409-2231-2019-6-4-4

Частота выявления маркеров непереносимости казеина и глютена у детей с расстройствами аутистического спектра

Authors: V I Popov, D V Bavykin, A A Zvyagin, I A Bavykina

Source: Voprosy pitaniia. 88(4)

Subject Terms: Male, gluten intolerance, Adolescent, Glutens, Autism Spectrum Disorder, casein intolerance, аутизм, autism, 03 medical and health sciences, Diet, Gluten-Free, 0302 clinical medicine, gluten- free diet, безглютеновая диета, Humans, серологические маркеры, Child, 2. Zero hunger, непереносимость казеина, Caseins, 16. Peace & justice, непереносимость глютена, Immunoglobulin A, 3. Good health, serological markers, Child, Preschool, Immunoglobulin G, Female, Biomarkers

Access URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/31722140
https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/31722140/
https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/31722140
http://europepmc.org/article/MED/31722140

The impact of morphological changes in small bowel mucosa on iron metabolism in children with celiac disease

Authors: Klimov Leonid, Stoyan Marina, Kuryaninova Victoria, Kashnikov Vyacheslav, Botasheva Valentina, Dolbnya S. V., Asaturova D. V., Kashnikova S. N.

Subject Terms: целиакия, дети, серологические маркеры, железодефицитная анемия, латентный дефицит железа, атрофия слизистой оболочки

File Description: text/html

Availability: http://cyberleninka.ru/article/n/the-impact-of-morphological-changes-in-small-bowel-mucosa-on-iron-metabolism-in-children-with-celiac-disease
http://cyberleninka.ru/article_covers/16816627.png

ДИАГНОСТИЧЕСКАЯ ЗНАЧИМОСТЬ СЕРОЛОГИЧЕСКИХ И МОЛЕКУЛЯРНО-ГЕНЕТИЧЕСКИХ МЕТОДОВ ДЛЯ ВЫЯВЛЕНИЯ КРАСНУШНОЙ ИНФЕКЦИИ

Authors: Бузицкая, Ж., Кривицкая, В., Максакова, В., Цыбалова, Л.

Subject Terms: ДИАГНОСТИКА КРАСНУХИ, ПОЛИМЕРАЗНАЯ ЦЕПНАЯ РЕАКЦИЯ С ОБРАТНОЙ ТРАНСКРИПЦИЕЙ (ОТ-ПЦР), СЕРОЛОГИЧЕСКИЕ МАРКЕРЫ

File Description: text/html

Availability: http://cyberleninka.ru/article/n/diagnosticheskaya-znachimost-serologicheskih-i-molekulyarno-geneticheskih-metodov-dlya-vyyavleniya-krasnushnoy-infektsii
http://cyberleninka.ru/article_covers/15794492.png

СОВРЕМЕННЫЕ АСПЕКТЫ ЕСТЕСТВЕННОГО ТЕЧЕНИЯ ХРОНИЧЕСКОГО ВИРУСНОГО ГЕПАТИТА В

Authors: Еналеева, Диляра

Subject Terms: ВИРУСНЫЙ ГЕПАТИТ В,СЕРОЛОГИЧЕСКИЕ МАРКЁРЫ ВИРУСНОГО ГЕПАТИТА В,ЛАТЕНТНОЕ ТЕЧЕНИЕ,ПРОФИЛАКТИКА ПЕРИНАТАЛЬНОГО ИНФИЦИРОВАНИЯ,АКТИВНО-ПАССИВНАЯ ИММУНИЗАЦИЯ,ПРОТИВОВИРУСНАЯ ТЕРАПИЯ,VIRAL HEPATITIS B,SEROLOGICAL MARKERS OF HEPATITIS B,LATENT COURSE,PREVENTION OF PERINATAL INFECTION,ACTIVE-PASSIVE IMMUNIZATION,ANTIVIRAL THERAPY

File Description: text/html

Availability: http://cyberleninka.ru/article/n/sovremennye-aspekty-estestvennogo-techeniya-hronicheskogo-virusnogo-gepatita-v
http://cyberleninka.ru/article_covers/13921324.png

МАРКЕРЫ ГЕРПЕТИЧЕСКИХ ИНФЕКЦИЙ ПРИ ЗАБОЛЕВАНИЯХ ПОЧЕК У ДЕТЕЙ

Authors: Бархатова, Т., Краснов, В.

Subject Terms: ПОЧЕЧНАЯ ПАТОЛОГИЯ, ГЕРПЕТИЧЕСКИЕ ИНФЕКЦИИ, СЕРОЛОГИЧЕСКИЕ МАРКЕРЫ

File Description: text/html

Availability: http://cyberleninka.ru/article/n/markery-gerpeticheskih-infektsiy-pri-zabolevaniyah-pochek-u-detey
http://cyberleninka.ru/article_covers/14790201.png

ЭПИДЕМИОЛОГИЧЕСКАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА ВИРУСНЫХ ГЕПАТИТОВ В И С В ОТДЕЛЕНИЯХ ГЕМОДИАЛИЗА В САНКТ-ПЕТЕРБУРГЕ В СОВРЕМЕННЫЙ ПЕРИОД. ЧАСТЬ 1. РЕГИСТРАЦИЯ ГЕМОКОНТАКТНЫХ ВИРУСНЫХ ГЕПАТИТОВ И СЕРОЛОГИЧЕСКИЕ МАРКЕРЫ ВИРУСНЫХ ГЕПАТИТОВ В И С У ПАЦИЕНТОВ ОТДЕЛЕНИЙ ГЕМОДИАЛИЗА

Authors: Левакова, И., Синайская, Е., Сулягина, Л., Кислый, П., Тимаховская, Г., Иванова, Н., Старосельский, К., Ряснянски, В., Мукомолов, Сергей

Subject Terms: КЛЮЧЕВЫЕ СЛОВА: ВИРУСНЫЙ ГЕПАТИТ В, ВИРУСНЫЙ ГЕПАТИТ С, ГЕМОДИАЛИЗ, ЭПИДЕМИОЛОГИЯ, СЕРОЛОГИЧЕСКИЕ МАРКЕРЫ, KEY WORDS: VIRAL HEPATITIS B

File Description: text/html

Availability: http://cyberleninka.ru/article/n/epidemiologicheskaya-harakteristika-virusnyh-gepatitov-v-i-s-v-otdeleniyah-gemodializa-v-sankt-peterburge-v-sovremennyy-period-chast-1
http://cyberleninka.ru/article_covers/15320038.png

СОВРЕМЕННЫЕ МЕТОДЫ ДИАГНОСТИКИ ФИБРОЗА ПЕЧЕНИ У ДЕТЕЙ

Authors: Сурков, Андрей

Subject Terms: ФИБРОЗ ПЕЧЕНИ У ДЕТЕЙ, СЕРОЛОГИЧЕСКИЕ МАРКЕРЫ ФИБРОЗИРОВАНИЯ, ДИАГНОСТИЧЕСКОЕ ЗНАЧЕНИЕ БИОХИМИЧЕСКИХ МАРКЕРОВ

File Description: text/html

Availability: http://cyberleninka.ru/article/n/sovremennye-metody-diagnostiki-fibroza-pecheni-u-detey
http://cyberleninka.ru/article_covers/14825070.png

Диагностическая значимость серологических и молекулярно-генетических методов для выявления краснушной инфекции

Source: Клиническая лабораторная диагностика.

Subject Terms: 0301 basic medicine, 0303 health sciences, 03 medical and health sciences, ДИАГНОСТИКА КРАСНУХИ, ПОЛИМЕРАЗНАЯ ЦЕПНАЯ РЕАКЦИЯ С ОБРАТНОЙ ТРАНСКРИПЦИЕЙ (ОТ-ПЦР), СЕРОЛОГИЧЕСКИЕ МАРКЕРЫ, 3. Good health

File Description: text/html

Access URL: http://cyberleninka.ru/article_covers/15794492.png
http://cyberleninka.ru/article/n/diagnosticheskaya-znachimost-serologicheskih-i-molekulyarno-geneticheskih-metodov-dlya-vyyavleniya-krasnushnoy-infektsii

Эпидемиологическая характеристика вирусных гепатитов в и с в отделениях гемодиализа в Санкт-Петербурге в современный период. Часть 1. Регистрация гемоконтактных вирусных гепатитов и серологические маркеры вирусных гепатитов в и с у пациентов отделений гемодиализа

Source: Инфекция и иммунитет.

Subject Terms: КЛЮЧЕВЫЕ СЛОВА: ВИРУСНЫЙ ГЕПАТИТ В, ВИРУСНЫЙ ГЕПАТИТ С, ГЕМОДИАЛИЗ, ЭПИДЕМИОЛОГИЯ, СЕРОЛОГИЧЕСКИЕ МАРКЕРЫ, KEY WORDS: VIRAL HEPATITIS B, 3. Good health

File Description: text/html

Access URL: http://cyberleninka.ru/article/n/epidemiologicheskaya-harakteristika-virusnyh-gepatitov-v-i-s-v-otdeleniyah-gemodializa-v-sankt-peterburge-v-sovremennyy-period-chast-1
http://cyberleninka.ru/article_covers/15320038.png