Peptides are cardioprotective drugs of the future. Adrenomedullin ; Пептиды – кардиопротекторные препараты будущего. Адреномедуллин

Authors: S. V. Popov, L. N. Maslov, A. V. Mukhomedzyanov, A. S. Slidnevskaya, A. Kan, N. V. Naryzhnaya, Yu. G. Birulina, T. V. Lasukova, Yu. K. Podoxenov, С. В. Попов, Л. Н. Маслов, А. В. Мухомедзянов, А. С. Слидневская, А. Кан, Н. В. Нарыжная, Ю. Г. Бирулина, Т. В. Ласукова, Ю. К. Подоксенов

Contributors: The study was supported by the Russian Science Foundation grant No. 23-65-10017. The section on post-infarction cardiac remodeling was prepared in the framework of the state assignment 122020300042-4, Работа выполнена при финансовой поддержке гранта Российского научного фонда №2365-10017. Раздел, посвященный постинфарктному ремоделированию сердца, подготовлен в рамках государственного задания 122020300042-4

Source: Siberian Journal of Clinical and Experimental Medicine; Том 40, № 1 (2025); 11-18 ; Сибирский журнал клинической и экспериментальной медицины; Том 40, № 1 (2025); 11-18 ; 2713-265X ; 2713-2927

Subject Terms: адреномедуллин, peptides, ischemia/reperfusion, post-infarction cardiac remodeling, adrenomedullin, пептиды, ишемия / реперфузия, постинфарктное ремоделирование сердца

File Description: application/pdf

Relation: https://www.sibjcem.ru/jour/article/view/2628/1043; Currey E.M., Falconer N., Isoardi K.Z., Barras M. Impact of pharmacists during in-hospital resuscitation or medical emergency response events: A systematic review. Am. J. Emerg. Med. 2024;75:98–110. https://doi.org/10.1016/j.ajem.2023.10.020; Ashraf S., Farooq U., Shahbaz A., Khalique F., Ashraf M., Akmal R. et al. Factors responsible for worse outcomes in STEMI patients with early vs delayed treatment presenting in a tertiary care center in a third world country. Curr. Probl. Cardiol. 2024;49(1_Pt_B):102049. https://doi.org/10.1016/j.cpcardiol.2023.102049; Nanavaty D., Sinha R., Kaul D., Sanghvi A., Kumar V., Vachhani B. et al. Impact of COVID-19 on acute myocardial infarction: A national inpatient sample analysis. Curr. Probl. Cardiol. 2024;49(1_Pt_A):102030. https://doi.org/10.1016/j.cpcardiol.2023.102030; Hti Lar Seng N.S., Zeratsion G., Pena Zapata O.Y., Tufail M.U., Jim B. Utility of cardiac troponins in patients with chronic kidney disease. Cardiol. Rev. 2024;32(1):62–70. https://doi.org/10.1097/CRD.0000000000000461; Luo Q., Sun W., Li Z., Sun J., Xiao Y., Zhang J. et al. Biomaterialsmediated targeted therapeutics of myocardial ischemia-reperfusion injury. Biomaterials. 2023;303:122368. https://doi.org/10.1016/j.biomaterials.2023.122368; Мотова А.В., Каретникова В.Н., Осокина А.В., Поликутина О.М., Барбараш О.Л. Инфаркт миокарда 2-го типа: особенности диагностики в реальной клинической практике. Сибирский журнал клинической и экспериментальной медицины. 2022;37(3):75–82. https://doi.org/10.29001/2073-8552-2022-37-3-75-82; Вышлов Е.В., Алексеева Я.В., Усов В.Ю., Мочула О.В., Рябов В.В. Синдром микрососудистого повреждения миокарда у пациентов с первичным инфарктом миокарда с подъемом сегмента ST: распространенность и связь с клиническими характеристиками. Сибирский журнал клинической и экспериментальной медицины. 2022;37(1):36–46. https://doi.org/10.29001/2073-8552-2021-36-4-36-46; Li M., Hu L., Li L. Research progress of intra-aortic balloon counterpulsation in the treatment of acute myocardial infarction with cardiogenic shock: A review. Medicine (Baltimore). 2023;102(49):e36500. https://doi.org/10.1097/MD.0000000000036500; Maslov L.N., Popov S.V., Mukhomedzyanov A.V., Naryzhnaya N.V., Voronkov N.S., Ryabov V.V. et al. Reperfusion cardiac injury: Receptors and the signaling mechanisms. Cur. Cardiol. Rev. 2022;18(5):63–79. https://doi.org/10.2174/1573403X18666220413121730; Reimer K.A., Jennings R.B. Verapamil in two reperfusion models of myocardial infarction. Temporary protection of severely ischemic myocardium without limitation of ultimate infarct size. Lab. Invest. 1984;51(6):655–666.; Kitamura K., Kangawa K., Kawamoto M., Ichiki Y., Nakamura S., Matsuo H. et al. Adrenomedullin: a novel hypotensive peptide isolated from human pheochromocytoma. Biochem. Biophys. Res. Commun. 1993a;192(2):553–560. https://doi.org/10.1006/bbrc.1993.1451; Sugo S., Minamino N., Kangawa K., Miyamoto K., Kitamura K., Sakata J. et al. Endothelial cells actively synthesize and secrete adrenomedullin. Biochem. Biophys. Res. Commun. 1994;201(3):1160–1166. https://doi.org/10.1006/bbrc.1994.1827; Kitamura K., Sakata J., Kangawa K., Kojima M., Matsuo H., Eto T. Cloning and characterization of cDNA encoding a precursor for human adrenomedullin. Biochem. Biophys. Res. Commun. 1993b; 194(2):720– 725. https://doi.org/10.1006/bbrc.1993.1881; Ishiyama Y., Kitamura K., Ichiki Y., Sakata J., Kida O., Kangawa K. et al. Haemodynamic responses to rat adrenomedullin in anaesthetized spontaneously hypertensive rats. Clin. Exp. Pharmacol. Physiol. 1995;22(9):614–618. https://doi.org/10.1111/j.1440-1681.1995.tb02075.x; Meeran K., O'Shea D., Upton P.D., Small C.J., Ghatei M.A., Byfield P.H. et al. Circulating adrenomedullin does not regulate systemic blood pressure but increases plasma prolactin after intravenous infusion in humans: a pharmacokinetic study. J. Clin. Endocrinol. Metab. 1997;82(1):95–100. https://doi.org/10.1210/jcem.82.1.3656; Sandoval D.A., D'Alessio D.A. Physiology of proglucagon peptides: role of glucagon and GLP-1 in health and disease. Physiol. Rev. 2015;95(2):513–548. https://doi.org/10.1152/physrev.00013.2014; Reed A.B., Lanman B.A., Holder J.R., Yang B.H., Ma J., Humphreys S.C. et al. Half-life extension of peptidic APJ agonists by N-terminal lipid conjugation. Bioorg. Med. Chem. Lett. 2020;30(21):127499. https://doi.org/10.1016/j.bmcl.2020.127499; Naot D., Musson D.S., Cornish J. The activity of peptides of the calcitonin family in bone. Physiol. Rev. 2019;99(1):781–805. https://doi.org/10.1152/physrev.00066.2017; Woolley M.J., Reynolds C.A., Simms J., Walker C.S., Mobarec J.C., Garelja M.L. et al. Receptor activity-modifying protein dependent and independent activation mechanisms in the coupling of calcitonin gene-related peptide and adrenomedullin receptors to Gs. Biochem. Pharmacol. 2017;142:96–110. https://doi.org/10.1016/j.bcp.2017.07.005; Sekine N., Takano K., Kimata-Hayashi N., Kadowaki T., Fujita T. Adrenomedullin inhibits insulin exocytosis via pertussis toxin-sensitive G protein-coupled mechanism. Am. J. Physiol. Endocrinol. Metab. 2006;291(1):E9–E14. https://doi.org/10.1152/ajpendo.00213.2005; Mittra S. Bourreau J.P. Gs and Gi coupling of adrenomedullin in adult rat ventricular myocytes. Am J. Physiol. Heart Circ. Physiol. 2006;290(5):H1842–H1847. https://doi.org/10.1152/ajpheart.00388.2005; Berenguer C., Boudouresque F., Dussert C., Daniel L., Muracciole X., Grino M. et al. Adrenomedullin, an autocrine/paracrine factor induced by androgen withdrawal, stimulates 'neuroendocrine phenotype' in LNCaP prostate tumor cells. Oncogene. 2008;27(4):506–518. https://doi.org/10.1038/sj.onc.1210656; Bell D., Campbell M., McAleer S.F., Ferguson M., Donaghy L., Harbinson M.T. Endothelium-derived intermedin/adrenomedullin-2 protects human ventricular cardiomyocytes from ischaemiareoxygenation injury predominantly via the AM1 receptor. Peptides. 2016;76:1–13. https://doi.org/10.1016/j.peptides.2015.12.005; Xian X., Sakurai T., Kamiyoshi A., Ichikawa-Shindo Y., Tanaka M., Koyama T. et al. Vasoprotective activities of the adrenomedullin-RAMP2 system in endothelial cells. Endocrinology. 2017;158(5):1359–1372. https://doi.org/10.1210/en.2016-1531; Josiassen J., Frydland M., Holmvang L., Lerche Helgestad O.K., Okkels Jensen L., Goetze J.P. et al. Mortality in cardiogenic shock is stronger associated to clinical factors than contemporary biomarkers reflecting neurohormonal stress and inflammatory activation. Biomarkers. 2020;25(6):506–512. https://doi.org/10.1080/1354750X.2020.1795265; Nagaya N., Nishikimi T., Uematsu M., Yoshitomi Y., Miyao Y., Miyazaki S. et al. Plasma adrenomedullin as an indicator of prognosis after acute myocardial infarction. Heart. 1999;81(5):483–487. https://doi.org/10.1136/hrt.81.5.483; Hartopo A.B., Puspitawati I., Anggraeni V.Y. High level of mid-regional proadrenomedullin during ST-segment elevation myocardial infarction is an independent predictor of adverse cardiac events within 90-day follow-up. Medicina (Kaunas). 2022;58(7):861. https://doi.org/10.3390/medicina58070861; Vijay P., Szekely L., Aufiero T.X., Sharp T.G. Coronary sinus adrenomedullin rises in response to myocardial injury. Clin. Sci. (Lond). 1999;96(4):415–420. https://doi.org/10.1042/cs0960415; Oie E., Vinge L.E., Yndestad A., Sandberg C., Grøgaard H.K., Attramadal H. Induction of a myocardial adrenomedullin signaling system during ischemic heart failure in rats. Circulation. 2000;101(4):415–422. https://doi.org/10.1161/01.cir.101.4.415; Nagaya N., Nishikimi T., Yoshihara F., Horio T., Morimoto A., Kangawa K. Cardiac adrenomedullin gene expression and peptide accumulation after acute myocardial infarction in rats. Am. J. Physiol. Regul. Integr. Comp. Physiol. 2000;278(4):R1019–R1026. https://doi.org/10.1152/ajpregu.2000.278.4.R1019; Belloni A.S., Guidolin D., Ceretta S., Bova S., Nussdorfer G.G. Acute effect of ischemia on adrenomedullin immunoreactivity in the rat heart: an immunocytochemical study. Int. J. Mol. Med. 2004;14(1):71–73. https://doi.org/10.3892/ijmm.14.1.71; Hinrichs S., Scherschel K., Krüger S., Neumann J.T., Schwarz M., Yan I. et al. Precursor proadrenomedullin influences cardiomyocyte survival and local inflammation related to myocardial infarction. Proc. Natl. Acad. Sci USA. 2018;115(37):E8727–E8736. https://doi.org/1073/pnas.1721635115; Kato K., Yin H., Agata J., Yoshida H., Chao L., Chao J. Adrenomedullin gene delivery attenuates myocardial infarction and apoptosis after ischemia and reperfusion. Am J. Physiol. Heart. Circ. Physiol. 2003;285(4):H1506– H1514. https://doi.org/10.1152/ajpheart.00270.2003; de Miranda D.C., de Oliveira Faria G., Hermidorff M.M., Dos Santos Silva F.C., de Assis L.V.M., Isoldi M.C. Pre- and Post-Conditioning of the Heart: An Overview of Cardioprotective Signaling Pathways. Curr. Vasc. Pharmacol. 2021;19(5):499–524. https://doi.org/10.2174/1570161119666201120160619; Yin H., Chao L., Chao J. Adrenomedullin protects against myocardial apoptosis after ischemia/reperfusion through activation of Akt-GSK signaling. Hypertension. 2004;43(1):109–116. https://doi.org/10.1161/01.HYP.0000103696.60047.55; An R., Xi C., Xu J., Liu Y., Zhang S., Wang Y. et al. Intramyocardial injection of recombinant adeno-associated viral vector coexpressing PR39/adrenomedullin enhances angiogenesis and reduces apoptosis in a rat myocardial infarction model. Oxid. Med. Cell. Longev. 2017;2017:1271670. https://doi.org/10.1155/2017/1271670; Naryzhnaya N.V., Maslov L.N., Derkachev I.A., Ma H., Zhang Y., Prasad N.R. et al. The effect of an adaptation to hypoxia on cardiac tolerance to ischemia/reperfusion. J. Biomed. Res. 2022;37(4):230–254. https://doi.org/10.7555/JBR.36.20220125; Moradi M., Mousavi A., Emamgholipour Z., Giovannini J., Moghimi S., Peytam F. et al. Quinazoline-based VEGFR-2 inhibitors as potential antiangiogenic agents: A contemporary perspective of SAR and molecular docking studies. Eur. J. Med. Chem. 2023;259:115626. https://doi.org/10.1016/j.ejmech.2023.115626; Okumura H., Nagaya N., Itoh T., Okano I., Hino J., Mori K. et al. Adrenomedullin infusion attenuates myocardial ischemia/reperfusion injury through the phosphatidylinositol 3-kinase/Akt-dependent pathway. Circulation. 2004;109(2):242–248. https://doi.org/10.1161/01.CIR.0000109214.30211.7C; Hamid S.A., Baxter G.F. Adrenomedullin limits reperfusion injury in experimental myocardial infarction. Basic Res. Cardiol. 2005;100(5):387– 396. https://doi.org/10.1007/s00395-005-0538-3; Hamid S.A., Baxter G.F. A critical cytoprotective role of endogenous adrenomedullin in acute myocardial infarction. J. Mol. Cell. Cardiol. 2006;41(2):360–363. https://doi.org/10.1016/j.yjmcc.2006.05.017; Hamid S.A., Totzeck M., Drexhage C., Thompson I., Fowkes R.C., Rassaf T. et al. Nitric oxide/cGMP signalling mediates the cardioprotective action of adrenomedullin in reperfused myocardium. Basic Res. Cardiol. 2010;105(2):257–266. https://doi.org/10.1007/s00395-009-0058-7; Nishida H., Sato T., Miyazaki M., Nakaya H. Infarct size limitation by adrenomedullin: protein kinase A but not PI3-kinase is linked to mitochondrial KCa channels. Cardiovasc. Res. 2008;77(2):398–405. https://doi.org/10.1016/j.cardiores.2007.07.015; Torigoe Y., Takahashi N., Hara M., Yoshimatsu H., Saikawa T. Adrenomedullin improves cardiac expression of heat-shock protein 72 and tolerance against ischemia/reperfusion injury in insulin-resistant rats. Endocrinology. 2009;150(3):1450–1455. https://doi.org/10.1210/en.2008-1052; Karakas M., Akin I., Burdelski C., Clemmensen P., Grahn H., Jarczak D. et al. Single-dose of adrecizumab versus placebo in acute cardiogenic shock (ACCOST-HH): an investigator-initiated, randomised, doubleblinded, placebo-controlled, multicentre trial. Lancet Respir. Med. 2022;10(3):247–254. https://doi.org/10.1016/S2213-2600(21)00439-2; Nakamura R., Kato J., Kitamura K., Onitsuka H., Imamura T., Marutsuka K. et al. Beneficial effects of adrenomedullin on left ventricular remodeling after myocardial infarction in rats. Cardiovasc. Res. 2002;56(3):373–380. https://doi.org/10.1016/s0008-6363(02)00594-1; Okumura H., Nagaya N., Kangawa K. Adrenomedullin infusion during ischemia/reperfusion attenuates left ventricular remodeling and myocardial fibrosis in rats. Hypertens. Res. 2003;26_Suppl:S99–S104. https://doi.org/10.1291/hypres.26.s99; Nakamura R., Kato J., Kitamura K., Onitsuka H., Imamura T., Cao Y. et al. Adrenomedullin administration immediately after myocardial infarction ameliorates progression of heart failure in rats. Circulation. 2004;110(4):426–431. https://doi.org/10.1161/01.CIR.0000136085.34185.83; Dong W., Yu P., Zhang T., Zhu C., Qi J., Liang J. Adrenomedullin serves a role in the humoral pathway of delayed remote ischemic preconditioning via a hypoxia-inducible factor-1α-associated mechanism. Mol. Med. Rep. 2018;17(3):4547–4553. https://doi.org/10.3892/mmr.2018.8450; Dou L., Lu E., Tian D., Li F., Deng L., Zhang Y. Adrenomedullin induces cisplatin chemoresistance in ovarian cancer through reprogramming of glucose metabolism. J. Transl. Int. Med. 2023;11(2):169–177. https://doi.org/10.2478/jtim-2023-0091; Wang X., Jia J.H., Zhang M., Meng Q.S., Yan B.W., Ma Z.Y. et al. Adrenomedullin/FOXO3 enhances sunitinib resistance in clear cell renal cell carcinoma by inhibiting FDX1 expression and cuproptosis. FASEB J. 2023;37(10):e23143. https://doi.org/10.1096/fj.202300474R; https://www.sibjcem.ru/jour/article/view/2628

Availability: https://www.sibjcem.ru/jour/article/view/2628
https://doi.org/10.29001/2073-8552-2025-40-1-11-18

Влияние пероксиредоксина 6 на нефроны в ранний реперфузионный период после ренальной ишемии у крыс

Authors: Alina E. Gordeeva, Ezhena A. Kurganova, Vladimir I. Novoselov

Source: Журнал медико-биологических исследований, Vol 11, Iss 1, Pp 75-85 (2023)

Subject Terms: ишемия-реперфузия почки, морфофункциональные изменения нефронов, пероксиредоксины, мочевина, креатинин, молекула повреждения почек (kiм-1), Sports medicine, RC1200-1245, Biology (General), QH301-705.5

File Description: electronic resource

Relation: https://journals.narfu.ru/index.php/med/article/view/1087; https://doaj.org/toc/2542-1298; https://doaj.org/toc/2687-1491

Access URL: https://doaj.org/article/5c5f98bc13954ac6a88c353f355b18d8

Inhaled nitric oxide: are expectations justified? ; Ингаляционный оксид азота: обоснованы ли ожидания?

Authors: I. A. Kozlov, И. А. Козлов

Source: Messenger of ANESTHESIOLOGY AND RESUSCITATION; Том 21, № 6 (2024); 17-23 ; Вестник анестезиологии и реаниматологии; Том 21, № 6 (2024); 17-23 ; 2541-8653 ; 2078-5658

Subject Terms: ишемия-реперфузия, selective pulmonary vasodilation, acute respiratory distress syndrome, pulmonary hypertension, right ventricular dysfunction, organoprotection, ischemia-reperfusion, селективная легочная вазодилатация, острый респираторный дистресс-синдром, легочная гипертензия, правожелудочковая дисфункция, органопротекция

File Description: application/pdf

Relation: https://www.vair-journal.com/jour/article/view/1102/758; Баутин А. Е., Селемир В. Д., Нургалиева А. И. и др. Ингаляционная терапия оксидом азота, полученным методом синтеза из атмосферного воздуха, в послеоперационном периоде кардиохирургических вмешательств у детей: одноцентровое ретроспективное когортное исследование // Вестник интенсивной терапии им. А. И. Салтанова. – 2021. – № 3. – С. 98–107. https://doi.org/10.21320/1818-474X-2021-3-98-107.; Баутин А. Е., Селемир В. Д., Шафикова А. И. и др. Оценка клинической эффективности и безопасности терапии оксидом азота, синтезированным из атмосферного воздуха, в послеоперационном периоде кардиохирургических вмешательств // Трансляционная медицина. – 2021. – Т. 8, № 1. – С. 38–50. https://doi.org/10.18705/2311-4495-2021-8-1-38-50.; Калашникова Т. П., Арсеньева Ю. А., Каменщиков Н. О. и др. Антибактериальное действие оксида азота на возбудители госпитальной пневмонии (экспериментальное исследование) // Общая реаниматология. – 2024. – Т. 20, № 3. – С. 32–41. https://doi.org/10.15360/1813-9779-2024-3-2424.; Козлов И. А., Попцов В. Н. Клиническое использование ингаляционной окиси азота. Обзор литературы и первые клинические наблюдения // Анест. и реаниматол. – 1997. – № 5. – С. 80–88. PMID: 9432900.; Козлов И. А., Попцов В. H. Ингаляционная окись азота пpи тpансплантации сеpдца // Анест. и pеаниматол. – 1999. – № 5. – С. 9–12. PMID: 10560143.; Козлов И. А., Попцов В. Н. Сочетанная терапия оксидом азота и сурфактантом-BL при остром респираторном дистресс-синдроме после операций с искусственным кровообращением // Общая реаниматология. – 2005. – Т. 1, № 6. – С. 15–20. https://doi.org/10.15360/1813-9779-2005-6-15-20.; Мандель И. А., Яворовский А. Г., Выжигина М. А. и др. Системная органопротекция ингаляционным оксидом азота (обзор литературы) // Вестник анестезиологии и реаниматологии. – 2024. – Т. 21, № 4. – С. 104–114. https://doi.org/10.24884/2078-5658-2024-21-4-104-114.; Нгуен Х. К., Позднякова Д. Д., Баранова И. А., Чучалин А. Г. Применение ингаляций оксида азота при COVID-19 // Пульмонология. – 2024. – Т. 34, № 3. – С. 454–463. https://doi.org/10.18093/0869-0189-2024-4305.; Пичугин В. В., Баутин А. Е., Домнин С. Е. и др. Доставка газообразного оксида азота в экстракорпоральный контур циркуляции: экспериментальные и клинические данные: обзор литературы // Вестник интенсивной терапии им. А.И. Салтанова. – 2021. – № 3. – С. 108–116. https://doi.org/10.21320/1818-474X-2021-3-108-116.; Пичугин В. В., Дерюгина А. В., Домнин С. Е. и др. Первый опыт комбинированного применения оксида азота и молекулярного водорода в обеспечении операций на сердце у пациентов высокого риска // Пульмонология. – 2024. – Т. 34, № 1. – С. 32–41. https://doi.org/10.18093/0869-0189-2024-34-1-32-41.; Пичугин В. В., Домнин С. Е., Сандалкин Е. В. и др. Подмешивание оксида азота в ЭКМО для лечения критической ОСН // СТМ. – 2021. – Т. 13, № 4. – С. 57–63. https://doi.org/10.17691/stm2021.13.4.06.; Подоксенов Ю. К., Каменщиков Н. О., Мандель И. А. Применение оксида азота для защиты миокарда при ишемической болезни сердца // Анестезиология и реаниматология. – 2019. – № 2. – С. 34–47. https://doi.org/10.17116/anaesthesiology201902134.; Попцов В. Н. Гемодинамика и газообменные эффекты ингаляционного оксида азота при ОРДС у кардиохирургических больных // Общая реаниматология. – 2006. – Т. 2, № 2. – С. 14–19. https://doi.org/10.15360/1813-9779-2006-2-14-19.; Те М. А., Каменщиков Н. О., Подоксенов Ю. К. и др. Влияние доставки оксида азота на процессы апоптоза, некроптоза и пироптоза в почечной паренхиме при моделировании искусственного кровообращения: экспериментальное исследование // Вестник анестезиологии и реаниматологии. – 2024. – Т. 21, № 3. – С. 26–33. https://doi.org/10.24884/2078-5658-2024-21-3-26-33; Чурилина Е. А., Подоксенов Ю. К., Каменщиков Н. О. и др. Влияние оксида азота на степень повреждения ткани кишечника и структурной организации мембран эритроцитов при моделировании искусственного кровообращения и циркуляторного ареста: экспериментальное рандомизированное исследование // Вестник интенсивной терапии им. А. И. Салтанова. – 2024. – № 3. – С. 48–60. https://doi.org/10.21320/1818-474X-2024-3‑48-60.; Шень Н. П., Витик А. А., Артемчук А. В. и др. Опыт применения оксида азота у пациента с острым инфарктом миокарда, осложненным кардиогенным шоком и отеком легких (клинический случай) // Вестник анестезиологии и реаниматологии. – 2024. – Т. 21, № 3. – С. 109–116. https://doi.org/10.24884/2078-5658-2024-21-3-109-116.; Штабницкий В. А., Чучалин А. Г. Ингаляционный оксид азота: возможности улучшения оксигенации при остром респираторном дистресс-синдроме // Пульмонология. – 2015. – Т. 25, № 2. – С. 180–186. https://doi.org/10.18093/0869-0189-2015-25-2-180-186.; Abouzid M., Roshdy Y., Daniel J. M. et al. The beneficial use of nitric oxide during cardiopulmonary bypass on postoperative outcomes in children and adult patients: a systematic review and meta-analysis of 2897 patients // Eur J Clin Pharmacol. – 2023. – Vol. 79, № 11. – P. 1425–1442. https://doi.org/10.1007/s00228-023-03554-9.; Al Sulaiman K., Korayem G. B., Altebainawi A. F. et al. Evaluation of inhaled nitric oxide (iNO) treatment for moderate-to-severe ARDS in critically ill patients with COVID-19: a multicenter cohort study // Crit Care. – 2022. – Vol. 26, № 1. – P. 304. https://doi.org/10.1186/s13054-022-04158-y.; Cookson M. W., Kinsella J. P. Inhaled nitric oxide in neonatal pulmonary hypertension // Clin Perinatol. – 2024. – Vol. 51, № 1. – P. 95–111. https://doi.org/10.1016/j.clp.2023.11.001.; Chang Y. T., Liu J. R., Chen W. M. et al. First-year outcomes of very low birth weight preterm singleton infants with hypoxemic respiratory failure treated with milrinone and inhaled nitric oxide (iNO) compared to iNO alone: A nationwide retrospective study // PLoS One. – 2024. – Vol. 19, № 5. – e0297137. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0297137.; Duggal A., Rezoagli E., Pham T. et al. Patterns of use of adjunctive therapies in patients with early moderate to severe ARDS: Insights from the Lung Safe Study // Chest. – 2020. – Vol. 157, № 6. – P. 1497–1505. https://doi.org/10.1016/j.chest.2020.01.041.; Fan E., Del Sorbo L., Goligher E. C. et al. An Official American Thoracic Society/European Society of Intensive Care Medicine/Society of Critical Care Medicine Clinical Practice Guideline: mechanical ventilation in adult patients with acute respiratory distress syndrome // Am J Respir Crit Care Med. – 2017. – Vol. 195, № 9. – P. 1253–1263. https://doi.org/10.1164/rccm.201703-0548ST.; Ferreira L. O., Vasconcelos V. W., Lima J. S. et al. Biochemical changes in cardiopulmonary bypass in cardiac surgery: new insights // J Pers Med. – 2023. – Vol. 13, № 10. – P. 1506. https://doi.org/10.3390/jpm13101506.; Frostell C., Fratacci M. D., Wain J. C. et al. Inhaled nitric oxide. A selective pulmonary vasodilator reversing hypoxic pulmonary vasoconstriction // Circulation. – 1991. – Vol. 83, № 6. – P. 2038–2047. https://doi.org/10.1161/01.cir.83.6.2038.; Gebistorf F., Karam O., Wetterslev J. et al. Inhaled nitric oxide for acute respiratory distress syndrome (ARDS) in children and adults // Cochrane Database Syst Rev. – 2016. – Vol. 6. – CD002787. https://doi.org/10.1002/14651858.CD002787.pub3.; Grasselli G., Calfee C. S., Camporota L. et al. European society of intensive care medicine taskforce on ARDS. ESICM guidelines on acute respiratory distress syndrome: definition, phenotyping and respiratory support strategies // Intensive Care Med. – 2023. – Vol. 49, № 7. – P. 727–759. https://doi.org/10.1007/s00134-023-07050-7.; Griffiths M. J. D., McAuley D. F., Perkins G. D. et al. Guidelines on the management of acute respiratory distress syndrome // BMJ Open Respir Res. – 2019. – Vol. 6, № 1. – e000420. https://doi.org/10.1136/bmjresp-2019-000420.; Hubble C. L., Cheifetz I. M., Craig D. M. et al. Inhaled nitric oxide results in deteriorating hemodynamics when administered during cardiopulmonary bypass in neonatal swine // Pediatr Crit Care Med. – 2004. – Vol. 5, № 2. – P. 157–162. https://doi.org/10.1097/01.pcc.0000112377.90107.97.; Ignarro L. J., Buga G. M., Wood K. S. et al. Endothelium-derived relaxing factor produced and released from artery and vein is nitric oxide // Proc Natl Acad Sci USA. – 1987. – Vol. 84, № 24. – P. 9265–9269. https://doi.org/10.1073/pnas.84.24.9265.; Janssens S. P., Bogaert J., Zalewski J. et al. Nitric oxide for inhalation in ST-elevation myocardial infarction (NOMI): a multicentre, double-blind, randomized controlled trial // Eur Heart J. – 2018. – Vol. 39, № 29. – P. 2717–2725. https://doi.org/10.1093/eurheartj/ehy232.; Kamenshchikov N. O., Duong N., Berra L. Nitric Oxide in cardiac surgery: a review article // Biomedicines. – 2023. – Vol. 11, № 4. – P. 1085. https://doi.org/10.3390/biomedicines11041085.; Monsalve-Naharro J. Á., Domingo-Chiva E., García Castillo S. et al. Inhaled nitric oxide in adult patients with acute respiratory distress syndrome // Farm Hosp. – 2017. – Vol. 41, № 2. – P. 292–312. https://doi.org/10.7399/fh.2017.41.2.10533.; Muenster S., Zarragoikoetxea I., Moscatelli A. et al. Inhaled NO at a crossroads in cardiac surgery: current need to improve mechanistic understanding, clinical trial design and scientific evidence // Front Cardiovasc Med. – 2024. – Vol. 11. – 1374635. https://doi.org/10.3389/fcvm.2024.1374635.; Palmer R. M., Ferrige A. G., Moncada S. Nitric oxide release accounts for the biological activity of endothelium-derived relaxing factor // Nature. – 1987. – Vol. 327, № 6122. – P. 524–526. https://doi.org/10.1038/327524a0. PMID: 3495737.; Qadir N., Sahetya S., Munshi L. et al. An Update on management of adult patients with acute respiratory distress syndrome: an Official American Thoracic Society Clinical Practice Guideline // Am J Respir Crit Care Med. – 2024. – Vol. 209, № 1. – P. 24–36. https://doi.org/10.1164/rccm.202311-2011ST.; Redaelli S., Magliocca A., Malhotra R. et al. Nitric oxide: Clinical applications in critically ill patients // Nitric Oxide. – 2022. – Vol. 121. – P. 20–33. https://doi.org/10.1016/j.niox.2022.01.007.; Redaelli S., Pozzi M., Giani M. et al. Inhaled nitric oxide in acute respiratory distress syndrome subsets: rationale and clinical applications // J Aerosol Med Pulm Drug Deliv. – 2023. – Vol. 36, № 3. – P. 112–126. https://doi.org/10.1089/jamp.2022.0058.; Sardo S., Osawa E. A., Finco G. et al. Nitric oxide in cardiac surgery: a meta-analysis of randomized controlled trials // J Cardiothorac Vasc Anesth. – 2018. – Vol. 32, № 6. – P. 2512–2519. https://doi.org/10.1053/j.jvca.2018.02.003.; Schlapbach L. J., Gibbons K. S., Horton S. B. et al. Effect of nitric oxide via cardiopulmonary bypass on ventilator-free days in young children undergoing congenital heart disease surgery: the NITRIC randomized clinical trial // JAMA. – 2022. – Vol. 328, № 1. – P. 38–47. https://doi.org/10.1001/jama.2022.9376.; Shei R. J., Baranauskas M. N. More questions than answers for the use of inhaled nitric oxide in COVID-19 // Nitric Oxide. – 2022. – Vol. 124. – P. 39–48. https://doi.org/10.1016/j.niox.2022.05.001.; Sherlock L. G., Wright C. J., Kinsella J. P. et al. Inhaled nitric oxide use in neonates: Balancing what is evidence-based and what is physiologically sound // Nitric Oxide. – 2020. – Vol. 95. – P. 12–16. https://doi.org/10.1016/j.niox.2019.12.001.; Tasaka S., Ohshimo S., Takeuchi M. et al. ARDS Clinical Practice Guideline 2021 // J Intensive Care. – 2022. – Vol. 10, № 1. – P. 32. https://doi.org/10.1186/s40560-022-00615-6.; Wong J., Loomba R. S., Evey L. et al. Postoperative inhaled nitric oxide does not decrease length of stay in pediatric cardiac surgery admissions // Pediatr Cardiol. – 2019. – Vol. 40, № 8. – P. 1559–1568. https://doi.org/10.1007/s00246-019-02187-z.; Xu F., Li W. Delivery exogenous nitric oxide via cardiopulmonary bypass in pediatric cardiac surgery reduces the duration of postoperative mechanical ventilation – a meta-analysis of randomized controlled trials // Heliyon. – 2023. – Vol. 9, № 8. – e19007. https://doi.org/10.1016/j.heliyon.2023.e19007.; Yan Y., Kamenshchikov N., Zheng Z. et al. Inhaled nitric oxide and postoperative outcomes in cardiac surgery with cardiopulmonary bypass: A systematic review and meta-analysis // Nitric Oxide. – 2024. – Vol. 146. – P. 64–74. https://doi.org/10.1016/j.niox.2024.03.004.; Yang X., Zhu L., Pan H., Yang Y. Cardiopulmonary bypass associated acute kidney injury: better understanding and better prevention // Ren Fail. – 2024. – Vol. 46, № 1. – P. 2331062. https://doi.org/10.1080/0886022X.2024.2331062.; Yu B., Ichinose F., Bloch D. B. et al. Inhaled nitric oxide // Br J Pharmacol. – 2019. – Vol. 176, № 2. – P. 246–255. https://doi.org/10.1111/bph.14512.; Zhao Y., Li C., Zhang S. et al. Inhaled nitric oxide: can it serve as a savior for COVID-19 and related respiratory and cardiovascular diseases? // Front Microbiol. – 2023. – Vol. 14. – 1277552. https://doi.org/10.3389/fmicb.2023.1277552.; Zhao M., Zhang Q., Lin Y. et al. Impact of nitric oxide via cardiopulmonary bypass on pediatric heart surgery: a meta-analysis of randomized controlled trials // J Cardiothorac Surg. – 2024. – Vol. 19, № 1. – P. 461. https://doi.org/10.1186/s13019-024-02953-y

Availability: https://www.vair-journal.com/jour/article/view/1102
https://doi.org/10.24884/2078-5658-2024-21-6-17-23

Peptides are cardioprotective drugs of the future. Oxytocin ; Пептиды – кардиопротекторные препараты будущего. Окситоцин

Authors: S. V. Popov, L. N. Maslov, A. V. Mukhomedzyanov, A. S. Slidnevskaya, A. Kan, N. V. Naryzhnaya, Yu. K. Podoksenov, С. В. Попов, Л. Н. Маслов, А. В. Мухомедзянов, А. С. Слидневская, А. Кан, Н. В. Нарыжная, Ю. К. Подоксенов

Contributors: The study was supported by the Russian Science Foundation grant No. 23-65-10017. The section on ischemic preconditioning and postconditioning was prepared in the framework of the state assignment 122020300042-4, Работа выполнена при финансовой поддержке гранта Российского научного фонда № 23-65-10017. Раздел, посвященный ишемическому прекондиционированию и посткондиционированию, подготовлен в рамках государственного задания 122020300042-4

Source: Siberian Journal of Clinical and Experimental Medicine; Том 39, № 3 (2024); 12-18 ; Сибирский журнал клинической и экспериментальной медицины; Том 39, № 3 (2024); 12-18 ; 2713-265X ; 2713-2927

Subject Terms: окситоцин, cardioprotective drugs, ischemia/reperfusion, the cardioprotective effect, oxytocin, кардиопротекторные препараты, ишемия/реперфузия, кардиопротекторный эффект

File Description: application/pdf

Relation: https://www.sibjcem.ru/jour/article/view/2419/986; Мотова А.В., Каретникова В.Н., Осокина А.В., Поликутина О.М., Барбараш О.Л. Инфаркт миокарда 2-го типа: особенности диагностики в реальной клинической практике. Сибирский журнал клинической и экспериментальной медицины. 2022;37(3):75–82. DOI:10.29001/2073-8552-2022-37-3-75-82.; Вышлов Е.В., Алексеева Я.В., Усов В.Ю., Мочула О.В., Рябов В.В. Синдром микрососудистого повреждения миокарда у пациентов с первичным инфарктом миокарда с подъемом сегмента ST: распространенность и связь с клиническими характеристиками. Сибирский журнал клинической и экспериментальной медицины. 2022;37(1):36–46. DOI:10.29001/2073-8552-2021-36-4-36-46.; Ashraf S., Farooq U., Shahbaz A., Khalique F., Ashraf M., Akmal R. et al. Factors responsible for worse outcomes in STEMI patients with early vs delayed treatment presenting in a tertiary care center in a Third World Country. Curr. Probl. Cardiol. 2024;49(1 Pt B):102049. DOI:10.1016/j.cpcardiol.2023.102049.; Currey E.M., Falconer N., Isoardi K.Z., Barras M. Impact of pharmacists during in-hospital resuscitation or medical emergency response events: A systematic review. Am. J. Emerg. Med. 2024;75:98–110. DOI:10.1016/j.ajem.2023.10.020.; Hti Lar Seng N.S., Zeratsion G., Pena Zapata O.Y., Tufail M.U., Jim B. Utility of cardiac troponins in patients with chronic kidney disease. Cardiol. Rev. 2024;32(1):62–70. DOI:10.1097/CRD.0000000000000461.; Li M., Hu L., Li L. Research progress of intra-aortic balloon counterpulsation in the treatment of acute myocardial infarction with cardiogenic shock: A review. Medicine (Baltimore). 2023;102(49):e36500. DOI:10.1097/MD.0000000000036500.; Luo Q., Sun W., Li Z., Sun J., Xiao Y., Zhang J. et al. Biomaterials-mediated targeted therapeutics of myocardial ischemia-reperfusion injury. Biomaterials. 2023;303:122368. DOI:10.1016/j.biomaterials.2023.122368.; Nanavaty D., Sinha R., Kaul D., Sanghvi A., Kumar V., Vachhani B. et al. Impact of COVID-19 on Acute myocardial infarction: A national inpatient sample analysis. Curr. Probl. Cardiol. 2024;49(1_Pt_A):102030. DOI:10.1016/j.cpcardiol.2023.102030.; McCartney P.J., Berry C. Redefining successful primary PCI. Eur. Heart J. Cardiovasc. Imaging. 2019;20(2):133–135. DOI:10.1093/ehjci/jey159.; Oliver G., Schäfer E.A. On the physiological action of extracts of pituitary body and certain other glandular organs: Preliminary communication. J. Physiol. 1895;18(3):277–279. DOI:10.1113/jphysiol.1895.sp000565.; Camerino C. The long way of oxytocin from the uterus to the heart in 70 years from its discovery. Int. J. Mol. Sci. 2023;24(3):2556. DOI:10.3390/ijms24032556.; Du Vigneaud V., Ressler C., Trippet S. The sequence of amino acids in oxytocin, with a proposal for the structure of oxytocin. J. Biol. Chem. 1953;205(2):949–957.; Gutkowska J., Jankowski M., Lambert C., Mukaddam-Daher S., Zingg H.H., McCann S.M. Oxytocin releases atrial natriuretic peptide by combining with oxytocin receptors in the heart. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1997;94(21):11704–11709. DOI:10.1073/pnas.94.21.11704.; Jankowski M., Wang D., Hajjar F., Mukaddam-Daher S., McCann S.M., Gutkowska J. Oxytocin and its receptors are synthesized in the rat vasculature. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2000;97(11):6207–6211. DOI:10.1073/pnas.110137497.; Thibonnier M., Conarty D.M., Preston J.A., Plesnicher C.L., Dweik R.A., Erzurum S.C. Human vascular endothelial cells express oxytocin receptors. Endocrinology. 1999;140(3):1301–1309. DOI:10.1210/endo.140.3.6546.; Jankowski M., Hajjar F., Kawas S.A., Mukaddam-Daher S., Hoffman G., McCann S.M., Gutkowska J. Rat heart: a site of oxytocin production and action. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1998;95(24):14558–14563. DOI:10.1073/pnas.95.24.14558.; Wsol A., Kasarello K., Kuch M., Gala K., Cudnoch-Jedrzejewska A. Increased activity of the intracardiac oxytocinergic system in the development of postinfarction heart failure. Biomed. Res. Int. 2016;2016:3652068. DOI:10.1155/2016/3652068.; Ondrejcakova M., Ravingerova T., Bakos J., Pancza D., Jezova D. Oxytocin exerts protective effects on in vitro myocardial injury induced by ischemia and reperfusion. Can. J. Physiol. Pharmacol. 2009;87(2):137– 142. DOI:10.1139/Y08-108.; Kobayashi H., Yasuda S., Bao N., Iwasa M., Kawamura I., Yamada Y. et al. Postinfarct treatment with oxytocin improves cardiac function and remodeling via activating cell-survival signals and angiogenesis. J. Cardiovasc. Pharmacol. 2009;54(6):510–519. DOI:10.1097/FJC.0b013e3181bfac02.; Houshmand F., Faghihi M., Zahediasl S. Biphasic protective effect of oxytocin on cardiac ischemia/reperfusion injury in anaesthetized rats. Peptides. 2009;30(12):2301–2308. DOI:10.1016/j.peptides.2009.09.010.; Authier S., Tanguay J.F., Geoffroy P., Gauvin D., Bichot S., Ybarra N. et al. Cardiovascular effects of oxytocin infusion in a porcine model of myocardial infarct. J. Cardiovasc. Pharmacol. 2010;55(1):74–82. DOI:10.1097/FJC.0b013e3181c5e7d4.; Alizadeh A.M., Faghihi M., Sadeghipour H.R., Mohammadghasemi F., Imani A., Houshmand F. et al. Oxytocin protects rat heart against ischemia-reperfusion injury via pathway involving mitochondrial ATP-dependent potassium channel. Peptides. 2010;31(7):1341–1245. DOI:10.1016/j.peptides.2010.04.012.; Alizadeh A.M., Faghihi M., Sadeghipour H.R., Mohammadghasemi F., Khori V. Role of endogenous oxytocin in cardiac ischemic preconditioning. Regul. Pept. 2011;167(1):86–90. DOI:10.1016/j.regpep.2010.11.004.; Anvari M.A., Imani A., Faghihi M., Karimian S.M., Moghimian M., Khansari M. The administration of oxytocin during early reperfusion, dose-dependently protects the isolated male rat heart against ischemia/reperfusion injury. Eur. J. Pharmacol. 2012;682(1–3):137–141. DOI:10.1016/j.ejphar.2012.02.029.; Das B., Sarkar C. Is preconditioning by oxytocin administration mediated by iNOS and/or mitochondrial K(ATP) channel activation in the in vivo anesthetized rabbit heart? Life Sci. 2012;90(19–20):763–769. DOI:10.1016/j.lfs.2012.03.030.; Alizadeh A.M., Faghihi M., Khori V., Sohanaki H., Pourkhalili K., Mohammadghasemi F. et al. Oxytocin protects cardiomyocytes from apoptosis induced by ischemia-reperfusion in rat heart: role of mitochondrial ATP-dependent potassium channel and permeability transition pore. Peptides. 2012;36(1):71–77. DOI:10.1016/j.peptides.2012.03.023.; Ondrejcakova M., Barancik M., Bartekova M., Ravingerova T., Jezova D. Prolonged oxytocin treatment in rats affects intracellular signaling and induces myocardial protection against infarction. Gen. Physiol. Biophys. 2012;31(3):261–270. DOI:10.4149/gpb_2012_030.; Faghihi M., Alizadeh A.M., Khori V., Latifpour M., Khodayari S. The role of nitric oxide, reactive oxygen species, and protein kinase C in oxytocin-induced cardioprotection in ischemic rat heart. Peptides. 2012;37(2):314–319. DOI:10.1016/j.peptides.2012.08.001.; Wang M., Zhou R., Xiong W., Wang Z., Wang J., He L. et al. Oxytocin mediated cardioprotection is independent of coronary endothelial function in rats. Peptides. 2020;130:170333. DOI:10.1016/j.peptides.2020.170333.; Imani A., Khansari M., Azizi Y., Rakhshan K., Faghihi M. Stimulation of oxytocin receptor during early reperfusion period protects the heart against ischemia/reperfusion injury: the role of mitochondrial ATP-sensitive potassium channel, nitric oxide, and prostaglandins. Acta Med. Iran. 2015;53(8):491–500.; Gonzalez-Reyes A., Menaouar A., Yip D., Danalache B., Plante E., Noiseux N. et al. Molecular mechanisms underlying oxytocin-induced cardiomyocyte protection from simulated ischemia-reperfusion. Mol. Cell. Endocrinol. 2015;412:170–181. DOI:10.1016/j.mce.2015.04.028.; Polshekan M., Jamialahmadi K., Khori V., Alizadeh A.M., Saeidi M., Ghayour-Mobarhan M. et al. RISK pathway is involved in oxytocin postconditioning in isolated rat heart. Peptides. 2016;86:55–62. DOI:10.1016/j.peptides.2016.10.001.; Polshekan M., Khori V., Alizadeh A.M., Ghayour-Mobarhan M., Saeidi M., Jand Y. et al. The SAFE pathway is involved in the postconditioning mechanism of oxytocin in isolated rat heart. Peptides. 2019;111:142– 151. DOI:10.1016/j.peptides.2018.04.002.; Naryzhnaya N.V., Maslov L.N., Popov S.V., Mukhomezyanov A.V., Ryabov V.V., Kurbatov B.K. et al. Pyroptosis is a drug target for prevention of adverse cardiac remodeling: The crosstalk between pyroptosis, apoptosis, and autophagy. J. Biomed. Res. 2022;36(6):375–389. DOI:10.7555/JBR.36.20220123.; Yao M., Wang Z., Jiang L., Wang L., Yang Y., Wang Q., et al Oxytocin ameliorates high glucose- and ischemia/reperfusion-induced myocardial injury by suppressing pyroptosis via AMPK signaling pathway. Biomed. Pharmacother. 2022;153:113498. DOI:10.1016/j.biopha.2022.113498.; de Miranda D.C., de Oliveira Faria G., Hermidorff M.M., Dos Santos Silva F.C., de Assis L.V.M., Isoldi M.C. Pre- and post-conditioning of the heart: An overview of cardioprotective signaling pathways. Curr. Vasc. Pharmacol. 2021;19(5):499–524. DOI:10.2174/1570161119666201120160619.; Houshmand F., Faghihi M., Zahediasl S. Role of atrial natriuretic peptide in oxytocin induced cardioprotection. Heart Lung Circ. 2015;24(1):86– 93. DOI:10.1016/j.hlc.2014.05.023.; Krylatov A.V., Tsibulnikov S.Y., Mukhomedzyanov A.V., Boshchenko A.A., Goldberg V.E., Jaggi A.S. et al. The role of natriuretic peptides in the regulation of cardiac tolerance to ischemia/reperfusion and postinfarction heart remodeling. J. Cardiovasc. Pharmacol. Ther. 2021;26(2):131–148. DOI:10.1177/1074248420952243.; Xiong W., Yao M., Zhou R., Qu Y., Yang Y., Wang Z. et al. Oxytocin ameliorates ischemia/reperfusion-induced injury by inhibiting mast cell degranulation and inflammation in the rat heart. Biomed. Pharmacother. 2020;128:110358. DOI:10.1016/j.biopha.2020.110358.; Stadler B., Whittaker M.R., Exintaris B., Middendorff R. Oxytocin in the Male Reproductive Tract; The Therapeutic Potential of Oxytocin-Agonists and-Antagonists. Front. Endocrinol. (Lausanne). 2020;11:565731. DOI:10.3389/fendo.2020.565731.; https://www.sibjcem.ru/jour/article/view/2419

Availability: https://www.sibjcem.ru/jour/article/view/2419
https://doi.org/10.29001/2073-8552-2024-39-3-12-18

INFARCT-REDUCING EFFECT OF DELTORPHIN II IN REPERFUSION OF THE HEART. THE ROLE OF NO-SYNTHASE, GUANYLYLCYCLASE, cGMP, MPT PORE ; ИНФАРКТ-ЛИМИТИРУЮЩИЙ ЭФФЕКТ ДЕЛЬТОРФИНА II ПРИ РЕПЕРФУЗИИ СЕРДЦА. РОЛЬ NO-СИНТАЗЫ, ГУАНИЛИЛЦИКЛАЗЫ, цГМФ, МРТ-ПОРЫ

Authors: Sergey V. Popov, Alexandr V. Mukhomedzyanov, Boris K. Kurbatov, Viacheslav N. Azev, Galina Z. Sufianova, Maria S. Khlestkina, Akpay Sh. Sarybaev, Leonid N. Maslov, Сергей Валентинович Попов, Александр Валерьевич Мухомедзянов, Борис Константинович Курбатов, Вячеслав Николаевич Азев, Галина Зиновьевна Суфианова, Мария Сергеевна Хлёсткина, Акпай Шогаибович Сарыбаев, Леонид Николаевич Маслов

Contributors: В работе использовано оборудование центра коллективного пользования «Медицинская геномика» Томского НИМЦ. Работа выполнена при поддержке РНФ (грант № 23-65-10017). Исследования с L-NAME проведены в рамках государственного задания 122020300042-4.

Source: Complex Issues of Cardiovascular Diseases; Том 13, № 4S (2024); 88-96 ; Комплексные проблемы сердечно-сосудистых заболеваний; Том 13, № 4S (2024); 88-96 ; 2587-9537 ; 2306-1278

Subject Terms: КАТФ-каналы, Ischemia/reperfusion, Opioid receptors, MPT pore, KATP channels, Ишемия-реперфузия, Опиоидные рецепторы, МРТ-пора

File Description: application/pdf

Relation: https://www.nii-kpssz.com/jour/article/view/1129/976; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1129/1012; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1129/1013; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1129/1014; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1129/1015; Megaly M., Pershad A., Glogoza M., Elbadawi A., Omer M., Saad M., Mentias A., Elgendy I., Burke M.N., Capodanno D., Brilakis E.S. Use of intravascular imaging in patients with ST-segment elevation acute myocardial infarction. Cardiovasc Revasc Med. 2021; 30: 59-64. doi:10.1016/j.carrev.2020.09.032.; Ya'qoub L., Gad M., Saad A.M., Elgendy I.Y., Mahmoud A.N. National trends of utilization and readmission rates with intravascular ultrasound use for ST-elevation myocardial infarction. Catheter Cardiovasc Interv. 2021; 98(1): 1-9. doi:10.1002/ccd.29524.; Basir M.B., Lemor A., Gorgis S., Taylor A.M., Tehrani B., Truesdell A.G., Bharadwaj A., Kolski B., Patel K., Gelormini J., Todd J., Lasorda D., Smith C., Riley R., Marso S., Federici R., Kapur N.K., O'Neill W.W. National Cardiogenic Shock Initiative Investigators. Vasopressors independently associated with mortality in acute myocardial infarction and cardiogenic shock. Catheter Cardiovasc Interv. 2022; 99(3): 650-657. doi:10.1002/ccd.29895.; Sambola A., Elola F.J., Buera I., Fernández C., Bernal J.L., Ariza A., Brindis R., Bueno H., Rodríguez-Padial L., Marín F., Barrabés J.A., Hsia R., Anguita M. Sex bias in admission to tertiary-care centres for acute myocardial infarction and cardiogenic shock. Eur J Clin Invest. 2021; 51(7): e13526. doi:10.1111/eci.13526.; Liakopoulos O.J., Schlachtenberger G., Wendt D., Choi Y.H., Slottosch I., Welp H., Schiller W., Martens S., Welz A., Neuhäuser M., Jakob H., Wahlers T., Thielmann M. Early clinical outcomes of surgical myocardial revascularization for acute coronary syndromes complicated by cardiogenic shock: A Report From the North-Rhine-Westphalia Surgical Myocardial Infarction Registry. J Am Heart Assoc. 2019; 8(10): e012049. doi:10.1161/JAHA.119.012049.; Braile-Sternieri M.C.V.B., Mustafa E.M., Ferreira V.R.R., Braile Sabino S., Braile Sternieri G., Buffulin de Faria L.A., Sbardellini B.C., Vianna Queiroz C.O., Braile D.M., Zotarelli Filho I.J. Main considerations of cardiogenic shock and its predictors: systematic review. Cardiol Res. 2018; 9(2): 75-82. doi:10.14740/cr715w.; Григорьев Е.В., Баутин А.Е., Киров М.Ю., Шукевич Д.Л., Корнелюк Р.А. Кардиогенный шок при остром коронарном синдроме: современное состояние проблемы диагностики и интенсивной терапии. Вестник интенсивной терапии им. А.И. Салтанова. 2020; 2: 73–85. doi:10.21320/1818-474X-2020-2-73-85.; Maslov L.N., Mukhomedzyanov A.V., Tsibulnikov S.Y., Suleiman M.S., Khaliulin I., Oeltgen P.R. Activation of peripheral δ2-opioid receptor prevents reperfusion heart injury. Eur J Pharmacol. 2021; 907: 174302. doi:10.1016/j.ejphar.2021.174302.; Popov S.V., Mukhomedzyanov A.V., Tsibulnikov S.Y., Khaliuli I., Oeltgen P.R., Prasad N.R., Maslov L.N. Activation of peripheral opioid kappa1 receptor prevents cardiac reperfusion injury. Physiol Res. 2021; 70(4): 523-531. doi:10.33549/physiolres.934646.; Mukhomedzyanov A.V., Zhuk V.V., Maslov L.N., Shipunov A.I., Andrienko O.S., Gadirov R.M. Cardioprotective effect of opioids, derivatives of amide N-methyl-2-(pirrolidin-1-yl)cyclohexyl-1-amine, under conditions of ischemia/reperfusion of the heart. Bull Exp Biol Med. 2021; 170(6): 710-713. doi:10.1007/s10517-021-05138-y.; Маслов Л.Н., Лишманов Ю.Б. Проницаемость гематоэнцефалического барьера для опиоидных пептидов. Экспериментальная и клиническая фармакология. 2017; 80(6): 39-44. doi:10.30906/0869-2092-2017-80-6-39-44.; Heusch G. Molecular basis of cardioprotection: signal transduction in ischemic pre-, post-, and remote conditioning. Circ Res. 2015; 116(4): 674-699. doi:10.1161/CIRCRESAHA.116.3 05348.; Yellon D.M., Downey J.M. Preconditioning the myocardium: from cellular physiology to clinical cardiology. Physiol Rev. 2003; 83(4): 1113-1151. doi:10.1152/physrev.00009.2003.; Schultz J.E.J., Hsu A.K., Gross G.J.J. Ischemic preconditioning and morphine-induced cardioprotection involve the delta (δ)-opioid receptor in the intact rat heart. Mol Cell Cardiol. 1997; 29 (8): 2187–2195 doi:10.1006/jmcc.1997.0454.; Fryer R.M., Hsu A.K., Nagase H., Gross G.J. Opioid-induced cardioprotection against myocardial infarction and arrhythmias: mitochondrial versus sarcolemmal ATP-sensitive potassium channels. J Pharmacol Exp Ther. 2000; 294: 451–457.; Schindler U., Strobel H., Schönafinger K., Linz W., Löhn M., Martorana P.A., Rütten H., Schindler P.W., Busch A.E., Sohn M., Töpfer A., Pistorius A., Jannek C., Mülsch A. Biochemistry and pharmacology of novel anthranilic acid derivatives activating heme-oxidized soluble guanylyl cyclase. Mol Pharmacol 2006; 69: 1260–1268. doi:10.1124/mol.105.018747.; Dorsch M., Behmenburg F., Raible M., Blase D., Grievink H., Hollmann M.W., Heinen A., Huhn R. Morphine-induced preconditioning: involvement of protein kinase A and mitochondrial permeability transition pore. PLoS One. 2016; 11: e0151025. doi:10.1371/ journal.pone.0151025.; Maslov L.N., Lishmanov Y.B. The anti-arrhythmic effect of D-Ala2,Leu5,Arg6-enkephalin and its possible mechanism. Int J Cardiol. 1993; 40(2): 89-94. doi:10.1016/0167-5273(93)90269-m.; Mukhomedzyanov A.V., Popov S.V., Maslov L.N. δ2-Opioid receptors as a target in designing new cardioprotective drugs: the role of protein kinase C, AMPK, and sarcolemmal KATP channels. Bull Exp Biol Med. 2022; 173(1): 33-36. doi:10.1007/s10517-022-05487-2.; Gross G.J., Hsu A., Nithipatikom K., Pfeiffer A.W., Bobrova I., Bissessar E. Acute and chronic cardioprotection by the enkephalin analogue, Eribis peptide 94, is mediated via activation of nitric oxide synthase and adenosine triphosphate-regulated potassium channels. Pharmacology. 2012; 90(1-2): 110-116. doi:10.1159/000340058.; Fan J., Li L., Qu P., Diao Y., Sun Y. κ-Opioid receptor agonist U50488H attenuates postoperative cognitive dysfunction of cardiopulmonary bypass rats through the PI3K/AKT/Nrf2/HO 1 pathway. Mol Med Rep. 2021; 23(4): 293. doi:10.3892/mmr.2021.11933.; Hu Q., Wang Q., Han C., Yang Y. Sufentanil attenuates inflammation and oxidative stress in sepsis-induced acute lung injury by downregulating KNG1 expression. Mol Med Rep. 2020; 22(5): 4298-4306. doi:10.3892/mmr.2020.11526.; Masini E., Vannacci A., Marzocca C., Pierpaoli S., Giannini L., Fantappié O., Mazzanti R., Mannaioni P. F. Heme oxygenase-1 and the ischemia-reperfusion injury in the rat heart. Exp Biol Med. 2003; 228(5): 546-549. doi:10.1177/15353702-0322805-25.; Han J., Kim N., Joo H., Kim E., Earm Y.E. ATP-sensitive K+ channel activation by nitric oxide and protein kinase G in rabbit ventricular myocytes. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 2002; 283(4): H1545-H1554. doi:10.1152/ajpheart.01052.2001.

Availability: https://www.nii-kpssz.com/jour/article/view/1129
https://doi.org/10.17802/2306-1278-2024-13-4S-88-96

Миокардиальный станнинг в медицине неотложных и критических состояний, ассоциированных с системной гипоксией

Authors: Bitchuk, M.D.

Source: EMERGENCY MEDICINE; № 7.102 (2019); 42-51
МЕДИЦИНА НЕОТЛОЖНЫХ СОСТОЯНИЙ; № 7.102 (2019); 42-51
МЕДИЦИНА НЕВІДКЛАДНИХ СТАНІВ; № 7.102 (2019); 42-51

Subject Terms: миокардиальный станнинг, гемодинамика, гипоксия, ишемия/реперфузия, свободнорадикальные повреждения, кальциевая перегрузка, 03 medical and health sciences, 0302 clinical medicine, myocardial stunning, hemodynamics, hypoxia, ischemia/reperfusion, free radical damage, calcium overload, міокардіальний станінг, гемодинаміка, гіпоксія, ішемія/реперфузія, вільнорадикальні ушкодження, кальцієве перевантаження, 3. Good health

File Description: application/pdf

Access URL: http://emergency.zaslavsky.com.ua/article/view/180357
http://emergency.zaslavsky.com.ua/article/download/180357/181259
http://emergency.zaslavsky.com.ua/article/view/180357

ВЛИЯНИЕ КОРВИТИНА НА КИСЛОРОДТРАНСПОРТНУЮ ФУНКЦИЮ И ГАЗОТРАНСМИТТЕРЫ КРОВИ ПРИ ИШЕМИИ- РЕПЕРФУЗИИ НИЖНЕЙ КОНЕЧНОСТИ

Authors: V. N. Zasimovich, V. V. Zinchuk, N. N. Ioskevich

Source: Žurnal Grodnenskogo Gosudarstvennogo Medicinskogo Universiteta, Vol 19, Iss 2, Pp 194-201 (2021)

Subject Terms: ишемия-реперфузия, кислородтранспортная функция, эндатерэктомия, газотрасмиттеры, корвитин, Medicine

File Description: electronic resource

Relation: http://journal-grsmu.by/index.php/ojs/article/view/2589; https://doaj.org/toc/2221-8785; https://doaj.org/toc/2413-0109

Access URL: https://doaj.org/article/59310b80fbef49898c0697f628613de5

Antitumor and immunomodulatory effects of oxygen therapy ; Противоопухолевые и иммуномодулирующие эффекты оксигенотерапии

Authors: V. I. Seledtsov, A. B. Dorzhieva, G. V. Seledtsova, В. И. Селедцов, А. Б. Доржиева, Г. В. Селедцова

Source: Medical Immunology (Russia); Том 25, № 6 (2023); 1319-1328 ; Медицинская иммунология; Том 25, № 6 (2023); 1319-1328 ; 2313-741X ; 1563-0625

Subject Terms: опухолевое микроокружение, hypoxia, active oxygen radicals, oxidative stress, chemo-radiation therapy, immunotherapy, hyperbaric oxygenation, ischemia reperfusion, reactive oxygen species, tumor microenvironment, гипоксия, активные формы кислорода, окислительный стресс, химиолучевая терапия, иммунотерапия, гипербарическая оксигенация, ишемия-реперфузия

File Description: application/pdf

Relation: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/2562/1873; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2562/9852; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2562/9853; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2562/9854; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2562/9855; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2562/9856; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2562/9857; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2562/9864; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2562/9865; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2562/9866; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2562/9886; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2562/9887; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2562/9888; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2562/9892; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2562/10970; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2562/10971; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2562/13025; Abdelhakim H., Shune L., Bhatti S., Cantilena A.R., Baran A., Lin T.L., Ganguly S., Singh A.K., Abhyankar S., Divine C., Lipe B., McGuirk J., Allin D., Aljitawi OS. Results of the first clinical study in нumans that combines hyperbaric oxygen pretreatment with autologous peripheral blood stem cell transplantation. Biol. Blood Marrow Transplant., 2019, Vol. 25, no. 9, pp. 1713-1719.; Ahmed Amar S.A., Eryilmaz R., Demir H., Aykan S., Demir C. Determination of oxidative stress levels and some antioxidant enzyme activities in prostate cancer. Aging Male, 2019, Vol. 22, no. 3, pp. 198-206.; Abimannan T., Peroumal D., Parida J.R., Barik P.K., Padhan P., Devadas S. Oxidative stress modulates the cytokine response of differentiated Th17 and Th1 cells. Free Radic. Biol. Med., 2016, Vol. 99, pp. 352-363.; Ba M.C., Long H., Wang S., Wu Y.B., Zhang B.H., Yan Z.F., Yu F.H., Cui S.Z. Hyperthermia enhances radiosensitivity of colorectal cancer cells through ROS inducing autophagic cell death. J. Cell. Biochem., 2018, Vol. 119, no. 4, pp. 3763-3774.; Bocci V.A. Scientific and medical aspects of ozone therapy. State of the art. Arch. Med. Res., 2006, Vol. 37, no. 4, pp. 425-435.; Brizel D.M., Lin S., Johnson J.L., Brooks J., Dewhirst M.W., Piantadosi C.A. The mechanisms by which hyperbaric oxygen and carbogen improve tumour oxygenation. Br. J. Cancer, 1995, Vol. 72, no. 5, pp. 1120-1124.; Bromberg P.A. Mechanisms of the acute effects of inhaled ozone in humans. Biochim. Biophys. Acta, 2016, Vol. 1860, no. 12, pp. 2771-2781.; Chamoto K., Chowdhury P.S., Kumar A., Sonomura K., Matsuda F., Fagarasan S., Honjo T. Mitochondrial activation chemicals synergize with surface receptor PD-1 blockade for T cell-dependent antitumor activity. Proc. Natl Acad. Sci. USA, 2017, Vol. 114, no. 5, pp. E761-E770.; Cheng Y., Weng S., Yu L., Zhu N., Yang M., Yuan Y. The role of hyperthermia in the multidisciplinary treatment of malignant tumors. Integr. Cancer Ther., 2019, Vol. 18, 1534735419876345. doi:10.1177/1534735419876345.; Clavo B., Rodríguez-Esparragón F., Rodríguez-Abreu D., Martínez-Sánchez G., Llontop P., Aguiar- Bujanda D., Fernández-Pérez L., Santana-Rodríguez N. Modulation of oxidative stress by ozone therapy in the prevention and treatment of chemotherapy-induced toxicity: review and prospects. Antioxidants (Basel), 2019, Vol. 8, no. 12, 588. doi:10.3390/antiox8120588.; Clavo B., Santana-Rodríguez N., Llontop P., Gutiérrez D., Suárez G., López L., Rovira G., Martínez- Sánchez G., González E., Jorge I.J., Perera C., Blanco J., Rodríguez-Esparragón F. Ozone therapy as adjuvant for cancer treatment: is further research warranted? Evid. Based Complement Alternat. Med., 2018, Vol. 2018, 7931849. doi:10.1155/2018/7931849.; Clavo B., Pérez J.L., López L., Suárez G., Lloret M., Rodríguez V., Macías D., Santana M., Hernández M.A., Martín-Oliva R., Robaina F. Ozone therapy for tumor oxygenation: a pilot study. Evid Based Complement Alternat Med., 2004, Vol. 1, no. 1, pp. 93-98.; Daniel S.K., Sullivan K.M., Labadie K.P., Pillarisetty V.G. Hypoxia as a barrier to immunotherapy in pancreatic adenocarcinoma. Clin. Transl. Med., 2019, Vol. 8, no. 1, 10. doi:10.1186/s40169-019-0226-9.; Frossi B., de Carli M., Piemonte M., Pucillo C. Oxidative microenvironment exerts an opposite regulatory effect on cytokine production by Th1 and Th2 cells. Mol. Immunol., 2008, Vol. 45, no. 1, pp. 58-64. doi:10.1016/j.molimm.2007.05.008.; Galiè M., Covi V., Tabaracci G., Malatesta M.The Role of Nrf2 in the antioxidant cellular response to medical ozone exposure. Int. J. Mol. Sci., 2019, Vol. 20, no. 16, 4009. doi:10.3390/ijms20164009.; Gill A.L., Bell C.N. Hyperbaric oxygen: its uses, mechanisms of action and outcomes. QJM, 2004, Vol. 97, no. 7, pp. 385-395.; Gore A., Muralidhar M., Espey M.G., Degenhardt K., Mantell L.L. Hyperoxia sensing: from molecular mechanisms to significance in disease. J. Immunotoxicol., 2010, Vol. 7, no. 4, pp. 239-254.; Gray L.H., Conger A.D., Ebert M., Hornsey S., Scott O.C. The concentration of oxygen dissolved in tissues at the time of irradiation as a factor in radiotherapy. Br. J. Radiol. Dec., 1953, Vol. 26, no. 312, pp. 638-648.; Hegde A., Jayaprakash P., Couillault C.A., Piha-Paul S., Karp D., Rodon J., Pant S., Fu S., Dumbrava E.E., Yap T.A., Subbiah V., Bhosale P., Coarfa C., Higgins J.P., Williams E.T., Wilson T.F., Lim J., Meric-Bernstam F., Sumner E., Zain H., Nguyen D., Nguyen L.M., Rajapakshe K., Curran M.A., Hong D.S. A phase I dose-Escalation study to evaluate the safety and tolerability of evofosfamide in combination with ipilimumab in advanced solid malignancies. Clin. Cancer Res., 2021, Vol. 27, no. 11, pp. 3050-3060.; Horsman M.R., Vaupel P.Pathophysiological basis for the formation of the tumor microenvironment. Front. Oncol., 2016, Vol. 6, 66. doi:10.3389/fonc.2016.00066.; Hou C.H., Lin F.L., Hou S.M., Liu J.F. Hyperthermia induces apoptosis through endoplasmic reticulum and reactive oxygen species in human osteosarcoma cells. Int. J. Mol. Sci., 2014, Vol. 15, no. 10, pp. 17380-17395.; Inal M., Dokumacioglu A., Özcelik E., Ucar O. The effects of ozone therapy and coenzyme Q10 combination on oxidative stress markers in healthy subjects. Ir. J. Med. Sci., 2011, Vol. 180, no. 3, pp. 703-707.; Iyikesici M.S. Survival outcomes of metabolically supported chemotherapy combined with ketogenic diet, hyperthermia, and hyperbaric oxygen therapy in advanced gastric cancer. Niger J. Clin. Pract., 2020, Vol. 23, no. 5, pp. 734-740.; Kalafati L., Kourtzelis I., Schulte-Schrepping J., Li X., Hatzioannou A., Grinenko T., Hagag E., Sinha A., Has C., Dietz S., de Jesus Domingues A.M., Nati M., Sormendi S., Neuwirth A., Chatzigeorgiou A., Ziogas A., Lesche M., Dahl A., Henry I., Subramanian P., Wielockx B., Murray P., Mirtschink P., Chung K.J., Schultze J.L., Netea M.G., Hajishengallis G., Verginis P., Mitroulis I., Chavakis T. Innate immune training of granulopoiesis promotes anti-tumor activity. Cell, 2020, Vol. 183, no. 3, pp. 771-785.e12.; Korenaga D., Takesue F., Kido K., Yasuda M., Inutsuka S., Honda M., Nagahama S. Impaired antioxidant defense system of colonic tissue and cancer development in dextran sulfate sodium-induced colitis in mice. J. Surg. Res., 2002, Vol. 102, no. 2, pp. 144-149.; Kotsafti A., Scarpa M., Castagliuolo I., Scarpa M. Reactive oxygen species and antitumor immunity-from surveillance to evasion. Cancers (Basel), 2020, Vol. 12, no. 7, 1748. doi:10.3390/cancers12071748.; Kuroda K., Azuma K., Mori T., Kawamoto K., Murahata Y., Tsuka T., Osaki T., Ito N., Imagawa T., Itoh F., Okamoto Y. The safety and anti-tumor effects of ozonated water in vivo. Int. J. Mol. Sci., 2015, Vol. 16, no. 10, pp. 25108-25120.; Luongo M., Brigida A.L., Mascolo L., Gaudino G. Possible therapeutic effects of ozone мixture on hypoxia in tumor development. Anticancer Res., 2017, Vol. 37, no. 2, pp. 425-435.; Madej P., Plewka A., Madej J.A., Nowak M., Plewka D., Franik G., Golka D. Ozonotherapy in an induced septic shock. I. Effect of ozonotherapy on rat organs in evaluation of free radical reactions and selected enzymatic systems. Inflammation, 2007, Vol. 30, no. 1-2, pp. 52-58.; Moen I., Stuhr L.E. Hyperbaric oxygen therapy and cancer – a review. Target. Oncol., 2012, Vol. 7, no. 4, pp. 233-242.; Ohguri T., Kunugita N., Yahara K., Imada H., Uemura H., Shinya N., Youjirou G., Takashi C., Okazaki R., Ootsuyama A., Korogi Y. Efficacy of hyperbaric oxygen therapy combined with mild hyperthermia for improving the anti-tumour effects of carboplatin. Int. J. Hyperthermia, 2015, Vol. 31, no. 6, pp. 643-648.; Orakdogen M., Uslu S., Emon S.T., Somay H., Meric Z.C., Hakan T. The effect of ozone therapy on experimental vasospasm in the rat femoral artery. Turk. Neurosurg., 2016, Vol. 26, no. 6, pp. 860-865.; Otto A.M. Warburg effect(s)-a biographical sketch of Otto Warburg and his impacts on tumor metabolism. Cancer Metab., 2016, Vol. 4, 5. doi:10.1186/s40170-016-0145-9.; Pan C., Liu H., Robins E., Song W., Liu D., Li Z., Zheng L. Next-generation immuno-oncology agents: current momentum shifts in cancer immunotherapy. J. Hematol. Oncol., 2020, Vol. 13, no. 1, 29. doi:10.1186/s13045-020-00862-w.; Payen V.L., Brisson L., Dewhirst M.W., Sonveaux P. Common responses of tumors and wounds to hypoxia. Cancer J., 2015, Vol. 21, no. 2, pp. 75-87.; Pham-Huy L.A., He H., Pham-Huy C. Free radicals, antioxidants in disease and health. Int. J. Biomed. Sci., 2008, Vol. 4, no. 2, pp. 89-96.; Scharping N.E., Menk A.V., Whetstone R.D., Zeng X., Delgoffe G.M. Efficacy of PD-1 blockade is potentiated by metformin-induced reduction of tumor hypoxia. Cancer Immunol. Res., 2017, Vol. 5, no. 1, pp. 9-16.; Scheffel M.J., Scurti G., Simms P., Garrett-Mayer E., Mehrotra S., Nishimura M.I., Voelkel-Johnson C. Efficacy of adoptive T-cell therapy is improved by treatment with the antioxidant N-acetyl cysteine, which limits activation-induced T-cell death. Cancer Res., 2016, Vol. 76, no. 20, pp. 6006-6016.; Shen Z.Y., Shen W.Y., Chen M.H., Shen J., Zeng Y. Reactive oxygen species and antioxidants in apoptosis of esophageal cancer cells induced by As2O3. Int. J. Mol. Med., 2003, Vol. 11, no. 4, pp. 479-484.; Seledtsov V.I., von Delwig A. Clinically feasible and prospective immunotherapeutic interventions in multidirectional comprehensive treatment of cancer. Expert Opin. Biol. Ther., 2020, Vol. 21, no. 3, pp. 323-342.; Seledtsov V.I., Seledtsova G.V. A balance between tissue-destructive and tissue-protective immunities: a role of toll-like receptors in regulation of adaptive immunity. Immunobiology, 2012, Vol. 217, no. 4, pp. 430-435.; Skitzki J.J., Repasky E.A. Evans SS. Hyperthermia as an immunotherapy strategy for cancer. Curr. Opin. Investig. Drugs, 2009, Vol. 10, no. 6, pp. 550-558; Skrzycki M., Czeczot H., Chrzanowska A., Otto-Ślusarczyk D. The level of superoxide dismutase expression in primary and metastatic colorectal cancer cells in hypoxia and tissue normoxia. Pol. Merkur. Lekarski, 2015, Vol. 39, no. 233, pp. 281-286. (In Polish); Sosa V., Moliné T., Somoza R., Paciucci R., Kondoh H., LLeonart M.E. Oxidative stress and cancer: an overview. Ageing Res. Rev., 2013, Vol. 12, no. 1, pp. 376-390.; Smith N.L., Wilson A.L., Gandhi J., Vatsia S., Khan S.A. Ozone therapy: an overview of pharmacodynamics, current research, and clinical utility. Med. Gas Res., 2017, Vol. 7, no. 3, pp. 212-219.; Tchouagué M., Grondin M., Glory A., Averill-Bates D. Heat shock induces the cellular antioxidant defenses peroxiredoxin, glutathione and glucose 6-phosphate dehydrogenase through Nrf2. Chem. Biol. Interact., 2019, Vol. 310, 108717. doi:10.1016/j.cbi.2019.06.030.; Teppo H.R., Soini Y., Karihtala P. Reactive oxygen species-mediated mechanisms of action of targeted cancer therapy. Oxid. Med. Cell. Longev., 2017, Vol. 2017, 1485283. doi:10.1155/2017/1485283.; Terasaki A., Kurokawa H., Ito H., Komatsu Y., Matano D., Terasaki M., Bando H., Hara H., Matsui H. Elevated production of mitochondrial reactive oxygen species via hyperthermia enhanced cytotoxic effect of doxorubicin in human breast cancer cell lines MDA-MB-453 and MCF-7. Int. J. Mol. Sci., 2020, Vol. 21, no. 24, E9522. doi:10.3390/ijms21249522.; Vaupel P., Mayer A., Höckel M. Tumor hypoxia and malignant progression. Methods Enzymol., 2004, Vol. 381, pp. 335-354.; Weinberg S.E., Sena L.A., Chandel N.S. Mitochondria in the regulation of innate and adaptive immunity. Immunity, 2015, Vol. 42, no. 3, pp. 406-417.; Wu D., Yotnda P. Production and detection of reactive oxygen species (ROS) in cancers. J. Vis. Exp., 2011, no. 57, 3357. doi:10.3791/3357.; Yan J., Kloecker G., Fleming C., Bousamra M. 2nd, Hansen R., Hu X., Ding C., Cai Y., Xiang D., Donninger H., Eaton J.W., Clark G.J. Human polymorphonuclear neutrophils specifically recognize and kill cancerous cells. Oncoimmunology, 2014, Vol. 3, no. 7, e950163. doi:10.4161/15384101.2014.950163.; Yigitbasi O.G., Guney E., Haghighi N., Dogan P., Saraymen R., Balkanli S.Oxidant and antioxidant status in larynx squamous cell carcinomas. J. Exp. Clin. Cancer Res., 2000, Vol. 19, no. 4, pp. 447-451.; Zhang L., Ke J., Min S., Wu N., Liu F., Qu Z., Li W., Wang H., Qian Z., Wang X. Hyperbaric oxygen therapy represses the Warburg effect and epithelial-mesenchymal transition in hypoxic NSCLC cells via the HIF-1α/PFKP axis. Front. Oncol., 2021, Vol. 11, 691762. doi:10.3389/fonc.2021.691762.; Zuo L., Prather E.R., Stetskiv M., Garrison D.E., Meade J.R., Peace T.I., Zhou T.Inflammaging and oxidative stress in human diseases: from molecular mechanisms to novel treatments. Int. J. Mol. Sci., 2019, Vol. 20, no. 18, 4472. doi:10.3390/ijms20184472.; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/2562

Availability: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/2562
https://doi.org/10.15789/1563-0625-AAI-2562

SIGNIFICANCE OF OPIOID, CANNABINOID, BRADYKININ RECEPTORS AND КАТP-CHANNELS IN THE CARDIOPROTECTIVE EFFECT OF ADAPTATION TO COLD ; ЗНАЧЕНИЕ ОПИОИДНЫХ, КАННАБИНОИДНЫХ, БРАДИКИНИНОВЫХ РЕЦЕПТОРОВ И КАТФ-КАНАЛОВ В КАРДИОПРОТЕКТОРНОМ ЭФФЕКТЕ АДАПТАЦИИ К ХОЛОДУ

Authors: Nikita S. Voronkov, Leonid N. Maslov, Yuri V. Bushov, Никита Сергеевич Воронков, Леонид Николаевич Маслов, Юрий Валентинович Бушов

Contributors: Работа выполнена при поддержке РФФИ (грант № 20-315-90054). Эксперименты с налтрексоном проведены в рамках государственного задания 122020300042-4. В работе использовано оборудование Центра коллективного пользования «Медицинская геномика» Томского НИМЦ.

Source: Complex Issues of Cardiovascular Diseases; Том 12, № 3 (2023); 50-56 ; Комплексные проблемы сердечно-сосудистых заболеваний; Том 12, № 3 (2023); 50-56 ; 2587-9537 ; 2306-1278

Subject Terms: КАТФ-каналы, Ischemia/reperfusion, Cold adaptation, Opioid receptors, Cannabinoid receptors, Bradykinin receptors, КАТP-channels, Ишемия/реперфузия, Адаптация к холоду, Опиоидные рецепторы, Каннабиноидные рецепторы, Брадикининовые рецепторы

File Description: application/pdf

Relation: https://www.nii-kpssz.com/jour/article/view/1148/810; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1148/1084; Oganov R.G. Maslennikova GYa. Noncommunicable diseases in Russia, the role of risk factors. In: Glazunov IS, Stachenko S, editors. Health promotion and prevention of noncommunicable disease in Russia and Canada. Experience and recommendations. Public Health Agency of Canada; 2006. p.3–18.; Ya'qoub L., Gad M., Saad A.M., Elgendy I.Y., Mahmoud A.N. National trends of utilization and readmission rates with intravascular ultrasound use for ST-elevation myocardial infarction. Catheter Cardiovasc Interv. 2021; 98(1): 1-9. doi:10.1002/ccd.29524.; Megaly M., Pershad A., Glogoza M., Elbadawi A., Omer M., Saad M., Mentias A., Elgendy I., Burke M.N., Capodanno D., Brilakis E.S. Use of intravascular imaging in patients with ST-segment elevation acute myocardial infarction. Cardiovasc Revasc Med. 2021; 30: 59-64. doi:10.1016/j.carrev.2020.09.032.; Sambola A., Elola F.J., Buera I., Fernandez C., Bernal J.L., Ariza A., Brindis R., Bueno H., Rodriguez-Padial L., Marin F., Barrabis J.A., Hsia R., Anguita M. Sex bias in admission to tertiary-care centres for acute myocardial infarction and cardiogenic shock. Eur J Clin Invest. 2021; 51(7): e13526. doi:10.1111/eci.13526.; Liakopoulos O.J., Schlachtenberger G., Wendt D., Choi Y.H., Slottosch I., Welp H., Schiller W., Martens S., Welz A., Neuhauser M., Jakob H., Wahlers T., Thielmann M. Early clinical outcomes of surgical myocardial revascularization for acute coronary syndromes complicated by cardiogenic shock: A Report From the North-Rhine-Westphalia Surgical Myocardial Infarction Registry. J Am Heart Assoc. 2019; 8(10): e012049. doi:10.1161/JAHA.119.012049.; Маслов Л.Н., Барбараш О.Л. Фармакологические подходы к ограничению размера инфаркта миокарда у пациентов с острым инфарктом миокарда. Экспериментальная и клиническая фармакология. 2018; 81(3): 75-82.; Цибульников С.Ю., Маслов Л.Н., Иванов В.В., Нарыжная Н.В., Цибульникова М.Р. Инфаркт-лимитирующий эффект адаптации к непрерывному холодовому воздействию. Рос физиол ж им И.М. Сеченова. 2016; 102(11): 1363-1368.; de Miranda D.C., de Oliveira Faria G., Hermidorff M.M., Dos Santos Silva F.C., de Assis L.V.M., Isoldi M.C. Pre- and post-conditioning of the heart: an overview of cardioprotective signaling pathways. Curr Vasc Pharmacol. 2021; 19(5): 499-524. doi:10.2174/1570161119666201120160619.; Maslov L.N., Naryzhnaia N.V., Tsibulnikov S.Y., Kolar F., Zhang Y., Wang H., Gusakova A.M., Lishmanov Y.B. Role of endogenous opioid peptides in the infarct size-limiting effect of adaptation to chronic continuous hypoxia. Life Sci. 2013; 93(9-11): 373-379. doi:10.1016/j.lfs.2013.07.018.; Maslov L.N., Khaliulin I., Oeltgen P.R., Naryzhnaya N.V., Pei J.M., Brown S.A., Lishmanov Y.B., Downey J.M. Prospects for creation of cardioprotective and antiarrhythmic drugs based on opioid receptor agonists. Med Res Rev. - 2016a; 36(5): 871-923. doi:10.1002/med.21395.; Maslov L.N., Khaliulin I., Zhang Y., Krylatov A.V., Naryzhnaya N.V, Mechoulam R., De Petrocellis L., Downey J.M. Prospects for creation of cardioprotective drugs based on cannabinoid receptor agonists. J Cardiovasc Pharmacol Ther. 2016; 21(3): 262-272. doi:10.1177/1074248415612593.; Atgie C., D'Allaire F., Bukowiecki L.J. Role of beta1- and beta3-adrenoceptors in the regulation of lipolysis and thermogenesis in rat brown adipocytes. Am J Physiol. 1997; 273(41): 1136-1142. doi:10.1152/ajpcell.1997.273.4.C1136.; Asimakis G.K., Inners-McBride K., Conti V.R., Yang C.J. Transient beta adrenergic stimulation can precondition the rat heart against postischaemic contractile dysfunction. Cardiovasc Res 1994; 28(11): 1726-1734. doi:10.1093/cvr/28.11.1726.; Cohen M.V., Downey J.M. Signalling pathways and mechanisms of protection in pre- and postconditioning: historical perspective and lessons for the future. Br J Pharmacol. 2015; 172(8): 1913-1932. doi:10.1111/bph.12903.; Heusch G. Molecular basis of cardioprotection: signal transduction in ischemic pre-, post-, and remote conditioning. Circ Res. 2015; 116(4): 674–699. doi:10.1161/CIRCRESAHA.116.305348.

Availability: https://www.nii-kpssz.com/jour/article/view/1148
https://doi.org/10.17802/2306-1278-2023-12-3-50-56

MORPHOLOGICAL CHANGES OF THE LIMBIC-HYPOTHALAMIC BRAIN STRUCTURES WITH EXPERIMENTAL CIRCULATORY DISORDERS IN THE BASIN OF THE CAROTID ARTERIES WITH UNDERLYING DIABETES MELLITUS

Source: Clinical anatomy and operative surgery; Vol. 11 No. 3 (2012); 66-69
Клиническая анатомия и оперативная хирургия; Том 11 № 3 (2012); 66-69
Клінічна анатомія та оперативна хірургія; Том 11 № 3 (2012); 66-69

Subject Terms: цукровий діабет, каротидна ішемія-реперфузія, проміжний мозок, морфологія, сахарный диабет, каротидная ишемия-реперфузия, промежуточный мозг, морфология, diabetes mellitus, carotid ischemia- reperfusion, diencephalon, morphology

File Description: application/pdf

Access URL: http://kaos.bsmu.edu.ua/article/view/257396

HISTOLOGICAL CHANGES IN THE KIDNEYS IN EXPERIMENTAL DIABETES MELLITUS COMPLICATED BY INCOMPLETE GLOBAL ISCHEMIA-REPERFUSION OF THE BRAIN

Authors: Гавалешко, B.

Source: Clinical anatomy and operative surgery; Vol. 11 No. 3 (2012); 62-65
Клиническая анатомия и оперативная хирургия; Том 11 № 3 (2012); 62-65
Клінічна анатомія та оперативна хірургія; Том 11 № 3 (2012); 62-65

Subject Terms: цукровий діабет, ішемія-реперфузія головного мозку, нирки, морфологія, diabetes mellitus, brain ischemia- reperfusion, kidneys, morphology, сахарный диабет, ишемия-реперфузия головного мозга, почки, морфология, 3. Good health

File Description: application/pdf

Access URL: http://kaos.bsmu.edu.ua/article/view/257395

Use of polyclonal antibodies in brain-dead donors in kidney transplantation ; Применение поликлональных антител у доноров со смертью мозга при пересадке почек

Authors: D. O. Kuzmin, V. A. Manukovsky, S. F. Bagnenko, O. N. Reznik, A. N. Ananiev, O. A. Vorobyeva, S. L. Vorobyev, D. V. Gogolev, V. S. Daineko, A. A. Kutenkov, N. A. Chichagova, I. V. Uliankina, Д. О. Кузьмин, В. А. Мануковский, С. Ф. Багненко, О. Н. Резник, А. Н. Ананьев, О. А. Воробьёва, С. Л. Воробьёв, Д. В. Гоголев, В. С. Дайнеко, А. А. Кутенков, Н. А. Чичагова, И. В. Ульянкина

Source: Russian Journal of Transplantology and Artificial Organs; Том 24, № 4 (2022); 124-134 ; Вестник трансплантологии и искусственных органов; Том 24, № 4 (2022); 124-134 ; 1995-1191

Subject Terms: поликлональные антитела, ischemia-reperfusion injury, polyclonal antibodies, ишемия-реперфузия

File Description: application/pdf

Relation: https://journal.transpl.ru/vtio/article/view/1544/1395; https://journal.transpl.ru/vtio/article/view/1544/1430; https://journal.transpl.ru/vtio/article/downloadSuppFile/1544/1160; https://journal.transpl.ru/vtio/article/downloadSuppFile/1544/1161; https://journal.transpl.ru/vtio/article/downloadSuppFile/1544/1162; https://journal.transpl.ru/vtio/article/downloadSuppFile/1544/1163; https://journal.transpl.ru/vtio/article/downloadSuppFile/1544/1164; https://journal.transpl.ru/vtio/article/downloadSuppFile/1544/1165; https://journal.transpl.ru/vtio/article/downloadSuppFile/1544/1166; https://journal.transpl.ru/vtio/article/downloadSuppFile/1544/1167; https://journal.transpl.ru/vtio/article/downloadSuppFile/1544/1168; https://journal.transpl.ru/vtio/article/downloadSuppFile/1544/1169; https://journal.transpl.ru/vtio/article/downloadSuppFile/1544/1170; https://journal.transpl.ru/vtio/article/downloadSuppFile/1544/1171; https://journal.transpl.ru/vtio/article/downloadSuppFile/1544/1172; https://journal.transpl.ru/vtio/article/downloadSuppFile/1544/1173; https://journal.transpl.ru/vtio/article/downloadSuppFile/1544/1174; https://journal.transpl.ru/vtio/article/downloadSuppFile/1544/1175; https://journal.transpl.ru/vtio/article/downloadSuppFile/1544/1232; https://journal.transpl.ru/vtio/article/downloadSuppFile/1544/1233; https://journal.transpl.ru/vtio/article/downloadSuppFile/1544/1234; McFarlane PA. Should patients remain on intensive hemodialysis rather than choosing to receive a kidney transplant? Seminars in Dialysis. 2010; 23: 516–519. doi:10.1111/j.1525-139X.2010.00740.x. PMID: 21039877.; Bahadur MM, Binnani P, Gupta R, Pattewar S. Marginal donor kidney in a marginal recipient: Five year follow-up. Indian J Nephrol. 2010; 20 (2): 100–102. doi:10.4103/0971-4065.65306. PMID: 20835327.; Barba J, Zudaire J, Robles JE, Rosell D, Berian JM, Pascual I. Complications of kidney transplantation with grafts from expanded criteria donors. World J Urol. 2013; 31: 893–899. doi:10.1007/s00345-012-0831-3. PMID: 22290479.; Ojo AO, Wolfe RA, Held PJ, Port FK, Schmouder RL. Delayed graft function: risk factors and implications for renal allograft survival. Transplantation. 1997; 63: 968–974. doi:10.1097/00007890-199704150-00011. PMID: 9112349.; Perico N, Gaspari F, Remuzzi G. Assessing Renal Function by GFR Prediction Equations in Kidney Transplantation. American Journal of Transplantation. 2005; 5: 1175–1176. doi:10.1111/j.1600-6143.2005.00939.x. PMID: 15888019.; De Vries DK, Lindeman JHN, Ringers J, Reinders MEJ, Rabelink TJ, Schaapherder AFM. Donor brain death predisposes human kidney grafts to a proinflammatory reaction after transplantation. American Journal of Transplantation. 2011; 11 (5): 1064–1070. doi:10.1111/j.1600-6143.2011.03466.x. PMID: 21449948.; Yarlagadda SG, Coca SG, Formica Jr RN, Poggio ED, Parikh CR. Association between delayed graft function and allograft and patient survival: a systematic review and meta-analysis. Nephrology Dialysis Transplantation. 2009; 24 (3): 1039–1047. doi:10.1093/ndt/gfn667. PMID: 19103734.; Hashemi P et al. NETosis in ischemic/reperfusion injuries: An organ-based review. Life Sci. 2022; 290: 120158. doi:10.1016/j.lfs.2021.120158. PMID: 34822798.; Cahilog Z et al. The Role of Neutrophil NETosis in Organ Injury: Novel Inflammatory Cell Death Mechanisms. Inflammation. 2020; 43 (6): 2021–2032. doi:10.1007/s10753-020-01294-x. PMID: 32830308.; Nakamura K, Kageyama S, Kupiec-Weglinski JW. Innate immunity in ischemia-reperfusion injury and graft rejection. Curr Opin Organ Transplant. 2019; 24 (6): 687–693. doi:10.1097/MOT.0000000000000709. PMID: 31592839.; Иванов КП, Левкович ЮИ. Изменение микроциркуляции при лейкоцитозе. Физиол журн. 1992; 76: 321–326.; Schofield ZV, Woodruff TM, Halai R, Wu MC, Cooper MA. Neutrophils – a key component of ischemia-reperfusion injury. Shock. 2013; 40 (6): 463–70. doi:10.1097/SHK.0000000000000044. PMID: 24088997.; Liew PX, Kubes P. The neutrophil’s role during health and disease. Physiological reviews. 2019: 99 (2): 1223–1248. doi:10.1152/physrev.00012.2018.; Carbone F, Bonaventura A, Montecucco F. NeutrophilRelated Oxidants Drive Heart and Brain Remodeling After Ischemia/Reperfusion Injury. Front Physiol. 2020; 10: 1587. doi:10.3389/fphys.2019.01587. PMID: 32116732.; Tejchman K et al. The Role of Endothelins, IL-18, and NGAL in Kidney Hypothermic Machine Perfusion. Biomedicines. 2021; 9 (4): 417. doi:10.3390/biomedicines9040417. PMID: 33924469.; Qi H, Yang S, Zhang L. Neutrophil Extracellular Traps and Endothelial Dysfunction in Atherosclerosis and Thrombosis. Front Immunol. 2017; 8: 928. doi:10.3389/fimmu.2017.00928. PMID: 28824648.; Mittal M et al. Neutrophil Activation of Endothelial CellExpressed TRPM2 Mediates Transendothelial Neutrophil Migration and Vascular Injury. Circ Res. 2017; 121 (9): 1081–1091. doi:10.1161/circresaha.117.311747. PMID: 28790198.; Urisono Y et al. Von Willebrand Factor Aggravates Hepatic Ischemia-Reperfusion Injury by Promoting Neutrophil Recruitment in Mice. Thromb Haemost. 2018; 118 (4): 700–708. doi:10.1055/s-0038-1636529. PMID: 29618155.; Fernández AR, Sánchez-Tarjuelo R, Cravedi P, Ochando J, López-Hoyos M. Review: Ischemia Reperfusion Injury-A Translational Perspective in Organ Transplantation. Int J Mol Sci. 2020; 21 (22): 8549. doi:10.3390/ijms21228549. PMID: 33202744.; Trzpis M et al. Expression of EpCAM is up-regulated during regeneration of renal epithelia. J Pathol. 2008; 216 (2): 201–208. doi:10.1002/path.2396. PMID: 18702175.; Akhtar AM et al. In vivo quantification of VCAM-1 expression in renal ischemia reperfusion injury using non-invasive magnetic resonance molecular imaging. PLoS One. 2010; 5 (9): 34–35. doi:10.1371/journal.pone.0012800. PMID: 20877722.; Hanif Z et al. Role of biobanks in transplantation. Annals of medicine and surgery. 2018; 28: 30–33. doi:10.1016/j.amsu.2018.02.007.; https://journal.transpl.ru/vtio/article/view/1544

Availability: https://journal.transpl.ru/vtio/article/view/1544
https://doi.org/10.15825/1995-1191-2022-4-124-134

Protective effect of hypoxic preconditioning on the proccesses of activation of mitochondrial pores in the heart of old animals ; Защитное влияние гипоксического прекондиционирования на процессы активации митохондриальных пор в сердце старых животных ; Захисний вплив гіпоксичного прекондиціювання на процеси активації мітохондріальних пор у серці старих тварин

Authors: Шиманська, Т.

Source: Bukovinian Medical Herald; Vol. 13 No. 4 (52) (2009); 268-270 ; Буковинский медицинский вестник; Том 13 № 4 (52) (2009); 268-270 ; Буковинський медичний вісник; Том 13 № 4 (52) (2009); 268-270 ; 2413-0737 ; 1684-7903

Subject Terms: старение, гипоксическое прекондиционирование, ишемия-реперфузия, митохондриальная пора, старіння, гіпоксичне прекондиціювання, ішемія-реперфузія, мітохондріальна пора, aging, hypoxic preconditioning, ischemia-reperfusion, mitochondrial pore

File Description: application/pdf

Relation: http://e-bmv.bsmu.edu.ua/article/view/252278/249596

Availability: http://e-bmv.bsmu.edu.ua/article/view/252278

Protective effect of hypoxic preconditioning on the proccesses of activation of mitochondrial pores in the heart of old animals

Source: Bukovinian Medical Herald; Vol. 13 No. 4 (52) (2009); 268-270
Буковинский медицинский вестник; Том 13 № 4 (52) (2009); 268-270
Буковинський медичний вісник; Том 13 № 4 (52) (2009); 268-270

Subject Terms: старіння, гіпоксичне прекондиціювання, ішемія-реперфузія, мітохондріальна пора, старение, гипоксическое прекондиционирование, ишемия-реперфузия, митохондриальная пора, aging, hypoxic preconditioning, ischemia-reperfusion, mitochondrial pore

File Description: application/pdf

Access URL: http://e-bmv.bsmu.edu.ua/article/view/252278

Activity of the glutathione system and NADPH-generating enzymes under the action of melatonin during cerebral ischemia/reperfusion in rats

Source: ZHurnal «Patologicheskaia fiziologiia i eksperimental`naia terapiia». :19-24

Subject Terms: 0301 basic medicine, 0303 health sciences, глутатионпероксидаза, глутатионтрансфераза, melatonin, melaxen, восстановленный глутатион, НАДФ-изоцитратдегидрогеназа, 03 medical and health sciences, глюкозо-6-фосфатдегидрогеназа, мелатонин, мелаксен, glutathione transferase, glucose-6-phosphate dehydrogenase, NADP-isocitrate dehydrogenase, brain ischemia/reperfusion, глутатионредуктаза, reduced glutathione, glutathione peroxidase, ишемия/реперфузия головного мозга, glutathione reductase

Comparative analysis of the nephroprotective action of ademetioninee and glutathione in ischemia-reperfusion acute kidney injury

Authors: Drachuk, Vera, Zamorskii, Igor, Shchudrova, Tetiana

Source: ScienceRise: Pharmaceutical Science; № 2 (12) (2018); 49-55

Subject Terms: 0301 basic medicine, 0303 health sciences, 03 medical and health sciences, 0404 agricultural biotechnology, нефропротекторна дія, адеметіонін, глутатіон, ішемія- реперфузія, гостре пошкодження нирок, 04 agricultural and veterinary sciences, нефропротекторное действие, адеметионин, глутатион, ишемия – реперфузия, острое повреждение почек, nephroprotective effect, ademetionine, glutathione, ischemia-reperfusion, acute kidney injury, 0405 other agricultural sciences, УДК:616.254:615.272:616.61-001-008.64, 3. Good health

File Description: application/pdf

Access URL: http://journals.uran.ua/sr_pharm/article/download/129694/125435
https://www.neliti.com/publications/308965/comparative-analysis-of-the-nephroprotective-action-of-ademetioninee-and-glutath
http://journals.uran.ua/sr_pharm/article/view/129694

INFLUENCE OF ACUTE BLOOD LOSS COMPLICATED BY LIMB ISCHEMIA-REPERFUSION ON THE DYNAMICS OF ENZYME LINKS OF ANTIOXIDANCE ZADACANT ; ВПЛИВ ГОСТРОЇ КРОВОВТРАТИ, УСКЛАДНЕНОЇ ІШЕМІЄЮ-РЕПЕРФУЗІЄЮ КІНЦІВКИ, НА ДИНАМІКУ ПОКАЗНИКІВ ЕНЗИМНОЇ ЛАНКИ АНТИОКСИДАНТНОГО ЗАХИСТУ В СЕЛЕЗІНЦІ ТА ЙОГО КОРЕКЦІЯ КАРБАЦЕТАМОМ

Authors: Яворська, І. В.

Source: Achievements of Clinical and Experimental Medicine; No. 2 (2021); 195-202 ; Достижения клинической и экспериментальной медицины; № 2 (2021); 195-202 ; Здобутки клінічної і експериментальної медицини; № 2 (2021); 195-202 ; 2415-8836 ; 1811-2471 ; 10.11603/1811-2471.2021.v.i2

Subject Terms: острая кровопотеря, ишемия-реперфузия конечности, селезенка, супероксиддисмутаза, каталаза, карбацетам, гостра крововтрата, ішемія-реперфузія кінцівки, селезінка

File Description: application/pdf

Relation: https://ojs.tdmu.edu.ua/index.php/zdobutky-eks-med/article/view/12225/11502

Availability: https://ojs.tdmu.edu.ua/index.php/zdobutky-eks-med/article/view/12225
https://doi.org/10.11603/1811-2471.2021.v.i2.12225

PECULIARITIES OF MEDIUM MOLECULES DYNAMICS ON THE BACKGROUND OF MODIFICATIONS OF EXPERIMENTAL ISCHEMIC REPERFUSION SYNDROME OF THE LIMBS ; ОСОБЕННОСТИ ДИНАМИКИ МОЛЕКУЛ СРЕДНЕЙ МАССЫ НА ФОНЕ МОДИФИКАЦИЙ ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНОГО СИНДРОМА ИШЕМИИ-РЕПЕРФУЗИИ КОНЕЧНОСТИ ; ОСОБЛИВОСТІ ДИНАМІКИ МОЛЕКУЛ СЕРЕДНЬОЇ МАСИ НА ТЛІ МОДИФІКАЦІЙ ЕКСПЕРИМЕНТАЛЬНОГО ІШЕМІЧНО-РЕПЕРФУЗІЙНОГО СИНДРОМУ КІНЦІВКИ

Authors: Volotovska, N. V.

Source: Medical and Clinical Chemistry; No. 4 (2020); 63-70 ; Медицинская и клиническая химия; № 4 (2020); 63-70 ; Медична та клінічна хімія; № 4 (2020); 63-70 ; 2414-9934 ; 2410-681X ; 10.11603/mcch.2410-681X.2020.v.i4

Subject Terms: middle mass molecules, endogenous intoxication, ischemia-reperfusion, injury, blood loss, experiment, молекулы средней массы, эндогенная интоксикация, ишемия-реперфузия, травма, кровопотеря, эксперимент, молекули середньої маси, ендогенна інтоксикація, ішемія-реперфузія, крововтрата, експеримент

File Description: application/pdf

Relation: https://ojs.tdmu.edu.ua/index.php/MCC/article/view/11740/11106; https://ojs.tdmu.edu.ua/index.php/MCC/article/view/11740

Availability: https://ojs.tdmu.edu.ua/index.php/MCC/article/view/11740
https://doi.org/10.11603/mcch.2410-681X.2020.i4.11740

Prognostic value of troponin I after coronary artery bypass grafting (AMIRI-CABG study) ; Прогностическое значение тропонина I после операций коронарного шунтирования (по результатам исследования AMIRI-CABG)

Authors: N. S. Bunenkov, V. V. Komok, S. A. Bely, A. V. Sokolov, V. I. Lukashenko, A. S. Nemkov, G. G. Khubulava, Н. С. Буненков, В. В. Комок, С. А. Белый, А. В. Соколов, В. И. Лукашенко, А. С. Немков, Г. Г. Хубулава

Contributors: Исследование выполнено в рамках государственного задания ПСПбГМУ им. акад. И.П. Павлова по теме: «Оценка регенеративного потенциала пациента при операциях на сердце (2018 г.)».

Source: Russian Journal of Transplantology and Artificial Organs; Том 23, № 1 (2021); 91-100 ; Вестник трансплантологии и искусственных органов; Том 23, № 1 (2021); 91-100 ; 1995-1191

Subject Terms: прогностическое значение тропонина, off-pump, on-pump, pump-assisted, ischemia-reperfusion, myocardial injury, troponin I, troponin I prognostic value, коронарное шунтирование в условиях искусственного кровообращения, коронарное шунтирование со вспомогательным искусственным кровообращением, ишемия-реперфузия, повреждение миокарда, тропонин I

File Description: application/pdf

Relation: https://journal.transpl.ru/vtio/article/view/1320/1089; https://journal.transpl.ru/vtio/article/view/1320/1187; Хубулава ГГ, Авалиани ВМ. Защита миокарда при аортокоронарном шунтировании: современное состояние проблемы. Кардиология и сердечно-сосудистая хирургия. 2013; 5: 42-47.; Молчан НС, Полушин ЮС, Жлоба АА, Кобак АЕ, Хряпа СС. Возможно ли усилить защиту миокарда во время искусственного кровообращения введением ингаляционных анестетиков? Альманах клинической медицины. 2019; 47 (3): 221-227. https://doi.org/10.18786/2072-0505-2019-47-036.; Буненков НС, Комок ВВ, Соколов АВ, Немков АС. Новые возможности оценки интраоперационного ишемически-реперфузионного повреждения миокарда при операциях реваскуляризации в условиях искусственного кровообращения и на работающем сердце. Клиническая и экспериментальная хирургия. Журнал им. акад. Б.В. Петровского. 2017; 16 (2): 4048.; Минасян СМ, Бадриханова ЛР, Галагудза ММ, Курапеев ДИ. Сравнительное исследование защитного эффекта гипотермии, ишемического прекондиционирования и модифицированных кардиоплегических растворов при ишемии-реперфузии изолированного сердца крысы. Регионарное кровообращение и микроциркуляция. 2008; 7 (2 (26)): 72-78.; Минасян СМ, Галагудза ММ, Курапеев ДИ, Снегирев МА, Васильева МС, Боброва ЕА и др. Механизмы защиты миокарда под действием кристаллоидной кардиоплегии - ключ к оптимизации интраоперационной кардиопротекции. Бюллетень Федерального центра сердца, крови и эндокринологии им. В.А. Алмазова. 2011; 1: 24-30.; Минасян СМ, Галагудза ММ, Королев ДВ, Курапеев ДИ, Дмитриев ЮВ, Васильева МС и др. Исследование кардиопротективных свойств кардиоплегических растворов госпиталя св. Томаса № 2 и «Кустодиол», а также изолированной гипотермии при тотальной ишемии миокарда. Регионарное кровообращение и микроциркуляция. 2011; 10 (4 (40)): 73-77. https://doi.org/10.24884/1682-6655-2011-10-4-73-77.; Снегирев МА, Васильева МС, Павлов АГ, Минасян СМ, Галагудза ММ, Курапеев ДИ. Ишемическое посткондиционирование как способ увеличения эффективности кардиоплегии. Здоровье - основа человеческого потенциала: Проблемы и пути их решения. 2011; 6 (1): 216.; Галагудза ММ, Минасян СМ, Дмитриев ЮВ, Полещенко ЯИ, Шубина ПЮ, Процак ЕС и др. Сравнение гемодинамических и инфаркт-лимитирующих эффектов консервирующего раствора на основе буфера Кребса-Хенселейта и раствора кустодиол на модели гетеротопической трансплантации сердца крысы. Артериальная гипертензия. 2019; 25 (1): 84-89. https:// doi.org/10.18705/1607-419X-2019-25-1-84-89.; Бокерия ЛА, Гордеев МЛ, Авалиани ВМ. Аортокоронарное шунтирование на работающем сердце: Современный взгляд на проблему. Грудная и сердечно-сосудистая хирургия. 2013; 4: 4-15.; Gaudino M, Angelini GD, Antoniades C, Bakaeen F, Benedetto U, Calafiore AM et al. Off-Pump Coronary Artery Bypass Grafting: 30 Years of Debate. J Am Heart Assoc. 2018; 7 (16): e009934. Epub 2018/10/30. doi:10.1161/JAHA.118.009934. PubMed PMID: 30369328; PubMed Central PMCID: PMCPMC6201399.; Комок ВВ, Буненков НС, Белый СА, Пизин ВМ, Кондратьев ВМ, Дулаев АВ и др. Оценка эффективности комбинированного лечения ишемической болезни сердца - аортокоронарное шунтирование, трансплантация аутологичных мононуклеаров костного мозга: Результаты рандомизированного, слепого, плацебо контролируемого исследования. Вестник трансплантологии и искусственных органов. 2019; 21 (4): 54-66. https://doi.org/10.15825/1995-1191-2019-4-54-66.; Карпов АА, Драчева АВ, Буслова ДВ, Ивкин ДЮ, Моисеева ОМ, Галагудза ММ. Модификация мезенхимальных стволовых клеток как способ повышения эффективности клеточной терапии ишемического повреждения миокарда. Российский физиологический журнал им. И.М. Сеченова. 2015; 101 (9): 985-998.; Карпов АА, Пузанов МВ, Алмухаметова ФР, Укин АА, Ломакина АМ, Черепанов ДЕ и др. Микроинкапсулирование мезенхимных стволовых клеток как инструмент для изучения механизмов клеточной терапии при инфаркте миокарда. Регионарное кровообращение и микроциркуляция. 2017; 16 (2): 75-82. https://doi.org/10.24884/1682-6655-2017-16-2-75-82.; Докшин ПМ, Карпов АА, Эйвазова ШД, Пузанов МВ, Костарева АА, Галагудза ММ и др. Активация стволовых клеток сердца при инфаркте миокарда. Цитология. 2018; 60 (2): 81-88.; Петрищев НН, Власов ТД, Галагудза ММ. Ишемическое посткондиционирование миокарда - новый способ защиты сердца от реперфузного повреждения. Регионарное кровообращение и микроциркуляция. 2004; 3 (13): 68-71.; Thielmann M, Sharma V, Al-Attar N, Bulluck H, Bisleri G, Bunge JJH et al. ESC Joint Working Groups on Cardiovascular Surgery and the Cellular Biology of the Heart Position Paper: Perioperative myocardial injury and infarction in patients undergoing coronary artery bypass graft surgery. European heart journal. 2017; 38 (31): 2392-2407. doi:10.1093/eurheartj/ehx383. PubMed PMID: 28821170; PubMed Central PMCID: PMC5808635.; Hajjar LA, Teboul JL. Mechanical Circulatory Support Devices for Cardiogenic Shock: State of the Art. Crit Care. 2019; 23 (1): 76. Epub 2019/03/10. doi:10.1186/s13054-019-2368-y. PubMed PMID: 30850001; PubMed Central PMCID: PMCPMC6408785.; Lomivorotov VV, Efremov SM, Kirov MY, Fominskiy EV, Karaskov AM. Low-Cardiac-Output Syndrome After Cardiac Surgery. J Cardiothorac Vasc Anesth. 2017; 31 (1): 291-308. Epub 2016/09/28. doi:10.1053/j.jvca.2016.05.029. PubMed PMID: 27671216.; Januzzi JL, Jr. Troponin testing after cardiac surgery. HSR Proc Intensive Care Cardiovasc Anesth. 2009; 1 (3): 22-32. Epub 2009/01/01. PubMed PMID: 23439987; PubMed Central PMCID: PMCPMC3484554.; https://journal.transpl.ru/vtio/article/view/1320

Availability: https://journal.transpl.ru/vtio/article/view/1320
https://doi.org/10.15825/1995-1191-2021-1-91-100

Morphofunctional state of pancreatic islets in rats under the conditions of streptozotocin-induced diabetes mellitus and brain ischemia-reperfusion ; Морфофункциональное состояние островков поджелудочной железы крыс с сочетанным воздействием сахарного диабета и ишемически-реперфузионного повреждения головного мозга ; Морфофункціональний стан острівців підшлункової залози щурів із поєднаним впливом цукрового діабету та ішемії-реперфузії головного мозку

Authors: Ткачук, О.

Source: Bukovinian Medical Herald; Vol. 15 No. 3(59) (2011); 102-105 ; Буковинский медицинский вестник; Том 15 № 3(59) (2011); 102-105 ; Буковинський медичний вісник; Том 15 № 3(59) (2011); 102-105 ; 2413-0737 ; 1684-7903

Subject Terms: ішемія-реперфузія головного мозку, цукровий діабет, панкреатичні острівці, ишемия-реперфузия головного мозга, сахарный диабет, панкреатические островки, brain ischemia-reperfusion, diabetes mellitus, pancreatic islets

File Description: application/pdf

Relation: http://e-bmv.bsmu.edu.ua/article/view/232350/231156

Availability: http://e-bmv.bsmu.edu.ua/article/view/232350