-
1Academic Journal
Authors: E. I. Surikova, E. M. Frantsiyants, I. V. Kaplieva, I. V. Neskubina, E. G. Shakaryan, A. V. Snezhko, E. N. Kolesnikov, V. A. Bandovkina, L. K. Trepitaki, Yu. A. Petrova, N. S. Lesovaya, M. A. Engibaryan, V. L. Volkova, Е. И. Сурикова, Е. М. Франциянц, И. В. Каплиева, И. В. Нескубина, Е. Г. Шакарян, А. В. Снежко, Е. Н. Колесников, В. А. Бандовкина, Л. К. Трепитаки, Ю. А. Петрова, Н. С. Лесовая, М. А. Енгибарян, В. Л. Волкова
Source: Research and Practical Medicine Journal; Том 12, № 1 (2025); 40-51 ; Research'n Practical Medicine Journal; Том 12, № 1 (2025); 40-51 ; 2410-1893 ; 10.17709/2410-1893-2025-12-1
Subject Terms: редокс-регуляция, metastasis, latent period, experimental model, sarcoma 45, spleen, liver, thioredoxin 1, thioredoxin reductase 1, glutathione-S-transferase Pi, redox regulation, метастазирование, латентный период, экспериментальная модель, саркома 45, селезенка, печень, тиоредоксин 1,тиоредоксинредуктаза 1, глутатион-S-трансфераза Pi
File Description: application/pdf
Relation: https://www.rpmj.ru/rpmj/article/view/1059/674; Каплиева И. В., Франциянц Е. М., Кит О. И. Патогенетические аспекты метастатического поражения печени (экспериментальное исследование). М.: Общество с ограниченной ответственностью «Кредо»; 2022, 356 с. EDN: https://elibrary.ru/CCLUYR; Кит О. И., Геворкян Ю. А., Солдаткина Н. В., Колесников В. Е., Бондаренко О. К., Дашков А. В. Современные хирургические стратегии лечения метастатического колоректального рака (обзор литературы). Южно-Российский онкологический журнал. 2024;5(3):102–110. https://doi.org/10.37748/2686-9039-2024-5-3-9; Ahmed O, Robinson MW, O'Farrelly C. Inflammatory processes in the liver: divergent roles in homeostasis and pathology. Cell Mol Immunol. 2021 Jun;18(6):1375–1386. https://doi.org/10.1038/s41423-021-00639-2; Zhang S, Lu S, Li Z. Extrahepatic factors in hepatic immune regulation. Front Immunol. 2022 Aug 16;13:941721. https://doi.org/10.3389/fimmu.2022.941721; Vairetti M, Di Pasqua LG, Cagna M, Richelmi P, Ferrigno A, Berardo C. Changes in Glutathione Content in Liver Diseases: An Update. Antioxidants (Basel). 2021 Feb 28;10(3):364. https://doi.org/10.3390/antiox10030364; Parlar YE, Ayar SN, Cagdas D, Balaban YH. Liver immunity, autoimmunity, and inborn errors of immunity. World J Hepatol. 2023 Jan 27;15(1):52–67. https://doi.org/10.4254/wjh.v15.i1.52; Lee J, Kim J, Lee R, Lee E, Choi TG, Lee AS, et al. Therapeutic strategies for liver diseases based on redox control systems. Biomed Pharmacother. 2022 Dec:156:113764. https://doi.org/10.1016/j.biopha.2022.113764; Jomova K, Raptova R, Alomar SY, Alwasel SH, Nepovimova E, Kuca K, et al. Reactive oxygen species, toxicity, oxidative stress, and antioxidants: chronic diseases and aging. Arch Toxicol. 2023 Oct;97(10):2499–2574. https://doi.org/10.1007/s00204-023-03562-9; Oberacker T, Kraft L, Schanz M, Latus J, Schricker S. The Importance of Thioredoxin-1 in Health and Disease. Antioxidants (Basel). 2023 May 11;12(5):1078. https://doi.org/10.3390/antiox12051078; Mazari AMA, Zhang L, Ye ZW, Zhang J, Tew KD, Townsend DM. The Multifaceted Role of Glutathione S-Transferases in Health and Disease. Biomolecules. 2023 Apr 18;13(4):688. https://doi.org/10.3390/biom13040688; Dong SC, Sha HH, Xu XY, Hu TM, Lou R, Li H. et al. Glutathione S-transferase π: a potential role in antitumor therapy. Drug Des Devel Ther. 2018 Oct 23;12:3535–3547. https://doi.org/10.2147/DDDT.S169833; Zhang J, Ye Z-W, Singh S, Townsend DM, Tew KD. An evolving understanding of the S-glutathionylation cycle in pathways of redox regulation. Free. Radic. Biol. Med. 2018;120:204–216. https://doi.org/10.1016/j.freeradbiomed.2018.03.038; Франциянц E. М., Каплиева И. В., Бандовкина В. А., Сурикова Е. И., Нескубина И. В., Трипитаки Л. К., и др. Моделирование первично-множественных злокачественных опухолей в эксперименте. Южно-Российский онкологический журнал. 2022;3(2):14–21. https://doi.org/10.37748/2686-9039-2022-3-2-2; Франциянц Е. М, Сурикова Е. И., Каплиева И. В., Нескубина И. В., Шакарян Э. Г., Снежко А. В., и др. Динамика свободно-радикальных окислительных процессов в латентный период экспериментального метастазирования в печень. Уральский медицинский журнал. 2024;23(5):89–103. https://doi.org/10.52420/umj.23.5.89; Kit OI, Frantsiyants EM, Kaplieva IV, Trepitaki LK, Evstratova OF. A method for reproduction of metastases in the liver. Bull Exp Biol Med. 2014 Oct;157(6):773–775. https://doi.org/10.1007/s10517-014-2664-0; Seen S. Chronic liver disease and oxidative stressa narrative review. Expert Rev Gastroenterol Hepatol. 2021 Sep;15(9):1021–1035. https://doi.org/10.1080/17474124.2021.1949289; Couto N, Wood J, Barber J. The role of glutathione reductase and related enzymes on cellular redox homoeostasis network. Free Radic Biol Med. 2016 Jun;95:27–42. https://doi.org/10.1016/j.freeradbiomed.2016.02.028; Santacroce G, Gentile A, Soriano S, Novelli A, Lenti MV, Di Sabatino A. Glutathione: Pharmacological aspects and implications for clinical use in non-alcoholic fatty liver disease. Front Med (Lausanne). 2023 Mar 22;10:1124275. https://doi.org/10.3389/fmed.2023.1124275; Shcholok T, Eftekharpour E. Insights into the Multifaceted Roles of Thioredoxin-1 System: Exploring Knockout Murine Models. Biology (Basel). 2024 Mar 12;13(3):180. https://doi.org/10.3390/biology13030180; Prigge JR, Coppo L, Martin SS, Ogata F, Miller CG, Bruschwein MD, et al. Hepatocyte Hyperproliferation upon Liver-Specific Co-disruption of Thioredoxin-1, Thioredoxin Reductase-1, and Glutathione Reductase. Cell Rep. 2017 Jun 27;19(13):2771–2781. https://doi.org/10.1016/j.celrep.2017.06.019; Shearn CT, Anderson AL, Miller CG, Noyd RC, Devereaux MW, Balasubramaniyan N, et al. Thioredoxin reductase 1 regulates hepatic inflammation and macrophage activation during acute cholestatic liver injury. Hepatol Commun. 2023 Jan 10;7(1):e0020. https://doi.org/10.1097/HC9.0000000000000020; Iverson SV, Eriksson S, Xu J, Prigge JR, Talago EA, Meade TA, et al. A Txnrd1-dependent metabolic switch alters hepatic lipogenesis, gly cogen storage, and detoxification. Free Radic Biol Med. 2013 Oct;63:369–380. https://doi.org/10.1016/j.freeradbiomed.2013.05.028; Singh RR, Reindl KM. Glutathione S-Transferases in Cancer. Antioxidants. 2021;10(5):701. https://doi.org/10.3390/antiox10050701; Georgiou-Siafis SK, Tsiftsoglou AS. The Key Role of GSH in Keeping the Redox Balance in Mammalian Cells: Mechanisms and Sig nificance of GSH in Detoxification via Formation of Conjugates. Antioxidants. 2023;12(11):1953. https://doi.org/10.3390/antiox12111953; Косова А. А., Ходырева С. Н., Лаврик О. И. Роль глицеральдегид-3-фосфатдегидрогеназы (GAPDH) в репарации ДНК. Биохимия. 2017;82(6):859–872.; Гарбуз Д. Г., Зацепина О. Г, Евгеньев М. Б. Основной стрессовый белок человека (HSP70) как фактор белкового гомеостаза и цитокин-подобный регулятор. Молекулярная биология. 2019;53(2):200–217. https://doi.org/10.1134/S0026898419020058; Lee S, Kim SM, Lee RT. Thioredoxin and thioredoxin target proteins: from molecular mechanisms to functional significance. Anti oxid Redox Signal. 2013 Apr 1;18(10):1165–1207. https://doi.org/10.1089/ars.2011.4322; Chakraborty S, Sircar E, Bhattacharyya C, Choudhuri A, Mishra A, Dutta S. et al. S-Denitrosylation: A Crosstalk between Glutathi one and Redoxin Systems. Antioxidants (Basel). 2022 Sep 28;11(10):1921. https://doi.org/10.3390/antiox11101921; Zhang J, Li X, Zhao Z, Cai W, Fang J. Thioredoxin Signaling Pathways in Cancer. Antioxid Redox Signal. 2023 Feb;38(4-6):403–424. https://doi.org/10.1089/ars.2022.0074; https://www.rpmj.ru/rpmj/article/view/1059
-
2Academic Journal
Authors: E. M. Frantsiyants, A. I. Shikhlyarova, I. V. Kaplieva, E. I. Surikova, V. A. Bandovkina, Yu. A. Petrova, I. V. Neskubina, L. K. Trepitaki, N. D. Cheryarina, V. M. Kotieva, A. A. Vereskunova, A. A. Cherkasova, O. G. Selezneva, O. E. Zhenilo, O. G. Ishonina, E. I. Agarkova, M. G. Ilchenko, Е. М. Франциянц, А. И. Шихлярова, И. В. Каплиева, Е. И. Сурикова, В. А. Бандовкина, Ю. А. Петрова, И. В. Нескубина, Л. К. Трепитаки, Н. Д. Черярина, В. М. Котиева, А. А. Верескунова, А. А. Черкасова, О. Г. Селезнева, О. Е. Женило, О. Г. Ишонина, Е. И. Агаркова, М. Г. Ильченко
Source: Research and Practical Medicine Journal; Том 12, № 1 (2025); 52-64 ; Research'n Practical Medicine Journal; Том 12, № 1 (2025); 52-64 ; 2410-1893 ; 10.17709/2410-1893-2025-12-1
Subject Terms: муцинозная форма, diabetes mellitus, experimental model, Guerin's carcinoma, histologic testing, change in differentiation, mucinous form, сахарный диабет, экспериментальная модель, карцинома Герена, гистологические исследования, изменение дифференцировки
File Description: application/pdf
Relation: https://www.rpmj.ru/rpmj/article/view/1046/673; Sung H, Ferlay J, Siegel RL, Laversanne M, Soerjomataram I, Jemal A, Bray F. Global Cancer Statistics 2020: GLOBOCAN Estimates of Incidence and Mortality Worldwide for 36 Cancers in 185 Countries. CA Cancer J Clin. 2021 May;71(3):209–249. https://doi.org/10.3322/caac.21660; Состояние онкологической помощи населению России в 2023 году. Под ред. Каприна А.Д., Старинского В.В., Шахзадовой А.O. М.: МНИОИ им. П.А. Герцена – филиал ФГБУ «НМИЦ радиологии» Минздрава России; 2024, 262 с. Доступно по: https://oncology-association.ru/wp-content/uploads/2024/06/sop-2023-elektronnaya-versiya.pdf Дата обращения: 13.02.2025.; Zhang ZH, Su PY, Hao JH, Sun YH. The role of preexisting diabetes mellitus on incidence and mortality of endometrial cancer: a meta-analysis of prospective cohort studies. Int J Gynecol Cancer. 2013 Feb;23(2):294–303. https://doi.org/10.1097/igc.0b013e31827b8430; Lai Y, Sun C. Association of abnormal glucose metabolism and insulin resistance in patients with atypical and typical endometrial cancer. Oncol Lett. 2018 Feb;15(2):2173–2178. https://doi.org/10.3892/ol.2017.7590; Byrne FL, Martin AR, Kosasih M, Caruana BT, Farrell R. The Role of Hyperglycemia in Endometrial Cancer Pathogenesis. Cancers (Basel). 2020 May 8;12(5):1191. https://doi.org/10.3390/cancers12051191; Zabuliene L, Kaceniene A, Steponaviciene L, Linkeviciute-Ulinskiene D, Stukas R, Arlauskas R, et al. Risk of Endometrial Cancer in Women with Diabetes: A Population-Based Retrospective Cohort Study. J Clin Med. 2021 Aug 4;10(16):3453. https://doi.org/10.3390/jcm10163453; Constantine GD, Kessler G, Graham S, Goldstein SR. Increased Incidence of Endometrial Cancer Following the Women's Health Initiative: An Assessment of Risk Factors. J Womens Health (Larchmt). 2019 Feb;28(2):237–243. https://doi.org/10.1089/jwh.2018.6956; Wu D, Hu D, Chen H, Shi G, Fetahu IS, Wu F, et al. Glucose-regulated phosphorylation of TET2 by AMPK reveals a pathway linking diabetes to cancer. Nature. 2018 Jul;559(7715):637–641. https://doi.org/10.1038/s41586-018-0350-5; McVicker L, Cardwell CR, Edge L, McCluggage WG, Quinn D, Wylie J, McMenamin ÚC. Survival outcomes in endometrial cancer patients according to diabetes: a systematic review and meta-analysis. BMC Cancer. 2022 Apr 20;22(1):427. https://doi.org/10.1186/s12885-022-09510-7; Франциянц Е. М., Бандовкина В. А., Каплиева И. В., Сурикова Е. И., Нескубина И. В., Погорелова Ю. А. и др. Изменение патофизиологии роста опухоли и функциональной активности гипоталамо-гипофизарно-тиреоидной оси у крыс обоего пола с карциномой Герена на фоне гипотиреоза. Южно-Российский онкологический журнал. 2022;3(4):26–39. DOI: https://doi.org/10.37748/2686-9039-2022-3-4-3; Vollmer G. Endometrial cancer: experimental models useful for studies on molecular aspects of endometrial cancer and carcino genesis. Endocr Relat Cancer. 2003 Mar;10(1):23–42. https://doi.org/10.1677/erc.0.0100023; Черкашина Д. В., Лебединский А. С., Петренко Ю. А., Штеменко Н. И., Петренко А. Ю. Торможение роста карциномы Герена у крыс после ведения мезенхимальных стромальных клеток жировой ткани человека и биорегуляторов стволовых и прогениторных клеток. Журнал АМН України. 2010;16(3):492–506.; Zhang W, Fan W, Rachagani S, Zhou Z, Lele SM, Batra SK, Garrison JC. Comparative Study of Subcutaneous and Orthotopic Mouse Models of Prostate Cancer: Vascular Perfusion, Vasculature Density, Hypoxic Burden and BB2r-Targeting Efficacy. Sci Rep. 2019 Jul 31;9(1):11117. https://doi.org/10.1038/s41598-019-47308-z; Кадомцев Д. В., Пасечникова Е. А., Голубев В. Г. Золетил-ксилазиновый наркоз в экспериментах у крыс. Международный журнал прикладных и фундаментальных исследований. 2015;5-1:56–57.; Бородин Ю. И., Малыгин М. В., Асташов В. В., Маринкин И. О., Ларионов П. М., Мичурин И. Е. и др. Способ моделирования опухоли тела матки для исследования ее регионарного лимфатического русла. Патент Российской Федерации RU 2220459C1, 27.12.2003.; Sidorkiewicz I, Jóźwik M, Niemira M, Krętowski A. Insulin Resistance and Endometrial Cancer: Emerging Role for microRNA. Cancers (Basel). 2020 Sep 8;12(9):2559. https://doi.org/10.3390/cancers12092559; Ma J, Yao Z, Ma L, Zhu Q, Zhang J, Li L, Liu C. Glucose metabolism reprogramming in gynecologic malignant tumors. J Cancer. 2024 Mar 17;15(9):2627–2645. https://doi.org/10.7150/jca.91131; Byrne FL, Poon IK, Modesitt SC, Tomsig JL, Chow JD, Healy ME, et al. Metabolic vulnerabilities in endometrial cancer. Cancer Res. 2014 Oct 15;74(20):5832–5845. https://doi.org/10.1158/0008-5472.can-14-0254; Levin DA, The Cancer Genome Atlas Research Network. Integrated genomic characterization of endometrial carcinoma. Nature. 2013;497(7447):67–73. https://doi.org/10.1038/nature12113; Mujammami M, Rafiullah M, Alfadda AA, Akkour K, Alanazi IO, Masood A, et al. Proteomic Analysis of Endometrial Cancer Tissues from Patients with Type 2 Diabetes Mellitus. Life (Basel). 2022 Mar 28;12(4):491. https://doi.org/10.3390/life12040491; Shikhlyarova AI, Kit OI, Frantsiyants EM, Kaplieva IV, Zhukova GV, Neskubina IV, et al. Relationship between comorbid pathology and tumor progression. Morphological portrayal of internal organs in modeling the growth of Guerin's carcinoma under diabetic conditions. Cardiometry. 2022;21:18–26. https://doi.org/10.18137/cardiometry.2022.21.1826; Duzguner S, Turkmen O, Kimyon G, Duzguner IN, Karalok A, Basaran D, et al. Mucinous endometrial cancer: Clinical study of the eleven cases. North Clin Istanb. 2019 Jul 3;7(1):60–64. https://doi.org/10.14744/nci.2019.17048; Ohira S, Tachibana R, Yasaki S, Tsunemi K, Uchiyama N, Ikeda E, Sano K. Mucinous carcinoma originating from uterine adenomyosis: a case report. J Med Case Rep. 2023 Feb 6;17(1):36. https://doi.org/10.1186/s13256-023-03772-w; Bragantini E, Angelico G, Disanto MG, Magri E, Maccio L, Barbareschi M. Gastric (gastrointestinal)-type endometrial adenocarcinoma presenting as a solitary endometrial polyp: a case report and literature review on a novel and potentially aggressive endometrial cancer histotype. Pathologica. 2023 Aug;115(4):227–231. https://doi.org/10.32074/1591-951x-870; Galic V, Schiavone MB, Herzog TJ, Holcomb K, Lewin SN, Lu YS, Neugut AI, Hershman DL, Wright JD. Prognostic significance of mucinous differentiation of endometrioid adenocarcinoma of the endometrium. Cancer Invest. 2013 Aug;31(7):500–504. https://doi.org/10.3109/07357907.2013.820321; Wong RW, Ralte A, Grondin K, Talia KL, McCluggage WG. Endometrial Gastric (Gastrointestinal)-type Mucinous Lesions: Report of a Series Illustrating the Spectrum of Benign and Malignant Lesions. Am J Surg Pathol. 2020 Mar;44(3):406–419. https://doi.org/10.1097/pas.0000000000001381; https://www.rpmj.ru/rpmj/article/view/1046
-
3Academic Journal
Authors: Мирзамухамедов, Одилжон
Source: International Journal of Scientific Pediatrics; Vol. 4 No. 2 (2025): March-April; 907-916 ; Международный журнал научной педиатрии; Том 4 № 2 (2025): Март-Апрель; 907-916 ; Xalqaro ilmiy pediatriya jurnali; Nashr soni. 4 No. 2 (2025): Mart-Aprel; 907-916 ; 2181-2926
Subject Terms: Миокард, сердечная мышца, гипотиреоз, экспериментальная модель, кардиомиоциты, иммуногистохимия, мексидол, Myocardium, heart muscle, hypothyroidism, experimental model, cardiomyocytes, immunohistochemistry, mexidol, Miokard, yurak mushagi, gipotireoz, eksperimental model, kardiomiotsitlar, immunogistokimyo, meksidol
File Description: application/pdf
Relation: https://ijsp.uz/index.php/journal/article/view/324/258; https://ijsp.uz/index.php/journal/article/view/324
-
4Academic Journal
Authors: Elena A. Smirnova, Olga V. Ponomareva, Елена Амишевна Смирнова, Ольга Владимировна Пономарева
Contributors: Авторы заявляют об отсутствии финансирования исследования.
Source: Complex Issues of Cardiovascular Diseases; Том 13, № 4 (2024); 126-137 ; Комплексные проблемы сердечно-сосудистых заболеваний; Том 13, № 4 (2024); 126-137 ; 2587-9537 ; 2306-1278
Subject Terms: Фиброз миокарда, Experimental model, Laboratory rats, Myocardial fibrosis, Экспериментальная модель, Лабораторные крысы
File Description: application/pdf
Relation: https://www.nii-kpssz.com/jour/article/view/1363/959; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1363/1390; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1363/1391; Roger V.L. Epidemiology of Heart Failure: A Contemporary Perspective. Circ Res. 2021;128(10):1421-1434. doi:10.1161/CIRCRESAHA.121.318172.; Бойцов С.А. Хроническая сердечная недостаточность: эволюция этиологии, распространенности и смертности за последние 20 лет. Терапевтический архив. 2022;94(1):5-8. doi:10.26442/00403660.2022.01.201317; Ponzoni M., Coles J.G., Maynes J.T. Rodent Models of Dilated Cardiomyopathy and Heart Failure for Translational Investigations and Therapeutic Discovery. Int J Mol Sci. 2023;24(4):3162. doi:10.3390/ijms24043162; Wang Y., Wang M., Samuel C.S., Widdop R.E. Preclinical rodent models of cardiac fibrosis. Br J Pharmacol. 2022;179(5):882-899. doi:10.1111/bph.15450.; Farag A., Mandour A.S., Hendawy H., Elhaieg A., Elfadadny A., Tanaka R. A review on experimental surgical models and anesthetic protocols of heart failure in rats. Front Vet Sci. 2023;10:1103229. doi:10.3389/fvets.2023.1103229.; Katz M.G., Fargnoli A.S., Gubara S.M., Chepurko E., Bridges C.R., Hajjar R.J. Surgical and physiological challenges in the development of left and right heart failure in rat models. Heart Fail Rev. 2019;24(5):759-777. doi:10.1007/s10741-019-09783-4; Cops J., Haesen S., De Moor B., Mullens W., Hansen D. Current animal models for the study of congestion in heart failure: an overview. Heart Fail Rev. 2019;24(3):387-397. doi:10.1007/s10741-018-9762-4.; Абрамов А. А., Лакомкин В. Л., Просвирнин А. В., Капелько В.И. Характеристика давления и объема левого желудочка при диастолической и систолической дисфункции. Кардиология. 2019;59(4):45-51. doi:10.18087/ cardio.2019.4.2647; Abbasnezhad A., Salami F., Mohebbati R. A review: Systematic research approach on toxicity model of liver and kidney in laboratory animals Animal Model Exp Med. 2022;5(5):436-444. doi:10.1002/ame2.12230; Song J., Xie Q., Wang L., Lu Y., Liu P., Yang P., Chen R., Shao C., Qiao C., Wang Z., Yan J. The TIR/BB-loop mimetic AS-1 prevents Ang II-induced hypertensive cardiac hypertrophy via NF-κB dependent downregulation of miRNA-143. Sci Rep. 2019;9(1):6354. doi:10.1038/s41598-019-42936-x.; Droogmans S., Franken P.R., Garbar C., Weytjens C., Cosyns B., Lahoutte T., Caveliers V., Pipeleers-Marichal M., Bossuyt A., Schoors D., Van Camp G. In vivo model of drug-induced valvular heart disease in rats: pergolide-induced valvular heart disease demonstrated with echocardiography and correlation with pathology. Eur Heart J. 2007;28(17):2156-62. doi:10.1093/eurheartj/ehm263.; Andersen A., van der Feen D.E., Andersen S., Schultz J.G., Hansmann G., Bogaard H.J. Animal models of right heart failure. Cardiovasc Diagn Ther. 2020;10(5):1561-1579. doi:10.21037/cdt-20-400.; Guo W., Zhu C., Yin Z., Zhang Y., Wang C., Walk A.S., Lin Y.H., McKinsey T.A., Woulfe K.C., Ren J., Chew H.G.Jr. The ryanodine receptor stabilizer S107 ameliorates contractility of adult Rbm20 knockout rat cardiomyocytes. Physiol Rep. 2021;9(17):e15011. doi:10.14814/phy2.15011.; Сарыева О.П., Кулида Л.В., Проценко Е.В., Малышева М.В. Кардиомиопатии у детей – клинические, генетические и морфологические аспекты. Российский медико-биологический вестник им. академика И.П. Павлова. 2020;28(1):99-110. doi:10.23888/PAVLOVJ202028199-110; Sugihara H., Kimura K., Yamanouchi K., Teramoto N., Okano T., Daimon M., Morita H., Takenaka K., Shiga T., Tanihata J., Aoki Y., Inoue-Nagamura T., Yotsuyanagi H., Komuro I. Age-Dependent Echocardiographic and Pathologic Findings in a Rat Model with Duchenne Muscular Dystrophy Generated by CRISPR/Cas9 Genome Editing. Int Heart J. 2020;61(6):1279-1284. doi:10.1536/ihj.20-372.; Черданцева Т. М., Баковецкая О. В., Никифоров А. А., Некрасова М. С.Морфологические и лабораторно-генетические исследования мышечных дистрофий. Наука молодых (Eruditio Juvenium). 2021; 9(3):481–491. doi:10.23888/HMJ202193481-491; Symbol report for ISCA1. HUGO Gene Nomenclature Committee (HGNC). Available at: https://www.genenames.org/data/gene-symbol-report/#!/hgnc_id/28660. (Accessed: 31.07.2023); Прошина Л.Г., Жмайлова С.В., Шевцова Л.М., Прошин А.В., Быкова О.С., Федорова Н.П., Григорьева М.В. Исследование закономерностей функционирования клеточных элементов миокарда при экспериментальной патологии сердца. Вестник Новгородского государственного университета им. Ярослава Мудрого. 2019;115 (3):24-27. doi:10.34680/2076-8052.2019.3(115).24-27; Инчина В.И., Столярова В.В., Гарькин Г.Г., и др. Состояние миокарда в модельной ситуации активации гипертензивных механизмов. Тезисы Второго конгресса по патофизиологии. М., 2000.С. 68.; Румянцева Т.А., Фатеев М.М., Федоров В.Н., Сальников Е.В., Сидоров А.В. Морфологические доказательства наличия хронической сердечной недостаточности, индуцированной у крыс методом дробного дозированного олеоторакса. Вестник Нижегородского университета им. Н. И. Лобачевского. 2009;5:123-127.; Wang Y., Han L., Shen M., Jones E.S., Spizzo I., Walton S.L., Denton K.M., Gaspari T.A., Samuel C.S., Widdop R.E. Serelaxin and the AT2 Receptor Agonist CGP42112 Evoked a Similar, Nonadditive, Cardiac Antifibrotic Effect in High Salt-Fed Mice That Were Refractory to Candesartan Cilexetil. ACS Pharmacol Transl Sci. 2020;3(1):76-87. doi:10.1021/acsptsci.9b00095.; Withaar C., Lam C.S.P., Schiattarella G.G., de Boer R.A., Meems L.M.G. Heart failure with preserved ejection fraction in humans and mice: embracing clinical complexity in mouse models. Eur Heart J. 2021;42(43):4420-4430. doi:10.1093/eurheartj/ehab389; Gyöngyösi M., Winkler J., Ramos I., Do Q.T., Firat H., McDonald K., González A., Thum T., Díez J., Jaisser F., Pizard A., Zannad F. Myocardial fibrosis: biomedical research from bench to bedside. Eur J Heart Fail. 2017;19(2):177-191. doi:10.1002/ejhf.696.; Tao W., Yang X., Zhang Q., Bi S., Yao Z. Optimal treatment for post-MI heart failure in rats: dapagliflozin first, adding sacubitril-valsartan 2 weeks later. Front Cardiovasc Med. 2023;10:1181473. doi:10.3389/fcvm.2023.1181473; Song R., Wang P., Yang L., Liu J., Chen Z., Ding Y. Association of FOXO3A with right ventricular myocardial fibrosis and its detection by speckle-tracking echocardiography in pulmonary hypertension. Echocardiography. 2023;40(9):958-968. doi:10.1111/echo.15663.; JawharMamand S., Mustafa Z.A. The Impact of Dapagliflozin on Aldosterone Hormone in Rats with Heart Failure. Polytechnic Journal. 2023;12 (2):53-60. doi:10.25156/ptj.v12n2y2022.pp53-60; Бердибеков Б.Ш., Александрова С.А., Голухова Е.З. Количественная оценка миокардиального фиброза с применением магнитно-резонансной томографии с отсроченным контрастированием при некоронарогенных желудочковых аритмиях // Креативная кардиология. 2021; 15 (3): 342–53. doi:10.24022/1997-3187-2021-15-3-342-353; Zhu J., Chen Y., Xu Z., Wang S., Wang L., Liu X., Gao F. Non-invasive assessment of early and acute myocarditis in a rat model using cardiac magnetic resonance tissue tracking analysis of myocardial strain. Quant Imaging Med Surg. 2020;10(11):2157-2167. doi:10.21037/qims-20-122.; Schneider J.E., Lanz T., Barnes H., Medway D., Stork L.A., Lygate C.A., Smart S., Griswold M.A., Neubauer S. Ultra-fast and accurate assessment of cardiac function in rats using accelerated MRI at 9.4 Tesla. Magn Reson Med. 2008;59(3):636-41. doi:10.1002/mrm.21491.; Qi Y., Chen Z., Guo B., Liu Z., Wang L., Liu S., Xue L., Ma M., Yin Y., Li Y., Liu G. Speckle-tracking echocardiography provides sensitive measurements of subtle early alterations associated with cardiac dysfunction in T2DM rats. BMC Cardiovasc Disord. 2023;23(1):266. doi:10.1186/s12872-023-03239-2.; Sabatino J., De Rosa S., Tammè L., Iaconetti C., Sorrentino S., Polimeni A., Mignogna C., Amorosi A., Spaccarotella C., Yasuda M., Indolfi C. Empagliflozin prevents doxorubicin-induced myocardial dysfunction. Cardiovasc Diabetol. 2020;19(1):66. doi:10.1186/s12933-020-01040-5.; Ulusan S., Gülle K., Peynirci A., Sevimli M., Karaibrahimoglu A., Kuyumcu M.S. Dapagliflozin May Protect Against Doxorubicin-Induced Cardiotoxicity. Anatol J Cardiol. 2023 ;27(6):339-347. doi:10.14744/AnatolJCardiol.2023.2825.
-
5Academic Journal
Authors: G. Beketova, N. Savychuk, A. Savychuk
Source: Здоров'я суспільства-Zdorov'a suspil'stva; Том 5, № 1-2 (2016); 24-36
Health of Society; Том 5, № 1-2 (2016); 24-36
Здоровье общества-Zdorov'a suspil'stva; Том 5, № 1-2 (2016); 24-36Subject Terms: 03 medical and health sciences, експериментальна модель на лабораторних тваринах, кандидоз порожнини рота, рецидивуючий кандидоз, патоморфологічні зміни, лабораторні маркери постінфекційного імунодефіциту, 0302 clinical medicine, экспериментальная модель на лабораторных животных, кандидоз полости рта, рецидивирующий кандидоз, патоморфологические изменения, лабораторные маркеры постинфекционного иммунодефицита, experimental model in laboratory animals, oral candidiasis, chronic candidiasis, pathological changes postinfection laboratory markers of immune deficiency, 3. Good health
File Description: application/pdf
-
6Academic Journal
Authors: A. P. Sazonova, Yu. P. Milyutina, O. N. Bespalova, O. V. Pachuliia, I. V. Zalozniaia, A. V. Korenevsky, А. П. Сазонова, Ю. П. Милютина, О. Н. Беспалова, О. В. Пачулия, И. В. Залозняя, А. В. Кореневский
Source: Obstetrics, Gynecology and Reproduction; Vol 18, No 5 (2024); 658–666 ; Акушерство, Гинекология и Репродукция; Vol 18, No 5 (2024); 658–666 ; 2500-3194 ; 2313-7347
Subject Terms: ГГЦ, 5-methyltetrahydrofolate, 5-MTHF, experimental model, folate cycle, hyperhomocysteinemia, HHC, 5-метилтетрагидрофолат, экспериментальная модель, фолатный цикл, гипергомоцистеинемия
File Description: application/pdf
Relation: https://www.gynecology.su/jour/article/view/2227/1257; Seremak-Mrozikiewicz A. Metafolin – alternative for folate deficiency supplementation in pregnant women. Ginekol Pol. 2013;84(7):641–6. https://doi.org/10.17772/gp/1618.; Cochrane K.M., Mayer C., Devlin A.M. et al. Is natural (6S)-5-methyltetrahydrofolic acid as effectiveas synthetic folic acid in increasing serum and red blood cell folate concentrations during pregnancy? A proof-of-concept pilot study. Trials. 2020;21(1):380. https://doi.org/10.1186/s13063-020-04320-3.; Pietrzik K., Bailey L., Shane B. Folic acid and L-5-methyltetrahydrofolate: comparison of clinical pharmacokinetics and pharmacodynamics. Clin Pharmacokinet. 2010;49(8):535–48. https://doi.org/10.2165/11532990-000000000-00000.; Prevention of neural tube defects: results of the Medical Research Council Vitamin Study. Lancet. 1991;338(8760):131–7. https://doi.org/10.1016/0140-6736(91)90133-A.; Czeizel A.E., Dudas I., Paput L., Banhidy F. Prevention of neural-tube defects with periconceptional folic acid, methylfolate, or multivitamins? Ann Nutr Metab. 2011;58(4):263–71. https://doi.org/10.1159/000330776.; U.S. Preventive Services Task Force. Folic acid for the prevention of neural tube defects: U.S. Preventive Services Task Force recommendation statement. Ann Intern Med. 2009;150(9):626–31. https://doi.org/10.7326/0003-4819-150-9-200905050-00009.; Quinn M., Halsey J., Sherliker P. et al. Global heterogeneity in folic acid fortification policies and implications for prevention of neural tube defects and stroke: a systematic review. ЕClinicalMedicine. 2023;67:102366. https://doi.org/10.1016/j.eclinm.2023.102366.; Tang J.S., Cait A., White R.M. et al. MR1-dependence of unmetabolized folic acid side-effects. Front Immunol. 2022;3:946713. https://doi.org/10.3389/fimmu.2022.946713.; Kalmbach R., Paul L., Selhub J. Determination of unmetabolized folic acid in human plasma using affinity HPLC. Am J Clin Nutr. 2011;94(1):343S–347S. https://doi.org/10.3945/ajcn.111.013433.; Chen P., Tang L., Song Y. et al. Association of folic acid dosage with circulating unmetabolized folic acid in Chinese adults with H-type hypertension: a multicenter, double-blind, randomized controlled trial. Front Nutr. 2023;10:1191610. https://doi.org/10.3389/fnut.2023.1191610.; Dai C., Fei Y., Li J. A novel review of homocysteine and pregnancy complications. BioMed Res Int. 2021;2021:6652231. https://doi.org/10.1155/2021/6652231.; Clare C.E., Brassington A.H., Kwong W.Y., Sinclair K.D. One-carbon metabolism: linking nutritional biochemistry to epigenetic programming of long-term development. Annu Rev Anim Biosci. 2019;7:263–87. https://doi.org/10.1146/annurev-animal-020518-115206.; Visentin M., Diop-Bove N., Zhao R., Goldman I.D. The intestinal absorption of folates. Annu Rev Physiol. 2014;76:251–74. https://doi.org/10.1146/annurev-physiol-020911-153251.; Duthie S.J., Narayanan S., Blum S. et al. Folate deficiency in vitro induces uracil misincorporation and DNA hypomethylation and inhibits DNA excision repair in immortalized normal human colon epithelial cells. Nutr Cancer. 2000;37(2):245–51. https://doi.org/10.1207/S15327914NC372_18.; Kelly P., McPartlin J., Goggins M. et al. Unmetabolized folic acid in serum: acute studies in subjects consuming fortified food and supplements. Am J Clin Nutrition. 1997;65(6):1790–5. https://doi.org/10.1093/ajcn/65.6.1790.; Shane B. Folate chemistry and metabolism. In: Folate in health and disease. Ed. L. Bailey. N.Y.: Marcel Dekker, 2017. 1–22.; Matherly L.H., Goldman D.I. Membrane transport of folates. Vitam Horm. 2003;66:403–56. https://doi.org/10.1016/s0083-6729(03)01012-4.; Koury M.J., Ponka P. New insights into erythropoiesis: the roles of folate, vitamin B12, andiron. Annu Rev Nutr. 2004;24:105–31. https://doi.org/10.1146/annurev.nutr.24.012003.132306.; Керкешко Г.О., Арутюнян А.В., Аржанова О.Н., Милютина Ю.П. Оптимизация терапии фолатами при осложнениях беременности. Журнал акушерства и женских болезней. 2013;62(6):25–36.; Hoss G.R.W., Sperb-Ludwig F., Schwartz I.V.D, Blom H.J. Classical homocystinuria: a common inborn error of metabolism? An epidemiological study based on genetic databases. Mol Genet Genomic Med. 2020;8(6):1214. https://doi.org/10.1002/mgg3.1214.; Korokin M.V., Pokrovskiy M.V., Novikov O.O. et al. A model of hyperhomocysteine-induced endothelial dysfunction in rats. Bull Exp Biol Med. 2011;152(2):213–5. https://doi.org/10.1007/s10517-011-1491-9.; Zhuo J.M., Praticò D. Normalization of hyperhomocysteinemia improves cognitive deficits and ameliorates brain amyloidosis of a transgenic mouse model of Alzheimer’s disease. FASEB J. 2010;24(10):3895–902. https://doi.org/10.1096/fj.10-161828.; Милютина Ю.П., Пустыгина А.В., Щербицкая А.Д. и др. Сравнение показателей окислительного стресса в сыворотке крови крыс при различных моделях гипергомоцистеинемии. Acta Biomedica Scientifica. 2016;1(3–2):120–3.; Зильфян В.Н., Кумкумаджян В.А. Новый метод взятия крови у мелких лабораторных животных. Журнал экспериментальной и клинической медицины. 1970:10(4):12–4.; https://www.gynecology.su/jour/article/view/2227
-
7Academic Journal
Authors: A. Y. Dubensky, I. A. Ryzhkov, K. N. Lapin, S. N. Kalabushev, L. A. Varnakova, Z. I. Tsokolaeva, V. T. Dolgikh, A. V. Grechko, А. Ю. Дубенский, И. А. Рыжков, К. Н. Лапин, С. Н. Калабушев, Л. А. Варнакова, З. И. Цоколаева, В. Т. Долгих, А. В. Гречко
Source: General Reanimatology; Том 20, № 2 (2024); 55-64 ; Общая реаниматология; Том 20, № 2 (2024); 55-64 ; 2411-7110 ; 1813-9779
Subject Terms: крыса, asphyxia, resuscitation measures, experimental model, rat, асфиксия, реанимационные мероприятия, экспериментальная модель
File Description: application/pdf
Relation: https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/2387/1815; https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/2387/1822; Nolan J. P., Sandroni C., Böttiger B. W., Cariou A., Cronberg T., Friberg H., Genbrugge C., et al. European Resuscitation Council and European Society of Intensive Care Medicine guidelines 2021: post-resuscitation care. Intensive Care Med. 2021; 47 (4): 369–421. DOI:10.1007/s00134-02106368-4. PMID: 33765189.; DiLibero J., Misto K. Outcomes of in-hospital cardiac arrest. Crit Care Nurs Cli North Am. 2021; 33 (3): 343–356. DOI:10.1016/j.cnc.2021.05.009. PMID: 34340795; Andersen LW, Holmberg M. J., Berg K. M., Donnino M. W., Granfeldt A. In-hospital cardiac arrest: a review. JAMA. 2019; 321 (12): 1200–1210. DOI:10.1001/jama.2019.1696. PMID: 30912843.; Николовски С. С., Божич Н. Б., Фишер З., Лазич А. Д., Тиянич Е. З., Раффэй В. И. Влияние сердечно-легочной реанимации с поддержкой диспетчером скорой медицинской помощи на восстановление эффективного кровообращения и краткосрочную выживаемость. Общая реаниматология. 2021; 17 (5): 52–64. DOI:10.15360/1813-9779-2021-5-52-64.; Virani S. S., Alonso A., Benjamin E. J., Bittencourt M. S., Callaway C. W., Carson A. P., Chamberlain A. M., et al. Heart disease and stroke statistics-2020 update: a report from the American Heart Association. Circulation. 2020; 141 (9): e139–e596. DOI:10.1161/CIR.0000000000000757. PMID: 31992061; Patel K. K., Spertus J. A., Khariton Y., Tang Y., Curtis L. H., Chan P. S., AHA Get with the Guidelines — resuscitation investigators. Association between prompt defibrillation and epinephrine treatment with long-term survival after inhospital cardiac arrest. Circulation. 2018; 137 (19): 2041–2051. DOI:10.1161/CIRCULATIONAHA.117.030488. PMID: 29279412.; Мороз В. В., Бобринская И. Г., Васильев В. Ю., Кузовлев А. Н., Перепелица С. А., Смелая Т. В., Спиридонова Е. А., с соавт. Сердечно-легочная реанимация. Москва: ФНКЦ РР, МГМСУ, НИИОР. 2017. ISBN 978-5-9500558-0-5.; Неговский В. А. Очерки по реаниматологии. Москва: Медицина; 1986.; Rajan S., Folke F., Hansen S. M., Hansen C. M., Kragholm K., Gerds T. A., Lippert F. K., et al. Incidence and survival outcome according to heart rhythm during resuscitation attempt in out-of-hospital cardiac arrest patients with presumed cardiac etiology. Resuscitation. 2017; 114: 157–163. DOI:10.1016/j.resuscitation.2016.12.021. PMID: 28087286.; Varvarousis D., Varvarousi G., Iacovidou N., D’Aloja E., Gulati A., Xanthos T. The pathophysiologies of asphyxial vs dysrhythmic cardiac arrest: implications for resuscitation and post-event management. Am J Emerg Med. 2015; 33 (9): 1297–304. DOI:10.1016/j.ajem.2015.06.066. PMID: 26233618; Брагина Н. В., Маркова Т. Г., Горбачев В. И. Постреанимационная болезнь. Анестезиология и реаниматология. 2021; (4): 140–150. DOI:10.17116/anaesthesiology2021041140.; Yu S., Wu C., Zhu Y., Diao M., Hu W. Rat model of asphyxia-induced cardiac arrest and resuscitation. Front Neurosci. 2023; 16: 1087725. DOI:10.3389/fnins.2022.1087725. PMID: 36685224.; Katz L., Ebmeyer U., Safar P., Radovsky A., Neumar R. Outcome model of asphyxial aardiac arrest in rats. J Cereb Blood Flow Metab. 1995; 15 (6): 1032–1039. DOI:10.1038/jcbfm.1995.129. PMID: 7593335; Dave K. R., Raval A. P., Prado R., Katz LM., Sick T. J., Ginsberg M.D., Busto R., et al. Mild cardiopulmonary arrest promotes synaptic dysfunction in rat hippocampus. Brain Res. 2004; 1024 (1–2): 89–96. DOI:10.1016/j.brainres.2004.07.050. PMID: 15451369.; Hu T., Wang J., Wang S., Li J., Chen B., Zuo F, Zhang L., et al. Effects of the duration of postresuscitation hyperoxic ventilation on neurological outcome and survival in an asphyxial cardiac arrest rat model. Sci Rep. 2019; 9 (1): 16500. DOI:10.1038/s41598-019-52477-y. PMID: 31712629.; Дубенский А. Ю., Рыжков И. А., Лапин К. Н., Цоколаева З. И., Калабушев С. Н., Варнакова Л. А., Долгих В. Т., с соавт. Влияние вида анестезии на показатели кровообращения у крыс. Вестник СурГУ. Медицина. 2023; 16 (2): 79–86. DOI:10.35266/2304-9448-2023-2-79-86.; Huang K., Wang Z., Gu Y., Hu Y., Ji Z., Wang S., Lin Z.,et al. Glibenclamide Is comparable to target temperature management in improving survival and neurological outcome after asphyxial cardiac arrest in rats. J Am Heart Assoc. 2016; 5 (7): e003465. DOI:10.1161/JAHA.116.003465. PMID: 27413041.; Лапин К. Н., Рыжков И. А., Мальцева В. А., Удут Е. В. Катетеризация сосудов мелких лабораторных животных при проведении биомедицинских исследований: технологические аспекты метода: обзор. Бюллетень сибирской медицины. 2021; 20 (3): 168–181. DOI:10.20538/1682-0363-2021-3-168-181.; Wang-Fischer Y. (ed.). Manual of stroke models in rat. Boca Raton: CRC Press; 2009: 332.; Keilhoff G., Esser T., Titze M., Ebmeyer U., Schild L. Highpotential defense mechanisms of neocortex in a rat model of transient asphyxia induced cardiac arrest. Brain Res. 2017; 1674: 42–54. DOI:10.1016/j.brainres.2017.08.018. PMID: 28827077.; Tungalag T., Yoo Y.-J., Tae H.-J., Yang D. K. Olanzapineinduced therapeutic hypothermia attenuates renal injury in rats after asphyxial cardiac arrest and resuscitation. Antioxidants (Basel). 2022; 11 (3): 443. DOI:10.3390/antiox11030443. PMID: 35326094.; Zhou X., Liu,Y., Huang Y., Zhu S., Zhu J., Wang R. Hypertonic saline infusion suppresses apoptosis of hippocampal cells in a rat model of cardiopulmonary resuscitation. Sci. Rep. 2017; 7 (1): 5783. DOI:10.1038/s41598-017-05 919-4. PMID: 28724904.; Murakami M., Niwa H., Kushikata T., Watanabe H., Hirota K, Ono K., Ohba T. Inhalation anesthesia is preferable for recording rat cardiac function using an electrocardiogram. Bio Pharm Bull. 2014; 37 (5): 834–839. DOI:10.1248/bpb.b1400012. PMID: 24790005.; Vognsen M., Fabian-Jessing B. K., Secher N., Løfgren B., Dezfulian C., Andersen L. W., Granfeldt A. Contemporary animal models of cardiac arrest: a systematic review. Resuscitation. 2017; 113: 115–123. DOI:10.1016/j.resuscitation.2017.01.024. PMID: 28214538.; Uray T., Dezfulian C., Palmer A. A., Miner K. M., Leak R. K., Stezoski J. P., Janesko-Feldman K. Cardiac arrest induced by asphyxia versus ventricular fibrillation elicits comparable early changes in cytokine levels in the rat brain, heart, and serum. J Am Heart Assoc. 2021; 10 (5): e018657. DOI:10.1161/JAHA.120.018657. PMID: 33599149.; Nolan J. P., Soar J., Cariou A., Cronberg T., Moulaert V. R.M., Deakin C. D., Bottiger B. W. European resuscitation Council and European Society of Intensive Care Medicine guidelines for post-resuscitation care 2015: Section 5 of the European resuscitation Council guidelines for post-resuscitation care 2015. Resuscitation. 2015; 95: 202–222. DOI:10.1016/j.resuscitation.2015.07.018. PMID: 26477702.; Diao M.-Y., Zheng J., Shan Y., Xi S., Zhu Y., Hu W., Lin Z. Hypothermia prevents hippocampal oxidative stress and apoptosis via the GSK-3beta/Nrf2/HO-1 signaling pathway in a rat model of cardiac arrest-induced brain damage. Neurol. Res. 2020; 42 (9): 773–782. DOI:10.1080/01616412. 2020.177 4210. PMID: 32529954.; Долгих В. Т., Говорова Н. В., Орлов Ю. П., Корпачева О. В., Доровских Г. Н., Ершов А. В. Патофизиологические аспекты гипероксии в практике анестезиолога реаниматолога (мини-обзор). Общая реаниматология. 2017; 13 (3): 83–93. DOI:10.15360/1813-9779-2017-3-83-93.; https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/2387
-
8Academic Journal
Authors: L. N. Slatova, T. A. Fedorina, E. P. Shatunova, Л. Н. Слатова, Т. А. Федорина, Е. П. Шатунова
Source: Siberian Journal of Clinical and Experimental Medicine; Том 39, № 1 (2024); 18-27 ; Сибирский журнал клинической и экспериментальной медицины; Том 39, № 1 (2024); 18-27 ; 2713-265X ; 2713-2927
Subject Terms: изолированное перфузируемое сердце, myocardium, «heart-on-chip», experimental model, animals, cellular models, isolated perfused heart, миокард, «сердце-на-чипе», экспериментальная модель, животные, клеточные модели
File Description: application/pdf
Relation: https://www.sibjcem.ru/jour/article/view/2180/928; Федеральная служба государственной статистики. Число умерших по основным классам причин смерти. URL: https://rosstat.gov.ru/folder/12781 (15.04.2023).; Федеральная служба государственной статистики. Заболеваемость населения по основным классам болезней. URL: https://rosstat.gov.ru/folder/13721 (15.04.2023).; Buja L.M. Pathobiology of myocardial ischemia and reperfusion injury: models, modes, molecular mechanisms, modulation, and clinical applications. Cardiol. Rev. 2023;31(5):252–264. DOI:10.1097/CRD.0000000000000440.; Ford T.J., Corcoran D., Berry C. Stable coronary syndromes: pathophysiology, diagnostic advances and therapeutic need. Heart. 2018;104(4):284–292. DOI:10.1136/heartjnl-2017-311446.; Lindsey M.L., Bolli R., Canty J.M. Jr., Du X.J., Frangogiannis N.G., Frantz S. et al. Guidelines for experimental models of myocardial ischemia and infarction. Am. J. Physiol. Heart Circ. Physiol. 2018;314(4):H812–H838. DOI:10.1152/ajpheart.00335.2017.; Padro T., Manfrini O., Bugiardini R., Canty J., Cenko E., De Luca G. et al. ESC Working Group on Coronary Pathophysiology and Microcirculation position paper on “coronary microvascular dysfunction in cardiovascular disease”. Cardiovasc. Res. 2020;116(4):741–755. DOI:10.1093/cvr/cvaa003.; Van der Velden J., Asselbergs F.W., Bakkers J., Batkai S., Bertrand L., Bezzina C.R. et al. Animal models and animal-free innovations for cardiovascular research: current status and routes to be explored. Consensus document of the ESC Working Group on Myocardial Function and the ESC Working Group on Cellular Biology of the Heart. Cardiovasc. Res. 2022;118(15):3016–3051. DOI:10.1093/cvr/cvab370.; Pitoulis F.G., Watson S.A., Perbellini F., Terracciano C.M. Myocardial slices come to age: an intermediate complexity in vitro cardiac model for translational research. Cardiovasc. Res. 2020;116(7):1275–1287. DOI:10.1093/cvr/cvz341.; Shan X., Lv Z.Y., Yin M.J., Chen J., Wang J., Wu Q.N. The protective effect of cyanidin-3-glucoside on myocardial ischemia-reperfusion injury through ferroptosis. Oxid. Med. Cell. Longev. 2021;2021:8880141. DOI:10.1155/2021/8880141.; Chen T., Vunjak-Novakovic G. In vitro models of ischemia-reperfusion injury. Regen. Eng. Transl. Med. 2018;4(3):142–153. DOI:10.1007/s40883-018-0056-0.; Madonna R., Van Laake L.W., Botker H.E., Davidson S.M., De Caterina R., Engel F.B. et al. ESC Working Group on Cellular Biology of the Heart: position paper for Cardiovascular Research: tissue engineering strategies combined with cell therapies for cardiac repair in ischaemic heart disease and heart failure. Cardiovasc. Res. 2019;115(3):488–500. DOI:10.1093/cvr/cvz010.; Афоничева П.К., Буляница А.Л., Евстрапов А.А. «Орган-на-чипе» – материалы и методы изготовления (обзор). Научное приборостроение. 2019;29(4):3–18. DOI:10.18358/np-29-4-i318.; Yang Q., Xiao Z., Lv X., Zhang T., Liu H. Fabrication and Biomedical Applications of Heart-on-a-chip. Int. J. Bioprint. 2021;7(3):370. DOI:10.18063/ijb.v7i3.370.; Халимова А.А., Коваленко А.В., Парамонов Г.В. «Органы-на-чипе»: оценка перспектив использования в фармацевтической отрасли. Медико-фармацевтический журнал «Пульс». 2022;24(5):81–87. DOI:10.26787/nydha-2686-6838-2022-24-5-81-87.; Häkli M., Kreutzer J., Mäki A.J., Välimäki H., Lappi H., Huhtala H. et al. Human induced pluripotent stem cell-based platform for modeling cardiac ischemia. Sci. Rep. 2021;11(1):4153. DOI:10.1038/s41598-021-83740-w.; Das S.L., Sutherland B.P., Lejeune E., Eyckmans J, Chen C.S. Mechanical response of cardiac microtissues to acute localized injury. Am. J. Physiol. Heart Circ. Physiol. 2022;323(4):H738–H748. DOI:10.1152/ajpheart.00305.2022.; Budhathoki S., Graham C., Sethu P., Kannappan R. Engineered aging cardiac tissue chip model for studying cardiovascular disease. Cells Tissues Organs. 2022;211(3):348–359. DOI:10.1159/000516954.; Торопова Я.Г., Осяев Н.Ю., Мухамадияров Р.А. Перфузия изолированного сердца методами Лангендорфа и Нилли: особенности техники и применение в современных исследованиях. Трансляционная медицина. 2014;4:34–39. DOI:10.18705/2311-4495-2014-0-4-34-39.; Байкалов Г.И., Князев Р.А., Ершов К.И., Бахарева К.И., Солдатова М.С., Мадонов П.Г. Изучение влияния иммобилизированных субтилизинов на коронарный кровоток в эксперименте на изолированном сердце крысы. Journal of Siberian Medical Sciences. 2021;3:56–65. DOI:10.31549/2542-1174-2021-3-56-65.; Минасян С.М., Галагудза М.М., Сонин Д.Л., Боброва Е.А., Зверев Д.А., Королев Д.В. и др. Методика перфузии изолированного сердца крысы. Регионарное кровообращение и микроциркуляция. 2009;8(4):54–59.; Купцова А.М., Бугров Р.К., Зиятдинова Н.И., Зефиров Т.Л. Изолированное по Лангендорфу сердце крыс после острого экспериментального инфаркта миокарда. Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 2022;173(6):703–706. DOI:10.47056/0365-9615-2022-173-6-703-706.; Сенокосова Е.А., Крутицкий С.С., Груздева О.В. Антонова Л.В., Скулачев М.В., Григорьев Е.В. Исследование антиоксидантного эффекта митохондриально-направленного антиоксиданта SkQ1 на модели изолированного сердца крысы. Общая реаниматология. 2022;18(4):36–44. DOI:10.15360/1813-9779-2022-4-36-44.; Schechter M.A., Southerland K.W., Feger B.J., Linder D.Jr., Ali A.A., Njoroge L. et al. An isolated working heart system for large animal models. J. Vis. Exp. 2014;(88):51671. DOI:10.3791/51671.; Ronzhina M., Stracina T., Lacinova L., Ondacova K., Pavlovicova M., Marsanova L. et al. Di-4-ANEPPS Modulates Electrical Activity and Progress of Myocardial Ischemia in Rabbit Isolated Heart. Front. Physiol. 2021;12:667065. DOI:10.3389/fphys.2021.667065.; Wang Z., Yao M., Jiang L., Wang L., Yang Y., Wang Q. et al. Dexmedetomidine attenuates myocardial ischemia/reperfusion-induced ferroptosis via AMPK/GSK-3β/Nrf2 axis. Biomed. Pharmacother. 2022:113572. DOI:10.1016/j.biopha.2022.113572.; Rahman A., Li Y., Chan T.K., Zhao H., Xiang Y., Chang X. et al. Large animal models of cardiac ischemia-reperfusion injury: Where are we now? Zool. Res. 2023;44(3):591–603. DOI:10.24272/j.issn.2095-8137.2022.487.; Banstola A., Reynolds J.N.J. The sheep as a large animal model for the investigation and treatment of human disorders. Biology (Basel). 2022;11(9):1251. DOI:10.3390/biology11091251.; Isorni M.A., Casanova A., Piquet J., Bellamy V., Pignon C., Puymirat E. et al. Comparative analysis of methods to induce myocardial infarction in a closed-chest rabbit model. Biomed. Res. Int. 2015;2015:893051. DOI:10.1155/2015/893051.; Özkaynak B., Şahin I., Özenc E., Subaşı C., Oran D.S., Totoz T. et al. Mesenchymal stem cells derived from epicardial adipose tissue reverse cardiac remodeling in a rabbit model of myocardial infarction. Eur. Rev. Med. Pharmacol. Sci. 2021;25(12):4372–4384. DOI:10.26355/eurrev_202106_26147.; Contessotto P., Spelat R., Ferro F., Vysockas V., Krivickienė A., Jin C. et al. Reproducing extracellular matrix adverse remodelling of non-ST myocardial infarction in a large animal model. Nat. Commun. 2023;14(1):995. DOI:10.1038/s41467-023-36350-1.; Morrissey P.J., Murphy K.R., Daley J.M., Schofield L., Turan N.N., Arunachalam K. et al. A novel method of standardized myocardial infarction in aged rabbits. Am. J. Physiol. Heart Circ. Physiol. 2017;312(5):H959–H967. DOI:10.1152/ajpheart.00582.2016.; Гущин Я.А. Сравнительная анатомия сердца человека и экспериментальных животных. Лабораторные животные для научных исследований. 2021;1:56–67. DOI:10.29296/2618723X-2021-01-06.; Lindsey M.L., Brunt K.R., Kirk J.A., Kleinbongard P., Calvert J.W., de Castro Brás L.E. et al. Guidelines for in vivo mouse models of myocardial infarction. Am. J. Physiol. Heart Circ. Physiol. 2021;321(6):H1056– H1073. DOI:10.1152/ajpheart.00459.2021.; Sun Q., Wang K.K., Pan M., Zhou J.P., Qiu X.T., Wang Z.Y. et al. A minimally invasive approach to induce myocardial infarction in mice without thoracotomy. J. Cell Mol. Med. 2018;22(11):5208–5219. DOI:10.1111/jcmm.13708.; Colbert C.M., Shao J., Hollowed J.J., Currier J.W., Ajijola O.A., Fishbein G.A. et al. 3D-printed coronary implants are effective for percutaneous creation of swine models with focal coronary stenosis. J. Cardiovasc. Transl. Res. 2020;13(6):1033–1043. DOI:10.1007/s12265-020-10018-3.; Kleinbongard P., Heusch G. A fresh look at coronary microembolization. Nat. Rev. Cardiol. 2022;19(4):265–280. DOI:10.1038/s41569-021-00632-2.; Bikou O., Tharakan S., Yamada K.P., Kariya T., Gordon A., Miyashita S. et al. A novel large animal model of thrombogenic coronary microembolization. Front. Cardiovasc. Med. 2019;6:157. DOI:10.3389/fcvm.2019.00157.; Wang W., Ye S., Zhang L., Jiang Q., Chen J., Chen X. et al. Granulocyte colony-stimulating factor attenuates myocardial remodeling and ventricular arrhythmia susceptibility via the JAK2-STAT3 pathway in a rabbit model of coronary microembolization. BMC Cardiovasc. Disord. 2020;20(1):85. DOI:10.1186/s12872-020-01385-5.; Абзалилов Т.А., Нурланова С.Н., Баширов И.И., Крылова И.Д., Корунас В.И., Мочалов К.С. и др. Экспериментальное обоснование основных методов реперфузии миокарда с позиции современных представлений о развитии и течении острого коронарного синдрома. Медицинский вестник Башкортостана. 2021;16(6):65–70.; Yin X., Yin X., Pan X., Zhang J., Fan X., Li J. et al. Post-myocardial infarction fibrosis: Pathophysiology, examination, and intervention. Front. Pharmacol. 2023;14:1070973. DOI:10.3389/fphar.2023.; Feng Y., Hemmeryckx B., Frederix L., Lox M., Wu J., Heggermont W. et al. Monitoring reperfused myocardial infarction with delayed left ventricular systolic dysfunction in rabbits by longitudinal imaging. Quant. Imaging Med. Surg. 2018;8(8):754–769. DOI:10.21037/qims.2018.09.05.; Spannbauer A., Mester-Tonczar J., Traxler D., Kastner N., Zlabinger K., Hašimbegović E. et al. Large animal models of cell-free cardiac regeneration. Biomolecules. 2020;10(10):1392. DOI:10.3390/biom10101392.; Robles J.C., Heaps C.L. Adaptations of the endothelin system after exercise training in a porcine model of ischemic heart disease. Microcirculation. 2015;22(1):68–78. DOI:10.1111/micc.12174.; Sorop O., van de Wouw J., Chandler S., Ohanyan V., Tune J.D., Chilian W.M. et al. Experimental animal models of coronary microvascular dysfunction. Cardiovasc. Res. 2020;116(4):756–770. DOI:10.1093/cvr/cvaa002.; Kloner R.A. Stunned and hibernating myocardium: Where are we nearly 4 decades later? J. Am. Heart Assoc. 2020;9(3):e015502. DOI:10.1161/JAHA.119.015502.; Галагудза М.М., Сонин Д.Л., Александров И.В. Гибернация миокарда: молекулярные механизмы, клиническая значимость и методы диагностики. Регионарное кровообращение и микроциркуляция. 2019;18(3):9–15. DOI:10.24884/1682-6655-2019-18-3-9-15.; Wang X., Shen X., Weil B.R., Young R.F., Canty J.M., Qu J. Quantitative proteomic and phosphoproteomic profiling of ischemic myocardial stunning in swine. Am. J. Physiol. Heart Circ. Physiol. 2020;318(5):H1256– H1271. DOI:10.1152/ajpheart.00713.2019.; Weil B.R., Suzuki G., Canty J.M.Jr. Transmural variation in microvascular remodeling following percutaneous revascularization of a chronic coronary stenosis in swine. Am. J. Physiol. Heart Circ. Physiol. 2020;318(3):H696–H705. DOI:10.1152/ajpheart.00502.2019.; Duerr G.D., Dewald D., Schmitz E.J., Verfuerth L., Keppel K., Peigney C. et al. Metallothioneins 1 and 2 modulate inflammation and support remodeling in ischemic cardiomyopathy in mice. Mediators Inflamm. 2016;2016:7174127. DOI:10.1155/2016/7174127.; Ashokprabhu N.D., Quesada O., Alvarez Y.R., Henry T.D. INOCA/ ANOCA: Mechanisms and novel treatments. Am. Heart. J. Plus. 2023;30:100302. DOI:10.1016/j.ahjo.2023.100302.; Van de Wouw J., Sorop O., van Drie R.W.A., van Duin R.W.B., Nguyen I.T.N., Joles J.A. et al. Perturbations in myocardial perfusion and oxygen balance in swine with multiple risk factors: a novel model of ischemia and no obstructive coronary artery disease. Basic Res. Cardiol. 2020;115(2):21. DOI:10.1007/s00395-020-0778-2.; Трисветова Е.Л. Коронарная микрососудистая дисфункция: эпидемиология, клиника, Диагностика и лечение. Рациональная фармакотерапия в кардиологии. 2023;19(2):186–196. DOI:10.20996/1819-6446-2023-04-02.; Schmidt A., Balitzki J., Grmaca L., Vogel J., Boehme P., Boden K. et al. “Digital biomarkers” in preclinical heart failure models – a further step towards improved translational research. Heart Fail. Rev. 2023;28(1):249– 260. DOI:10.1007/s10741-022-10264-4.; Sadraddin H., Gaebel R., Skorska A., Lux C.A., Sasse S., Ahmad B. et al. CD271+ human mesenchymal stem cells show antiarrhythmic effects in a novel murine infarction model. Cells. 2019;8(12):1474. DOI:10.3390/cells8121474.; Lee Y.T., Lin H.Y., Chan Y.W.F., Li K.H.C., To O.T.L., Yan B.P. et al. Mouse models of atherosclerosis: a historical perspective and recent advances. Lipids Health Dis. 2017;16(1):12. DOI:10.1186/s12944-016-0402-5.; Samidurai A., Ockaili R., Cain C., Roh S.K., Filippone S.M., Kraskauskas D. et al. Preclinical model of type 1 diabetes and myocardial ischemia/reperfusion injury in conscious rabbits-demonstration of cardioprotection with rapamycin. STAR Protoc. 2021;2(3):100772. DOI:10.1016/j.xpro.2021.100772.; Bøtker H.E., Hausenloy D., Andreadou I., Antonucci S., Boengler K., Davidson S.M. et al. Practical guidelines for rigor and reproducibility in preclinical and clinical studies on cardioprotection. Basic Res. Cardiol. 2018;113(5):39. DOI:10.1007/s00395-018-0696-8.; Ferrero J.M., Gonzalez-Ascaso A., Matas J.F.R. The mechanisms of potassium loss in acute myocardial ischemia: New insights from computational simulations. Front. Physiol. 2023;14:1074160. DOI:10.3389/fphys.2023.1074160.; Musuamba F.T., Skottheim Rusten I., Lesage R., Russo G., Bursi R., Emili L. et al. Scientific and regulatory evaluation of mechanistic in silico drug and disease models in drug development: Building model credibility. CPT Pharmacometrics Syst. Pharmacol. 2021;10(8):804–825. DOI:10.1002/psp4.12669.; Воропаева О.Ф. Цгоев Ч.А., Шокин Ю.И. Численное моделирование воспалительной фазы инфаркта миокарда. Прикладная механика и техническая физика. 2021;62(3):105–117. DOI:10.15372/PMTF20210310.; https://www.sibjcem.ru/jour/article/view/2180
-
9Academic Journal
Authors: E. M. Frantsiyants, I. V. Kaplieva, E. A. Sheiko, E. I. Surikova, E. O. Vasileva, I. V. Neskubina, M. A. Gusareva, O. V. Bykadorova, L. K. Trepitaki, N. D. Cheryarina, E. V. Serdyukova, A. A. Vereskunova, Е. М. Франциянц, И. В. Каплиева, Е. А. Шейко, Е. И. Сурикова, Е. О. Васильева, И. В. Нескубина, М. А. Гусарева, О. В. Быкадорова, Л. К. Трепитаки, Н. Д. Черярина, Е. В. Сердюкова, А. А. Верескунова
Contributors: The work was carried out within the framework of planned research work at the expense of federal budget funds allocated for the implementation of the State assignment, Работа выполнена в рамках плановой НИР за счет средств федерального бюджета, выделяемых на выполнение Государственного задания
Source: Siberian Journal of Clinical and Experimental Medicine; Том 39, № 3 (2024); 156-163 ; Сибирский журнал клинической и экспериментальной медицины; Том 39, № 3 (2024); 156-163 ; 2713-265X ; 2713-2927
Subject Terms: экспериментальная модель, hyperthyroidism, comorbid pathology, cardiac electrophysiology, electrocardiography, mice, experimental model, гипертиреоз, коморбидная патология, электрофизиология сердца, электрокардиография, мыши
File Description: application/pdf
Relation: https://www.sibjcem.ru/jour/article/view/2437/1005; Gauthier B.R., Sola-García A., Cáliz-Molina M.Á., Lorenzo P.I., Cobo-Vuilleumier N., Capilla-González V. et al. Thyroid hormones in diabetes, cancer, and aging. Aging Cell. 2020;19(11):e13260. DOI:10.1111/acel.13260.; Razvi S., Jabbar A., Pingitore A., Danzi S., Biondi B., Klein I. et al. Thyroid hormones and cardiovascular function and diseases. J. Am. Coll. Cardiol. 2018;71(16):1781–1796. DOI:10.1016/j.jacc.2018.02.045.; Чаулин А.М., Григорьева Ю.В. Современные представления о сердечно-сосудистых эффектах гипо- и гипертиреоза. Современные проблемы науки и образование. Сетевое издание. 2021;(6). DOI:10.17513/spno.31202.; Krashin E., Piekiełko-Witkowska A., Ellis M., Ashur-Fabian O. Thyroid hormones and cancer: A comprehensive review of preclinical and clinical studies. Front. Endocrinol. (Lausanne). 2019;10:59. DOI:10.3389/fendo.2019.00059.; Кит О.И., Каплиева И.В., Франциянц Е.М., Трепитаки Л.К., Погорелова Ю.А. Особенности тиреоидного статуса при экспериментальном метастазировании в печень. Экспериментальная и клиническая гастроэнтерология. 2016;(11):53–58. URL: https://www.nogr.org/jour/article/view/324/324 (19.08.2024).; Goemann I.M., Romitti M., Meyer E.L.S., Wajner S.M., Maia A.L. Role of thyroid hormones in the neoplastic process: an overview. Endocr. Relat. Cancer. 2017;24(11):R367–R385. DOI:10.1530/ERC-17-0192.; Reddy V., Taha W., Kundumadam S., Khan M. Atrial fibrillation and hyperthyroidism: A literature review. Indian Heart J. 2017;69(4):545–550. DOI:10.1016/j.ihj.2017.07.004.; Locati E.T., Bagliani G., Padeletti L. Normal ventricular repolarization and QT interval: Ionic background, modifiers, and measurements. Card. Electrophysiol. Clin. 2017;9(3):487–513. DOI:10.1016/j.ccep.2017.05.007.; Овсепян А.А., Панченков Д.Н., Прохорчук Е.Б., Телегин Г.Б., Жигалова Н.А., Голубев Е.П. и др. Моделирование инфаркта миокарда на мышах: методология, мониторинг, патоморфология. Acta Naturae. 2011;3(1):107–115. DOI:10.32607/20758251-2011-3-1-107-115.; Nakamura M., Sadoshima J. Mechanisms of physiological and pathological cardiac hypertrophy. Nat. Rev. Cardiol. 2018;15(7):387–407. DOI:10.1038/s41569-018-0007-y.; Джуманиязова И.Х., Смирнова О.В. Влияние тиреоидных гормонов на электрические и механические параметры сердца. Физиология человека. 2020;46(5):115–125. DOI:10.31857/S0131164620050045.; Takawale A., Aguilar M., Bouchrit Y., Hiram R. Mechanisms and management of thyroid disease and atrial fibrillation: Impact of atrial electrical remodeling and cardiac fibrosis. Cells. 2022;11(24):4047. DOI:10.3390/cells11244047.; Go M.T., George A.M., Tahsin B., Fogelfeld L. Tachycardia in hyperthyroidism: Not so common. PLoS One. 2022;17(9):e0273724. DOI:10.1371/journal.pone.0273724.; McDermott M.T. Hyperthyroidism. Ann. Intern. Med. 2020;172(7):ITC49– ITC64. DOI:10.7326/AITC202004070.; Davis P.J., Leonard J.L., Lin H.Y., Leinung M., Mousa S.A. Molecular basis of nongenomic actions of thyroid hormone. Vitam. Horm. 2018;106:67–96. DOI:10.1016/bs.vh.2017.06.001.; Meijers W.C., Maglione M., Bakker S.J.L., Oberhuber R., Kieneker L.M., de Jong S. et al. Heart failure stimulates tumor growth by circulating factors. Circulation. 2018;138(7):678–691. DOI:10.1161/CIRCULATIONAHA.117.030816.; Awwad L., Aronheim A. Cardiac dysfunction promotes cancer progression via multiple secreted factors. Cancer Res. 2022;82(9):1753–1761. DOI:10.1158/0008-5472.CAN-21-2463.; Avraham S., Abu-Sharki S., Shofti R., Haas T., Korin B., Kalfon R. et al. Early cardiac remodeling promotes tumor growth and metastasis. Circulation. 2020;142(7):670–683. DOI:10.1161/CIRCULATIONAHA.120.046471.; Achlaug L., Awwad L., Langier Goncalves I., Goldenberg T., Aronheim A. Tumor growth ameliorates cardiac dysfunction and suppresses fibrosis in a mouse model for duchenne muscular dystrophy. Int. J. Mol. Sci. 2023;24(16):12595. DOI:10.3390/ijms241612595.; Da Silva I.B., Gomes D.A., Alenina N., Bader M., Dos Santos R.A., Barreto-Chaves M.L.M. Cardioprotective effect of thyroid hormone is mediated by AT2 receptor and involves nitric oxide production via Akt activation in mice. Heart Vessels. 2018;33(6):671–681. DOI:10.1007/s00380-017-1101-5.; https://www.sibjcem.ru/jour/article/view/2437
-
10Academic Journal
Authors: D. T. Kubrava, A. Yu. Medkova, A. Z. Matua, I. G. Kondzariya, A. A. Amichba, Kh. Z. Trapsh, L. V. Gamgiya, S. G. Kulikov, L. N. Sinyashina, Z. Ya. Mikvabiya, G. I. Karataev, Д. Т. Кубрава, А. Ю. Медкова, А. З. Матуа, И. Г. Конджария, А. А. Амичба, Х. З. Трапш, Л. В. Гамгия, С. В. Куликов, Л. Н. Синяшина, З. Я. Миквабия, Г. И. Каратаев
Contributors: This study was funded under State Assignment ‘A clinical trial of an innovative intranasal live vaccine for the prevention of pertussis in adults and a non-clinical study of the safety and immunogenicity of the vaccine in an infant hamadryas baboon model’ (R&D Registry No. 121031700333-6), Работа выполнена в рамках государственного задания «Клиническое исследование инновационной живой вакцины интраназального применения для профилактики коклюша у взрослых и доклиническое изучение ее безопасности и иммуногенности на экспериментальной модели младенцев вида павиана гамадрила», № госрегистрации 121031700333-6
Source: Biological Products. Prevention, Diagnosis, Treatment; Том 24, № 4 (2024); 363-376 ; БИОпрепараты. Профилактика, диагностика, лечение; Том 24, № 4 (2024); 363-376 ; 2619-1156 ; 2221-996X ; 10.30895/2221-996X-2024-24-4
Subject Terms: защитная активность, live pertussis vaccine, intranasal administration, monkeys, hamadryas baboons, Papio hamadryas, experimental model, immunogenicity, safety, protective efficacy, живая коклюшная вакцина, интраназальное применение, обезьяны, павианы гамадрилы, экспериментальная модель, иммуногенность, безопасность
File Description: application/pdf
Relation: https://www.biopreparations.ru/jour/article/view/596/939; https://www.biopreparations.ru/jour/article/downloadSuppFile/596/941; https://www.biopreparations.ru/jour/article/downloadSuppFile/596/942; https://www.biopreparations.ru/jour/article/downloadSuppFile/596/1064; https://www.biopreparations.ru/jour/article/downloadSuppFile/596/1065; https://www.biopreparations.ru/jour/article/downloadSuppFile/596/1066; https://www.biopreparations.ru/jour/article/downloadSuppFile/596/1067; https://www.biopreparations.ru/jour/article/downloadSuppFile/596/1068; https://www.biopreparations.ru/jour/article/downloadSuppFile/596/1069; https://www.biopreparations.ru/jour/article/downloadSuppFile/596/1071; https://www.biopreparations.ru/jour/article/downloadSuppFile/596/1087; Macina D, Evans KE. Bordetella pertussis in school-age children, adolescents, and adults: a systematic review of epidemiology, burden, and mortality in Africa. Infect Dis Ther. 2021;10(3):1097–113. https://doi.org/10.1007/s40121-021-00442-6; Macina D, Evans KE. Bordetella pertussis in school-age children, adolescents and adults: a systematic review of epidemiology and mortality in Europe. Infect Dis Ther. 2021;10(4):2071–118. https://doi.org/10.1007/s40121-021-00520-9; Басов АА, Высочанская СО, Цвиркун ОВ, Белова ТР, Адугюзелов СЭ, Жернов ЮВ и др. Критерии оценки эпидемиологической ситуации коклюша в Российской Федерации. Эпидемиология и вакцинопрофилактика. 2024;23(1):4–13. https://doi.org/10.31631/2073-3046-2024-23-1-4-13; Warfel JM, Zimmerman LI, Merkel TJ. Acellular pertussis vaccines protect against disease but fail to prevent infection and transmission in a nonhuman primate model. Proc Natl Acad Sci USA. 2014;111(2):787–92. https://doi.org/10.1073/pnas.1314688110; Сёмин ЕГ, Синяшина ЛН, Медкова АЮ, Каратаев ГИ. Конструирование рекомбинантных аттенуированных бактерий Bordetella pertussis генотипа ptxP3. Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2018;(4):33–41. https://doi.org/10.36233/0372-9311-2018-4-33-41; Li R, Lim A, Ow ST, Phoon MC, Locht C, Chow VT, et al. Development of live attenuated Bordetella pertussis strains expressing the universal influenza vaccine candidate M2e. Vaccine. 2011;29(33):5502–11. https://doi.org/10.1016/j.vaccine.2011.05.052; Jahnmatz M, Richert L, Al-Tawil N, Storsaeter J, Colin C, Bauduin C, et al. Safety and immunogenicity of the live attenuated intranasal pertussis vaccine BPZE1: a phase 1b, double-blind, randomised, placebo-controlled dose-escalation study. Lancet Infect Dis. 2020;20(11):1290–301. https://doi.org/10.1016/S1473-3099(20)30274-7; Джидарян АА, Матуа АЗ, Медкова АЮ, Сёмин ЕГ, Синяшина ЛН, Дьяков ИН и др. Безопасность и иммуногенность препарата живой коклюшной вакцины ГамЖВК интраназального применения на экспериментальной модели детенышей обезьян вида павиан гамадрил. Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2022;99(2):203–14. https://doi.org/10.36233/0372-9311-190; Кубрава ДТ, Медкова АЮ, Синяшина ЛН, Шевцова ЗВ, Матуа АЗ, Конджария ИГ и др. Экспериментальный коклюш у обезьян. Вестник Российской академии медицинских наук. 2013;68(8):28–33. https://doi.org/10.15690/vramn.v68i8.720; National Research Council (US), Committee for the Update of the Guide for the Care and Use of Laboratory Animals. Guide for the care and use of laboratory animals. 8th ed. Washington (DC): National Academies Press (US); 2011.; Медкова АЮ, Синяшина ЛН, Румянцева ЮП, Воронина ОЛ, Кунда МС, Каратаев ГИ. Накопление авирулентных инсерционных Вvg-мутантов Bordetella pertussis при экспериментальной инфекции лабораторных мышей. Молекулярная генетика, микробиология и вирусология. 2013;28(4):22–6. EDN: RTWART; Нестерова ЮВ, Медкова АЮ, Бабаченко ИВ, Сёмин ЕГ, Калисникова ЕЛ, Синяшина ЛН, Каратаев ГИ. Клинико-диагностическое значение генетических маркеров Bordetella pertussis у контактных лиц в семейных очагах. Журнал инфектологии. 2019;11(1):17–24. https://doi.org/10.22625/2072-6732-2019-11-1-17-24; Медкова АЮ, Синяшина ЛН, Амичба АА, Сёмин ЕГ, Шевцова ЗВ, Матуа АЗ и др. Доклинические исследования безопасности, иммуногенности и защитной активности аттенуированных бактерий на экспериментальной модели Macaca mulatta. Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2020;97(4):312–23. https://doi.org/10.36233/0372-9311-2020-97-4-3; Медкова АЮ, Лиджиева АА, Сёмин ЕГ, Синяшина ЛН, Сюндюкова РА, Дьяков ИН и др. Клинические исследования безопасности и переносимости живой вакцины интраназального применения для профилактики коклюша. Разработка и регистрация лекарственных средств. 2021;10(1):114–9. https://doi.org/10.33380/2305-2066-2021-10-1-114-119; Каратаев ГИ, Синяшина ЛН, Медкова АЮ, Сёмин ЕГ, Шевцова ЗВ, Матуа АЗ и др. Инсерционная инактивация оперона вирулентности в популяции персистирующих бактерий Bordetella pertussis. Генетика. 2016;52(4):422–30. https://doi.org/10.7868/S0016675816030085; Медкова АЮ, Лиджиева АА, Сёмин ЕГ, Синяшина ЛН, Сюндюкова РА, Снегирева НА и др. Иммуногенность препарата «Живая вакцина интраназального применения для профилактики коклюша» (ГамЖВК) при однократном применении у здоровых добровольцев. Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2021;98(6):706–20. https://doi.org/10.36233/0372-9311-194; Kilgore PE, Salim AM, Zervos MJ, Schmitt HJ. Pertussis: microbiology, disease, treatment, and prevention. Clin Microbiol Rev. 2016;29(3):449–86. https://doi.org/10.1128/CMR.00083-15; https://www.biopreparations.ru/jour/article/view/596
-
11Academic Journal
Authors: Nesterova I.V., Chudilova G.A., Rusinova T.V., Pavlenko V.N., Yutskevich Y.A., Barova N.K., Tarakanov V.A.
Source: Russian Journal of Infection and Immunity. 11:101-110
Subject Terms: 0301 basic medicine, phenotype, коинфекция, experimental model, нейтрофильные гранулоциты, дцРНК, dsRNA, coinfection, экспериментальная модель, 3. Good health, 03 medical and health sciences, co-infection, 0302 clinical medicine, fMLP, neutrophilic granulocytes, субпопуляция, subpopulation, фенотип
-
12Academic Journal
Source: Российские биомедицинские исследования, Vol 8, Iss 1 (2023)
Subject Terms: Medicine (General), кортексин, семакс, R5-920, регуляторные пептиды, крысы, экспериментальная модель, гипотермия
-
13Academic Journal
Authors: В.П. Ганапольский, П.В. Агафонов, В.О. Матыцин
Source: Российские биомедицинские исследования, Vol 8, Iss 1 (2023)
Subject Terms: экспериментальная модель, крысы, гипотермия, кортексин, семакс, регуляторные пептиды, Medicine (General), R5-920
File Description: electronic resource
-
14Academic Journal
Source: Биотехнология в растениеводстве, животноводстве и сельскохозяйственной микробиологии. :89-91
Subject Terms: ТРАНСГЕННЫЕ РАСТЕНИЯ ПЕТУНИИ, ИЗУЧЕНИЕ РЕОРГАНИЗАЦИИ МИКРОТРУБОЧЕК, TUBULIN CYTOSKELETON, TRANSGENIC PETUNIA PLANTS, LIFETIME VISUALIZATION, ABIOTIC STRESS CONDITIONS, EXPERIMENTAL MODEL, ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНАЯ МОДЕЛЬ, ПРИЖИЗНЕННАЯ ВИЗУАЛИЗАЦИЕЯ, ТУБУЛИНОВЫЙ ЦИТОСКЕЛЕТ, УСЛОВИЯ АБИОТИЧЕСКОГО СТРЕССА, STUDY OF MICROTUBE REORGANIZATION
-
15
-
16
-
17Academic Journal
Authors: Valamina, I. E., Koznova, A. E., Ugryumova, E. M., Aksoy, D. I., Bakai, E. D., Валамина, И. Е., Кознова, А. Е., Угрюмова, Е. М., Аксой, Д. И., Бакай, Е. Д.
Subject Terms: CHICK EMBRYO, EXPERIMENTAL MODEL, SUBSTANCE TESTING, КУРИНЫЙ ЭМБРИОН, ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНАЯ МОДЕЛЬ, ТЕСТИРОВАНИЕ ВЕЩЕСТВ
File Description: application/pdf
Relation: Вестник Уральского государственного медицинского университета; http://elib.usma.ru/handle/usma/15391
Availability: http://elib.usma.ru/handle/usma/15391
-
18Academic Journal
Authors: E. I. Surikova, E. M. Frantsiyants, V. A. Bandovkina, I. V. Kaplieva, I. V. Neskubina, Yu. A. Pogorelova, L. K. Trepitaki, N. D. Cheryarina, L. A. Nemashkalova, A. Yu. Arakelova, A. M. Salatova, Е. И. Сурикова, Е. М. Франциянц, В. А. Бандовкина, И В. Каплиева, И. В. Нескубина, Ю. А. Погорелова, Л. К. Трепитаки, Н. Д. Черярина, Л. А. Немашкалова, А. Ю. Аракелова, А. М. Салатова
Source: Research and Practical Medicine Journal; Том 10, № 3 (2023); 43-54 ; Research'n Practical Medicine Journal; Том 10, № 3 (2023); 43-54 ; 2410-1893 ; 10.17709/10.17709/2410-1893-2023-10-3
Subject Terms: экспериментальная модель, thyroid dysfunction, comorbidity, hypothyroidism, Guerin's carcinoma, brain, neurotrophins, brain-derived neurotrophic factor, nerve growth factor, neurotrophin 3, female rats, experimental model, дисфункция щитовидной железы, коморбидность, гипотиреоз, карцинома Герена, головной мозг, нейротрофины, нейротрофический фактор мозга, фактор роста нервов, нейротрофин 3, самки крыс
File Description: application/pdf
Relation: https://www.rpmj.ru/rpmj/article/view/902/582; Tran TV, Kitahara CM, de Vathaire F, Boutron-Ruault MC, Journy N. Thyroid dysfunction and cancer incidence: a systematic review and meta-analysis. Endocr Relat Cancer. 2020 Apr;27(4):245–259. https://doi.org/10.1530/erc-19-0417; Deligiorgi MV, Trafalis DT. The Clinical Relevance of Hypothyroidism in Patients with Solid Non-Thyroid Cancer: A Tantalizing Conundrum. J Clin Med. 2022 Jun;11(12):3417. https://doi.org/10.3390/jcm11123417; Kit OI, Frantsiyants EM, Bandovkina VA, Kaplieva IV, Pogorelova YA, Trepitaki LK, et al. Development of an experimental model of tumor growth under hypothyroidism. Cardiometry. 2022;21:41–49. https://doi.org/10.18137/cardiometry.2022.21.4149; Giammanco M, Di Liegro CM, Schiera G, Di Liegro I. Genomic and Non-Genomic Mechanisms of Action of Thyroid Hormones and Their Catabolite 3,5-Diiodo-L-Thyronine in Mammals. Int J Mol Sci. 2020 Jun;21(11):4140. https://doi.org/10.3390/ijms21114140; Zhang Y, Yang Y, Tao B, Lv Q, Lui S, He L. Gray Matter and Regional Brain Activity Abnormalities in Subclinical Hypothyroidism. Front Endocrinol (Lausanne). 2021 Feb 24;12:582519. https://doi.org/10.3389/fendo.2021.582519; Доян Ю. И., Сидорова Ю. К., Кичерова О. А., Рейхерт Л. И. Биохимический и клинический взгляд на нейротрофический фактор мозга (BDNF). Медицинская наука и образование Урала. 2018;19(1):165–169.; Крыжановская С. Ю., Запара М. А., Глазачев О. С. Нейротрофины и адаптация к средовым стимулам: возможности расширения «терапевтического потенциала» (краткий обзор). Вестник Международной академии наук (Русская секция). 2020;1:36–43.; Рудницкая Е. А., Колосова Н. Г., Стефанова Н. А. Нейротрофическое обеспечение головного мозга в онтогенезе и при развитии нейродегенеративных заболеваний. Вестник Московского университета. Серия 16. Биология. 2016;(4):72–82.; Arese M, Bussolino F, Pergolizzi M, Bizzozero L. An Overview of the Molecular Cues and Their Intracellular Signaling Shared by Cancer and the Nervous System: From Neurotransmitters to Synaptic Proteins, Anatomy of an All-Inclusive Cooperation. Int J Mol Sci. 2022 Nov;23(23):14695. https://doi.org/10.3390/ijms232314695; Faulkner S, Jobling P, March B, Jiang CC, Hondermarck H. Tumor Neurobiology and the War of Nerves in Cancer. Cancer Discov. 2019;9(6):702–710. https://doi.org/10.1158/2159-8290.cd-18-1398; Anastasaki C, Gao Y, Gutmann DH Neurons as stromal drivers of nervous system cancer formation and progression. Dev Cell. 2023 Jan;58(2):81–93. https://doi.org/10.1016/j.devcel.2022.12.011; Głombik K, Detka J, Kurek A, Budziszewska B. Impaired Brain Energy Metabolism: Involvement in Depression and Hypothyroidism. Front Neurosci. 2020 Dec;14:586939. https://doi.org/10.3389/fnins.2020.586939; Cioffi F, Giacco A, Goglia F, Silvestri E. Bioenergetic Aspects of Mitochondrial Actions of Thyroid Hormones. Cells. 2022 Mar;11(6):997. https://doi.org/10.3390/cells11060997; Głombik K, Detka J, Budziszewska B. Venlafaxine and L-Thyroxine Treatment Combination: Impact on Metabolic and Synaptic Plasticity Changes in an Animal Model of Coexisting Depression and Hypothyroidism. Cells. 2021 Jun;10(6):1394. https://doi.org/10.3390/cells10061394; Royland JE, Parker JS, Gilbert ME. A genomic analysis of subclinical hypothyroidism in hippocampus and neocortex of the developing rat brain. J Neuroendocrinol. 2008 Dec;20(12):1319–1338. https://doi.org/10.1111/j.1365-2826.2008.01793.x; Morte B, Gil-Ibanez P, Heuer H, Bernal J. Brain Gene Expression in Systemic Hypothyroidism and Mouse Models of MCT8 Deficiency: The Mct8-Oatp1c1-Dio2 Triad. Thyroid. 2021;31:985–993. https://doi.org/10.1089/thy.2020.0649; Jurado-Flores M, Warda F, Mooradian A. Pathophysiology and Clinical Features of Neuropsychiatric Manifestations of Thyroid Disease. J Endocr Soc. 2022 Jan;6(2):bvab194. https://doi.org/10.1210/jendso/bvab194; Yajima H, Amano I, Ishii S, Sadakata T, Miyazaki W, Takatsuru Y. et al. Absence of Thyroid Hormone Induced Delayed Dendritic Arborization in Mouse Primary Hippocampal Neurons Through Insufficient Expression of Brain-Derived Neurotrophic Factor. Front Endocrinol (Lausanne). 2021 Feb;12:629100. https://doi.org/10.3389/fendo.2021.629100; Madhusudhan U, Kalpana M, Singaravelu V, Ganji V, John N, Gaur A. Brain-Derived Neurotrophic Factor-Mediated Cognitive Impairment in Hypothyroidism. Cureus. 2022;14(4): e23722. https://doi.org/10.7759/cureus.23722; Иванов А. Д. Роль NGF и BDNF в регуляции деятельности зрелого мозга. Журнал высшей нервной деятельности им. И. П. Павлова. 2014;64(2):137–146. https://doi.org/10.7868/s0044467714020099; Ammendrup-Johnsen I, Naito Y, Craig AM, Takahashi H. Neurotrophin-3 Enhances the Synaptic Organizing Function of TrkC-Protein Tyrosine Phosphatase σ in Rat Hippocampal Neurons. J Neurosci. 2015 Sep;35(36):12425–12431. https://doi.org/10.1523/jneurosci.1330-15.2015; Hernández-Echeagaray E. Neurotrophin-3 modulates synaptic transmission. Vitam Horm. 2020;114:71–89. https://doi.org/10.1016/bs.vh.2020.04.008; Keefe KM, Sheikh IS, Smith GM. Targeting Neurotrophins to Specific Populations of Neurons: NGF, BDNF, and NT-3 and Their Relevance for Treatment of Spinal Cord Injury. International Journal of Molecular Sciences. 2017;18(3):548. https://doi.org/10.3390/ijms18030548; Франциянц Е. М., Бандовкина В. А., Каплиева И. В., Сурикова Е. И., Нескубина И. В., Погорелова Ю. А., и др. Изменение патофизиологии роста опухоли и функциональной активности гипоталамо-гипофизарнотиреоидной оси у крыс обоего пола с карциномой Герена на фоне гипотиреоза. Южно-Российский онкологический журнал. 2022;3(4):26–39. https://doi.org/10.37748/2686-9039-2022-3-4-3; Sharma V, Singh TG, Kaur A, Mannan A, Dhiman S. Brain-Derived Neurotrophic Factor: A Novel Dynamically Regulated Therapeutic Modulator in Neurological Disorders. Neurochem Res. 2023 Feb;48(2):317–339. https://doi.org/10.1007/s11064-022-03755-1; Chen Z, Fang Y, Jiang W. Important Cells and Factors from Tumor Microenvironment Participated in Perineural Invasion. Cancers (Basel). 2023 Feb;15(5):1360. https://doi.org/10.3390/cancers15051360; Wang Y, Wu W, Wu X, Sun Y, Zhang YP, Deng LX, et al. Remodeling of lumbar motor circuitry remote to a thoracic spinal cord injury promotes locomotor recovery. eLife. 2018;7:e39016. https://doi.org/10.7554/elife.39016; Cong Y, Wang C, Wang J, Li H, Li Q. NT-3 promotes oligodendrocyte proliferation and nerve function recovery aſter spinal cord injury by inhibiting autophagy pathway. J Surg Res. 2020;247:128–135. https://doi.org/10.1016/j.jss.2019.10.033; Yan Z, Shi X, Wang H, Si C, Liu Q, Du Y. Neurotrophin-3 Promotes the Neuronal Differentiation of BMSCs and Improves Cognitive Function in a Rat Model of Alzheimer’s Disease. Front Cell Neurosci. 2021 Feb 10;15:629356. https://doi.org/10.3389/fncel.2021.629356; Weihrauch T, Limberg MM, Gray N, Schmelz M, Raap U. Neurotrophins: Neuroimmune Interactions in Human Atopic Diseases. Int J Mol Sci. 2023 Mar 24;24(7):6105. https://doi.org/10.3390/ijms24076105; https://www.rpmj.ru/rpmj/article/view/902
-
19Academic Journal
Contributors: This work was supported by the Ministry of Science and Higher Education of the Russian Federation (project number 0827-2020-0012)
Source: Medical Immunology (Russia); Том 25, № 3 (2023); 637-642 ; Медицинская иммунология; Том 25, № 3 (2023); 637-642 ; 2313-741X ; 1563-0625
Subject Terms: экспериментальная модель, HDL apoproteins, autoimmune inflammation, T lymphocytic infiltration, experimental mode, апопротеины ЛПВП, аутоиммунное воспаление, T-лимфоцитарная инфильтрация
File Description: application/pdf
Relation: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/2699/1703; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2699/11870; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2699/11872; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2699/11874; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2699/11876; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2699/11877; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2699/11878; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2699/11879; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2699/11881; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2699/11882; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2699/12408; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2699/12416; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2699/12522; Burstein M., Scholnick H.R., Morfin R. Rapid method for the isolation of lipoproteins from human serum by precipitation with polyanions. J. Lipid Res., 1970, Vol. 11, no. 6, pp. 583-595.; Cham B.E., Knowles B.R. A solvent system for delipidation of plasma or serum without protein precipitation. J. Lipid Res., 1976, Vol. 17, no. 2, pp. 176-181.; d’Elios M.M., Bergman M.P., Azzurri A., Amedei A., Benagiano M., de Pont J.J., Cianchi F., Vandenbroucke-Grauls C.M., Romagnani S., Appelmelk B.J., del Prete G. H(+),K(+)-atpase (proton pump) is the target autoantigen of Th1-type cytotoxic T cells in autoimmune gastritis. Gastroenterology, 2001, Vol. 120, no. 2, pp. 377-386.; Fomina K., Beduleva L., Menshikov I., Anikaeva M., Suntsova D., Sidorov A., Stolyarova E. Immune response to native lipoproteins induces visceral obesity and aortic wall injury in rats: the role of testosterone. Endocr. Metab. Immune Disord. Drug Targets, 2017, Vol. 17, no. 2, pp. 125-133.; Fomina K., Beduleva L., Menshikov I., Zerjawi A., Terentiev A., Sidorov A., Khramova T., Abisheva N., Gorbushina A. Аtherosclerosislike changes in the rabbit aortic wall induced by immunization with native highdensity lipoproteins. Immun. Inflamm. Dis., 2020, Vol. 8, no. 4, pp. 559-567.; Kobiyama K., Ley K. Atherosclerosis. Circ. Res., 2018, Vol. 123, no. 10, pp. 1118-1120.; McLeod O., Silveira A., Fredrikson G.N., Gertow K., Baldassarre D., Veglia F., Sennblad B., Strawbridge R.J., Larsson M., Leander K., Gigante B., Kauhanen J., Rauramaa R., Smit A.J., Mannarino E., Giral P., Humphries S.E., Tremoli E., de Faire U., Ohrvik J., Nilsson J., Hamsten A. Plasma autoantibodies against apolipoprotein B-100 peptide 210 in subclinical atherosclerosis. Atherosclerosis, 2014, Vol. 232, no. 1, pp. 242-248.; Meier L.A., Binstadt B.A. The contribution of autoantibodies to inflammatory cardiovascular pathology. Front. Immunol., 2018, Vol. 9, 911. doi:10.3389/fimmu.2018.00911.; Montecucco F., Vuilleumier N., Pagano S., Lenglet S., Bertolotto M., Braunersreuther V., Pelli G., Kovari E., Pane B., Spinella G., Pende A., Palombo D., Dallegri F., Mach F., Roux-Lombard P. Anti-Apolipoprotein A-1 autoantibodies are active mediators of atherosclerotic plaque vulnerability. Eur. Heart J., 2011, Vol. 32, pp. 412-421.; Ramos-Leví A.M., Marazuela M. Pathogenesis of thyroid autoimmune disease: the role of cellular mechanisms. Endocrinol. Nutr., 2016, Vol. 63, no. 8, pp. 421-429.; Stamler J., Daviglus M.L., Garside D.B., Dyer A.R., Greenland P., Neaton J.D. Relationship of baseline serum cholesterol levels in 3 large cohorts of younger men to long-term coronary, cardiovascular, and all-cause mortality and to longevity. JAMA, 2000, Vol. 284, no. 3, pp. 311-318.; Verstappen G.M., Kroese F.G.M., Bootsma H. T cells in primary Sjögren’s syndrome: targets for early intervention. Rheumatology (Oxford), 2021, Vol. 60, no. 7, pp. 3088-3098.; Vuilleumier N., Montecucco F., Hartley O. Autoantibodies to apolipoprotein A-1 as a biomarker of cardiovascular autoimmunity. World J. Cardiol., 2014, Vol. 6, no. 5, pp. 314-326.; Vuilleumier N., Reber G., James R., Burger D., de Moerloose P., Dayer J.M., Roux-Lombard P. Presence of autoantibodies to apolipoprotein A-1 in patients with acute coronary syndrome further links autoimmunity to cardiovascular disease. J. Autoimmun., 2004, Vol. 23, no. 4, pp. 353-360.; Yang Y., Charlton B., Shimada A., dal Canto R., Fathman C.G. Monoclonal T cells identified in early NOD islet infiltrates. Immunity, 1996, Vol. 4, no. 2, pp. 189-194.; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/2699
-
20Academic Journal
Source: Российские биомедицинские исследования, Vol 7, Iss 1 (2022)
Subject Terms: экспериментальная модель, крысы, гипотермия, фенотропил, метапрот, физическая работоспособность, Medicine (General), R5-920
File Description: electronic resource