Регулирование рождаемости при снижении естественной фертильности

Authors: Rusanova, N., Erofeeva, L.

Subject Terms: АБОРТЫ, ВСПОМОГАТЕЛЬНЫЕ РЕПРОДУКТИВНЫЕ ТЕХНОЛОГИИ, CONTRACEPTION, КОНТРАЦЕПЦИЯ, BIRTH CONTROL, ФЕРТИЛЬНОСТЬ, РЕГУЛИРОВАНИЕ РОЖДАЕМОСТИ, FERTILITY, ABORTIONS, ASSISTED REPRODUCTIVE TECHNOLOGIES

File Description: application/pdf

Access URL: https://elar.urfu.ru/handle/10995/146227

The effect of the temperature regime on the manifestation of sterility in the CMS line of sweet pepper

Authors: E. V. Shumilova, S. V. Koroleva

Source: Овощи России, Vol 0, Iss 5, Pp 13-20 (2025)

Subject Terms: перец сладкий, гибрид первого поколения, семеноводство, цитоплазматическая мужская стерильность, температурный фактор, стерильность, фертильность, камера искусственного климата, Agriculture

File Description: electronic resource

Relation: https://www.vegetables.su/jour/article/view/2767; https://doaj.org/toc/2072-9146; https://doaj.org/toc/2618-7132

Access URL: https://doaj.org/article/7f654671c65b4dd6a2e2ddfc11b06a77

Медикаментозная защита яичников в период проведения программной противоопухолевой лекарственной терапии у больных с классической лимфомой Ходжкина и неходжкинскими лимфомами

Source: Клиническая онкогематология, Vol 17, Iss 1 (2024)

Subject Terms: фертильность у больных с гематологическими злокачественными опухолями, агонисты гонадотропин-рилизинг гормона, репродуктивная функция, первичная медиастинальная (тимическая) В-крупноклеточная лимфома, Neoplasms. Tumors. Oncology. Including cancer and carcinogens, диффузная В-крупноклеточная лимфома, RC254-282, классическая лимфома Ходжкина, 3. Good health

Access URL: https://doaj.org/article/64de0171dc0e4893abf37ea4716939b1

From biomarkers to the operating room: solutions that are changing routine practice ; От биомаркеров до операционной: решения, которые меняют рутинную практику

Authors: A. D. Makatsariya, A. V. Vorobev, А. Д. Макацария, А. В. Воробьев

Contributors: The authors declare no funding, Авторы заявляют об отсутствии финансовой поддержки

Source: Obstetrics, Gynecology and Reproduction; Vol 19, No 5 (2025); 626-631 ; Акушерство, Гинекология и Репродукция; Vol 19, No 5 (2025); 626-631 ; 2500-3194 ; 2313-7347

Subject Terms: эндокринные дизрапторы, preeclampsia, endometriosis, perioperative analgesia, venous thromboembolic complications, nutritional support, reproductive health, fertility, endocrine disruptors, преэклампсия, эндометриоз, периоперационная аналгезия, венозные тромбоэмболические осложнения, нутрициальная поддержка, репродуктивное здоровье, фертильность

File Description: application/pdf

Relation: https://www.gynecology.su/jour/article/view/2591/1388; Матвеев М.О., Прокопенко Е.И., Никольская И.Г., Федосов А.А., Блинов Д.В., Бицадзе В.О. Исследование уровней биомаркеров – растворимой fms-подобной тирозинкиназы-1 (sFlt-1), плацентарного фактора роста (PlGF) и их соотношения sFlt-1/PlGF у пациенток с экстрагенитальными заболеваниями для диагностики ранней и поздней преэклампсии. Акушерство, Гинекология и Репродукция. 2025;19(5):632–653. https://doi.org/10.17749/2313-7347/ob.gyn.rep.2025.671.; Жильнио Е.Ю., Салов И.А., Наумова Ю.В. Персонализация вероятности рецидива и профилактики эндометриоза яичников после операции. Акушерство, Гинекология и Репродукция. 2025;19(5):654–666. https://doi.org/10.17749/2313-7347/ob.gyn.rep.2025.649.; Иноятова Н.М., Каюмова Д.Т. Влияние перевязки трех пар маточных сосудов на кровоснабжение матки и яичников у пациенток с патологической кровопотерей. Акушерство, Гинекология и Репродукция. 2025;19(5):667–674. https://doi.org/10.17749/2313-7347/ob.gyn.rep.2025.659.; Громова О.А., Торшин И.Ю., Иловайская И.А., Громов А.Н. Комплексный биохимический анализ состава препаратов и биологически активных добавок омега-3 полиненасыщенных жирных кислот для нутрициальной поддержки беременности. Акушерство, Гинекология и Репродукция. 2025;19(5):675–689. https://doi.org/10.17749/2313-7347/ob.gyn.rep.2025.669.; Пачулия О.В., Лазарева Т.Е., Халенко В.В., Илларионов Р.А., Вашукова Е.С., Постникова Т.Б., Мальцева А.Р., Милютина Ю.П., Корню­шина Е.А., Беспалова О.Н., Глотов А.С. Раннее моделирование риска преждевременных родов на платформе биоколлекции образцов беременных, созданной на разных сроках гестации согласно стратегии «лонгитюдное биобанкирование». Акушерство, Гинекология и Репродукция. 2025;19(5):691–704. https://doi.org/10.17749/2313-7347/ob.gyn.rep.2025.686.; Стрюк Р.И., Крикунова О.В., Локшина Э.Э., Гомова Т.А., Федотова Е.E. Эффективность и безопасность профилактики венозных тромбоэмболических осложнений у беременных высокого риска: анализ результатов регистра беременных «БЕРЕГ». Акушерство, Гинекология и Репродукция. 2025;19(5):705–715. https://doi.org/10.17749/2313-7347/ob.gyn.rep.2025.652.; Харлов Н.С., Шаповалова Е.А., Басос А.С., Карамян Р.А., Бабина У.Ф., Белоусов А.М. Блокада верхнего гипогастрального сплетения в сочетании с превентивной инфильтрационной анестезией операционных ран – новый взгляд на периоперационную анальгезию при лапароскопической миомэктомии. Акушерство, Гинекология и Репродукция. 2025;19(5):717–726. https://doi.org/10.17749/2313-7347/ob.gyn.rep.2025.682.; Гридасова О.С., Хизроева Д.Х., Солопова А.Г., Иванов А.Е., Блинов Д.В., Татаринцева А.Ю. Оценка уровня фактора роста эндотелия сосудов в крови пациенток с вульвовагинальной атрофией. Акушерство, Гинекология и Репродукция. 2025;19(5):727–736. https://doi.org/10.17749/2313-7347/ob.gyn.rep.2025.684.; Громова О.А., Торшин И.Ю., Тапильская Н.И. Миоинозитол и D-хироинозитол в комплексе с фолатами и марганцем как факторы мужского здоровья: воздействие на структуру и фертильность сперматозоидов. Акушерство, Гинекология и Репродукция. 2025;19(5):737–757. https://doi.org/10.17749/2313-7347/ob.gyn.rep.2025.687.; Коломыцева Л.Н., Небора Е.Д., Джамалутинов А.Д., Суфияров Д.И., Мугинова Д.Р., Муллагулова И.И., Тушигов А.С., Базарова З.Д., Носинкова Т.А., Хусейнова Л.А., Деревянко К.А., Абаева М.П., Магомедова Ж.Ж., Борлакова С.М. Овариальная токсичность эндокринных дизрапторов: современное состояние проблемы. Акушерство, Гинекология и Репродукция. 2025;19(5):759–775. https://doi.org/10.17749/2313-7347/ob.gyn.rep.2025.658.; Павлова З.Ш., Орлова Я.А., Камалов А.А. Влияние прогестерона на заболевания предстательной железы и перспективы его использования для профилактики и лечения доброкачественной гиперплазии предстательной железы. Акушерство, Гинекология и Репродукция. 2025;19(5):776–787. https://doi.org/10.17749/2313-7347/ob.gyn.rep.2025.662.; Аполихина И.А., Горбунова Е.А., Саидова А.С., Тарнаева Л.А. Роль локальной гормональной терапии эстриолом в комплексном ведении женщин с генитоуринарным менопаузальным синдромом: серия клинических наблюдений. Акушерство, Гинекология и Репродукция. 2025;19(5):788–799. https://doi.org/10.17749/2313-7347/ob.gyn.rep.2025.668.; Карпова А.Л., Мостовой А.В., Баранов А.А., Аникеева Л.А., Клубничкина Е.В., Заплатников А.Л., Карпов Л.Н. Врожденная инфекция у доношенного новорожденного ребенка, вызванная вирусом герпеса человека 6-го типа: обзор литературы и клинический случай. Акушерство, Гинекология и Репродукция. 2025;19(5):801–811. https://doi.org/10.17749/2313-7347/ob.gyn.rep.2025.635.; Козлов Л.А., Чикмарева К.А. Педагогические раздумья о термине «Признак отделения последа Кюстнера–Чукалова». Акушерство, Гинекология и Репродукция. 2025;19(5):812–817. https://doi.org/10.17749/2313-7347/ob.gyn.rep.2025.685.; https://www.gynecology.su/jour/article/view/2591

Availability: https://www.gynecology.su/jour/article/view/2591
https://doi.org/10.17749/2313-7347/ob.gyn.rep.2025.698

КЕЧ РЕПРОДУКТИВ ЁШДАГИ ПАСТ ТУХУМДОН ЗАХИРАЛИ АЁЛЛАРДА ФЕРТИЛЛИКНИ ПРОГНОЗЛАШДА ГОРМОНАЛ ВА ЎСИШ ОМИЛЛАРИНИНГ ПРОГНОСТИК АҲАМИЯТИ

Authors: Ахмеджанова , Х.З., Ражапова , Г.Ф.

Source: Eurasian Journal of Medical and Natural Sciences; Vol. 5 No. 10 Part 2 (2025): Eurasian Journal of Medical and Natural Sciences; 182-196 ; Евразийский журнал медицинских и естественных наук; Том 5 № 10 Part 2 (2025): Евразийский журнал медицинских и естественных наук; 182-196 ; Yevrosiyo tibbiyot va tabiiy fanlar jurnali; Jild 5 Nomeri 10 Part 2 (2025): Евразийский журнал медицинских и естественных наук; 182-196 ; 2181-287X

Subject Terms: Фертильность, овариальный резерв, АМГ, VEGF, IGF-1, TGF-β, прогнозирование, Fertility, diminished ovarian reserve, AMH, prognosis, Фертиллик, паст тухумдон захираси, прогнозлаш

File Description: application/pdf

Relation: https://in-academy.uz/index.php/EJMNS/article/view/64515/40581

Availability: https://in-academy.uz/index.php/EJMNS/article/view/64515

Minimally invasive and robot-assisted interventions in the treatment of gynecological malignant tumors: opportunities for preserving reproductive function ; Минимально инвазивные и робот-ассистированные вмешательства в лечении гинекологических злокачественных опухолей: возможности сохранения репродуктивной функции

Authors: A. U. Khamadyanova, T. T. Gaev, D. O. Gatsoev, V. V. Andreev, A. S. Pazhitnova, E. O. Tikhonova, V. G. Kim, D. A. Talalaeva, V. V. Agapova, R. S. Botina, A. K. Yakovleva, S. D. Vasilieva, D. Yu. Bakulin, А. У. Хамадьянова, Т. Т. Гаев, Д. О. Гацоев, В. В. Андреев, А. С. Пажитнова, Э. О. Тихонова, В. Г. Ким, Д. А. Талалаева, В. Е. Агапова, Р. С. Ботина, А. К. Яковлева, С. Д. Васильева, Д. Ю. Бакулин

Source: Obstetrics, Gynecology and Reproduction; Vol 19, No 4 (2025); 545-560 ; Акушерство, Гинекология и Репродукция; Vol 19, No 4 (2025); 545-560 ; 2500-3194 ; 2313-7347

Subject Terms: минимально инвазивная хирургия, cervical cancer, endometrial cancer, ovarian cancer, fertility preservation, gynecologic oncology, minimally invasive surgery, uterine transplantation, рак шейки матки, рак эндометрия, рак яичников, фертильность, гинекологическая онкология

File Description: application/pdf

Relation: https://www.gynecology.su/jour/article/view/2421/1375; Гордиенко В.П., Леонтьева С.Н., Коробкова Т.Н. Рак репродуктивных органов у женщин Дальневосточного федерального округа. Сибирский онкологический журнал. 2020;19(3):23–37. https://doi.org/10.21294/1814-4861-2020-19-2-23-37.; Злокачественные новообразования в России в 2021 году (заболеваемость и смертность). Под ред. А.Д. Каприна, В.В. Старинского, А.О. Шахзадовой. М., 2022. 252 с.; Кононова Г.А., Жуйкова Л.Д., Ананина О.А. и др. Рак репродуктивной системы у женщин Республики Тыва. Эпидемиологические особенности. Сибирский онкологический журнал. 2024;23(3):5–14. https://doi.org/10.21294/1814-4861-2024-23-3-5-14.; Siegel R.L., Miller K.D., Wagle N.S., Jemal A. Cancer statistics, 2023. CA Cancer J Clin. 2023;73(1):17–48. https://doi.org/10.3322/caac.21763.; Howlader N., Noone A.M., Krapcho M. et al. SEER Cancer Statistics Review, 1975–2016. National Cancer Institute, Bethesda, 2019. Available at: https://seer.cancer.gov/csr/1975_2016/.; Архангельский В.Н., Калачикова О.Н. Возраст матери при рождении первого ребенка: динамика, региональные различия, детерминация. Экономические и социальные перемены: факты, тенденции, прогноз. 2020;13(5):200–17. https://doi.org/10.15838/esc.2020.5.71.12.; Diaz-Arrastia C., Jurnalov C., Gomez G., Townsend C. Laparoscopic hysterectomy using a computer-enhanced surgical robot. Surg Endosc. 2002;16(9):1271–3. https://doi.org/10.1007/s00464-002-8523-5.; Бабаева Н.А., Антонова И.Б., Ивашина С.В. и др. Рак эндометрия у молодых: возможности органосохраняющего лечения при рецидивах. Акушерство и гинекология. 2020;(S1):130–6. https://doi.org/10.18565/aig.2020.1suppl.130-136.; Rodolakis A., Scambia G., Planchamp F. et al. ESGO/ESHRE/ESGE Guidelines for the fertility-sparing treatment of patients with endometrial carcinoma. Hum Reprod Open. 2023;2023(1):hoac057. https://doi.org/10.1093/hropen/hoac057.; Zhang Q., Qi G., Kanis M.J. et al. Comparison among fertility-sparing therapies for well differentiated early-stage endometrial carcinoma and complex atypical hyperplasia. Oncotarget. 2017;8(34):57642–53. https://doi.org/10.18632/oncotarget.17588.; Mazzon I., Corrado G., Morricone D., Scambia G. Reproductive preservation for treatment of stage IA endometrial cancer in a young woman: hysteroscopic resection. Int J Gynecol Cancer. 2005;15(5):974–8. https://doi.org/10.1111/j.1525-1438.2005.00162.x.; Giampaolino P., Di Spiezio Sardo A., Mollo A. et al. Hysteroscopic endometrial focal resection followed by levonorgestrel intrauterine device insertion as a fertility-sparing treatment of atypical endometrial hyperplasia and early endometrial cancer: a retrospective study. J Minim Invasive Gynecol. 2019;26(4):648-656. https://doi.org/10.1016/j.jmig.2018.07.001.; Gu H., Li J., Gu Y. et al. Survival impact of ovarian preservation on women with early-stage endometrial cancer: a systematic review and meta-analysis. Int J Gynecol Cancer. 2017;27(1):77–84. https://doi.org/10.1097/IGC.0000000000000857.; Jones B.P., Kasaven L., Vali S. et al. Uterine transplantation: review of livebirths and reproductive implications. Transplantation. 2021;105(8):1695–707. https://doi.org/10.1097/TP.0000000000003578.; Cibula D., Raspollini M.R., Planchamp F. et al. ESGO/ESTRO/ESP Guidelines for the management of patients with cervical cancer – Update 2023. Int J Gynecol Cancer. 2023;33(5):649–66. https://doi.org/10.1136/ijgc-2023-004429.; Wolswinkel J.T., Eikelder M.L.G.T., Verhoef C.G., Zusterzeel P.L.M. High- or intermediate-risk histologic features in patients with clinical early-stage cervical cancer planned for fertility-sparing surgery: a systematic review. Cancers (Basel). 2023;15(15):3920. https://doi.org/10.3390/cancers15153920.; Persson J., Kannisto P., Bossmar T. Robot-assisted abdominal laparoscopic radical trachelectomy. Gynecol Oncol. 2008;111(3):564–7. https://doi.org/10.1016/j.ygyno.2008.05.034.; Ekdahl L., Crusensvärd M., Reynisson P. et al. Quality of life and long-term clinical outcome following robot-assisted radical trachelectomy. Eur J Obstet Gynecol Reprod Biol. 2021;267:234–40. https://doi.org/10.1016/j.ejogrb.2021.11.018.; Api M., Boza A., Ceyhan M. Robotic versus laparoscopic radical trachelectomy for early-stage cervical cancer: case report and review of literature. J Minim Invasive Gynecol. 2016;23(5):677–83. https://doi.org/10.1016/j.jmig.2015.11.009.; Ramirez P.T., Frumovitz M., Pareja R. et al. Minimally invasive versus abdominal radical hysterectomy for cervical cancer. N Engl J Med. 2018;379(20):1895–904. https://doi.org/10.1056/NEJMoa1806395.; Lewicki P.J., Basourakos S.P., Qiu Y. et al. Effect of a randomized, controlled trial on surgery for cervical cancer. N Engl J Med. 2021;384(17):1669–71. https://doi.org/10.1056/NEJMc2035819.; Shekhar S., Jeyaseelan L. Laparoscopic or open radical hysterectomy for early stage cancer cervix: data inconsistency of LACC Trial. Asian Pac J Cancer Prev. 2019;20(10):2881. https://doi.org/10.31557/APJCP.2019.20.10.2881.; Salvo G., Ramirez P.T., Leitao M.M. et al. Open vs minimally invasive radical trachelectomy in early-stage cervical cancer: International Radical Trachelectomy Assessment Study. Am J Obstet Gynecol. 2022;226(1):97. e1–97.e16. https://doi.org/10.1016/j.ajog.2021.08.029.; Leitao M.M., Bixel K.L., Chase D.M. et al. ROCC/GOG-3043: a randomized controlled trial of robotic versus open surgery for early-stage cervical cancer. Int J Gynecol Cancer. 2025 Feb 28:101760. https://doi.org/10.1016/j.ijgc.2025.101760.; Falconer H., Palsdottir K., Stalberg K. et al. Robot-assisted approach to cervical cancer (RACC): an international multi-center, open-label randomized controlled trial. Int J Gynecol Cancer. 2019;29(6):1072–6. https://doi.org/10.1136/ijgc-2019-000558.; Schmeler K.M., Pareja R., Blanco A.L. et al. ConCerv: a prospective trial of conservative surgery for low-risk early-stage cervical cancer. Int J Gynecol Cancer. 2021;31(10):1317–25. https://doi.org/10.1136/ijgc-2021-002921.; Carneiro V.C.G., Batista T.P., Andrade M.R. et al. Proof-of-concept randomized phase II non-inferiority trial of simple versus type B2 hysterectomy in early-stage cervical cancer ≤ 2 cm (LESSER). Int J Gynecol Cancer. 2023;33(4):498–503. https://doi.org/10.1136/ijgc-2022-004092.; Ekdahl L., Paraghamian S., Eoh K.J. et al. Long term oncologic and reproductive outcomes after robot-assisted radical trachelectomy for early-stage cervical cancer. An international multicenter study. Gynecol Oncol. 2022;164(3):529–34. https://doi.org/10.1016/j.ygyno.2021.12.029.; Smith E.S., Moon A.S., O'Hanlon R. et al. Radical trachelectomy for the treatment of early-stage cervical cancer: a systematic review. Obstet Gynecol. 2020;136(3):533–42. https://doi.org/10.1097/AOG.0000000000003952.; Gubbala K., Laios A., Gallos I. et al. Outcomes of ovarian transposition in gynaecological cancers; a systematic review and meta-analysis. J Ovarian Res. 2014;7:69. https://doi.org/10.1186/1757-2215-7-69.; Swift B.E., Leung E., Vicus D., Covens A. Laparoscopic ovarian transposition prior to pelvic radiation for gynecologic cancer. Gynecol Oncol Rep. 2018;24:78–82. https://doi.org/10.1016/j.gore.2018.04.005.; Iavazzo C., Darlas F.M., Gkegkes I.D. The role of robotics in ovarian transposition. Acta Inform Med. 2013;21(2):135–7. https://doi.org/10.5455/aim.2013.21.135-137.; Pavone M., Autorino R., Bizzarri N. et al. Uterine transposition versus uterine ventrofixation before radiotherapy as a fertility sparing option in young women with pelvic malignancies: Systematic review of the literature and dose simulation. Eur J Surg Oncol. 2024;50(1):107270. https://doi.org/10.1016/j.ejso.2023.107270.; Ribeiro R., Baiocchi G., Moretti-Marques R. et al. Uterine transposition for fertility and ovarian function preservation after radiotherapy. Int J Gynecol Cancer. 2023;33(12):1837–42. https://doi.org/10.1136/ijgc-2023-004723.; Vitobello D., Siesto G., Bulletti C. et al. Gynecological fertility-sparing surgery. Placenta. 2011;32 Suppl 3:S224–31. https://doi.org/10.1016/j.placenta.2011.06.017.; Morice P., Denschlag D., Rodolakis A. et al. Fertility Task Force of the European Society of Gynecologic Oncology. Recommendations of the Fertility Task Force of the European Society of Gynecologic Oncology about the conservative management of ovarian malignant tumors. Int J Gynecol Cancer. 2011;21(5):951–63. https://doi.org/10.1097/IGC.0b013e31821bec6b.; Zanetta G., Chiari S., Rota S. et al. Conservative surgery for stage I ovarian carcinoma in women of childbearing age. Br J Obstet Gynaecol. 1997;104(9):1030–5. https://doi.org/10.1111/j.1471-0528.1997.tb12062.x.; Schilder J.M., Thompson A.M., DePriest P.D. et al. Outcome of reproductive age women with stage IA or IC invasive epithelial ovarian cancer treated with fertility-sparing therapy. Gynecol Oncol. 2002;87(1):1–7. https://doi.org/10.1006/gyno.2002.6805.; Satoh T., Hatae M., Watanabe Y. et al. Outcomes of fertility-sparing surgery for stage I epithelial ovarian cancer: a proposal for patient selection. J Clin Oncol. 2010;28(10):1727–32. https://doi.org/10.1200/JCO.2009.24.8617.; Kajiyama H., Mizuno M., Shibata K. et al. Recurrence-predicting prognostic factors for patients with early-stage epithelial ovarian cancer undergoing fertility-sparing surgery: a multi-institutional study. Eur J Obstet Gynecol Reprod Biol. 2014;175:97–102. https://doi.org/10.1016/j.ejogrb.2014.01.014.; Yoshihara M., Kajiyama H., Tamauchi S. et al. Prognostic factors and effects of fertility-sparing surgery in women of reproductive age with ovarian clear-cell carcinoma: a propensity score analysis. J Gynecol Oncol. 2019;30(6):e102. https://doi.org/10.3802/jgo.2019.30.e102.; Kurnit K.C., Frumovitz M. Primary mucinous ovarian cancer: options for surgery and chemotherapy. Int J Gynecol Cancer. 2022;32(11):1455–62. https://doi.org/10.1136/ijgc-2022-003806.; Yokoyama Y., Moriya T., Takano T. et al. Clinical outcome and risk factors for recurrence in borderline ovarian tumours. Br J Cancer. 2006;94(11):1586–91. https://doi.org/10.1038/sj.bjc.6603139.; Sonigo C., Sermondade N., Benard J. et al. Past, present and future of fertility preservation in cancer patients. Future Oncol. 2015;11(19):2667–80. https://doi.org/10.2217/fon.15.152.; Zanetta G., Rota S., Chiari S. et al. Behavior of borderline tumors with particular interest to persistence, recurrence, and progression to invasive carcinoma: a prospective study. J Clin Oncol. 2001;19(10):2658–64. https://doi.org/10.1200/JCO.2001.19.10.2658.; Marchette M.D., Ceppi L., Andreano A. et al. Oncologic and fertility impact of surgical approach for borderline ovarian tumours treated with fertility sparing surgery. Eur J Cancer. 2019;111:61–68. https://doi.org/10.1016/j.ejca.2019.01.021.; Perrin L.C., Low J., Nicklin J.L. et al. Fertility and ovarian function after conservative surgery for germ cell tumours of the ovary. Aust N Z J Obstet Gynaecol. 1999;39(2):243–5. https://doi.org/10.1111/j.1479-828x.1999.tb03382.x.; Eskander R.N., Randall L.M., Berman M.L. et al. Fertility preserving options in patients with gynecologic malignancies. Am J Obstet Gynecol. 2011;205(2):103–10. https://doi.org/10.1016/j.ajog.2011.01.025.; Nezhat F.R., DeNoble S.M., Liu C.S. et al. The safety and efficacy of laparoscopic surgical staging and debulking of apparent advanced stage ovarian, fallopian tube, and primary peritoneal cancers. JSLS. 2010;14(2):155–68. https://doi.org/10.4293/108680810X12785289143990.; Pérez-Quintanilla M., Del Real-Ordoñez S., Gallardo-Alvarado L., Cantu-de L.D. Fertility-sparing treatment for epithelial ovarian cancer: a literature review. Chin Clin Oncol. 2020;9(4):48. https://doi.org/10.21037/cco-20-38.; Fagotti A., Perelli F., Pedone L., Scambia G. Current recommendations for minimally invasive surgical staging in ovarian cancer. Curr Treat Options Oncol. 2016;17(1):3. https://doi.org/10.1007/s11864-015-0379-8.; Magrina J.F., Cetta R.L., Chang Y.H. et al. Analysis of secondary cytoreduction for recurrent ovarian cancer by robotics, laparoscopy and laparotomy. Gynecol Oncol. 2013;129(2):336–40. https://doi.org/10.1016/j.ygyno.2013.01.015.; Brown J.V., Mendivil A.A., Abaid L.N. et al. The safety and feasibility of robotic-assisted lymph node staging in early-stage ovarian cancer. Int J Gynecol Cancer. 2014;24(8):1493–8. https://doi.org/10.1097/IGC.0000000000000224.; Minig L., Padilla Iserte P., Zorrero C., Zanagnolo V. Robotic surgery in women with ovarian cancer: surgical technique and evidence of clinical outcomes. J Minim Invasive Gynecol. 2016;23(3):309–16. https://doi.org/10.1016/j.jmig.2015.10.014.; Schüring A.N., Fehm T., Behringer K. et al. Practical recommendations for fertility preservation in women by the FertiPROTEKT network. Part I: Indications for fertility preservation. Arch Gynecol Obstet. 2018;297(1):241–55. https://doi.org/10.1007/s00404-017-4594-3.; Fageeh W., Raffa H., Jabbad H., Marzouki A. Transplantation of the human uterus. Int J Gynaecol Obstet. 2002;76(3):245–51. https://doi.org/10.1016/s0020-7292(01)00597-5.; Ozkan O., Ozkan O., Dogan N.U. et al. Birth of a healthy baby 9 years after a surgically successful deceased donor uterus transplant. Ann Surg. 2022;275(5):825–32. https://doi.org/10.1097/SLA.0000000000005346.; Brännström M., Johannesson L., Bokström H. et al. Livebirth after uterus transplantation. Lancet. 2015;385(9968):607–16. https://doi.org/10.1016/S0140-6736(14)61728-1.; Wei L., Xue T., Tao K.S. et al. Modified human uterus transplantation using ovarian veins for venous drainage: the first report of surgically successful robotic-assisted uterus procurement and follow-up for 12 months. Fertil Steril. 2017;108(2):346–356.e1. https://doi.org/10.1016/j.fertnstert.2017.05.039.; https://www.gynecology.su/jour/article/view/2421

Availability: https://www.gynecology.su/jour/article/view/2421
https://doi.org/10.17749/2313-7347/ob.gyn.rep.2025.628

Molecular genetic analysis of the interaction of genes associated with reproductive functions of animals ; Молекулярно-генетический анализ взаимодействия генов, ассоциированных с репродуктивными функциями животных

Authors: E. A. Klimanova, D. A. Alexandrova, N. N. Kochnev, Е. А. Климанова, Д. А. Александрова, Н. Н. Кочнев

Source: Bulletin of NSAU (Novosibirsk State Agrarian University); № 1 (2025); 170-176 ; Вестник НГАУ (Новосибирский государственный аграрный университет); № 1 (2025); 170-176 ; 2072-6724

Subject Terms: овцы, protein-protein interactions, signaling pathways, fertility, sheep, белок-белковые взаимодействия, сигнальные пути, фертильность

File Description: application/pdf

Relation: https://vestngau.elpub.ru/jour/article/view/2531/1110; Molecular forms of BMP15 and GDF9 in mammalian species that differ in litter size / G.W. Swinerd, A.A. Alhussini, S. Sczelecki [et al.] // Sci. Rep. – 2023. – № 13(1). – P. 22428. – DOI:10.1038/s41598-023-49852-1.; Климанова Е.А., Коновалова Т.В. Полиморфизм локуса ВМР-15 у овец романовской породы в условиях Западной Сибири // Вестник НГАУ (Новосибирский государственный аграрный университет). – 2023. – № 2(67). – С. 197–204. – DOI:10.31677/2072-6724-2023-67-2-197-204.; Novel Variants in GDF9 gene affect promoter activity and litter size in Mongolia sheep / B. Tong, J. Wang, Z. Cheng [et al.] // Genes (Basel). – 2020. – № 11(4). – P. 375. – DOI:10.3390/genes11040375.; Eukaryotic expression, Co-IP and MS identify BMPR-1B protein-protein interaction network / J. Jia, J. Jin, Q. Chen [et al.] // Biol. Res. – 2020. – № 53(1). – P. 24. – DOI:10.1186/s40659-020-00290-7.; Климанова Е.А., Коновалова Т.В., Кочнев Н.Н. Полиморфизм локуса ВМРR-IB у овец романовской породы в условиях Кузбасса // Зоотехния. – 2024. – № 1. – С. 15–17. – DOI:10.25708/ZT.2023.56.90.005.; Распределение генотипов по локусу гена дифференциального фактора роста 9 (GDF-9) в популяции овец романовской породы / Е.А. Климанова, Т.В. Коновалова, О.С. Короткевич [и др.] // Вестник НГАУ (Новосибирский государственный аграрный университет). – 2024. – № 3(72). – С. 196–204. – DOI:10.31677/2072-6724-2024-72-3-196-204.; Климанова Е.А. Количество лейкоцитов в крови овец романовской породы с учетом полиморфизма в гене ВМР-15 // Роль аграрной науки в устойчивом развитии сельских территорий: сб. IX Всерос. (нац.) науч. конф. с междунар. участием, Новосибирск, 20 декабря 2024 г. – Новосибирск: ИЦ НГАУ «Золотой колос», 2024. – С. 345–348.; GDF9 concentration in embryo culture medium is linked to human embryo quality and viability / J. Li, C. Li, X. Liu [et al.] // J. Assist. Reprod. Genet. – 2022. – № 39 (1). – P. 117–125. – DOI:10.1007/s10815-021-02368-x.; A 5-methylcytosine site of growth differentiation factor 9 (GDF9) gene affects its tissue-specific expression in sheep / Z. Pan, X. Wang, R. Di [et al.] // Animals (Basel). – 2018. – № 8(11). – P. 200. – DOI:10.3390/ani8110200.; Detection of genetic variations in the GDF9 and BMP15 genes in Kazakh meat-wool sheep / M. Amandykova, Z. Orazymbetova, T. Kapassuly [et al.] // Arch. Anim. Breed. – 2023. – № 66(4). – P. 401–409. – DOI:10.5194/aab-66-401-2023.; Single base editing system mediates site-directed mutagenesis of genes GDF9 and FecB in Ouler Tibetan sheep / Y. Zhao, Y. Zhang, R. Yu [et al.] // Sheng Wu Gong Cheng Xue Bao. – 2023. – № 39(1). – P. 204–216. – DOI:10.13345/j.cjb.220427.; BMP15 regulates the inhibin/activin system independently of ovulation rate control in sheep / A. Estienne, B. Lahoz, P. Jarrier [et al.] // Reproduction. – 2017. – № 153(4). – P. 395–404. – DOI:10.1530/REP-16-0507.; An investigation of the effects of BMPR1B, BMP15, and GDF9 genes on litter size in Ramlıç and Dağlıç sheep / K. Çelikeloğlu, M. Tekerli, M. Erdoğan [et al.] // Arch. Anim. Breed. – 2021. – № 64(1). – P. 223–230. – DOI:10.5194/aab-64-223-2021.; Detection of novel variations related to litter size in BMP15 gene of luzhong mutton sheep (Ovis aries) / R. Di, F. Wang, P. Yu [et al.] // Animals (Basel). – 2021. – № 11(12). – P. 3528. – DOI:10.3390/ani11123528.; Study on the correlation between BMPR1B protein in sheep blood and reproductive performance / X. Zhang, L. Zhang, W. Sun [et al.] // J. Anim. Sci. – 2020. – № 98(5). – P. 100. – DOI:10.1093/jas/skaa100.; Genome-wide survey of human alternative pre-mRNA splicing with exon junction microarrays / J.M. Johnson, J. Castle, P. Garrett-Engele [et al.] // Science. – 2003. – № 302(5653). – P. 2141–2144. – DOI:10.1126/science.1090100.; https://vestngau.elpub.ru/jour/article/view/2531

Availability: https://vestngau.elpub.ru/jour/article/view/2531
https://doi.org/10.31677/2072-6724-2025-74-1-170-176

Genetic evidence for modern reticulate microevolution in mixed populations of Elymus uralensis, E. viridiglumis, E. mutabilis, and E. caninus (Poaceae) in the Southern Urals

Authors: Elena V. Shabanova (Kobozeva), Sergey V. Asbaganov, Alexander V. Agafonov

Source: Turczaninowia; Том 27 № 4 (2024): Turczaninowia; 141–156
Turczaninowia; Vol 27 No 4 (2024): Turczaninowia; 141–156

Subject Terms: fertility, репродуктивная изоляция, variability, фертильность, reproductive isolation, ISSR, изменчивость, introgression, гибридизация, интрогрессия, hybridization

File Description: application/pdf

Access URL: https://turczaninowia.asu.ru/article/view/16653

Efectele substanțelor auxiliare folosite în dopaj asupra funcţiei sexual-reproductive masculine

Authors: Creciun, M.I., Ghenciu, V.I., Arian, I., Tataru, C., Dumbrăveanu, I.V.

Source: Sănătate Publică, Economie şi Management în Medicină 102 (5) 162-167

Subject Terms: agonişti beta2 adrenerigici, inhibitori demiostatină, peptide hormones, hormoni peptidici, derivați ai aminoacizilor, beta-2 adrenergicagonists, SARM, пептидные гормоны, ингибиторы миостатина, fertilitate, Fertility, производные аминокислоты, бета-2адренергические агонисты, Фертильность, amino acid derivatives, myostatin inhibitors

File Description: application/pdf

Access URL: https://ibn.idsi.md/vizualizare_articol/215791

Utilizarea glucocorticoizilor sistemici în sarcină

Authors: Guţu, I.A., Bacinschi, N.G., Bachinsky, N., Caracaş, A., Cernelev, V.

Source: Sănătate Publică, Economie şi Management în Medicină 102 (5) 126-132

Subject Terms: glucocorticoizi, глюкокортикоиды, farmacocinetica, naştere prematură, preterm birth, boli autoimune, sarcina, fertilitate, Fertility, аутоиммунные заболевания, Фертильность, Pharmacokinetics, autoimmune diseases, pregnancy, фармакокинетика, Glucocorticoids, преждевременные роды, беременность

File Description: application/pdf

Access URL: https://ibn.idsi.md/vizualizare_articol/215784

Показатели сыворотки крови самцов собак при бесплодии на фоне оксидативного стресса

Subject Terms: 2. Zero hunger, fertility, фертильность, витамин Е, vitamin C, vitamin E, sex hormones, 3. Good health, male dogs, самцы собак, половые гормоны, бесплодие, витамин С, infertility

Использование длины теломер как маркер продуктивного долголетия крупного рогатого скота

Subject Terms: молочные коровы, методы селекции, гены, сельское хозяйство, фертильность, крупный рогатый скот, ДНК-маркеры, животноводство, отчеты о НИР, научно-исследовательские отчеты, теломеры

File Description: application/pdf

Access URL: https://rep.vsu.by/handle/123456789/48066

Chemical elements and features of functional systems of the body of horses of different genetic groups and areas of use. Part 2

Source: Horse breeding and equestrian sports. :14-18

Subject Terms: ФЕРТИЛЬНОСТЬ, БИОХИМИЧЕСКИЕ ПОКАЗАТЕЛИ, МОЛЕКУЛЯРНО-ГЕНЕТИЧЕСКИЕ МАРКЕРЫ, ЛОШАДЬ, КРИОРЕЗИСТЕНТНОСТЬ, ЭЛЕМЕНТНЫЙ СТАТУС, КОРРЕЛЯЦИОННЫЙ АНАЛИЗ, ГЕНЕТИЧЕСКИЕ РЕСУРСЫ, ПРОДУКТИВНОСТЬ

METHODS OF TREATMENT OF SYMPTOMATIC UTERINE FIBROIDS THROUGH THE PRISM OF TIME (REVIEW OF SCIENTIFIC LITERATURE)

Authors: Марина Алексеевна Тимченко, Юрий Сергеевич Оловянников, Мария Геннадьевна Николаева

Source: Мать и дитя в Кузбассе, Vol 24, Iss 1, Pp 20-29 (2023)

Subject Terms: миома матки, миомэктомия, эмболизация маточных артерий, фертильность, Pediatrics, RJ1-570, Gynecology and obstetrics, RG1-991

File Description: electronic resource

Relation: https://mednauki.ru/index.php/MD/article/view/838; https://doaj.org/toc/1991-010X; https://doaj.org/toc/2542-0968

Access URL: https://doaj.org/article/5975b3e3ebf4452d973646b2b83ea54c

Prevalence of AZFс Y chromosome microdeletions and association with spermatogenesis in Russian men from the general population ; Распространенность микроделеций AZFc региона Y-хромосомы и влияние на сперматогенез у российских мужчин из общей популяции

Authors: L. V. Osadchuk, G. V. Vasiliev, M. K. Ivanov, M. A. Prasolova, M. A. Kleshchev, A. V. Osadchuk, Л. В. Осадчук, Г. В. Васильев, М. К. Иванов, М. А. Прасолова, М. А. Клещев, А. В. Осадчук

Contributors: This study was supported by the state assignment FWNR-2022-0021.

Source: Vavilov Journal of Genetics and Breeding; Том 28, № 7 (2024); 780-791 ; Вавиловский журнал генетики и селекции; Том 28, № 7 (2024); 780-791 ; 2500-3259 ; 10.18699/vjgb-24-75

Subject Terms: общая популяция, spermatogenesis, male fertility, general population, сперматогенез, мужская фертильность

File Description: application/pdf

Relation: https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/4351/1885; Akbarzadeh Khiavi M., Jalili A., Safary A., Gharedaghchi Z., Mirinezhad S.K., Mehdizadeh A., Rahmani S.A. Karyotypic abnormalities and molecular analysis of Y chromosome microdeletion in Iranian Azeri Turkish population infertile men. Syst. Biol. Reprod. Med. 2020;66(2):140-146. DOI 10.1080/19396368.2019.1682083; Alimardanian L., Saliminejad K., Razi S., Ahani A. Analysis of partial azoospermia factor c deletion and DAZ copy number in azoospermia and severe oligozoospermia. Andrologia. 2016;48(9):890-894. DOI 10.1111/and.12527; Arredi B., Ferlin A., Speltra E., Bedin C., Zuccarello D., Ganz F., Marchina E., Stuppia L., Krausz C., Foresta C. Y-chromosome haplogroups and susceptibility to azoospermia factor c microdeletion in an Italian population. J. Med. Genet. 2007;44(3):205-208. DOI 10.1136/jmg.2006.046433; Bahmanimehr A., Zeighami S., Namavar Jahromi B., Anvar Z., Parsanezhad M.E., Davari M., Montazeri S. Detection of Y chromosome microdeletions and hormonal profile analysis of infertile men undergoing assisted reproductive technologies. Int. J. Fertil. Steril. 2018;12(2):173-177. DOI 10.22074/ijfs.2018.5244; Balanovska E.V., Balanovsky O.P. The Russian Gene Pool on the Russian Plain. Moscow, 2007 (in Russian); Bansal S.K., Gupta G., Rajender S. Y chromosome b2/b3 deletions and male infertility: a comprehensive meta-analysis, trial sequential analysis and systematic review. Mutat. Res. Rev. Mutat. Res. 2016a; 768:78-90. DOI 10.1016/j.mrrev.2016.04.007; Bansal S.K., Jaiswal D., Gupta N., Singh K., Dada R., Sankhwar S.N., Gupta G., Rajender S. Gr/gr deletions on Y-chromosome correlate with male infertility: an original study, meta-analyses, and trial sequential analyses. Sci. Rep. 2016b;6:19798. DOI 10.1038/srep19798; Barkov I.Yu., Soroka N.E., Popova A.Yu., Gamidov S.I., Belyaeva N.A., Glinkina Zh.I., Kalinina E.A., Trofimov D.Yu., Sukhikh G.T. Diagnosis of male infertility associated with microdeletions at the AZF locus of the Y chromosome. Akusherstvo i Ginekologiya = Obstetrics and Gynecology. 2014;1:59-64 (in Russian); Behulova R., Varga I., Strhakova L., Bozikova A., Gabrikova D., Boronova I., Repiska V. Incidence of microdeletions in the AZF region of the Y chromosome in Slovak patients with azoospermia. Biomed. Pap. Med. Fac. Univ. Palacky Olomouc Czech. Repub. 2011;155(1): 33-38. DOI 10.5507/bp.2011.006; Beyaz C.C., Gunes S., Onem K., Kulac T., Asci R. Partial deletions of Y-chromosome in infertile men with non-obstructive azoospermia and oligoasthenoteratozoospermia in a Turkish population. In Vivo. 2017;31(3):365-371. DOI 10.21873/invivo.11068; Chernykh V.B., Chukhrova A.L., Beskorovainaya T.S., Grishina E.M., Sorokina T.M., Shileiko L.V., Gogolevsky P.A., Kalugina A.S., Morina G.V., Togobetsky A.S., Tanevsky V.E., Zdanovsky V.M., Gogolevskaya I.K., Kramerov D.A., Polyakov A.V., Kurilo L.F. Types of Y chromosome deletions and their frequency in infertile men. Russ. J. Genet. 2006;42(8):936-941. DOI 10.1134/S1022795406080138; ChernykhV.B., Rudneva S.A., Sorokina T.M., Shileyko L.V., Kurilo L.F., Ryzhkova O.P., Chukhrova A.L., Polyakov A.V. Characteristics of spermatogenesis in infertile men with the AZFc region deletions. Andrologiya i Genitalnaya Khirurgiya = Andrology and Genital Surgery. 2014;2:48-57 (in Russian); Chernykh V.B., Ryzhkova O.P., Kuznetsova I.A., Kazaryan M.S., Sorokina T.M., Kurilo L.F., Schagina O.A., Polyakov A.V. Deletions in AZFc region of Y chromosome in Russian fertile men. Russ. J. Genet. 2022;58(7):850-856. DOI 10.1134/s1022795422070043; Choi J., Song S.H., Bak C.W., Sung S.R., Yoon T.K., Lee D.R., Shim S.H. Impaired spermatogenesis and gr/gr deletions related to Y chromosome haplogroups in Korean men. PLoS One. 2012;7(8): e43550. DOI 10.1371/journal.pone.0043550; Cioppi F., Rosta V., Krausz C. Genetics of azoospermia. Int. J. Mol. Sci. 2021;22(6):3264. DOI 10.3390/ijms22063264; Colaco S., Modi D. Genetics of the human Y chromosome and its association with male infertility. Reprod. Biol. Endocrinol. 2018; 16(1):14. DOI 10.1186/s12958-018-0330-5; Deng C.Y., Zhang Z., Tang W.H., Jiang H. Microdeletions and vertical transmission of the Y-chromosome azoospermia factor region. Asian J. Androl. 2023;25(1):5-12. DOI 10.4103/aja2021130; Derenko M., Malyarchuk B., Denisova G., Wozniak M., Grzybowski T., Dambueva I., Zakharov I. Y-chromosome haplogroup N dispersals from south Siberia to Europe. J. Hum. Genet. 2007;52(9):763-770. DOI 10.1007/s10038-007-0179-5; Ferlin A., Tessari A., Ganz F., Marchina E., Barlati S., Garolla A., Engl B., Foresta C. Association of partial AZFc region deletions with spermatogenic impairment and male infertility. J. Med. Genet. 2005;42(3):209-213. DOI 10.1136/jmg.2004.025833; Fu M., Chen M., Guo N., Lin M., Li Y., Huang H., Cai M., Xu L. Molecular genetic analysis of 1,980 cases of male infertility. Exp. Ther. Med. 2023;26(1):345. DOI 10.3892/etm.2023.12044; Ghorbel M., Gargouri S.B., Zribi N., Abdallah F.B., Cherif M., Keskes R., Chakroun N., Sellami A., McElreavey K., Fakhfakh F., Ammar-Keskes L. Partial microdeletions in the Y-chromosome AZFc region are not a significant risk factor for spermatogenic impairment in Tunisian infertile men. Genet. Test. Mol. Biomarkers. 2012;16(7): 775-779. DOI 10.1089/gtmb.2012.0024; Hallast P., Kibena L., Punab M., Arciero E., Rootsi S., Grigorova M., Flores R., Jobling M.A., Poolamets O., Pomm K., Korrovits P., Rull K., Xue Y., Tyler-Smith C., Laan M. A common 1.6 MB Ychromosomal inversion predisposes to subsequent deletions and severe spermatogenic failure in humans. eLife. 2021;10:e65420. DOI 10.7554/eLife.65420; Hucklenbroich K., Gromoll J., Heinrich M., Hohoff C., Nieschlag E., Simoni M. Partial deletions in the AZFc region of the Y chromosome occur in men with impaired as well as normal spermatogenesis. Hum. Reprod. 2005;20(1):191-197. DOI 10.1093/humrep/deh558; Iijima M., Shigehara K., Igarashi H., Kyono K., Suzuki Y., Tsuji Y., Kobori Y., Kobayashi H., Mizokami A. Y chromosome microdeletion screening using a new molecular diagnostic method in 1030 Japanese males with infertility. Asian J. Androl. 2020;22(4):368-371. DOI 10.4103/aja.aja_97_19; Ilumäe A.M., Reidla M., Chukhryaeva M., Järve M., Post H., Karmin M., Saag L., Agdzhoyan A., Kushniarevich A., Litvinov S., Ekomasova N., Tambets K., Metspalu E., Khusainova R., Yunusbayev B., Khusnutdinova E.K., Osipova L.P., Fedorova S., Utevska O., Koshel S., Balanovska E., Behar D.M., Balanovsky O., Kivisild T., Underhill P.A., Villems R., Rootsi S. Human Y chromosome haplogroup N: a non-trivial time-resolved phylogeography that cuts across language families. Am. J. Hum. Genet. 2016;99(1): 163-173. DOI 10.1016/j.ajhg.2016.05.025; Johnson M., Raheem A., De Luca F., Hallerstrom M., Zainal Y., Poselay S., Mohammadi B., Moubasher A., Johnson T.F., Muneer A., Sangster P., Ralph D.J. An analysis of the frequency of Y-chromosome microdeletions and the determination of a threshold sperm concentration for genetic testing in infertile men. BJU Int. 2019; 123(2):367-372. DOI 10.1111/bju.14521; Krausz C., Casamonti E. Spermatogenic failure and the Y chromosome. Hum. Genet. 2017;136(5):637-655. DOI 10.1007/s00439-017-1793-8; Krausz C., Cioppi F., Riera-Escamilla A. Testing for genetic contributions to infertility: potential clinical impact. Expert Rev. Mol. Diagn. 2018;18(4):331-346. DOI 10.1080/14737159.2018.1453358; Krausz C., Navarro-Costa P., Wilke M., Tüttelmann F. EAA/EMQN best practice guidelines for molecular diagnosis of Y-chromosomal microdeletions: state of the art 2023. Andrology. 2024;12(3):487- 504. DOI 10.1111/andr.13514; Kuroda S., Usui K., Sanjo H., Takeshima T., Kawahara T., Uemura H., Yumura Y. Genetic disorders and male infertility. Reprod. Med. Biol. 2020;19(4):314-322. DOI 10.1002/rmb2.12336; Kuzmanovska M., Noveski P., Terzic M., Plaseski T., Kubelka-Sabit K., Filipovski V., Lazarevski S., Sukarova Stefanovska E., PlaseskaKaranfilska D. Y-chromosome haplogroup architecture confers susceptibility to azoospermia factor c microrearrangements: a retrospective study. Croat. Med. J. 2019;60(3):273-283. DOI 10.3325/cmj.2019.60.273; Lebedev G.S., Golubev N.A., Shaderkin I.A., Shaderkina V.A., Apolikhin O.I., Sivkov A.V., Komarova V.A. Male infertility in the Russian Federation: statistical data for 2000–2018. Eksperimental’naya i Klinicheskaya Urologiya = Experimental and Clinical Urology. 2019; 4:4-12. DOI 10.29188/2222-8543-2019-11-4-4-12 (in Russian); Levkova M., Chervenkov T., Angelova L. The association of gr/gr deletion in the Y chromosome and impaired spermatogenesis in Bulgarian males: a pilot study. Middle East Fertil. Soc. J. 2020;25:10. DOI 10.1186/s43043-020-00020-9; Liu T., Song Y.X., Jiang Y.M. Early detection of Y chromosome microdeletions in infertile men is helpful to guide clinical reproductive treatments in southwest of China. Medicine (Baltimore). 2019; 98(5):e14350. DOI 10.1097/MD.0000000000014350; Lo Giacco D., Chianese C., Sánchez-Curbelo J., Bassas L., Ruiz P., Rajmil O., Sarquella J., Vives A., Ruiz-Castañé E., Oliva R., Ars E., Krausz C. Clinical relevance of Y-linked CNV screening in male infertility: new insights based on the 8-year experience of a diagnostic genetic laboratory. Eur. J. Hum. Genet. 2014;22(6):754-761. DOI 10.1038/ejhg.2013.253; Lu C., Jiang J., Zhang R., Wang Y., Xu M., Qin Y., Lin Y., Guo X., Ni B., Zhao Y., Diao N., Chen F., Shen H., Sha J., Xia Y., Hu Z., Wang X. Gene copy number alterations in the azoospermia-associated AZFc region and their effect on spermatogenic impairment. Mol. Hum. Reprod. 2014;20(9):836-843. DOI 10.1093/molehr/gau043; Mikhaylenko D.S., Sobol I.Y., Safronova N.Y., Simonova O.A., Efremov E.A., Efremov G.D., Alekseev B.Y., Kaprin A.D., Nemtsova M.V. The incidence of AZF deletions, CFTR mutations and long alleles of the AR CAG repeats during the primary laboratory diagnostics in a heterogeneous group of infertily men. Urologiia. 2019; 3:101-107. DOI 10.18565/urology.2019.3.101-107 (in Russian); Mokánszki A., Ujfalusi A., Gombos É., Balogh I. Examination of Y-chromosomal microdeletions and partial microdeletions in idiopathic infertility in East Hungarian patients. J. Hum. Reprod. Sci. 2018;11(4):329-336. DOI 10.4103/jhrs.JHRS_12_18; Osadchuk L.V., Shantanova L.N., Troev I.V., Kleshchev M.A., Osadchuk A.V. Regional and ethnic differences in semen quality and reproductive hormones in Russia: a Siberian population-based cohort study of young men. Andrology. 2021;9:1512-1525. DOI 10.1111/andr.13024; Osadchuk L., Vasiliev G., Kleshchev M., Osadchuk A. Androgen receptor gene CAG repeat length varies and affects semen quality in an ethnic-specific fashion in young men from Russia. Int. J. Mol. Sci. 2022;23(18):10594. DOI 10.3390/ijms231810594; Pan Y., Li L.L., Yu Y., Jiang Y.T., Yang X., Zhang H.G., Liu R.Z., Wang R.X. Natural transmission of b2/b3 subdeletion or duplication to expanded Y chromosome microdeletions. Med. Sci. Monit. 2018;24:6559-6563. DOI 10.12659/MSM.911644; Peterlin B., Kunej T., Sinkovec J., Gligorievska N., Zorn B. Screening for Y chromosome microdeletions in 226 Slovenian subfertile men. Hum. Reprod. 2002;17(1):17-24. DOI 10.1093/humrep/17.1.17; Plaseski T., Novevski P., Kocevska B., Dimitrovski C., Efremov G.D., Plaseska-Karanfilska D. AZF deletions in infertile men from the Republic of Macedonia. Prilozi. 2006;27(1):5-16; Repping S., van Daalen S.K., Korver C.M., Brown L.G., Marszalek J.D., Gianotten J., Oates R.D., Silber S., van der Veen F., Page D.C., Rozen S. A family of human Y chromosomes has dispersed throughout northern Eurasia despite a 1.8-Mb deletion in the azoospermia factor c region. Genomics. 2004;83(6):1046-1052. DOI 10.1016/j.ygeno.2003.12.018; Rozen S.G., Marszalek J.D., Irenze K., Skaletsky H., Brown L.G., Oates R.D., Silber S.J., Ardlie K., Page D.C. AZFc deletions and spermatogenic failure: a population-based survey of 20,000 Y chromosomes. Am. J. Hum. Genet. 2012;91(5):890-896. DOI 10.1016/j.ajhg.2012.09.003; Sin H.S., Koh E., Shigehara K., Sugimoto K., Maeda Y., Yoshida A., Kyono K., Namiki M. Features of constitutive gr/gr deletion in a Japanese population. Hum. Reprod. 2010;25(9):2396-2403. DOI 10.1093/humrep/deq191; Stepanov V.A., Khar’kov V.N., Puzyrev V.P. Evolution and phylogeography of human Y-chromosomal lineages. Informatsionnyy Vestnik VOGiS = The Herald of Vavilov Society for Geneticists and Breeders. 2006;10(1):57-74 (in Russian); Waseem A.S., Singh V., Makker G.C., Trivedi S., Mishra G., Singh K., Rajender S. AZF deletions in Indian populations: original study and meta-analyses. J. Assist. Reprod. Genet. 2020;37(2):459-469. DOI 10.1007/s10815-019-01661-0; WHO Laboratory Manual for the Examination and Processing of Human Semen. 5th ed. Geneva: World Health Organization, 2010; WHO Laboratory Manual for the Examination and Processing of Human Semen. 6th ed. Geneva: World Health Organization, 2021; Yang Y., Ma M., Li L., Su D., Chen P., Ma Y., Liu Y., Tao D., Lin L., Zhang S. Differential effect of specific gr/gr deletion subtypes on spermatogenesis in the Chinese Han population. Int. J. Androl. 2010;33(5):745-754. DOI 10.1111/j.1365-2605.2009.01015.x; Ye J.J., Ma L., Yang L.J., Wang J.H., Wang Y.L., Guo H., Gong N., Nie W.H., Zhao S.H. Partial AZF c duplications not deletions are associated with male infertility in the Yi population of Yunnan Province, China. J. Zhejiang Univ. Sci. B. 2013;14(9):807-815. DOI 10.1631/jzus.B1200301; Zhang F., Lu C., Li Z., Xie P., Xia Y., Zhu X., Wu B., Cai X., Wang X., Qian J., Wang X., Jin L. Partial deletions are associated with an increased risk of complete deletion in AZFc: a new insight into the role of partial AZFc deletions in male infertility. J. Med. Genet. 2007;44(7):437-444. DOI 10.1136/jmg.2007.049056; Zobkova G.Yu., Baranova Е.Е., Donnikov А.Е., Mskhalaya G.J., Zaletova V.V., Koshkina Т.Е., Тrofimov D.Yu. Range of azoospermia factor (AZF) deletions in men with normal and disturbed spermatogenesis. Problemy Reproduktsii = Russian Journal of Human Reproduction. 2017;4:109-113. DOI 10.17116/repro2017234109-113 (in Russian).; https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/4351

Availability: https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/4351
https://doi.org/10.18699/vjgb-24-86

The research of the Phlox paniculata L. flowering biological features ; Изучение биологических особенностей цветения культуры флокс метельчатый (Phlox paniculata L.)

Authors: A. I. Sokolkina, O. E. Khanbabaeva, V. L. Kudusova, V. N. Sorokopudov, А. И. Соколкина, О. Е. Ханбабаева, В. Л. Кудусова, В. Н. Сорокопудов

Source: Vegetable crops of Russia; № 5 (2024); 38-44 ; Овощи России; № 5 (2024); 38-44 ; 2618-7132 ; 2072-9146

Subject Terms: морфология цветка, flowering biology, synflorescences, pollen fertility, flower morphology, биология цветения, синфлоресценция, фертильность пыльцы

File Description: application/pdf

Relation: https://www.vegetables.su/jour/article/view/2491/1589; Гаганов П.Г. Флоксы многолетние. Сельхозиздат, 1963. 208 с.; Мазаева А.С. Флокс метельчатый (Phlox paniculata L.). Проблематика культуры: особенности размножения, болезни и методики оценки декоративных качеств. Национальная ассоциация ученых. 2016;3-2(19):27-29.; Сорокопудова О.А., Артюхова А.В. Перспективные для озеленения сорта многолетних флоксов коллекции ФГБНУ ВСТИСП. Садоводство и виноградарство. 2018;(1):42-50. https://doi.org/10.25556/VSTISP.2018.1.10524 https://elibrary.ru/nsgnnl; Исакова А.Л. Жизнеспособность и фертильность пыльцы нигеллы посевной (Nigella sativa L.) и нигеллы дамасской (Nigella damascena L.). Вестник Белорусской государственной сельскохозяйственной академии. 2017;(4):61-64. https://elibrary.ru/ylpycf; Артемова А.А., Соколкина, А.И. Флокс - популярная культура в частном озеленении. Вестник ландшафтной архитектуры. 2023;(36):37. https://elibrary.ru/khyqdc; Келдыш М.А., Червякова О.Н. Болезни флокса метельчатого (Phlox paniculata L.) и экологизация защиты растений. Плодоводство и ягодоводство России. 2016;(46):127-130. https://elibrary.ru/wmhgit; Suarez J.C.A., Ramos C.P.F. Identification of sources of male sterility in the Colombian Coffee Collection for the genetic improvement of Coffea arabica L. PLoS ONE. 2023;18(9):e0291264. http://doi.org/10.1371/journal.pone.0291264; Цаценко Л.В., Логвинов А.В. Пыльцевой анализ растений в селекционной практике Просвещение-юг, 2021. 101 с. ISBN: 978-5-93491887-4. https://elibrary.ru/fevzvc; Fauziah Q., Susanti S. Morphological Structure and Fertility of Melinjo (Gnetum gnemon L.) Pollen based on Microscopic Data. Berkala Ilmiah Biologi. 2022;(13):1-12. https://doi.org/10.22146/bib.v13i2.4380; Jafarzadeh S., Iskandar E. Comparative study of pollen morphology and fertility in Pyrus L. species under in situ and ex situ conditions in Greater Caucasus, Azerbaijan. BIO Web of Conferences. 2024;(100):03006. https://doi.org/10.1051/bioconf/202410003006; Nayab N. Pollen fertility estimation of some medicinal plants of Samastipur District of Bihar, India. Plant Taxonomy And Traditional Knowledge In The Himalayas And North-East India & Annual Conference Of East Himalayan Society For Spermatophyte. 2022.; Василевская Н.В. Фертильность пыльцы как показатель мутагенности городской среды. Мировая экологическая повестка и Россия : Материалы Всероссийской научной онлайн-конференции с международным участием, Москва, 16–18 ноября 2020 года. 2020. С. 208-213. https://elibrary.ru/pyqkwm; Воронова О.Н., Гаврилова В.А. Количественный и качественный анализ пыльцы подсолнечника (Helianthus L.) и его использование в селекционной работе. Труды по прикладной ботанике, генетике и селекции. 2019;180(1):95-104. https://doi.org/10.30901/2227-8834-20191-95-104 https://elibrary.ru/liuqsx; Эрдтман Г. Морфология пыльцы и систематика растений (введение в палинологию). Изд-во иностр. лит., 1956. 485 с.; Alexander M.P. Differential staining of aborted and nonaborted pollen. Stain Technology. 1969;44(3):117-122.; Барыкина Р.П., Веселова Т.Д., Девятов А.Г. и др. Справочник по ботанической микротехнике. Основы и методы. М.: Изд-во МГУ, 2004. 312 с.; Ханбабаева О.Е., Иванова И.В., Тазина С.В. Цветоводство с основами ландшафтного дизайна. МЭСХ, 2019. 150 с. ISBN: 978-56042797-2-4. https://elibrary.ru/ulqjew; Бутенкова А.Н. Биологические особенности видов и сортов рода флокс (Phlox L., Polemoniaceae) в подзоне южной тайги Западной Сибири. Томск, 2014. 22 с.; Методика проведения испытаний на отличимость, однородность и стабильность. Флокс метельчатый, флокс пятнистый и их гибриды. 2016. RTG/1056/1. 13 с.; Соколкина А.И., Ханбабаева О.Е. Классификация сортов флокса метельчатого (Phlox paniculata L.) по фенологическим и морфологическим признакам. Тенденции развития науки и образования. 2022;(811):152-158. https://doi.org/10.18411/trnio-01-2022-41 https://elibrary.ru/bxaswz; Ковалева И.С., Мацнева А.Е., Ханбабаева О.Е. Оптимизация условий культивирования сортов флокса метельчатого (Phlox paniculata L.). Вестник Курской государственной сельскохозяйственной академии. 2018;(9):108-110. https://elibrary.ru/tprtyh; https://www.vegetables.su/jour/article/view/2491

Availability: https://www.vegetables.su/jour/article/view/2491
https://doi.org/10.18619/2072-9146-2024-5-38-44

Balanced X-autosome translocations and male infertility ; Сбалансированные Х-аутосомные транслокации и мужское бесплодие

Authors: M. V. Andreeva, L. F. Kurilo, V. B. Chernykh, М. В. Андреева, Л. Ф. Курило, В. Б. Черных

Contributors: The work was carried out under the state assignment for the Research Centre for Medical Genetics., Работа выполнена в рамках государственного задания Минобрнауки России для ФГБНУ «МГНЦ».

Source: Medical Genetics; Том 23, № 3 (2024); 3-11 ; Медицинская генетика; Том 23, № 3 (2024); 3-11 ; 2073-7998

Subject Terms: фертильность, male infertility, meiosis, germ cells, spermatogenesis, fertility, мужское бесплодие, мейоз, половые клетки, сперматогенез

File Description: application/pdf

Relation: https://www.medgen-journal.ru/jour/article/view/2451/1775; Zegers-Hochschild F., Adamson G.D., de Mouzon J., et al. International Committee for Monitoring Assisted Reproductive Technology; World Health Organization. International Committee for Monitoring Assisted Reproductive Technology (ICMART) and the World Health Organization (WHO) revised glossary of ART terminology, 2009. Fertil Steril. 2009;92(5):1520-4. doi:10.1016/j.fertnstert.2009.09.009.; Sharlip I.D., Jarow J.P., Belker A.M., et al. Best practice policies for male infertility. Fertil Steril. 2002;77(5):873-82. doi:10.1016/s0015-0282(02)03105-9.; Thonneau P., Marchand S., Tallec A., et al. Incidence and main causes of infertility in a resident population (1,850,000) of three French regions (1988-1989). Hum Reprod. 1991;6(6):811-6. doi:10.1093/oxfordjournals.humrep.a137433.; WHO laboratory manual for the examination and processing of human semen. 5th ed. WHO, 2010. 271 p.; Chandley A.C. The chromosomal basis of human infertility. Br Med Bull. 1979;35(2):181-6. doi:10.1093/oxfordjournals.bmb.a071567.; Mattei M.G., Mattei J.F., Ayme S., Giraud F. X-autosome translocations: cytogenetic characteristics and their consequences. Hum Genet. 1982;61(4):295-309. doi:10.1007/BF00276593.; McKinlay Gardner R.J., Amor D.J. Gardner and Sutherland’s Chromosome Abnormalities and Genetic Counseling, 5 edn, Oxford Monographs on Medical Genetics (New York, 2018; online edn, Oxford Academic, 1 Feb. 2018), https://doi.org/10.1093/med/9780199329007.001.0001; Madan K. Balanced structural changes involving the human X: effect on sexual phenotype. Hum Genet. 1983;63(3):216-21. doi:10.1007/BF00284652.; Diedrich U., Hansmann I. A familial X-autosome translocation with the breakpoint in the “critical region”. Hum Genet. 1985;70(3):281-3. doi:10.1007/BF00273458.; Choi L., Levy G., Donlon T., et al. Azoospermia Secondary to a Novel X-Autosomal Reciprocal Translocation: 46,Y, t(X:16) (p22.1:p11.2). Mil Med. 2020;185(9-10):e1860-e1863. doi:10.1093/milmed/usaa047.; Karaer K., Ergun M.A., Weise A., et al. The case of an infertile male with an uncommon reciprocal X-autosomal translocation: how does this affect male fertility? Genet Couns. 2010;21(4):397-404. PMID: 21290969.; Leichtman D.A., Schmickel R.D., Gelehrter T.D., et al. Familial Turner syndrome. Ann Intern Med. 1978;89(4):473-6. doi:10.7326/0003-4819-89-4-473.; Li Y., Sha Y., Wei Z., et al. A familial analysis of two brothers with azoospermia caused by maternal 46,Y, t(X;1)(q28;q21) chromosomal abnormality. Andrologia. 2021;53(1):e13867. doi:10.1111/and.13867.; Dutrillaux B., Couturier J., Rotman J., et al. Stérilité et translocation familiale t (1q-;Xq+ [Sterility and familial t (1q-;Xq+) translocation]. C R Acad Hebd Seances Acad Sci D. 1972 12;274(24):3324-7. French. PMID: 4626028.; Quack B., Speed R.M., Luciani J.M., et al. Meiotic analysis of two human reciprocal X-autosome translocations. Cytogenet Cell Genet. 1988;48(1):43-7. doi:10.1159/000132583.; Solari A.J., Rahn I.M., Ferreyra M.E., Carballo M.A. The behavior of sex chromosomes in two human X-autosome translocations: failure of extensive X-inactivation spreading. Biocell. 2001;25(2):155-66. PMID: 11590891.; Perrin A., Vialard F., Douet-Guilbert N., et al. Meiotic segregation of X-autosome translocation in two carriers and implications for assisted reproduction. Reprod Biomed Online. 2009;18(6):850-5. doi:10.1016/s1472-6483(10)60036-3.; Dong Y., Pan Y., Wang R., et al. Copy number variations in spermatogenic failure patients with chromosomal abnormalities and unexplained azoospermia. Genet Mol Res. 2015;14(4):16041-9. doi:10.4238/2015.December.7.17.; Chamayou S., Sicali M., Lombardo D., et al. The decision on the embryo to transfer after Preimplantation Genetic Diagnosis for X-autosome reciprocal translocation in male carrier. Mol Cytogenet. 2018;11:63. doi:10.1186/s13039-018-0409-x.; Kalz-Füller B., Sleegers E., Schwanitz G., Schubert R. Characterisation, phenotypic manifestations and X-inactivation pattern in 14 patients with X-autosome translocations. Clin Genet. 1999;55(5):362-6. doi:10.1034/j.1399-0004.1999.550511.x.; Cantú J.M., Díaz M., Möller M., et al. Azoospermia and duplication 3qter as distinct consequences of a familial t(X;3) (q26;q13.2). Am J Med Genet. 1985;20(4):677-84. doi:10.1002/ajmg.1320200413.; Stengel-Rutkowski S., Zankl H., Rodewald A., et al. Aspermia, associated with a presumably balanced X/autosomal translocation karyotype 46,Y,t(X;5)(q28;q11). Hum Genet. 1976 28;31(1):97-106. doi:10.1007/BF00270405.; Требка Е.Г., Богачева А.В., Гусина Н.Б. Хромосомные транслокации как причина олигозооспермии тяжелой степени и необструктивной азооспермии у мужчин. Молекулярная и прикладная генетика. 2019;26:115-125.; Lee S., Lee S.H., Chung T.G., et al. Molecular and cytogenetic characterization of two azoospermic patients with X-autosome translocation. J Assist Reprod Genet. 2003;20(9):385-9. doi:10.1023/a:1025437329427.; Zhang H.G., Wang R.X., Li L.L., et al. Male carriers of balanced reciprocal translocations in Northeast China: sperm count, reproductive performance, and genetic counseling. Genet Mol Res. 2015;14(4):18792-8. doi:10.4238/2015.; Alhalabi M., Jaber B., Al-Baroudi B., Alchamat G.A. A Rare Inherited Reciprocal Translocation Found in Two Male Infertile Siblings. JFIV Reprod Med Genet 2014; 2:1 doi:10.4172/2375-4508.1000120; Ishikawa T., Kondo Y., Yamaguchi K., et al. An unusual reciprocal X-autosome translocation in an infertile azoospermic man. Fertil Steril. 2007;88(3):705.e15-7. doi:10.1016/j.fertnstert.2006.12.067.; Buckton K.E., Jacobs P.A., Rae L.A., et al. An inherited X-autosome translocation in man. Ann Hum Genet. 1971;35(2):171-8. doi:10.1111/j.1469-1809.1956.tb01390.x.; Hwang S.H., Lee S.M., Seo E.J., et al. [A case of male infertility with a reciprocal translocation t(X;14)(p11.4;p12)]. Korean J Lab Med. 2007;27(2):139-42. Korean. doi:10.3343/kjlm.2007.27.2.139.; Fraccaro M., Maraschio P., Pasquali F., Scappaticci S. Women heterozygous for deficiency of the (p21 leads to pter) region of the X chromosome are fertile. Hum Genet. 1977;39(3):283-92. doi:10.1007/BF00295421.; Szvetko A., Martin N., Joy C., et al. Detection of chromosome x;18 breakpoints and translocation of the xq22.3;18q23 regions resulting in variable fertility phenotypes. Case Rep Genet. 2012;2012:681747. doi:10.1155/2012/681747.; Ma S., Yuen B.H., Penaherrera M., et al. ICSI and the transmission of X-autosomal translocation: a three-generation evaluation of X;20 translocation: case report. Hum Reprod. 2003;18(7):1377-82. doi:10.1093/humrep/deg247.; Ghieh F., Barbotin A.L., Prasivoravong J., et al. Azoospermia and reciprocal translocations: should whole-exome sequencing be recommended? Basic Clin Androl. 2021;31(1):27. doi:10.1186/s12610-021-00145-5.; Faed M.J., Robertson J., Lamont M.A., et al. A cytogenetic survey of men being investigated for subfertility. J Reprod Fertil. 1979;56(1):209-16. doi:10.1530/jrf.0.0560209.; Cuoco C., Gimelli G., Maraschio P., Pasquali F. X-autosomal translocations and male sterility. Clin Genet. 1980;17:61-62.; Grzesiuk J.D., Pereira C.S., Grangeiro C.H., et al. Familial chromosomal translocation X; 22 associated with infertility and recurrent X mosaicism. Mol Cytogenet. 2016 Jun 15;9:45. doi:10.1186/s13039-016-0249-5. Erratum in: Mol Cytogenet. 2016;9:53.; Marmor D., Taillemite J.L., Van den Akker J., et al. Semen analysis in subfertile balanced-translocation carriers. Fertil Steril. 1980;34(5):496-502. doi:10.1016/s0015-0282(16)45144-7.; Jalbert P., Sele B., Jalbert H. Reciprocal translocations: a way to predict the mode of imbalanced segregation by pachytene-diagram drawing. Hum Genet. 1980;55(2):209-22. doi:10.1007/BF00291769.; Alavattam K.G., Maezawa S., Andreassen P.R., Namekawa S.H. Meiotic sex chromosome inactivation and the XY body: a phase separation hypothesis. Cell Mol Life Sci. 2021;79(1):18. doi:10.1007/s00018-021-04075-3.; Oliver-Bonet M., Ko E., Martin R.H. Male infertility in reciprocal translocation carriers: the sex body affair. Cytogenet Genome Res. 2005;111(3-4):343-6. doi:10.1159/000086908.; Gabriel-Robez O., Ratomponirina C., Dutrillaux B., et al. Meiotic association between the XY chromosomes and the autosomal quadrivalent of a reciprocal translocation in two infertile men, 46,XY,t(19;22) and 46,XY,t(17;21). Cytogenet Cell Genet. 1986;43(3-4):154-60. doi:10.1159/000132314.; Perrin A., Douet-Guilbert N., Le Bris M.J., et al. Segregation of chromosomes in sperm of a t(X;18)(q11;p11.1) carrier inherited from his mother: case report. Hum Reprod. 2008;23(1):227-30. doi:10.1093/humrep/dem359.

Availability: https://www.medgen-journal.ru/jour/article/view/2451
https://doi.org/10.25557/2073-7998.2024.03.3-11

Predictive diagnosis of cystic fibrosis: survey results from physicians and parents of patients ; Предиктивная диагностика муковисцидоза: результаты анкетирования врачей и родителей пациентов

Authors: E. I. Kondratyeva, I. R. Fatkhullina, V. L. Izhevskaya, A. S. Glotov, V. B. Chernykh, O. O. Poletaeva, V. D. Sherman, V. V. Shadrina, T. A. Kiyan, Е. И. Кондратьева, И. Р. Фатхуллина, В. Л. Ижевская, А. С. Глотов, В. Б. Черных, О. О. Полетаева, В. Д. Шерман, В. В. Шадрина, Т. А. Киян

Contributors: The study was carried out according to the state assignment of the Ministry of Science and Higher Education of the Russian Federation for the RCMG., Исследование выполнено в рамках государственного задания Министерства науки и высшего образования РФ для ФГБНУ МГНЦ.

Source: Medical Genetics; Том 23, № 7 (2024); 33-41 ; Медицинская генетика; Том 23, № 7 (2024); 33-41 ; 2073-7998

Subject Terms: предиктивная диагностика, cystic fibrosis, pregnancy planning, fertility, genetic counseling, preimplantation genetic testing, predictive diagnosis, муковисцидоз, планирование беременности, фертильность, генетическое консультирование, преимплантационное генетическое тестирование

File Description: application/pdf

Relation: https://www.medgen-journal.ru/jour/article/view/2507/1804; Castellani C., Duff A.J.A., Bell S.C., et al. ECFS best practice guidelines: the 2018 revision. J Cyst Fibros. 2018 Mar;17(2):153-178. doi:10.1016/j.jcf.2018.02.006.; Шерман В.Д., Куцев С.И., Ижевская В.Л., Кондратьева Е.И. Оценка эффективности неонатального скрининга на муковисцидоз в Российской Федерации. Вопросы практической педиатрии. 2022; 17(3): 12–19. doi:10.20953/1817-7646-2022-3-12-19; Муковисцидоз. Издание 2-е., переработанное и дополненное (под ред. Каширской Н.Ю., Капранова Н.И. и Кондратьевой Е.И.). М.: ИД «МЕДПРАКТИКА-М», 2021. 680 с.; Письмо Министерства здравоохранения РФ от 15 февраля 2019 г. N 15-4/И/2-1217 О направлении клинических рекомендаций (протокола лечения) «Вспомогательные репродуктивные технологии и искусственная инсеминация» https://www.garant.ru/products/ipo/prime/doc/72113052/ (дата обращениия 12.04.2024); Баранов В.С., Иващенко Т.Э., Кащеева Т.К., Кузнецова Т.В. Пренатальная диагностика наследственных болезней. Состояние и перспективы, 2-е изд., перераб. и доп. Санкт-Петербург: Эко-Вектор, 2020, 503 c.; Курило Л.Ф. Развитие эмбриона человека и некоторые морально-этические проблемы методов вспомогательной репродукции. Проблемы репродукции. 1998; 3: 39-47.; Yaneva N., Baycheva M., Kostova P., et al. Preventable Hazards from in Vitro Fertilization – A Case Series of CF Patients from Bulgaria. Balkan J Med Genet. 2023;26(1):83-88. doi:10.2478/bjmg-2023-0001.; Breveglieri G., D’Aversa E., Finotti A., et al. Non-invasive Prenatal Testing Using Fetal DNA. Mol Diagn Ther. 2019;23(2):291-299. doi:10.1007/s40291-019-00385-2; Глотов А.С., Насыхова Ю.А., Двойнова Н.М. и др. Перспективы преконцепционного генетического скрининга на этапе планирования беременности. Журнал акушерства и женских болезней. 2023;72(6):173–192. doi: https://doi.org/10.17816/JOWD622752; Audibert F., Wilson R.D., Allen V., et al. Genetics Committee. Preimplantation genetic testing. J Obstet Gynaecol Can. 2009 Aug;31(8):761-75. doi:10.1016/s1701-2163(16)34284-0.; Lledo B., Morales R., Antonio Ortiz .J, et al. Noninvasive preimplantation genetic testing using the embryo spent culture medium: an update. Curr Opin Obstet Gynecol. 2023 Aug 1;35(4):294-299. doi:10.1097/GCO.0000000000000881.; Shah V.S., Ernst S., Tang X.X., et al. Relationships among CFTR expression, HCO3- secretion, and host defense may inform gene- and cell-based cystic fibrosis therapies. Proc Natl Acad Sci U S A. 2016 May 10;113(19):5382-7. doi:10.1073/pnas.1604905113.; Miller A.C., Comellas A.P., Hornick D.B., et al. Cystic fibrosis carriers are at increased risk for a wide range of cystic fibrosis-related conditions. Proc Natl Acad Sci U S A. 2020 Jan 21;117(3):1621-1627. doi:10.1073/pnas.1914912117.; Polgreen P.M., Comellas A.P. Clinical Phenotypes of Cystic Fibrosis Carriers. Annu Rev Med. 2022 Jan 27; 73:563-574. doi:10.1146/annurev-med-042120-020148.

Availability: https://www.medgen-journal.ru/jour/article/view/2507
https://doi.org/10.25557/2073-7998.2024.07.33-41

Современные возможности сохранения фертильности у пациенток молодого возраста. Взгляд онколога

Authors: А. А. Пароконная

Source: Malignant tumours; Том 14, № 3s1 (2024); 42-48 ; Злокачественные опухоли; Том 14, № 3s1 (2024); 42-48 ; 2587-6813 ; 2224-5057

Subject Terms: фертильность, репродукция, беременность, криоконсервация

File Description: application/pdf

Relation: https://www.malignanttumors.org/jour/article/view/1346/953; Lambertini M., Peccatori F.A., Demeestere I. et.al. Fertility preservation and post-treatment pregnancies in post-pubertal cancer patients: ESMO Clinical Practice Guidelines. Ann Oncol 2020;31(12):1664-1678. https://doi.org/10.1016/j.annonc.2020.09.006; Anderson R., Amant F., Braat D. et.al. ESHRE guideline: female fertility preservation. Hum Reprod Open 2020;2020(4):hoaa052. https://doi.org/10.1093/hropen/hoaa052; Oktay K., Harvey B.E., Partridge A.H., et al. Fertility preservation in patients with cancer: ASCO clinical practice guideline update. J Clin Oncol 2018;36(19):1994-2001. https://doi.org/10.1200/JCO.2018.78.1914; Michalczyk K., Cymbaluk-Ploska A. Fertility preservation and long-term monitoring of gonadotoxicity in girls, adolescents and young adults undergoing cancer treatment. Cancers (Basel) 2021;13(2):202. https://doi.org/10.3390/cancers13020202; Higdon R.E., Marchetti F., Mailhes J.B., Phillips G.L. The effects of cisplatin on murine metaphase II oocytes. Gynecol Oncol 1992;47(3):348-352. https://doi.org/10.1016/0090-8258(92)90138-9; Del-Pozo-Lerida S., Salvador C., Martinez-Soler F., et al. Preservation of fertility in patients with cancer (Review). Oncol Rep 2019;41(5):2607-2614. https://doi.org/10.3892/or.2019.7063; Roness H., Kalich-Philosoph L., Meirow D. Prevention of chemotherapyinduced ovarian damage: Possible roles for hormonal and nonhormonal attenuating agents. Hum Reprod Update 2014;20(5):759-774. https://doi.org/10.1093/humupd/dmu019; Lee S.J., Schover L.R., Partridge A.H., et al. American society of clinical oncology recommendations on fertility preservation in cancer patients. J Clin Oncol 2006;24(18):2917-2931. https://doi.org/10.1200/JCO.2006.06.5888; Wang Y., Li Y., Liang J., et al. Chemotherapy-induced amenorrhea and its prognostic significance in premenopausal women with breast cancer: An updated meta-analysis. Front Oncol 2022;12. https://doi.org/10.3389/fonc.2022.859974; Ganz P.A., Land S.R., Geyer Jr C.E., et al. Menstrual history and qualityoflife outcomes in women with nodepositive breast cancer treated with adjuvant therapy on the NSABP B30 trial. J Clin Oncol 2011;29(9):1110—1116. https://doi.org/10.1200/JCO.2010.29.7689; Lambertini M., Ceppi M., Anderson R., et al. Impact of anti-HER2 therapy alone and with weekly paclitaxel on the ovarian reserve of young women with HER2-positive breast cancer. JNCCN 2023;21(1):33-41. https://doi.org/10.6004/jnccn.2022.7065; Winship A.L., Alesi L.R., Sant S., et al. Checkpoint inhibitor immunotherapy diminishes oocyte number and quality in mice. Nat Cancer 2022;3(8):1-13. https://doi.org/10.1038/s43018-022-00413-x; Bines J., Oleske D.M., Cobleigh M.A. Ovarian function in premenopausal women treated with adjuvant chemotherapy for breast cancer. J Clin Oncol 1996;14(5):1718-1729. https://doi.org/10.1200/JCO.1996.14.5.1718; Wallace W.H.B., Anderson R.A., Irvine D.S. Fertility preservation for young patients with cancer: who is at risk and what can be offered? Lancet Oncol 2005;6(4):209-218. https://doi.org/10.1016/S1470-2045(05)70092-9; Walshe J.M., Denduluri N., Swain S.M. Amenorrhea in premenopausal women after adjuvant chemotherapy for breast cancer. J Clin Oncol 2006;24(36):5769-5779. https://doi.org/10.1200/JCO.2006.07.2793; Goodwin P.J., Ennis M., Pritchard K.I., et al. Risk of menopause during the first year after breast cancer diagnosis. J Clin Oncol 1999;17(8):2365-2370. https://doi.org/10.1200/JCO.1999.178.2365; Petrek J.A., Naughton M.J., Case L.D., et al. Incidence, time course, and determinants of menstrual bleeding after breast cancer treatment: aprospective study. J Clin Oncol 2006;24(7):1045-1051. https://doi.org/10.1200/JCO.2005.03.3969; Lee S., Kil W.J., Chun M., et al. Chemotherapy-related amenorrhea in premenopausal women with breast cancer. Menopause 2009;16(1):98-103. https://doi.org/10.1097/gme.0b013e3181844877; Ribi K., Luo W., Bernhard J., et al. Adjuvant tamoxifen plus ovarian function suppression versus tamoxifen alone in premenopausal women with early breast cancer: patient-reported outcomes in the suppression of ovarian function trial. J Clin Oncol 2016;34(14):1601-1610. https://doi.org/10.1200/JCO.2015.64.8675; Wallace W.H.B., Thomson A.B., Saran F., Kelsey T.W. Predicting age of ovarian failure after radiation to a field that includes the ovaries. Int J Radiat Oncol Biol Phys 2005;62(3):738-744. https://doi.org/10.1016/j.ijrobp.2004.11.038; Larsen E.C., Schmiegelow K., Rechnitzer C., et al. Radiotherapy at a young age reduces uterine volume of childhood cancer survivors. Acta Obstet Gynecol Scand 2004;83(1):96-102. https://doi.org/10.1111/j.1600-0412.2004.00332.x; Wallace W.H.B., Shalet S.M., Hendry J.H. et.al. Ovarian failure following abdominal irradiation in childhood: The radiosensitivity of the human oocyte. Br J Radiol 1989;62(743):995-998. https://doi.org/10.1259/0007-1285-62-743-995; Titus S., Li F., Stobezki R., et al. Impairment of BRCA1-related DNA double-strand break repair leads to ovarian aging in mice and humans. Sci Transl Med 2013;5(172):172ra21. https://doi.org/10.1126/scitranslmed.3004925; Govindaraj V., Keralapura Basavaraju R., Rao A.J. Changes in the expression of DNA double strand break repair genes in primordial follicles from immature and aged rats. Reprod Biomed Online 2015;30(3):303-310. https://doi.org/10.1016/j.rbmo.2014.11.010; Stolk L., Perry J.R.B., Chasman D.I., et al. Meta-analyses identify 13 loci associated with age at menopause and high-light DNA repair and immune pathways. Nat Genet 2012;44(3):260-268. https://doi.org/10.1038/ng.1051; Day F.R., Ruth K.S., Thompson D.J., et al. Large-scale genomic analyses link reproductive aging to hypothalamic signaling, breast cancer susceptibility and BRCA1-mediated DNA repair. Nat Genet 2015;47(11):1294-1303. https://doi.org/10.1038/ng.3412; Loren A.W., Mangu P.B., Beck L.N. et.al. Fertility Preservation for patients with cancer: American Society of Clinical Oncology clinical practice guideline update. J Clin Oncol 2013;31(19):2500-10. https://doi.org/10.1200/JCO.2013.49.2678; Peccatori F.A., Azim Jr H.A., Orecchia R. et.al. Cancer, pregnancy and fertility: ESMO Clinical Practice Guidelines for diagnosis, treatment and follow-up. Ann Oncol 2013;24 Suppl 6:vi160-70. https://doi.org/10.1093/annonc/mdt199; Gook D.A., Edgar D.H. Human oocyte cryopreservation. Hum Reprod Update 2007;13(6):591-605. https://doi.org/10.1093/humupd/dmm028; Tian Y., Liang Y., Yang X. Successful delivery after in vitro fertilization-embryo transfer in a woman with metachro-nous primary cancer of ovary and endometrium: A case report. BMC Pregnancy Childbirth 2023;23(1):677.; Porcu E., Cipriani L., Dirodi M., et al. Successful pregnancies, births, and children development following oocyte cryostorage in female cancer patients during 25 years of fertility preservation. Cancers (Basel) 2022;14(6):1429. https://doi.org/10.3390/cancers14061429; Arecco L., Blondeaux E., Bruzzone M., et al. Safety of fertility preservation techniques before and after anticancer treatments in young women with breast cancer: a systematic review and meta-analysis. Hum Reprod. 2022 May 3;37(5):954-968. https://doi.org/10.1093/humrep/deac035; Goldrat O., Demeestere I., Azim H. A Jr. Response to ‘Is it safe to perform a controlled ovarian stimulation for assisted reproduction in young breast cancer survivors?'. Eur J Cancer 2016;54:165-166. https://doi.org/10.1016/j.ejca.2015.10.002; Arecco L., Blondeaux E., Bruzzone M. et.al. Safety of fertility preservation techniques before and after anticancer treatments in young women with breast cancer: a systematic review and meta-analysis. Hum Reprod 2022;37(5):954-968. https://doi.org/10.1093/humrep/deac035; Oktay K., Demirtas E., Son W.-Y. et.al. In vitro maturation of germinal vesicle oocytes recovered after premature lu-teinizing hormone surge: description of a novel approach to fertility preservation. Fertil Steril 2008;89(1):228.e19-22. https://doi.org/10.1016/j.fertnstert.2007.02.028; Condorelli M., Bruzzone M., Ceppi M., et al. Safety of assisted reproductive techniques in young women harboring germline pathogenic variants in BRCA1/2 with a pregnancy after prior history of breast cancer. ESMO Open 2021;6(6):100300. https://doi.org/10.1016/j.esmoop.2021.100300; Wallace W.H.B., Smith A.G., Kelsey T.W. et.al Fertility preservation for girls and young women with cancer: population-based validation of criteria for ovarian tissue cryopreservation. Lancet Oncol 2014;15(10):1129-36.; Meirow D., Ra'anani H., Biderman H. Ovarian tissue cryopreservation and transplantation: a realistic, effective technology for fertility preservation. Methods Mol Biol 2014;1154:455-73. https://doi.org/10.1007/978-1-4939-0659-8_21; Oktay K. Evidence for limiting ovarian tissue harvesting for the purpose of transplantation to women younger than 40 years of age. J Clin Endocrinol Metab 2002;87(4):1907-8. https://doi.org/10.1210/jcem.87.4.8367; Dolmans M.M., von Wolff M., Poirot C., et al. Transplantation of cryopreserved ovarian tissue in a series of 285 women: A review of five leading European centers. Fertil Steril 2021;115(5):1102-15. https://doi.org/10.1016/j.fertnstert.2021.03.008; Glode L.M., Robinson J., Gould S.F. Protection from cyclophosphamide-induced testicular damage with an analogue of gonadotropin-releasing hormone. Lancet 1981;1(8230):1132-1134. https://doi.org/10.1016/s0140-6736(81)92301-1; Lambertini M., Moore H.C.F., Leonard R.C.F., et al. Gonadotropin-releasing hormone agonists during chemotherapy for preservation of ovarian function and fertility in premenopausal patients with early breast cancer: A systematic review and meta-analysis of individual patient-level data. J Clin Oncol 2018;36(19):1981-1990. https://doi.org/10.1200/JCO.2018.78.0858.; https://www.malignanttumors.org/jour/article/view/1346

Availability: https://www.malignanttumors.org/jour/article/view/1346
https://doi.org/10.18027/2224-5057-2024-14-3s1-42-48

Risk factors for diminished ovarian reserve in women: Current state of the problem ; Факторы риска снижения овариального резерва женщин: актуальное состояние проблем

Authors: S. V. Zotov, V. V. Likhacheva, P. Yu. Motyreva, O. V. Azarova, B. I. Ayzikovich, С. В. Зотов, В. В. Лихачева, П. Ю. Мотырева, О. В. Азарова, Б. И. Айзикович

Source: Acta Biomedica Scientifica; Том 9, № 3 (2024); 69-78 ; 2587-9596 ; 2541-9420

Subject Terms: экологические факторы, follicles, menopause, fertility, infertility, lifestyle, smoking, environmental factors, фолликулы, менопауза, фертильность, бесплодие, образ жизни, курение

File Description: application/pdf

Relation: https://www.actabiomedica.ru/jour/article/view/4816/2788; Delbaere I, Verbiest S, Tydén T. Knowledge about the impact of age on fertility: A brief review. Ups J Med Sci. 2020; 125(2): 167-174. doi:10.1080/03009734.2019.1707913; Wang Y, Yuan Y, Meng D, Liu X, Gao Y, Wang F, et al. Effects of environmental, social and surgical factors on ovarian reserve: Implications for age-relative female fertility. Int J Gynaecol Obstet. 2021; 154(3): 451-458. doi:10.1002/ijgo.13567; Ge W, Li L, Dyce PW, De Felici M, Shen W. Establishment and depletion of the ovarian reserve: Physiology and impact of environmental chemicals. Cell Mol Life Sci. 2019; 76(9): 1729-1746. doi:10.1007/s00018-019-03028-1; Sutton P, Woodruff TJ, Perron J, Stotland N, Conry JA, Miller MD, et al. Toxic environmental chemicals: The role of reproductive health professionals in preventing harmful exposures. Am J Obstet Gynecol. 2012; 207(3): 164-173. doi:10.1016/j.ajog.2012.01.034; Vabre P, Gatimel N, Moreau J, Gayrard V, Picard-Hagen N, Parinaud J, et al. Environmental pollutants, a possible etiology for premature ovarian insufficiency: A narrative review of animal and human data. Environ Health. 2017; 16(1): 37. doi:10.1186/s12940-017-0242-4; Sharara F, Seifer D, Flaws J. Environmental toxicants and female reproduction. Fertil Steril. 1998; 70(4): 613-622. doi:10.1016/S0015-0282(98)00253-2; Luderer U. Ovarian toxicity from reactive oxygen species. Vitam Horm. 2014; 94: 99-127. doi:10.1016/B978-0-12-800095-3.00004-3; Tokmak A, Yildirim G, Sarikaya E, Cinar M, Bogdaycioglu N, Yilmaz FM. Increased oxidative stress markers may be a promising indicator of risk for primary ovarian insufficiency: A cross-sectional case control study. Rev Bras Ginecol Obstet. 2015; 37: 411-416. doi:10.1590/SO100-720320150005397; Richardson MC, Guo M, Fauser BC, Macklon NS. Environmental and developmental origins of ovarian reserve. Hum Reprod Update. 2014; 20(3): 353-369. doi:10.1093/humupd/dmt057; Gore AC, Chappell VA, Fenton SE, Flaws JA, Nadal A, Prins GS, et al. EDC-2: The Endocrine Society’s second scientific statement on endocrine-disrupting chemicals. Endocr Rev. 2015; 36: E1-E150. doi:10.1210/er.2015-1093; Bergman A, Heindel J, Jobling S, Kidd K, Zoeller RT. State of the science of endocrine disrupting chemicals, 2012. Toxicol Lett. 2013; 211(Suppl): S3. doi:10.1016/j.toxlet.2012.03.020; di Renzo GC, Conry JA, Blake J, Defrancesco MS, Denicola N, Martin JN, et al. International Federation of Gynecology and Obstetrics (FIGO) opinion on reproductive health impacts of exposure to toxic environmental chemicals. Int J Gynecol Obstet. 2015; 131: 219-225. doi:10.1016/j.ijgo.2015.09.002; Журабекова Г.А., Балмагамбетова А.Д., Жумагулова С.С., Кущанова А.М., Абделазим И.А. Маркеры овариального резерва женщин, проживающих в зоне Аральского моря. West Kazakhstan Medical Journal. 2015; 4(48): 33-37.; Bedrick BS, Broughton DE, Schulte M, Boots CE, Eskew AM, Jungheim ES. Physical activity is negatively associated with antral follicle count. Fertil Steril. 2017; 107: E32-E33. doi:10.1016/j.fertnstert.2017.02.061; Hart RJ. Physiological aspects of female fertility: Role of the environment, modern lifestyle, and genetics. Physiol Rev. 2016; 96(3): 873-909. doi:10.1152/physrev.00023.2015; Grisotto G, Langton CR, Li Y, Bertone-Johnson ER, Baden MY, Franco OH, et al. Association of plant-based diet and early onset of natural menopause. Menopause. 2022; 29(7): 861-867. doi:10.1097/GME.0000000000001985; Morris DH, Jones ME, Schoemaker MJ, McFadden E, Ashworth A, Swerdlow AJ. Body mass index, exercise, and other lifestyle factors in relation to age at natural menopause: Analyses from the breakthrough generations study. Am J Epidemiol. 2012; 175(10): 998-1005. doi:10.1093/aje/kwr447; Purdue-Smithe AC, Whitcomb BW, Manson JE, Hankinson SE, Rosner BA, Troy LM, et al. A prospective study of dairy-food intake and early menopause. Am J Epidemiol. 2019; 188(1): 188-196. doi:10.1093/aje/kwy212; Romijn JA, Adriaanse R, Brabant G, Prank K, Endert E, Wiersinga WM. Pulsatile secretion of thyrotropin during fasting: A decrease of thyrotropin pulse amplitude. J Clin Endocrinol Metab. 1990; 70: 1631-1636. doi:10.1210/jcem-70-6-1631; Венгржиновская О.И., Фадеева М.И. Ассоциация циркадианной дизритмии с возникновением метаболических расстройств. Современная наука: актуальные проблемы теории и практики. Серия: Естественные и технические науки. 2021; 4(2): 75-80.; Lee A, Ader M, Bray GA, Bergman RN. Diurnal variation in glucose tolerance. Cyclic suppression of insulin action and insulin secretion in normal-weight, but not obese, subjects. Diabetes. 1992; 41(6): 750-759. doi:10.2337/diab.41.6.750; Anothaisintawee T, Lertrattananon D, Thamakaison S. Later chronotype is associated with higher hemoglobin A1c in prediabetes patients. Chronobiol Int. 2017; 34: 393-402. doi: 10. 1080/07420528.2017.1279624; Kim W, Lee J, Ha J, Jo K, Lim DJ, Lee JM, et al. Association between sleep duration and subclinical thyroid dysfunction based on nationally representative data. J Clin Med. 2019; 8(11): 2010. doi:10.3390/jcm8112010; Сметник А.А., Сазонова А.И. Влияние щитовидной железы и ее патологии на репродуктивную функцию женщин. Акушерство и гинекология. 2019; 3: 46-52.; Koyyada A, Orsu P. Role of hypothyroidism and associated pathways in pregnancy and infertility: Clinical insights. Tzu Chi Med J. 2020; 32(4): 312-317. doi:10.4103/tcmj.tcmj_255_19; Kloss JD, Perlis ML, Zamzow JA, Culnan EJ, Gracia CR. Sleep, sleep disturbance, and fertility in women. Sleep Med Rev. 2015; 22: 78-87. doi:10.1016/j.smrv.2014.10.005; Penzias A, Bendikson K, Butts S. Smoking and infertility: A committee opinion. Fertil Steril. 2018; 110(4): 611-618. doi:10.1016/j.fertnstert.2018.06.016; Schuh-Huerta SM, Johnson NA, Rosen MP, Sternfeld B, Cedars MI, Reijo Pera RA. Genetic variants and environmental factors associated with hormonal markers of ovarian reserve in Caucasian and African American women. Hum Reprod. 2012; 27(2): 594-608. doi:10.1093/humrep/der391; Soldin OP, Makambi KH, Soldin SJ, O’Mara DM. Steroid hormone levels associated with passive and active smoking. Steroids. 2011; 76: 653-659. doi:10.1016/j.steroids.2011.02.042; Kee K, Flores M, Cedars MI, Reijo Pera RA. Human primordial germ cell formation is diminished by exposure to environmental toxicants acting through the AHR signaling pathway. Toxicol Sci. 2010; 117: 218-224. doi:10.1093/toxsci/kfq179; Айзикович Б.И., Айзикович И.В., Верба О.Ю., Зотов С.В., Медведева И.В. Исходы ВРТ у женщин, страдающих табакизмом. Международный журнал прикладных и фундаментальных исследований. 2012; (2): 69.; Айзикович И.В., Айзикович Б.И., Зотов С.В., Медведева И.В. Влияние курения женщин на качество ооцитов и исходы вспомогательных репродуктивных технологий. Вестник НГУ. Серия: Биология, клиническая медицина. 2012; 10(2): 165-168.; Perez MF, Mead EL, Atuegwu NC, Mortensen EM, Goniewicz M, Oncken C. Biomarkers of toxicant exposure and inflammation among women of reproductive age who use electronic or conventional cigarettes. J Womens Health (Larchmt). 2021; 30(4): 539-550. doi:10.1089/jwh.2019.8075; Dai H, Benowitz NL, Achutan C, Farazi PA, Degarege A, Khan AS. Exposure to toxicants associated with use and transitions between cigarettes, e-cigarettes, and no tobacco. JAMA Netw Open. 2022; 5(2): e2147891. doi:10.1001/jamanetworkopen.2021.47891; Mikkelsen EM, Riis AH, Wise LA, Hatch EE, Rothman KJ, Cueto HT, et al. Alcohol consumption and fecundability: Prospective Danish cohort study. BMJ. 2016; 354: i4262. doi:10.1136/bmj.i4262; Fan D, Liu LI, Xia Q. Female alcohol consumption and fecundability: A systematic review and dose-response meta-analysis. Sci Rep. 2017; 7(1): 13815. doi:10.1038/s41598-017-14261-8; Ng M, Fleming T, Robinson M. Global, regional, and national prevalence of overweight and obesity in children and adults during 1980–2013: A systematic analysis for the Global Burden of Disease Study 2013. Lancet. 2014; 384(9945): 766-781. doi:10.1016/S0140-6736(14)60460-8; Ramlau-Hansen CH, Thulstrup AM, Nohr EA. Subfecundity in overweight and obese couples. Hum Reprod. 2007; 22(6): 1634-1637. doi:10.1093/humrep/dem035; Григорян О.Р., Михеев Р.К., Андреева Е.Н., Дедов И.И. Овариальный резерв у женщин с ожирением. Ожирение и метаболизм. 2019; 16(3): 69-75. doi:10.14341/omet9862; Bellver J, Ayllón Y, Ferrando M. Female obesity impairs in vitro fertilization outcome without affecting embryo quality. Fertil Steril. 2010; 93(2): 447-454. doi:10.1016/j.fertnstert.2008.12.032; Дурманова А.К., Отарбаев Н.К., Кайырлыкызы А., Жангазиева К.Х., Ибраева Ж.Н., Доненбаева Г.Б., и др. Овариальный резерв яичников и содержание адипокинов у женщин репродуктивного возраста с ожирением. Терапевтический архив. 2016; 88(10): 46-50. doi:10.17116/terarkh2016881046-5; Wang Y, Wu L, Yang Z, Xu R, Duan Y, Lin J, et al. Association of body mass index with serum anti-Müllerian hormone and inhibin B levels among 8323 women attending a reproductive medical center: A cross-sectional study. Endocrine. 2022; 75(1): 284-292. doi:10.1007/s12020-021-02839-2; Kriseman M, Mills C, Kovanci E, Sangi-Haghpeykar H, Gibbons W. Antimullerian hormone levels are inversely associated with body mass index (BMI) in women with polycystic ovary syndrome. J Assist Reprod Genet. 2015; 32(9): 1313-1316. doi:10.1007/s10815-015-0540-0; Gaskins AJ, Rich-Edwards JW, Missmer SA, Rosner B, Chavarro JE. Association of fecundity with changes in adult female weight. Obstet Gynecol. 2015; 126: 850-858. doi:10.1097/AOG.0000000000001030; Росстат. Демографический ежегодник России. 2021. URL: https://rosstat.gov.ru/folder/210/document/13207 [дата доступа: 21.08.2022].; Martin JA, Hamilton BE, Osterman M, Driscoll AK. Births: Final data for 2019. National vital statistics reports: From the Centers for Disease Control and Prevention, National Center for Health Statistics. Nat Vital Stat Syst. 2021; 70(2): 1-51.; Molina-García L, Hidalgo-Ruiz M, Cocera-Ruíz EM, Conde-Puertas E, Delgado-Rodríguez M, Martínez-Galiano JM. The delay of motherhood: Reasons, determinants, time used to achieve pregnancy, and maternal anxiety level. PloS One. 2019; 14(12): e0227063. doi:10.1371/journal.pone.0227063; Panay N, Kalu E. Management of premature ovarian failure. Best Pract Res Clin Obstet Gynaecol. 2009; 23(1): 129-140. doi:10.1016/j.bpobgyn.2008.10.008; Huang H, Zhao J, Jiang L, Xie Y, Xia Y, Lv R, et al. Paeoniflorin improves menopause depression in ovariectomized rats under chronic unpredictable mild stress. Int J Clin Experim Med. 2015; 8(4): 5103-5111.; Xi W, Mao H, Cui Z, Yao H, Shi R, Gao Y. Scream soundinduced chronic psychological stress results in diminished ovarian reserve in adult female rat. Endocrinol. 2022; 163(6): bqac042. doi:10.1210/endocr/bqac04; Patel A, Sharma P, Kumar P, Binu VS. Sociocultural determinants of infertility stress in patients undergoing fertility treatments. J Human Reprod Sci. 2018; 11(2): 172-179. doi:10.4103/jhrs.JHRS_134_17; Watson D, Clark LA, Tellegen A. Development and validation of brief measures of positive and negative affect: The PANAS scales. J Pers Soc Psychol. 1988; 54(6): 1063-1070. doi:10.1037/0022-3514.54.6.1063; Bleil ME, Adler NE, Pasch LA, Sternfeld B, Gregorich SE, Rosen MP, et al. Depressive symptomatology, psychological stress and ovarian reserve: A role for psychological factors in ovarian aging? Menopause. 2012; 19(11): 1176-1185. doi:10.1097/gme.0b013e31825540d8; Айзикович Б.И., Зотов С.В., Кулешов В.М., Мотырева П.Ю., Филимонов С.Н., Лихачева В.В. Лечение эндометриоидных кист яичника для сохранения фертильности: обзор современных методов. Мать и дитя в Кузбассе. 2021; (2): 32-39. doi:10.24411/2686-7338-2021-10020; Song T, Kim WY, Lee KW, Kim KH. Effect on ovarian reserve of hemostasis by bipolar coagulation versus suture during laparoendoscopic single-site cystectomy for ovarian endometriomas. J Minim Invasive Gynecol. 2015; 22: 415-420. doi:10.1016/j.jmig.2014.11.002; Muzii L, Achilli C, Lecce F, Bianchi A, Franceschetti S, Marchetti C, et al. Second surgery for recurrent endometriomas is more harmful to healthy ovarian tissue and ovarian reserve than first surgery. Fertil Steril. 2015; 103(3): 738-743. doi:10.1016/j.fertnstert.2014.12.101; Muzii L, Di Tucci C, Galati G, Mattei G, Chinè A, Cascialli G, et al. Endometriosis-associated infertility: Surgery or IVF? Minerva Obstet Gynecol. 2021; 73(2): 226-232. doi:10.23736/S2724-606X.20.04765-6; Зотов С.В., Мотырева П.Ю., Кулешов В.М., Айзикович Б.И., Лихачева В.В., Филимонов С.Н. Преимущества редукционной терапии эндометриоидных кист яичников по сравнению с лапароскопической эксцизией при подготовке к программам ВРТ. Медицина в Кузбассе. 2021; 20(1): 26-31. doi:10.24411/2687-0053-2021-10005; https://www.actabiomedica.ru/jour/article/view/4816

Availability: https://www.actabiomedica.ru/jour/article/view/4816
https://doi.org/10.29413/ABS.2024-9.3.6