-
1Academic Journal
Authors: Т. В. Левкович, Т. П. Пронько, А. С. Бабенко, О. В. Горчакова
Source: Žurnal Grodnenskogo Gosudarstvennogo Medicinskogo Universiteta, Vol 22, Iss 5, Pp 423-429 (2024)
Subject Terms: трансформирующий фактор роста β1, полиморфизм, артериальная гипертензия, эндотелин-1, ген α1 цепи коллагена iv типа, Medicine
File Description: electronic resource
-
2Academic Journal
Authors: Yashina D.P., Afanasyeva Z.A.
Contributors: Figure was partially generated using Servier Medical Art provided by Servier, licensed under a Creative Commons Attribution 3.0 non-ported license., В рисунках использованы элементы шаблонов Servier Medical Art, предоставленные компанией Servier с лицензией Creative Commons Attribution 3.0.
Source: Advances in Molecular Oncology; Vol 10, No 2 (2023); 42-57 ; Успехи молекулярной онкологии; Vol 10, No 2 (2023); 42-57 ; 2413-3787 ; 2313-805X
Subject Terms: adrenocortical cancer, adrenal ontogenesis, tumor transformation, signaling pathways, steroidogenic factor 1, Sonic Hedgehog, signaling pathways Wnt/β-catenin, signaling pathway SMAD, growth factors, insulin-like growth factor 2, transforming growth factor β, miRNA, адренокортикальный рак, онтогенез надпочечников, опухолевая трансформация, сигнальные пути, стероидный фактор 1, сигнальный путь Wnt/β-катенин, сигнальный путь SMAD, факторы роста, инсулиноподобный фактор роста 2, трансформирующий фактор роста β
File Description: application/pdf
Relation: https://umo.abvpress.ru/jour/article/view/540/299; https://umo.abvpress.ru/jour/article/view/540
-
3Academic Journal
Authors: N. N. Pakhtusov, A. O. Yusupova, K. A. Zhbanov, A. A. Shchedrygina, E. V. Privalova, Yu. N. Belenkov, Н. Н. Пахтусов, А. О. Юсупова, К. А. Жбанов, А. А. Щендрыгина, Е. В. Привалова, Ю. Н. Беленков
Contributors: The study was financially supported by the Russian Science Foundation in the form of scientific project No. 22-15-00424, scientific grant "The role of activation of the WNT signaling cascade, the processes of its epigenetic regulation and immune-mediated inflammation in the progression of atherosclerosis and the possibility of influencing it by therapeutic neoangiogenesis in patients with stable ischemic heart disease.", Исследование выполнено при финансовой поддержке Российского научного фонда в виде научного проекта № 22-15-00424, научного гранта «Роль активации сигнального каскада WNT, процессов его эпигенетической регуляции и иммуноопосредованного воспаления в прогрессировании атеросклероза и возможности влияния на него методом терапевтического неоангиогенеза у пациентов со стабильной ишемической болезнью сердца».
Source: Rational Pharmacotherapy in Cardiology; Vol 18, No 6 (2022); 630-637 ; Рациональная Фармакотерапия в Кардиологии; Vol 18, No 6 (2022); 630-637 ; 2225-3653 ; 1819-6446
Subject Terms: воспаление, трансформирующий фактор роста β, ремоделирование сердца, металлопротеиназа 9
File Description: application/pdf
Relation: https://www.rpcardio.com/jour/article/view/2849/2376; The top 10 causes of death [cited 2022 Jan 12]. Available from: https://www.who.int/newsroom/fact-sheets/detail/the-top-10-causes-of-death.; Gibbs RA. The Human Genome Project changed everything. Nat Rev Genet. 2020;21(10):575-6. DOI:10.1038/s41576-020-0275-3.; Low EL, Baker AH, Bradshaw AC. TGFβ smooth muscle cells and coronary artery disease: a review. Cell Signal. 2019;53:90-101. DOI:10.1016/j.cellsig.2018.09.004; Hata A, Chen YG. TGF-β signaling from receptors to smads. Cold Spring Harb Perspect Biol. 2016;8(9):a022061. DOI:10.1101/cshperspect.a022061.; Morikawa M, Derynck R, Miyazono K. TGF-β and the TGF-β family: Context-dependent roles in cell and tissue physiology. Cold Spring Harb Perspect Biol. 2016;8(5):a021873. DOI:10.1101/cshperspect.a021873.; Dobaczewski M, Chen W, Frangogiannis NG. Transforming growth factor (TGF)-β signaling in cardiac remodeling. J Mol Cell Cardiol. 2011;51(4):600-6. DOI:10.1016/j.yjmcc.2010.10.033.; Wang JH, Zhao L, Pan X, et al. Hypoxia-stimulated cardiac fibroblast production of IL-6 promotes myocardial fibrosis via the TGF-β1 signaling pathway. Lab Investig [Internet]. 2016;96(8):839-52. DOI:10.1038/labinvest.2016.65.; Hu HH, Chen DQ, Wang YN, et al. New insights into TGF-β/Smad signaling in tissue fibrosis. Chem Biol Interact. 2018;292:76-83. DOI:10.1016/j.cbi.2018.07.008.; Knuuti J, Wijns W, Achenbach S, et al. 2019 ESC guidelines for the diagnosis and management of chronic coronary syndromes. Eur Heart J. 2020;41(3):407-77. DOI:10.1093/eurheartj/ehz425.; Jespersen L, Hvelplund A, Abildstrøm SZ, et al. Stable angina pectoris with no obstructive coronary artery disease is associated with increased risks of major adverse cardiovascular events. Eur Heart J. 2012;33(6):734-44. DOI:10.1093/eurheartj/ehr331.; Safdar B, Spatz ES, Dreyer RP, et al. Presentation, clinical profile, and prognosis of young patients with myocardial infarction with nonobstructive coronary arteries (MINOCA): Results from the VIRGO study. J Am Heart Assoc. 2018;7(13):e009174. DOI:10.1161/JAHA.118.009174.; Faul F, Erdfelder E, Buchner A, Lang AG. Statistical power analyses using G*Power 3.1: Tests for correlation and regression analyses. Behav Res Methods. 2009;41(4):1149-60. DOI:10.3758/BRM.41.4.1149.; Lang RM, Bierig M, Devereux RB, et al. Recommendations for chamber quantification. Eur J Echocardiogr. 2006;7(2):79-108. DOI:10.1016/j.euje.2005.12.014.; Grainger DJ, Kemp PR, Metcalfe JC, et al. The serum concentration of active transforming growth factor-beta is severely depressed in advanced atherosclerosis. Nat Med. 1995;1(1):74-9. DOI:10.1038/nm0195-74.; Erren M, Reinecke H, Junker R, et al. Systemic inflammatory parameters in patients with atherosclerosis of the coronary and peripheral arteries. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 1999;19(10):2355-63. DOI:10.1161/01.atv.19.10.2355.; Wang XL, Liu SX, Wilcken DEL. Circulating transforming growth factor beta1 and coronary artery disease. Cardiovasc Res. 1997;34(2):404-10. DOI:10.1016/s0008-6363(97)00033-3.; van Dijk RA, Engels CC, Schaapherder AF, et al. Visualizing TGF-β and BMP signaling in human atherosclerosis: a histological evaluation based on Smad activation. Histol Histopathol. 2012;27(3):387- 96. DOI:10.14670/HH-27.387.; Grainger DJ. TGF-beta and atherosclerosis in man. Cardiovasc Res. 2007;74(2):213-22. DOI:10.1016/j.cardiores.2007.02.022.; Rodríguez-Vita J, Sánchez-Galán E, Santamaría B, et al. Essential role of TGF-β/Smad pathway on statin dependent vascular smooth muscle cell regulation. PLoS One. 2008;3(12):e3959. DOI:10.1371/journal.pone.0003959.; Lefer AM, Tsao P, Aoki N, Palladino MA. Mediation of cardioprotection by transforming growth factor-beta. Science.1990;249(4964):61-4. DOI:10.1126/science.2164258.; Border WA, Noble NA. Transformation growth factor β in tissue fibrosis. N Engl J Med. 1994;331(19):153-8. DOI:10.1056/NEJM199411103311907.; Kuwahara F, Kai H, Tokuda K, et al. Transforming growth factor-β function blocking prevents myocardial fibrosis and diastolic dysfunction in pressure-overloaded rats. Circulation. 2002;106(1):130- 5. DOI:10.1161/01.CIR.0000020689.12472.E0.; Li JM, Brooks G. Differential protein expression and subcellular distribution of TGFβ1, β2, and β3 in cardiomyocytes during pressure overload-induced hypertrophy. J Mol Cell Cardiol. 1997;29(8):2213- 24. DOI:10.1006/jmcc.1997.0457.; Bujak M, Ren G, Kweon HJ, et al. Essential role of Smad3 in infarct healing and in the pathogenesis of cardiac remodeling. Circulation. 2007;116(19):2127-38. DOI:10.1161/CIRCULATIONAHA.107.704197.; Xia Y, Lee K, Li N, D. et al. Characterization of the inflammatory and fibrotic response in a mouse model of cardiac pressure overload. Histochem Cell Biol. 2009;131(4):471-81. DOI:10.1007/s00418-008-0541-5.; Ali M, Girgis S, Hassan A, et al. Inflammation and coronary artery disease: From pathophysiology to Canakinumab Anti-Inflammatory Thrombosis Outcomes Study (CANTOS). Coron Artery Dis. 2018;29(5):429-37. DOI:10.1097/MCA.0000000000000625.; Nidorf SM, Fiolet ATL, Eikelboom JW, et al. The effect of low-dose colchicine in patients with stable coronary artery disease: The LoDoCo2 trial rationale, design, and baseline characteristics. Am Heart J. 2019;218:46-56. DOI:10.1016/j.ahj.2019.09.011.; Bagi Z, Feher A, Cassuto J, Microvascular responsiveness in obesity: Implications for therapeutic intervention. Br J Pharmacol. 2012;165(3):544-60. DOI:10.1111/j.1476-5381.2011.01606.x.; Pasqualetto MC, Tuttolomondo D, Cutruzzolà A, et al. Human coronary inflammation by computed tomography: Relationship with coronary microvascular dysfunction. Int J Cardiol. 2021;336:8-13. DOI:10.1016/j.ijcard.2021.05.040.; https://www.rpcardio.com/jour/article/view/2849
-
4Academic Journal
Authors: J. V. Malisheva, T. N. Iureva, N. V. Volkova, J. V. Kursakova, S. I. Kolesnikov, Ю. В. Малышева, Т. Н. Юрьева, Н. В. Волкова, Ю. В. Курсакова, С. И. Колесников
Source: Acta Biomedica Scientifica; Том 8, № 2 (2023); 170-178 ; 2587-9596 ; 2541-9420
Subject Terms: внеклеточный матрикс, transforming growth factor β, TGF-β, matrix metalloproteinase 9, MMP-9, interleukin 6, IL-6, interleukin 8, IL-8, VEGF-A (121 and 165), cytokines in the tear fluid, extracellular matrix, трансформирующий фактор роста β, матриксная металлопротеиназа 9, ММР-9, интерлейкин 6, ИЛ-6, интерлейкин 8, ИЛ-8, VEGF-А (121 и 165), цитокины в слёзной жидкости
File Description: application/pdf
Relation: https://www.actabiomedica.ru/jour/article/view/4084/2533; https://www.actabiomedica.ru/jour/article/view/4084/2635; Wynn TA. Mechanisms of fibrosis: Therapeutic translation for fibrotic disease. Nat Med. 2012; 18(7): 1028-1040. doi:10.1038/nm.2807; Tripathi RC. Aqueous humor in glaucomatous eyes contains an increased level of TGF-beta 2. Exp Eye Res. 1994; 59: 723-727. doi:10.1006/exer.1994.1158; Волкова Н.В., Малышева Ю.В., Юрьева Т.Н., Колесников С.И. Роль биологически активных молекул влаги передней камеры глаза и слёзной жидкости в реализации гипотензивного эффекта непроникающей глубокой склерэктомии (НГСЭ). Acta biomedica scientifica. 2021; 6(2):126-132. doi:10.29413/ ABS.2021-6.2.14; Yamanaka O. Pathobiology of wound healing after glaucoma filtration surgery. BMC Ophthalmol. 2015; 15: 157. doi:10.1186/s12886-015-0134-8; Kingsley DM. The TGF-beta superfamily: New members, new receptors, and new genetic tests of function in different organisms. Genes Dev. 1994; 8: 133-146. doi:10.1101/gad.8.2.133; Rodrigues ML. Immunohistochemical expression of HLADR in the conjunctiva of patients under topical prostaglandin analogs treatment. J Glaucoma. 2009; 18: 197-200. doi:10.1097/IJG.0b013e31818153f4; Furtado JM, Paula JS, Soares EG, Dhegaide NH, Rocha EM, Donadi E, et al. Conjunctival inflammation in patients under topical glaucoma treatment with indication to surgery. Acta Cir Bras. 2012; 27: 732-735. doi:10.1590/s0102-86502012001000011; Юрьева Е.Н., Малышева Ю.В., Клименков И.В., Судаков Н.П. Иммуногистохимическая идентификация лимфатического оттока в фильтрационных подушках после непроникающей глубокой склерэктомии (НГСЭ). Офтальмохирургия. 2021; 3: 48-54. doi:10.25276/0235-4160-2021-3-48-54; Bouhenni RA, Al Jadaan I, Rassavong H, Al Shahwan S, Al Katan H, Dunmire J, et al. Lymphatic and blood vessel density in human conjunctiva after glaucoma filtration surgery. J Glaucoma. 2016; 25(1): 35-38. doi:10.1097/IJG.0000000000000199; Юрьева Т.Н., Малышева Ю.В., Курсакова Ю.В., Мускатина Е.В. Некоторые аспекты формирования фильтрационных подушек у больных с первичной открытоугольной глаукомой после непроникающей глубокой склерэктомии. Национальный журнал Глаукома. 2022; 21(4): 13-21. doi:10.53432/2078-41042022-21-4-13-21; Клинические рекомендации. Глаукома, ПОУГ. 2020. URL: http://avo-portal.ru/doc/fkr/odobrennye-nps-iutverzhdennye-avo/item/246-glaukoma-otkrytougolnaya [дата доступа: 23.12.2022].; Петров С.Ю. Современная концепция борьбы с избыточным рубцеванием после фистулизирующей хирургии глаукомы. Противовоспалительные препараты и новые тенденции. Офтальмология. 2017; 14(2): 99-105. doi:10.18008/18165095-2017-2-99-105; Петров С.Ю., Сафонова Д.М. Эффективность нидлинга в пролонгации отдаленного гипотензивного эффекта синустрабекулэктомии. Современные технологии в офтальмологии. 2020; 35(4): 142-143. doi:10.25276/2312-4911-2020-4-142-143; Khoo YJ. Use of trypan blue to assess lymphatic function following trabeculectomy. Clin Experiment Ophthalmol. 2019; 47(7): 892-897. doi:10.1111/ceo.13534; https://www.actabiomedica.ru/jour/article/view/4084
-
5Academic Journal
Authors: M. V. Epifanova, A. A. Kostin, E. V. Gameeva, K. R. Ikonova, S. A. Artemenko, A. A. Epifanov, V. B. Chernykh, М. В. Епифанова, А. А. Костин, Е. В. Гамеева, К. Р. Иконова, С. А. Артеменко, А. А. Епифанов, В. Б. Черных
Contributors: This publication has been supported by project № 033032-0-000., Публикация выполнена в рамках проекта № 033032-0-000.
Source: Andrology and Genital Surgery; Том 24, № 3 (2023); 23-32 ; Андрология и генитальная хирургия; Том 24, № 3 (2023); 23-32 ; 2412-8902 ; 2070-9781
Subject Terms: главный комплекс гистосовместимости, Dupuytren’s contracture, genetic predictors, molecular markers, transforming growth factor β1, myostatin, matrix metalloproteinases, Wnt signaling pathway, microRNA, major histocompatibility complex, контрактура Дюпюитрена, генетические факторы предрасположенности, молекулярные маркеры, трансформирующий фактор роста β1, миостатин, матриксные металлопротеиназы, сигнальный путь Wnt, микроРНК
File Description: application/pdf
Relation: https://agx.abvpress.ru/jour/article/view/691/541; Hellstrom W.J., Feldman R., Rosen R.C. et al. Bother and distress associated with Peyronie’s disease: validation of the Peyronie’s disease questionnaire. J Urol 2013;190(2):627–34. DOI:10.1016/j.juro.2013.01.090; Tal R., Hall M.S., Alex B. et al. Peyronie’s disease in teenagers. J Sex Med 2012;9(1):302–8. DOI:10.1111/j.1743-6109.2011.02502.x; Stuntz M., Perlaky A., des Vignes F. et al. The prevalence of Peyronie’s disease in the United States: a population-based study. PloS One 2016;11(2):e0150157. DOI:10.1371/journal.pone.0150157; Moreno S.A., Morgentaler A. Testosterone deficiency and Peyronie’s disease: pilot data suggesting a significant relationship. J Sex Med 2009;6(6):1729–35. DOI:10.1111/j.1743-6109.2009.01250.x; Al-Thakafi S., Al-Hathal N. Peyronie’s disease: a literature review on epidemiology, genetics, pathophysiology, diagnosis and work-up. Transl Androl Urol 2016;5(3):280–9. DOI:10.21037/tau.2016.04.05; Habous M., Malkawi I., Han E. et al. Peyronie’s disease is common in poorly controlled diabetics but is not associated with the metabolic syndrome. Urol Ann 2019;11(3):252–6. DOI:10.4103/UA.UA_164_18; Schneider D., Afyouni A.S., Yafi F.A. Peyronie’s disease and testosterone: a narrative review. Androg Clin Res Ther 2022;3(1):105–12. DOI:10.1089/andro.2021.0027; Can O., Özbir S., Atalay H.A. et al. The relationship between testosterone levels and Peyronie’s disease. Andrologia 2020;52(9):e13727. DOI:10.1111/and.13727; Ширин Г.В., Федорова Н.А. Болезнь Пейрони и первый опыт использования Пейрофлекса®. Вестник урологии 2021;9(2):150–6. DOI:10.21886/2308-6424-2021-9-2-150-156; Shindel A.W., Sweet G., Thieu W. et al. Prevalence of Peyronie’s disease-like symptoms in men presenting with Dupuytren contractures. Sex Med 2017;5(3):e135–e41. DOI:10.1016/j.esxm.2017.06.001; Akbal C., Tanidir Y., Ozgen M.B., Simşek F. Erectile dysfunction and Peyronie’s disease in patient with retroperitoenal fibrosis. Int Urol Nephrol 2008;40(4):971–5. DOI:10.1007/s11255-008-9381-4; Tal R., Heck M., Teloken P. et al. Peyronie’s disease following radical prostatectomy: incidence and predictors. J Sex Med 2010;7(3):1254–61. DOI:10.1111/j.1743-6109.2009.01655.x; EAU Guidelines. Edn. presented at the EAU Annual Congress, Milan, 2023.; Krakhotkin D.V., Chernylovskyi V.A., Mottrie A. et al. New insights into the pathogenesis of Peyronie’s disease: a narrative review. Chronic Dis Transl Med 2020;6(3):165–81. DOI:10.1016/j.cdtm.2020.06.001; Herati A.S., Pastuszak A.W. The genetic basis of Peyronie disease: a review. Sex Med Rev 2016;4(1):85–94. DOI:10.1016/j.sxmr.2015.10.002; Gabrielsen J.S. Peyronie’s disease: is it genetic or not? Transl Androl Urol 2020;9(Suppl2):S262–S8. DOI:10.21037/tau.2019.10.21; Sharma K.L., Alom M., Trost L. The etiology of Peyronie’s disease: pathogenesis and genetic contributions. Sex Med Rev 2020;8(2): 314–23. DOI:10.1016/j.sxmr.2019.06.004; Dolmans G.H., Werker P.M., de Jong I.J. et al. WNT2 locus is involved in genetic susceptibility of Peyronie’s disease. J Sex Med 2012;9(5):1430–4. DOI:10.1111/j.1743-6109.2012.02704.x; Sergovich F.R., Botz J.S., McFarlane R.M. Nonrandom cytogenetic abnormalities in Dupuytren’s disease. N Engl J Med 1983;308(3):162–3. PMID: 6848917.; Dal Cin P., De Smet L., Sciot R. et al. Trisomy 7 and trisomy 8 in dividing and non-dividing tumor cells in Dupuytren’s disease. Cancer Genet Cytogenet 1999;108(2):137–40. DOI:10.1016/s0165-4608(98)00126-5; Casalone R., Mazzola D., Meroni E. et al. Cytogenetic and interphase cytogenetic analyses reveal chromosome instability but no clonal trisomy 8 in Dupuytren contracture. Cancer Genet Cytogenet 1997;99(1):73–6. DOI:10.1016/s0165-4608(96)00430-x; Nyberg L.M. Jr., Bias W.B., Hochberg M.C. et al. Identification of an inherited form of Peyronie’s disease with autosomal dominant inheritance and association with Dupuytren’s contracture and histocompatibility B7 cross-reacting antigens. J Urol 1982;128(1):48–51. DOI:10.1016/s0022-5347(17)52751-2; Nugteren H.M., Nijman J.M., de Jong I.J., van Driel M.F. The association between Peyronie’s and Dupuytren’s disease. Int J Impot Res 2011;23(4):142–5. DOI:10.1038/ijir.2011.18; Allen-Brady K.L., Christensen M.B., Sandberg A.D., Pastuszak A.W. Significant familial clustering of Peyronie’s disease in close and distant relatives. Andrology 2022;10(7):1361–7. DOI:10.1111/andr.13223; Perinchery G., El-Sakka A.I., Angan A. et al. Microsatellite alterations and loss of heterozygosity in Peyronie’s disease. J Urol 2000;164(3 Pt 1):842–6. DOI:10.1097/00005392-200009010-00059; Qian A., Meals R.A., Rajfer J. et al. Comparison of gene expression profiles between Peyronie’s disease and Dupuytren’s contracture. Urology 2004;64(2):399–404. DOI:10.1016/j.urology.2004.04.006; Gonzalez-Cadavid N.F., Magee T.R., Ferrini M. et al. Gene expression in Peyronie’s disease. Int J Impot Res 2002;14(5):361–74. DOI:10.1038/sj.ijir.3900873; Dullea A., Efimenko I., Firdaus F. et al. Whole-genome sequencing identifies novel heterozygous mutation in ALMS1 in three men with both Peyronie’s and Dupuytren’s Disease. Urology 2022;166:76–8. DOI:10.1016/j.urology.2022.02.023; Moses H.L., Roberts A.B., Derynck R. The discovery and early days of TGF-β: a historical perspective. Cold Spring Harbor Perspect Biol 2016;8(7):a021865. DOI:10.1101/cshperspect.a021865; Baba A.B., Rah B., Bhat G.R. et al. Transforming growth factor-beta (TGF-β) signaling in cancer – a betrayal within. Front Pharmacol 2022;13:791272. DOI:10.3389/fphar.2022.791272; Papageorgis P. TGFβ signaling in tumor initiation, epithelial-to-mesenchymal transition, and metastasis. J Oncol 2015;2015:587193. DOI:10.1155/2015/587193; Hassoba H., El-Sakka A., Lue T. Role of increased transforming growth factor beta protein expression in the pathogenesis of Peyronie’s disease. Egypt J Immunol 2005;12(1):1–8. PMID: 16734133.; Piao S., Choi M.J., Tumurbaatar M. et al. Transforming growth factor (TGF)-β type I receptor kinase (ALK5) inhibitor alleviates profibrotic TGF-β1 responses in fibroblasts derived from Peyronie’s plaque. J Sex Med 2010;7(10):3385–95. DOI:10.1111/j.1743-6109.2010.01753.x; Wang J., Xiang H., Lu Y., Wu T. Role and clinical significance of TGF-β1 and TGF-βR1 in malignant tumors (Review). Int J Mol Med 2021;47(4):55. DOI:10.3892/ijmm.2021.4888; Biernacka A., Dobaczewski M., Frangogiannis N.G. TGF-β signaling in fibrosis. Growth Factors (Chur, Switzerland) 2011;29(5):196–202. DOI:10.3109/08977194.2011.595714; Frangogiannis N. Transforming growth factor-β in tissue fibrosis. J Exp Med 2020;217(3):e20190103. DOI:10.1084/jem.20190103; Eftimie R., Brenner H.R., Buonanno A. Myogenin and MyoD join a family of skeletal muscle genes regulated by electrical activity. Proc Natl Acad Sci U S A 1991;88(4):1349–53. DOI:10.1073/pnas.88.4.1349; Cantini L.P., Ferrini M.G., Vernet D. et al. Profibrotic role of myostatin in Peyronie’s disease. J Sex Med 2008;5(7):1607–22. DOI:10.1111/j.1743-6109.2008.00847.x; Chen M.M., Zhao Y.P., Zhao Y. et al. Regulation of myostatin on the growth and development of skeletal muscle. Front Cell Dev Biol 2021;9:785712. DOI:10.3389/fcell.2021.785712; Beutel B., Song J., Konken C.P. et al. New in vivo compatible matrix metalloproteinase (MMP)-2 and MMP-9 inhibitors. Bioconjug Chem 2018;29(11):3715–25. DOI:10.1021/acs.bioconjchem.8b00618; Bormann T., Maus R., Stolper J. et al. Role of matrix metalloprotease-2 and MMP-9 in experimental lung fibrosis in mice. Respir Res 2022;23(1):180. DOI:10.1186/s12931-022-02105-7; Cohen D.J., Reynaldo W.V., Borba V.B. et al. New in vivo model to assess macroscopic, histological, and molecular changes in Peyronie’s disease. Andrology 2022;10(1):154–65. DOI:10.1111/andr.13092; Rompel R., Mueller-Eckhardt G., Schroeder-Printzen I. et al. HLA antigens in Peyronie’s disease. Urol Int 1994;52(1):34–7. DOI:10.1159/000282566; Cushing L., Kuang P.P., Qian J. et al. miR-29 is a major regulator of genes associated with pulmonary fibrosis. Am J Respir Cell Mol Biol 2011;45(2):287–94. DOI:10.1165/rcmb.2010-0323OC; Dos Santos V.G., Dos Santos G.A., Neto C.B. et al. Downregulation of miR-29b is associated with Peyronie’s disease. Urologia 2022;89(3):451–5. DOI:10.1177/03915603211036628; Ten Dam E.P.M., van Driel M.F., de Jong I.J. et al. Glimpses into the molecular pathogenesis of Peyronie’s disease. Aging Male 2020;23(5):962–70. DOI:10.1080/13685538.2019.1643311; De Young L.X., Bella A.J., O’Gorman D.B. et al. Protein biomarker analysis of primary Peyronie’s disease cells. J Sex Med 2010;7(1 Pt 1):99–106. DOI:10.1111/j.1743-6109.2009.01556.x; Weis M.A., Hudson D.M., Kim L. et al. Location of 3-hydroxyproline residues in collagen types I, II, III, and V/XI implies a role in fibril supramolecular assembly. J Biol Chem 2010;285(4):2580–90. DOI:10.1074/jbc.M109.068726; Stone R.C., Pastar I., Ojeh N. et al. Epithelial-mesenchymal transition in tissue repair and fibrosis. Cell Tissue Res 2016;365(3):495–506. DOI:10.1007/s00441-016-2464-0; Сабирзянова А.А., Галявич А.С., Балеева Л.В. и др. Прогностическое значение фактора дифференцировки роста-15 у пациентов с инфарктом миокарда. Российский кардиологический журнал 2021;26(2):4288. DOI:10.18087/cardio.2023.2.n2152; Кукес В.Г., Газданова А.А., Фуралев В.А. и др. Современное представление о биологической роли и клиническом значении миостатина – главного регулятора роста и дифференцировки мышц. Медицинский вестник Северного Кавказа 2021;16(3):327–32.; Гервальд В.Я., Привалихина А.В., Спицын П.С. и др. Болезнь Пейрони как фактор эректильной дисфункции. Механизмы фиброза. Современные проблемы науки и образования 2017;4. URL: https://science-education.ru/ru/article/view?id=26654; Willscher M.K., Cwazka W.F., Novicki D.E. The association of histocompatibility antigens of the B7 cross-reacting group with Peyronie’s disease. J Urol 1979;122(1):34–5. DOI:10.1016/s0022-5347(17)56238-2; Ralph D.J., Schwartz G., Moore W. et al. The genetic and bacteriological aspects of Peyronie’s disease. J Urol 1997;157(1):291–4. DOI:10.1016/S0022-5347(01)65362-X; https://agx.abvpress.ru/jour/article/view/691
-
6Academic Journal
Source: Сучасна педіатрія. Україна; № 2(122) (2022): Сучасна педіатрія. Україна; 27-31
Modern Pediatrics. Ukraine; No. 2(122) (2022): Modern pediatrics. Ukraine; 27-31
Modern Pediatrics. Ukraine; № 2(122) (2022): Modern pediatrics. Ukraine; 27-31Subject Terms: виразка дванадцятипалої кишки, children, язва двенадцатиперстной кишки, эпидермальный фактор роста (EGF), трансформирующий фактор роста (TGF-α), transforming growth factor α (TGF-α), трансформуючий фактор росту α (TGF-α), duodenal ulcer, діти, дети, епідермальний фактор росту (EGF), 3. Good health, epidermal growth factor (EGF)
File Description: application/pdf
Access URL: http://mpu.med-expert.com.ua/article/view/254803
-
7Academic Journal
Authors: N. Zakirova E., A. Zakirova N., D. Nizamova F., Н. Закирова Э., А. Закирова Н., Д. Низамова Ф.
Source: Rational Pharmacotherapy in Cardiology; Vol 17, No 1 (2021); 36-41 ; Рациональная Фармакотерапия в Кардиологии; Vol 17, No 1 (2021); 36-41 ; 2225-3653 ; 1819-6446
Subject Terms: chronic heart failure, transforming growth factor β1, N-terminal precursor of cerebral natriuretic peptide, heart remodeling, myocardial fibrosis, хроническая сердечная недостаточность, трансформирующий фактор роста β1, N-терминальный предшественник мозгового натрийуретического пептида, ремоделирование, фиброзирование миокарда
File Description: application/pdf
Relation: https://www.rpcardio.com/jour/article/view/2386/2115; Мареев В.Ю., Фомин И.В., Агеев Ф.Т., и др. Клинические рекомендации ОССН-РКО-РНМОТ. Сердечная недостаточность: хроническая (ХСН) и острая декомпенсированная (ОДСН). Диагностика, профилактика и лечение. Кардиология. 2018; 58(S6): 8-164. DOI:10.18087/cardio.2475.; Ponikowski P., Voors A.A., Anker S.D., et al. 2016 ESC Guidelines for the diagnosis and treatment of acute and chronic heart failure: The Task Force for the diagnosis and treatment of acute and chronic heart failure of the European Society of Cardiology (ESC). Developed with the special contribution of the Heart Failure association (HFA) of the ESC. Eur Heart J. 2016;37(27):2129-200. DOI:10.1093/eurheart/ehw128.; Opie Z.H., Commerford E.J., Gerch B.J., Pfeffer M.A. Cotroversies in ventricular remodeling. Lancet. 2006;367(9507):356-67. DOI:10.1016/S0140-6736(06)68074-4; Закирова Н.Э., Закирова А.Н. Роль иммуновоспалительных реакций и дисфункции эндотелия в ремоделировании миокарда и прогрессировании ИБС. Рациональная Фармакотерапия в Кардиологии. 2014;10(5):488-94. DOI:10.20996/1819-6446-2014-10-5-488-494.; Капелько В.И. Внеклеточный матрикс миокарда и его изменения при заболеваниях сердца. Кардиология. 2000;9:78-90. DOI:10.18087/cardio.2020.6.n773.; Ена Л.М., Бевзюк Л.В. Роль гемодинамических и гуморальных факторов в патогенезе миокардиального фиброза у пациентов пожилого возраста с артериальной гипертензией и фибрилляцией предсердий (обзор литературы). Проблема Старения и Долголетия. 2013;22 (4):365-79.; Weber K.T. Fibrosis in hypertensive heart disease: focus on cardiac fibroblasts. J Hypertens. 2004;22(1):47-50. DOI:10.1097/00004872-200401000-00011.; Wynn T.A. Cellular and molecular mechanisms of fibrosis. J Pathol. 2008;214(2):199-210. DOI:10.1002/path.2277.; Моисеева О.М., Шляхто Е.В. Трансформирующий фактор роста и маркеры активации лейкоцитов при гипертонической болезни. Артериальная Гипертензия. 2003;9(1):14-6. DOI:10.18705/1607-419X-2003-9-1-14-16.; Шляхто Е.В., ред. Патологическое ремоделирование миокарда: проблемы гипертрофии, воспаления и фиброза. Клиническая и экспериментальная кардиология. СПб.: Академический медицинский центр; 2005.; Rosenkranz S. TGF-beta 1 and angiotensin networking in cardiac remodeling. Cardiovasc Res. 2004;63(3):423-32. DOI:10.1016/j.cardiores.2004.04.030.; Корженевская К. В., Гавришева Н. А., Панов А. В. и др. Трансформирующий фактор роста-β1 при различном клиническом течении ишемической болезни сердца после операции коронарного шунтирования. Медицинская Иммунология. 2010;12(6):521-8.; Verrecchia F., Mauviel A. Transfoming growth factor-beta and fibrosis. World J Gastroenterol. 2007;47(8):13-18. DOI:10.3748/wjg.v13.i22.3056.; Klass B.R., Grobbelaar A.L., Rolfe K.J. Transforming growth factor-beta1 signalling, wound healing and repair: a multifunctional cytokine with clinical implications for wound repair, a delicate balance. Poctgraduate Medical J. 2009;85:9-14. DOI:10.1136/pgmj.2008.069831.; Leack A. Potential therapeutic targets for cardiac fibrosis, TGFβ, angiotensin, endothelin, CCN2, and PDGF, partners in fibrosis activation. Cirs Res. 2010;106(11):1675-88. DOI:10.1161/CIRCRESAHA.110.217737.; Драпкина О.М., Дадаева В.А. Роль трансформирующего фактора роста бета в формировании фиброза при хронической сердечной недостаточности. Российские Медицинские Вести. 2013;8(4):13-7.; Малёв Э.Г., Земцовский Э.В., Омельченко М.Ю., Васина Л.В. Роль трансформирующего β-фактора роста в патогенезе пролапса митрального клапана. Кардиология. 2012;12:34-9.; Mallat Z., Tedgui A. The role of transforming growth factor beta in at atherosclerosis: novel insights and future perspective. Curr Opin Lipidol. 2002;13(5):523-9. DOI:10.1097/00041433-200210000-00008.; Dixon D.L., Griggs K.M., Bersten A.D. De Pasquale C.G. Systemic inflammation and cell activation reflects morbidity in chronic heart failure. Cytokine. 2011;56(3):593-9. DOI:10.1016/j.cyto.2011.08.029.; Садовой В.И. Взаимосвязь ремоделирования миокарда и сывороточных уровней трансформирующего фактора роста В, фактора роста гепатоцитов, С-реактивного белка в раннем постинфарктном периоде. Терапевтический Медико-Биологический Вестник. 2014;17(1):106-10.; Lang R., Badano L.P., Mor-Avi V., et al. Recommendation of Cardiac Chamber Quantification by Echocardiography in Adults: An Update from the American Society of Echocardiography and European Association of Cardiovascular Imaging. Journal of the American Society of Echocardiography. 2015;28(1):1-39е14. DOI:10.10.16/j.echo.2014.10.003.; Копьева К.В., Тепляков А.Т., Гракова Е.В., и др. Роль нового биомаркера ST2 в оценке ремоделирования миокарда у больных хронической сердечной недостаточностью ишемического генеза с сохраненной фракцией выброса левого желудочка. Кардиология. 2018;58(S10):33-43. DOI:10.18087/cardio.2498.; Беловол А.Н., Князькова И.И. Клеточные, молекулярные и структурные механизмы ремоделирования ЛЖ при сердечной недостаточности. Практическая Ангиология. 2013;4(63):53-65.; Cohn J.N., Ferrari R., Sharpe N., on Behalf of the International Forumon Cardiac Remodeling. Cardiac remodeling-concepts and clinical implications:a consensus paper from an international forum on cardiac remodeling. J Am Coll Cardiol. 2000;35(3):569-82. DOI:10.1016/s0735-1097(99)00630-0.; Agarwall I., Glazer N.I., Barasch E., et al. Fibrosis-relation biomarkersand incident cardiovascular disease in older adults: the cardiovascular health Study. Cur Arrhythm Electrophysiol. 2014;7(4):583- 4. DOI:10.1161/CIRCEP.114.001610.; Seeland U., Schäffer A., Selejan S., et al. Effects of AT II and beta-adrenergie receptor antagonists on IGF-beta 1 - unduced fibrosis in trancgenic mice. Eur J Clin Investr. 2009;39(10):851-9. DOI:10.1111/j.1365-2362.2009.02183.x.; https://www.rpcardio.com/jour/article/view/2386
-
8Academic Journal
Source: FYODOROV JOURNAL OF OPHTHALMIC SURGERY ; No. 3 (2020): Офтальмохирургия; 58-64 ; ОФТАЛЬМОХИРУРГИЯ; № 3 (2020): Офтальмохирургия; 58-64 ; 2312-4970 ; 0235-4160
Subject Terms: начальная меланома хориоидеи, трансформирующий фактор роста
File Description: application/pdf
-
9Academic Journal
Authors: S. S. Popov, E. I. Anufrieva, E. D. Kryl’skii, A. N. Verevkin, K. K. Shulgin, С. С. Попов, Е. И. Ануфриева, Е. Д. Крыльский, А. Н. Веревкин, К. К. Шульгин
Source: The Russian Archives of Internal Medicine; Том 11, № 5 (2021); 359-369 ; Архивъ внутренней медицины; Том 11, № 5 (2021); 359-369 ; 2411-6564 ; 2226-6704
Subject Terms: трансформирующий фактор роста — β1, type 2 diabetes mellitus, oxidative stress, antioxidant system, melatonin, transforming growth factor-β1, сахарный диабет 2 типа, окислительный стресс, антиоксидантная система, мелатонин
File Description: application/pdf
Relation: https://www.medarhive.ru/jour/article/view/1299/1061; Hwang S.J., Tsai J.C., Chen H.C. Epidemiology, impact and preventive care of chronic kidney disease in Taiwan. Nephrology (Carlton). 2010; 15(S2): 3-9. doi:10.1111/j.1440-1797.2010.01304.x.; Chawla L.S., Bellomo R., Bihorac A. et al. Acute kidney disease and renal recovery: consensus report of the Acute Disease Quality Initiative (ADQI) 16 Workgroup. Nat Rev Nephrol. 2017; 13(4): 241-257. doi:10.1038/nrneph.2017.2.; Chang A.S., Hathaway C.K., Smithies O. et al. Transforming growth factor-β1 and diabetic nephropathy. Am J Physiol Renal Physiol. 2016; 310(8): F689-F696. doi:10.1152/ajprenal.00502.2015.; Chung A.C.K., Dong Y., Yang W. et al. Smad7 suppresses renal fibrosis via altering expression of TGF-β/Smad3- regulated microRNAs. Mol Ther. 2013; 21(2): 388-398. doi:10.1038/mt.2012.251.; Крыльский Е.Д., Попова Т.Н., Кирилова Е.М. Активность глутатионовой антиоксидантной системы и NADPН-генерирующих ферментов при экспериментальном ревматоидном артрите у крыс. Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 2015; 160(7): 30-33. doi:10.1007/s10517-015-3089-0.; Ruiz-Ortega M., Rayego-Mateos S., Lamaset S. et al. Targeting the progression of chronic kidney disease. Nature Reviews Nephrology. 2020; 16: 269–288. doi:10.1038/s41581-019-0248-y; Горбенко М.В., Попова Т.Н., Шульгин К.К., и др. Влияние мелаксена и вальдоксана на активность глутатионовой антиоксидантной системы и НАДФН-генерирующих ферментов в сердце крыс при экспериментальном гипертиреозе. Экспериментальная и клиническая фармакология. 2013; 76(10): 12-15. doi:10.30906/0869-2092-2013-76-10-12-15.; Ассоциация нефрологов. Клинические рекомендации «Хроническая болезнь почек». 2019; 169 с.; Kryl’skii E.D., Popova T.N., Safonova O.A. et al. Transcriptional Regulation of Antioxidant Enzymes Activity and Modulation of Oxidative Stress by Melatonin in Rats Under Cerebral Ischemia / Reperfusion Conditions. Neuroscience. 2019; 406: 653-666. doi:10.1016/j.neuroscience.2019.01.046.; Iskusnykh I.Y., Kryl’skii E.D., Brazhnikova D.A. et al. Novel Antioxidant, Deethylated Ethoxyquin, Protects against Carbon Tetrachloride Induced Hepatotoxicity in Rats by Inhibiting NLRP3 Inflammasome Activation and Apoptosis. Antioxidants. 2021; 10(1): 122. doi:10.3390/antiox10010122.; Popov S.S., Shulgin K.K., Popova T.N. et al. Effects of MelatoninAided Therapy on the Glutathione Antioxidant System Activity and Liver Protection. Journal of Biochemical and Molecular Toxicology. 2015; 29(10): 449-457. doi:10.1002/jbt.21705.; Meng X., Li Y., Li S. et al. Dietary Sources and Bioactivities of Melatonin. Nutrients. 2017; 9(4): E367. doi:10.3390/nu9040367.; Stacchiotti A., Favero G., Giugno L. et al. Mitochondrial and Metabolic Dysfunction in Renal Convoluted Tubules of Obese Mice: Protective Role of Melatonin. PLoS One. 2014;9(10): e111141. doi:10.1371/journal.pone.0111141.; Xavier S., Vasko R., Matsumoto K. et al. Curtailing Endothelial TGF-β Signaling Is Sufficient to Reduce Endothelial-Mesenchymal Transition and Fibrosis in CKD. Journal of the American Society of Nephrology. 2015;26(4):817-829. doi:10.1681/ASN.2013101137.; Gu Y.Y., Liu X.S., Huang X.R. et al. Diverse Role of TGF-β in Kidney Disease. Front Cell Dev Biol. 2020; 8: 123. doi:10.3389/fcell.2020.00123.; Obayashi K., Saeki K., Iwamoto J. et al. Exposure to Light at Night, Nocturnal Urinary Melatonin Excretion, and Obesity/Dyslipidemia in the Elderly: A Cross-Sectional Analysis of the HEIJO-KYO Study. The Journal of Clinical Endocrinology & Metabolism. 2013; 98(1): 337–344. doi:10.1210/jc.2012-2874.; Pandi-Perumal S.R., BaHammam A.S., Ojike N.I. et al. Melatonin and Human Cardiovascular Disease. J Cardiovasc Pharmacol Ther. 2017; 22(2): 122-132. doi:10.1177/1074248416660622.; Lindblom R., Higgins G., Coughlan M. et al. Targeting Mitochondria and Reactive Oxygen Species-Driven Pathogenesis in Diabetic Nephropathy. Rev Diabet Stud. 2015; 12(1-2): 134-156. doi:10.1900/RDS.2015.12.134.; Huang J.Q., Zhou J.C., Wu Y.Y. et al. Role of glutathione peroxidase 1 in glucose and lipid metabolism-related diseases. Free Radical Biology and Medicine. 2018; 127: 108-115. doi:10.1016/j. freeradbiomed.2018.05.077.; Biswas C., Shah N., Muthu M. et al. Nuclear heme oxygenase-1 (HO-1) modulates subcellular distribution and activation of Nrf2, impacting metabolic and anti-oxidant defenses. J Biol Chem. 2014; 189(39): 26882-26894. doi:10.1074/jbc.M114.567685.; Kilic U., Kilic E., Tuzcu Z. et al. Melatonin suppresses cisplatininduced nephrotoxicity via activation of Nrf-2/HO-1 pathway. Nutr Metab (Lond). 2013; 10(1): 7. doi:10.1186/1743-7075-10-7.; Haeusler R.A., Camastra S., Astiarraga B. et al. Decreased expression of hepatic glucokinase in type 2 diabetes. Molecular Metabolism. 2015; 4(3): 222-226. doi:10.1016/j.molmet.2014.12.007.; https://www.medarhive.ru/jour/article/view/1299
-
10Academic Journal
Source: Мать и дитя в Кузбассе, Vol 20, Iss 4, Pp 21-25 (2019)
Subject Terms: дети, бронхиальная астма, контроль, трансформирующий фактор роста β1, Pediatrics, RJ1-570, Gynecology and obstetrics, RG1-991
File Description: electronic resource
-
11Academic Journal
Source: Neonatology, surgery and perinatal medicine; Том 7, № 4(26) (2017): NEONATOLOGY, SURGERY AND PERINATAL MEDICINE; 80-86
Неонатологія, хірургія та перинатальна медицина; Том 7, № 4(26) (2017): НЕОНАТОЛОГІЯ, ХІРУРГІЯ ТА ПЕРИНАТАЛЬНА МЕДИЦИНА; 80-86
Неонатология, хирургия и перинатальная медицина; Том 7, № 4(26) (2017): НЕОНАТОЛОГИЯ, ХИРУРГИЯ И ПЕРИНАТАЛЬНАЯ МЕДИЦИНА; 80-86Subject Terms: 2. Zero hunger, пиелонефрит, пузырномочеточниковый рефлекс, дети раннего возраста, трансформирующий фактор роста В1, полиморфизм гена, пієлонефрит, міхурово-сечовідний рефлекс, діти раннього віку, трансформуючий фактор росту В1, поліморфізм гена, Pyelonephritis, Vesiculo-Urethral Reflux, Infants, Transforming Growth Factor В1, Ppolymorphism of the Gene, 3. Good health
File Description: application/pdf
-
12Academic Journal
Source: ORTHOPAEDICS, TRAUMATOLOGY and PROSTHETICS; № 2 (2017); 62-69
Ортопедия, травматология и протезирование; № 2 (2017); 62-69Subject Terms: перелом кістки, регенерація, фібрин-кров'яний згусток, фактор росту ендотелію судин, трансформувальний фактор росту-β, перелом кости, регенерация, фибрин-кровяной сгусток, фактор роста эндотелия сосудов, трансформирующий фактор роста-β, bone fracture, regeneration, fibrin-blood clot, endothelial growth factor of suction, transforming growth factor, 3. Good health
File Description: application/pdf
-
13Academic Journal
Authors: Akimova, V. M.
Source: Medical and Clinical Chemistry; No. 4 (2017); 18-22 ; Медицинская и клиническая химия; № 4 (2017); 18-22 ; Медична та клінічна хімія; № 4 (2017); 18-22 ; 2414-9934 ; 2410-681X ; 10.11603/mcch.2410-681X.2017.v0.i4
Subject Terms: abdominal tuberculosis, acute appendicitis, TNFα, ТGFβ1, абдоминальный туберкулез, острый флегмонозный апендицит, фактор некроза опухолей α, трансформирующий фактор роста β1, абдомінальний туберкульоз, гострий флегмонозний апендицит, TNF-α
File Description: application/pdf
Relation: https://ojs.tdmu.edu.ua/index.php/MCC/article/view/8309/7776; https://ojs.tdmu.edu.ua/index.php/MCC/article/view/8309
-
14Academic Journal
Source: Clinical and experimental pathology; Vol. 19 No. 1 (2020) ; Клиническая и экспериментальная патология; Том 19 № 1 (2020) ; Клінічна та експериментальна патологія; Том 19 № 1 (2020) ; 2521-1153 ; 1727-4338
Subject Terms: chronic kidney disease, rheumatoid arthritis, diagnostics, β2-microglobulin, transforming growth factor β1, хроническая болезнь почек, ревматоидный артрит, диагностика, β2-микроглобулин, трансформирующий фактор роста β1, хронічна хвороба нирок, ревматоїдний артрит, діагностика, β2-мікроглобулін, трансформуючий фактор росту β1
File Description: application/pdf
-
15Academic Journal
Source: Эндодонтия Today, Vol 9, Iss 4, Pp 3-5 (2020)
Subject Terms: пульпа зуба, основной фактор роста фибробластов-β, инсулиноподобный фактор роста -1, трансформирующий фактор роста -1β, хронический пульпит, Dentistry, RK1-715
-
16Academic Journal
Authors: V.S. Berezenko, O.V. Tsaryova, M.B. Dyba
Source: Sovremennaya pediatriya; № 1(73) (2016): Sovremennaya pediatriya; 120-126
Современная педиатрия; № 1(73) (2016): Современная педиатрия; 120-126
Сучасна педіатрія; № 1(73) (2016): Сучасна педіатрія; 120-126Subject Terms: дети, хронический гепатит С, полиморфизм гена ИЛ-28В, фиброз, гиалуроновая кислота, трансформирующий фактор роста β1, діти, хронічний гепатит С, поліморфізм гена ІЛ-28В, фіброз, гіалуронова кислота, трансформуючий фактор росту β1, children, chronic hepatitis C, polymorphism of the gene IL-28B, fibrosis, hyaluronic acid, transforming growth factor β1, 3. Good health
File Description: application/pdf
-
17Academic Journal
Source: Scientific digest of association of obstetricians and gynecologists of Ukraine; № 2(46) (2020); 49-53
СБОРНИК НАУЧНЫХ ТРУДОВ Ассоциации акушеров-гинекологов Украины; № 2(46) (2020); 49-53
Збірник наукових праць Асоціації акушерів-гінекологів України; № 2(46) (2020); 49-53Subject Terms: лейомиома матки, трансформирующий фактор роста, интерлейкин, фактор некроза опухоли, естественные киллеры, лейкограмма, 618.14-006.36:616-079.3, лейоміома матки, трансформуючий чинник росту, інтерлейкін, чинник некроза пухлини, природні кілери, лейкограма, uterine leiomyoma, transforming growth factor, interleukin, tumor necrosis factor, natural killers, leukogram, 3. Good health
File Description: application/pdf
Access URL: http://zbirnyk.aagu.com.ua/article/view/219472
-
18Report
Subject Terms: transforming growth factor β1, type III collagen, Ph-negative myeloproliferative neoplasms, matrix metalloproteinases, Ph-негативные миелопролиферативные новообразования, tissue inhibitors of matrix metalloproteinases, фактор роста фибробластов 2, трансформирующий фактор роста β1, 3. Good health, матриксные металлопротеиназы, тканевые ингибиторы матриксных металлопротеиназ, острые сосудистые события, acute vascular events, fibroblast growth factor 2, коллаген III типа
-
19Academic Journal
Source: Вестник хирургии имени И.И. Грекова, Vol 172, Iss 3, Pp 073-075 (2018)
Subject Terms: острый панкреатит, тромбоциты, бета-трансформирующий фактор роста, acute pancreatitis, platelets, tgf-beta factor, Surgery, RD1-811
File Description: electronic resource
-
20Academic Journal
Authors: Чорнобай, Анатолій Валентинович, Чорнобай, М. А., Шликова, Оксана Анатоліївна, Ізмайлова, Ольга Віталіївна, Чорнобай, Анатолий Валентинович, Шлыкова, Оксана Анатольевна, Измайлова, Ольга Витальевна, Chornobai, A. V., Chornobai, M. A, Shlykova, O. A, Izmailova, O. V
Subject Terms: рак шлунка, трансформуючий фактор росту, поліморфізм Т869C гену TGF-β1, gastric cancer, transforming growth factor, T869C polymorphism of TGF-β1 gene, рак желудка, трансформирующий фактор роста, полиморфизм Т869C гена TGF-β1, 575.174.015.3:618.19-006.6-02
File Description: application/pdf