Search Results - "ТРАНСМИССИЯ"

Source: Aktualʹnaâ Infektologiâ, Vol 5, Iss 3, Pp 123-128 (2017)
ACTUAL INFECTOLOGY; Том 5, № 3 (2017); 123-128
Актуальная инфектология-Aktualʹnaâ Infektologiâ; Том 5, № 3 (2017); 123-128
Актуальна інфектологія-Aktualʹnaâ Infektologiâ; Том 5, № 3 (2017); 123-128

Subject Terms: вірусний гепатит В і С, вагітність, вертикальна трансмісія вірусу, екстракорпоральне запліднення, вакцинація, противірусні препарати прямої дії, antiviral drugs with direct action, viral hepatitis B and C, Infectious and parasitic diseases, RC109-216, in vitro fertilisation, vaccination, вирусный гепатит В и С, беременность, вертикальная трансмиссия вируса, экстракорпоральное оплодотворение, вакцинация, противовирусные препараты прямого действия, 3. Good health, pregnancy, vertical transmission of the virus, 03 medical and health sciences, 0302 clinical medicine

File Description: application/pdf

Access URL: http://ai.zaslavsky.com.ua/article/download/109854/105426
https://doaj.org/article/02deeeae10934b5fb3ccd1228c9adf47
https://doaj.org/article/02deeeae10934b5fb3ccd1228c9adf47
http://ai.zaslavsky.com.ua/article/view/109854
https://core.ac.uk/display/87760177
http://ai.zaslavsky.com.ua/article/download/109854/105426
http://ai.zaslavsky.com.ua/article/view/109854

View record at OpenAIRE Full Text Finder

17

Academic Journal

Optimizing the Finishing Treatment of Potato Harvester Transmission Shafts ; Оптимизация финишной обработки трансмиссионного вала картофелеуборочного комбайна

Authors: A. V. Nemenko, M. M. Nikitin, А. В. Неменко, М. М. Никитин

Source: Agricultural Machinery and Technologies; Том 18, № 1 (2024); 81-88 ; Сельскохозяйственные машины и технологии; Том 18, № 1 (2024); 81-88 ; 2073-7599

Subject Terms: концентрированные дефекты, transmission, finishing, surface cleanliness, concentrated defects, трансмиссия, финишная обработка, чистота поверхности

File Description: application/pdf

Relation: https://www.vimsmit.com/jour/article/view/560/509; Сорокин А.А., Пономарёв А.Г. Конструктивные схемы картофелеуборочных комбайнов в аграрном секторе России // Сельскохозяйственные машины и технологии. 2013. N6. С. 22-25. EDN: RVTBIX.; Успенский И.А., Рембалович Г.К., Костенко М.Ю., Безносюк Р.В. Оценка перспективной технологической схемы картофелеуборочного комбайна // Известия Нижневолжского агроуниверситетского комплекса. 2018. N1 (49). С. 262-269. DOI:10.32786/2071-9485-2018-01-262-269.; Бышов Н.В., Борычев С.Н., Рембалович Г.К. и др. Математическая модель технологического процесса картофелеуборочного комбайна при работе в условиях тяжелых суглинистых почв // Вестник Рязанского государственного агротехнологического университета им. П.А.Костычева. 2014. N4 (24). С. 59-64.; Бышов Н.В., Борычев С.Н., Успенский И.А. и др. Технологическое и теоретическое обоснование конструктивных параметров органов вторичной сепарации картофелеуборочных комбайнов для работы в тяжелых условиях // Вестник Рязанского государственного агротехнологического университета им. П.А. Костычева. 2012. N4(16). С. 87-90. EDN: PLVONF.; Бобрышов А.В., Лиханос В.А. Расчет максимальных динамических нагрузок в трансмиссиях машинно-тракторных агрегатов // SWorld. 2014. Т. 4. N3. С. 24.; Королев А.Е. Безотказность картофелеуборочных комбайнов // NovaUm.Ru.2017. N10. С. 38-40. EDN: YNDSNI.; Овчинникова Н.И., Боннет В.В., Косарева А.В. Диагностирование технического состояния приводов картофелеуборочного комбайна // Аграрный научный журнал. 2021. N9. С. 95-97. DOI:10.28983/asj.y2021i9pp95-97.; Годжаев З.А., Сапьян Ю.Н., Колос В.А., Горшков М.И. Расход и потери горюче-смазочных материалов в мобильной сельскохозяйственной технике // Сельскохозяйственные машины и технологии. 2017. N2. С. 9-14. DOI:10.22314/207375992017.2.914. EDN: YODAPN.; Лобачевский Я.П., Миронов Д.А., Миронова А.В. Основные направления повышения ресурса быстроизнашиваемых рабочих органов сельскохозяйственных машин // Сельскохозяйственные машины и технологии. 2023. Т. 17. N1. С. 41-50. DOI:10.22314/2073-7599-2023-17-1-41-50.; Денисов В.А., Славкина В.Э., Алехина Р.А., Касимов Р.М. Повышение долговечности деталей экстерьера сельскохозяйственной техники с использованием композиционных материалов // Технический сервис машин. 2023. Т. 61. N4(153). С. 90-96. DOI:10.22314/2618-8287-2023-61-4-90-96. EDN: VHLKIM.; Arola D., Williams C.L. Estimating the fatigue stress concentration factor of machined surfaces. International Journal of Fatigue. 2002. Vol. 24. N9. 923-930. DOI:10.1016/S0142-1123(02)00012-9.; Барсуков Г.В., Кожус О.Г., Винокуров А.Ю. Исследование абразивной способности искусственных и природных абразивов, обеспечивающих производительность гидроабразивного резания // Фундаментальные и прикладные проблемы техники и технологии. 2018. N2. С. 34-40. EDN: UXZGMJ.; Lavrinenko V.I. Current advances in the development of abrasive tools and Investigation of diamond abrasive machining processes (Materials science approach). Review. Journal of Superhard Materials. 2018. Vol. 40. 348-354. DOI:10.3103/S1063457618050064.; Отений Я.Н., Никифоров Н.И., Журавлев А.И. Комбинированная обработка длинных валов // СТИН. 2006. N6. С. 36-39.; Сковородин В.Я., Антипов А.В. Влияние финишной отделочно-антифрикционной обработки валов на амплитудные параметры шероховатости поверхности // Научное обеспечение развития АПК в условиях импортозамещения. 2018. С. 387-391.; Неменко А.В., Никитин М.М. Управление качеством изделия при обработке металлов резанием // Современные технологии: проблемы и перспективы. 2019. С. 117-120. EDN: TQCRLW.; Kobayashi H., Mark B., Turin W. Probability, random processes and statistical analysis. Cambridge University Press, 2012. 813.; Cappe’ O., Moulines E., Ryde’n T. Inference in hidden Markov models. Springer, 2005. 652.; Wang B., Zhao W., Du Ya. et al. Prediction of fatigue stress concentration factor using extreme learning machine. Computational Materials Science. 2016. Vol. 125. 136-145. DOI:10.1016/j.commatsci.2016.08.035.; Syusyuka E.N. Possibility of applying X-ray methods to control the surface quality of a shaft line after finishing. Journal of Physics: IOP Publishing. 2021. Vol. 2061. N1. 012022. DOI:10.1088/1742-6596/2061/1/012022.; Ragavanantham S., Kumar S.S., Shyam M.S. Optimisation of shutter speed in machine vision technique for monitoring grinding wheel loading. Applied Mechanics and Materials. 2015. Vol. 766. 878-883. DOI:10.4028/www.scientific.net/AMM.766-767:878-883.; https://www.vimsmit.com/jour/article/view/560

Availability: https://www.vimsmit.com/jour/article/view/560
https://doi.org/10.22314/2073-7599-2024-18-1-81-88

View record from BASE

18

Academic Journal

Evolution of Yersinia pestis as the Causative Agent of a Vector-Borne Disease Transmitted by Arthropods ; Эволюция Yersinia pestis как возбудителя трансмиссивной болезни, переносимой с помощью артропод

Authors: G. A. Eroshenko, L. M. Kukleva, Г. А. Ерошенко, Л. М. Куклева

Source: Problems of Particularly Dangerous Infections; № 1 (2024); 6-16 ; Проблемы особо опасных инфекций; № 1 (2024); 6-16 ; 2658-719X ; 0370-1069

Subject Terms: биопленка, causative agent, fleas, transmission, evolution, biofilm, возбудитель, блохи, трансмиссия, эволюция

File Description: application/pdf

Relation: https://journal.microbe.ru/jour/article/view/1938/1447; Попова А.Ю., Кутырев В.В., редакторы. Атлас природных очагов чумы России и зарубежных государств. Калининград: РА Полиграфычъ; 2022. 348 с.; Adeolu M., Alnajar S., Naushad S., Gupta R.S. Genomebased phylogeny and taxonomy of the ‘Enterobacteriales’: proposal for Enterobacterales ord. nov. divided into the families Enterobacteriaceae, Erwiniaceae fam. nov., Pectobacteriaceae fam. nov., Yersiniaceae fam. nov., Hafniaceae fam. nov., Morganellaceae fam. nov., and Budviciaceae fam. nov. Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2016; 66(12):5575–99. DOI:10.1099/ijsem.0.001485.; Parkhill J., Wren B.W., Thomson N.R., Titball R.W., Holden M.T., Prentice M.B., Sebaihia M., James K.D., Churcher C., Mungall K.L., Baker S., Basham D., Bentley S.D., Brooks K., Cerdeño-Tárraga A.M., Chillingworth T., Cronin A., Davies R.M., Davis P., Dougan G., Feltwell T., Hamlin N., Holroyd S., Jagels K., Karlyshev A.V., Leather S., Moule S., Oyston P.C., Quail M., Rutherford K., Simmonds M., Skelton J., Stevens K., Whitehead S., Barrell B.G. Genome sequence of Yersinia pestis, the causative agent of plague. Nature. 2001; 413(6855):523–7. DOI:10.1038/35097083.; Wren B.D. The yersiniae – a model genus to study the rapid evolution of bacterial pathogen. Nat. Rev. Microbiol. 2003; 1(1):55– 64. DOI:10.1038/nrmicro730.; McNally A., Thomson N.R., Reuter S., Wren B.W. ‘Add, stir and reduce’: Yersinia spp. as model bacteria for pathogen evolution. Nat. Rev. Microbiol. 2016; 14(3):177–90. DOI:10.1038/nrmicro.2015.29.; Проценко О.А., Анисимов П.И., Можаров О.Т., Коннов Н.П., Попов Ю.А., Кокушкин А.М. Выявление и характеристика плазмид чумного микроба, детерминирующих синтез пестицина I и экзотоксина «мышиного» токсина. Генетика. 1983; 19:1081–90.; Hinnebusch J., Cherepanov P., Du Y., Rudolph A., Dixon J.D., Schwan T., Forsberg A. Murine toxin of Yersinia pestis shows phospholipase D activity but is not required for virulence in mice. J. Med. Microbiol. 2000; 290(4-5):483–7. DOI:10.1016/S1438-4221(00)80070-3.; Bland D.M., Miarinjara A., Bosio C.F., Calarco J., Hinnebusch B.J. Acquisition of yersinia murine toxin enabled Yersinia pestis to expand the range of mammalian hosts that sustain flea-borne plague. PLoS Pathog. 2021; 17(10):e1009995. DOI:10.1371/journal.ppat.1009995.; Sun Y.C., Jarrett C.O., Bosio C.F., Hinnebusch B.J. Retracing the evolutionary path that led to flea-borne transmission of Yersinia pestis. Cell Host Microbe. 2014; 15(5):578–86. DOI:10.1016/j.chom.2014.04.003.; Andrades Valtueña A., Neumann G.U., Spyrou M.A., Musralina L., Aron F., Beisenov A., Belinskiy A.B., Bos K.I., Buzhilova A., Conrad M., Djansugurova L.B., Dobeš M., Ernée M., Fernández-Eraso J., Frohlich B., Furmanek M., Hałuszko A., Hansen S., Harney É., Hiss A.N., Hübner A., Key F.M., Khussainova E., Kitov E., Kitova A.O., Knipper C., Kühnert D., Lalueza-Fox C., Littleton J., Massy K., Mittnik A., Mujika-Alustiza J.A., Olalde I., Papac L., Penske S., Peška J., Pinhasi R., Reich D., Reinhold S., Stahl R., Stäuble H., Tukhbatova R.I., Vasilyev S., Veselovskaya E., Warinner C., Stockhammer P.W., Haak W., Krause J., Herbig A. Stone Age Yersinia pestis genomes shed light on the early evolution, diversity, and ecology of plague. Proc. Natl Acad. Sci. USA. 2022; 119(17):e2116722119. DOI:10.1073/pnas.2116722119.; Hinnebusch B.J., Jarrett C.O., Bland D.M. Molecular and genetic mechanisms that mediate transmission of Yersinia pestis by fleas. Biomolecules. 2021; 11(2):210. DOI:10.3390/biom11020210.; Chouikha I., Hinnebusch B.J. Silencing urease: a key evolutionary step that facilitated the adaptation of Yersinia pestis to the flea-borne transmission route. Proc. Natl Acad. Sci. USA. 2014; 111(52):18709–14. DOI:10.1073/pnas.1413209111.; Sebbane F., Devalckenaere A., Foulon J., Carniel E., Simonet M. Silencing and reactivation of urease in Yersinia pestis is determined by one G residue at a specific position in the ureD gene. Infect. Immun. 2001; 69(1):170–6. DOI:10.1128/IAI.69.1.170-176.2001.; Waterfield N., Hares M., Hinchliffe S., Wren B., ffrench-Constant R. The insect toxin complex of Yersinia. Adv. Exp. Med. Biol. 2007; 603:247–57. DOI:10.1007/978-0-387-72124-8_22.; Одиноков Г.Н., Ерошенко Г.А., Краснов Я.М., Гусева Н.П., Кутырев В.В. Анализ вариабельности генов комплекса инсектицидных токсинов у штаммов Yersinia pestis и Yersinia pseudotuberculosis. Генетика. 2011; 47(1):10–7.; Hinnebusch B.J., Jarrett C.O., Bland D.M. “Fleaing” the plague: adaptations of Yersinia pestis to its insect vector that lead to transmission. Annu. Rev. Microbiol. 2017; 71:215–32. DOI:10.1146/annurev-micro-090816-093521.; Chouikha I., Sturdevant D.E., Jarrett C., Sun Y.C., Hinnebusch B.J. Differential gene expression patterns of Yersinia pestis and Yersinia pseudotuberculosis during infection and biofilm formation in the flea digestive tract. mSystems. 2019; 4(1):e0021718. DOI:10.1128/mSystems.00217-18.; Bland D.M., Martens C.A., Virtaneva K., Kanakabandi K., Long D., Rosenke R., Saturday G.A., Hoyt F.H., Bruno D.P., Ribeiro J.M., Hinnebusch B.J. Transcriptomic profiling of the digestive tract of the rat flea, Xenopsylla cheopis, following blood feeding and infection with Yersinia pestis. PLoS Negl. Trop. Dis. 2020; 14(9):e0008688. DOI:10.1371/journal.pntd.0008688.; Bacot A.W., Martin C.J. LXVII. Observations on the mechanism of the transmission of plague by fleas. J. Hyg. (Lond). 1914; 13(Suppl.):423–39. PMID: 20474555.; Jarrett C.O., Deak E., Isherwood K.E., Oyston P.C., Fischer E.R., Whitney A.R., Kobayashi S.D., DeLeo F.R., Hinnebusch B.J. Transmission of Yersinia pestis from an infectious biofilm in the flea vector. J. Infect. Dis. 2004; 190(4):783–92. DOI:10.1086/422695.; Darby C. Uniquely insidious: Yersinia pestis biofilms. Trends Microbiol. 2008; 16(4):158–64. DOI:10.1016/j.tim.2008.01.005.; Eroshenko G.A., Vidyaeva N.A., Kutyrev V.V. Comparative analysis of biofilm formation by main and non-main subspecies Yersinia pestis strains. FEMS Immunol. Med. Microbiol. 2010; 59(3):513–20. DOI:10.1111/j.1574-695X.2010.00719.x.; Кошель Е.И., Ерошенко Г.А., Видяева Н.А., Анисимова Л.В., Новичкова Л.А., Кутырев В.В. Особенности образования биопленки у штаммов Yersinia pestis основного и не основных подвидов. Инфекционные болезни. 2012; 10(S1):201.; Макашова М.А., Оглодин Е.Г., Шарапова Н.А., Самойлов А.Е., Ерошенко Г.А., Кутырев В.В. Влияние Yersinia pestis на почвенных нематод Panagrolaimus sp. из Горно-Алтайского высокогорного очага чумы. Проблемы особо опасных инфекций. 2023; 2:127–33. DOI:10.21055/0370-1069-2023-2-127-133.; Кутырев В.В., Ерошенко Г.А., Попов Н.В., Видяева Н.А., Коннов Н.П. Молекулярные механизмы взаимодействия возбудителя чумы с беспозвоночными животными. Молекулярная генетика, микробиология и вирусология. 2009; 4:6–13.; Kutyrev V.V., Filippov A.A., Oparina O.S., Protsenko O.A. Analysis of Yersinia pestis chromosomal determinants Pgm+ and Psts associated with virulence. Microb. Pathog. 1992; 12(3):177–86. DOI:10.1016/0882-4010(92)90051-o.; Bobrov A.G., Kirillina O., Forman S., Mack D., Perry R.D. Insights into Yersinia pestis biofilm development: topology and cointeraction of Hms inner membrane proteins involved in exopolysaccharide production. Environ. Microbiol. 2008; 10(6):1419–32. DOI:10.1111/j.1462-2920.2007.01554.x.; Abu Khweek A., Fetherston J.D., Perry R.D. Analysis of HmsH and its role in plague biofilm formation. Microbiology (Reading). 2010; 156(Pt. 5):1424–38. DOI:10.1099/mic.0.036640-0.; Hengge R. Principles of c-di-GMP signalling in bacteria. Nat. Rev. Microbiol. 2009; 7(4):263–73. DOI:10.1038/nrmicro2109.; Sun Y.C., Koumoutsi A., Jarrett C., Lawrence K., Gherardini F.C., Darby C., Hinnebusch B.J. Differential control of Yersinia pestis biofilm formation in vitro and in the flea vector by two c-di-GMP diguanylate cyclases. PLoS One. 2011; 6(4):e19267. DOI:10.1371/journal.pone.0019267.; Kirillina O., Fetherston J.В., Bobrov A.G., Abney J., Perry R.D. HmsP, a putative phosphodiesterase, and HmsT, a putative diguanylate cyclase, control Hms-dependent biofilm formation in Yersinia pestis. Mol. Microbiol. 2004; 54(1):75–88. DOI:10.1111/j.1365-2958.2004.04253.x.; Bobrov A.G., Kirillina O., Ryjenkov D.A., Waters C.M., Price P.A., Fetherston J.D., Mack D., Goldman W.E., Gomelsky M., Perry R.D. Systematic analysis of cyclic di-GMP signaling enzymes and their role in biofilm formation and virulence in Yersinia pestis. Mol. Microbiol. 2011; 79(2):533–51. DOI:10.1111/j.1365-2958.2010.07470.x.; Bobrov A.G., Kirillina O., Vadyvaloo V., Koestler B.J., Hinz A.K., Mack D., Waters C.M., Perry R.D. The Yersinia pestis HmsCDE regulatory system is essential for blockage of the oriental rat flea (Xenopsylla cheopis), a classic plague vector. Environ. Microbiol. 2015; 17(4):947–59. DOI:10.1111/1462-2920.12419.; Darby C., Ananth S.L., Tan L., Hinnebusch B.J. Identification of gmhA, a Yersinia pestis gene required for flea blockage, by using a Caenorhabditis elegans biofilm system. Infect. Immun. 2005; 73(11):7236–42. DOI:10.1128/IAI.73.11.7236-7242.2005.; Tan L., Darby C. Yersinia pestis YrbH is a multifunctional protein required for both 3-deoxy-D-manno-oct-2-ulosonic acid biosynthesis and biofilm formation. Mol. Microbiol. 2006; 61(4):861– 70. DOI:10.1111/j.1365-2958.2006.05265.x.; Liu L., Fang N., Sun Y., Yang H., Zhang Y., Han Y., Zhou D., Yang R. Transcriptional regulation of the waaAE-coaD operon by PhoP and RcsAB in Yersinia pestis biovar Microtus. Protein Cell. 2014; 5(12):940–4. DOI:10.1007/s13238-014-0110-8.; Rebeil R., Jarrett C.O., Driver J.D., Ernst R.K., Oyston P.C., Hinnebusch B.J. Induction of the Yersinia pestis PhoP-PhoQ regulatory system in the flea and its role in producing a transmissible infection. J. Bacteriol. 2013; 195(9):1920–30. DOI:10.1128/JB.02000-12.; Zhang Y., Wang L., Han Y., Yan Y., Tan Y., Zhou L., Cui Y., Du Z., Wang X., Bi Y., Yang H., Song Y., Zhang P., Zhou D., Yang R. Autoregulation of PhoP/PhoQ and positive regulation of the cyclic AMP receptor protein-cyclic AMP complex by PhoP in Yersinia pestis. J. Bacteriol. 2013; 195(5):1022–30. DOI:10.1128/JB.01530-12.; Willias S.P., Chauhan S., Lo C.C., Chain P.S., Motin V.L. CRP-mediated carbon catabolite regulation of Yersinia pestis biofilm formation is enhanced by the carbon storage regulator protein, CsrA. PLoS One. 2015; 10(8):e0135481. DOI:10.1371/journal. pone.0135481.; Silva-Rohwer A.R., Held K., Yakhnin H., Babitzke P., Vadyvaloo V. CsrA-mediated translational activation of the hmsE mRNA enhances HmsD-dependent c-di-GMP-enabled biofilm production in Yersinia pestis. J. Bacteriol. 2023; 205(6):e0010523. DOI:10.1128/jb.00105-23.; Earl S.С., Rogers M.T., Keen J., Bland D.M., Houppert A.S., Miller C., Temple I., Anderson D.M., Marketon M.M. Resistance to innate immunity contributes to colonization of the insect gut by Yersinia pestis. PLoS One. 2015; 10(7):e0133318. DOI:10.1371/journal.pone.0133318.; Zhou W., Russell C.W., Johnson K.L., Mortensen R.D., Erickson D.L. Gene expression analysis of Xenopsylla cheopis (Siphonaptera: Pulicidae) suggests a role for reactive oxygen species in response to Yersinia pestis infection. J. Med. Entomol. 2012; 49(2):364–70. DOI:10.1603/me11172.; Liu L., Zheng S. Transcriptional regulation of Yersinia pestis biofilm formation. Microb. Pathog. 2019; 131:212–7. DOI:10.1016/j.micpath.2019.04.011.; Fang H., Liu L., Zhang Y., Yang H., Yan Y., Ding X., Han Y., Zhou D., Yang R. BfvR, an AraC-family regulator, controls biofilm formation and pH6 antigen production in opposite ways in Yersinia pestis biovar microtus. Front. Cell. Infect. Microbiol. 2018; 8:347. DOI:10.3389/fcimb.2018.00347.; Guo X.P., Sun Y.C. New insights into the non-orthodox two component Rcs phosphorelay system. Front. Microbiol. 2017; 8:2014. DOI:10.3389/fmicb.2017.02014.; Wall E., Majdalani N., Gottesman S. The complex Rcs regulatory cascade. Annu. Rev. Microbiol. 2018; 72:111–39. DOI:10.1146/annurev-micro-090817-062640.; Fang N., Yang H., Fang H., Liu L., Zhang Y., Wang L., Han Y., Zhou D., Yang R. RcsAB is a major repressor of Yersinia biofilm development through directly acting on hmsCDE, hmsT, and hmsHFRS. Sci. Rep. 2015; 5:9566. DOI:10.1038/srep09566.; Sun Y.С., Hinnebusch B.J., Darby C. Experimental evidence for negative selection in the evolution of a Yersinia pestis pseudogene. Proc. Natl Acad. Sci. USA. 2008; 105(23):8097–101. DOI:10.1073/pnas.0803525105.; Guo X.P., Yan H.Q., Yang W., Yin Z., Vadyvaloo V., Zhou D., Sun Y.C. A frameshift in Yersinia pestis rcsD alters canonical Rcs signalling to preserve flea-mammal plague transmission cycles. Elife. 2023; 12:e83946. DOI:10.7554/eLife.83946.; Ерошенко Г.А., Кошель Е.И., Одиноков Г.Н., Шавинга Н.Ю., Краснов Я.М., Гусева Н.П., Кутырев В.В. Вариабельность нуклеотидных последовательностей генов phoP/phoQ и rovA – глобальных регуляторов жизненного цикла возбудителя чумы. Проблемы особо опасных инфекций. 2012; 2:25–8. DOI:10.21055/0370-1069-2012-2(112)-25-28.; Ерошенко Г.А., Видяева Н.А., Куклева Л.М., Кошель Е.И., Одиноков Г.Н., Шавина Н.Ю., Князева Т.В., Мокроусова Т.В., Краснов Я.М., Анисимова Л.В., Новичкова Л.А., Ерохин П.С., Бойко А.В., Кутырев В.В. Изучение образования биопленки у беспигментных и бесплазмидных мутантов штамма Yersinia pestis на биотических поверхностях в условиях in vitro и in vivo. Проблемы особо опасных инфекций. 2012; 3:45–9. DOI:10.21055/0370-1069-2012-3-45-49.; Sun F., Gao H., Zhang Y., Wang L., Fang N., Tan Y., Guo Z., Xia P., Zhou D., Yang R. Fur is a repressor of biofilm formation in Yersinia pestis. PLoS One. 2012; 7(12):e52392. DOI:10.1371/journal.pone.0052392.; Rempe K.A., Hinz A.K., Vadyvaloo V. Hfq regulates biofilm gut blockage that facilitates flea-borne transmission of Yersinia pestis. J. Bacteriol. 2012; 194(8):2036–40. DOI:10.1128/JB.06568-11.; Liu Z., Gao X., Wang H., Fang H., Yan Y., Liu L., Chen R., Zhou D., Yang R., Han Y. Plasmid pPCP1-derived sRNA HmsA promotes biofilm formation of Yersinia pestis. BMC Microbiol. 2016; 16(1):176. DOI:10.1186/s12866-016-0793-5.; Ni B., Wu H.S., Xin Y.Q., Zhang Q.W., Zhang Y.Q. Reciprocal regulation between fur and two RyhB homologs in Yersinia pestis, and roles of RyhBs in biofilm formation. Biomed. Environ. Sci. 2021; 34(4):299–308. DOI:10.3967/bes2021.039.; Zhang Y., Gao H., Wang Li., Xiao X., Tan Y., Guo Z., Zhou D., Yang R. Molecular characterization of transcriptional regulation of rovA by PhoP and RovA in Yersinia pestis. PLoS One. 2011; 6(9):e25484. DOI:10.1371/journal.pone.0025484.; Liu L., Fang H., Yang H., Zhang Y., Han Y., Zhou D., Yang R. CRP is an activator of Yersinia pestis biofilm formation that operates via a mechanism involving gmhA and waaAE-coaD. Front. Microbiol. 2016; 7:295. DOI:10.3389/fmicb.2016.00295.; Eisen R.J., Dennis D.T., Gage K.L. The role of early-phase transmission in the spread of Yersinia pestis. J. Med. Entomol. 2015; 52(6):1183–92. DOI:10.1093/jme/tjv128.; Mitchell C.L., Schwarzer A.R., Miarinjara A., Jarrett C.O., Luis A.D., Hinnebusch B.J. A role for early-phase transmission in the enzootic maintenance of plague. PLoS Pathog. 2022; 18(12):e1010996. DOI:10.1371/journal.ppat.1010996.; Eisen R.J., Wilder A.P., Bearden S.W., Montenieri J.A., Gage K.L. Early-phase transmission of Yersinia pestis by unblocked Xenopsylla cheopis (Siphonaptera: Pulicidae) is as efficient as transmission by blocked fleas. J. Med. Entomol. 2007; 44(4):678–82. DOI:10.1603/0022-2585(2007)44[678:etoypb]2.0.co;2.; https://journal.microbe.ru/jour/article/view/1938

Availability: https://journal.microbe.ru/jour/article/view/1938
https://doi.org/10.21055/0370-1069-2024-1-6-16

View record from BASE

19

Academic Journal

Reducing the effect of engine failure on the aerodynamic performance of the light transport aircraft model ; Снижение влияния отказа двигателя на аэродинамические характеристики модели легкого транспортного самолета

Authors: Yu. S. Mikhailov, Ю. С. Михайлов

Source: Civil Aviation High Technologies; Том 27, № 1 (2024); 72-87 ; Научный вестник МГТУ ГА; Том 27, № 1 (2024); 72-87 ; 2542-0119 ; 2079-0619

Subject Terms: электрическая трансмиссия, propeller-driven aircraft model, engine failure, electric transmission, модель винтового самолета, отказ двигателя

File Description: application/pdf

Relation: https://avia.mstuca.ru/jour/article/view/2298/1379; Schafer A.W., Barrett S.R.H., Doyme K. et al. Technological, economic and environmental prospects of all-electric aircraft // Journal Nature Energy. 2019. Vol. 4. Pp. 160–166. DOI:10.1038/s41560-018-0294-x; Epstein A.H., O’Flarity S.M. Considerations for reducing aviation’s CO2 with aircraft electric propulsion // Journal of Propulsion and Power. 2019. Vol. 35, no. 3. Pp. 572–582. DOI:10.2514/1.B37015; Veldhuis L.L.M. Radical Aircraft based on hybrid-electric propulsion. Clean Sky2. TUDelft. Contribution of NOVAIR to LPA WP1.6.4 and 1.6.3 [Электронный ресурс] // zenodo.org, 17 November 2020. URL: https://zenodo.org/records/4277193 (дата обращения: 09.06.2023).; Zamboni J. A method for the conceptual design of hybrid electric aircraft / J. Zamboni, R. Vos, M. Emeneth, A. Schneegans [Электронный ресурс] // AIAA Scitech 2019 Forum. 7–11 January 2019. DOI:10.2514/6.2019-1587 (дата обращения: 09.06.2023).; Patterson M.D., Derlaga J.M., Borer N.K. High-lift propeller system configuration selection for NASA’s SCEPTOR distributed electric propulsion flight demonstrator [Электронный ресурс] // 16th AIAA Aviation Technology, Integration, and Operations Conference. Washington, D.C., June 2016. DOI:10.2514/6.2016-3922 (дата обращения: 09.06.2023).; Klunk G.T., Freeman J.L. Vertical tail area reduction for aircraft with spanwise distributed electric propulsion [Электронный ресурс] // 2018 AIAA/IEEE electric aircraft technologies symposium. Cincinnati, Ohio, 9–11 July 2018. DOI:10.2514/6.2018-5022 (дата обращения: 09.06.2023).; Nguyen E., Troillard P., Jezegou J. et al. Reduction of vertical tail using differential thrust: Influence on flight control and certification [Электронный ресурс] // AEGATS 2018. France, Toulouse, October 2018. Pp. 1–8. URL: https://hal.science/hal-02183315 (дата обращения: 09.06.2023).; Armstrong M. Stability, transient response, control, and safety of a high-power electric grid for turboelectric propulsion of aircraft / M. Armstrong, C. Ross, D. Phillips, M. Blackwelder [Электронный ресурс] // NASA/CR-2013-217865, 2013. URL: https://ntrs.nasa.gov/api/citations/20140000336/downloads/20140000336.pdf (дата обращения: 09.06.2023).; Hepperle М. Electric flight – potential and limitations [Электронный ресурс] // MP-AVT-209-09. 30 p. URL: https://elib.dlr.de/78726/1/MP-AVT-209-09.pdf (дата обращения: 09.06.2023).; Duffy K.P., Jansen R.H. Partially turboelectric and hybrid electric aircraft drive key performance parameters [Электронный ресурс] // 2018 AIAA/IEEE electric aircraft technologies symposium. Cincinnati, Ohio, 9–11 July 2018. DOI:10.2514/6.2018-5023 (дата обращения: 09.06.2023).; Jansen R.H., Duffy K.P., Brown G.V. Partially turboelectric aircraft drive key performance parameter [Электронный ресурс] // 53rd AIAA/SAE/ASEE Joint Propulsion Conference, 10–12 July 2017. USA, Georgia, Atlanta. DOI:10.2514/6.2017-4702 (дата обращения: 09.06.2023).; Pohl M. Preliminary design of integrated partial turboelectric aircraft propulsion systems / M. Pohl, J. Köhler, H. Kellermann, M. Lüdemann, D. Weintraub, P. Jeschke, M. Hornung // Journal of the Global Power and Propulsion Society. 2022. Vol. 6, no. 1. Pp. 1–23. DOI:10.33737/jgpps/145907; Дунаевский А.И., Редькин А.В. Способ синхронизации и обеспечения симметрии тяги воздушных винтов силовой установки летательного аппарата и электрическая синхронизирующая трансмиссия для его реализации. Патент № RU 2646696, C1, B64C 11/50, B64D 31/12: опубл. 06.03.2018. 11 с.; Михайлов Ю.С. Анализ взаимодействия воздушных винтов с планером легкого транспортного самолета // Научный Вестник МГТУ ГА. 2021. Т. 24, № 5. C. 76–88. DOI:10.26467/2079-0619-2021-24-5-76-88; Михайлов Ю.С. Влияние отказа двигателя на аэродинамические характеристики модели легкого транспортного самолета // Научный Вестник МГТУ ГА. 2022. Т. 25, № 4. С. 56–69. DOI:10.26467/2079-0619-2022-25-4-56-69; Adu-Gyamfi B.A., Good C. Electric aviation: A review of concepts and enabling technologies [Электронный ресурс] // Transportation Engineering. 2022. Vol. 9. ID 100134. DOI:10.1016/j.treng.2022.100134 (дата обращения: 09.06.2023).; Preston R. Aerodynamics for professional pilots. 4th ed., 2010. 213 p.; Horling H. Control and performance during asymmetrical powered flight [Электронный ресурс] // AvioConsult. 2012. 28 p. URL: https://www.avioconsult.com/downloads/Control%20and%20Performance%20During%20Asymmetrical%20Powered%20Flight.pdf (дата обращения: 09.06.2023).; Quillet D. Parallel hybrid-electric powertrain sizing on regional turboprop aircraft with consideration for certification performance requirements / D. Quillet, V. Boulanger, D. Rancourt, R. Freer, P. Bertrand [Электронный ресурс] // AIAA AVIATION Forum. 2–6 August 2021. DOI:10.2514/6.2021-2443 (дата обращения: 09.06.2023).; Pope A., Barlow J.B., Rae W.H. Low-speed wind tunnel testing. 3rd ed. John Wiley & Sons, Inc., 1999. 728 p.; Pettersson K., Rizzi A. Aerodynamic scaling to free ﬂight conditions: Past and present // Progress in Aerospace Sciences. 2008. Vol. 44, iss. 4. Pp. 295–313.; Варюхин А.Н., Захарченко В.С., Рахманкулов Д.Я. и др. Традиционные, гибридные и электрические силовые установки самолетов местных воздушных линий // Авиационные двигатели. 2022. № 1 (14). С. 19–32. DOI:10.54349/26586061_2022_1_19; https://avia.mstuca.ru/jour/article/view/2298

Availability: https://avia.mstuca.ru/jour/article/view/2298
https://doi.org/10.26467/2079-0619-2024-27-1-72-87

View record from BASE

20

Conference