-
1Academic Journal
Authors: S. N. Shchelkunov, A. A. Sergeev, K. A. Titova, S. A. Pyankov, S. N. Yakubitskiy, С. Н. Щелкунов, А. А. Сергеев, К. А. Титова, С. А. Пьянков, С. Н. Якубицкий
Source: Medical Immunology (Russia); Том 24, № 1 (2022); 201-206 ; Медицинская иммунология; Том 24, № 1 (2022); 201-206 ; 2313-741X ; 1563-0625
Subject Terms: протективность, cowpox virus, mice, immune response, antibodies, protectivity, вирус оспы коров, мыши, иммунный ответ, антитела
File Description: application/pdf
Relation: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/2203/1514; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2203/7525; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2203/7526; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2203/7527; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2203/7528; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2203/7529; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2203/7530; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2203/7531; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2203/7532; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2203/7533; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2203/7534; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2203/7535; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2203/7536; Маренникова С.С., Гашников П.В., Жукова О.А., Рябчикова Е.И., Стрельцов В.В., Рязанкина О.И., Чекунова Э.В., Янова Н.Н., Щелкунов С.Н. Биотип и генетическая характеристика изолята вируса оспы коров, вызвавшего инфекцию ребенка // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии, 1996. № 4. С. 6-10.; Щелкунов С.Н., Щелкунова Г.А. Нужно быть готовыми к возврату оспы // Вопросы вирусологии, 2019. Т. 64, № 5. С. 206-214.; Albarnaz J.D., Torres A.A., Smith G.L. Modulating vaccinia virus immunomodulators to improve immunological memory. Viruses, 2018, Vol. 10, e101. doi:10.3390/v10030101.; Belyakov I.M., Earl P., Dzutsev A., Kuznetsov V.A., Lemon M., Wyatt L.S., Snyder J.T., Ahlers J.D., Franchini G., Moss B., Berzofsky J.A. Shared models of protection against poxvirus infection by attenuated and conventional smallpox vaccine viruses. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 2003, Vol. 100, pp. 9458-9463.; Fenner F., Henderson D.A., Arita I., Jezek Z., Ladnyi I.D. Smallpox and its eradication. Geneva: World Health Organization, 1988. 1460 p.; Moss B. Smallpox vaccines: targets of protective immunity. Immunol. Rev., 2011, Vol. 239, no. 1, pp. 8-26.; Rehm K.E., Roper R.L. Deletion of the gene from modified vaccinia virus Ankara increases immunogenicity and isotype switching. Vaccine, 2011, Vol. 29, pp. 3276-3283.; Sanchez-Sampedro L., Perdiguero B., Mejias-Perez E., Garcia-Arriaza J., Di Pilato M., Esteban M. The evolution of poxvirus vaccines. Viruses, 2015, Vol. 7, pp. 1726-1803.; Shchelkunov S.N. An increasing danger of zoonotic orthopoxvirus infections. PLoS Pathog., 2013, Vol. 9, e1003756. doi:10.1371/journal.ppat.1003756.; Shchelkunov S.N., Shchelkunova G.A. Genes that control vaccinia virus immunogenicity. Acta Naturae, 2020, Vol. 12, pp. 33-41.; Shchelkunov S.N., Yakubitskiy S.N., Bauer T.V., Sergeev A.A., Kabanov A.S., Bulichev L.E., YurganovaI.A., Odnoshevskiy D.A., Kolosova I.V., Pyankov S.A., Taranov O.S. The influence of an elevated production of extracellular enveloped virions of the vaccinia virus on its properties in infected mice. Acta Naturae, 2020, Vol. 12, pp. 120-132.; Shchelkunov S.N., Yakubitskiy S.N., Sergeev A.A., Kabanov A.S., Bauer T.V., Bulichev L.E., Pyankov S.A. Effect of the route of administration of the vaccinia virus strain LIVP to mice on its virulence and immunogenicity. Viruses, 2020, Vol. 12, 795. doi: doi.org/10.3390/v12080795.; Xu R., Johnson A.J., Liggitt D., Bevan M.J. Cellular and humoral immunity against vaccinia virus infection of mice. J. Immunol., 2004, Vol. 172, pp. 6265-6271.; Yakubitskiy S.N., Kolosova I.V., Maksyutov R.A., Shchelkunov S.N. Highly immunogenic variant of attenuated vaccinia virus. Dokl. Biochem. Biophys., 2016, Vol. 466, pp. 35-38.; Yu J., Li Y., Zhong M., Yang J., Zhou D., Zhao B., Cao Y., Yan H., Zhang E., Yang Y., Feng Z., Qi X., Yan H. Improved immune response against HIV-1 Env antigen by enhancing EEV production via K151E mutation in the A34R gene of replication-competent vaccinia virus Tiantan. Antiviral Res., 2018, Vol. 153, pp 49-59.; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/2203
-
2Academic Journal
Authors: T. N. Shchukovskaya, A. Y. Goncharova, S. A. Bugorkova, O. M. Kudryavtseva, N. E. Shcherbakova, A. S. Abdrashitova, Т. Н. Щуковская, А. Ю. Гончарова, С. А. Бугоркова, О. М. Кудрявцева, Н. Е. Щербакова, А. С. Абдрашитова
Source: Epidemiology and Vaccinal Prevention; Том 20, № 6 (2021); 12-19 ; Эпидемиология и Вакцинопрофилактика; Том 20, № 6 (2021); 12-19 ; 2619-0494 ; 2073-3046
Subject Terms: протективность, cultivation Y. pestis EV NIIEG, immunogenic and protective properties, Y. pestis EV НИИЭГ, иммуногенность
File Description: application/pdf
Relation: https://www.epidemvac.ru/jour/article/view/1396/793; О состоянии санитарно-эпидемиологического благополучия населения в Российской Федерации в 2019 году: Государственный доклад. М.: Федеральная служба по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека, 2020. 299 с.; Shi L., Yang G., Zhang Z., et al. Reemergence of human plague in Yunnan, China in 2016 // PLoS ONE. 2018. Vol. 13, N 6:e0198067. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0198067; Kehrmann J., Popp W., Delgermaa B., et al. Two fatal cases of plague after consumption of raw marmot organs. Emerg Microbes Infect. 2020. Vol. 9, N 1. P. 1878–1880. Doi:10.1080/22221751.2020.1807412; Профилактика чумы. Санитарно-эпидемиологические правила СП 3.1.7.3465-17. Бюллетень нормативных и методических документов Госсанэпиднадзора. 2017. № 4. С. 3–21.; WHO Workshop Meeting Report «Efficacy trials of Plague Vaccines: endpoints, trial design, site selection». 2018, INSERM, Paris, 12 p. https://www.who.int/blueprint/what/norms-standards/PlagueVxeval_FinalMeetingReport.pdf?ua=1.; Demeure C.E., Dussurget O., Fiol G.M., et al. Yersinia pestis and plague: an updated view on evolution, virulence determinants, immune subversion, vaccination, and diagnostics // Genes and Immunity. 2019. Vol. 20. P. 357–370. https://doi.org/10.1038/s41435-019-0065-0; Балахонов С. В., Попова А. Ю., Мищенко А. И. и др. Случай заболевания человека чумой в Кош-Агачском районе Республике Алтай в 2015 г. Сообщение 1. Клинико-эпидемиологические и эпизоотологические аспекты. Проблемы особо опасных инфекций. 2016. № 1. С. 55–60. DOI:10.21055/0370-1069-2016-1-55-60; Петров Р. В., Хаитов Р. М., Некрасов А. В. и др. Полиоксидоний: Механизм действия и клиническое применение. Медицинская иммунология. 2000. Т. 2, № 3. С. 271–278.; Омельченко Н. Д., Иванова И. А., Беспалова И. А., Филиппенко А. В. Иммуномодуляторы и специфическая профилактика инфекционных болезней. Проблемы особо опасных инфекций. 2017. № 3. С. 21–26. DOI:10.21055/0370-1069-2017-3-21-2.; Щуковская Т. Н., Курылина А. Ф., Шавина Н. Ю., Бугоркова С. А. Влияние полиоксидония, Poly(I:C), даларгина на защитное действие вакцинного штамма Yersinia pestis EV НИИЭГ при экспериментальной чуме. Российский иммунологический журнал. 2020. Т. 23, № 1. С. 41–50. https://doi.org/10.46235/1028-7221-005-IOP.; Безопасность работы с микроорганизмами I–II групп патогенности (опасности): Санитарно-эпидемиологические правила СП 1.3.3118-13. М.: Федеральный центр гигиены и эпидемиологии Роспотребнадзора. 2014. https://www.garant.ru/products/ipo/prime/doc/70563038/; World Health Organization. Vaccine Supply and Quality Unit. Manual of laboratory methods for testing of vaccines used in the WHO Expanded Programme on Immunization. World Health Organization. 1997. 221 p. https://apps.who.int/iris/handle/10665/63576; МУ 3.3.1.1113-02. Основные требования к вакцинным штаммам чумного микроба: Методические указания. М.: Минздрав России. 2002. DOI:10.13140/RG.2.1.1468.6246; Ашмарин И. П., Воробьев А. А. Статистические методы в микробиологических исследованиях. Л.: Медгиз; 1962. https://search.rsl.ru/ru/record/01005954123.; Коржевский Д. Э., Гиляров А. В. Основы гистологической техники. СПб:СпецЛИТ; 2010.; Использование метода времяпролетной масс-спектрометрии с матрично-активированной лазерной десорбцией/ионизацией (MALDI-ToF MS) для индикации и идентификации возбудителей I–II групп патогенности: Методические рекомендации. М.: Федеральный центр гигиены и эпидемиологии Роспотребнадзора. 2015. https://www.rospotrebnadzor.ru/documents/details.php?ELEMENT_ID=4693; Некрасов А. В., Пучкова Н. Г. Полиоксидоний: основы синтеза и свойства // Иммунология. 2002. Т. 23, № 6. С. 329–333.; Пинегин Б. В., Некрасов А. В., Хаитов Р. М. Иммуномодулятор полиоксидоний: механизмы действия и аспекты клинического применения // Цитокины и воспаление. 2004. Т. 3, № 3. С. 41–47.; Пономарева Т. С., Дерябин П. Н., Каральник Б. В. и др. Влияние полиоксидония на иммуногенную и протективную активность живой чумной вакцины // Иммунология. 2014. Т. 35, № 5. С. 286–290.; Chauvaux S., Dillies M.A., Marceau M., et al. In silico comparison of Yersinia pestis and Yersinia pseudotuberculosis transcriptomes reveals a higher expression level of crucial virulence determinants in the plague bacillus. International Journal of Medical Microbiology. 2011. Vol. 301, N 2. P. 105–116. doi:10.1016/j.ijmm.2010.08.013.; Спицын А. Н., Уткин Д. В., Щербакова Н. Е. и др. MALDI-TOF масс-спектрометрический анализ штаммов возбудителя чумы. Проблемы особо опасных инфекций. 2016. № 2. С. 91–94. https://doi.org/10.21055/0370-1069-2016-2-91-94; Котенева Е. А., Котенев Е. С., Калинин А. В. и др. Протеомное профилирование штаммов Yersinia pestis, циркулирующих на территории природных очагов Северного Кавказа и Закавказья. Журн. микробиол. 2019. № 4. С. 18–25. https://doi.org/10.36233/0372-9311-2019-4-18-25; https://www.epidemvac.ru/jour/article/view/1396
-
3Academic Journal
Authors: A. V. Filippenko, N. D. Omelchenko, N. I. Pasyukova, A. A. Trufanova, I. A. Ivanova, А. В. Филиппенко, Н. Д. Омельченко, Н. И. Пасюкова, А. А. Труфанова, И. А. Иванова
Source: Medical Immunology (Russia); Том 23, № 4 (2021); 915-920 ; Медицинская иммунология; Том 23, № 4 (2021); 915-920 ; 2313-741X ; 1563-0625
Subject Terms: иммуномодуляторы, cholera vaccine, immunomodulators, immunotherapy, protectivity, immunogenicity, холера, иммуногенность, протективность, вакцина
File Description: application/pdf
Relation: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/2248/1424; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2248/7730; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2248/7731; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2248/7732; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2248/7733; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2248/7734; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2248/8565; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2248/8566; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2248/8782; Abramova N.N., Simbirtsev A.S., Dolgushin I.I. The effect of bestim and betaleukin on the immune status of patients with secondary immunodeficiency states during vaccination against viral hepatitis B. Cytokines and Inflammation, 2004, Vol. 3, no. 4, pp. 29-35. (In Russ.); Avdeeva Z.I., Akolzina S.E., Alpatova N.A. Nikitina T.N., Medunitsyn N.V. Indicators of cellular immune response in mice immunized with anti-rabies vaccine against cytokines. Cytokines and Inflammation, 2008, Vol. 7, no. 4, pp. 15-20. (In Russ.); Avdeeva Z.I., Akolzina S.E., Alpatova N.A. Nikitina T.N., Rassadina M.N., Medunitsyn N.V. The effect of cytokines on the immunogenic properties of the tick-borne encephalitis vaccine. Cytokines and Inflammation, 2009, Vol. 8, no. 2, pp. 25-29. (In Russ.); Barinsky I.F., Lazarenko A.A., Alimbarova L.M. To study the effectiveness of the use of domestic immunomodulators, as well as their combined effect with specific vaccines in experimental arbovirus infections. Immunologiya, 2012, no. 4, pp. 181-183. (In Russ.); Barinsky I.F., Alimbarova L.M., Lazarenko A.A., Davydova A.A. Immunomodulators and specific inactivated vaccines in the emergency prevention of experimental arbovirus infections. Problems of Virology, 2013, Vol. 58, no. 4, pp. 35-39. (In Russ.); Barinsky I.F., Alimbarova L.M., Lazarenko A.A., Mahmudov F.R., Sergeev O.V. Vaccines as a means of specific immunocorrection in herpetic infections. Problems of Virology, 2014, Vol. 59, no. 1, pp. 5-11. (In Russ.); Burrows W., Sack R. Animal models of cholera. Cholera. Ed. D. Barua, W. Burrows, Philadelphia, London, Toronto, 1974, Chapter 9, pp. 189-205.; Chebotareva T.A., Karyaeva S.K., Malinovskaya V.V., Mazankova L.N., Kaloeva Z.D. Modern possibilities of improving the effectiveness of influenza vaccination in children at high risk of morbidity. Immunologiya, 2011, no. 3, pp. 146-150. (In Russ.); Duckett N.S., Olmos S., Durrant D.M, Metzger D.W. Intranasal interleukin-12 treatment for protection against respiratory infection with the Francisella tularensis live vaccine strain. Infect. Immun., 2005, Vol. 73, no. 4, pp. 2306-2311.; Karalnik B.V., Ponomareva T.S. Deryabin P.N. Effect of immunomodulation on the immunogenic and protective activity of live plague vaccine. Journal of Microbiology, 2014, no. 6, pp. 108-112. (In Russ.); Pinegin B.V., Latysheva T.V. Immunodeficiency states: possibilities of using immunomodulators. Attending Physician, 2001, no. 3, pp. 101-106. (In Russ.); Ponomareva T.S., Deryabin P.N., Karalnik B.V. The effect of betaleukin on the parameters of the antigenspecific immune response in model experiments of animal immunization with a live anti-plague vaccine. Cytokines and Inflammation, 2014, Vol.13, no. 1, pp. 57-62. (In Russ.); Simbirtsev A.S., Petrov A.V., Pigareva N.V., Nikolaev A.T. New possibilities of using recombinant cytokines as adjuvants in vaccination. Biopreparations, 2011, Vol. 41, no.1, pp. 16-20. (In Russ.); Vorobiev A.A. Medical Microbiology, Virology and immunology. Moscow: MIA, 2004. 690 p.; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/2248
-
4Academic Journal
Authors: Shchelkunov S.N., Sergeev A.A., Yakubitskyi S.N., Titova K.A., Pyankov S.A.
Contributors: This work was financially supported by the Russian Science Foundation (grant 19-14-00006)., Работа выполнена при финансовой поддержке Российского научного фонда (грант 19-14-00006).
Source: Russian Journal of Infection and Immunity; Vol 11, No 6 (2021); 1167-1172 ; Инфекция и иммунитет; Vol 11, No 6 (2021); 1167-1172 ; 2313-7398 ; 2220-7619
Subject Terms: vaccinia virus, attenuation, immune response, antibodies, protectiveness, orthopoxviruses, вирус осповакцины, аттенуация, иммунный ответ, антитела, протективность, ортопоксвирусы
File Description: application/pdf
Relation: https://iimmun.ru/iimm/article/view/1668/1367; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/1668/6259; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/1668/6260; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/1668/6261; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/1668/6262; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/1668/6263; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/1668/6264; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/1668/6265; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/1668/6266; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/1668/6267; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/1668/6268; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/1668/6269; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/1668/6270; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/1668/7154; https://iimmun.ru/iimm/article/view/1668
-
5Academic Journal
Authors: L. M. Tsybalova, Marina A. Shuklina, Alexandr V. Korotkov, Elena A. Blokhina, L. A. Stepanova, Eugenia S. Mardanova, M. V. Potapchuk, R. Yu. Kotlyarov, N. V. Ravin
Source: Эпидемиология и вакцинопрофилактика, Vol 16, Iss 3, Pp 65-70 (2017)
Subject Terms: вакцинация, 0301 basic medicine, рекомбинантный белок, immunogenicity, vaccination, protection, 3. Good health, 03 medical and health sciences, иммуногенность, протективность, BD143-237, Epistemology. Theory of knowledge, грипп, influenza, recombinant protein
-
6Academic Journal
Authors: A. Yu. Goncharova, S. A. Bugorkova, O. M. Kudryavtseva, V. A. Kozhevnikov, A. L. Kravtsov, T. N. Kashtanova, T. N. Shchukovskaya, А. Ю. Гончарова, С. А. Бугоркова, О. М. Кудрявцева, В. А. Кожевников, А. Л. Кравцов, Т. Н. Каштанова, Т. Н. Щуковская
Source: Problems of Particularly Dangerous Infections; № 2 (2020); 71-77 ; Проблемы особо опасных инфекций; № 2 (2020); 71-77 ; 2658-719X ; 0370-1069 ; 10.21055/0370-1069-2020-2
Subject Terms: протективность, vaccine strain of plague microbe, immune-modulators, immunogenicity, protectivity, вакцинный штамм чумного микроба, иммуномодуляторы, иммуногенность
File Description: application/pdf
Relation: https://journal.microbe.ru/jour/article/view/1325/1118; Костинова М.П., Соловьева И.Л., редакторы. Иммуномодуляторы и вакцинация. М.: 4Мпресс; 2013. 272 с.; Пономарева Т.С., Дерябин П.Н., Тугамбаев Т.И., Мельникова Н.Н., Адамбеков Д.А. Иммуномодуляция, как способ повышения иммуногенности живой чумной вакцины. Вестник КГМА им. И.К. Ахунбаева. 2015; 3:95–7.; Богачева Н.В., Охапкина В.Ю., Пяткова Н.В., Федотов А.К., Кучеренко А.С. Экспериментальное изучение влияния иммуномодуляторов на эффективность применения вакцины бруцеллезной живой сухой. Эпидемиология и вакцинопрофилактика. 2016; 15(2):84–92. DOI:10.31631/2073-3046-2016-15-2-84-92.; Пинегин Б.В., Некрасов А.В., Хаитов Р.М. Иммуномодулятор полиоксидоний: механизмы действия и аспекты клинического применения. Цитокины и воспаление. 2004; 3(3):41–7.; Караулов А.В., Евсегнеева И.В. Современные подходы к вакцинопрофилактике гриппа. Вакцинация. 2011; 1:43–52.; Кравцов А.Л., Клюева С.Н., Бугоркова С.А. Влияние иммуномодуляторов на реактивность клеток иммунной системы при моделировании противотуляремийного вакцинного процесса. Эпидемиология и вакцинопрофилактика. 2016; 15(3):94–101. DOI:10.31631/2073-3046-2016-15-3-94-101.; Киселев О.И. Стукова М.А., Намгаладзе А.Д., Головачева Е.Г., Ерофеева М.К. Способ профилактики гриппа путем сочетанного применения интерферона гамма и инактивированной противогрипозной вакцины. Патент РФ № 2546540, опубл. 10.04.2015 г. Бюл. № 10.; Манина И.В., Михайлова И.Н., Козлов А.М., Барышников А.Ю. Способ повышения иммуногенности цельноклеточных противоопухолевых вакцин. Патент РФ № 2458120, опубл. 10.08.2012 г. Бюл. № 22.; Пономарева Т.С., Дерябин П.Н., Каральник Б.В., Тугамбаев Т.И., Атшабар Б.Б., Денисова Т.Г., Закарян С.Б., Мельникова Н.Н. Влияние полиоксидония на иммуногенную и протективную активность живой чумной вакцины. Иммунология. 2014; 35(5):286–90.; Верлан Н.В. Использование интерферонов: иммунологические и клинические аспекты. Цитокины и воспаление. 2016; 15(1):12–21.; Amedei A., Niccolai E., Marino L., D’Elios M.M. Role of immune response in Yersinia pestis infection. J. Infect. Dev. Ctries. 2011; 5(9):628–39. DOI:10.3855/jidc.1999.; Williamson E.D. The role of immune correlates and surrogate markers in the development of vaccines and immunotherapies for plague. Adv. Prev. Med. 2012; 2012:365980. DOI:10.1155/2012/365980.; Zhang X., Qi Z., Du Z., Bi Y., Zhang Q., Tan Y., Yang H., Xin Y., Yang R., Wang X. A live attenuated strain of Yersinia pestis ДyscB provides protection against bubonic and pneumonic plagues in mouse model. Vaccine. 2013; 31(22):2539–42. DOI:10.1016/j.vaccine.2013.03.054.; Клюева С.Н., Щуковская Т.Н. Влияние адъювантов нового поколения in vitro на продукцию цитокинов клетками крови вакцинированных против чумы лиц. Российский иммунологичес¬ кий журнал. 2015; 9(2):201–208.; Коржевский Д.Э., Гиляров А.В. Основы гистологической техники. СПб.: ООО «Издательство СпецЛит»; 2010. 95 с.; Howell W.M., Black D.A. Controlled silver-staining of nucleolus organizer regions with a protective colloidal developer: a 1-step method. Experientia. 1980; 36:1014–5. DOI:10.1007/BF01953855.; Хаитов Р.М. Иммунология. М.: ГЭОТАР-Медиа; 2006. 255 с.; Crocker J., Nar P. Nucleolar organizer regions in lymphomas. J. Pathol. 1987; 151:111–8. DOI:10.1002/path.1711510203.; Бугоркова С.А., Щуковская Т.Н., Курылина А.Ф. Ядрышковый аппарат лимфоцитов как индикатор функциональной активности лимфоидных органов при доклинической оценке вакцин. Проблемы особо опасных инфекций. 2015; 2:75–8. DOI:10.21055/0370-1069-2015-2-75-78.; https://journal.microbe.ru/jour/article/view/1325
-
7Academic Journal
Authors: Lev D. Rumsh, O. A. Razgulyaeva, A. P. Alliluev, E. A. Nokel, Yu. A. Prokopenko, A. A. Zinchenko, E. Yu. Drozhzhina, T. D. Melikhova, L. S. Zhigis, O. V. Kotel’nikova
Source: Эпидемиология и вакцинопрофилактика, Vol 15, Iss 6, Pp 88-94 (2016)
Subject Terms: 0301 basic medicine, iga1 protease, 0303 health sciences, рекомбинантные белки, immunogenicity, recombinant proteins, 3. Good health, 03 medical and health sciences, иммуногенность, протективность, igal-протеаза, protectivity, BD143-237, Epistemology. Theory of knowledge, meningococcal polyvaccine, менингококковая поливакцина
-
8Academic Journal
Authors: A. V. Lipnitsky, N. V. Polovete, V. A. Antonov
Source: Эпидемиология и вакцинопрофилактика, Vol 15, Iss 3, Pp 66-71 (2016)
Subject Terms: 0301 basic medicine, 0303 health sciences, вакцина, иммунный ответ, immune prevention, protection, immune response, 3. Good health, 03 medical and health sciences, протективность, vaccine, BD143-237, Epistemology. Theory of knowledge, иммунопрофилактика, т-клетки, t-cells
Access URL: https://www.epidemvac.ru/jour/article/download/167/168
https://doaj.org/article/43ef624509754860b44624e53cacf58f
https://cyberleninka.ru/article/n/problemy-vaktsinoprofilaktiki-glubokih-mikozov
https://www.epidemvac.ru/jour/article/download/167/168
https://cyberleninka.ru/article/n/problemy-vaktsinoprofilaktiki-glubokih-mikozov/pdf
https://www.epidemvac.ru/jour/article/view/167 -
9Academic Journal
Authors: Andrey L. Matveev, Irina V. Kozlova, Elena K. Doroshchenko, Oleg V. Stronin, Oksana V. Lisak, Olga V. Suntsova, Yulia S. Savinova, Lyudmila A. Emelyanova, Ivan K. Baykov, Nina V. Tikunova, А. Л. Матвеев, И. В. Козлова, Е. К. Дорощенко, О. В. Стронин, О. В. Лисак, О. В. Сунцова, Ю. С. Савинова, Л. А. Емельянова, И. К. Байков, Н. В. Тикунова
Contributors: Работа финансировалась Российским научным фондом, грант № 16-14-00083.
Source: Acta Biomedica Scientifica; Том 4, № 1 (2019); 143-149 ; 2587-9596 ; 2541-9420
Subject Terms: химерное антитело, protection, chimeric antibody, протективность
File Description: application/pdf
Relation: https://www.actabiomedica.ru/jour/article/view/1996/1855; World Health Organization. Vaccines against tick-borne encephalitis. WHO position paper: recommendations. Vaccine. 2011; 29(48): 8769-8770. doi:10.1016/j.vaccine.2011.07.024; Федеральная служба по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека. Государственный доклад «О состоянии санитарно-эпидемиологического благополучия населения в Российской Федерации в 2016 году». 2017. URL: http://rospotrebnadzor.ru/upload/iblock/0b3/gosudarstvennyydoklad-2016.pdf.; Gritsun TS, Lashkevich VA, Gould EA. Tick-borne encephalitis. Antiviral Res. 2003; 57(1-2): 129-146. doi:10.1016/S0166- 3542(02)00206-1; Mandl CW. Steps of the tick-borne encephalitis virus replication cycle that affect neuropathogenesis. Virus Res. 2005; 111(2): 161-174. doi:10.1016/j.virusres.2005.04.007; Демина Т.В., Джиоев Ю.П., Козлова И.В., Верхозина М.М., Ткачев С.Е., Дорощенко Е.К., и др. Генотипы 4 и 5 вируса клещевого энцефалита: особенности структуры геномов и возможный сценарий их формирования. Вопросы вирусологии. 2012; 57(4): 13-18.; Козлова И.В., Демина Т.В., Ткачев С.Е., Дорощенко Е.К., Лисак О.В., Верхозина М.М., и др. Характеристика Байкальского субтипа вируса клещевого энцефалита, циркулирующего на территории Восточной Сибири. Acta biomedica scientifica. 2018; 3(4): 53-60. doi:10.29413/ABS.2018-3.4.9; Dai X, Shang G, Lu S, Yang J, Xu J. A new subtype of eastern tick-borne encephalitis virus discovered in Qinghai-Tibet Plateu, China. Emerg Microbes Infect. 2018; 7(1): 74. doi:10.1038/s41426- 018-0081-6; Хаснатинов М.А., Данчинова Г.А., Кулакова Н.В., Tungalag K., Арбатская Е.В., Миронова Л.В., и др. Генетическая характеристика возбудителя клещевого энцефалита в Монголии. Вопросы вирусологии. 2010; (3): 27-32.; Tsekhanovskaya NA, Matveev LE, Rubin SG, Karavanov AS, Pressman EK. Epitope analysis of tick-borne encephalitis (TBE) complex viruses using monoclonal antibodies to envelope glycoprotein of TBE virus (persulcatus subtype). Virus Res. 1993; 30(1): 1-16.; Baykov IK, Matveev AL, Stronin OV, Ryzhikov AB, Matveev LE, Kasakin MF, et al. A protective chimeric antibody to tickborne encephalitis virus. Vaccine. 2014; 32(29): 3589-3594. doi:10.1016/j.vaccine.2014.05.012; Матвеев А.Л., Хлусевич Я.А., Байков И.К., Бабкин И.В., Гончарова Е.П., Морозова В.В. и др. Создание стабильного штамма-продуцента полноразмерного антитела человека на примере антитела против вируса эктромелии. Вавиловский журнал генетики и селекции. 2017; 21(8): 993-1000. doi:10.18699/ VJ17.324; Reed LJ, Muench H. A simple method of estimating fifty percent endpoints. Am J Epidemiol. 1938; 27(3): 493-497. doi:10.1093/oxfordjournals.aje.a118408; Тимофеев А.В., Кондратьева Ю.Ю., Карганова Г.Г., Стефенсон Дж. Протективная активность бактериальной плазмиды, несущей ген неструктурного белка NS1 вируса клещевого энцефалита. Вопросы вирусологии. 2001; (1): 22-24.; Bardina SV, Bunduc P, Tripathi S, Duehr J, Frere JJ, Brown JA, et al. Enhancement of Zika virus pathogenesis by preexisting antiflavivirus immunity. Science. 2017; 356(6334): 175-180. doi:10.1126/science.aal4365; Halstead SB. Dengue antibody-dependent enhancement: Knowns and unknowns. In: Crowe J, Boraschi D, Rappuoli R. (eds.) Antibodies for Infectious Diseases. Washington, DC: ASM Press; 2014: 249-271. doi:10.1128/microbiolspec.AID-0022-2014; Halstead SB. Biologic evidence required for Zika disease enhancement by dengue antibodies. Emerg Infect Dis. 2017; 23(4): 569-573. doi:10.3201/eid2304.161879; Haslwanter D, Blaas D, Heinz FX, Stiasny K. A novel mechanism of antibody-mediated enhancement of flavivirus infection. PLOS Pathogens. 2017; 13(9), e1006643. doi:10.1371/ journal.ppat.1006643; Bröker M, Kollaritsch H. After a tick bite in a tick-borne encephalitis virus endemic area: current positions about postexposure treatment. Vaccine. 2008; 26(7): 863-868. doi:10.1016/j. vaccine.2007.11.046; Nelson S, Jost CA, Xu Q, Ess J, Martin JE, Oliphant T. Maturation of West Nile virus modulates sensitivity to antibodymediated neutralization. PLoS Pathog. 2008; 4(5): e1000060. doi:10.1371/journal.ppat.1000060; Kreil TR, Eibl MM. Pre- and postexposure protection by passive immunoglobulin but no enhancement of infection with a flavivirus in a mouse model. J Virol. 1997; 71(4): 2921-2927.; Козлова И.В., Злобин В.И., Верхозина М.М., Демина Т.В., Джиоев Ю.П., Лисак О.В., и др. Современные подходы к экстренной специфической профилактике клещевого энцефалита. Вопросы вирусологии. 2007; 52(6): 25-30.; https://www.actabiomedica.ru/jour/article/view/1996
-
10Academic Journal
Source: Ветеринарная патология, Vol 0, Iss 3, Pp 31-38 (2016)
Subject Terms: escherichiacoli, антиген, коллоидный селен, протективность, Veterinary medicine, SF600-1100
File Description: electronic resource
-
11Academic Journal
Authors: I. A. Bespalova, I. A. Ivanova, N. D. Omelchenko, A. V. Filippenko, A. A. Trufanova, И. А. Беспалова, И. А. Иванова, Н. Д. Омельченко, А. В. Филиппенко, А. А. Труфанова
Source: Epidemiology and Vaccinal Prevention; Том 17, № 1 (2018); 55-61 ; Эпидемиология и Вакцинопрофилактика; Том 17, № 1 (2018); 55-61 ; 2619-0494 ; 2073-3046 ; 10.31631/2073-3046-2018-17-1
Subject Terms: протективность, vaccines, attenuated strains, immunogenicity, protectivity, вакцины, аттенуированные штаммы, иммуногенность
File Description: application/pdf
Relation: https://www.epidemvac.ru/jour/article/view/402/402; Desai S. N., Clemens J. D. An overview of cholera vaccines and their public health implications. Curr. Opin. Pediatr. 2012; 24 (1): 85–91.; http://www.remedium.ru/news/detail.php?ID=72454; Онищенко Г. Г., Кутырев В. В., Щуковская Т. Н., Смирнова Н. И., Никифоров А. К., Ерёмин С. А. и др. Специфическая профилактика холеры в современных условиях. Проблемы особо опасных инфекций. 2011; 107: 5–12.; http://www.who.int/mediacentre/factsheets/fs107/ru/; Emch M., Ali M., Park J. K., Yunus M., Sack D. A., Clemens J. D. Relationship between neighbourhood-level killed oral cholera vaccine coverage and protective efficacy: evidence for herd immunity. Int. J. Epidemiol. 2006; 35 (4): 1044–1050.; Bishop A. L., Camilli A. Vibrio cholerae: lessons for mucosal vaccine design. Expert Rev. Vaccines. 2011; 10 (1): 79–94.; Lopez A. L., Gonzales M. L., Aldaba J. G., Nair G. B. Killed oral cholera vaccines: history, development and implementation challenges. Ther. Adv. Vaccines. 2014; 2 (5): 123–136.; Desai S. N., Pezzoli L., Alberti K. P., Martin S., Costa A., Perea W. et al. Achievements and challenges for the use of killed oral cholera vaccines in the global stockpile era. Hum. Vaccin. Immunother. 2016; 13 (3): 579–587.; http://www.un.org/russian/news/story.asp?NewsID=25212#.WVDBBJLygnQ.; https://www.stopcholera.org/sites/cholera/files/comparison_of_currently_manufactured_ocv.pdf .; Borde A., Larsson A., Holmgren J., Nygren E. Preparation and evaluation of a freeze-dried oral killed cholera vaccine formulation. Eur. J. Biopharm. 2011; 79 (3): 508–518.; Lopez-Gigosos R. M., Plaza E., Diez-Diaz R. M., Calvo M. J. Vaccination strategies to combat an infectious globe: oral cholera vaccines. J. Glob. Infect. Dis. 2011; 3 (1): 56–62.; Kabir S. Critical analysis of compositions and protective efficacies of the oral killed cholera vaccines. Clin. Vaccine Immunol. 2014; 21 (9): 1195–1205.; Lucas M. E., Deen J. L., von Seidlein L., Wang X. Y., Ampuero J., Puri M. et al. Effectiveness of mass oral vaccination in Beira, Mozambique. N. Engl. J. Med. 2005; 352: 757–767.; Lopez-Gigosos R., Garcia-Fortea P., Reina E., Plaza-Martin E. Effectiveness in prevention of travellers’ diarrhoea by an oral cholera vaccine WC/rBS. Travel Med. Infect. Dis. 2007; 5 (6): 380–384.; Lopez-Gigosos R., Garcia-Fortea P., Calvo M. J., Reina E., Diez-Diaz R., Plaza E. Effectiveness and economic analysis of the whole cell/recombinant B subunit (WC/rBS) inactivated oral cholera vaccine in the prevention of traveller’s diarrhea. BMC Infect. Dis. 2009; 9 (1): 65.; Jelinek T., Kollaritsch H. Vaccination with Dukoral against travelers’ diarrhea (ETEC) and cholera. Expert. Rev. Vaccines. 2008; 7 (5): 561–567.; Gabutti G., Aquilina M., Cova M., Guiffrida S., Lizioli A., Protano D. et al. Prevention of fecal-orally transmitted diseases in travelers through an oral anticholeric vaccine (WC/rBS). J. Prev. Med. Hyg. 2012; 53 (4): 199–203.; Shin S., Desai S. N., Sah B. K., Clemens J. D. Oral vaccines against cholera. Clin. Infect. Dis. 2011; 52 (11): 1343–1349.; Thiem V. D., Deen J. L., von Seidlein L., Canh do G., Anh D. D., Park J. K. et al. Long-term effectiveness against cholera of oral killed whole-cell vaccine produced in Vietnam. Vaccine. 2006; 24: 4297–4303.; World Health Organization, WHO expert committee on Biological standardization, 52nd report. 2004, Geneva, Switzerland. WHO.; Anh D. D., Canh D. G., Lopez A. L., Thiem V. D., Long P. T., Son N. H. et al. Safety and immunogenicity of a reformulated Vietnamese bivalent killed, whole-cell, oral cholera vaccine in adults. Vaccine. 2007; 25: 1149–1155.; Mahalanabis D., Lopez A. L., Sur D., Deen J., Manna B., Kanungo S. et al. A randomized, placebo-controlled trial of bivalent killed, whole-cell, oral cholera vaccine in adults and children in a cholera endemic area in Kolkata, India. PLoS ONE. 2008; 3 (6): 2323.; http://www.who.int/immunization/documents/Cholera_PP_Accomp_letter_10_Mar2010_Russian.pdf?ua=1; Sur D., Lopez A. L., Kanungo S., Paisley A., Manna B., Ali M. et al. Efficacy and safety of a modified killed whole-cell oral cholera vaccine in India: an interim analysis of a cluster-randomised, double-blind, placebo-controlled trial. Lancet. 2009; 374 (9702): 1694–1702.; Sur D., Kanungo S., Sah B., Manna B., Ali M., Paisley A. M. et al. Efficacy of a low-cost, inactivated whole-cell oral cholera vaccine: results from 3 years of follow-up of a randomized, controlled trial. PLoS Negl. Trop. Dis. 2011; 5 (10): e1289.; Bhattacharya S. K., Sur D., Ali M., Kanungo S., You Y. A., Manna B. et al. 5 year efficacy of a bivalent killed whole-cell oral cholera vaccine in Kolkata, India: a cluster randomised, double-blind, placebo-controlled trial. Lancet Infect. Dis. 2013; 13 (12): 1050–1056.; Wierzba T. F., Kar S. K., Mogasale V. V., Kerretta A. S., You Y. A., Baral P. Effectiveness of an oral cholera vaccine campaign to prevent clinically-significant cholera in Odisha State, India. Vaccine. 2015; 33 (21): 2463–2469.; Kanungo S., Lopez A. L., Ali M., Manna B., Kim D. R., Mahapatra T. et al. Vibriocidal antibody responses to a bivalent killed whole-cell oral cholera vaccine in a phase III trial in Kolkata, India. PLoS One. 2014; 9 (5): e96499.; Jeuland M., Cook J., Poulos C., Clemens J., Whittington D.; DOMI Cholera Economics Study Group. Cost-effectiveness of new-generation oral cholera vaccines: a multisite analysis. Value Health. 2009; 12 (6): 899–908.; Saha A., Chowdhury M. I., Khanan F., Bhuiyan M. S., Chowdhury F., Khan A. I. et al. Safety and immunogenicity of a killed bivalent (O1 and O139) whole-cell oral cholera vaccines Shanchol, in Bangladeshi adults and children as young as 1 year of age. Vaccine. 2011; 29 (46): 8285–8292.; Luquero F. J., Grout L., Giglenecki I., Sakoba K., Traore B., Heile M. et al. Use of Vibrio cholerae vaccine in an outbreak in Guinea. N. Engl. J. Med. 2014; 370 (22): 2111–2120.; Desai S., Akalu Z., Teshome S., Teferi M., Yamuah L., Kim D. R. et al. A randomized, placebo-controlled trial evaluating safety and immunogenicity of the killed, bivalent, whole-cell oral cholera vaccine in Ethiopia. Am. J. Trop. Med. Hyg. 2015; 93 (3): 527–533.; Charles R. C., Hilaire I. J., Mayo-Smith L. M., Teng J. E., Jerome J. C., Franke M. F. et al. Immunogenicity of a killed bivalent (O1 and O139) whole cell oral cholera vaccine, Shanchol, in Haiti. PLoS Negl. Trop. Dis. 2014; 8 (5): 2828.; Ivers L. C., Charles R. C., Hilaire I. J., Mayo-Smith L.M., Teng J. E., Herome J. G. Immunogenicity of the bivalent oral cholera vaccine Shanchol in Haitian adults with HIV infection. J. Infect. Dis. 2015; 212 (5): 779–783.; Kanungo S., Paisley A., Lopez A. L., Bhattacharya M., Manna B., Kim D. R. et al. Immune responses following one and two doses of the reformulated, bivalent, killed, whole-cell, oral cholera vaccine among adults and children in Kolkata, India: A randomized, placebo-controlled trial. Vaccine. 2009; 27 (49): 6887–6893.; Azman A. S., Parker L. A., Rumunu J., Tadesse F., Grandesso F., Deng L. L. et al. Effectiveness of one dose of oral cholera vaccine in response to an outbreak: a casecohort study. Lancet Glob. Health. 2016; 4 (11): e856–e863.; Baik Y. O., Choi S. K., Kim J. W., Yang J. S., Kim I. Y., Kim C. W. et al. Safety and immunogenicity assessment of an oral cholera vaccine through phase 1 clinical trial in Korea. J. Korean Med. Sci. 2014; 29 (4): 494–501.; Baik Y. O., Choi S. K., Olveda R. M., Espos R. A., Ligsay A. D., Montellano M. B. et al. A randomized, non-inferiority trial comparing two bivalent killed, whole cell, oral cholera vaccines (Euvichol vs Shanchol) in the Philippines. Vaccine. 2015; 33 (46): 6360–6365.; Chen W. H., Greenberg R. N., Pasetti M. F., Livio S., Lock M., Gurwith M. et al. Safety and immunogenicity of single-dose live oral cholera vaccine strain CVD 103-HgR prepared from new Master and Working Cell Banks. Clin. Vaccine Immunol. 2014; 21(1): 66–73.; Chen W. H., Cohen M. B., Kirkpatrick B. D., Brady R. C., Galloway D., Gurwith M. et al. Single-dose live oral cholera vaccine CVD 103-HgR protects against human experimental infection with Vibrio cholerae O1 El Tor. Clin. Infect. Dis. 2016; 62 (11):1329–1335.; Levine M. M., Chen W. H., Kaper J. B., Lock M., Danzig L., Gurwith M. PaxVax CVD 103-HgR single-dose live oral cholera vaccine. Expert Rev Vaccines. 2017; 16 (3): 197–213.; Онищенко Г. Г., Попова А. Ю., Кутырев В. В., Смирнова Н. И., Щербакова С. А., Москвитина Э. А. и др. Актуальные проблемы эпидемиологического надзора, лабораторной диагностики и профилактики холеры в Российской Федерации. Журн. микробиол. 2016; 1: 89–101.; Комиссаров А. В., Никифоров А. К., Перепелица А. И., Еремин С. А., Громова О. В., Васин Ю. Г. и др. Аппаратный метод обессоливания антигенных компонентов холерной химической вакцины. Проблемы особо опасных инфекций. 2014; 4: 61–64.; Еремин С. А., Щуковская Т. Н., Комиссаров А. В., Волох О. А., Громова О. В., Клюева С. Н. и др. Технология производства новой холерной химической вакцины с использованием атоксигенных штаммов Vibrio cholerae. Холера и патогенные для человека вибрионы: Материалы совещания специалистов Роспотреб- надзора по вопросам совершенствования эпидемиологического надзора за холерой. Ростов-на-Дону; 2013; 26: 232–235.; Ryan E. T., Calderwood S. B., Qadri F. Live attenuated oral cholera vaccines. Expert Rev. Vaccines. 2006; 5 (4): 483–494.; Muse M., Grandjean C., Wade T. K., Wade W. F. A one dose experimental cholera vaccine. FEMS Immunol. Med. Microbiol. 2012; 66 (1): 98–115.; Pastor M., Esquisabel A., Talavera A., Año G., Fernández S., Cedré B. et al. An approach to cold chain free oral cholera vaccine: in vitro and in vivo characterization of Vibrio cholerae gastro-resistant microparticles. Int. J. Pharm. 2013; 448 (1): 247–58.; Омельченко Н. Д., Мишанькин Б. Н., Иванова И. А., Дуванова О. В. Романова Л. В., Шипко Е. С. и др. Изучение иммуногенных свойств наружных мембран холерного вибриона. Медицинская иммунология. 2015; 17 (3): 120–121.; Fernández S., Año G., Castaño J., Pino Y., Uribarri E., Riverón L. A. et al. Evaluation of enteric-coated tablets as a whole cell inactivated vaccine candidate against Vibrio cholerae. Travel. Med. Infect. Dis. 2013; 11 (2): 103–109.; Lebens M., Karlsson S. L., Kapgard S., Blomquist M., Ekman A., Nygren E., Holmgren J. Construction of novel vaccine strains of Vibrio cholerae co-expressing the Inaba and Ogawa serotype antigens. Vaccine. 2011; 29 (43): 7505–7513.; Ledón T., Ferrán B., Pérez C., Suzarte E., Vichi J., Marrero K. et al. TLP01, an mshA mutant of Vibrio cholerae O139 as a vaccine candidate against cholera. Microbes Infect. 2012; 14 (11): 968–978.; Kiaie S., Abtahi H., Mosayebi G., Alikhani M., Pakzad I. Recombinant toxin-coregulated pilus A (TcpA) as a candidate subunit cholera vaccine. Iran J. Microbiol. 2014; 6 (2): 68–73.; Ratanasuwan W., Kim Y. H., Sah B. K., Suwanagool S., Kim D. R., Anekthananon A. et al. Peru-15 (Choleragarde(®)), a live attenuated oral cholera vaccine, is safe and immunogenic in human immunodeficiency virus (HIV)-seropositive adults in Thailand. Vaccine. 2015; 33 (38): 4830–4836.; Sinha R., Koley H., Nag D., Mitra S., Mukhopadhyay A. K., Chattopadhyay B. Pentavalent outer membrane vesicles of Vibrio cholerae induce adaptive immune response and protective efficacy in both adult and passive suckling mice models. Microbes Infect. 2015; 17 (3): 215–27.; Jiang X. L., He Z. M., Peng Z. Q., Qi Y., Chen Q., Yu S. Y. Cholera toxin B protein in transgenic tomato fruit induces systemic immune response in mice. Transgenic Res. 2007; 16 (2): 169–175.; Sharma M. K., Singh N. K., Jani D., Sisodia R., Thungapathra M., Gautam J. K. et al. Expression of toxin co-regulated pilus subunit A (TCPA) of Vibrio cholerae and its immunogenic epitopes fused to cholera toxin B subunit in transgenic tomato (Solanum lycopersicum). Plant Cell Rep. 2008; 27 (2): 307–318.; Kim Y. S., Kim M. Y., Kim T. G., Yang M. S. Expression and assembly of cholera toxin B subunit (CTB) in transgenic carrot (Daucus carota L.). Mol. Biotechnol. 2009; 41(1): 8–14.; Tokuhara D., Yuki Y., Nochi T., Kodama T., Mejima M., Kurokawa S. et al. Secretory IgA-mediated protection against Vibrio cholerae and heat-labile enterotoxinproducing enterotoxigenic Escherichia coli by rice-based vaccine. Proc. Nat. Acad. Sci. USA. 2010; 107 (19): 8794–8799.; Karaman S., Cunnick J., Wang K. Expression of the cholera toxin B subunit (CT-B) in maize seeds and a combined mucosal treatment against cholera and traveler’s diarrhea. Plant Cell Rep. 2012; 31 (3): 527–537.; Eko F.O., Okenu D. N., Singh U., He Q., Black C., Igietseme J. U. Evaluation of a broadly protective Chlamydia-cholera combination vaccine candidate. Vaccine. 2011; 29 (21): 3802–3810.; Vishwakarma V., Sahoo S. S., Das S., Ray S., Hardt W. D., Suar M. Cholera toxin-B (ctxB) antigen expressing Salmonella typhimurium polyvalent vaccine exerts protective immune response against Vibrio cholerae infection. Vaccine. 2015; 33 (15): 1880–1889.; Leitner D. R., Lichtenegger S., Temel P., Zingl F. G., Ratzberger D., Roier S. et al. A combined vaccine approach against Vibrio cholerae and ETEC based on outer membrane vesicles. Front Microbiol. 2015; 6: 823.; WHO/CDS/NTD/IDM/2006.2. Oral cholera vaccine use in complex emergencies situations: what next? /Report of a WHO meeting. Сairo, Egipt, 14–16 December. WHO, 2005.; https://www.epidemvac.ru/jour/article/view/402
-
12Academic Journal
Authors: G. M. Vakhrameeva, G. M. Titareva, I. A. Dyatlov, V. M. Pavlov, I. V. Bakhteeva, A. N. Mokrievich, R. I. Mironova, T. I. Kombarova, T. B. Kravchenko
Source: Проблемы особо опасных инфекций, Vol 0, Iss 4, Pp 102-105 (2013)
Subject Terms: протективность, francisella tularensis, ген iglc, iglc gene, antibodies, Infectious and parasitic diseases, RC109-216, protective activity, антитела, 3. Good health
-
13Academic Journal
Authors: A. K. Nikiforov, S. A. Eremin, S. N. Klyueva, N. I. Smirnova, A. L. Kravtsov, T. N. Shchukovskaya, S. A. Bugorkova, T. L. Zakharova, T. P. Shmel’Kova, O. A. Volokh, N. I. Belyakova
Source: Проблемы особо опасных инфекций, Vol 0, Iss 3(113), Pp 67-70 (2012)
Subject Terms: 0301 basic medicine, токсичность, 0303 health sciences, в-субъединица холерного токсина, apoptosis, toxicity, Infectious and parasitic diseases, RC109-216, 3. Good health, anti-toxic antibodies, 03 medical and health sciences, протективность, cholera toxin b-subunit, апоптоз, антитоксические антитела, protective ability
-
14Academic Journal
Authors: E. M. Kuznetsova, O. A. Volokh, N. G. Avdeeva, Yu. I. Samokhvalova, Е. М. Кузнецова, О. А. Волох, Н. Г. Авдеева, Ю. И. Самохвалова
Source: Problems of Particularly Dangerous Infections; № 2 (2017); 63-66 ; Проблемы особо опасных инфекций; № 2 (2017); 63-66 ; 2658-719X ; 0370-1069 ; 10.21055/0370-1069-2017-2
Subject Terms: протективность, subspecies of tularemia agent, antigens, immunogenicity, protectivity, подвиды возбудителя туляремии, антигены, иммуногенность
File Description: application/pdf
Relation: https://journal.microbe.ru/jour/article/view/394/392; Гмурман В.Е. Теория вероятностей и математическая статистика. М.: Высшая школа; 2004. 479 с.; Кузнецова Е.М., Волох О.А., Смолькова Е.А., Щуковская Т.Н., Шепелев И.А., Авдеева Н.Г., Кравцов А.Л., Никифоров А.К. Иммунобиологические свойства антигенных комплексов туляремийного микроба. Пробл. особо опасных инф. 2011; 3(109):46–9.; Кузнецова Е.М., Волох О.А., Шепелев И.А., Никифоров А.К. Компонентный состав протективного антигенного комплекса туляремийного микроба. Мол. генет., микробиол. и вирусол. 2012; 3:22–5.; Олсуфьев Н.Г., Мещерякова И.С. Дальнейшее изучение внутривидовой таксономии возбудителя туляремии. Журн. микробиол., эпидемиол. и иммунобиол. 1981; 10:16–21.; Онищенко Г.Г., Кутырев В.В., редакторы. Лабораторная диагностика опасных инфекционных болезней. М.: ЗАО «Шико»; 2013. С. 154–90.; Остерман Л.А. Методы исследования белков и нуклеиновых кислот: электрофорез и ультрацентрифугирование. М.: Наука; 1981. 288 с.; Павлов В.М., Дятлов И.А. Молекулярно-генетические исследования бактерий рода Francisella и их прикладное значение. М.; 2012. 267 с.; Amenta J. A rapid chemical method for quantification of lipids separated by thin-bayer chromatography. J. Lipid Res. 1964; 5:270–2.; Brevik Q.J., Ottem K.F., Kamaishi T., Watanabe K., Nylund A. Francisella halioticida sp. nov. a pathogen of farmed giant abalone (Haliotis gigantea) in Japan. J. Appl. Microbiol. 2011; 111(5):1044– 56. DOI:10.1111/j.1365-2672.2011.05133.x.; Gunn J.S., Ernst R.K. The structure and function of Francisella lipopolysaccharide. Ann. NY Acad. Sci. 2007; 1105:202–18. DOI:10.1196/annals.1409.006.; Huber B., Escudero R., Busse H.J., Seibold E., Scholz H.C., Anda P., Kampfer P., Splettstoesser W.D. Description of Francisella hispaniensis sp. nov., isolated from human blood, reclassification of Francisella novicida (Larson et al. 1995) Olsufiev et al. 1959 as Francisella tularensis subsp. novicida comb. nov. and emended description of the genus Francisella. Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2010; 60:1887–96. DOI:10.1099/ijs.0.015941-0.; Kingry L.C., Petersen J.M. Comparative review of Francisella tularensis and Francisella novicida. Front. Cell. Infect. Microbiol. 2014; 4:35. DOI:10.3389/fcimb.2014.00035.; Lowry O.H., Rоsebrough N.J., Farr A.L., Randall R.J. Protein measurement with the Folin phenol reagent. J. Biol. Chem. 1951; 193(1):265–75.; https://journal.microbe.ru/jour/article/view/394
-
15Academic Journal
Authors: A P Alliluev, I V Anohina, L D Rumsh, O V Kotelnikova, E Yu Drozzina, L S Zhigis, E Yu Yagudaeva, O A Razgulyaeva, S S Zueva, L V Kozlov, A M Bichucher, A E Avakov
Source: RUDN Journal of Medicine, Vol 0, Iss 1, Pp 7-12 (2010)
Subject Terms: IgA1 протеаза, менингококк, полисахарид, поливалентная вакцина, иммуногенность, протективность, Medicine
File Description: electronic resource
-
16Academic Journal
Authors: Лёдов, Владимир, Головина, М., Лучина, Н., Львов, В., Апарин, П.
Subject Terms: МОДИФИЦИРОВАННЫЙ ЛИПОПОЛИСАХАРИД, ПИРОГЕННОСТЬ, ПРОТЕКТИВНОСТЬ, АНТИТЕЛЬНЫЙ ОТВЕТ
File Description: text/html
-
17Academic Journal
Authors: Закутский, Николай, Балышева, В., Хухорова, И., Юрков, С.
Subject Terms: ЛИХОРАДКА ДОЛИНЫ РИФТ, ВИРУС, УРОВЕНЬ ПАССАЖЕЙ, ТЕМПЕРАТУРА ХРАНЕНИЯ, ИНФЕКЦИОННОСТЬ, ИММУНОГЕННОСТЬ, ПРОТЕКТИВНОСТЬ, RIFT VALLEY FEVER (RVF)
File Description: text/html
-
18Academic Journal
Authors: ЯКУБИЦКИЙ С.Н., КОЛОСОВА И.В., МАКСЮТОВ Р.А., ЩЕЛКУНОВ С.Н.
File Description: text/html
-
19Academic Journal
Authors: Дентовская, С., Иванов, С., Копылов, П., Шайхутдинова, Р., Платонов, М., Комбарова, Т., Гапельченкова, Т., Балахонов, С., Анисимов, А.
Subject Terms: ΔNLPD-МУТАНТ, ИЗБИРАТЕЛЬНАЯ ПРОТЕКТИВНОСТЬ, ЧУМНАЯ ЖИВАЯ ВАКЦИНА
File Description: text/html
-
20Academic Journal
Authors: A. V. Tsybulsky, N. F. Timchenko, E. Ya. Kostetsky, N. S. Vorobieva, А. В. Цыбульский, Н. Ф. Тимченко, Э. Я. Костецкий, Н. С. Воробьева
Source: Medical Immunology (Russia); Том 16, № 3 (2014); 227-236 ; Медицинская иммунология; Том 16, № 3 (2014); 227-236 ; 2313-741X ; 1563-0625 ; 10.15789/1563-0625-2014-3
Subject Terms: цитокины, heat-stable toxin, immunogenicity, protective effect, cytokines, термостабильный токсин, иммуногенность, протективность
File Description: application/pdf
Relation: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/688/691; Voskresenskaya E.A., Tseneva G.Ya., Alenushkina T.V., Skvortsov A.E. Immunologicheskie pokazateli pri patologii, obuslovlennoy iersiniozami [The immunological indices in pathology due to yersiniosis]. Zhurnal mikrobiologii, epidemiologii i immunobiologii – Journal of Microbiology Epidemiology and Immunobiology, 1996, no. 5, pp. 68-73.; Dolmatova L.S., Zaika O.A., Nedashkovskaya E.P., Timchenko N.F. Issledovanie mekhanizmov apoptozmoduliruyushchego vliyaniya termostabil`nogo toksina Yersinia pseudotuberculosis i korrigiruyushchego deystviya ekstrakta iz dal`nevostochnykh vidov goloturiy na neytrofily krys in vitro [Investigation of mechanisms of apoptoz-modulating influence of thermostable toxin of Yersinia pseudotuberculosis and corrective effect of the extract of the Far Eastern species of sea cucumbers to the rat neutrophils in vitro]. Tikhookeanskiy meditsinskiy zhurnal – Pacific Medicine Journal, 2010, no. 3, pp. 76-80.; Isachkova L.M., Raznik S.D., Nedashkovskaya E.P., Timchenko N.F. Patomorfologicheskaya kharakteristika eksperimental`noy toksinemii, vyzvannoy termostabil`nym toksinom Yersinia pseudotuberculosis [Pathomorphological characteristics of experimental toxemia induced by thermostable Yersinia pseudotuberculosis toxin]. Byulleten` eksperimental`noy biologii i meditsiny – Bulletin of Experimental Biology and Medicine, 2000, vol. 130, no. 11, pp. 1123-1126.; Kuznetsova T.A., Krylova N.V., Timchenko N.F., Logvinenko A.A. Vliyanie termostabil`nogo tocsin Yersinia pseudotuberculosis na immunnuyu sistemu [Effect of heat-stable toxin of Yersinia pseudotuberculosis to the immune system]. Epidemiologiya i infektsionnye bolezni – Epidemiology and Infectious Diseases, 2002, no. 1, pp. 25-28.; Pashin A.C. Sovershenstvovanie metodov vydeleniya i identifikatsii ekzotoksina psevdotuberkuleznogo mikroba. Avtoref. diss. kand. med. nauk [Improvement of methods for isolation and identification of exotoxin pseudotuberculosis bacteria. Autoref. Cand. med. sci. diss.]. Saratov, 1986. 133 p.; Persiyanova E.V., Surin A.K., Psareva E.K., Timchenko N.F. Tsitotoksicheskiy nekrotiziruyushchiy faktor Yersinia pseudotuberculosis, vozbuditelya dal`nevostochnoy skarlatinopodobnoy likhoradki [Cytotoxic necrotizing factor of Yersinia pseudotuberculosis as the causative agent of Far Eastern scarlatine-like form fever]. Byulleten` Sibirskogo otdeleniya RAMN – Bulletin of the Siberian Branch of the Russian Academy of Medical Sciences, 2013, vol. 33, no. 2, pp. 16-20.; Pokrovskiy V.K., Timchenko N.F., Nedashkovskaya E.P., Grigor`eva E.A. Biologicheskie svoystva termolabil`nogo letal`nogo toksina Yersinia pseudotuberculosis [Biological properties of heat-labile lethal toxin of Yersinia pseudotuberculosis]. Zhurnal mikrobiologii, epidemiologii i immunobiologii – Journal of Microbiology Epidemiology and Immunobiology, 2008, no. 6, pp. 63-66.; Somov G.P., Pokrovskiy V.I., Besednova N.N., Antonenko F.F. Psevdotuberkulez [Pseudotuberculosis]. Moscow, Medicine, 2001. 238 p.; Timchenko N.F., Nedashkovskaya E.P., Dolmatova L.S., Somova-Isachkova L.M. Toksiny Yersinia pseudotuberculosis [Toxins of Yersinia pseudotuberculosis]. Vladivostok, 2004. 220 p.; Timchenko N.F. Toksiny Yersinia pseudotuberculosis [ Yersinia pseudotuberculosis toxins]. Zhurnal mikrobiologii, epidemiologii i immunobiologii – Journal of Microbiology Epidemiology and Immunobiology, 2006,no. 6, pp. 83-89.; Tsybulsky A.V., Popov A.M, Sanina N.M., Mazeyka A.N., Portnyagina O.Yu., Novikova O.D., Timchenko N.F., Kostetsky E.Ya. Immunogennye i protektivnye svoystva nanorazmernykh konstruktsiy na osnove tubulyarnykh immunostimuliruyushchikh kompleksov i poroobrazuyushchego belka iz Yersinia pseudotuberculosis [Immunogenic and protective properties of nanosized constructs based on tubular immunostimulating complexes and pore forming protein of Yersinia pseudotuberculosis]. Zhurnal mikrobiologii, epidemiologii i immunobiologii – Journal of Microbiology Epidemiology and Immunobiology, 2011, no. 2, pp. 43-47.; Carnoy C., Loiez C., Faveeuw C., Grangette C., Desreumaux P., Simonet M. Impact of the Yersinia pseudotuberculosis-derived mitogen (YPM) on the murine immune system. Adv. Exp. Med. Biol., 2003, vol. 529,pp. 133-135.; Lockman H.A., Gillespie R.A., Baker B.D., Shakhnovich E. Yersinia pseudotuberculosis produces a cytotoxic necrotizing factor. Infect. Immun., 2002, vol. 70, pp. 2708-2714.; Rosqvist R., Forsberg A., Wolf-Watz H. Intracellular targeting of the Yersinia YopE cytotoxin in mammalia induces actin microfilament disruption. Infect. Immun., 1991, vol. 59, no. 12, pp. 4562-4569.; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/688
