-
1Academic Journal
Subject Terms: глутатионпероксидаза, hypoxia, catalase, диеновые конъюгаты, antihypoxants, lipid peroxidation, антигипоксанты, hemic hypoxia, superoxide dismutase, rats, супероксиддисмутаза, перекисное окисление липидов, malonic dialdehyde, oxidative stress, гипоксия, каталаза, крысы, гемическая гипоксия, малоновый диальдегид, глутатионредуктаза, glutathione peroxidase, glutathione reductase, оксидативный стресс, diene conjugates
-
2Academic Journal
Source: Высшая школа: научные исследования.
Subject Terms: перекисное окисление липидов, лимонная кислота, подсолнечник, лецитин, in vitro, натрия эдетат
-
3Academic Journal
Authors: Yu. L. Mizernitsky, Kh. M. Vakhitov, A. V. Ishbuldina, E. V. Loskutova, L. F. Vakhitova, Ю. Л. Мизерницкий, Х. М. Вахитов, А. В. Ишбулдина, Е. В. Лоскутова, Л. Ф. Вахитова
Contributors: The work was carried out using funds from the Strategic Academic Leadership Program of Kazan (Volga Region) Federal University (PRIORITY-2030) and state assignment No. 0671–2020–0059., Работа выполнена за счет средств Программы стратегического академического лидерства Казанского (Приволжского) федерального университета (ПРИОРИТЕТ-2030) и Госзадания № 0671–2020–0059.
Source: Rossiyskiy Vestnik Perinatologii i Pediatrii (Russian Bulletin of Perinatology and Pediatrics); Том 70, № 5 (2025); 63-69 ; Российский вестник перинатологии и педиатрии; Том 70, № 5 (2025); 63-69 ; 2500-2228 ; 1027-4065
Subject Terms: перекисное окисление липидов, community-acquired pneumonia, atypical pathogens, pneumococcus, cytokines, lipid peroxidation, внебольничная пневмония, атипичные возбудители, пневмококк, цитокины
File Description: application/pdf
Relation: https://www.ped-perinatology.ru/jour/article/view/2286/1656; Круглякова Л.В., Бугаева Л.И. Амбулаторная пульмонология в современных отечественных рекомендациях и исследованиях. Бюллетень физиологии и патологии дыхания. 2019; 73: 98–111. DOI: org/10.36604/1998-5029-2019-73-98-111; ВОЗ. Информационный бюллетень 02.08.2019 http://www.who.int/mediacentre/factsheets/fs331/ru/); Мизерницкий Ю.Л. Макролиды в современной терапии внебольничной пневмонии у детей. Медицинский совет. 2020; 18: 80–85. DOI:org/10.21518/2079-701X-2020-18-80-85; Мельникова И.М., Доровская Н.Л., Мизерницкий Ю.Л., Некрасова М.В., Тихомирова М.А. Современное течение внебольничной пневмонии у детей. Международный научно-исследовательский журнал. 2024; 9 (147):1–6. DOI:org/10.60797/IRJ.2024.147.25; Внебольничная пневмония у детей: распространенность, диагностика, лечение, профилактика. Научно-практическая программа. Российское респираторное общество (2018). https://antimicrob.net/wp-content/uploads/2015-Vnebolnichnaya-pnevmoniya-u-detei%CC%86.pdf Ссылка активная на 20.08.2025; Ахаева А.С. Анализ взаимосвязей уровня прокальцитонина при внебольничной пневмонии у детей. Медицина и экология. 2017; 3(84): 84–87.; Воевода М.И., Рагино Ю.И., Николаев К.Ю., Харламова О.С., Стахнева Е.М., Каштанова Е.В. и др. Новые аспекты использования белковых тканеспецифичных маркеров в оценке степени тяжести внебольничных пневмоний. Сибирский научный медицинский журнал. 2019; 4: 93–98. DOI:org/10.15372/SSMJ20190412; Бондарь С.С., Терехов И.В., Никифоров В.С., Парфенюк В.К., Бондарь Н.В. Роль супрессора цитокиновой сигнализации socs2 в регуляции провоспалительной активности клеток цельной крови после перенесенной инфекции нижних отделов респираторного тракта. Архив внутренней медицины. 2022; 3(65): 212–220. DOI:org/10.17816/CS492285; She Y.X., Yu Q.Y., Tang X.X. Role of interleukins in the pathogenesis of pulmonary fibrosis. Future Med. Chem. 2021; 7(1): 52. DOI:10.1038/s41420-021-00437-9; Виткина Т.И., Сидлецкая К.А., Минеева Е.Е. Уровни сывороточного IL-4 и экспрессия его рецептора на Т-хелперах периферической крови пациентов с хронической обструктивной болезнью легких. Здоровье. Медицинская экология. Наука. 2017; 4(71): 40–44. DOI:org10.31857/S102872210006449–8; Бондарь С.С., Терехов И.В., Никифоров В.С., Парфенюк В.К., Бондарь Н.В. Влияние интерлейкина-21 на состояние внутриклеточных сигнальных механизмов в лейкоцитах у реконвалесцентов внебольничной пневмонии // Актуальные проблемы медицины. 2022; 1: 28–38. DOI:org/10.20514/2226-6704-2018-8-6-451-457; Мизерницкий Ю.Л., Вахитов Х.М., Ситдикова Г.Ф., Сафиуллин Т.Р., Нурмиева Э.Р., Лоскутова Е.В. Клинико-этиологическая характеристика и цитокиновый профиль у детей школьного возраста с внебольничными пневмониями. Российский вестник перинатологии и педиатрии. 2024; 69(5): 58–64. DOI:org/10.21508/1027-4065-2024-69-5-58-64; Мембранные и метаболические механизмы в патогенезе заболеваний органов дыхания у детей: монография. Под ред. Вахитова Х.М. [и др.]. Казань: МеДДоК, 2018; 143с. ISBN 978-5-6041095-3-3; Сафиуллин Т.Р., Нурмиева Э.Р., Вахитов Х.М. Диагностическая значимость определения антигена streptococcus pneumoniae в моче у детей с внебольничной пневмонией. Трансляционная медицина. 2022; 8(6): 59–63. DOI:org/10.18705/2311-4495-2021-6-59-63; Валеева И.Х., Ибрагимова М.Я., Жданов Р.И., Халикова А.Р. Методы определения содержания продуктов перекисного окисления липидов в биологическом материале: учебно-методическое пособие. Казань, 2008; 26с.; Вахитов Х.М., Сабирова Д.Р., Мизерницкий Ю.Л. Внебольничная пневмония. В кн.: Тактика врача-педиатра участкового (практическое руководство). 2-е изд. Под ред. Школьниковой М.А., Мизерницкого Ю.Л. М: ГЭОТАР-Медиа, 2022; 49–56.; Кошкарина Е.А., Ковалишена О.В., Саперкин Н.В., Краснов В.В., Зубаров П.Г., Чеканина О.М. Оценка современной лабораторной диагностики пневмококковых внебольничных пневмоний. Фундаментальная и клиническая медицина. 2020; 5 (4): 21–29. DOI:org/10.23946/2500-0764-2020-5-4-21-29; Ешмолов С.Н., Ситников И.Г., Мельникова И.М. Цитокины ФНО-а, ИФН-γ, ИЛ-1, ИЛ-4, ИЛ-8 и их роль в иммунном ответе при инфекционном поражении ЦНС у детей. Детские инфекции. 2018; 1: 17–22. DOI: org/10.22627/2072-8107-2018-17-1-17-22
-
4Academic Journal
Authors: Петухов, А. С., Кремлева, Т. А., Хритохин, Н. А., Первухина, Е. Д.
Source: Biosfera; Том 17, № 4 (2025) ; Биосфера; Том 17, № 4 (2025) ; 2077-1460 ; 2077-1371
Subject Terms: тяжелые металлы, растения, перекисное окисление липидов, фотосинтез, антиоксиданты
File Description: application/pdf
Relation: http://21bs.ru/index.php/bio/article/view/1019/742; http://21bs.ru/index.php/bio/article/downloadSuppFile/1019/459; http://21bs.ru/index.php/bio/article/downloadSuppFile/1019/460; http://21bs.ru/index.php/bio/article/downloadSuppFile/1019/461; http://21bs.ru/index.php/bio/article/downloadSuppFile/1019/462; http://21bs.ru/index.php/bio/article/downloadSuppFile/1019/463; http://21bs.ru/index.php/bio/article/view/1019; edn=HDMSAQ
-
5Academic Journal
Authors: A. B. Zinnurova, K. P. Vorobyev, O. V. Bakina, E. I. Senkina, L. V. Spirina, O. L. Nosareva, T. V. Zhavoronok, А. Б. Зиннурова, К. П. Воробьев, О. В. Бакина, Е. И. Сенькина, Л. В. Спирина, О. Л. Носарева, Т. В. Жаворонок
Contributors: The development of plasma treatment methodology and cell culture treatment were performed within the framework of the state assignment of the Institute of Physics and Mathematics of SB RAS, topic FWRW-2022-0002., Разработка методики плазменной обработки и обработка клеточных культур выполнены в рамках государственного задания ИФПМ СО РАН, тема FWRW-2022-0002.
Source: Siberian journal of oncology; Том 23, № 6 (2024); 89-96 ; Сибирский онкологический журнал; Том 23, № 6 (2024); 89-96 ; 2312-3168 ; 1814-4861
Subject Terms: малоновый диальдегид, MCF-7 breast cancer cells, lipid peroxidation, catalase, malonic dialdehyde, клетки рака молочной железы MCF-7, перекисное окисление липидов, каталаза
File Description: application/pdf
Relation: https://www.siboncoj.ru/jour/article/view/3364/1307; Bernhardt T., Semmler M.L., Schäfer M., Bekeschus S., Emmert S., Boeckmann L. Plasma Medicine: Applications of Cold Atmospheric Pressure Plasma in Dermatology. Oxid Med Cell Longev. 2019. doi:10.1155/2019/3873928.; Gao L., Shi X., Wu X. Applications and challenges of low temperature plasma in pharmaceutical field. J Pharm Anal. 2021; 11(1): 28–36. doi:10.1016/j.jpha.2020.05.001.; Babington P., Rajjoub K., Canady J., Siu A., Keidar M., Sherman J.H. Use of cold atmospheric plasma in the treatment of cancer. Biointerphases. 2015; 10(2). doi:10.1116/1.4915264.; Yan D., Cui H., Zhu W., Nourmohammadi N., Milberg J., Zhang L.G., Sherman J.H., Keidar M. The Specific Vulnerabilities of Cancer Cells to the Cold Atmospheric Plasma-Stimulated Solutions. Sci Rep. 2017; 7(1): 4479. doi:10.1038/s41598-017-04770-x.; Tanaka H., Mizuno M., Ishikawa K., Nakamura K., Kajiyama H., Kano H., Kikkawa F., Hori M. Plasma-activated medium selectively kills glioblastoma brain tumor cells by down-regulating a survival signaling molecule, AKT kinase. Plasma Med. 2011; 1(3–4): 265–77. doi:10.1615/PlasmaMed.2012006275.; Utsumi F., Kajiyama H., Nakamura K., Tanaka H., Mizuno M., Ishikawa K., Kondo H., Kano H., Hori M., Kikkawa F. Effect of indirect nonequilibrium atmospheric pressure plasma on anti-proliferative activity against chronic chemo-resistant ovarian cancer cells in vitro and in vivo. PLoS One. 2013; 8(12). doi:10.1371/journal.pone.0081576.; Hattori N., Yamada S., Torii K., Takeda S., Nakamura K., Tanaka H., Kajiyama H., Kanda M., Fujii T., Nakayama G., Sugimoto H., Koike M., Nomoto S., Fujiwara M., Mizuno M., Hori M., Kodera Y. Effectiveness of plasma treatment on pancreatic cancer cells. Int J Oncol. 2015; 47(5): 1655–62. doi:10.3892/ijo.2015.3149.; Jablonowski H., Schmidt-Bleker A., Weltmann K.D., von Woedtke T., Wende K. Non-touching plasma-liquid interaction - where is aqueous nitric oxide generated? Phys Chem Chem Phys. 2018; 20(39): 25387–98. doi:10.1039/c8cp02412j.; Takeda K., Ishikawa K., Tanaka H., Sekine M., Hori M. Spatial distributions of O, N, NO, OH and vacuum ultraviolet light along gas flow direction in an AC-excited atmospheric pressure Ar plasma jet generated in open air. J Physics D: Appl Physics. 2017; 50(19). doi:10.1088/1361-6463/aa6555.; Lim K., Hieltjes M., van Eyssen A., Smits P. Cold plasma treatment. J Wound Care. 2021; 30(9): 680–3. doi:10.12968/jowc.2021.30.9.680.; Hirst A.M., Frame F.M., Arya M., Maitland N.J., O’Connell D. Low temperature plasmas as emerging cancer therapeutics: the state of play and thoughts for the future. Tumour Biol. 2016; 37(6): 7021–31. doi:10.1007/s13277-016-4911-7.; Ishikawa K., Hosoi Y., Tanaka H., Jiang L., Toyokuni S., Nakamura K., Kajiyama H., Kikkawa F., Mizuno M., Hori M. Non-thermal plasma-activated lactate solution kills U251SP glioblastoma cells in an innate reductive manner with altered metabolism. Arch Biochem Biophys. 2020; 688. doi:10.1016/j.abb.2020.108414.; Takahashi Yo., Taki Yu., Takeda K., Hashizume H., Tanaka H., Ishikawa K., Hori M. Reduced HeLa cell viability in methionine‐containing cell culture medium irradiated with microwave‐excited atmospheric-pressure plasma. Plasma Processes and Polymers. 2018; 15(3). doi:10.1002/ppap.201700200.; Liu Ya., Ishikawa K., Miron C., Hashizume H. Hydrogen peroxide in lactate solutions irradiated by non-equilibrium atmospheric pressure plasma. Plasma Sources Sci Technol. 2021; 30(4). doi:10.1088/1361-6595/abbbd4.; Al Mamun A., Wu Y., Monalisa I., Jia C., Zhou K., Munir F., Xiao J. Role of pyroptosis in spinal cord injury and its therapeutic implications. J Adv Res. 2020; 28: 97–109. doi:10.1016/j.jare.2020.08.004.; Dubey S.K., Dabholkar N., Pal U.N., Singhvi G., Sharma N.K., Puri A., Kesharwani P. Emerging innovations in cold plasma therapy against cancer: A paradigm shift. Drug Discov Today. 2022; 27(9): 2425–39. doi:10.1016/j.drudis.2022.05.014.; Wang Y., Mang X., Li X., Cai Z., Tan F. Cold atmospheric plasma induces apoptosis in human colon and lung cancer cells through modulating mitochondrial pathway. Front Cell Dev Biol. 2022; 10. doi:10.3389/fcell.2022.915785.; Wang Y., Mang X., Li D., Chen Y., Cai Z., Tan F. Piezoeletric cold atmospheric plasma induces apoptosis and autophagy in human hepatocellular carcinoma cells through blocking glycolysis and AKT/mTOR/ HIF-1α pathway. Free Radic Biol Med. 2023; 208: 134–52. doi:10.1016/j.freeradbiomed.2023.07.036.; Maltsev A.N. Dense gas discharge with runaway electrons as a new plasma source for surface modification and treatment. IEEE transactions on plasma science. 2006; 34(4): 1166–74.; Ложкомоев А.С., Глазкова Е.А., Хоробрая Е.Г., Лернер М.И., Мальцев А.Н., Подковыров В.Г. Модификация поверхности полимерных волокон DRE-плазмой для адгезии частиц оксигидроксида алюминия. Известия высших учебных заведений. 2013; 56(4): 22–6.; Kumar V., Sharma N., Maitra S.S. In vitro and in vivo toxicity assessment of nanoparticles. Int Nano Lett. 2017; 7(4): 243–56. doi:10.1007/s40089-017-0221-3.; Hadwan M.H., Abed H.N. Data supporting the spectrophotometric method for the estimation of catalase activity. Data Brief. 2015; 6: 194–99. doi:10.1016/j.dib.2015.12.012.; ГОСТ Р ИСО 10993.5. Изделия медицинские. Оценка биологического действия медицинских изделий. Ч. 5. Исследование на цитотоксичность: методы in vitro; Shan K., Feng N., Zhu D., Qu H., Fu G., Li J., Cui J., Chen H., Wang R., Qi Y., Chen Y.Q. Free docosahexaenoic acid promotes ferroptotic cell death via lipoxygenase dependent and independent pathways in cancer cells. Eur J Nutr. 2022; 61(8): 4059–75. doi:10.1007/s00394-022-02940-w.; Wang Y., Mang X., Li D., Wang Z., Chen Y., Cai Z., Tan F. Cold atmospheric plasma sensitizes head and neck cancer to chemotherapy and immune checkpoint blockade therapy. Redox Biol. 2024; 69. doi:10.1016/j.redox.2023.102991.; Dai X., Wu J., Lu L., Chen Y. Current Status and Future Trends of Cold Atmospheric Plasma as an Oncotherapy. Biomol Ther (Seoul). 2023; 31(5): 496–514. doi:10.4062/biomolther.2023.027.; Gay-Mimbrera J., García M.C., Isla-Tejera B., Rodero-Serrano A., García-Nieto A.V., Ruano J. Clinical and Biological Principles of Cold Atmospheric Plasma Application in Skin Cancer. Adv Ther. 2016; 33(6): 894–909. doi:10.1007/s12325-016-0338-1. Erratum in: Adv Ther. 2016.; https://www.siboncoj.ru/jour/article/view/3364
-
6Academic Journal
Authors: I. I. Ktsoeva, M. V. Rozovenko, R. B. Temiraev, S. G. Kozyrev, M. S. Gazzaeva, Z. A. Kubatieva, И. И. Кцоева, М. В. Розовенко, Р. Б. Темираев, С. Г. Козырев, М. С. Газзаева, З. А. Кубатиева
Source: Bulletin of NSAU (Novosibirsk State Agrarian University); № 4 (2024); 220-227 ; Вестник НГАУ (Новосибирский государственный аграрный университет); № 4 (2024); 220-227 ; 2072-6724
Subject Terms: антиоксидантная защита, antioxidants, lipid peroxidation, blood, morphological and biochemical composition, antioxidant protection, антиоксиданты, перекисное окисление липидов, кровь, морфологический и биохимический состав
File Description: application/pdf
Relation: https://vestngau.elpub.ru/jour/article/view/2446/1085; Влияние пробиотика и антиоксиданта на яичную продуктивность кур при риске афлатоксикоза / М.Н.Мамукаев, З.А. Гутиева, И.И. Кцоева [и др.] // Известия Горского государственного аграрного университета. – 2015. – Т. 52, Ч. 4 – С. 153–157.; Влияние биологически активных препаратов на процессы пищеварительного обмена сельскохозяйственной птицы / Ф.Н. Цогоева, И.И. Кцоева, М.Д. Карсанова // Известия Горского государственного аграрного университета. – 2015. – Т. 52, Ч. 2. – С. 77–81.; Использование природных антиоксидантов в кормлении цыплят-бройлеров / О.С. Кощаева, А.А. Рядинская, К.В. Лавриненко, И.А. Кощаев // Вестник НГАУ (Новосибирский государственный аграрный университет). – 2023. – № 3 (68). – С. 235–244.; The use of chickpea flour in the minced meat products formula: lnnovative Technologies in Environmental Engineering and Agroecosystems (ITEEA 2021) / A. Dzhaboeva, O. Byazrova, V. Tedtova [et al.] // E3S Web of Conferences 1st International Scientific and Practical Conference. – 2021. – Р. 01026.; Морфологический и биохимический состав крови перепелов при применении в питании пробиотика и витамина С / Д.О. Сенцова, Р.Б. Темираев, С.Г. Козырев [и др.] // Известия Горского государственного аграрного университета. – 2018. – Т. 55, № 4. – С. 115–120.; Сенцова Д.О., Темираев Р.Б. Влияние пробиотика и витамина С на пищеварительный обмен перепелов // Инновации и продовольственная безопасность. – 2018. – № 4 (22). – С. 106–109.; Алексеева Н.М., Борисова П.П., Николаева Н.А. Биохимические показатели крови молодняка при скармливании кормовых добавок // Ветеринария и кормление. – 2019. – № 1. – С. 24–26.; Pellegrini N.R., Proteggente A. Antioxidant activity applying an improved ABTS radical cation decolorization assay // Free radical biology and medicine. – 1999. – Vol. 26 (9–10). – P. 1231–1237. – DOI:10.1016/S0891-5849(98)00315-3.; Andres A.I., Petron M.J., Delgado-Adamez J. Effect of Tomato Pomace Extracts on the Shelf-Life of Modified Atmosphere-Packaged Lamb // Meat. Journal of Food Processing and Preservation. – 2017. – Vol. 41. – P. e13018. – DOI:10.1111/jfpp.13018.; Пуховая продуктивность и генотипические особенности по полиморфизму гена BLG и группам крови коз Горного Алтая / Г.М. Гончаренко, Т.Б. Каргачакова, Н.Б. Гришина, Т.С. Хорошилова, О.Л. Халина // Вестник НГАУ (Новосибирский государственный аграрный университет). – 2020. – № 3 (56). – С. 94–101.; Jing H., Kitts D. Antioxidant activity of sugar-lysine Maillard reaction products in cell free and cell culture systems // Archives of Biochemistry and Biophysics. – 2004. – Vol. 429 (2). – P. 154–163. – DOI:10.1016/j.abb.2004.06.019.; Domínguez R., Pateiro M., Gagaoua M. A comprehensive review on lipid oxidation in meat and meat products // Antioxidants. – 2019. – Vol. 8 (10). – Р. 429. – DOI:10.3390/antiox8100429.; Повышение мясной продуктивности и биологической ценности мяса бройлеров / И.И. Кцоева, А.А. Баева, Г.С. Тукфатулин [и др.] // Мясная индустрия. – 2015. – № 12. – С. 44–45.; Переваримость и усвояемость питательных веществ кормов у бройлеров при добавках антиоксидантов / А.Г. Кощаев, И.И. Кцоева, Л.А. Витюк [и др.] // Труды Кубанского государственного аграрного университета. – 2022. – № 99. – С. 262–269.; Токсикологические исследования добавки кормовой эндофорс мульти на лабораторных животных / С.В. Малков, А.С. Красноперов, О.Ю. Опарина [и др.] // Вестник НГАУ (Новосибирский государственный аграрный университет). – 2023. – № 2 (67). – С. 220–228.; Физиологический статус лактирующих голштинских коров в условиях Сибири / К.В. Жучаев, М.Л. Кочнева, Е.А. Борисенко [и др.] // Вестник НГАУ (Новосибирский государственный аграрный университет). – 2016. – № 4. – С. 118–124.; Осипова Н.А., Магер С.Н., Попов Ю.Г. Лабораторные исследования крови животных. – Новосибирск, 2003. – 48 с.; Кондрахин И.П., Шпильман И.Д. Клиническая лабораторная диагностика в ветеринарии: Справ. изд. – М., 1985. – 287 с.; Двинская JI.M., Шубин А.А. Использование антиоксидантов в животноводстве. – Л.: Агропромиздат, 1986. – 180 с.; https://vestngau.elpub.ru/jour/article/view/2446
-
7Academic Journal
Source: Scientific researches in the Kyrgyz Republic. :4-9
Subject Terms: липиддердин перекистик кычкылдануусу, деструктивный холецистит, перекисное окисление липидов, ѳттѳгү таш оорусу, антиоксиданттык коргонуу системасы, деструктивдүү холецистит, gallstone disease, antioxidant defense system, lipid peroxidation, желчекаменная болезнь, система антиоксидантной защиты, destructive cholecystitis, 3. Good health
-
8Academic Journal
Source: Наука и здравоохранение. :97-104
Subject Terms: ишемический инсульт, инвазивті емдеу, forecast, invasive treatment, lipid peroxidation, инвазивное лечение, 3. Good health, липидтердің асқын тотығуы, перекисное окисление липидов, антиоксидантная защита, прогноз, ischemic stroke, антиоксидантты қорғау, antioxidant protection, ишемиялық инсульт, болжау
-
9Academic Journal
Subject Terms: safranin, митохондриальная цепь переноса электронов, lipid peroxidation, transmembrane potential, 3. Good health, трансмембранный потенциал, перекисное окисление липидов, oncogenesis, окислительный стресс, mitochondrial electron transfer chain, сафранин, oxidative stress, онкогенез, аэробный гликолиз, aerobic glycolysis
-
10Academic Journal
Subject Terms: lipid metabolism parameters, перекисное окисление липидов, freshwater hydrobionts, пресноводные гидробионты, lipid peroxidation, показатели липидного обмена
File Description: application/pdf
Access URL: https://rep.vsu.by/handle/123456789/45215
-
11Academic Journal
Source: Doklady biochemistry and biophysics. 2022. Vol. 502. P. 25-29
Subject Terms: 0301 basic medicine, 0303 health sciences, фотосинтетические пигменты, рапс, праймирование семян, Salt Stress, 03 medical and health sciences, Steroids, Heterocyclic, перекисное окисление липидов, Chlorides, брассиностероиды, Brassinosteroids, Seeds, солевой стресс, антиоксидантные ферменты, фотосистема II
-
12Academic Journal
Authors: Poliakova, Yu.V.
Source: Zdorovʹe Rebenka, Vol 10, Iss 6.66, Pp 115-118 (2015)
CHILD`S HEALTH; № 6.66 (2015); 115-118
Здоровье ребенка-Zdorovʹe rebenka; № 6.66 (2015); 115-118
Здоров'я дитини-Zdorovʹe rebenka; № 6.66 (2015); 115-118Subject Terms: дети и подростки, перекисное окисление липидов, перекисное окисление белков, туберкулез легких, сhildren and teenagers, lipid peroxidation, protein peroxidation, pulmonary tuberculosis, діти та підлітки, перекисне окислення ліпідів, перекисне окислення білків, туберкульоз легень, Pediatrics, RJ1-570, 3. Good health
File Description: application/pdf
-
13Academic Journal
Authors: Zarubina, Ye., Aseeva, Ye., Turkovskyy, Yu.
Source: Здоров'я суспільства-Zdorov'a suspil'stva; Том 2, № 3-4 (2013); 58-62
Health of Society; Том 2, № 3-4 (2013); 58-62
Здоровье общества-Zdorov'a suspil'stva; Том 2, № 3-4 (2013); 58-62Subject Terms: гіпертонічна хвороба, ступінь артеріальної гіпертензії, порушення режиму праці та відпочинку, перекисне окислення ліпідів, дієнових кон'югати, малоновий диальдегид, супероксиддисмутаза, hypertension, the degree of hypertension, impaired work and rest, lipid peroxidation, diene conjugates, malondialdehyde, superoxide dismutase, гипертоническая болезнь, степень артериальной гипертензии, нарушение режима труда и отдыха, перекисное окисление липидов, диеновые коньюгаты, малоновый диальдегид
File Description: application/pdf
-
14Academic Journal
Authors: Babinets, L.S., Mayevska, T.G., Galabitska, I.M.
Source: Здоров'я суспільства-Zdorov'a suspil'stva; Том 6, № 3 (2017); 51-54
Health of Society; Том 6, № 3 (2017); 51-54
Здоровье общества-Zdorov'a suspil'stva; Том 6, № 3 (2017); 51-54Subject Terms: остеоартроз, хронический панкреатит, антиоксидантная защита, перекисное окисление липидов, энзимотерапия, аппликатор Ляпко, хронічний панкреатит, антиоксидантний захист, перекисне окиснення ліпідів, ензимотерапія, аплікатор Ляпка, 3. Good health
File Description: application/pdf
-
15Academic Journal
Authors: И. В. Парфёнова, Н. А. Максимович
Source: Žurnal Grodnenskogo Gosudarstvennogo Medicinskogo Universiteta, Vol 21, Iss 1, Pp 85-88 (2023)
Subject Terms: внебольничная пневмония, перекисное окисление липидов, антиоксидантная защита, дети, Medicine
File Description: electronic resource
-
16Academic Journal
Authors: A. V. Vyushina, A. V. Pritvorova, S. G. Pivina, N. E. Ordyan, А. В. Вьюшина, А. В. Притворова, С. Г. Пивина, Н. Э. Ордян
Source: Vavilov Journal of Genetics and Breeding; Том 28, № 4 (2024); 387-397 ; Вавиловский журнал генетики и селекции; Том 28, № 4 (2024); 387-397 ; 2500-3259 ; 10.18699/vjgb-24-41
Subject Terms: диэструс, F2 generation, behavior, lipid peroxidation, estrus, diestrus, поколение F2, поведение, перекисное окисление липидов, эструс
File Description: application/pdf
Relation: https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/4181/1845; Adams R.C.M., Smith C. In utero exposure to maternal chronic inflammation transfers pro-inflammatory profile to generation F2 via sexspecific mechanisms. Front. Immunol. 2020;11:48. DOI 10.3389/fimmu.2020.00048; Aiken C.E., Tarry-Adkins J.L., Ozanne S.E. Transgenerational developmental programming of ovarian reserve. Sci. Rep. 2015;5:16175. DOI 10.1038/srep16175; Aiken C.E., Tarry-Adkins J.L., Spiroski A., Nuzzo A.M., Ashmore T.J., Rolfo A., Sutherland M.J., Camm E.J., Giussani D.A., Ozanne S.E. Chronic gestational hypoxia accelerates ovarian aging and lowers ovarian reserve in next-generation adult rats. FASEB J. 2019;33(6): 7758-7766. DOI 10.1096/fj.201802772R; Arutyunyan A.V., Dubinina E.E., Zybina N.N. Methods of Evaluation of Free-radical Oxidation and the Antioxidant System. Saint Petersburg: Foliant Publ., 2000 (in Russian); Babenko O., Kovalchuk I., Metz G.A.S. Stress-induced perinatal and transgenerational epigenetic programming of brain development and mental health. Neurosci. Biobehav. Rev. 2015;48:70-91. DOI 10.1016/j.neubiorev.2014.11.013; Bale T.L. Lifetime stress experience: transgenerational epigenetics and germ cell programming. Dialogues Clin. Neurosci. 2014;16(3): 297-305. DOI 10.31887/DCNS.2014.16.3/tbale; Bale T.L. Epigenetic and transgenerational reprogramming of brain development. Nat. Rev. Neurosci. 2015;16(6):332-344. DOI 10.1038/nrn3818; Baraboy V.A., Brekhman I.I., Golotin V.G., Kudriashov Yu.B. Peroxidation and Stress. Saint Petersburg: Nauka Publ., 1992 (in Russian); Bidlack W.R., Tappel A.L. Fluorescent products of phospholipids during lipid peroxidation. Lipids. 1973;8(4):203-207. DOI 10.1007/BF02544636; Brunton P.J. Effects of maternal exposure to social stress during pregnancy: consequences for mother and offspring. Reproduction. 2013; 146(5):R175-R189. DOI 10.1530/REP-13-0258; Dennery P.A. Oxidative stress in development: nature or nurture? Free Radic. Biol. Med. 2010;49(7):1147-1151. DOI 10.1016/j.freeradbiomed.2010.07.011; Dunn G.A., Morgan C.P., Bale T.L. Sex-specificity in transgenerational epigenetic programming. Horm. Behav. 2011;59(3):290-295. DOI 10.1016/j.yhbeh.2010.05.004; Dyban A.P. Early Development of Mammals. Leningrad, 1988 (in Russian); Essex M.J., Boyce W.T., Hertzman C., Lam L.L., Armstrong J.M., Neumann S.M.A., Kobor M.S. Epigenetic vestiges of early developmental adversity: childhood stress exposure and DNA methylation in adolescence. Child Dev. 2013;84(1):58-75. DOI 10.1111/j.1467-8624.2011.01641.x; Graf A.V., Dunaeva T.Y., Maklakova A.S., Maslova M.V., Sokolova N.A., Trofimova L.K. Transgenerational consequences of acute antenatal stress in pregnant rats. Rossiyskiy Fiziologicheskiy Zhurnal imeni Ivana Mikhaylovicha Sechenova = Russian Journal of Physiology. 2012;98(3):331-341 (in Russian); Grundwald N.J., Brunton P.J. Prenatal stress programs neuroendocrine stress responses and affective behaviors in second generation rats in a sex-dependent manner. Psychoneuroendocrinology. 2015;62: 204-216. DOI 10.1016/j.psyneuen.2015.08.010; Guilbert F., Lumineau S., Kotrschal K., Mostl E., Richard-Yris M., Houdelier C. Trans-generational effects of prenatal stress in quail. Proc. Biol. Sci. 2012;280(1753):20122368. DOI 10.1098/rspb.2012.2368; Halliwell B., Gutteridge J.M.C. Free Radicals in Biology and Medicine. New York: Oxford University Press, 2007; Huerta-Cervantes M., Peña-Montes D.J., López-Vázquez M.A., Montoya-Pérez R., Cortés-Rojo C., Olvera-Cortés M.E., Saavedra-Molina A. Effects of gestational diabetes in cognitive behavior, oxidative stress and metabolism on the second-generation off-spring of rats. Nutrients. 2021;13(5):1575. DOI 10.3390/nu13051575; Levinson A.L., Igonina T.N., Rozhkova I.N., Brusentsev E.Yu., Amstislavsky S.Ya. Psycho-emotional stress, folliculogenesis, and reproductive technologies: clinical and experimental data. Vavilovskii Zhurnal Genetiki i Selektsii = Vavilov Journal of Genetics and Breeding. 2022;26(5):431-441. DOI 10.18699/VJGB-22-53 (in Russian); Levitsky E.L., Gubsky J.I. Free radical damage of the nuclear genetic apparatus of cells. Ukrainskiy Biokhimicheskiy Zhurnal = The Ukrainian Biochemical Journal. 1994;66(4):18-30 (in Russian); Marcondes F.K., Miguel K.J., Melo L.L., Spadari-Bratfisch R.C. Estrous cycle influences the response of female rats in the elevated plus-maze test. Physiol. Behav. 2001;74(4-5):435-440. DOI 10.1016/s0031-9384(01)00593-5; Matthews S.G., Phillips D.I. Transgenerational inheritance of stress pathology. Exp. Neurol. 2012;233(1):95-101. DOI 10.1016/j.expneurol.2011.01.009; Miller C.R., Halbing A.A., Patisaul H.B., Meitzen J. Interaction of the estrous cycle, novelty and light on female and male rat open field locomotor ant anxiety-related behaviors. Physiol. Behav. 2021;228: 113203. DOI 10.1016/j.physbeh.2020.113203; Moisiadis V.G., Constantinof A., Kostaki A., Szyf M., Matthews S. Prenatal glucocorticoid exposure modifies endocrine function and behavior for 3 generations following maternal and paternal transmission. Sci. Rep. 2017;7(1):11814. DOI 10.1038/s41598-017-11635-w; Mora S., Dussaubat N., Diaz-Veliz G. Effects of the estrous cycle and ovarian hormones on behavioral indices of anxiety in female rats. Psychoneuroendocrinology. 1996;21(7):609-620. DOI 10.1016/s0306-4530(96)00015-7; Ordyan N.E., Pivina S.G. Behavioral characteristics and stress reaction of the pituitary-adrenal system in prenatally stressed rats. Rossiyskiy Fiziologicheskiy Zhurnal imeni Ivana Mikhaylovicha Sechenova = Russian Journal of Physiology. 2003;89(1):52-59 (in Russian); Piquer B., Ruz F., Barra R., Lara H.E. Gestational sympathetic stress programs the fertility of offspring: a rat multi-generation study. Int. J. Environ. Res. Public Health. 2022;19(5):3044. DOI 10.3390/ijerph19053044; Pivina S.G., Rakitskaya V.V., Shamolina T.S., Ordyan N.E. Change of the uterus morphometric parameters in the prenatally stressed rats. Rossiyskiy Fiziologicheskiy Zhurnal imeni Ivana Mikhaylovicha Sechenova = Russian Journal of Physiology. 2010;96(6):621-626 (in Russian); Provençal N., Binder E.B. The effect of early life stress on the epigenome: from the womb to adulthood and even before. Exp. Neurol. 2015;268:10-20. DOI 10.1016/j.expneurol.2014.09.001; Reznikov A.G., Pishak V.P., Nosenko N.D., Tkachyuk S.S., Myslitskiy V.F. Prenatal Stress and Neuroendocrine Pathology. Chernivtsi: Medacademia Publ., 2004 (in Russian); Rice D., Barone S. Critical periods of vulnerability for the developing nervous system: evidence from humans and animal models. Environ. Health Perspect. 2000;108(Suppl. 3):511-533. DOI 10.1289/ehp.00108s3511; Rodgers A.B., Bale T.L. Germ cell origins of posttraumatic stress disorder risk: the transgenerational impact of parental stress experience. Biol. Psychiatry. 2015;78(5):307-314. DOI 10.1016/j.biopsych.2015.03.018; Sanches-Garrido M.A., Garcia-Galiano D., Tena-Sempere M. Early programming of reproductive health and fertility: novel neuroendocrine mechanisms and implications in reproductive medicine. Hum. Reprod. Update. 2022;28(3):346-375. DOI 10.1093/humupd/dmac005; Thompson L.P., Al-Hasan Y. Impact of oxidative stress in fetal programming. J. Pregnancy. 2012;2012:582748. DOI 10.1155/2012/582748; Yao S., Lopes-Tello J., Sferruzzi-Perri A.N. Developmental programming of the female reproductive system – a review. Biol. Reprod. 2021;104(4):745-770. DOI 10.1093/biolre/ioaa232; Zaidan H., Gaisler-Salomon I. Prereproductive stress in adolescent female rats affects behavior and corticosterone levels in secondgeneration offspring. Psychoneuroendocrinology. 2015;58:120-129. DOI 10.1016/j.psyneuen.2015.04.013; Zhang H.-L., Yi M., Li D., Li R., Zhao Y., Qiao J. Transgenerational inheritance of reproductive and metabolic phenotypes in PCOS rats. Front. Endocrinol. 2020;11:144. DOI 10.3389/fendo.2020.00144; https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/4181
-
17Academic Journal
Authors: I. G. Trukhanova, D. S. Zinatullina, A. D. Gureev, И. Г. Труханова, Д. С. Зинатуллина, А. Д. Гуреев
Contributors: The study has no sponsorship, Исследование не имеет спонсорской поддержки
Source: Russian Sklifosovsky Journal "Emergency Medical Care"; Том 13, № 2 (2024); 280-287 ; Журнал им. Н.В. Склифосовского «Неотложная медицинская помощь»; Том 13, № 2 (2024); 280-287 ; 2541-8017 ; 2223-9022
Subject Terms: токсикогипоксическая энцефалопатия, antihypoxants, antioxidant properties/antioxidants, lipid peroxidation, neurotoxicity, acute poisoning, toxic-hypoxic encephalopathy, антигипоксанты, антиоксидантные свойства/антиоксиданты, перекисное окисление липидов, нейротоксичность, острые отравления
File Description: application/pdf
Relation: https://www.jnmp.ru/jour/article/view/1892/1466; Zaridze D, Lewington S, Boroda A, Scelo G, Karpov R, Lazarev A. Alcohol and mortality in Russia: prospective observational study of 151 000 adults. Lancet. 2014;383(9927):1465–1473. doi:10.1016/S0140-6736(13)62247-3; Острая интоксикация психоактивными веществами. Клинические рекомендации. Москва; 2020. URL: https://narco42.ru/wp-content/uploads/2022/03/kr591.pdf [Дата обращения 15 мая 2024 г.]; Роспотребнадзор по РТ: в 2022 году зарегистрировано почти 3 тысячи острых отравлений в быту. Казань; 2022. URL: https://realnoevremya.ru/news/273684-sredi-tatarstancev-sokratilos-chislo-ostryh-otravleniy-himicheskoy-etiologii?ysclid=m0p2k2j0m5428312583 [Дата обращения 15 мая 2024 г.]; Отравление. URL: https://yandex.ru/q/health/263401474/ [Дата обращения 15 мая 2024 г.]; World Health Organisation. World drug report 2018. URL: https://www.unodc.org/wdr2018/ [Дата обращения 15 Мая 2024 г.]; В США рекордно выросла смертность от передозировки наркотиков. 14. 07. 2021. URL: https://lenta.ru/news/2021/07/14/overdoze_record/ [Дата обращения 15 мая 2024 г.]; Международный комитет по контролю над наркотиками. Доклад за 2021 год. Организация Объединенных Наций. Вена, 2022. URL: https://unis.unvienna.org/pdf/2022/INCB/INCB_2021_Report_R.pdf [Дата обращения 15 мая 2024 г.]; «Убийца наркоманов»: США переживает бум смертности из-за передозировки фентанилом. URL: https://vk.com/wall-8771122_56653?ysclid=m0p2myofvu666234589 [Дата обращения 15 мая 2024 г.]; Лужников Е.А. Медицинская токсикология. Национальное руководство. Москва: ГЭОТАР-Медиа; 2014.; Афанасьев В.В. Руководство по неотложной токсикологии. Краснодар: Просвещение-Юг; 2012.; Малин Д.И., Зайцев Д.А. К вопросу о безопасности назначения антипсихотиков после перенесенного злокачественного нейролептического синдрома при лечении больных шизофренией. Российский психиатрический журнал. 2019;(2):49–53. URL: https://cyberleninka.ru/article/n/k-voprosu-o-bezopasnosti-naznacheniya-antipsihotikov-posle-perenesyonnogo-zlokachestvennogo-neyrolepticheskogo-sindroma-pri-lechenii?ysclid=m0p4lgnzjo855894343; Отравление психотропными средствами, не классифицированное в других рубриках (T43). Клинические рекомендации. Москва; 2018. [Электронный ресурс]. URL: https://drive.google.com/file/d/1wvD1adJhq5a0BrdzEisBQY8v8Ofzrj5V/view [Дата обращения 15 мая 2024 г.]; ВОЗ. Самоубийство. URL: https://www.who.int/ru/news-room/fact-sheets/detail/suicide [Дата обращения 15 мая 2024 г.]; Мягков А.Ю., Журавлева И.В., Журавлева С.Л. Суицидальное поведение молодежи: масштабы, основные формы и факторы. Социологический журнал. 2003;(1):48–70.; Черепанова М.И. Социальные условия и факторы суицидального поведения молодежи. Известия Алтайского государственного университета. 2016;(2–2):231–234.; Катаманова Е.В., Константинова Т.Н., Андреева О.К., Брежнева И.А. Нейрофизиологические критерии диагностики нейротоксикаций. Известия Самарского научного центра Российской академии наук. 2011;13(1–7):1706–1709.; Катаманова Е.В., Рукавишников В.С., Лахман О.Л., Шевченко О.И., Денисова И.А. Когнитивные нарушения при токсическом поражении мозга. Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. 2015;115(2):11–15. doi:10.17116/jnevro20151152111-15; Головко А.И., Ивницкий Ю.Ю., Иванов М.Б., Рейнюк В.Л. Универсальность феномена «нейротоксичность» (обзор литературы). Токсикологический вестник. 2021;29(5):4–16. doi:10.36946/0869-7922-2021-29-5-4-16; Лужников Е.А., Костомарова Л.Г. Острые отравления. Руководство для врачей. 2-е изд., перераб. и доп. Москва: Медицина; 2000.; Калмансон М.Л. Гипоксия и ее коррекция у больных с острыми отравлениями ядами нейротропного действия : aвтореф. дис. . д-ра мед. наук. Санкт-Петербург; 2001. URL: https://vivaldi.nlr.ru/bd000124147/view/#page=1 [Дата обращения 15 мая 2024 г.]; Ливанов Г.А., Мороз В.В., Батоцыренов Б.В., Лодягин А.Н., Андрианов А.Ю., Базарова В.Г. Пути фармакологической коррекции последствий гипоксии при критических состояниях у больных с острыми отравлениями. Анестезиология и реаниматология. 2003;(2):51–54.; Лужников Е.А., Леженина Н., Гольдфарб Ю.С., Епифанова Н.М. Особенности формирования и течения токсико-гипоксической энцефалопатии при острых отравлениях веществами нейротоксического действия. Анестезиология и реаниматология. 2005;(6):4–8.; Ливанов Г.А., Батоцыренов Б.В., Калмансон М.Л., Лодягин А.Н., Васильев С.А. Коррекция критических состояний при острых отравлениях ядами нейротропного действия на раннем госпитальном этапе. Скорая медицинская помощь. 2005;6(1):47–52.; Ливанов Г.А., Лодягин А.Н., Батоцыренов Б.В., Лоладзе А.Т. Фармакологическая коррекция токсико-гипоксической энцефалопатии у больных с тяжелыми формами острых отравлений. Вестник экстренной медицины. 2017;11(3):51–54.; Лодягин А.Н., Ливанов Г.А., Шикалова И.А., Шестова Г.В., Батоцыренов Б.В., Глушков С.И., и др. Острые отравления лекарственными средствами группы Т43.0-Т43.9 (антидепрессантами, нейролептиками, психостимулирующими и нормотимическими препаратами) : пособие для врачей / под. ред. В.Е. Парфенова. Санкт-Петербург; 2018. doi:10.23682/120532; Бабкина А.С., Рыжков И.А., Антонова В.В., Цоколаева З.И., Асанов А. Р., Калабушев С.Н., и др. Морфологические и функциональные изменения сердечно-сосудистой системы при остром отравлении клозапином (экспериментальное исследование). Общая реаниматология. 2019;15(4):67–75. doi:10.15360/1813-9779-2019-4-67-75; Литвинцев Б.С., Константинов Д.П., Ефимцев А.Ю., Петров А.Д., Фомичев А.В., Сосюкин А.Е., и др. Неврологические аспекты современной наркомании. Токсикологический вестник. 2020;(2):25–29. doi:10.36946/0869-7922-2020-2-24-28; Березина И.Ю., Бадалян А.В., Сумский Л.И., Гольдфарб Ю.С. Динамика электроэнцефалографических и психофизиологических показателей при острых отравлениях нейротоксикантами на этапе реабилитации на фоне различных методов лечения. Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. 2017;(2):53–63. doi:10.17116/jnevro20171172153-63; Стаканов А.А., Чуприков А.А. Применение препарата Мексидол в комплексном лечении больных с острым отравлением психодислептиками // Материалы III научно-практической олимпиады «Мексидол: 20 лет в клинической практике», 2019. – С. 440–442.; Мишукова А.Ю. Применение препарата мексидола в терапии острой интоксикации синтетическими наркотиками и абстинентных состояний в результате их употребления // Материалы III научно-практической олимпиады «Мексидол: 20 лет в клинической практике», 2019. – С. 428–430.; Гофман А.Г., Кожинова Т.А. Методические рекомендации по применению Мексидола в качестве средства для купирования алкогольного абстинентного синдрома. Москва; 1999.; Федин А.И., Румянцева С.А. Избранные вопросы базисной интенсивной терапии нарушений мозгового кровообращения : методические указания. Москва: Интермедика; 2002.; Chen Y. Organophosphate-induced brain damage: mechanisms, neuropsychiatric and neurological consequences, and potential therapeutic strategies. Neurotoxicology. 2012;33(3):391–400. PMID: 22498093 doi:10.1016/j.neuro.2012.03.011; Оковитый С.В., Шуленин С.Н., Смирнов А.В. Клиническая фармакология антиоксидантов. Санкт-Петербург: ФАРМиндекс; 2005. С. 85–111.; Узбеков М.Г. Перекисное окисление липидов и антиоксидантные системы при психических заболеваниях. Сообщение II. Социальная и клиническая психиатрия. 2015;25(4):92–101.; Узбеков М.Г. Перекисное окисление липидов и антиоксидантные системы при психических заболеваниях. Сообщение V. Социальная и клиническая психиатрия. 2017;27(3):106–110.; Гаврилова О.А. Особенности процесса перекисного окисления липидов в норме и при некоторых патологических состояниях у детей (обзор литературы). Acta biomedica scientifica. 2017;2(4):15–22. doi:10.12737/article_59fad50f919f18.64819381; Зайцев В.Г., Островский О.В., Закревский В.И. Связь между химическим строением и мишенью действия как основа классификации антиоксидантов прямого действия. Экспериментальная и клиническая фармакология. 2003;66(4):66–70.; Семикашева О.В., Якупова Л.Р., Борисов И.М., Сафиулин Р.Л. Количественный анализ антиоксидантной активности лекарственного препарата «Мексидол». Химико-фармацевтический журнал. 2020;54(12):52–55. doi:10.30906/0023-1134-2020-54-12-52-55; Саковец Т.Г. Эффективность препарата Мексидол в лечении нейропатий различной этиологии // Материалы III научно-практической олимпиады «Мексидол: 20 лет в клинической практике», 2019. – С. 261–266.; Илюк Р.Д., Громыко Д.И., Тархан А.У., Пименова Л.В. Нейро-когнитивные расстройства у больных неосложненной опиатной зависимостью и их нейропсихологическая диагностика. Экология человека. 2010;(6):52–60.; Фаршатов Р.С., Хафизов Н.Х., Кильдебекова Р.Н., Савлуков А.И. Нарушения когнитивных функций у больных острой алкогольной интоксикацией и их коррекция препаратами с антиоксидантной активностью. Фундаментальные исследования. 2012;(7–1):208–210.; Косенко В.Г., Карагезян Е.А., Лунева Л.В., Смоленко Л.Ф. Применение мексидола в психиатрической практике. Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. 2006;106(6):38–41.; Сизов С.В. Профилактика экстрапирамидных побочных эффектов антипсихотиков при терапии шизофрении с использованием препарата Мексидол // Материалы III научно-практической олимпиады «Мексидол: 20 лет в клинической практике», 2019. – С. 435–438.; Чуприков А.В. Применение препарата Мексидол в лечении больных с острым отравлением спиртосодержащими жидкостями с преимущественным поражением печени // Материалы III научно-практической олимпиады «Мексидол: 20 лет в клинической практике», 2019. – С. 453–456.; Фаращук Н.Ф. Mексидол и гепатит: результаты в эксперименте и перспективы в клинике. Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 2006;(S1):242–249.; Пирогова И.Ю., Пономарева И.Ю., Синицын С.П. Исходы токсических гепатитов, вызванных суррогатами алкоголя. Российский журнал гастроэнтерологии, гепатологии, колопроктологии. 2013;23(6):49–56.; Алехнович А.В., Ильяшенко К.К., Ельков А.Н., Леженина Н.Ф., Ливанов А.С. Сравнительная оценка клинической эффективности антигипоксантов у больных с острыми отравлениями психотропными препаратами. Общая реаниматология. 2009;5(1):58–60.; https://www.jnmp.ru/jour/article/view/1892
-
18Academic Journal
Contributors: This study was not sponsored, Спонсорская поддержка отсутствовала
Source: PULMONOLOGIYA; Том 34, № 5 (2024); 624-633 ; Пульмонология; Том 34, № 5 (2024); 624-633 ; 2541-9617 ; 0869-0189
Subject Terms: передача сигнала, Alzheimer’s disease, cancer, cardiac arrest, clinical trial, heme, hydrogen medicine, lipid peroxide, metabolic syndrome, multiple functions, oxidation, porphyrin, signal transduction, quarity-of-life, болезнь Альцгеймера, рак, остановка сердца, клиническое исследование, гем, водородная медицина, перекисное окисление липидов, метаболический синдром, множественные функции, окисление, порфирин
File Description: application/pdf
Relation: https://journal.pulmonology.ru/pulm/article/view/4512/3691; https://journal.pulmonology.ru/pulm/article/view/4512/3693; https://journal.pulmonology.ru/pulm/article/downloadSuppFile/4512/2724; https://journal.pulmonology.ru/pulm/article/downloadSuppFile/4512/2726; Yagi T., Higuchi Y. Studies on hydrogenase. Proc. Jpn. Acad. Ser. B Phys. Biol. Sci. 2013; 89 (1): 16–33. DOI:10.2183/pjab.89.16.; Hansen M., Perner M. Hydrogenase gene distribution and H2 consumption ability within the Thiomicrospira lineage. Front. Microbiol. 2016; 7; 99. DOI:10.3389/fmicb.2016.00099.; Ohsawa I., Ishikawa M., Takahashi K. et al. Hydrogen acts as a therapeutic antioxidant by selectively reducing cytotoxic oxygen radicals. Nat. Med. 2007; 13 (6): 688–694. DOI:10.1038/nm1577.; Ohta S. Development of hydrogen medicine and biology: potential for various applications in diverse fields. Curr. Pharm. Des. 2021; 27 (5): 583–584. DOI:10.2174/138161282705210211144515.; Ohta S. Molecular hydrogen as a preventive and therapeutic medical gas: initiation, development and potential of hydrogen medicine. Pharmacol. Ther. 2014; 144 (1): 1–11. DOI:10.1016/j.pharmthera.2014.04.006.; Li L., Lou W., Kong L., Shen W. Hydrogen commonly applicable from medicine to agriculture: from molecular mechanisms to the field. Curr. Pharm. Des. 2021; 27 (5): 747–759. DOI:10.2174/1381612826666201207220051.; Sano M., Ichihara G., Katsumata Y. et al. Pharmacokinetics of a single inhalation of hydrogen gas in pigs. PLoS One. 2020; 15 96): e0234626. DOI:10.1371/journal.pone.0234626.; Ichihara G., Katsumata Y., Moriyama H. et al. Pharmacokinetics of hydrogen after ingesting a hydrogen-rich solution: a study in pigs. Heliyon. 2021; 7 (11): e08359. DOI:10.1016/j.heliyon.2021.e08359.; Li J., Wang C., Zhang J.H. et al. Hydrogen-rich saline improves memory function in a rat model of amyloid-beta-induced Alzheimer's disease by reduction of oxidative stress. Brain Res. 2010; 1328: 152–161. DOI:10.1016/j.brainres.2010.02.046.; Takahashi H. Application of hydrogen in ophthalmology. Curr. Pharm. Des. 2021; 27 (5): 592–594. DOI:10.2174/1381612826666201019103446.; Fontanari P., Badier M., Guillot C. et al. Changes in maximal performance of inspiratory and skeletal muscles during and after the 7.1-MPa Hydra 10 record human dive. Eur. J. Appl. Physiol. 2000; 81 (4): 325–328. DOI:10.1007/s004210050050.; Cole A.R., Sperotto F., DiNardo J.A. et al. Safety of prolonged inhalation of hydrogen gas in air in healthy adults. Crit. Care Explor. 2021; 3 (10): e543. DOI:10.1097/cce.0000000000000543.; Ohta S. Direct targets and subsequent pathways for molecular hydrogen to exert multiple functions: focusing on interventions in radical reactions. Curr. Pharm. Des. 2021; 27 (5): 595–609. DOI:10.2174/1381612826666200806101137.; Wood K.C., Gladwin M.T. The hydrogen highway to reperfusion therapy. Nat. Med. 2007; 13 (6): 673–674. DOI:10.1038/nm0607-673.; Jin Z., Zhao P., Gong W. et al. Fe-porphyrin: a redox-related biosensor of hydrogen molecule. Nano Research. 2023; 16 (2): 2020–2025. DOI:10.1007/s12274-022-4860-y.; Sun X., Ohta S., Zhang J.H. Discovery of a hydrogen molecular target. Med. Gas Res. 2023; 13 (2): 41–42. DOI:10.4103/2045-9912.356472.; Ohta S. Molecular hydrogen may activate the transcription factor Nrf2 to alleviate oxidative stress through the hydrogen-targeted porphyrin. Aging Pathobiol. Ther. 2023; 5 (1): 25–32. DOI:10.31491/APT.2023.03.104.; Zhou Y., Wu H., Zhao M. et al. The Bach family of transcription factors: a comprehensive review. Clin. Rev. Allergy Immunol. 2016; 50 (3): 345–356. DOI:10.1007/s12016-016-8538-7.; Igarashi K., Kurosaki T., Roychoudhuri R. BACH transcription factors in innate and adaptive immunity. Nat. Rev. Immunol. 2017; 17 (7): 437–450. DOI:10.1038/nri.2017.26.; Song Q., Mao X., Jing M. et al. Pathophysiological role of BACH transcription factors in digestive system diseases. Front. Physiol. 2023; 14: 1121353. DOI:10.3389/fphys.2023.1121353.; Dixon S.J., Pratt D.A. Ferroptosis: A flexible constellation of related biochemical mechanisms. Mol. Cell. 2023; 83 (7): 1030–1042. DOI:10.1016/j.molcel.2023.03.005.; Iuchi K., Nishimaki K., Kamimura N., Ohta S. Molecular hydrogen suppresses free-radical-induced cell death by mitigating fatty acid peroxidation and mitochondrial dysfunction. Can. J. Physiol. Pharmacol. 2019; 97 (10): 999–1005. DOI:10.1139/cjpp-2018-0741.; Kamimura N., Ichimiya H., Iuchi K., Ohta S. Molecular hydrogen stimulates the gene expression of transcriptional coactivator PGC-1α to enhance fatty acid metabolism. NPJ. Aging. Mech. Dis. 2016; 2: 16008. DOI:10.1038/npjamd.2016.8.; Luchi K., Imoto A., Kamimura N. et al. Molecular hydrogen regulates gene expression by modifying the free radical chain reaction-dependent generation of oxidized phospholipid mediators. Sci. Rep. 2016; 6: 18971. DOI:10.1038/srep18971.; Matsumoto A., Yamafuji M., Tachibana T. et al. Oral 'hydrogen water' induces neuroprotective ghrelin secretion in mice. Sci. Rep. 2013; 3: 3273. DOI:10.1038/srep03273.; Kamimura N., Nishimaki K., Ohsawa I., Ohta S. Molecular hydrogen improves obesity and diabetes by inducing hepatic FGF21 and stimulating energy metabolism in db/db mice. Obesity (Silver Spring). 2011; 19 (7): 1396–1403. DOI:10.1038/oby.2011.6.; Nicolson G.L., de Mattos G.F., Settineri R. et al. Clinical effects of hydrogen administration: from animal and human diseases to exercise medicine. Int. J. Clin. Med. 2016; 7 (1): 32–76. DOI:10.4236/ijcm.2016.71005.; Johnsen H.M., Hiorth M., Klaveness J. Molecular hydrogen therapy-a review on clinical studies and outcomes. Molecules. 2023; 28 (23): 7785. DOI:10.3390/molecules28237785.; Mizuno K., Sasaki A.T., Ebisu K. et al. Hydrogen-rich water for improvements of mood, anxiety, and autonomic nerve function in daily life. Med. Gas Res. 2018; 7 (4): 247–255. DOI:10.4103/2045-9912.222448.; Mikami T., Tano K., Lee H. et al. Drinking hydrogen water enhances endurance and relieves psychometric fatigue: a randomized, double-blind, placebo-controlled study. Can. J. Physiol. Pharmacol. 2019; 97 (9): 857–862. DOI:10.1139/cjpp-2019-0059.; Botek M., Krejci J., McKune A.J., Sladeckova B. Hydrogen-rich water supplementation and up-hill running performance: effect of athlete performance level. Int. J. Sports Physiol. Perform. 2020; 15 (8): 1193–1196. DOI:10.1123/ijspp.2019-0507.; Ostojic S.M. Hydrogen gas as an exotic performance-enhancing agent: challenges and opportunities. Curr. Pharm. Des. 2021; 27 (5): 723–730. DOI:10.2174/1381612826666200922155242.; Botek M., Krejci J., McKune A. et al. Hydrogen rich water consumption positively affects muscle performance, lactate response, and alleviates delayed onset of muscle soreness after resistance training. J. Strength Cond. Res. 2022; 36 (10): 2792–2799. DOI:10.1519/jsc.0000000000003979.; Zhou K., Liu M., Wang Y. et al. Effects of molecular hydrogen supplementation on fatigue and aerobic capacity in healthy adults: a systematic review and meta-analysis. Front. Nutr. 2023; 10: 1094767. DOI:10.3389/fnut.2023.1094767.; Liu H., Kang X., Ren P. et al. Hydrogen gas ameliorates acute alcoholic liver injury via anti-inflammatory and antioxidant effects and regulation of intestinal microbiota. Int. Immunopharmacol. 2023; 120: 110252. DOI:10.1016/j.intimp.2023.110252.; Lv X., Lu Y., Ding G. et al. Hydrogen intake relieves alcohol consumption and hangover symptoms in healthy adults: a randomized and placebo-controlled crossover study. Am. J. Clin. Nutr. 2022; 116 (5): 1208–1218. DOI:10.1093/ajcn/nqac261.; Hu A., Yamaguchi T., Tabuchi M. et al. A pilot study to evaluate the potential therapeutic effect of hydrogen-water bathing on atopic dermatitis in humans. Adv. Integr. Med. 2024; 11 (1): 2–9. DOI:10.1016/j.aimed.2023.10.003.; Bajgai J., Lee K.J., Rahman M.H. et al. Role of molecular hydrogen in skin diseases and its impact in beauty. Curr. Pharm. Des. 2021; 27 (5): 737–746. DOI:10.2174/1381612826666200925124235.; Dhillon G., Buddhavarapu V., Grewal H. et al. Hydrogen water: extra healthy or a hoax? – A systematic review. In. J. Mol. Sci. 2024; 25 (2): 973. DOI:10.3390/ijms25020973.; Ono H., Nishijima Y., Ohta S. et al. Hydrogen gas inhalation treatment in acute cerebral infarction: a randomized controlled clinical study on safety and neuroprotection. J. Stroke Cerebrovasc. Dis. 2017; 26 (11): 2587–2594. DOI:10.1016/j.jstrokecerebrovasdis.2017.06.012.; Hayashida K., Sano M., Kamimura N. et al. Hydrogen inhalation during normoxic resuscitation improves neurological outcome in a rat model of cardiac arrest independently of targeted temperature management. Circulation. 2014; 130 (24): 2173–2180. DOI:10.1161/circulationaha.114.011848.; Tamura T., Suzuki M., Homma K. et al. Efficacy of inhaled hydrogen on neurological outcome following brain ischaemia during post-cardiac arrest care (HYBRID II): a multi-centre, randomised, double-blind, placebo-controlled trial. EClinicalMedicine. 2023; 58: 101907. DOI:10.1016/j.eclinm.2023.101907.; Qin S. Role of Hydrogen in atherosclerotic disease: from bench to Bedside. Curr. Pharm. Des. 2021; 27 (5): 713–722. DOI:10.2174/1381612826666201124112152.; Ohsawa I., Nishimaki K., Yamagata K. et al. Consumption of hydrogen water prevents atherosclerosis in apolipoprotein E knockout mice. Biochem. Biophys. Res. Commun. 2008; 377 (4): 1195–1198. DOI:10.1016/j.bbrc.2008.10.156.; Todorovic N., Fernández-Landa J., Santibañez A. et al. The effects of hydrogen-rich water on blood lipid profiles in clinical populations: a systematic review and meta-analysis. Pharmaceuticals (Basel). 2023; 16 (2): 142. DOI:10.3390/ph16020142.; Nagata K., Nakashima-Kamimura N., Mikami T. et al. Consumption of molecular hydrogen prevents the stress-induced impairments in hippocampus-dependent learning tasks during chronic physical restraint in mice. Neuropsychopharmacology. 2009; 34 (2): 501–508. DOI:10.1038/npp.2008.95.; Nishimaki K., Asada T., Ohsawa I. et al. Effects of molecular hydrogen assessed by an animal model and a randomized clinical study on mild cognitive impairment. Curr. Alzheimer Res. 2018; 15 (5): 482–492. DOI:10.2174/1567205014666171106145017.; Kueper J.K., Speechley M., Montero-Odasso M. The Alzheimer's disease assessment scale-cognitive subscale (ADAS-Cog): modifications and responsiveness in pre-dementia populations. A narrative review. J. Alzheimers Dis. 2018; 63 (2): 423–444. DOI:10.3233/jad-170991.; Ayyubova G. APOE4 is a risk factor and potential therapeutic target for Alzheimer's disease. CNS Neurol. Disord. Drug Targets. 2024; 23 (3): 342–352. DOI:10.2174/1871527322666230303114425.; Alm K.H., Bakker A. Relationships between diffusion tensor imaging and cerebrospinal fluid metrics in early stages of the Alzheimer's disease continuum. J. Alzheimers Dis. 2019; 70 (4): 965–981. DOI:10.3233/jad-181210.; Ono H., Nishijima Y., Ohta S. Therapeutic inhalation of hydrogen gas for Alzheimer's disease patients and subsequent long-term follow-up as a disease-modifying treatment: An open label pilot study. Pharmaceuticals (Basel). 2023; 16 (3): 434. DOI:10.3390/ph16030434.; Ono H., Nishijima Y., Sakamoto M. et al. Long-term inhalation of hydrogen gas for patients with advanced Alzheimer's disease: a case report showing improvement in fecal Incontinence. Med. Res. Arch. 2022; 10 (7). DOI:10.18103/mra.v10i7.2951.; Rahman M.H., Bajgai J., Sharma S. et al. Effects of hydrogen gas inhalation on community-dwelling adults of various ages: a single-arm, open-label, prospective clinical trial. Antioxidants (Basel). 2023; 12 (6): 1241. DOI:10.3390/antiox12061241.; Dan Z., Li H., Xie J. Efficacy of donepezil plus hydrogen-oxygen mixture inhalation for treatment of patients with Alzheimer disease: a retrospective study. Medicine (Baltimore). 2023; 102 (30): e34382. DOI:10.1097/md.0000000000034382.; He J., Liu F., Xu T. et al. The role of hydrogen therapy in Alzheimer's disease management: Insights into mechanisms, administration routes, and future challenges. Biomed. Pharmacother. 2023; 168: 115807. DOI:10.1016/j.biopha.2023.115807.; Nakashima-Kamimura N., Mori T., Ohsawa I. et al. Molecular hydrogen alleviates nephrotoxicity induced by an anti-cancer drug cisplatin without compromising anti-tumor activity in mice. Cancer Chemother. Pharmacol. 2009; 64 (4): 753–761. DOI:10.1007/s00280-008-0924-2.; Kang K.M., Kang Y.N., Choi I.B. et al. Effects of drinking hydrogen-rich water on the quality of life of patients treated with radiotherapy for liver tumors. Med. Gas Res. 2011; 1 (1): 11. DOI:10.1186/2045-9912-1-11.; Akagi J., Baba H. Hydrogen gas restores exhausted CD8+ T cells in patients with advanced colorectal cancer to improve prognosis. Oncol. Rep. 2019; 41 (1): 301–311. DOI:10.3892/or.2018.6841.; Akagi J., Baba H. Hydrogen gas activates coenzyme Q10 to restore exhausted CD8(+) T cells, especially PD-1(+)Tim3(+)terminal CD8(+) T cells, leading to better nivolumab outcomes in patients with lung cancer. Oncol. Lett. 2020; 20 (5): 258. DOI:10.3892/ol.2020.12121.; Mohd Noor M.N.Z., Alauddin A.S., Wong Y.H. et al. A systematic review of molecular hydrogen therapy in cancer management. Asian Pac. J. Cancer Prev. 2023; 24 (1): 37–47. DOI:10.31557/apjcp.2023.24.1.37.; https://journal.pulmonology.ru/pulm/article/view/4512
-
19Academic Journal
Authors: Darenskaya M.A., Kazantseva E.D., Petrova A.G., Rychkova L.V., Kolesnikov S.I., Semenova N.V., Kurashova N.A., Lesnaya A.S., Sholokhov L.F., Kolesnikova L.I.
Contributors: 1
Source: Russian Journal of Infection and Immunity; Vol 14, No 4 (2024); 719-730 ; Инфекция и иммунитет; Vol 14, No 4 (2024); 719-730 ; 2313-7398 ; 2220-7619
Subject Terms: influenza, acute respiratory viral infections, children, preschool age, cytokines, lipid peroxidation, antioxidant defense, intoxication, грипп, острые респираторные вирусные инфекции, дети, дошкольный возраст, цитокины, перекисное окисление липидов, антиоксидантная защита, интоксикация
File Description: application/pdf
Relation: https://iimmun.ru/iimm/article/view/17573/2052; https://iimmun.ru/iimm/article/view/17573/2101; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/17573/136377; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/17573/136378; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/17573/136379; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/17573/136380; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/17573/136381; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/17573/136382; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/17573/136383; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/17573/136384; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/17573/136385; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/17573/136386; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/17573/136387; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/17573/136551; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/17573/136552; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/17573/136553; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/17573/136554; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/17573/136555; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/17573/136556; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/17573/137867; https://iimmun.ru/iimm/article/view/17573
-
20Academic Journal
Authors: Konev, A.D., Aksenov, I.V., Tutelyan, V.A.
Source: Biomedical Chemistry: Research and Methods; Vol. 7 No. 2 (2024); e00215 ; Biomedical Chemistry: Research and Methods; Том 7 № 2 (2024); e00215 ; 2618-7531
Subject Terms: liver homogenate, 2-thiobarbituric acid, butylated hydroxytoluene, derivatization temperature, malondialdehyde, lipid peroxidation, гомогенат печени, 2-тиобарбитуровая кислота, бутилгидрокситолуол, температура дериватизации, малоновый диальдегид, перекисное окисление липидов
File Description: application/pdf; text/html
Relation: http://www.bmc-rm.org/index.php/BMCRM/article/view/215/523; http://www.bmc-rm.org/index.php/BMCRM/article/view/215/540; http://www.bmc-rm.org/index.php/BMCRM/article/view/215/541
Availability: http://www.bmc-rm.org/index.php/BMCRM/article/view/215