Showing 1 - 20 results of 276 for search '"ОКИСЛИТЕЛЬНАЯ МОДИФИКАЦИЯ БЕЛКОВ"', query time: 0.79s Refine Results
  1. 1
  2. 2
    Academic Journal

    Source: Medical Immunology (Russia); Том 26, № 4 (2024); 671-676 ; Медицинская иммунология; Том 26, № 4 (2024); 671-676 ; 2313-741X ; 1563-0625

    File Description: application/pdf

    Relation: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/3032/1961; Бекман Э.М., Баранова О.А., Губарева Е.В., Шуленина Л.В., Москвина С.Н., Данилогорская Ю.А., Азизова О.А. Оценка устойчивости к оксидативному стрессу плазмы крови по уровню окисляемости белков и липидов при металлкатализируемом окислении // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины, 2006. Т. 142, № 9. С. 268-272.; Карпищенко А.И. Медицинские лабораторные технологии. CПб.: Интермедика, 1998. Т. 2. 656 c.; Носарева О.Л., Степовая Е.А., Шахристова Е.В., Алексеева О.Н., Кузьменко Д.И., Садыкова А.А., Новицкий В.В. Роль редокс-статуса и окислительной модификации белков в реализации апоптоза лимфоцитов крови человека в норме и при экспериментальном окислительном стрессе // Российский физиологический журнал им. И.М. Сеченова, 2019. Т. 105, № 3. С. 327-338. doi:10.1134/S0869813919030063.; Burchill B.R., Oliver J.M., Pearson C.B., Leinbach E.D., Berlin R.D. Microtubule dynamics and glutathione metabolism in phagocytizing human polymorphonuclear leukocytes. J. Cell Biol., 1978, Vol. 76, no. 2, pp. 439-447.; Cohen G.M. Caspases: the executioners of apoptosis. Biochem. J., 1997, Vol. 326, pp. 1-16.; Davies K.J. Protein damage and degradation by oxygen radicals. 1. General aspects. J. Biol. Chem., 1987, Vol. 262, pp. 9895-9901.; Halliwell B., Whiteman M. Measuring reactive species and oxidative damage in vivo and in cell culture: how should you do it and what do the results mean? Br. J. Pharmacol., 2004, Vol. 142, no. 2, pp. 231-255.; Kojima S., Nakayama K., Ishida H. Low dose gamma-rays activate immune functions via induction of glutathione and delay tumor growth. J. Radiat. Res., 2004, Vol. 45, no. 1, pp. 33-39.; Laragione T., Bonetto V., Casoni F., Massignan T., Bianchi G., Gianazza E., Ghezzi P. Redox regulation of surface protein thiols: identification of integrin-4 as a molecular target by using redox proteomics. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 2003, Vol. 100, no. 25, pp. 14737-14741. doi:10.1073/pnas.2434516100.; Nicholson D.W. Caspase structure, proteolytic substrates, and function during apoptotic cell death. Cell Death and Differ., 1999, Vol. 6, pp. 1028-1042.; Thom S.R., Elbuken M.E. Oxygen-dependent antagonism of lipid peroxidation. Free Radic. Biol. Med., 1991, Vol. 10, no. 6, pp. 413-426.; Todosenko N., Khaziakhmatova O., Malashchenko V., Yurova K., Bograya M., Beletskaya M., Vulf M., Mikhailova L., Minchenko A., Soroko I., Khlusov I., Litvinova L. Adipocyte- and monocyte-mediated vicious circle of inflammation and obesity (review of cellular and molecular mechanisms). Int. J. Mol. Sci., 2023, Vol., 24, no. 15, 12259. doi:10.3390/ijms241512259.; Worthington D.J., Rosemeyer M.A. Glutathione reductase from human erythrocytes. Catalytic properties and aggregation. Eur. J. Biochem., 1976, Vol. 67, no. 1, pp. 231-238.; Zhang Z., Zhao L., Zhou X., Meng X., Zhou X. Role of inflammation, immunity, and oxidative stress in hypertension: New insights and potential therapeutic targets. Front. Immunol., 2023, Vol. 13, 1098725. doi:10.3389/ fimmu.2022.1098725.; Zhou J., Zhu Z., Bai C., Sun H., Wang X. Proteomic profiling of lymphocytes in autoimmunity, inflammation and cancer. J. Transl. Med., 2014, Vol. 12, 6. doi:10.1186/1479-5876-12-6.; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/3032

  3. 3
  4. 4
  5. 5
    Academic Journal

    Contributors: The study was supported by the Foundation for Assistance to Small Innovative Enterprises in Science and Technology within the UMNIK program (agreement No. 15583GU/2020 of 05.07.2020), RFBR, and the Chelyabinsk region (Project No. 20-415-740016)., Исследование выполнено при финансовой поддержке ФГБУ «Фонд содействия развитию малых форм предприятий в научно-технической сфере» по программе «У.М.Н.И.К.» (договор № 15583ГУ/2020 от 05.07.2020), РФФИ и Челябинской области (проект № 20-415-740016).

    Source: Bulletin of Siberian Medicine; Том 21, № 1 (2022); 89-95 ; Бюллетень сибирской медицины; Том 21, № 1 (2022); 89-95 ; 1819-3684 ; 1682-0363 ; 10.20538/1682-0363-2022-21-1

    File Description: application/pdf

    Relation: https://bulletin.tomsk.ru/jour/article/view/4702/3160; https://bulletin.tomsk.ru/jour/article/view/4702/3183; Осиков М.В. Роль орозомукоида в регуляции активности систем плазменного протеолиза при экспериментальной почечной недостаточности. Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 2009;48(7):27–30.; Осиков М.В. Влияние эритропоэтина на процессы свободно-радикального окисления и экспрессию гликопротеинов в тромбоцитах при хронической почечной недостаточности. Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 2014;157(1):30–33.; Осиков М.В., Телешева Л.Ф., Агеев Ю.И. Влияние эритропоэтина на апоптоз лимфоцитов при экспериментальной хронической почечной недостаточности. Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 2015;159(3):326–329.; Osikov M.V., Telesheva L.F., Ageev Y.I. Antioxidant effect of erythropoietin during experimental chronic renal failure. Bulletin of Experimental Biology and Medicine. 2015;160(2): 202–204. DOI:10.1007/s10517-015-3128-x.; Gus E.I., Shahrokhi S., Jeschke M.G. Anabolic and anticatabolic agents used in burn care: What is known and what is yet to be learned. Burns. 2020;46(1):19–32. DOI:10.1016/j.burns.2018.03.009.; Mitran M.I., Nicolae I., Tampa M., Mitran C.I., Caruntu C., Sarbu M.I. et al. Reactive сarbonyl species as potential pro-oxidant factors involved in lichen planus pathogenesis. Metabolites. 2019;9(10):E213. DOI:10.3390/metabo9100213.; Qin F.J., Hu X.H., Chen Z., Chen X., Shen Y.M. Protective effects of tiopronin against oxidative stress in severely burned patients. Drug Des. Devel. Ther. 2019;13:2827–2832. DOI:10.2147/dddt.s215927.; AbuBakr H.O., Aljuaydi S.H., Abou-Zeid S.M., El-Bahrawy A. Burn-induced multiple organ injury and protective effect of lutein in rats. Inflammation. 2018;41(3):760–772. DOI:10.1007/s10753-018-0730-x.; Hawkins C.L., Davies M.J. Detection, identification, and quantification of oxidative protein modifications. J. Biol. Chem. 2019;294(51):19683–19708. DOI:10.1074/jbc.rev119.006217.; Gürünlüoğlu K., Demircan M., Taşçı A., Üremiş M.M., Türköz Y., Bağ H.G. et al. The effects of two different burn dressings on serum oxidative stress indicators in children with partial burn. J. Burn. Care Res. 2019;40(4):444–450. DOI:10.1093/jbcr/irz037.; Zhao Y.Yu., Shen Y., Liu Q., Zhao Z., Sharma R., Reiter R.J. Melatonin synthesis and function: evolutionary history in animals and plants. Front. Endocrinol. (Lausanne). 2019;10:249. DOI:10.3389/fendo.2019.00249.; Slominski A.T., Semak I., Fischer T.W., Kim T.K., Kleszczyński K., Hardeland R. et al. Metabolism of melatonin in the skin: Why is it important? Exp. Dermatol. 2017;26(7):563–568. DOI:10.1111/exd.13208.; Janjetovic Z., Jarrett S.G., Lee E.F., Duprey C., Reiter R.J., Slominski A.T. Melatonin and its metabolites protect human melanocytes against UVB-induced damage: Involvement of NRF2-mediated pathways. Sci. Rep. 2017;7(1):1274. DOI:10.1038/s41598-017-01305-2.; Rusanova I., Martínez-Ruiz L., Florido J., Rodríguez-Santana C., Guerra-Librero A., Acuña-Castroviejo D. et al. Protective effects of melatonin on the skin: future perspectives. Int. J. Mol. Sci. 2019;20(19):4948. DOI:10.3390/ijms20194948.; Tordjman S., Chokron S., Delorme R., Charrier A., Bellissant É., Jaafari N. et al. Melatonin: pharmacology, functions and therapeutic benefits. Curr. Neuropharmacol. 2017;15(3):434–443. DOI:10.2174/1570159x14666161228122115.; Львовская Е.И., Волчегорский И.А., Шемяков С.Е., Лифшиц Р.И. Спектрофотометрическое определение конечных продуктов. Вопросы медицинской химии. 1991;37(4):92–93.; Фомина М.А., Абаленихина Ю.В. Способ комплексной оценки содержания продуктов окислительной модификации белков в тканях и биологических жидкостях: методические рекомендации. Рязань: РИО РязГМУ, 2014:60.; Olczyk P., Komosinska-Vassev K., Ramos P., Mencner Ł., Olczyk K., Pilawa B. Application of numerical analysis of the shape of electron paramagnetic resonance spectra for determination of the number of different groups of radicals in the burn wounds. Oxid. Med. Cell Longev. 2017;2017:4683102. DOI:10.1155/2017/4683102.; Nakazawa H., Ikeda K., Shinozaki S., Yasuhara S., Yu Y.M., Martyn J.A.J. et al. Coenzyme Q10 protects against burn-induced mitochondrial dysfunction and impaired insulin signaling in mouse skeletal muscle. FEBS Open Bio. 2019;9(2):348–363. DOI:10.1002/2211-5463.12580.; Lee Y.H., Bang E.S., Lee J.H., Lee J.D., Kang D.R., Hong J. et al. Serum concentrations of trace elements zinc, copper, selenium, and manganese in critically Ill patients. Biol. Trace Elem. Res. 2019;188(2):316–325. DOI:10.1007/s12011-018-1429-4.; Samuel T.J., Nelson M.D., Nasirian A., Jaffery M., Moralez G., Romero S.A. et al. Cardiac structure and function in well-healed burn survivors. J. Burn. Care Res. 2019;40(2):235–241. DOI:10.1093/jbcr/irz008.; Valacchi G., Virgili F., Cervellati C. et al. OxInflammation: from subclinicalcCondition to pathological biomarker. Front. Physiol. 2018;9:858. DOI:10.3389/fphys.2018.00858.; Lee J., Cho Y.S., Jung H., Choi I. Pharmacological regulation of oxidative stress in stem cells. Oxid. Med. Cell. Longev. 2018;2018:4081890. DOI:10.1155/2018/4081890.; Slominski A.T., Zmijewski M.A., Semak I., Kim T.K., Janjetovic Z., Slominski R.M. et al. Melatonin, mitochondria, and the skin. Cell Mol. Life Sci. 2017;74(21):3913–3925. DOI:10.1007/s00018-017-2617-7.; Reiter R.J., Rosales-Corral S., Tan D.X., Jou M.J., Galano A., Xu B. Melatonin as a mitochondria-targeted antioxidant: one of evolution’s best ideas. Cell Mol. Life Sci. 2017;74(21):3863-3881. DOI:10.1007/s00018-017-2609-7.; https://bulletin.tomsk.ru/jour/article/view/4702

  6. 6
  7. 7
    Academic Journal

    Source: Bukovinian Medical Herald; Vol. 13 No. 4 (52) (2009); 191-192
    Буковинский медицинский вестник; Том 13 № 4 (52) (2009); 191-192
    Буковинський медичний вісник; Том 13 № 4 (52) (2009); 191-192

    File Description: application/pdf

  8. 8
  9. 9
    Academic Journal

    Source: Bukovinian Medical Herald; Vol. 14 No. 4 (56) (2010); 129-132 ; Буковинский медицинский вестник; Том 14 № 4 (56) (2010); 129-132 ; Буковинський медичний вісник; Том 14 № 4 (56) (2010); 129-132 ; 2413-0737 ; 1684-7903

    File Description: application/pdf

  10. 10
    Academic Journal

    Source: Bukovinian Medical Herald; Vol. 16 No. 4 (64) (2012); 181-183 ; Буковинский медицинский вестник; Том 16 № 4 (64) (2012); 181-183 ; Буковинський медичний вісник; Том 16 № 4 (64) (2012); 181-183 ; 2413-0737 ; 1684-7903

    File Description: application/pdf

  11. 11
  12. 12
    Academic Journal

    Source: Bukovinian Medical Herald; Vol. 15 No. 1(57) (2011); 119-123 ; Буковинский медицинский вестник; Том 15 № 1(57) (2011); 119-123 ; Буковинський медичний вісник; Том 15 № 1(57) (2011); 119-123 ; 2413-0737 ; 1684-7903

    File Description: application/pdf

  13. 13
  14. 14
  15. 15
  16. 16
    Academic Journal

    Source: Буковинський медичний вісник; Том 15 № 1(57) (2011); 139-143
    Буковинский медицинский вестник; Том 15 № 1(57) (2011); 139-143
    Bukovinian Medical Herald; Vol. 15 No. 1(57) (2011); 139-143

    File Description: application/pdf

  17. 17
  18. 18
    Academic Journal

    Source: Clinical anatomy and operative surgery; Vol. 7 No. 1 (2008); 25-29
    Клиническая анатомия и оперативная хирургия; Том 7 № 1 (2008); 25-29
    Клінічна анатомія та оперативна хірургія; Том 7 № 1 (2008); 25-29

    File Description: application/pdf

  19. 19
  20. 20
    Academic Journal

    Source: Medical and Clinical Chemistry; No. 2 (2019); 49-54 ; Медицинская и клиническая химия; № 2 (2019); 49-54 ; Медична та клінічна хімія; № 2 (2019); 49-54 ; 2414-9934 ; 2410-681X ; 10.11603/mcch.2410-681X.2019.v.i2

    File Description: application/pdf