Analysis of fatty acid profiles of micronutrients and pharmaceuticals based on omega-3 polyunsaturated fatty acid extracts from natural sources ; Анализ жирнокислотных профилей микронутриентных и фармацевтических препаратов на основе экстрактов омега-3 полиненасыщенных жирных кислот из природных источников

Authors: I. Yu. Torshin, O. A. Gromova, A. A. Garanin, И. Ю. Торшин, О. А. Громова, А. А. Гаранин

Source: FARMAKOEKONOMIKA. Modern Pharmacoeconomics and Pharmacoepidemiology; Vol 18, No 2 (2025); 199-218 ; ФАРМАКОЭКОНОМИКА. Современная фармакоэкономика и фармакоэпидемиология; Vol 18, No 2 (2025); 199-218 ; 2070-4933 ; 2070-4909

Subject Terms: фармакоинформатика, omega-3 polyunsaturated fatty acids, cardioprotection, neuroprotection, ophthalmoprotection, metric data analysis, topological data analysis, pharmacoinformatics, омега-3 полиненасыщенные жирные кислоты, кардиопротекция, нейропротекция, офтальмопротекция, метрический анализ данных, топологический анализ данных

File Description: application/pdf

Relation: https://www.pharmacoeconomics.ru/jour/article/view/1205/615; Мареев Ю.В., Ежов М.В., Виллевальде С.В. и др. Сердечно-сосудистые эффекты применения омега-3 полиненасыщенных жирных кислот: позиция омега-3 полиненасыщенных жирных кислот в Российских и международных рекомендациях. Совет экспертов. Кардиология. 2023; 63 (2): 11–8. https://doi.org/10.18087/cardio.2023.2.n2388.; Торшин И.Ю., Громова О.А., Кобалава Ж.Д. О репрессиях ω-3 полиненасыщенных жирных кислот адептами доказательной медицины. ФАРМАКОЭКОНОМИКА. Современная фармакоэкономика и фармакоэпидемиология. 2019; 12 (2): 91–114. https://doi.org/10.17749/2070-4909.2019.12.2.91-114.; Громова О.А., Торшин И.Ю., Гришина Т.Р., Малявская С.И. Омега-3-полиненасыщенные жирные кислоты в поддержке беременности и развития плода: вопросы дозирования. Гинекология. 2020; 22 (5): 61–9. https://doi.org/10.26442/20795696.2020.5.200423.; Громова О.А., Торшин И.Ю., Галустян А.Н., Громов А.Н. О возможности использования стандартизированных форм омега-3 полиненасыщенных жирных кислот в терапии тромбофилий. Молекулярные механизмы и доказательная медицина. Журнал «Поликлиника». 2019; 3: 6–11.; Громова О.А., Торшин И.Ю., Калачева А.Г. и др. Перспективы использования стандартизированных форм омега-3 полиненасыщенных жирных кислот в неврологии. Журнал неврологии и психиатрии им. C.C. Корсакова. 2012; 112 (1): 101–5.; Лиманова О.А., Громова О.А., Торшин И.Ю. и др. Низкое потребление омега-3 полиненасыщенных жирных кислот и риск различных заболеваний у женщин репродуктивного возраста. Русский медицинский журнал. 2017; 9: 33–45.; Cholewski M., Tomczykowa M., Tomczyk M. A comprehensive review of chemistry, sources and bioavailability of omega-3 fatty acids. Nutrients. 2018; 10 (11): 1662. https://doi.org/10.3390/nu10111662.; Mason R.P., Sherratt S.C.R. Omega-3 fatty acid fish oil dietary supplements contain saturated fats and oxidized lipids that may interfere with their intended biological benefits. Biochem Biophys Res Commun. 2017; 483 (1): 425–9. https://doi.org/10.1016/j.bbrc.2016.12.127.; Sciotto C., Mjøs S.A. Trans isomers of EPA and DHA in omega-3 products on the European market. Lipids. 2012; 47 (7): 659–67. https://doi.org/10.1007/s11745-012-3672-3.; Alasalvar C., Taylor K.D., Öksüz A., et al. Differentiation of cultured and wild sea bass (Dicentrarchus labrax): total lipid content, fatty acid and trace mineral composition. Molecules. 2021; 26 (22): 6836. https://doi.org/10.3390/molecules26226836.; Schulz H., Baranska M., Baranski R. Potential of FT-Raman spectroscopy in the quality control of dietary supplements based on fish oil. J Agric Food Chem. 2017; 65 (15): 3123–30. https://doi.org/10.1021/acs.jafc.6b05777.; Avula B., Wang Y.H., Ali Z., et al. Quantitative determination of omega-3 fatty acids in fish oil capsules by ¹H NMR. Phytochem Anal. 2014; 25 (6): 567–73. https://doi.org/10.1002/pca.2525.; Man Y.B., Haryati Y., Nor Aini I., Ismail A. Comparison of FTIR spectra of oxidized and non-oxidized soybean oil. Food Chem. 1999; 69 (3): 289–95. https://doi.org/10.1016/S0308-8146(99)00224-2.; Masood A., Stark K.D., Salem N. Jr. A simplified and efficient method for the analysis of fatty acid methyl esters suitable for large clinical studies. J Lipid Res. 2005; 46 (10): 2299–305. https://doi.org/10.1194/jlr.D500014-JLR200.; Торшин И.Ю., Громова О.А., Зайчик Б.Ц., Ружицкий А.О. Комплексное исследование состава экстрактов жира рыб и количественные критерии для различения стандартизированных экстрактов омега-3 полиненасыщенных жирных кислот. Кардиология. 2020; 60 (5): 47–56. https://doi.org/10.18087/cardio.2020.5.n1053.; Torshin I.Y. On solvability, regularity, and locality of the problem of genome annotation. Pattern Recognit Image Anal. 2010; 20: 386–95. https://doi.org/10.1134/S1054661810030156.; Рудаков К.В., Торшин И.Ю. Вопросы разрешимости задачи распознавания вторичной структуры белка. Информатика и ее применения. 2010; 4 (2): 25–35.; Торшин И.Ю. О задачах оптимизации, возникающих при применении топологического анализа данных к поиску алгоритмов прогнозирования с фиксированными корректорами. Информатика и ee применения. 2023; 17 (2): 2–10. https://doi.org/10.14357/19922264230201.; Торшин И.Ю. О формировании множеств прецедентов на основе таблиц разнородных признаковых описаний методами топологической теории анализа данных. Информатика и ee применения. 2023; 17 (3): 2–7. https://doi.org/10.14357/19922264230301.; Торшин И.Ю. О применении топологического подхода к анализу плохо формализуемых задач для построения алгоритмов виртуального скрининга квантово-механических свойств органических молекул. I: Основы проблемно ориентированной теории. Информатика и ee применения. 2022; 16 (1): 39–45. https://doi.org/10.14357/19922264220106.; Ghebremeskel K., Min Y., Crawford M.A., et al. Blood fatty acid composition of pregnant and nonpregnant Korean women: red cells may act as a reservoir of arachidonic acid and docosahexaenoic acid for utilization by the developing fetus. Lipids. 2000; 35 (5): 567–74. https://doi.org/10.1007/s11745-000-557-3.; De Felice C., Signorini C., Durand T., et al. Partial rescue of Rett syndrome by ω-3 polyunsaturated fatty acids (PUFAs) oil. Genes Nutr. 2012; 7 (3): 447–58. https://doi.org/10.1007/s12263-012-0285-7.; https://www.pharmacoeconomics.ru/jour/article/view/1205

Availability: https://www.pharmacoeconomics.ru/jour/article/view/1205
https://doi.org/10.17749/2070-4909/farmakoekonomika.2025.312

Perioperative cardioprotection as a measure to reduce the risk of posthospital cardiovascular complications (cohort study) ; Периоперационная кардиопротекция как мера снижения риска постгоспитальных сердечно-сосудистых осложнений (когортное исследование)

Authors: D. A. Sokolov, I. A. Kozlov, Д. А. Соколов, И. А. Козлов

Source: Messenger of ANESTHESIOLOGY AND RESUSCITATION; Том 22, № 1 (2025); 6-15 ; Вестник анестезиологии и реаниматологии; Том 22, № 1 (2025); 6-15 ; 2541-8653 ; 2078-5658

Subject Terms: фосфокреатин, non-cardiac surgery, vascular surgery, perioperative cardioprotection, dexmedetomidine, phosphocreatin, некардиальная хирургия, операции на сосудах, периоперационная кардиопротекция, дексмедетомидин

File Description: application/pdf

Relation: https://www.vair-journal.com/jour/article/view/1151/772; Заболотских И. Б., Потиевская В. И., Баутин А. Е. и др. Периоперационное ведение пациентов с ишемической болезнью сердца // Анестезиология и реаниматология. – 2020. – № 3. – С. 5–16. https://doi.org/10.17116/anaesthesiology20200315.; Козлов И. А., Соколов Д. А., Любошевский П. А. Эффективность дексмедетомидиновой кардиопротекции при операциях на сосудах у больных высокого кардиального риска // Вестник анестезиологии и реаниматологии. – 2024. – Т. 21, № 2. – С. 6–17. https://doi.org/10.24884/2078-5658-2024-21-2-6-17.; Козлов И. А., Соколов Д. А., Любошевский П. А. Эффективность фосфокреатиновой кардиопротекции при операциях на сосудах у больных высокого кардиального риска // Вестник анестезиологии и реаниматологии. – 2024. Т. 21, № 3. – С. 6–16. https://doi.org/10.24884/2078-5658-2024-21-3-6-16.; Мурашко С. С., Бернс С. А., Пасечник И. Н. Сердечно-сосудистые осложнения в некардиальной хирургии: что остается вне поля зрения? // Кардиоваскулярная терапия и профилактика. – 2024. – Т. 23, № 1. – С. 3748. https://doi.org/10.15829/1728-8800-2024-3748.; Соколов Д. А., Каграманян М. А., Козлов И. А. Расчетные гематологические индексы как предикторы сердечно-сосудистых осложнений в некардиальной хирургии (пилотное исследование) // Вестник анестезиологии и реаниматологии. – 2022. – Т. 19, № 2. – С. 14–22. https://doi.org/10.21292/2078-5658-2022-19-2-14-22.; Соколов Д. А., Любошевский П. А., Староверов И. Н., Козлов И. А. Постгоспитальные сердечно-сосудистые осложнения у больных, перенесших некардиохирургические операции // Вестник анестезиологии и реаниматологии. –2021. – Т. 18, № 4. – С. 62–72. https://doi.org/10.21292/2078-5658-2021-18-4-62-72.; Сумин А. Н., Дупляков Д. В., Белялов Ф. И. и др. Рекомендации по оценке и коррекции сердечнососудистых рисков при несердечных операциях. Российское кардиологическое общество // Российский кардиологический журнал. – 2023. – Т. 28, № 8. – С. 5555. https://doi.org/10.15829/1560-4071-20235555.; Чаулин А. М., Григорьева Ю. В., Павлова Т. В. и др. Диагностическая ценность клинического анализа крови при сердечно-сосудистых заболеваниях // Российский кардиологический журнал. – 2020. – Т. 25, № 12. – С. 172–177. https://doi.org/10.15829/1560-4071-2020-3923.; Ackland G. L., Abbott T. E. F., Cain D. et al. Preoperative systemic inflammationand perioperative myocardial injury. – P. prospective observational multicentre cohort study of patients undergoing non-cardiac surgery // British J. Anaesth. – 2019. – Vol. 122, № 2. – P. 180–187. https://doi.org/10.1016/j.bja.2018.09.002.; Álvarez-Garcia J., Popova E., Vives-Borrás M. et al. Myocardial injury after major non-cardiac surgery evaluated with advanced cardiac imaging: a pilot study // BMC Cardiovasc Disord. – 2023. – Vol. 23, № 1. – P. 78. https://doi.org/10.1186/s12872-023-03065-6.; Beaulieu R. J., Sutzko D. C., Albright J. et al. Association of high mortality with postoperative myocardial infarction after major vascular surgery despite use of evidence-based therapies // JAMA Surg. – 2020. – Vol. 155, № 2. – P. 131–137. https://doi.org/10.1001/jamasurg.2019.4908.; Bhutta H., Agha R., Wong J. et al. Neutrophil-lymphocyte ratio predicts medium-term survival following elective major vascular surgery: a cross-sectional study // Vasc. Endovasc. Surg. – 2011. – Vol. 45, № 3. – P. 227–231. https://doi.org/10.1177/1538574410396590.; Bignami E., Greco T., Barile L. et al. The effect of isoflurane on survival and myocardial infarction: a meta-analysis of randomized controlled studies // J Cardiothorac Vasc Anesth. – 2013. – Vol. 27, № 1. – P. 50-58. https://doi.org/10.1053/j.jvca.2012.06.007.; Blessberger H., Lewis S. R., Pritchard M. W. et al. Perioperative beta-blockers for preventing surgery-related mortality and morbidity in adults undergoing non-cardiac surgery // Cochrane Database Syst Rev. – 2019. – Vol. 9, № 9. – P. CD013438. https://doi.org/10.1002/14651858.CD013438.; Borger M., von Haefen C., Bührer C. et al. Cardioprotective effects of dexmedetomidine in an oxidative-stress in vitro model of neonatal rat cardiomyocytes // Antioxidants (Basel). – 2023. – Vol. 12, № 6. – P. 1206. https://doi.org/10.3390/antiox12061206.; Choi B., Oh A. R., Park J. et al. Perioperative adverse cardiac events and mortality after non-cardiac surgery: a multicenter study // Korean J Anesthesiol. – 2024. – Vol. 77, № 1. – P. 66–76. https://doi.org/10.4097/kja.23043.; Devereaux P. J., Duceppe E., Guyatt G. et al. MANAGE Investigators. Dabigatran in patients with myocardial injury after non-cardiac surgery (MANAGE): an international, randomised, placebo-controlled trial // Lancet. – 2018. – Vol. 391, № 10137. – P. 2325–2334. https://doi.org/10.1016/S0140-6736(18)30832-8.; Devereaux P. J., Goldman L., Cook D. J. et al. Perioperative cardiac events in patients undergoing noncardiac surgery: a review of the magnitude of the problem, the pathophysiology of the events and methods to estimate and communicate risk // CMAJ. – 2005. – Vol. 173, № 6. – P. 627–634. https://doi.org/10.1503/cmaj.050011.; Durmus G., Belen E., Can M. M. Increased neutrophil to lymphocyte ratio predicts myocardial injury in patients undergoing non-cardiac surgery // Heart Lung. – 2018. – Vol. 47, № 3. – P. 243–247. https://doi.org/10.1016/j.hrtlng.2018.01.005.; Gillis C., Ljungqvist O., Carli F. Prehabilitation, enhanced recovery after surgery, or both? A narrative review // Br J Anaesth. – 2022. – Vol. 128, № 3. – P. 434–448. https://doi.org/10.1016/j.bja.2021.12.007.; Green S. B. How many subjects does it take to do a regression analysis // Multivariate Behav Res. – 1991. – Vol. 26, № 3. – P. 499–510. https://doi.org/10.1207/s15327906mbr2603_7.; Halvorsen S., Mehilli J., Cassese S. et al. ESC Scientific Document GrouP. 2022 ESC Guidelines on cardiovascular assessment and management of patients undergoing non-cardiac surgery // Eur Heart J. – 2022. – Vol. 43, № 39. – P. 3826–3924. https://doi.org/10.1093/eurheartj/ehac270.; Handke J., Scholz A. S., Gillmann H. J. et al. elevated presepsin is associated with perioperative major adverse cardiovascular and cerebrovascular complications in elevated-risk patients undergoing noncardiac surgery: the leukocytes and cardiovascular perioperative events study // Anesth Analg. – 2019. – Vol. 128, № 6. – P. 1344–1353. https://doi.org/10.1213/ANE.0000000000003738.; Imtiaz F., Shafique K., Mirza S. S. et al. Neutrophil lymphocyte ratio as a measure of systemic inflammation in prevalent chronic diseases in Asian population // Int. Arch. Med. – 2012. – Vol. 5, № 1. – P. 2. https://doi.org/10.1186/1755-7682-5-2.; Kampman J. M., Hermanides J., Hollmann M. W. et al. Mortality and morbidity after total intravenous anaesthesia versus inhalational anaesthesia: a systematic review and meta-analysis // EClinicalMedicine. – 2024. – Vol. 72. – P. 102636. https://doi.org/10.1016/j.eclinm.2024.102636.; Khan A., Johnson D. K., Carlson S. et al. NT-Pro BNP predicts myocardial injury post-vascular surgery and is reduced with CoQ10: a randomized double-blind trial // Ann Vasc Surg. – 2020. – Vol. 64. – P. 292–302. https://doi.org/10.1016/j.avsg.2019.09.017.; Larmann J., Handke J., Scholz A. S. et al. Preoperative neutrophil to lymphocyte ratio and latelet to lymphocyte ratio are associated with major adverse cardiovascular and cerebrovascular events in coronary heart disease patients undergoing non-cardiac surgery // BMC Cardiovascular Disorders. – 2020. – Vol. 20. – P. 230–239. https://doi.org/10.1186/s12872-020-01500-6.; Lawrence C. J., Prinzen F. W., de Lange S. The effect of dexmedetomidine on the balance of myocardial energy requirement and oxygen supply and demand // Anesth Analg. – 1996. – Vol. 82, № 3. – P. 544–550. https://doi.org/10.1097/00000539-199603000-00021.; Ling M. Y., Song Y. P., Liu C. et al. Protection of exogenous phosphocreatine for myocardium in percutaneous coronary intervention related to inflammation // Rev Cardiovasc Med. – 2022. – Vol. 23, № 3. – P. 89. https://doi.org/10.31083/j.rcm2303089.; Lionetti V., Barile L. Perioperative cardioprotection: back to bedside. Minerva Anestesiol. – 2020. – Vol. 86, № 4. – P. 445–454. https://doi.org/10.23736/S0375-9393.19.13848-5.; Mangano D. T., Browner W. S., Hollenberg M. et al. Long-term cardiac prognosis following noncardiac surgery. The Study of Perioperative Ischemia Research Group // JAMA. – 1992. – Vol. 268, № 2. – P. 233–239. https://doi.org/10.1001/jama.268.2.233.; Mastroroberto P., Chello M., Zofrea S. et al. Cardioprotective Effects of Phosphocreatine in Vascular Surgery // Vasc Endovasc Surgery. – 1995. – Vol. 29, № 4. – P. 255–260. https://doi.org/10.1177/153857449502900401.; Oh A. R., Park J., Lee J. H. et al. Association between perioperative adverse cardiac events and mortality during one-year follow-up after noncardiac surgery // J Am Heart Assoc. – 2022. – Vol. 11, № 8. – P. e024325. https://doi.org/10.1161/JAHA.121.024325.; Paulus W. J., Tschöpe C. A novel paradigm for heart failure with preserved ejection fraction: comorbidities drive myocardial dysfunction and remodeling through coronary microvascular endothelial inflammation // J Am Coll Cardiol. – 2013. – Vol. 62, № 4. – P. 263–71. https://doi.org/10.1016/j.jacc.2013.02.092.; Puelacher C., Gualandro D. M., Glarner N. et al. BASEL-PMI Investigators. Long-term outcomes of perioperative myocardial infarction/injury after non-cardiac surgery // Eur Heart J. – 2023. – Vol. 44, № 19. – P. 1690–1701. https://doi.org/10.1093/eurheartj/ehac798.; Sazgary L., Puelacher C., Lurati Buse G. et al. BASEL-PMI Investigators. Incidence of major adverse cardiac events following non-cardiac surgery // Eur Heart J Acute Cardiovasc Care. – 2021. – Vol. 10, № 5. – P. 550–558. https://doi.org/10.1093/ehjacc/zuaa008.; Shannon A. H., Mehaffey J. H., Cullen J. M. et al. Preoperative beta blockade is associated with increased rates of 30-day major adverse cardiac events in critical limb ischemia patients undergoing infrainguinal revascularization // J Vasc Surg. – 2019. – Vol. 69, № 4. – P. 1167–1172.e1. https://doi.org/10.1016/j.jvs.2018.07.077.; Smilowitz N. R., Redel-Traub G., Hausvater A. et al. Myocardial Injury After Noncardiac Surgery: A Systematic Review and Meta-Analysis // Cardiol Rev. – 2019. – Vol. 27, № 6. – P. 267–273. https://doi.org/10.1097/CRD.0000000000000254.; Soliman R., Zohry G. The myocardial protective effect of dexmedetomidine in high-risk patients undergoing aortic vascular surgery // Ann Card Anaesth. – 2016. – Vol. 19, № 4. – P. 606–613. https://doi.org/10.4103/0971-9784.191570.; Strickland S. S., Quintela E. M., Wilson M. J., Lee M. J. Long-term major adverse cardiovascular events following myocardial injury after non-cardiac surgery: meta-analysis // BJS Open. – 2023. – Vol. 7, № 2. – P. zrad021. https://doi.org/10.1093/bjsopen/zrad021.; Strumia E., Pelliccia F., D’Ambrosio G. Creatine phosphate: pharmacological and clinical perspectives // Adv Ther. – 2012. – Vol. 29, № 2. – P. 99–123. https://doi.org/10.1007/s12325-011-0091-4.; Sultan P., Edwards M. R., Gutierrez del Arroyo A. et al. Cardiopulmonary exercise capacity and preoperative markers of inflammation // Mediators Inflamm. – 2014. – Vol. 2014. – P. 727451. https://doi.org/10.1155/2014/727451.; Torregroza C., Raupach A., Feige K. et al. Perioperative cardioprotection: general mechanisms and pharmacological approaches // Anesth Analg. – 2020. – Vol. 131, № 6. – P. 1765–1780. https://doi.org/10.1213/ANE.0000000000005243.; Wang K., Wu M., Xu J. et al. Effects of dexmedetomidine on perioperative stress, inflammation, and immune function: systematic review and meta-analysis // Br J Anaesth. – 2019. – Vol. 123, № 6. – P. 777–794. https://doi.org/10.1016/j.bja.2019.07.027.; Yan P., Chen S. Q., Li Z. P. et al. Effect of exogenous phosphocreatine on cardiomycytic apoptosisand expression of Bcl-2 and Bax after cardiopulmonary resuscitation in rats // World J. Emerg. Med. – 2011. – Vol. 2, № 4. – P. 291–295. https://doi.org/10.5847/wjem.j.1920-8642.2011.04.009.; Yang Y. F., Wang H., Song N. et al. Dexmedetomidine attenuates ischemia/reperfusion-induced myocardial inflammation and apoptosis through inhibiting endoplasmic reticulum stress signaling // J Inflamm Res. – 2021. – Vol. 14. – P. 1217–1233. https://doi.org/10.2147/jir.S292263.; Zhang W., Zhang H., Xing Y. Protective effects of phosphocreatine administered post-treatment combined with ischemic post-conditioning on rat hearts with myocardial ischemia/reperfusion injury // J. Clin. Med. Res. – 2015. – Vol. 7, № 4. – P. 242–247. https://doi.org/10.14740/jocmr2087w.

Availability: https://www.vair-journal.com/jour/article/view/1151
https://doi.org/10.24884/2078-5658-2025-22-1-6-15

Clinical Application of Xenon in Subanesthetic Concentrations (Review) ; Клиническое применение ксенона в субанестетических концентрациях (обзор)

Authors: M. E. Politov, S. V. Podprugina, E. N. Zolotova, P. V. Nogtev, Yu. S. Agakina, S. G. Zhukova, A. G. Yavorovsky, М. Е. Политов, С. В. Подпругина, Е. Н. Золотова, П. В. Ногтев, Ю. С. Агакина, С. Г. Жукова, А. Г. Яворовский

Source: General Reanimatology; Том 21, № 2 (2025); 55-67 ; Общая реаниматология; Том 21, № 2 (2025); 55-67 ; 2411-7110 ; 1813-9779

Subject Terms: органопротекция, xenon inhalation, therapeutic use of xenon, neuroprotection, stroke, traumatic brain injury, cardioprotection, myocardial infarction, withdrawal syndrome, neurotic disorders, oncology, chronic pain syndrome, organ protection, ингаляции ксенона, терапевтическое применение ксенона, нейропротекция, инсульт, черепно-мозговая травма, кардиопротекция, инфаркт миокарда, абстинентный синдром, невротические расстройства, онкология, хронический болевой синдром

File Description: application/pdf

Relation: https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/2554/1936; https://www.reanimatology.com/rmt/article/downloadSuppFile/2554/1212; https://www.reanimatology.com/rmt/article/downloadSuppFile/2554/1213; https://www.reanimatology.com/rmt/article/downloadSuppFile/2554/1214; Xia Y., Fang H., Xu J., Jia C., Tao G., Yu B. Clinical efficacy of xenon versus propofol: a systematic review and meta-analysis. Medicine. 2018; 97 (20): e10758. DOI:10.1097/MD.0000000000010758. PMID: 29768360.; Law L. S. C., Lo E. A. G., Gan T. J. Xenon anesthesia: a systematic review and meta-analysis of randomized controlled trials. Anesth. Analg. 2016; 122 (3): 678. DOI:10.1213/ANE.0000000000000914. PMID: 26273750.; Hou B., Li F., Ou S., Yang L., Zhou S. Comparison of recovery parameters for xenon versus other inhalation anesthetics: systematic review and meta-analysis. J. Clin. Anesth. 2016; 29: 65–74. DOI:10.1016/j.jclinane.2015.10.018. PMID: 26897451.; Лисиченко И. А., Гусаров В. Г. Выбор метода анестезиологического обеспечения у пациентов пожилого и старческого возраста при ортопедических вмешательствах (обзор). Общая реаниматология. 2022; 18 (3): 45–58.; De Deken J., Rex S., Monbaliu D., Pirenne J., Jochmans I. The Efficacy of Noble Gases in the Attenuation of Ischemia Reperfusion Injury: A Systematic Review and Meta-Analyses. Crit. Care Med. 2016; 44 (9): e886-e896. DOI:10.1097/CCM.0000000000001717. PMID: 27071065.; McGuigan S., Marie D. J., O’Bryan L. J., Flores F. J., Evered L., Silbert B., Scott D. A. The cellular mechanisms associated with the anesthetic and neuroprotective properties of xenon: a systematic review of the preclinical literature. Front. Neurosci. 2023; 17: 1225191. DOI:10.3389/fnins.2023.1225191.; Anna R., Rolf R., Mark C. Update of the organoprotective properties of xenon and argon: from bench to bedside. ICMx. 2020; 8 (1): 11. DOI:10.1186/s40635-020-0294-6. PMID: 32096000.; Liang M., Ahmad F., Dickinson R. Neuroprotection by the noble gases argon and xenon as treatments for acquired brain injury: a preclinical systematic review and meta-analysis. Br. J. Anaesth. 2022; 129 (2): 200–218. DOI:10.1016/j.bja.2022.04.016. PMID: 35688658.; Ершов А. В., Крюков И. А., Антонова В. В., Баева А. А. Влияние ксенона на активность гликоген-синтазы киназы-3β в перифокальной зоне ишемического инсульта. Общая реаниматология. 2023; 19 (2): 60–67. https://doi.org/10.15360/1813-9779-2023-2-2274; Рылова А. В., Беляев А. Ю., Лубнин А. Ю. Влияние ксенона на мозговой кровоток у нейрохирургических пациентов без внутричерепной гипертензии. Анестезиология и реаниматология. 2013; (4): 4–9.; Рылова А. В., Гаврилов А. Г., Лубнин А. Ю., Потапов А. А. Внутричерепное и церебральное перфузионное давление у нейрохирургических пациентов во время анестезии ксеноном. Анестезиология и реаниматология. 2014; (4): 19–25.; Васильев С. В., Владимиров С. А. Критерии безопасности воздействия субнаркотических доз ксенона на церебральную гемодинамику у пациентов с ишемическими поражениями ЦНС. J. Siberian Med. Sci. 2014; (6): 41.; Marion D. W., Crosby K. The Effect of Stable Xenon on ICP. J. Cereb. Blood Flow Metab. 1991; 11 (2): 347–350. DOI:10.1038/jcbfm.1991.69. PMID: 1997507.; Arola O. J., Laitio R. M., Roine R. O., Grönlund J., Saraste A., Pietilä M., Airaksinen J., Perttilä J., Scheinin H., Olkkola K. T., Maze M., Laitio T. T. Feasibility and cardiac safety of inhaled xenon in combination with therapeutic hypothermia following out-of-hospital cardiac arrest. Crit. Care Med. 2013; 41 (9): 2116–2124. DOI:10.1097/CCM.0b013e31828a4337. PMID: 23896830.; Arola O., Saraste A., Laitio R., Airaksinen J., Hynninen M., Bäcklund M., Ylikoski E., Wennervirta J., Pietilä M., Roine R. O., Harjola V. P., Niiranen J., Korpi K., Varpula M., Scheinin H., Maze M., Vahlberg T., Laitio T. Inhaled xenon attenuates myocardial damage in comatose survivors of out-of-hospital cardiac arrest: the xe-hypotheca trial. J. Am. Coll. Cardiol. 2017; 70 (21): 2652–2660. DOI:10.1016/j.jacc.2017.09.1088. PMID: 29169472.; Laitio R., Hynninen M., Arola O., Virtanen S., Parkkola R., Saunavaara J., Roine R. O., Grönlund J., Ylikoski E., Wennervirta J., Bäcklund M., Silvasti P., Nukarinen E., Tiainen M., Saraste A., Pietilä M., Airaksinen J., Valanne L., Martola J., Silvennoinen H., Scheinin H., Harjola V. P., Niiranen J., Korpi K., Varpula M., Inkinen O., Olkkola K. T., Maze M., Vahlberg T., Laitio T. Effect of inhaled xenon on cerebral white matter damage in comatose survivors of out-of-hospital cardiac arrest: a randomized clinical trial. JAMA. 2016; 315 (11): 1120. DOI:10.1001/jama.2016.1933. PMID: 26978207.; Azzopardi D., Robertson N. J., Kapetanakis A., Griffiths J., Rennie J. M., Mathieson S. R., Edwards A. D. Anticonvulsant effect of xenon on neonatal asphyxial seizures. Arch. Dis. Child. Fetal Neonatal Ed. 2013; 98 (5): F437-F439. DOI:10.1136/archdischild-2013-303786. PMID: 23572341.; Dingley J., Tooley J., Liu X., Scull-Brown E., Elstad M., Chakkarapani E., Sabir H., Thoresen M. Xenon ventilation during therapeutic hypothermia in neonatal encephalopathy: a feasibility study. Pediatrics. 2014; 133 (5): 809–818. DOI:10.1542/peds.2013-0787. PMID: 24777219.; Lazarev V. V., Golubev B. I., Brusov G. P., Tsypin L. E. Xenon in the treatment of super-refractory status epilepticus. Case report. Ann. Crit. Care. 2019; (4): 123–127. DOI:10.21320/1818-474X-2019-4-123-127.; Azzopardi D., Robertson N. J., Bainbridge A., Cady E., Charles-Edwards G., Deierl A., Fagiolo G., Franks N. P., Griffiths J., Hajnal J., Juszczak E., Kapetanakis B., Linsell L., Maze M., Omar O., Strohm B., Tusor N., Edwards A. D. Moderate hypothermia within 6 h of birth plus inhaled xenon versus moderate hypothermia alone after birth asphyxia (TOBY-Xe): a proof-of-concept, open-label, randomised controlled trial. Lancet Neurol. 2016; 15 (2): 145–153. DOI:10.1016/s1474-4422(15)00347-6. PMID: 26708675.; Гребенчиков О. А., Евсеев А. К., Кулабухов В. В., Кузовлев А. Н., Петриков С. С., Рамазанов Г. Р., Хусаинов Ш. Ж., Черпаков Р. А., Шабанов А. К., Шпичко А. И. Нейропротективные эффекты ингаляционной седации ксеноном в сравнении с внутривенной седацией пропофолом при тяжелом ишемическом инсульте. Журнал им. Н. В. Склифосовского «Неотложная медицинская помощь». 2022; 11 (4): 561–572. DOI:10.23934/2223-9022-2022-11-4-561-572.; Шпичко А. И., Кузовлев А. Н., Черпаков Р. А., Шпичко Н. П., Гребенчиков О. А., Евсеев А. К., Шабанов А. К., Петриков С. С. Новая стратегия лечения пациентов с длительным нарушением сознания с применением ксенона. Проспективное пилотное исследование. Журнал им. Н. В. Склифосовского «Неотложная медицинская помощь». 2022; 11 (4): 592–599. DOI:10.23934/2223-9022-2022-11-4-592-599.; Шпичко А. И., Черпаков Р. А., Шабанов А. К., Евсеев А. К., Горончаровская И. В., Гребенчиков О. А. Эффекты ксенона в отношении маркеров нейровоспаления. Проспективное пилотное исследование. Журнал им. Н. В. Склифосовского «Неотложная медицинская помощь». 2023; 12 (2): 250–258. DOI:10.23934/2223-9022-2023-12-2-250-258.; Mochalova E. G., Legostaeva L. A., Zimin A. A., Yusupova D. G., Sergeev D. V., Ryabinkina Y. V., Bodien Y., Suponeva N. A., Piradov M. A. The Russian version of Coma Recovery Scale-revised — a standardized method for assessment of patients with disorders of consciousness. Zh. Nevrol. Psikhiatr. Im. S.S. Korsakova. 2018; 118 (3): 25. DOI:10.17116/jnevro20181183225-3. PMID: 29798977.; Yang Y. S., Wu S. H., Chen W. C., Pei M. Q., Liu Y. B., Liu C. Y., Lin S., He H. F. Effects of xenon anesthesia on postoperative neurocognitive disorders: a systematic review and meta-analysis. BMC Anesthesiol. 2023; 23 (1): 366. DOI:10.1186/s12871-023-02316-5. PMID: 37946114.; Белкин А. А., Зислин Б. Д., Аврамченко А. А., Алашеев А. М., Сельский Д. В., Громов В. С., Доманский Д. С., Инюшкин С. Н., Почепко Д. В., Рудник Е. И., Солдатов А. С. Синдром острой церебральной недостаточности как концепция нейрореаниматологии. Анестезиология и реаниматология. 2008; (2): 4–8.; Laaksonen M., Rinne J., Rahi M., Posti J. P., Laitio R., Kivelev J., Saarenpää I., Laukka D., Frösen J., Ronkainen A., Bendel S., Långsjö J., Ala-Peijari M., Saunavaara J., Parkkola R., Nyman M., Martikainen I. K., Dickens A. M., Rinne J., Valtonen M., Saari T. I., Koivisto T., Bendel P., Roine T., Saraste A., Vahlberg T., Tanttari J., Laitio T. Effect of xenon on brain injury, neurological outcome, and survival in patients after aneurysmal subarachnoid hemorrhage — study protocol for a randomized clinical trial. Trials. 2023; 24 (1): 417. DOI:10.1186/s13063-023-07432-8. PMID: 37337295.; Hecker K. E., Horn N., Baumert J. H., Reyle-Hahn S. M., Heussen N., Rossaint R. Minimum alveolar concentration (MAC) of xenon in intubated swine. Br. J. Anaesth. 2004; 92 (3): 421–424. DOI:10.1093/bja/aeh077. PMID: 14742330.; Koblin D. D., Fang Z., Eger E. I., Laster M. J., Gong D., Ionescu P., Halsey M. J., Trudell J. R. Minimum alveolar concentrations of noble gases, nitrogen, and sulfur hexafluoride in rats: helium and neon as nonimmobilizers (nonanesthetics). Anesth. Analg. 1998; 87 (2): 419–424. DOI:10.1213/00000539-199808000-00035.; Saraste A., Ballo H., Arola O., Laitio R., Airaksinen J., Hynninen M., Bäcklund M., Ylikoski E., Wennervirta J., Pietilä M., Roine R. O., Harjola V. P., Niiranen J., Korpi K., Varpula M., Scheinin H., Maze M., Vahlberg T., Laitio T. Effect of Inhaled Xenon on Cardiac Function in Comatose Survivors of Out-of-Hospital Cardiac Arrest—A Substudy of the Xenon in Combination With Hypothermia After Cardiac Arrest Trial. Crit. Care Explor. 2021; 3 (8): e0502. DOI:10.1097/CCE.0000000000000502. PMID: 34345828.; Молчанов И. В., Потиевская В. И., Пулина Н. Н., Шебзухова Е. Х. Лечение больных с острым коронарным синдромом ингаляциями ксенона. ДокторРу. 2012; 10 (78): 35–40.; Potievskaya V. I., Abuzarova G. R., Sarmanaeva R. R., Loboda A. V., Potievskiy M. B., Kuznetsov S. V., Kaprin A. D. Effect of xenon-oxygen inhalations on functional status of cardiovascular system in oncological patients suffering chronic pain syndrome. Issled Prakt Med (Print). 2022; 9 (3): 52–66. DOI:10.17709/2410-1893-2022-9-3-4.; Hofland J., Ouattara A., Fellahi J. L., Gruenewald M., Hazebroucq J., Ecoffey C., Joseph P., Heringlake M., Steib A., Coburn M., Amour J., Rozec B., Liefde I., Meybohm P., Preckel B., Hanouz J. L., Tritapepe L., Tonner P., Benhaoua H., Roesner J. P., Bein B. Effect of xenon anesthesia compared to sevoflurane and total intravenous anesthesia for coronary artery bypass graft surgery on postoperative cardiac troponin release. Anesthesiology. 2017; 127 (6): 918–933. DOI:10.1097/ALN.0000000000001873.; Наумов С. А., Шписман М. Н., Наумов А. В., Лукинов А. В., Тупицын М. В., Вовк С. М. Роль ксенона в лечении опийной наркомании. Вопросы наркологии. 2002; (6): 13–17.; Стрепетова О. В. Успешный опыт применения ксенона в комплексе интенсивного лечения алкогольных расстройств. Медицина неотложных состояний. 2014; 7 (62): 88–94.; Шамов С. А., Цыганков Б. Д., Доненко В. Е., Клячин А. И., Тюнева А. И. Использование ксенона для купирования острого абстинентного синдрома при лечении больных наркотической зависимостью. Наркология. 2006; 5 (6): 46–52.; Шамов С. А., Давлетов Л. А., Цыганков Д. Б., Шуляк Ю. А. Применение ксенона в комплексном лечении психических и соматоневрологических расстройств при острой энцефалопатии у пациентов с зависимостью от психоактивных веществ. Наркология. 2007; 6 (1): 38–44.; Уткин С. И., Атамурадов И. Б., Винникова М. А., Захаров М. В., Деревлев Н. Н., Литвинская И. И., Вишневский С. А., Потапов А. В., Потапов С. В. Ксенон в терапии опийного абстинентного синдрома. Вопросы наркологии. 2014; (4): 13–28.; Tzigankov B. D., Shamov S. A., Rykhletskiy P. Z., Davletov L. A. The possibilities of xenon application in complex therapy of psycho-pathologic disorders in patients of narcologic profile. Russ. Med. J. 2013; 19 (4): 11–14. DOI:10.17816/rmj38066.; Fluyau D., Revadigar N., Pierre C. G. Clinical benefits and risks of N-methyl-D-aspartate receptor antagonists to treat severe opioid use disorder: a systematic review. Drug Alcohol Depend. 2020; 208: 107845. DOI:10.1016/j.drugalcdep.2020.107845. PMID: 31978670.; Кузнецов А. В., Шамов С. А., Цыганков Д. Б. Опыт применения лечебного ксенонового наркоза в комплексной терапии больных алкогольной зависимостью в период абстинентных и постабстинентных расстройств. Российский медицинский журнал. 2007; (6): 19–22.; Dobrovolsky A., Ichim T. E., Ma D., Kesari S., Bogin V. Xenon in the treatment of panic disorder: an open label study. J. Transl. Med. 2017; 15 (1): 137. DOI:10.1186/s12967-017-1237-1. PMID: 28610592.; Sabinina T. S., Bagaev V. G., Amcheslavsky V. G., et al. First experience with xenon in treatment of severe trauma in children. Medicinskij alfavit. 2019; 2 (31): 41–45. DOI:10.33667/2078-5631-2019-2-31(406)-41-45.; Васильева А. В., Караваева Т. А., Лукошкина Е. П., Радионов Д. С. Основные подходы к диагностике и терапии посттравматического стрессового расстройства. Обозрение психиатрии и медицинской психологии им. В. М. Бехтерева. 2022; 56 (4): 107–111. DOI:10.31363/2313-7053-2022-4-107-111.; Игошина Т. В. Коррекция связанных со стрессом невротических расстройств методом ингаляции субнаркотических доз ксенона в условиях санатория. Кремлевская медицина. Клинический вестник. 2013; (4): 37–42.; Игошина Т. В., Котровская Т. И., Бубеев Ю. А., Счастливцева Д. В., Потапов А. В. Применение ингаляции субнаркотических доз ксенона в санаторном лечении посттравматических стрессовых расстройств. Авиакосмическая и экологическая медицина. 2014; 48 (5): 58–63.; Бубеев Ю. А., Игошина Т. В., Котровская Т. И. Коррекция связанных со стрессом расстройств у лиц опасных профессий в условиях клинического санатория. Экстремальная деятельность человека. 2016; (3): 25–30.; Шветский Ф. М., Потиевская В. И., Смольников П. В., Чижов А. Я. Коррекция функционального состояния врачей анестезиологов-реаниматологов ингаляциями ксенона. Вестник Российского университета дружбы народов. Серия: Экология и безопасность жизнедеятельности. 2016; (4): 96–104.; Стряпко Н. В., Сазонтова Т. Г., Потиевская В. И., Хайруллина А. А., Вдовина И. Б., Куликов А. Н., Архипенко Ю. В., Молчанов И. В. Адаптационный эффект многократного применения ксенона. Общая реаниматология. 2014; 10 (2): 50–56.; Николаев Л. Л., Петрова М. В., Болихова Н. А., Добровольская Н. Ю., Потапов А. В. Ксенон как компонент терапии сопровождения при химиотерапии больных раком молочной железы. Эффективная фармакотерапия. 2014; (57): 6–9.; Сидоренко Ю. С., Кит О. И., Попова Н. Н., Арапова Ю. Ю., Шихлярова А. И., Моисеенко Т. И., Меньшенина А. П., Ващенко Л. Н., Росторгуев Э. Е., Попов И. А., Гончарова А. С. Роль ЦИС в ингибировании посткастрационного синдрома у больных раком шейки матки репродуктивного возраста на основе программируемых режимов ксенонтерапии. Вопросы онкологии. 2019; 65 (5): 708–714.; Розенко Д. А., Шихлярова А. И., Ващенко Л. Н., Попова Н. Н., Арапова Ю. Ю., Арджа А. Ю., Коробов А. А. Нейропсихологические особенности пациенток репродуктивного возраста с диагнозом рак молочной железы на этапе хирургического лечения с применением ксенон-кислородной терапии. Исследования и практика в медицине. 2021; 8 (3): 10–20. DOI:10.17709/2410-1893-2021-8-3-1.; Потиевская В. И., Шветский Ф. М. Процедурная седация ксеноном при диагностической эзофагогастродуоденоскопии. Вестник интенсивной терапии. 2017; (4): 42–46.; Давыдова Н. С., Наумов С. А., Костромитина Г. Г., Собетова Г. В., Еремин В. С., Рабинович С. А., Бабиков А. С. Кислородно-ксеноновые ингаляции в поликлинической практике. Поликлиника. 2013; (5–2): 48–51.; Potievskaya V. I., Shvetskiy F. M., Sidorov D. V., Lozhkin M. V., Potievskiy M. B., Abuzarova G. R., Sarmanaeva R. R., Kuznetsov S. V., Alekseeva G. S. Assessment of xenon effect on postoperative pain syndrome severity in oncological patients: a randomized study. Ann. Crit. Care. 2021; (3): 140–150. DOI:10.21320/1818-474X-2021-3-140-150.; Potievskaya V. I., Shvetskiy F. M., Varchenko N. N., Gankin K. A., Potievskiy M. B., Alekseeva G. S., Khorovyan A. M. Effect of xenon-oxygen inhalations on psychovegetative component of pain syndrome after abdominal surgery in cancer patients. Russ. J. Anaesthesiol. Reanimatol. 2023; (4): 56. DOI:10.17116/anaesthesiology202304156.; Овечкин А. М. Хронический послеоперационный болевой синдром — подводный камень современной хирургии. Регионарная анестезия и лечение острой боли. 2016; 10 (1): 5–18.; Adolph O., Köster S., Georgieff M., Bäder S., Föhr K. J., Kammer T., Herrnberger B., Grön G. Xenon-induced changes in CNS sensitization to pain. NeuroImage. 2010; 49 (1): 720–730. DOI:10.1016/j.neuroimage.2009.08.034. PMID: 19703572.; Абузарова Г. Р., Хороненко В. Э., Сарманаева Р. Р., Кузнецов С. В. Рандомизированное двойное слепое плацебо-контролируемое исследование ингаляций ксенона в терапии хронической боли в онкологии. Вестник интенсивной терапии им. А. И. Салтанова. 2020; (4): 48–57.; Stoppe C., Ney J., Brenke M., Goetzenich A., Emontzpohl C., Schälte G., Grottke O., Moeller M., Rossaint R., Coburn M. Sub-anesthetic Xenon Increases Erythropoietin Levels in Humans: A Randomized Controlled Trial. Sports Med. 2016; 46 (11): 1753–1766. DOI:10.1007/s40279-016-0505-1. PMID: 26939898.; Schaefer M. S., Treschan T. A., Gauch J., Neukirchen M., Kienbaum P. Influence of xenon on pulmonary mechanics and lung aeration in patients with healthy lungs. Br. J. Anaesth. 2018; 120 (6): 1394–1400. DOI:10.1016/j.bja.2018.02.064. PMID: 29793604.; Udut V. V., Naumov S. A., Evtushenko D. N., Udut E. V., Naumov S. S., Zyuz’kov G.N. A case of xenon inhalation therapy for respiratory failure and neuropsychiatric disorders associated with COVID-19. EXCLI J. 2021; 20: 1517. DOI:10.17179/excli2021-4316. PMID: 34924901.; Udut V. V., Naumov S. A., Udut E. V., Naumov S. S., Evtushenko D. N., Chumakova O. N., Zyuz’kov G.N. Mechanisms of the Effects of Short-Term Inhalations of Xe and O₂ Gas Mixture in the Rehabilitation of Post-COVID Ventilation Failure. Bull. Exp. Biol. Med. 2022; 172 (3): 364–367. DOI:10.1007/s10517-022-05393-7. PMID: 35001305.; Evtushenko D. N., Fateev A. V., Naumov S. A., Udut E. V., Naumov S. S., Udut V. V. Xenon-Induced Recovery of Functional Activity of Pulmonary Surfactant (In Silico Study). Bull. Exp. Biol. Med. 2023; 176 (2): 260–267. DOI:10.1007/s10517-024-06006-1. PMID: 38194069.; Fedorova E. P., Filonova M. V., Churin A. A., Sandrikina L. A., Fomina T. I., Neupokoeva O. V., Shepeleva N. V., Nikiforov P. E., Naumov S. A., Udut E. V., Naumov S. S., Udut V. V. Effect of Xe/O₂ Inhalation on Hemostasis in Experimental Thromboplastin Pneumonitis. Bull. Exp. Biol. Med. 2024; 176 (6): 731–735. DOI:10.1007/s10517-024-06098-9. PMID: 38904932.; https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/2554

Availability: https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/2554
https://doi.org/10.15360/1813-9779-2025-2-2554

MECHANISMS OF VASOPROTECTION AND CARDIOPROTECTION IN HYPOXYTHERAPY OF ARTERIAL HYPERTENSION AND CORONARY ARTERY DISEASE ; МЕХАНИЗМЫ ВАЗО- И КАРДИОПРОТЕКЦИИ ПРИ ГИПОКСИТЕРАПИИ АРТЕРИАЛЬНОЙ ГИПЕРТЕНЗИИ И ИШЕМИЧЕСКОЙ БОЛЕЗНИ СЕРДЦА

Authors: Grigory A. Ignatenko, Григорий Анатольевич Игнатенко

Contributors: Автор заявляет об отсутствии финансирования исследования.

Source: Complex Issues of Cardiovascular Diseases; Том 13, № 1 (2024); 98-108 ; Комплексные проблемы сердечно-сосудистых заболеваний; Том 13, № 1 (2024); 98-108 ; 2587-9537 ; 2306-1278

Subject Terms: Кардиопротекция, Oxygen supply system, Arterial hypertension, Coronary artery disease, Interval hypoxytherapy, Vasoprotection, Cardioprotection, Система кислородного обеспечения, Артериальная гипертензия, Ишемическая болезнь сердца, Интервальная гипокситерапия, Вазопротекция

File Description: application/pdf

Relation: https://www.nii-kpssz.com/jour/article/view/1354/874; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1354/1372; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1354/1373; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1354/1374; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1354/1375; Бойцов С.А., Самородская И.В., Никулина Н.Н., Якушин С.С., Андреев Е.М., Заратьянц О.В., Барбараш О.Л. Сравнительный анализ смертности населения от острых форм ишемической болезни сердца за пятнадцатилетний период в РФ и США и факторов, влияющих на ее формирование. Терапевтический архив. 2017; 89 (9): 53-59. doi:10.17116/terarkh201789953-59.; Бойцов С.А., Демкина А.Е., Ощепкова Е.В., Долгушева Ю.А. Достижения и проблемы практической кардиологии в России на современном этапе. Кардиология. 2019; 59 (3): 53-59. doi:10.18087/cardio.2019.3.10242.; Глущенко В.А., Ирклиенко Е.К. Сердечно-сосудистая заболеваемость - одна из важнейших проблем здравоохранения. Медицина и организация здравоохранения. 2019; 4 (1): 56-63.; Zhou D., Yang Y., Chen J., Zhou J., He J., Liu D., Zhang A., Yuan B., Jiang Y., Han R., Xia W., Xia Z. Role of ferroptosis in increased vulnerability to myocardial ischemia-reperfusion injury in type 1 diabetic mice and the treatment effects of N-acetylcysteine. Journal of Pharmacology and Experimental Therapeutics. 2023; 385 (S3): 562. https://doi.org/10.1124/jpet.122.233180.; Slone S., Anthony S.R., Green L.C., Nieman M.L, Alam P., Wu X., Roy S., Aube J., Xu L., Lorenz J.N., Owens A.Ph., Kanisicak O., Trante M. HuR inhibition reduces post-ischemic cardiac remodeling by dampening acute inflammatory gene expression and the innate immune response. bioRxiv. 2023. 023.01.17.524420. doi:10.1101/2023.01.17.524420.; Оганов Р.Г., Симаненков В.И., Бакулин И.Г., Бакулина Н.В., Барбараш О.Л., Бойцов С.А., Болдуева С.А., Гарганеева Н.П., Дощицин В.Л., Каратеев А.Е., Котовская Ю.В., Лила А.М., Лукьянов М.М., Морозова Т.Е., Переверзев А.П., Петрова М.М., Поздняков Ю.М., Сыров А.В., Тарасов А.В., Ткачева О.Н., Шальнова С.А. Коморбидная патология в клинической практике. Алгоритмы диагностики и лечения. Кардиоваскулярная терапия и профилактика. 2019; 18 (1): 5-66. doi:10.15829/1728-8800-2019-1-5-66.; German C.A., Baum S.J., Ferdinand K.C., Gulati M., Polonsky T.S., Toth P.P., Shapiro M.D. Defining preventive cardiology: A clinical practice statement from the American Society for Preventive Cardiology. Am J Prev Cardiol. 2022; 12:100432. doi:10.1016/j.ajpc.2022.100432.; Gasecka A., Zimodro J.M., Appelman Y. Sex differences in antiplatelet therapy: state-of-the art. Platelets. 2023; 34 (1): 2176173. doi:10.1080/09537104.2023.2176173.; Сумин А.Н., Медведева Ю.Д., Щеглова А.В., Барбараш Л.С. Предикторы неблагоприятных исходов у пациентов с облитерирующим атеросклерозом артерий нижних конечностей. Кардиология и сердечно-сосудистая хирургия. 2020; 13 (1): 41‑47. doi:10.17116/kardio20201301141.; Игнатенко Г.А., Мухин И.В., Паниева Н.Ю. Качество жизни у гипертензивных больных гипотиреозом на фоне разных режимов терапии. Вестник гигиены и эпидемиологии. 2020; 24 (2): 185-188.; Аронов Д.М., Бубнова М.Г., Драпкина О.М. Немедикаментозная терапия больных с сердечно-сосудистыми заболеваниями в программах кардиореабилитации. Профилактическая медицина. 2020; 23 (6): 57‑64. doi:10.17116/profmed20202306257.; Бойцов С.А., Погосова Н.В., Бубнова М.Г., Драпкина О.М., Гаврилова Н.Е., Еганян Р.А., Калинина А.М., Карамнова Н.С., Кобалава Ж.Д., Концевая А.В., Кухарчук В.В., Лукьянов М.М., Масленникова Г.Я., Марцевич С.Ю., Метельская В.А., Мешков А.Н., Оганов Р.Г., Попович М.В., Соколова О.Ю., Сухарева О.Ю., Ткачева О.Н., Шальнова С.А., Шестакова М.В., Юферева Ю.М., Явелов И.С. Национальные рекомендации «Кардиоваскулярная профилактика 2017». Методические рекомендации. Российский кардиологический журнал. 2018; 23 (6). 7-122. doi:10.15829/1560-4071-2018-6-7-122.; Avtaar S.S.S., Nappi F. Pathophysiology and Outcomes of Endothelium Function in Coronary Microvascular Diseases: A Systematic Review of Randomized Controlled Trials and Multicenter Study. Biomedicines. 2022; 10 (12): 3010. doi:10.3390/biomedicines10123010.; Глазачев О.С., Крыжановская С.Ю. Адаптационная медицина: стратегия психофизиологического приспособления человека к критически измененной окружающей среде. Вестник международной академии наук (русская секция). 2019; 1: 48-55.; Панкова Н.Б. Механизмы срочной и долговременной адаптации. Патогенез. 2020; 18 (3): 77-86. doi:10.25557/2310-0435.2020.03.77-86.; Приходько В.А., Селизарова Н.О., Оковитый С.В. Молекулярные механизмы развития гипоксии и адаптации к ней. Часть I. Архив патологии. 2021; 83 (2): 52‑61. doi:10.17116/patol20218302152.; Саютина Е.В., Осадчук М.А., Романов Б.К., Туаева Е.М., Буторова Л.И., Дибирова Г.О., Киреева Н.В., Корженков Н.П. Кардиореабилитация и вторичная профилактика после перенесенного острого инфаркта миокарда: современный взгляд на проблему. Российский медицинский журнал. 2021; 27 (6): 571–587. doi:10.17816/0869-2106-2021-27-6 571-587.; Игнатенко Г.А., Дубовая А.В., Науменко Ю.В. Возможности применения нормобарической гипокситерапии в терапевтической и педиатрической практиках. Российский вестник перинатологии и педиатрии. 2022; 67 (6): 46-53. doi:10.21508/1027-4065-2022-67-6-46-53.; Игнатенко Г.А., Денисова Е.М., Сергиенко Н.В. Гипокситерапия как перспективный метод повышения эффективности комплексного лечения коморбидной патологии. Вестник неотложной и восстановительной хирургии. 2021; 6 (4): 73-80.; Penna C., Andreadou I., Aragno M., Beauloye C., Bertrand L., Lazou A., Falcão-Pires I., Bell R., Zuurbier C.J., Pagliaro P., Hausenloy D.J. Effect of hyperglycaemia and diabetes on acute myocardial ischaemia-reperfusion injury and cardioprotection by ischaemic conditioning protocols. Br J Pharmacol. 2020; 177 (23): 5312-5335. doi:10.1111/bph.14993.; Цыганова Т.Н., Кульчицкая Д.Б. Эффективность интервальной гипоксической тренировки в акушерстве и гинекологии (краткий обзор литературы). Вестник новых медицинских технологий. Электронное издание. 2017: 4. Публикация 7-3. Режим доступа: http://www.medtsu.tula.ru/VNMT/Bulletin/E2017-4/7-3.pdf (дата обращения: 16.05.2023). doi:10.12737/article_5a16df3aea1bf5.78205373.; Iturriaga R., Alcayaga J., Chapleau M.W., Somers V.K. Carotid body chemoreceptors: physiology, pathology, and implications for health and disease. Physiol Rev. 2021; 101 (3): 1177-1235. doi:10.1152/physrev.00039.2019.; Prabhakar N.R., Peng Y.J., Nanduri J. Adaptive cardiorespiratory changes to chronic continuous and intermittent hypoxia. Handb Clin Neurol. 2022; 188: 103-123. doi:10.1016/B978-0-323-91534-2.00009-6.; Лесова Е.М., Самойлов В.О., Филиппова Е.Б., Савокина О.В. Индивидуальные различия показателей гемодинамики при сочетании гипоксической и ортостатической нагрузок. Вестник Российской военно-медицинской академии. 2015; 1 (49): 157-163.; Dzhalilova D., Makarova O. Differences in Tolerance to Hypoxia: Physiological, Biochemical, and Molecular-Biological Characteristics. Biomedicines. 2020; 8 (10): 428. doi:10.3390/biomedicines8100428.; Sanotskaya N.V., Matsievskii D.D., Lebedeva M.A. Changes in Hemodynamics and Respiration in Rats with Different Resistance to Acute Hypoxia. Bull. Exp. Biol. Med. 2004; 138: 18-22. doi:10.1007/BF0269446.; Burda R., Burda J., Morochovič R. Ischemic Tolerance-A Way to Reduce the Extent of Ischemia-Reperfusion Damage. Cells. 2023; 12 (6): 884. doi:10.3390/cells12060884.; Fisher J.P., Roche J., Turner R., Walzl A., Roveri G., Gatterer H., Siebenmann C. Hypobaric hypoxia and cardiac baroreflex sensitivity in young women. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 2022; 323 (5): H1048-H1054. doi:10.1152/ajpheart.00452.2022.; Puri Sh., Panza G., Mateika J.H. A comprehensive review of respiratory, autonomic and cardiovascular responses to intermittent hypoxia in humans. Exp Neurol. 2021; 341: 113709. doi:10.1016/j.expneurol.2021.113709.; Chacaroun S., Borowik A., Morrison S.A., Baillieul S., Flore P., Doutreleau S.,Verges S. Physiological responses to two hypoxic conditioning strategies inhealthy subjects. Front Physiol. 2017; 7: 675. doi:10.3389/fphys.2016.00675.; Ott E.P., Baker S.E., Holbein W.W., Shoemaker J.K., Limberg J.K. Effect of varying chemoreflex stress on sympathetic neural recruitment strategies during apnea. J Neurophysiol. 2019; 122 (4): 1386-1396. doi:10.1152/jn.00319.2019.; Luo Z., Tian M., Yang G., Tan Q., Chen Y., Li G., Zhang Q., Li Y., Li Y., Wan P., Wu J. Hypoxia signaling in human health and diseases: implications and prospects for therapeutics. Signal Transduct Target Ther. 2022; 7: 218. doi:10.1038/s41392-022-01080-1.; Игнатенко Г.А., Мухин И.В., Зубрицкий К.С., Паламарчук Ю.С., Белевцова Э.Л. Влияние разных режимов терапии на проявления аритмического синдрома у больных сахарным диабетом 2-го типа. Медико-социальные проблемы семьи. 2021; 26 (4): 49-56.; Sprick J.D., Mallet R.T., Przyklenk K., Caroline A. Rickards. Ischaemic and hypoxic conditioning: potential for protection of vital organs. Exp Physiol. 2019; 104 (3): 278-294. doi:10.1113/EP087122.; Panza G.S., Puri S., Lin H.S., Badr M.S., Mateika J.H. Daily Exposure to Mild Intermittent Hypoxia Reduces Blood Pressure in Male Patients with Obstructive Sleep Apnea and Hypertension. Am J Respir Crit Care Med. 2022; 205 (8): 949-958. doi:10.1164/rccm.202108-1808OC.; Serebrovskaya T.V., Xi L. Intermittent hypoxia training as non-pharmacologic therapy for cardiovascular diseases: Practical analysis on methods and equipment. Exp Biol Med (Maywood). 2016; 241: 1708-1723. doi:10.1177/1535370216657614.; Игнатенко Г.А., Мухин И.В., Туманова С.В. Антигипертензивная эффективность интервальной нормобарической гипокситерапии у больных хроническим гломерулонефритом и стенокардией. Нефрология. 2007; 11 (3): 64-69. doi:10.24884/1561-6274-2007-11-3-64-69.; Бондаренко Н.Н., Хомутов Е.В., Ряполова Т.Л., Кишеня М.С., Игнатенко Т.С., Толстой В.А., Евтушенко И.С., Туманова С.В. Молекулярно-клеточные механизмы ответа организма на гипоксию. Ульяновский медико-биологический журнал. 2023; 2: 6-29. doi:10.34014/2227-1848-2023-2-6-29.; Li Y., Gao Y., Li G. Preclinical multi-target strategies for myocardial ischemia-reperfusion injury. Front Cardiovasc Med. 2022; 9: 967115. doi:10.3389/fcvm.2022.967115.; Muangritdech N., Hamlin M.J., Sawanyawisuth K., Prajumwongs P., Saengjan W., Wonnabussapawich P., Manimmanakorn N., Manimmanakorn A. Hypoxic training improves blood pressure, nitric oxide and hypoxia-inducible factor-1 alpha in hypertensive patients. Eur J Appl Physiol. 2020; 120 (8): 1815-1826. doi:10.1007/s00421-020-04410-9.; Nemecz M., Alexandru N., Tanko G., Georgescu A. Role of MicroRNA in Endothelial Dysfunction and Hypertension. Curr Hypertens Rep. 2016; 18 (12): 87. doi:10.1007/s11906-016-0696-8.; Cosgun Z.C., Fels B., Kusche-Vihrog K. Nanomechanics of the Endothelial Glycocalyx: From Structure to Function. Am J Pathol. 2020; 190 (4): 732-741. doi:10.1016/j.ajpath.2019.07.021.; Hellenthal K.E.M., Brabenec L., Wagner N-M. Regulation and Dysregulation of Endothelial Permeability during Systemic Inflammation. Cells. 2022; 11 (12): 1935. doi:10.3390/cells11121935.; Алиева А.М., Теплова Н.В., Воронкова К.В., Пинчук Т.В., Валиев Р.К., Шнахова Л.М., Рахаев А.М., Никитин И.Г. Адреномедуллин – биологический маркер сердечной недостаточности: обзор современной литературы. CardioСоматика. 2022; 13 (1): 64-69. doi:10.17816/22217185.2022.1.201472.; Chettimada S., Gupte R., Rawat D., Gebb S.A., McMurtry I.F., Gupte S.A. Hypoxia-induced glucose-6-phosphate dehydrogenase overexpression and -activation in pulmonary artery smooth muscle cells: implication in pulmonary hypertension. Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. 2015; 308 (3): L287-300. doi:10.1152/ajplung.00229.2014.; Park N., Marquez J., Garcia M.V.F., Shimizu I., Lee S.R., Kim H.K., Han J. Phosphorylation in Novel Mitochondrial Creatine Kinase Tyrosine Residues Render Cardioprotection against Hypoxia/Reoxygenation Injury. J Lipid Atheroscler. 2021; 10 (2): 223-239. doi:10.12997/jla.2021.10.2.223.; Luo T., Liu H., Chen B., Liu H., Abdel-Latif A., Kitakaze M., Wang X., Wu Y., Chou D., Kim J.K. A novel role of claudin-5 in prevention of mitochondrial fission against ischemic/hypoxic stress in cardiomyocytes. Can J Cardiol. 2021; 37(10): 1593-1606. doi:10.1016/j.cjca.2021.03.021.; Lieder H.R., Braczko F., Gedik N., Stroetges M., Heusch G., Kleinbongard P. Cardioprotection by post-conditioning with exogenous triiodothyronine in isolated perfused rat hearts and isolated adult rat cardiomyocytes. Basic Res Cardiol. 2021; 116 (1): 27. doi:10.1007/s00395-021-00868-6.; Predmore B.L., Lefer D.J. Hydrogen sulfide-mediated myocardial pre- and post-conditioning. Expert Rev Clin Pharmacol. 2011; 4 (1): 83-96. doi:10.1586/ecp.10.56.; Shao J., Miao C., Geng Z., Gu M., Wu Y., Li Q. Effect of eNOS on Ischemic Postconditioning-Induced Autophagy against Ischemia/Reperfusion Injury in Mice. Biomed Res Int. 2019; 2019: 5201014. doi:10.1155/2019/5201014.

Availability: https://www.nii-kpssz.com/jour/article/view/1354
https://doi.org/10.17802/2306-1278-2024-13-1-98-108

Сравнение кардиопротекторных свойств искусственной электрической фибрилляции сердца и раствора Бретшнайдера при операциях аортокоронарного шунтирования

Authors: Loskutov, O.A., Druzhyna, O.M., Dzyuba, D.O., Pashchenko, S.V.

Source: EMERGENCY MEDICINE; № 2.97 (2019); 89-93
МЕДИЦИНА НЕОТЛОЖНЫХ СОСТОЯНИЙ; № 2.97 (2019); 89-93
МЕДИЦИНА НЕВІДКЛАДНИХ СТАНІВ; № 2.97 (2019); 89-93

Subject Terms: 03 medical and health sciences, кардіопротекція, електрична фібриляція серця, розчин Бретшнайдера, аортокоронарне шунтування, 0302 clinical medicine, cardioprotection, electrical fibrillation of the heart, Bretschneider solution, coronary artery bypass grafting, кардиопротекция, электрическая фибрилляция сердца, раствор Бретшнайдера, аортокоронарное шунтирование, 3. Good health

File Description: application/pdf

Access URL: http://emergency.zaslavsky.com.ua/article/view/161648

Сердечно-сосудистые преимущества семаглутида: от механизмов действия к клиническим результатам

Subject Terms: кардиопротекция, сахарный диабет 2-го типа, obesity, семаглутид, semaglutide, ожирение, cardioprotection, type 2 diabetes mellitus

Roleofoxytocinin the protective function of the cardiovascular system ; Роль окситоцина в защитной функции сердечно-сосудистой системы

Authors: O V. Borovleva, D. S. Kaskayeva, M. M. Petrova, O. L. Lopatina, A. V. Borovleva, О. В. Боровлева, Д. С. Каскаева, М. М. Петрова, О. Л. Лопатина, А. В. Боровлева

Source: Complex Issues of Cardiovascular Diseases; Том 11, № 4 (2022); 130-138 ; Комплексные проблемы сердечно-сосудистых заболеваний; Том 11, № 4 (2022); 130-138 ; 2587-9537 ; 2306-1278

Subject Terms: Ишемическая болезнь сердца, Cardioprotection, Cardiovascular system, Oxytocin receptor, Cardiovascular regulation, Cardiovascular diseases, Coronary artery disease, Кардиопротекция, Сердечно-сосудистая система, Рецептор окситоцина, Сердечно-сосудистая регуляция, Заболевания сердечно-сосудистой системы

File Description: application/pdf

Relation: https://www.nii-kpssz.com/jour/article/view/1248/721; Gutkowska J., Jankowski M., Antunes-Rodrigues J. The role of oxytocin in cardiovascular regulation. Braz J Med Biol Res. 2014; 47(3): 206-214.; Houshmand F., Faghihi M., Zahediasl S. Role of atrial natriuretic Peptide in oxytocin induced cardioprotection. Heart Lung Circ. 2015; 24(1): 86-93. doi:10.1016/j.hlc.2014.05.023.; Klenerova V., Chottova-Dvorakova M., Skopek P., Sida P., Mistrova E., Slavikova J., et al. Expression of heart oxytocin receptor and its mRNA in two rat strains with different activity of HPA axis. Neuro Endocrinol Lett. 2011; 32(6): 805-810.; Jankowski M., Wang D., Danalache B., Gangal M., Gutkowska J. Cardiac oxytocin receptor blockade stimulates adverse cardiac remodeling in ovariectomized spontaneously hypertensive rats. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 2010; 299(2): 265-274. doi:10.1152/ajpheart.00487.2009.; Lipari A., Farina E., Gerbino A., Lipari L. Atrial natriuretic peptide (ANP) and oxytocin-expression in the adult rat and mouse cerebellum. Cerebellum Ataxias. 2015; 2: 12. doi:10.1186/s40673-015-0031-1.; Wang P., Wang S.C., Yang H., Lv C., Jia S., Liu X., Wang X., Meng D., Qin D., Zhu H., Wang Y.F. Therapeutic Potential of Oxytocin in Atherosclerotic Cardiovascular Disease: Mechanisms and Signaling Pathways. Front Neurosci. 2019; 13: 454. doi:10.3389/fnins.2019.00454.; Cattaneo M.G., Lucci G., Vicentini L.M. Oxytocin stimulates in vitro angiogenesis via a Pyk-2/Src-dependent mechanism. Exp Cell Res. 2009; 315(18): 3210-9. doi:10.1016/j.yexcr.2009.06.022.; Japundžić-Žigon N., Lozić M., Šarenac O., Murphy D. Vasopressin & Oxytocin in Control of the Cardiovascular System: An Updated Review. Curr Neuropharmacol. 2020; 18(1): 14-33. doi:10.2174/1570159X17666190717150501.; Szczepanska-Sadowska E., Wsol A., Cudnoch-Jedrzejewska A., Żera T. Complementary Role of Oxytocin and Vasopressin in Cardiovascular Regulation. Int J Mol Sci. 2021; 22 (21): 11465. doi:10.3390/ijms222111465.; Jankowski M., Danalache B.A., Plante E., Menaouar A., Florian M., Tan J.J., Grygorczyk R., Broderick T.L., Gutkowska J. Dissociation of natriuresis and diuresis by oxytocin molecular forms in rats. PLoS One. 2019; 14(7): e0219205. doi:10.1371/journal.pone.0219205.; Takayanagi Y., Kasahara Y., Onaka T., Takahashi N., Kawada T., Nishimori K. Oxytocin receptor-deficient mice developed late-onset obesity. Neuroreport. 2008; 19(9): 951955. doi:10.1097/WNR.0b013e3283021ca9.; Rubattu S., Calvieri C., Pagliaro B., Volpe M. Atrial natriuretic peptide and regulation of vascular function in hypertension and heart failure: implications for novel therapeutic strategies. J Hypertens. 2013; 31(6): 1061-1072. doi:10.1097/HJH.0b013e32835ed5eb.; Buemann B., Uvnäs-Moberg K. Oxytocin may have a therapeutical potential against cardiovascular disease. Possible pharmaceutical and behavioral approaches. Med Hypotheses. 2020; 138: 1095-1097. doi:10.1016/j.mehy.2020.109597.; Szczepanska-Sadowska E., Cudnoch-Jedrzejewska A., Wsol A. The role of oxytocin and vasopressin in the pathophysiology of heart failure in pregnancy and in fetal and neonatal life. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 2020; 318(3): 639-651. doi:10.1152/ajpheart.00484.2019.; Gutkowska J., Jankowski M. Oxytocin revisited: its role in cardiovascular regulation. J Neuroendocrinol. 2012; 24(4): 599-608. doi:10.1111/j.1365-2826.2011.02235.x.; Pyner S. The heart is lost without the hypothalamus. Handb Clin Neurol. 2021;182:355-67. doi:10.1016/B978-012-819973-2.00024-1. PubMed PMID: 34266605.; Danalache B.A., Yu C., Gutkowska J., Jankowski M. Oxytocin-Gly-Lys-Arg stimulates cardiomyogenesis by targeting cardiac side population cells. J Endocrinol. 2014; 220(3): 277-89. doi:10.1530/JOE-13-0305.; Bollini S., Smart N., Riley P.R. Resident cardiac progenitor cells: at the heart of regeneration. J Mol Cell Cardiol. 2011; 50(2): 296-303. doi:10.1016/j.yjmcc.2010.07.006.; Noiseux N., Borie M., Desnoyers A., Menaouar A., Stevens L.M., Mansour S., Danalache B.A., Roy D.C., Jankowski M., Gutkowska J. Preconditioning of stem cells by oxytocin to improve their therapeutic potential. Endocrinology. 2012; 153(11): 5361-5372. doi:10.1210/en.2012-1402.; Zhu H., Zhang Z., Liu Y., Chen Y., Tan Y. Molecular mechanism of cardiac differentiation in P19 embryonal carcinoma cells regulated by Foxa2. Zhong Nan Da Xue Xue Bao Yi Xue Ban. 2013; 38(4): 356-364. doi:10.3969/j.issn.1672-7347.2013.04.004.; Jankowski M., Broderick T.L., Gutkowska J. The Role of Oxytocin in Cardiovascular Protection. Front Psychol. 2020; 11: 21-39. doi:10.3389/fpsyg.2020.02139.; Ye J., Boyle A., Shih H., Sievers R.E., Zhang Y., Prasad M., Su H., Zhou Y., Grossman W., Bernstein H.S., Yeghiazarians Y. Sca-1+ cardiosphere-derived cells are enriched for Isl1expressing cardiac precursors and improve cardiac function after myocardial injury. PLoS One. 2012; 7(1): e30329. doi:10.1371/journal.pone.0030329.; Danalache B.A., Gutkowska J., Slusarz M.J., Berezowska I., Jankowski M. Oxytocin-Gly-Lys-Arg: a novel cardiomyogenic peptide. PLoS One. 2010; 5(10): e13643. doi:10.1371/journal.pone.0013643.; Branco A.F., Pereira S.P., Gonzalez S., Gusev O., Rizvanov A.A., Oliveira P.J. Gene Expression Profiling of H9c2 Myoblast Differentiation towards a Cardiac-Like Phenotype. PLoS One. 2015; 10(6): e0129303. doi:10.1371/journal.pone.0129303.; Bøtker H.E., Hausenloy D., Andreadou I., Antonucci S., Boengler K., Davidson S.M., Deshwal S., Devaux Y., Di Lisa F., Di Sante M., Efentakis P., Femminò S., GarcíaDorado D., Giricz Z., Ibanez B., Iliodromitis E., Kaludercic N., Kleinbongard P., Neuhäuser M., Ovize M., Pagliaro P., Rahbek-Schmidt M., Ruiz-Meana M., Schlüter K.D., Schulz R., Skyschally A., Wilder C., Yellon D.M., Ferdinandy P., Heusch G. Practical guidelines for rigor and reproducibility in preclinical and clinical studies on cardioprotection. Basic Res Cardiol. 2018; 113(5): 39. doi:10.1007/s00395-018-0696-8.; Gonzalez-Reyes A., Menaouar A., Yip D., Danalache B., Plante E., Noiseux N., Gutkowska J., Jankowski M. Molecular mechanisms underlying oxytocin-induced cardiomyocyte protection from simulated ischemia-reperfusion. Mol Cell Endocrinol. 2015; 412: 170-181. doi:10.1016/j.mce.2015.04.028.; Gravina F.S., Jobling P., Kerr K.P., de Oliveira R.B., Parkington H.C., van Helden D.F. Oxytocin depolarizes mitochondria in isolated myometrial cells. Exp Physiol. 2011; 96(9): 949-956. doi:10.1113/expphysiol.2011.058388.; Quan H.X., Jin J.Y., Wen J.F., Cho K.W. Beta1adrenergic receptor activation decreases ANP release via cAMP-Ca2+ signaling in perfused beating rabbit atria. Life Sci. 2010; 87(7-8): 246-253. doi:10.1016/j.lfs.2010.06.022.; Kobayashi H., Yasuda S., Bao N., Iwasa M., Kawamura I., Yamada Y., Yamaki T., Sumi S., Ushikoshi H., Nishigaki K., Takemura G., Fujiwara T., Fujiwara H., Minatoguchi S. Postinfarct treatment with oxytocin improves cardiac function and remodeling via activating cell-survival signals and angiogenesis. J Cardiovasc Pharmacol. 2009; 54(6): 510-519. doi:10.1097/FJC.0b013e3181bfac02.; Moraes M.S., Costa P.E., Batista W.L., Paschoalin T., Curcio M.F., Borges R.E., Taha M.O., Fonseca F.V., Stern A., Monteiro H.P. Endothelium-derived nitric oxide (NO) activates the NO-epidermal growth factor receptor-mediated signaling pathway in bradykinin-stimulated angiogenesis. Arch Biochem Biophys. 2014; 558: 14-27. doi:10.1016/j.abb.2014.06.011.; Gélinas R., Mailleux F., Dontaine J., Bultot L., Demeulder B., Ginion A., Daskalopoulos E.P., Esfahani H., Dubois-Deruy E., Lauzier B., Gauthier C., Olson A.K., Bouchard B., Des Rosiers C., Viollet B., Sakamoto K., Balligand J.-L., Vanoverschelde J.-L., Beauloye C., Horman S., Bertrand L. AMPK activation counteracts cardiac hypertrophy by reducing O-GlcNAcylation. Nat Commun. 2018; 9(1): 374. doi:10.1038/s41467-017-02795-4.; Negro A., Dodge-Kafka K., Kapiloff M.S. Signalosomes as Therapeutic Targets. Prog Pediatr Cardiol. 2008; 25(1): 5156. doi:10.1016/j.ppedcard.2007.11.012.; Pagliaro P., Femminò S., Popara J., Penna C. Mitochondria in Cardiac Postconditioning. Front Physiol. 2018; 9: 287. doi:10.3389/fphys.2018.00287.; Quinlan C.L., Costa A.D., Costa C.L., Pierre S.V., Dos Santos P., Garlid K.D. Conditioning the heart induces formation of signalosomes that interact with mitochondria to open mitoKATP channels. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 2008; 295(3): 953-961. doi:10.1152/ajpheart.00520.2008.; Rimoldi V., Reversi A., Taverna E., Rosa P., Francolini M., Cassoni P., Parenti M., Chini B. Oxytocin receptor elicits different EGFR/MAPK activation patterns depending on its localization in caveolin-1 enriched domains. Oncogene. 2003; 22(38): 6054-6060. doi:10.1038/sj.onc.1206612.; Sanon V.P., Sawaki D., Mjaatvedt C.H., Jourdan-Le Saux C. Myocardial tissue caveolae. Compr Physiol. 2015; 5(2): 871-886. doi:10.1002/cphy.c140050.; Svanström M.C., Biber B., Hanes M., Johansson G., Näslund U., Bålfors E.M. Signs of myocardial ischaemia after injection of oxytocin: a randomized double-blind comparison of oxytocin and methylergometrine during Caesarean section. Br J Anaesth. 2008; 100(5): 683-689. doi:10.1093/bja/aen071.; Gutkowska J., Granger J.P., Lamarca B.B., Danalache B.A., Wang D., Jankowski M. Changes in cardiac structure in hypertension produced by placental ischemia in pregnant rats: effect of tumor necrosis factor blockade. J Hypertens. 2011; 29(6): 1203-1212. doi:10.1097/HJH.0b013e3283468392.; Song Z., Albers H.E. Cross-talk among oxytocin and arginine-vasopressin receptors: Relevance for basic and clinical studies of the brain and periphery. Front Neuroendocrinol. 2018; 51: 14-24. doi:10.1016/j.yfrne.2017.10.004.; Natochin Y.V., Shakhmatova E.I., Bogolepova A.E. Mechanism of Natriuretic Effect of Oxytocin. Bull Exp Biol Med. 2020; 168(5): 634-636. doi:10.1007/s10517-020-04768-y.; Natochin Y.V., Golosova D.V. Vasopressin receptor subtypes and renal sodium transport. Vitam Horm. 2020; 113: 239-258. doi:10.1016/bs.vh.2019.08.013.; Iovino M., Messana T., Tortora A., Giusti C., Lisco G., Giagulli V.A., Guastamacchia E., De Pergola G., Triggiani V. Oxytocin Signaling Pathway: From Cell Biology to Clinical Implications. Endocr Metab Immune Disord Drug Targets. 2021; 21(1): 91-110. doi:10.2174/1871530320666200520093730.; Ondrejcakova M., Ravingerova T., Bakos J., Pancza D., Jezova D. Oxytocin exerts protective effects on in vitro myocardial injury induced by ischemia and reperfusion. Can J Physiol Pharmacol. 2009; 87(2): 137-142. doi:10.1139/Y08-108.; Jovanovic P., Spasojevic N., Puskas N., Stefanovic B., Dronjak S. Oxytocin modulates the expression of norepinephrine transporter, β. Peptides. 2019; 111:132-141. doi:10.1016/j. peptides.2018.06.008.; Penna C., Granata R., Tocchetti C.G., Gallo M.P., Alloatti G., Pagliaro P. Endogenous Cardioprotective Agents: Role in Pre and Postconditioning. Curr Drug Targets. 2015; 16(8): 843-867. doi:10.2174/1389450116666150309115536.; Ruiz-Meana M., Boengler K., Garcia-Dorado D., Hausenloy D.J., Kaambre T., Kararigas G., Perrino C., Schulz R., Ytrehus K. Ageing, sex, and cardioprotection. Br J Pharmacol. 2020; 177(23): 5270-5286. doi:10.1111/bph.14951.; Kleinbongard P., Bøtker H.E., Ovize M., Hausenloy D.J., Heusch G. Co-morbidities and co-medications as confounders of cardioprotection-Does it matter in the clinical setting? Br J Pharmacol. 2020; 177(23): 5252-5269. doi:10.1111/bph.14839.; Femminò S., Pagliaro P., Penna C. Obesity and Cardioprotection. Curr Med Chem. 2020; 27(2): 230-239. doi:10.2174/0929867326666190325094453.; Penna C., Andreadou I., Aragno M., Beauloye C., Bertrand L., Lazou A., Falcão-Pires I., Bell R., Zuurbier C.J., Pagliaro P., Hausenloy D.J. Effect of hyperglycaemia and diabetes on acute myocardial ischaemia-reperfusion injury and cardioprotection by ischaemic conditioning protocols. Br J; Pharmacol. 2020; 177(23): 5312-5335. doi:10.1111/bph.14993.; Davidson S.M., Ferdinandy P., Andreadou I., Bøtker H.E., Heusch G., Ibáñez B., Ovize M., Schulz R., Yellon D.M., Hausenloy D.J., Garcia-Dorado D.; CARDIOPROTECTION COST Action (CA16225). Multitarget Strategies to Reduce Myocardial Ischemia/Reperfusion Injury: JACC Review Topic of the Week. J Am Coll Cardiol. 2019; 73(1): 89-99. doi:10.1016/j.jacc.2018.09.086.

Availability: https://www.nii-kpssz.com/jour/article/view/1248
https://doi.org/10.17802/2306-1278-2022-11-4-130-138

Increase of Cardioprotective Effectiveness of Remote Ischemic Preconditioning during Cardiac Surgery ; Повышение кардиопротективной эффективности дистантного ишемического прекондиционирования при кардиохирургических вмешательствах

Authors: A. M. Radovskiy, A. E. Bautin, L. I. Karpova, A. O. Marichev, I. Yu. Ivanov, V. L. Etin, E. Yu. Vasilyeva, М. L. Ivanova, E. V. Batalina, V. K. Grebennik, D. A. Laletin, А. М. Радовский, А. Е. Баутин, Л. И. Карпова, А. О. Маричев, И. Ю. Иванов, В. Л. Этин, Е. Ю. Васильева, М. Л. Иванова, Е. В. Баталина, В. К. Гребенник, Д. А. Лалетин

Source: Messenger of ANESTHESIOLOGY AND RESUSCITATION; Том 19, № 1 (2022); 40-51 ; Вестник анестезиологии и реаниматологии; Том 19, № 1 (2022); 40-51 ; 2541-8653 ; 2078-5658

Subject Terms: аортокоронарное шунтирование, cardiac surgery, cardioprotection, coronary artery bypass grafting, кардиохирургия, кардиопротекция

File Description: application/pdf

Relation: https://www.vair-journal.com/jour/article/view/625/538; Баутин А. Е., Карпова Л. И., Маричев А. О. и др. Кардиопротективные эффекты ишемического кондиционирования: современные представления о механизмах, экспериментальные подтверждения, клиническая реализация // Трансляционная медицина. – 2016. – № 1. – С. 50‒62. doi:10.18705/2311-4495-2016-3-1-50-62.; Даценко С. В., Баутин А. Е., Ташханов Д. М. и др. Кардиопротективный эффект дистантного ишемического прекондиционирования у пациентов, перенесших протезирование аортального клапана // Регионарное кровообращение и микроциркуляция. – 2014. – № 1.– С. 35‒42. doi:10.24884/1682-6655-2014-13-1-35-42.; Лихванцев В. В., Тимошин С. С., Гребенчиков О. А. и др. Анестетическое прекондиционирование миокарда в некардиальной хирургии // Вестник анестезиологии и реаниматологии. – 2011. – Т. 8, № 6. – С. 4‒10.; Радовский А. М., Баутин А. Е., Карпова Л. И. и др. Отрицательные результаты рандомизированных исследований дистантного ишемического прекондиционирования – неэффективность методики или несовершенство дизайна? // Вестник Национального медико-хирургического Центра им. Н. И. Пирогова. – 2017. – Т. 12, № 2. – С. 103–107.; Baehner T., Boehm O., Probst C. et al. Cardiopulmonary bypass in cardiac surgery // Der Anaesthesist. – 2012. – Vol. 61, № 10. – P. 846‒856. doi:10.1007/s00101-012-2050-0.; Candilio L., Malik A., Ariti C. et al. Effect of remote ischemic preconditioning on clinical outcomes in patients undergoing cardiac bypass surgery: a randomized controlled clinical trial // Heart. – 2015. – № 3. – P. 185‒192. doi:10.1056/NEJMoa1413534.; Cheung M., Kharbanda R., Konstantinov I. et al. Randomized controlled trial of the effects of remote ischemic preconditioning on children undergoing cardiac surgery: first clinical application in humans // J. Am. Coll. Cardiol. – 2006. – № 11. – P. 2277‒2282. doi:10.1016/j.jacc.2006.01.066.; Domanski M. J., Mahaffey K., Hasselbladet V. et al. Association of myocardial enzyme elevation and survival following coronary artery bypass graft surgery // J. Am. Med. Association. – 2011. – Vol. 305, № 6. – P. 585–591. doi:10.1001/jama.2011.99.; Fudulu D., Angelini G. Oxidative stress after surgery on the immature heart // Oxid. Med. Cell. Longev. – 2016. PMID:27123154; PMCID: PMC4830738. doi:10.1155/2016/1971452.; Heusch G., Botker H., Przyklenk K. et al. Remote ischemic conditioning // J. Am. Coll. Cardiol. – 2015.– Vol. 65, № 2. – P. 177–195. doi:10.1016/j.jacc.2014.10.031.; Johnsen J., Pryds K., Salman R. et al. The remote ischemic preconditioning algorithm: effect of number of cycles, cycle duration and effector organ mass on efficacy of protection // Basic research in cardiology. – 2016. – Vol. 111, № 2. – P. 10–20. doi:10.1007/s00395-016-0529-6.; Juhaszova M., Zorro D., Kim S. et al. Glycogen syntheses kinase-3beta mediates convergence of protection signaling to inhibit the mitochondrial permeability transition pore // J. Clin. Investig. – 2004. – Vol. 113, № 11. – Р. 1535‒1549. doi:10.1172/JCI19906.; Kottenberg E., Thielmann M., Bergmann L. et al. Protection by remote ischemic preconditioning during coronary artery bypass graft surgery with isoflurane, but not propofol – a clinical trial // Acta Anaesthesiol. Scandinav. – 2012. – № 1. – P. 30–38. doi:10.1111/j.1399-6576.2011.02585.x.; Lieder H., Irmert A., Kalmer M. et al. Sex is no determinant of cardioprotection by ischemic preconditioning in rats, but ischemic/reperfused tissue mass is for remote ischemic preconditioning // Physiological Reports. – 2019. – Vol. 7, № 12. – Р. e14146. doi:10.14814/phy2.14146.; Murphy E., Steenbergen С. Preconditioning: the mitochondrial connection // Annual Review of Physiology. – 2007. – Vol. 69. – P. 51‒67. doi:10.1146/annurev. physiol.69.031905.163645.; Nowbar A. N., Gitto M., Howard J. P. et al. Mortality from ischemic heart disease // Circulation. Cardiovascular Quality Outcomes. – 2019. – Vol. 12, № 6. – Р. e005375. doi:10.1161/CIRCOUTCOMES.118.005375.; Ruiz-Meana M. Ischaemic preconditioning and mitochondrial permeability transition: a long-lasting relationship // Cardiovasc. Research. – 2012. – Vol. 96, № 2. – P. 157‒159. doi:10.1093/cvr/cvs177.; Thielmann M., Kottenberg E., Kleinbongard P. et al. Cardioprotective and prognostic effects of remote ischaemic preconditioning in patients undergoing coronary artery bypass surgery: a single-centre randomised, double-blind, controlled trial // Lancet. – 2013. – Vol. 382. – № 9892. – P. 597‒604. doi:10.1016/S0140-6736(13)61450-6.; Yau J. M., Alexander J. H., Hafley G. et al. Impact of perioperative myocardial infarction on angiographic and clinical outcomes following coronary artery bypass grafting [from PRoject of Ex-vivo Vein graft ENgineering via Transfection (PREVENT) IV] // Am. J. Cardiol. – 2008. – Vol. 102, № 5. – P. 546‒551. doi:10.1016/j.amjcard.2008.04.069.

Availability: https://www.vair-journal.com/jour/article/view/625
https://doi.org/10.21292/2078-5658-2022-19-1-40-51

Cardioprotective Strategies for Doxorubicin-induced Cardiotoxicity: Present and Future ; Кардиопротективные стратегии при доксорубицин-индуцированной кардиотоксичности: настоящее и перспективы

Authors: A. M. Chaulin, D. V. Duplyakov, А. М. Чаулин, Д. В. Дупляков

Source: Rational Pharmacotherapy in Cardiology; Vol 18, No 1 (2022); 103-112 ; Рациональная Фармакотерапия в Кардиологии; Vol 18, No 1 (2022); 103-112 ; 2225-3653 ; 1819-6446

Subject Terms: кардиопротекция, doxorubicin, pathophysiology, reactive oxygen species, oncological diseases, cardiovascular diseases, heart failure, cardio-protection, доксорубицин, патофизиология, активные формы кислорода, онкологические заболевания, сердечно-сосудистые заболевания, сердечная недостаточность

File Description: application/pdf

Relation: https://www.rpcardio.com/jour/article/view/2663/2273; Meijers WC, de Boer RA. Common risk factors for heart failure and cancer. Cardiovasc Res. 2019;115(5):844-853. DOI:10.1093/cvr/cvz035.; Ferlay J, Colombet M, Soerjomataram I, et al. Cancer incidence and mortality patterns in Europe: estimates for 40 countries and 25 major cancers in 2018. Eur J Cancer. 2018;103:356-87. DOI:10.1016/j.ejca.2012.12.027.; Чаулин А.М., Карслян Л.С., Григорьева Е.В., и др. Клинико-диагностическая ценность кардиомаркеров в биологических жидкостях человека. Кардиология. 2019;59(11):66-75. DOI:10.18087/cardio.2019.11.n414.; Bluethmann SM, Mariotto AB, Rowland JH. Anticipating the "silver tsunami": prevalence trajectories and comorbidity burden among older Cancer survivors in the United States. Cancer Epidemiol Biomark Prev. 2016;25(7):1029-36. DOI:10.1158/1055-9965.EPI-16-0133.; Armenian SH, Xu L, Ky B, et al. Cardiovascular disease among survivors of adult-onset cancer: a community-based retrospective cohort study. J Clin Oncol. 2016;34(10):1122-30. DOI:10.1200/JCO.2015.64.0409.; Chaulin AM, Abashina OE, Duplyakov DV. Pathophysiological mechanisms of cardiotoxicity in chemotherapeutic agents. Russian Open Medical Journal. 2020;9:e0305. DOI:10.15275/rusomj.2020.0305.; Гендлин Г.Е., Емелина Е.И., Никитин И.Г., Васюк Ю.А. Современный взгляд на кардиотоксичность химиотерапии онкологических заболеваний, включающей антрациклиновые антибиотики. Российский Кардиологический Журнал. 2017;(3):145-54. DOI:10.15829/1560-4071-2017-3-145-154.; Cardinale D, Colombo A, Lamantia G, et al. Anthracycline-induced cardiomyopathy: clinical relevance and response to pharmacologic therapy. J Am Coll Cardiol. 2010;55(3):213-20. DOI:10.1016/j.jacc.2009.03.095.; Lyon AR, Dent S, Stanway S, et al. Baseline cardiovascular risk assessment in cancer patients scheduled to receive cardiotoxic cancer therapies: a position statement and new risk assessment tools from the Cardio-Oncology Study Group of the Heart Failure Association of the European Society of Cardiology in collaboration with the International Cardio-Oncology Society. Eur J Heart Fail. 2020;22(11):1945-60. DOI:10.1002/ejhf.1920.; Васюк Ю.А., Шупенина Е.Ю., Новосел Е.О., Агапов И.С. Нарушения ритма и проводимости сердца как проявления кардиотоксичности противоопухолевого лечения – миф или реальность? Сибирский Медицинский Журнал. 2020;35(1):13-21. DOI:10.29001/2073-8552-2020-35-1-13-21.; Чаулин А.М., Дупляков Д.В. Аритмогенные эффекты доксорубицина. Комплексные Проблемы Сердечно-сосудистых Заболеваний. 2020;9(3):69-80. DOI:10.17802/2306-1278-2020-9-3-69-80.; Zamorano JL, Lancellotti P, Rodriguez Munoz D, et al. 2016 ESC position paper on cancer treatments and cardiovascular toxicity developed under the auspices of the ESC Committee for Practice Guidelines: the task force for cancer treatments and cardiovascular toxicity of the European Society of Cardiology (ESC). Eur Heart J. 2016;37(36):2768-801. DOI:10.1093/eurheartj/ehw211.; Armenian SH, Lacchetti C, Barac A, et al. Prevention and Monitoring of Cardiac Dysfunction in Survivors of Adult Cancers: American Society of Clinical Oncology Clinical Practice Guideline. J Clin Oncol. 2017;35(8):893-911. DOI:10.1200/JCO.2016.70.5400.; Lancellotti P, Suter TM, López-Fernández T, et al. Cardio-Oncology Services: rationale, organization, and implementation. Eur Heart J. 2019;40(22):1756-63. DOI:10.1093/eurheartj/ehy453.; Tilemann LM, Heckmann MB, Katus HA, et al. Cardio-oncology: conflicting priorities of anticancer treatment and cardiovascular outcome. Clin Res Cardiol. 2018;107(4):271-80. DOI:10.1007/s00392-018-1202-x.; Васюк ЮА, Несветов ВВ, Школьник ЕЛ, и др. Возможности современных эхокардиографических технологий в ранней диагностике кардиотоксического действия химиотерапевтических препаратов антрациклинового ряда у онкологических больных. Кардиология. 2017;57(4S):31-7. DOI:10.18087/cardio.2417.; Runowicz CD, Leach CR, Henry NL, et al. American Cancer Society/American Society of Clinical Oncology Breast Cancer Survivorship Care Guideline. J Clin Oncol. 2016;34(6):611-35. DOI:10.1200/JCO.2015.64.3809.; Чаулин А.М., Дупляков Д.В. Повышение натрийуретических пептидов, не ассоциированное с сердечной недостаточностью. Российский Кардиологический Журнал. 2020;25(4S):4140. DOI:10.15829/1560-4071-2020-4140.; Чаулин А.М., Абашина О.Е., Дупляков Д.В. Высокочувствительные сердечные тропонины (hs-Tn): методы определения и основные аналитические характеристики. Кардиоваскулярная Терапия и Профилактика. 2021;20(2):2590. DOI:10.15829/1728-8800-2021-2590.; Саржевский В.О., Колесникова Д.С., Мельниченко В.Я. Биохимические маркеры кардиотоксичности высокодозной химиотерапии с аутологичной трансплантацией гемопоэтических стволовых клеток при злокачественных лимфопролиферативных заболеваниях. Клиническая Онкогематология. 2016;9(4):465-73. DOI:10.21320/2500-2139-2016-9-4-465-473.; Jones M, O'Gorman P, Kelly C, et al. High-sensitive cardiac troponin-I facilitates timely detection of subclinical anthracycline-mediated cardiac injury. Ann Clin Biochem. 2017;54(1):149-57. DOI:10.1177/0004563216650464.; Sawaya H, Sebag IA, Plana JC, et al. Assessment of echocardiography and biomarkers for the extended prediction of cardiotoxicity in patients treated with anthracyclines, taxanes, and trastuzumab. Circ Cardiovasc Imaging. 2012;5(5):596–603. DOI:10.1161/CIRCIMAGING.112.973321.; Jensen BT, Lien CY, Hydock DS, et al. Exercise mitigates cardiac doxorubicin accumulation and preserves function in the rat. J Cardiovasc Pharmacol. 2013;62(3):263-9. DOI:10.1097/FJC.0b013e3182982ce0.; Irwin ML, Crumley D, McTiernan A, et al. Physical activity levels before and after a diagnosis of breast carcinoma: the health, eating, activity, and lifestyle (HEAL) study. Cancer. 2003;97(7):1746-57. DOI:10.1002/cncr.11227.; Rock CL, Flatt SW, Newman V, et al. Factors associated with weight gain in women after diagnosis of breast cancer. Women's healthy eating and living study group. J Am Diet Assoc. 1999;99(10):1212-21. DOI:10.1016/s0002-8223(99)00298-9.; Ashraf J, Roshan VD. Is short-term exercise a therapeutic tool for improvement of cardioprotection against DOX-induced cardiotoxicity? An experimental controlled protocol in rats. Asian Pac J Cancer Prev. 2012;13(8):4025-30. PMID: 23098511.; Aakre KM, Omland T. Physical activity, exercise and cardiac troponins: Clinical implications. Prog Cardiovasc Dis. 2019;62(2):108-115. DOI:10.1016/j.pcad.2019.02.005.; Schmitz KH, Courneya KS, Matthews C, et al. American College of Sports Medicine roundtable on exercise guidelines for cancer survivors. Med Sci Sports Exerc. 2010;42(7):1409-26. DOI:10.1249/MSS.0b013e3181e0c112.; van Dalen EC, van der Pal HJ, Kremer LC. Different dosage schedules for reducing cardiotoxicity in people with cancer receiving anthracycline chemotherapy. Cochrane Database Syst Rev. 2016;3(3):CD005008. DOI:10.1002/14651858.CD005008.pub4.; Sercombe L, Veerati T, Moheimani F, et al. Advances and challenges of liposome assisted drug delivery. Front Pharmacol. 2015;6:286. DOI:10.3389/fphar.2015.00286.; Рукавицын О.А., Поп В.П. Современные возможности применения пегилированного липосомального доксорубицина (келикс) в гематологии. Онкогематология. 2008;(1-2):75-84.; Артамонова Е.В. Место пегилированного липосомального доксорубицина в терапии метастатического рака молочной железы. Опухоли Женской Репродуктивной Системы. 2016;12(2):35-45. DOI:10.17650/1994-4098-2016-12-2-35-45.; Schloemer NJ, Brickler M, Hoffmann R, et al. Administration of dexrazoxane improves cardiac indices in children and young adults with acute myeloid leukemia (AML) while maintaining survival out-comes. J Pediatr Hematol Oncol. 2017;39(5):e254-e8. DOI:10.1097/MPH.0000000000000838.; Reichardt P, Tabone MD, Mora J, et al. Risk-benefit of dexrazoxane for preventing anthracy-cline-related cardiotoxicity: re-evaluating the European labeling. Future Oncol. 2018;14(25):2663-76. DOI:10.2217/fon-2018-0210.; Zhou L, Sung RY, Li K, et al. Cardioprotective effect of dexrazoxane in a rat model of myocardial infarction: anti-apoptosis and promoting angiogenesis. Int J Cardiol. 2011;152(2):196-201. DOI:10.1016/j.ijcard.2010.07.015.; Xiang P, Deng HY, Li K, et al. Dexrazoxane protects against doxorubicin-induced cardiomyopathy: upregulation of Akt and Erk phosphorylation in a rat model. Cancer Chemother Pharmacol. 2009;63(2):343-49. DOI:10.1007/s00280-008-0744-4.; Oesterle A, Laufs U, Liao JK. Pleiotropic effects of statins on the cardiovascular system. Circ Res. 2017;120(1):229-43. DOI:10.1161/CIRCRESAHA.116.308537.; Seicean S, Seicean A, Plana JC, et al. Effect of statin therapy on the risk for incident heart failure in patients with breast cancer receiving anthracycline chemotherapy: an observational clinical cohort study. J Am Coll Cardiol. 2012;60(23):2384-90. DOI:10.1016/j.jacc.2012.07.067.; Chotenimitkhun R, D'Agostino RJr, Lawrence JA, et al. Chronic statin administration may attenuate early anthracycline associated declines in left ventricular ejection function. Can J Cardiol. 2015;31(3):302-7. DOI:10.1016/j.cjca.2014.11.020.; Mendieta G, Ben-Aicha S, Casani L, et al. Molecular pathways involved in the cardioprotective effects of intravenous statin administration during ischemia. Basic Res Cardiol. 2019;115(1):2. DOI:10.1007/s00395-019-0760-z.; Zhang L, Cheng L, Wang Q, et al. Atorvastatin protects cardiomyocytes from oxidative stress by inhibiting LOX-1 expression and cardiomyocyte apoptosis. Acta Biochim Biophys Sin (Shang-hai). 2015;47(3):174-82. DOI:10.1093/abbs/gmu131.; Riad A, Bien S, Westermann D, et al. Pretreatment with statin attenuates the cardiotoxicity of Doxorubicin in mice. Cancer Res. 2009;69(2):695-9. DOI:10.1158/0008-5472.CAN-08-3076.; Ланкин В.З., Тихазе А.К., Коновалова Г.Г. Влияние гиполипидемической терапии на уровень окислительно-модифицированных липопротеидов низкой плотности. Российский Кардиологический Журнал. 2018;(8):39-44. DOI:10.15829/1560-4071-2018-8-39-44.; Unlu S, Nurkoç SG, Sezenoz B, et al. Impact of statin use on high sensitive troponin T levels with moderate exercise. Acta Cardiol. 2019;74(5):380-5. DOI:10.1080/00015385.2018.1510801.; Godoy JC, Niesman IR, Busija AR, et al. Atorvastatin, but not pravastatin, inhibits cardiac Akt/mTOR signaling and disturbs mitochondrial ultrastructure in cardiac myocytes. FASEB J. 2019;33(1):1209-25. DOI:10.1096/fj.201800876R.; Nabati M, Janbabai G, Baghyari S, et al. Cardioprotective effects of Carvedilol in inhibiting doxorubicin-induced cardiotoxicity. J Cardiovasc Pharmacol. 2017;69(5):279-85. DOI:10.1097/FJC.0000000000000470.; Avila MS, Ayub-Ferreira SM, de Barros Wanderley MRJr, et al. Carvedilol for Prevention of Chemotherapy-Related Cardiotoxicity: The CECCY Trial. J Am Coll Cardiol. 2018;71(20):2281-90. DOI:10.1016/j.jacc.2018.02.049.; Kaya MG, Ozkan M, Gunebakmaz O, et al. Protective effects of nebivolol against anthracycline-induced cardiomyopathy: a randomized control study. Int J Cardiol. 2013;167(5):2306-10. DOI:10.1016/j.ijcard.2012.06.023.; Gulati G, Heck SL, Ree AH, et al. Prevention of cardiac dysfunction during adjuvant breast cancer therapy (PRADA): a 2 x 2 factorial, randomized, placebo-controlled, double-blind clinical trial of candesartan and metoprolol. Eur Heart J. 2016;37(21):1671-80. DOI:10.1093/eurheartj/ehw022.; Liu J, Masoudi FA, Spertus JA, et al. Patterns of use of angiotensin-converting enzyme inhibitors/angiotensin receptor blockers among patients with acute myocardial infarction in China from 2001 to 2011: China PEACE-Retrospective AMI Study. J Am Heart Assoc. 2015;4(2):e001343. DOI:10.1161/JAHA.114.001343.; Cardinale D, Colombo A, Sandri MT, et al. Prevention of high-dose chemotherapy-induced cardiotoxicity in high-risk patients by angiotensin-converting enzyme inhibition. Circulation. 2006;114(23):2474-81. DOI:10.1161/CIRCULATIONAHA.106.635144.; Chan KY, Zhou L, Xiang P, et al. Thrombopoietin improved ventricular function and regulated remodeling genes in a rat model of myocardial infarction. Int J Cardiol. 2013;167(6):2546-54. DOI:10.1016/j.ijcard.2012.06.038.; Li R, Huang Y, Semple I, et al. Cardioprotective roles of sestrin 1 and sestrin 2 against doxorubicin cardiotoxicity. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 2019;317(1):H39-H48. DOI:10.1152/ajp-heart.00008.2019.; Wang X, Wang XL, Chen HL. et al. Ghrelin inhibits doxorubicin cardiotoxicity by inhibiting excessive autophagy through AMPK and p38-MAPK. Biochem Pharmacol. 2014;88(3):334-50. DOI:10.1016/j.bcp.2014.01.040.; Kida Y, Goligorsky MS. Sirtuins, Cell Senescence, and Vascular Aging. Can J Cardiol. 2016;32(5):634-41. DOI:10.1016/j.cjca.2015.11.022.; Ruan Y, Dong C, Patel J, et al. SIRT1 suppresses doxorubicin-induced cardiotoxicity by regulating the oxidative stress and p38MAPK pathways. Cell Physiol Biochem. 2015;35(3):1116-24. DOI:10.1159/000373937.; Gu J, Hu W, Zhang DD. Resveratrol, a polyphenol phytoalexin, protects against doxorubicin-induced cardiotoxicity. J Cell Mol Med. 2015;19(10):2324-8. DOI:10.1111/jcmm.12633.; Lou Y, Wang Z, Xu Y, et al. Resveratrol prevents doxorubicin-induced cardiotoxicity in H9c2 cells through the inhibition of endoplasmic reticulum stress and the activation of the Sirt1 pathway. Int J Mol Med. 2015;36(3):873-80. DOI:10.3892/ijmm.2015.2291.; Zhang C, Feng Y, Qu S, et al. Resveratrol attenuates doxorubicin-induced cardiomyocyte apoptosis in mice through SIRT1-mediated deacetylation of p53. Cardiovasc Res. 2011;90(3):538-45. DOI:10.1093/cvr/cvr022.; https://www.rpcardio.com/jour/article/view/2663

Availability: https://www.rpcardio.com/jour/article/view/2663
https://doi.org/10.20996/1819-6446-2022-02-11

Nitrogen monoxide participation in the mechanisms of realization of the infarction-limiting effect of post-conditioning using lactate during myocardial ischemia-reperfusion in young and old rats ; Об участии монооксида азота в механизмах реализации инфаркт-лимитирующего эффекта посткондиционирования с помощью лактата при ишемии-реперфузии миокарда у молодых и старых крыс

Authors: F. I. Vismont, S. N. Chepelev, S. V. Goubkin, Ф. И. Висмонт, С. Н. Чепелев, С. В. Губкин

Source: Doklady of the National Academy of Sciences of Belarus; Том 66, № 2 (2022); 206-216 ; Доклады Национальной академии наук Беларуси; Том 66, № 2 (2022); 206-216 ; 2524-2431 ; 1561-8323 ; 10.29235/1561-8323-2022-66-2

Subject Terms: пожилой возраст, lactate, nitric monoxide, infarction-limiting effect, cardioprotection, ischemia, reperfusion, area at risk, zone of infarction, elderly age, лактат, монооксид азота, инфаркт-лимитирующий эффект, кардиопротекция, ишемия, реперфузия, зона риска, зона некроза

File Description: application/pdf

Relation: https://doklady.belnauka.by/jour/article/view/1056/1052; Кардиопротективные эффекты ишемического кондиционирования: современные представления о механизмах, экспериментальные подтверждения, клиническая реализация / А. Е. Баутин [и др.] // Трансляционная медицина. – 2016. – Т. 3, № 1. – С. 50–62. https://doi.org/10.18705/2311-4495-2016-3-1-50-62; Donato, M. Protecting the heart from ischemia/reperfusion injury: an update on remote ischemic preconditioning and postconditioning / M. Donato, P. Evelson, R. J. Gelpi // Curr Opin Cardiol. – 2017. – Vol. 32, N 6. – P. 784–790. https://doi.org/10.1097/hco.0000000000000447; Маслов, Л. Н. Феномен ишемического посткондиционирования сердца. Анализ клинических данных / Л. Н. Маслов, А. Ю. Подоксёнов, И. Г. Халиулин // Ангиология и сосудистая хирургия. – 2017. – Т. 23, № 1. – С. 21–28.; Inhibition of myocardial injury by ischemic postconditioning during reperfusion: comparison with ischemic preconditioning / Z.-Q. Zhao [et al.] // Am J. Physiol. Heart Circ. Physiol. – 2003. – Vol. 285, N 2. – P. H579–H588. https://doi.org/10.1152/ajpheart.01064.2002; Remote ischaemic pre- and delayed postconditioning – similar degree of cardioprotection but distinct mechanisms / М. Basalay [et al.] // Experimental Physiology. – 2012. – Vol. 97, N 8. – P. 908–917. https://doi.org/10.1113/expphysiol.2012.064923; Pharmacological Conditioning of the Heart: An Update on Experimental Developments and Clinical Implications / S. Roth [et al.] // Int. J. Mol. Sci. – 2021. – Vol. 22, N 5. – Art. 2519. https://doi.org/10.3390/ijms22052519; Nitric oxide-mediated relaxation to lactate of coronary circulation in the isolated perfused rat heart / J. J. Montoya [et al.] // J. Cardiovasc. Pharmacol. – 2011. – Vol. 58, N 4. – P. 392–398. https://doi.org/10.1097/fjc.0b013e318226bcf7; Free radical scavenging and antioxidant effects of lactate ion: an in vitro study / С. Groussard [et al.] / J. Appl. Physiol. – 2000. – Vol. 89, N 1. – P. 169–175. https://doi.org/10.1152/jappl.2000.89.1.169; Клинические аспекты динамики лактата крови во время операций на сердце и аорте в условиях искусственного кровообращения / Н. А. Трекова [и др.] // Анестезиология и реанимация. – 2016. – Т. 61, № 5. – С. 324–329.; Brooks, G. A. The science and translation of lactate shuttle theory / G. A. Brooks // Cell Metabolism. – 2018. – Vol. 27, N. 4. – P. 757–785. https://doi.org/10.1016/j.cmet.2018.03.008; Myocardial glucose and lactate metabolism during rest and atrial pacing in humans / B. C. Bergman [et al.] // J. Physiol. – 2009. – Vol. 587, N 9. – P. 2087–2099. https://doi.org/10.1113/jphysiol.2008.168286; Failure to protect against myocardial ischemia-reperfusion injury with sevoflurane postconditioning in old rats in vivo / H. Li [et al.] // Acta Anaesthesiol Scand. – 2013. – Vol. 57, N 8. – P. 1024–1031. https://doi.org/10.1111/aas.12156; Юшкевич, П. Ф. Противоишемический и антиаритмический эффекты феноменов дистантного ишемического пре- и посткондиционирования у старых крыс / П. Ф. Юшкевич, Ф. И. Висмонт, А. Г. Мрочек // Кардиология в Беларуси. – 2013. – № 5. – С. 96–106.; Чепелев, С. Н. О значимости монооксида азота в реализации инфаркт-лимитирующего эффекта дистантного ишемического посткондиционирования при ишемии-реперфузии миокарда у молодых и старых крыс / С. Н. Чепелев, Ф. И. Висмонт // Вес. Нац. aкад. навук Беларусі. Сер. мед. навук. – 2020. – Т. 17, № 3. – С. 353–363. https://doi.org/10.29235/1814-6023-2020-17-3-353-363; NO в сигнальном каскаде фармакологического прекондиционирования при ишемии-реперфузии миокарда / Л. М. Даниленко [и др.] // Ведомости Науч. центра экспертизы средств мед. применения. – 2015. – № 2. – С. 40–44.; https://doklady.belnauka.by/jour/article/view/1056

Availability: https://doklady.belnauka.by/jour/article/view/1056
https://doi.org/10.29235/1561-8323-2022-66-2-206-216

Lercanidipine – new possibilities of the good-known molecule

Authors: Barna, O. N., Odynets, M. О.

Source: Medicine of Ukraine; № 2(218) (2018); 10-13
Лекарства Украины; № 2(218) (2018); 10-13
Ліки України; № 2(218) (2018); 10-13

Subject Terms: 616.12-008.331.1-085:616-056.52:616-005.98, кардиопротекция, гипертензия, антагонисты кальция, кардіопротекція, гіпертензія, антагоністи кальцію, cardioprotection, hypertension, calcium antagonists, 3. Good health

File Description: application/pdf

Access URL: http://lu-journal.com.ua/article/download/195622/198582
http://lu-journal.com.ua/article/view/195622
http://lu-journal.com.ua/article/download/195622/198582
http://lu-journal.com.ua/article/view/195622

Влияние длительности искусственного кровообращения при операциях на сердце у новорожденных детей с врожденными пороками сердца на неблагоприятные исходы ; Influence of artificial blood circulation during heart surgery in newborns with congenital heart defects on adverse outcomes

Authors: Tarasova, E. M., Bydantsev M. A., Svalov A. I., Gagarina E. M., Тарасова, Е. М., Быданцев, М. А., Свалов, А. И., Гагарина, Е. М.

Source: Сборник статей

Subject Terms: CARDIOPROTECTION, ARTIFICIAL CIRCULATION, КАРДИОПРОТЕКЦИЯ, ИСКУССТВЕННОЕ КРОВООБРАЩЕНИЕ

File Description: application/pdf

Relation: Актуальные вопросы современной медицинской науки и здравоохранения: Материалы VI Международной научно-практической конференции молодых учёных и студентов, посвященной году науки и технологий, (Екатеринбург, 8-9 апреля 2021): в 3-х т.; http://elib.usma.ru/handle/usma/6918

Availability: http://elib.usma.ru/handle/usma/6918

CARDIOPROTECTION DURING PRIMARY PERCUTANEOUS CORONARY INTERVENTION IN PATIENTS WITH MYOCARDIAL INFARCTION

Authors: IVAN E. Vereschagin, VLADIMIR I. Ganyukov, IRINA N. Sizova, EVGENIY I. Vereschagin

Source: Фундаментальная и клиническая медицина, Vol 2, Iss 4, Pp 79-84 (2017)

Subject Terms: острый инфаркт миокарда, кардиопротекция, Medicine (General), myocardial infarction, R5-920, coronary stenting, cardioprotection, myocardial reperfusion injury, реперфузионные поражения миокарда, стентирование коронарной артерии

Access URL: https://doaj.org/article/3e4cd6b1bf484ae7b8cf66b572933b44

Pleiotropic effects of levosimendan on the heart and other organs

Authors: V. V. Lomivorotov, V. A. Boboshko

Source: Патология кровообращения и кардиохирургия, Vol 21, Iss 2, Pp 14-28 (2017)

Subject Terms: кардиопротекция, 03 medical and health sciences, кардиотонические препараты, 0302 clinical medicine, RD1-811, плейотропные эффекты, органопротекция, Surgery, сердечная недостаточность, кардиогенный шок, левосимендан, инфаркт миокарда, 3. Good health

Access URL: http://journalmeshalkin.ru/index.php/heartjournal/article/download/449/393
https://doaj.org/article/524bc0001bb646f89a1bbe615fb9be54
http://journalmeshalkin.ru/index.php/heartjournal/article/download/449/393
https://core.ac.uk/display/88551963
https://cyberleninka.ru/article/n/pleyotropnye-effekty-levosimendana-na-serdtse-i-drugie-organy
http://journalmeshalkin.ru/index.php/heartjournal/article/view/449/393

Кардиопротекция с использованием экзогенного фосфокреатина при общехирургических операциях и критических состояниях. Обзор литературы

Authors: А. Г. Яворовский, Александр Максимович Попов, П. В. Ногтев

Source: Вестник интенсивной терапии, Iss 3 (2020)

Subject Terms: кардиопротекция, фосфокреатин, миокард, периоперационный период, интенсивная терапия, Medical emergencies. Critical care. Intensive care. First aid, RC86-88.9

File Description: electronic resource

Relation: https://intensive-care.ru/index.php/acc/article/view/34; https://doaj.org/toc/1726-9806; https://doaj.org/toc/1818-474X

Access URL: https://doaj.org/article/8c7ca65ba4bc46af849206509d1623a5

Фармакологическое прекондиционирование

Authors: Михаил Юрьевич Зенько, Елена Александровна Рыбникова

Source: Интегративная физиология, Vol 1, Iss 1 (2020)

Subject Terms: фармакологическое прекондиционирование, нейропротекция, кардиопротекция, трансляционная медицина, Physiology, QP1-981

File Description: electronic resource

Relation: https://intphysiology.ru/index.php/main/article/view/5; https://doaj.org/toc/2687-1270

Access URL: https://doaj.org/article/8213b4e8ca5544af960eb234815c91e8

Reduction of risk of perioperative complications in case of cardiac comorbidity ; Снижение риска периоперационных осложнений при кардиальной коморбидности

Authors: I. A. Kozlov, A. M. Ovezov, A. A. Pivovarova, И. А. Козлов, А. М. Овезов, А. А. Пивоварова

Source: Messenger of ANESTHESIOLOGY AND RESUSCITATION; Том 17, № 2 (2020); 38-48 ; Вестник анестезиологии и реаниматологии; Том 17, № 2 (2020); 38-48 ; 2541-8653 ; 2078-5658

Subject Terms: адъювантная кардиопротекция, non-cardiac surgery, cardiac comorbidity, myocardial infarction, myocardial injury, heart failure, natriuretic peptides, adjuvant cardioprotection, некардиальные операции, кардиальная коморбидность, инфаркт миокарда, повреждение миокарда, сердечная недостаточность, натрийуретические пептиды

File Description: application/pdf

Relation: https://www.vair-journal.com/jour/article/view/418/410; Заболотских И. Б., Лебединский К. М., Григорьев Е. В. и др. Периоперационное ведение больных с сопутствующей ишемической болезнью сердца. Клинические рекомендации. В книге: Анестезиология-реаниматология. Клинические рекомендации / Под ред. И. Б. Заболотских, Е. М. Шифмана. ‒ М.: ГЕОТАР-Медиа, 2016. ‒ С. 54‒89.; Козлов И. А., Овезов А. М., Петровская Э. Л. Периоперационное повреждение миокарда и сердечная недостаточность в некардиальной хирургии (обзор). Часть 1. Этиопатогенез и прогнозирование периоперационных кардиальных осложнений // Общая реаниматология. ‒ 2019. ‒ Т. 15, № 2. ‒ С. 53‒78. https://doi.org/10.15360/1813-9779-2019-2-53-78.; Козлов И. А., Овезов А. М., Петровская Э. Л. Периоперационное повреждение миокарда и сердечная недостаточность в некардиальной хирургии (обзор). Часть 2. Снижение риска периоперационных кардиальных осложнений с помощью фармакологических мер и оптимизации анестезиолого-реаниматологического обеспечения // Общая реаниматология. ‒ 2019. ‒ Т. 15, № 3. ‒ С. 83‒101. https://doi.org/10.15360/1813-9779-2019-3-83-101.; Козлов И. А., Харламова И. Е. Натрийуретические пептиды: биохимия, физиология, клиническое значение // Общая реаниматология. ‒ 2009. ‒ Т. 15, № 1. ‒ С. 89‒97. https://doi.org/10.15360/1813-9779-2009-1-89.; Ломиворотов В. В., Ефремов С. М., Абубакиров М. Н. и др. Стоит ли отменять статины в периоперационном периоде? // Вестник анестезиологии и реаниматологии. ‒ 2018. ‒ Т. 15, № 4. ‒ С. 86‒90. DOI:10.21292/2078-5658-2018-15-4-86-90.; Ломиворотов В. В., Ломиворотов В. Н. Периоперационное повреждение и инфаркт миокарда // Вестник анестезиологии и реаниматологии. ‒ 2019. ‒ Т. 16, № 2. ‒ С. 51‒56. DOI:10.21292/2078-5658-2019-16-2-51-56; Мороз В. В., Добрушина О. Р., Стрельникова Е. П. и др. Предикторы кардиальных осложнений операций на органах брюшной полости и малого таза у больных пожилого и старческого возраста // Общая реаниматология. ‒ 2011. ‒ Т. 7, № 5. ‒ С. 26–31. doi:10.15360/1813-9779-2011-5.; Прогнозирование и профилактика кардиальных осложнений внесердечных хирургических вмешательств. Национальные рекомендации, Всероссийское научное общество кардиологов. М., 2011 // Кардиоваскулярная терапия и профилактика. ‒ 2011. ‒ 10 (6, приложение 3). ‒ С. 1‒28.; Хороненко В. Э., Осипова Н. А., Шеметова М. М. Диагностика и прогнозирование степени риска периоперационных сердечно-сосудистых осложнений у гериатрических пациентов в онкохирургии // Анестезиология и реаниматология. ‒ 2009. ‒ № 4. ‒ С. 22‒27. PMID: 19827200.; Alvarez Escudero J., Calvo Vecino J. M., Veiras S. et al. Working Group of the CPG. Clinical Practice Guideline (CPG). Recommention strategy for reducing risk of heart failure patientsrequiring noncardiac surgery: reducing risk of heartfailure patients in noncardiac surgery // Rev. Esp. Anestesiol. Reanim. ‒ 2015. ‒ Vol. 62, № 7. ‒ Р. 359‒419. doi:10.1016/j.redar.2015.05.002.; De Hert S., Staender S., Fritsch G. et al. Pre-оperative evaluation of adults undergoing elective noncardiac surgery: Updated guideline from the European Society of Anaesthesiology // Eur. J. Anaesthesiol. ‒ 2018. ‒ Vol. 35, № 6. ‒ Р. 407‒465. doi:10.1097/EJA.0000000000000817.; Devereaux P. J. Suboptimal outcome of myocardial infarction after noncardiac surgery: physicians can and should do more // Circulation. ‒ 2018. ‒ Vol. 137, № 22. ‒ Р. 2340‒2343. doi:10.1161/CIRCULATIONAHA.118.033766.; Duceppe E., Parlow J., MacDonald P. et al. Canadian cardiovascular society guidelines on perioperative cardiac risk assessment and management for patients who undergo noncardiac surgery // Can. J. Cardiol. ‒ 2017. ‒ Vol. 33, № 1. ‒ Р. 17‒32. doi:10.1016/j.cjca.2016.09.008.; Fleisher L. A., Fleischmann K. E., Auerbach A. D. et al. American College of Cardiology; American Heart Association. 2014 ACC/AHA guideline on perioperative cardiovascular evaluation and management of patients undergoing noncardiac surgery: a report of the American College of Cardiology/American Heart Association Task Force on practice guidelines // J. Am. Coll. Cardiol. ‒ 2014. ‒ Vol. 64, № 22. ‒ Р. e77‒е137. doi:10.1016/j.jacc.2014.07.944.; Gilbert-Kawai E., Montgomery H. Cardiovascular assessment for non-cardiac surgery: European guidelines // Br. J. Hosp. Med. (Lond). ‒ 2017. ‒ Vol. 78, № 6. ‒ Р. 327‒332. doi:10.12968/hmed.2017.78.6.327.; Kristensen S. D., Knuuti J., Saraste A. et al. 2014 ESC/ESA Guidelines on non-cardiac surgery: cardiovascular assessment and management: The Joint Task Force on non-cardiac surgery: cardiovascular assessment and management of the European Society of Cardiology (ESC) and the European Society of Anaesthesiology (ESA) // Eur. Heart J. ‒ 2014. ‒ Vol. 35, № 35. ‒ Р. 2383‒2431. doi:10.1093/eurheartj/ehu282.; Lee L. K. K., Tsai P. N. W., Ip K. Y. et al. Pre-operative cardiac optimisation: a directed review // Anaesthesia. ‒ 2019. ‒ Vol. 74 (Suppl. 1). ‒ Р. 67‒79. doi:10.1111/anae.14511.; Mureddu G. F. Current multivariate risk scores in patients undergoing non-сardiac surgery // Monaldi Arch. Chest Dis. ‒ 2017. ‒ Vol. 87, № 2. ‒ Р. 848. doi:10.4081/monaldi.2017.848.; Ponikowski P., Voors A. A., Anker S. D. et al. Authors/Task Force Members. 2016 ESC Guidelines for the diagnosis and treatmentof acute and chronic heart failure: The Task Force for the diagnosis and treatment of acute and chronic heart failure of the European Society of Cardiology (ESC). Developed with the special contribution of the Heart Failure Association (HFA) of the ESC // Eur. J. Heart Fail. ‒ 2016. ‒ Vol. 18, № 8. ‒ Р. 891‒975. doi:10.1002/ejhf.592.; Shannon A. H., Mehaffey J. H., Cullen J. M. et al. Preoperative beta blockade is associated with increased rates of 30-day major adverse cardiac events in critical limb ischemia patients undergoing infrainguinal revascularization // J. Vasc. Surg. ‒ 2019. ‒ Vol. 69, № 4. ‒ 1167‒1172.e1. doi:10.1016/j.jvs.2018.07.077.; Thomas H., Turley A., Plummer C. British Heart Rhythm Society Guidelines for the management of patients with cardiac implantable electronic devices (CIEDs) around the time of surgery. 2016. https://bhrs.com/wp-content/uploads/2019/05/Revised-guideline-CIED-and-surgery-Feb-19.pdf.; Thygesen K., Alpert J. S., Jaffe A. S. et al. the Executive Group on behalf of the Joint ESC/ACC/AHAWHF. Fourth universal definition of myocardial infarction (2018) // Eur. Heart J. ‒ 2019. ‒ Vol. 40, № 3. ‒ Р. 237‒269. doi:10.1093/eurheartj/ehy462.; Whelton P. K., Carey R. M., Aronow W. S. et al. Guideline for thе prevention, detection, evaluation, and management of high blood pressure in adults: A Report of the American College of Cardiology/American Heart Association Task Force on Clinical Practice Guidelines // J. Am. Coll. Cardiol. ‒ 2018. ‒ Vol. 71, № 19. ‒ Р. e127‒e248. doi:10.1016/j.jacc.2017.11.006. Epub 2017 Nov 13. Review. No abstract available. Erratum in: J. Am. Coll. Cardiol. ‒ 2018. ‒ Vol. 71, № 19. ‒ Р. 2275‒2279.; Yancy C. W., Jessup M., Bozkurt B. et al. ACCF/AHA Guideline for the management of heart failure: A Report of the American College of Cardiology Foundation/American Heart Association Task Force on Practice Guidelines // Circulation. ‒ 2013. ‒ Vol. 128, № 16. ‒ Р. 1810‒1852. doi:10.1161/CIR.0b013e31829e8807.; Yancy C. W., Jessup M., Bozkurt B. et al. 2017 ACC/AHA/HFSA Focused Update of the 2013ACCF/AHA Guideline for the Management of Heart Failure: A Report of the American College of Cardiology/American Heart Association Task Force on Clinical Practice Guidelines and the Heart FailureSociety of America // J. Card Fail. ‒ 2017. ‒ Vol. 23, № 8. ‒ Р. 628‒651. doi:10.1016/j.cardfail.2017.04.014.

Availability: https://www.vair-journal.com/jour/article/view/418
https://doi.org/10.21292/2078-5658-2020-17-2-38-48

Cardioprotective Properties Of Xenon ; Кардиопротективные свойства ксенона

Authors: A. I. Shpichko, O. A. Grebenchikov, I. V. Molchanov, A. K. Shabanov, N. P. Shpichko, K. K. Kadantseva, А. И. Шпичко, О. А. Гребенчиков, И. В. Молчанов, А. К. Шабанов, Н. П. Шпичко, К. К. Каданцева

Source: Russian Sklifosovsky Journal "Emergency Medical Care"; Том 9, № 2 (2020); 264-272 ; Журнал им. Н.В. Склифосовского «Неотложная медицинская помощь»; Том 9, № 2 (2020); 264-272 ; 2541-8017 ; 2223-9022 ; 10.23934/2223-9022-2020-9-2

Subject Terms: кардиохирургия, cardioprotection, ischemia-myocardial reperfusion, cardiac arrest, non-cardiac surgery, cardiac surgery, кардиопротекция, ишемия-реперфузия миокарда, остановка сердца, некардиальная хирургия

File Description: application/pdf

Relation: https://www.jnmp.ru/jour/article/view/940/777; https://www.jnmp.ru/jour/article/view/940/864; The BARI investigators. The final 10-year follow-up results from the BARI randomized trial. J Am Coll Cardiol. 2007;49(15):1600–1606. PMID: 17433949 https://doi.org/10.1016/j.jacc.2006.11.048; Al-Hijji M, El Sabbagh A, Holmes DR. Revascularization for Left Main and Multivessel Coronary Artery Disease: Current Status and Future Prospects after the EXCEL and NOBLE Trials. Korean Circ J. 2018;48(6): 447–462. PMID: 29856140 https://doi.org/10.4070/kcj.2018.0078; Møller CH, Penninga L, Wetterslev J, Steinbrüchel DA, Gluud C. Offpump versus on-pump coronary artery bypass grafting for ischaemic heart disease. Cochrane Database Syst Rev. 2012;(3):CD007224. PMID: 22419321 https://doi.org/10.1002/14651858.CD007224.pub2; Козлов И.А., Овезов А.М., Петровская Э.Л. Периоперационные повреждение миокарда и сердечная недостаточность в некардиальной хирургии (обзор). Часть 1. Этиопатогенез и прогнозирование периоперационных кардиальных осложнений. Общая реаниматология. 2019;15(2): 53–78. https://doi.org/10.15360/1813-9779-2019-2-53-78; Devereaux PJ, Goldman L, Cook DJ, Gilbert K, Leslie K, Guyatt GH. Perioperative cardiac events in patients undergoing noncardiac surgery: a review of the magnitude of the problem, the pathophysiology of the events and methods to estimate and communicate risk. CMAJ. 2005;173(6):627–634. PMID: 16157727 https://doi.org/10.1503/cmaj.050011; Kristensen SD, Knuuti J, Saraste A, Anker S, Bøtker HE, De Hert S, et al. ESC/ESA Guidelines on non–cardiac surgery: cardiovascular assessment and management: The Joint Task Force on non-cardiac surgery: cardiovascular assessment and management of the European Society of Cardiology (ESC) and the European Society of Anaesthesiology (ESA). Eur J Anaesthesiol. 2014;31(10):517–573. PMID: 25127426 https://doi.org/10.1097/EJA.0000000000000150; Лихванцев В.В., Скрипкин Ю.В., Гребенчиков О.А., Ильин Ю.В., Шапошников Б.А., Мироненко А.В. Механизмы действия и основные эффекты галогенсодержащих анестетиков. Вестник интенсивной терапии. 2013;(3):44–51.; Мороз В.В., Силачев Д.Н., Плотников Е.Ю., Зорова Л.Д., Певзнер И.Б., Гребенчиков О.А., и др. Механизмы повреждения и защиты клетки при ишемии/реперфузии и экспериментальное обоснование применения препаратов на основе лития в анестезиологии. Общая реаниматология. 2013;9(1):63–72.; Kersten JR, Schmeling М, Pagel PS, Gross GJ, Warltier DC. Isoflurane mimics ischemic preconditioning via activation of K (ATP) channels. Reduction of myocardial infarct size with acute memory phase. Anesthesiology. 1997;87(2):361–370. PMID: 9286901 https://doi.org/10.1097/00000542-199708000-00024; De Hert SG, Turani F, Mathur S, Stowe DF. Cardioprotection with volatile anesthetics: mechanisms and clinical implications. Anesth Analg. 2005;100(6):1584–1593. PMID: 15920178 https://doi.org/10.1213/01.ANE.0000153483.61170.0C; Murry CE, Richard VJ, Jennings RB, Reimer KA. Myocardial protection is lost before contractile function recovers from ischemic preconditioning. Am J Physiol. 1991;260(3,Pt2):796–805. PMID: 2000974 https://doi.org/10.1152/ajpheart.1991.260.3.H796; Roehl AB, Funcke S, Becker MM, Goetzenich A, Bleilevens C, Rossaint R, et al. Xenon and isoflurane reduce left ventricular remodeling after myocardial infarction in the rat. Anesthesiology. 2013;118(6):1385–1394. PMID: 23364599 https://doi.org/10.1097/ALN.0b013e31828744c0; Schwiebert C, Huhn R, Heinen A, Weber NC, Hollmann MW, Schlack W, et al. Postconditioning by xenon and hypothermia in the rat heart in vivo. Eur J Anaesthesiol. 2010;27(8):734–739. PMID: 20051868 https://doi.org/10.1097/EJA.0b013e328335fc4c; Li Q, Lian C, Zhou R, Li T, Xiang X, Liu B. Pretreatment with xenon protected immature rabbit heart from ischaemia/reperfusion injury by opening of the mitoKATP channel. Heart Lung Circ. 2013;22(4):276–283. PMID: 23261327 https://doi.org/10.1016/j.hlc.2012.10.016; Mio Y, Shim YH, Richards E, Bosnjak ZJ, Pagel PS, Bienengraeber M. Xenon preconditioning: the role of prosurvival signaling, mitochondrial permeability transition and bioenergetics in rats. Anesth Analg. 2009;108(3):858–866. PMID: 19224794 https://doi.org/10.1213/ane.0b013e318192a520; Hausenloy DJ, Lecour S, Yellon DM. Reperfusion injury salvage kinase and survivor activating factor enhancement prosurvival signaling pathways in ischemic postconditioning: two sides of the same coin. Antioxid Redox Signal. 2011;14(5):893–907. PMID: 20615076 https://doi.org/10.1089/ars.2010.3360; Weber NC, Toma O, Wolter JI, Obal D, Müllenheim J, Preckel B, et al. The noble gas xenon induces pharmacological preconditioning in the rat heart in vivo via induction of PKC-epsilon and p38 MAPK. Br J Pharmacol. 2005;144(1):123–132. PMID: 15644876 https://doi.org/10.1038/sj.bjp.0706063; Weber NC, Toma O, Wolter JI, Wirthle NM, Schlack W, Preckel B. Mechanisms of xenon- and isoflurane-induced preconditioning - a potential link to the cytoskeleton via the MAPKAPK-2/HSP27 pathway. Br J Pharmacol. 2005;146(3):445–55. PMID: 16086037 https://doi.org/10.1038/sj.bjp.0706324; Liu W, Liu Y, Chen H, Liu K, Tao H, Sun X. Xenon preconditioning: molecular mechanisms and biological effects. Med Gas Res. 2013;3(1):3. PMID: 23305274 https://doi.org/10.1186/2045-9912-3-3; Simkhovich BZ, Przyklenk K, Kloner RA. Role of protein kinase C in ischemic “conditioning”: from first evidence to current perspectives. J Cardiovasc Pharmacol Ther. 2013;18(6):525–532. PMID: 23872508 https://doi.org/10.1177/1074248413494814; Weber NC, Toma O, Damla H, Wolter JI, Schlack W, Preckel B. Upstream signaling of protein kinase C-epsilon in xenon-induced pharmacological preconditioning. Implication of mitochondrial adenosine triphosphate dependent potassium channels and phosphatidylinositol-dependent kinase-1. Eur J Pharmacol. 2006;539(1–2):1–9. PMID: 16716295 https://doi.org/10.1016/j.ejphar.2006.03.054; Weber NC, Stursberg J, Wirthle NM, Toma O, Schlack W, Preckel B. Xenon preconditioning differently regulates p44/42 MAPK (ERK 1/2) and p46/54 MAPK (JNK 1/2 and 3) in vivo. Br J Anaesth. 2006;97(3):298– 306. PMID: 16793779 https://doi.org/10.1093/bja/ael153; Weber NC, Frässdorf J, Ratajczak C, Grueber Y, Schlack W, Hollmann MW, et al. Xenon induces late cardiac preconditioning in vivo: a role for cyclooxygenase 2? Anesth Analg. 2008;107(6):1807–1813. PMID: 19020121 https://doi.org/10.1213/ane.Ob013e31818874bf; Weber NC, Kandler J, Schlack W, Grueber Y, Frädorf J, Preckel B. Intermitted pharmacologic pretreatment by xenon, isoflurane, nitrous oxide, and the opioid morphine prevents tumor necrosis factor alphainduced adhesion molecule expression in human umbilical vein endothelial cells. Anesthesiology. 2008;108(2):199–207. PMID: 18212564 https://doi.org/10.1097/01.anes.0000299441.32091.ed; Rossaint R, Reyle-Hahn M, Schulte Am Esch J, Scholz J, Scherpereel P, Vallet B, et al. Multicenter randomized comparison of the efficacy and safety of xenon and isoflurane in patients undergoing elective surgery. Anesthesiology. 2003;98(1):6–13. PMID: 12502972 https://doi.org/10.1097/00000542-200301000-00005; Wappler F, Rossaint R, Baumert J, Scholz J, Tonner PH, van Aken H, et al. Multicenter randomized comparison of xenon and isoflurane on left ventricular function in patients undergoing elective surgery. Anaesthesiology. 2007;106(3):463–471. PMID: 17325504 https://doi.org/10.1097/00000542-200703000-00010; Baumert JH, Roehl AB, Funcke S, Hein M. Xenon protects left ventricular diastolic function during acute ischemia, less than ischemic preconditioning. Med Gas Res. 2016;6(3):130–137. PMID: 27867480 https://doi.org/10.4103/2045-9912.191358; Preckel B, Müllenheim J, Moloschavij A, Thämer V, Schlack W. Xenon administration during early reperfusion reduces infarct size after regional ischemia in the rabbit heart in vivo. Anesth Analg. 2000;91(6):1327–1332. PMID: 11093973 https://doi.org/10.1097/00000539-200012000-00003; Coburn M, Kunitz O, Baumert JH, Hecker K, Haaf S, Zühlsdorff A, et al. Randomized controlled trial of the haemodynamic and recovery effects of xenon or propofol anaesthesia. Br J Anaesth. 2005;94(2):198–202. PMID: 15531620 https://doi.org/10.1093/bja/aei023; Baumert JH, Hein M, Hecker KE, Satlow S, Neef P, Rossaint R. Xenon or propofol anaesthesia for patients at cardiovascular risk in non-cardiac surgery. Br J Anaesth. 2008;100(5):605–611. PMID: 18344556 https://doi.org/10.1093/bja/aen050; Law LS, Lo EA, Gan TJ. Xenon anesthesia: A systematic review and metaanalysis of randomized controlled trials. Anesth Analg. 2016;122(3):678–697. PMID: 26273750 https://doi.org/10.1213/ANE.0000000000000914; Xia Y, Fang H, Xu J, Jia C, Tao G, Yu B. Clinical efficacy of xenon versus propofol: A systematic review and meta-analysis. Medicine (Baltimore). 2018;97(20):e10758. PMID: 29768360 https://doi.org/10.1097/MD.0000000000010758; Dingley J, King R, Hughes L, Terblanche C, Mahon S, Hepp M, et al. Exploration of xenon as a potential cardiostable sedative: a comparison with propofol after cardiac surgery. Anaesthesia. 2001;56(9):829–835. PMID: 11531666 https://doi.org/10.1046/j.1365-2044.2001.02139.x; Stoppe C, Fahlenkamp AV, Rex S, Veeck NC, Gozdowsky SC, Schälte G, et al. Feasibility and safety of xenon compared with sevoflurane anaesthesia in coronary surgical patients: A randomized controlled pilot study. Br J Anaesth. 2013;111(3):406–416. PMID: 23578862 https://doi.org/10.1093/bja/aet072; Lockwood GG, Franks NP, Downie NA, Taylor KM, Maze M. Feasibility and safety of delivering xenon to patients undergoing coronary artery bypass graft surgery while on cardiopulmonary bypass: Phase I study. Anesthesiology. 2006;104(3):458–465. PMID: 16508392 https://doi.org/10.1097/00000542-200603000-00012; Al Tmimi L, Van Hemelrijck J, Van de Velde M, Sergeant P, Meyns B, Missant C, et al. Xenon anaesthesia for patients undergoing offpump coronary artery bypass graft surgery: A prospective randomized controlled pilot trial. Br J Anaesth. 2015;115(4):550–559. PMID: 26385664 https://doi.org/10.1093/bja/aev303; Mokhtar AT, Begum J, Buth KJ, Legare JF. Cardiac troponin T is an important predictor of mortality after cardiac surgery. J Crit Care. 2017;38:41–46. PMID: 27837691 https://doi.org/10.1016/j.jcrc.2016.10.011; Hofland J, Ouattara A, Fellahi J-L, Gruenewald M, Hazebroucq J, Ecoffey C, et. аl. Effect of Xenon Anesthesia Compared to Sevoflurane and Total Intravenous Anesthesia for Coronary Artery Bypass Graft Surgery on Postoperative Cardiac Troponin Release An International, Multicenter, Phase 3, Single-blinded, Randomized Noninferiority Trial. Anesthesiology. 2017;127(6):918–933. PMID: 28872484 https://doi.org/10.1097/ALN.0000000000001873; Arola O, Saraste A, Laitio R, Airaksinen J, Hynninen M, Bäcklund M, et al. Inhaled Xenon Attenuates Myocardial Damage in Comatose Survivors of Out-of-Hospital Cardiac Arrest: The Xe-Hypotheca Trial. J Am Coll Cardiol. 2017;70(21):2652–2660. PMID: 29169472 https://doi.org/0.1016/j.jacc.2017.09.1088/2017; Hypothermia after Cardiac Arrest Study Group. Mild therapeutic hypothermia to improve the neurologic outcome after cardiac arrest. N Engl J Med. 2002;346(8):549–556. PMID: 11856793 https://doi.org/10.1056/NEJMoa012689; Nielsen N, Wetterslev J, Cronberg T, Erlinge D, Gasche Y, Hassager C, et al. Targeted temperature management at 33°C versus 36°C after cardiac arrest. N Engl J Med. 2013;369(23):2197–2206. PMID: 24237006 https://doi.org/10.1056/NEJMoa1310519; Gräsner JT, Lefering R, Koster RW, Masterson S, Böttiger BW, Herlitz J, et al. EuReCa ONE-27 Nations, ONE Europe, ONE Registry: a prospective one month analysis of out-of-hospital cardiac arrest outcomes in 27 countries in Europe. Resuscitation. 2016;105:88–195. PMID: 27321577 https://doi.org/10.1016/j.resuscitation.2016.06.004; Breuer T, Emontzpohl C, Coburn M, Benstoem C, Rossaint R, Marx G, et al. Xenon triggers pro-inflammatory effects and suppresses the anti-inflammatory response compared to sevoflurane in patients undergoing cardiac surgery. Crit Care. 2015;19:365. PMID: 29623938 https://doi.org/10.4103/1673-5374.228757; https://www.jnmp.ru/jour/article/view/940

Availability: https://www.jnmp.ru/jour/article/view/940
https://doi.org/10.23934/2223-9022-2020-9-2-264-272

Optimization of a Comprehensive Prehabilitation Program for Patients with Stable Coronary Artery Disease Undergoing Elective Coronary Artery Bypass Grafting ; Оптимизация комплексной программы преабилитации пациентов со стабильной ишемической болезнью сердца при выполнении коронарного шунтирования

Authors: Yu. Argunova A., T. Zvereva N., S. Pomeshkina A., A. Ivanova V., O. Polikutina M., O. Gruzdeva V., V. Kashtalap V., O. Barbarash L., Ю. Аргунова А., Т. Зверева Н., С. Помешкина А., А. Иванова В., О. Поликутина М., О. Груздева В., В. Кашталап В., О. Барбараш Л.

Contributors: Работа выполнена в рамках фундаментальной темы НИИ КПССЗ № 0546-2019-0003, № госрегистрации АААА-А16-116011910161-2 от 19.01.2016

Source: Rational Pharmacotherapy in Cardiology; Vol 16, No 4 (2020); 508-515 ; Рациональная Фармакотерапия в Кардиологии; Vol 16, No 4 (2020); 508-515 ; 2225-3653 ; 1819-6446

Subject Terms: coronary artery disease, coronary artery bypass grafting, cardioprotection, prehabilitation, trimetazidine, ишемическая болезнь сердца, коронарное шунтирование, кардиопротекция, преабилитация, триметазидин

File Description: application/pdf

Relation: https://www.rpcardio.com/jour/article/view/2247/2006; https://www.rpcardio.com/jour/article/view/2247/2029; Scheede-Bergdahl C., Minnella E.M., Carli F. Multi-modal prehabilitation: addressing the why, when, what, how, who and where next? Anaesthesia. 2019;74(1):20-6. DOI:10.1111/anae.14505.; Moazzami K., Dolmatova E., Maher J., et al. In-Hospital Outcomes and Complications of Coronary Artery Bypass Grafting in the United States Between 2008 and 2012. J Cardiothorac Vasc Anesth. 2017;31(1):19-25. DOI:10.1053/j.jvca.2016.08.008.; Барбараш О.Л., Жидкова И.И., Шибанова И.А. и др. Влияние коморбидной патологии и возраста на госпитальные исходы пациентов, подвергшихся коронарному шунтированию. Кардиоваскулярная Терапия и Профилактика 2019;18(2):58-64. DOI:10.15829/1728-8800-2019-2-58-64.; Abreu A. Prehabilitation: expanding the concept of cardiac rehabilitation. Eur J Prev Cardiol. 2018; 25(9):970-3. DOI:10.1177/2047487318763666.; Di Napoli P., Chierchia S., Taccardi A.A., et al. Trimetazidine improves post-ischemic recovery by preserving endothelial nitric oxide synthase expression in isolated working rat hearts. Nitric Oxide. 2007;16:228-36. DOI:10.1016/j.niox.2006.09.001.; Павлюкова Е.Н., Гладких Н.Н., Баев А.Е., Карпов Р.С. Глобальная деформация левого желудочка в продольном направлении после стентирования коронарных артерий у пациентов со стабильной ишемической болезнью сердца. Российский Кардиологический Журнал 2016;(2):37-42. DOI:10.15829/1560-4071-2016-2-37-42.; Бокерия Л.А., Аронов Д.М., Барбараш О.Л. и др. Российские клинические рекомендации. Коронарное шунтирование больных ишемической болезнью сердца: реабилитация и вторичная профилактика. CardioСоматика. 2016;7(3-4):5-71.; Brown J., Jenkins C., Marwick T.H. Use of myocardial strain to assess global left ventricular function: a comparison with cardiac magnetic resonance and 3-dimensional echocardiography. Am Heart J. 2009;157(1):101-5. DOI:10.1016/j.ahj.2008.08.032.; Аргунова Ю.А., Ларионов М.В. Периоперационный инфаркт миокарда при выполнении коронарного шунтирования. Основные подходы к диагностике и профилактике. Российский Кардиологический Журнал. 2019;(8):124-31. DOI:10.15829/1560-4071-2019-8-124-131.; Marmelo F., Rocha V., Gonçalves D. The impact of prehabilitation on post-surgical complications in patients undergoing non-urgent cardiovascular surgical intervention: Systematic review and metaanalysis. Eur J Prev Cardiol. 2018;25(4):404-17. DOI:10.1177/2047487317752373.; Valkenet K., Trappenburg J., Hulzebos E., et al. Effects of a pre-operative home-based inspiratory muscle training programme on perceived health-related quality of life in patients undergoing coronary artery bypass graft surgery. Physiotherapy 2017;103(3):276-82. DOI:10.1016/j.physio.2016.02.007.; Аргунова Ю.А., Помешкина С.А., Иноземцева А.А., и др. Клиническая эффективность преабилитации у пациентов, подвергшихся коронарному шунтированию. Комплексные Проблемы Сердечно-сосудистых Заболеваний. 2018;7(4S):15-23. DOI:10.17802/2306-1278-2018-7-4S-15-23.; Thadani U. Trimetazidine for stable and unstable ischemic heart diseases and for heart failure: Is its routine use justified from available data? Int J Cardiol. 2020;300:45-6. DOI:10.1016/j.ijcard.2019.07.093.; Knuuti J., Wijns W., Saraste A., et al. 2019 ESC Guidelines for the diagnosis and management of chronic coronary syndromes: The Task Force for the diagnosis and management of chronic coronary syndromes of the European Society of Cardiology (ESC). Eur Heart J. 2020;41(3):407-77. DOI:10.1093/eurheartj/ehz425.; Zhang N., Lei J., Liu Q., et al. The effectiveness of preoperative trimetazidine on myocardial preservation in coronary artery bypass graft patients: a systematic review and meta-analysis. Cardiology. 2015;131(2):86-96. DOI:10.1159/000375289.; Лопатин Ю.М., Дронова Е.П. Клинико-фармакоэкономические аспекты применения триметазидина модифицированного высвобождения у больных ишемической болезнью сердца, подвергнутых коронарному шунтированию. Кардиология. 2009;49(2):15-21.; Пичугин В., Анцыгина Л., Кордатов П., Максимов А. Прекондиционирование миокарда триметазидином при операциях коронарного шунтирования с искусственным кровообращением. Врач. 2014;4:27-32.; Iskesen I., Kurdal A.T., Eserdag M. et al. Trimetazidine may protect the myocardium during cardiac surgery. Heart Surg Forum. 2009;12(3):E175-9. DOI:10.1532/HSF98.20081133.; Marzilli M., Vinereanu D., Lopaschuk G., et al. Trimetazidine in cardiovascular medicine. Int J Cardiol. 2019;293:39-44. DOI:10.1016/j.ijcard.2019.05.063.; Kang S.J., Lim H.S., Choi B.J., et al. Longitudinal strain and torsion assessed by two dimensional speckle tracking correlate with the serum level of tissue inhibitor of matrix metalloproteinase-1, a marker of myocardial fibrosis, in patients with hypertension. J Am Soc Echocardiogr. 2008;21(8):907-11. DOI:10.1016/j.echo.2008.01.015.; Choi J.O., Cho S.W., Song Y.B., et al. Longitudinal 2D strain at rest predicts the presence of left main and three vessels coronary artery disease in patients without regional wall motion abnormality. Eur J Echocardiogr. 2009;10:695-701. DOI:10.1093/ejechocard/jep041.; Вдовенко Д.В., Либов И.А., Либис Р.А. Тканевая допплерография и speckle-tracking эхокардиография в оценке функционального состояния миокарда левых отделов сердца у больных с хронической сердечной недостаточностью и сохраненной фракцией выброса. Кардиология. 2019;59(2):17-23. DOI:10.18087/cardio.2019.2.10227.; https://www.rpcardio.com/jour/article/view/2247

Availability: https://www.rpcardio.com/jour/article/view/2247
https://doi.org/10.20996/1819-6446-2020-08-06

Primary prevention of cardiovascular diseases in diabetes mellitus: 2020 strategy ; Первичная профилактика кардиоваскулярных заболеваний при сахарном диабете: стратегия-2020

Authors: V. I. Novikov, K. Yu. Novikov, В. И. Новиков, К. Ю. Новиков

Source: Meditsinskiy sovet = Medical Council; № 4 (2020); 42-49 ; Медицинский Совет; № 4 (2020); 42-49 ; 2658-5790 ; 2079-701X ; 10.21518/2079-701X-2020-4

Subject Terms: кардиопротекция, cardiovascular diseases, acetylsalicylic acid, primary prevention, cardioprotection, сердечно-сосудистые заболевания, ацетилсалициловая кислота, первичная профилактика

File Description: application/pdf

Relation: https://www.med-sovet.pro/jour/article/view/5601/5102; Williams R. (ed.) IDF Diabetes Atlas Committee. 9th ed. 2019. Available at: https://www.diabetesatlas.org/en/sections/demographic-and-geographic-outline.html.; Harding J.L., Pavkov M.E., Magliano D.J., Shaw J.E., Gregg E.W. Global trends in diabetes complications: a review of current evidence. Diabetologia. 2019;62:3-16. Available at: https://link.springer.com/article/10.1007/s00125-018-4711-2.; Rawshani A., Rawshani A., Sattar N., Franzen S., McGuire D.K., Eliasson B. et al. Relative Prognostic Importance and Optimal Levels of Risk Factors for Mortality and Cardiovascular Outcomes in Type 1 Diabetes Mellitus. Circulation. 2019;139(16):1900-1912. doi:10.1161/; Rawshani A., Rawshani A., Franzen S., Sattar N., Eliasson B., Svensson A.M. et al. Risk Factors, Mortality, and Cardiovascular Outcomes in Patients with Type 2 Diabetes. N Engl J Med. 2018;379:633-644. doi:10.1056/NEJMoa1800256.; Rawshani A., Rawshani A., Franzen S., Eliasson B., Svensson A.M., Miftaraj M. et al. Mortality and Cardiovascular Disease in Type 1 and Type 2 Diabetes. N Engl J Med. 2017;376:1407-1418. doi:10.1056/nej-moa1608664.; Дедов И.И., Шестакова М.В., Викулова О. К., Исаков М.А., Железнякова А.В. Атлас регистра сахарного диабета Российской Федерации. Статус 2018 г. Сахарный диабет. 2019;22(S2-2):4-61. Режим доступа: https://dia-endo-journals.ru/dia/issue/view/1100.; Emerging Risk Factors Collaboration. Sarwar N., Gao P., Seshasai S.R., Gobin R., Kaptoge Set al. Diabetes mellitus, fasting blood glucose concentration, and risk of vascular disease: a collaborative meta-analysis of 102 prospective studies. Lancet. 2010;375(9733):2215-2222. doi:10.1016/S0140-6736(10)60484-9.; DeFronzo R.A., Abdul-Ghani M. Assessment and treatment of cardiovascular risk in prediabetes: impaired glucose tolerance and impaired fasting glucose. Am J Cardiol. 2011;108(3 Suppl):3B-24B. doi:10.1016/j.amj-card.2011.03.013.; Yde'n L., Mellbin L. Glucose perturbations and cardiovascular risk: challenges and opportunities. Diabetes Vasc Dis Res. 2012;9(3):170-176. doi:10.1177/1479164112451581.; Ingisser R., Cairns C., Christ M., Hausfater P., Lindahl B., Mair J. et al. Cardiac troponin: a critical review of the case for point-of-care testing in the ED. Am J Emerg Med. 2012;30(8):1639-1649. doi:10.1016/j.ajem.2012.03.004.; Selvin E., Lazo M., Chen Y., Shen L., Rubin J., McEvoy J.W. et al. Diabetes melli-tus, prediabetes, and incidence of subclinical myocardial damage. Circulation. 2014;130(16):1374-1382. doi:10.1161/CIRCULATIONAHA.114.010815.; Hendriks S.H., van Dijk P.R., van Hateren K.J., van Pelt J.L., Groenier K.H., Bilo H.J., Bakker S.J., Landman G.W., Kleefstra N. High-sensitive troponin T is associated with all-cause and cardiovascular mortality in stable outpatients with type 2 diabetes (ZODIAC-37). Am Heart J. 2016;174:43-50. doi:10.1016/j.ahj.2015.12.015.; Galsgaard J., Persson F., Hansen T.W., Jorsal A., Tarnow L., Parving H.H., Rossing P. Plasma high-sensitivity troponin T predicts end-stage renal disease and cardiovascular and all-cause mortality in patients with type 1 diabetes and diabetic nephropathy. Kidney Int. 2017;92(5):1242-1248. doi:10.1016/j.kint.2017.04.018.; Gyberg V., De Bacquer D., Kotseva K., De Backer G., Schnell O., Sundvall J., Tuomilehto J., Wood D., Ryde'n L.; EUROASPIRE IV Investigators. Screening for dysglycaemia in patients with coronary artery disease as reflected by fasting glucose, oral glucose tolerance test, and HbA1c: a report from EUROASPIRE IV - a survey from the European Society of Cardiology. Eur Heart J. 2015;36(19):1171-1177. doi:10.1093/eurheartj/ehv008.; Opie L.H. Metabolic management of acute myocardial infarction comes to the fore and extends beyond control of hyperglycemia. Circulation. 2008;117(17):2172-2177. doi:10.1161/CIRCULATIONAHA.108.780999.; Zaccardi F., Rocca B., Pitocco D., Tanese L., Rizzi A., Ghirlanda G. Platelet mean volume, distribution width, and count in type 2 diabetes, impaired fasting glucose, and metabolic syndrome: a meta-analysis. Diabetes Metab Res Rev. 2015;31(4):402-410. doi:10.1002/dmrr.2625.; Santilli F., Zaccardi F., Liani R., Petrucci G., Simeone P., Pitocco D. et al. In Vivo Thromboxane-Dependent Platelet Activation is Persistently Enhanced in Subjects with Impaired Glucose Tolerance. Diabetes Metab Res Rev. 2019;36(2):e3232. doi:10.1002/dmrr.3232.; Zaccardi F., Rizzi A., Petrucci G., Ciaffardini F., Tanese L., Pagliaccia F. et al. In Vivo Platelet Activation and Aspirin Responsiveness in Type 1 Diabetes. Diabetes. 2016;65(2):503-509. doi:10.2337/db15-0936.; Zaccardi F., Rocca B., Rizzi A., Ciminello A., Teofili L., Ghirlanda G. et al. Platelet indices and glucose control in type 1 and type 2 diabetes melli-tus: A case-control study. Nutr Metab Cardiovasc Dis. 2017;27(10):902-909. doi:10.1016/j.numecd.2017.06.016.; Rocca B., Santilli F., Pitocco D., Mucci L., Petrucci G., Vitacolonna E. et al. The recovery of platelet cyclooxygenase activity explains interindividual variability in responsiveness to low-dose aspirin in patients with and without diabetes. J Thromb Haemost. 2012;10(7):1220-1230. doi:10.1111/j.1538-7836.2012.04723.x.; Patrono C., Rocca B. Measurement of Thromboxane Biosynthesis in Health and Disease. Frontiers in Pharmacology. 2019;10:1244. doi:10.3389/fphar.2019.01244.; Rocca B., Patrono C. Aspirin in the primary prevention of cardiovascular disease in diabetes mellitus: A new perspective, Diabetes Research and Clinical Practice. 2020;160:108008. doi:10.1016/j.diabres.2020.108008.; Ten Cate H., Hemker H.C. Thrombin Generation and Atherothrombosis: What Does the Evidence Indicate? J Am Heart Assoc. 2016;5(8). pii: e003553. doi:10.1161/JAHA.116.003553.; Spectre G., Mobarrez F., Stalesen R., Ostenson C.G., Varon D., Wallen H. et al. Meal intake increases circulating procoagulant microparticles in patients with type 1 and type 2 diabetes mellitus. Platelets. 2019;30(3):348-355. doi:10.1080/09537104.2018.1445837.; Spectre G., Ostenson C.G., Li N., Hjemdahl P. Postprandial platelet activation is related to postprandial plasma insulin rather than glucose in patients with type 2 diabetes. Diabetes. 2012;61(9):2380-2384. doi:10.2337/db11-1806.; Petrucci G., Zaccardi F., Giaretta A., Cavalca V., Capristo E., Cardillo C. et al. Obesity is associated with impaired responsiveness to once-daily low-dose aspirin and in vivo platelet activation. J Thromb aemost. 2019;17(6):885-895. doi:10.1111/jth.14445.; Cosentino F., Grant P.J., Aboyans V., Bailey C.J., Ceriello A., Delgado V., et al. 2019 ESC Guidelines on diabetes, pre-diabetes, and cardiovascular diseases developed in collaboration with the EASD: The Task Force for diabetes, pre-diabetes, and cardiovascular diseases of the European Society of Cardiology (ESC) and the European Association for the Study of Diabetes (EASD). European Heart Journal. 2020;41(2):255-323. doi:10.1093/eur-heartj/ehz486.; Saito Y., Okada S., Ogawa H., Soejima H., Sakuma M., Nakayama M., Doi N., Jinnouchi H., Waki M., Masuda I., Morimoto T. Lowdose aspirin for primary prevention of cardiovascular events in patients with type 2 diabetes mel-litus: 10-year follow-up of a randomized controlled trial. Circulation. 2017;135(7):659-670. doi:10.1161/CIRCULATIONAHA.116.025760.; Gaziano J.M., Brotons C., Coppolecchia R., Cricelli C., Darius H., Gorelick P.B. et al. Use of aspirin to reduce risk of initial vascular events in patients at moderate risk of cardiovascular disease (ARRIVE): a randomised, doubleblind, placebo-controlled trial. Lancet. 2018;392(10152):1036-1046. doi:10.1016/S0140-6736(18)31924-X.; ASCEND Study Collaborative Group, Bowman L., Mafham M., Wallendszus K., Stevens W., Buck G., Barton J. et al. Effects of aspirin for primary prevention in persons with diabetes mellitus. N Engl J Med. 2018;379(16):1529-1539. doi:10.1056/NEJMoa1804988.; Scally B., Emberson J.R., Spata E., Reith C., Davies K., Halls H. et al. Effects of gastroprotectant drugs for the prevention and treatment of peptic ulcer disease and its complications: a meta-analysis of randomised trials. Lancet Gastroenterol Hepatol. 2018;3(4):231-241. doi:10.1016/S2468-1253(18)30037-2.; Fernandez-Jimenez R., Wang T.J., Fuster V., Blot W.J. Low-Dose Aspirin for Primary Prevention of Cardiovascular Disease: Use Patterns and Impact Across Race and Ethnicity in the Southern Community Cohort Study. J Am Heart Assoc. 2019;8(24):e013404. doi:10.1161/JAHA.119.013404.; Loomans-Kropp H.A., Pinsky P., Cao Y., Chan A.T., Umar A. Association of Aspirin Use With Mortality Risk Among Older Adult Participants in the Prostate, Lung, Colorectal, and Ovarian Cancer Screening Trial. JAMA Network Open. 2019;2(12):e1916729. doi:10.1001/jamanetworko-pen.2019.16729.; Zhao Y., Jeyaraman K., Burgess P., Connors C., Guthridge S., Maple-Brown L, Falhammar H. All-cause mortality following low-dose aspirin treatment for patients with high cardiovascular risk in remote Australian Aboriginal communities: an observational study. BMJ Open. 2020;10(1):e030034. doi:10.1136/bmjopen-2019-030034.; Arnett D.K., Blumenthal R.S., Albert M.A., Buroker A.B., Goldberger Z.D. et al. 2019 ACC/AHA Guideline on the Primary Prevention of Cardiovascular Disease March 2019. Journal of the American College of Cardiology. 2019;74(10):e177-e232. doi:10.1016/j.jacc.2019.03.010.; American Diabetes Association. Introduction: Standards of Medical Care in Diabetes - 2018. Diabetes Care. 2018;41(Suppl. 1):1-2. doi:10.2337/dc18-Sint01.; American Diabetes Association. Standards of medical care in diabetes -2013. Diabetes Care. 2013;36(Suppl. 1): 11-66. doi:10.2337/dc13-S011.; Perk J., De Backer G., Gohlke H. et al. European Guidelines on cardiovascular disease prevention in clinical practice (version 2012). The Fifth Joint Task Force of the European Society of Cardiology and Other Societies on Cardiovascular Disease Prevention in Clinical Practice (constituted by representatives of nine societies and by invited experts). Eur Heart J. 2012;33(13):1635-1701. doi:10.1093/eurheartj/ehs092.; Vandvik P.O., Lincoff A.M., Gore J.M., Gutterman D.D., Sonnenberg F.A. et al. Primary and secondary prevention of cardiovascular disease: antithrombotic therapy and prevention of thrombosis, 9th ed: American College of Chest Physicians evidence-based clinical practice guidelines. Chest. 2012;141(2 Suppl):637-668. doi:10.1378/chest.11-2306.

Availability: https://www.med-sovet.pro/jour/article/view/5601
https://doi.org/10.21518/2079-701X-2020-4-42-49