ATHEROSCLEROSIS SEVERITY AFFECTS ARTERIAL REMODELING AFTER THE CAROTID ANGIOPLASTY ; ВЛИЯНИЕ ИСХОДНОГО СОСТОЯНИЯ СТЕНКИ ВНУТРЕННЕЙ СОННОЙ АРТЕРИИ НА ХАРАКТЕР ЕЕ РЕМОДЕЛИРОВАНИЯ ПОСЛЕ СТЕНТИРОВАНИЯ

Authors: Leo A. Bogdanov, Vladislav A. Koshelev, Amin R. Shabaev, Rinat A. Mukhamadiyarov, Anton G. Kutikhin, Лев Александрович Богданов, Владислав Александрович Кошелев, Амин Рашитович Шабаев, Ринат Авхадиевич Мухамадияров, Антон Геннадьевич Кутихин

Contributors: Работа выполнена при поддержке комплексной программы фундаментальных научных исследований СО РАН в рамках фундаментальной темы НИИ КПССЗ № 0419-2024-0001 «Разработка новых фармакологических подходов к экспериментальной терапии атеросклероза, технологий серийного производства реактивов и расходных материалов для изучения физиологии и патофизиологии сердечно-сосудистой системы и программного обеспечения на основе искусственного интеллекта для автоматизированной диагностики патологий системы кровообращения и автоматизированного расчета сердечно-сосудистого риска» при финансовой поддержке Министерства науки и высшего образования Российской Федерации в рамках национального проекта «Наука и университеты».

Source: Complex Issues of Cardiovascular Diseases; Том 14, № 4 (2025); 216-227 ; Комплексные проблемы сердечно-сосудистых заболеваний; Том 14, № 4 (2025); 216-227 ; 2587-9537 ; 2306-1278

Subject Terms: Морфометрический анализ, Atherosclerosis, Carotid angioplasty, Neointimal remodeling, Inflammation, Scanning electron microscopy, Morphometric analysis, Атеросклероз, Стентирование, Ремоделирование неоинтимы, Воспаление, Сканирующая электронная микроскопия

File Description: application/pdf

Relation: https://www.nii-kpssz.com/jour/article/view/1719/1064; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1719/2142; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1719/2143; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1719/2144; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1719/2145; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1719/2146; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1719/2147; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1719/2148; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1719/2149; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1719/2150; Bracale UM, Peluso A, Di Mauro E, Del Guercio L, Di Taranto MD, Giannotta N, Ielapi N, Provenzano M, Andreucci M, Serra R. Carotid Endarterectomy versus Carotid Artery Stenting With Double-Layer Micromesh Carotid Stent: Contemporary Results of a Single-Center Retrospective Study. Ann Vasc Surg. 2022;82:41-46. doi:10.1016/j.avsg.2021.10.073.; Oushy SH, Essibayi MA, Savastano LE, Lanzino G. Carotid artery revascularization: endarterectomy versus endovascular therapy. J Neurosurg Sci. 2021;65(3):322-326. doi:10.23736/S0390-5616.20.05207-8.; Saw J. Carotid artery stenting for stroke prevention. Can J Cardiol. 2014;30(1):22-34. doi:10.1016/j.cjca.2013.09.030.; Thomas MA, Pearce WH, Rodriguez HE, Helenowski IB, Eskandari MK. Durability of Stroke Prevention with Carotid Endarterectomy and Carotid Stenting. Surgery. 2018; 164(6):1271-1278. doi:10.1016/j.surg.2018.06.041.; Gabrielli R, Siani A, Smedile G, Rizzo AR, Accrocca F, Bartoli S. Carotid Artery Stenting versus Carotid Endarterectomy in Terms of Neuroprotection DW-MRI Detected and Neuropsychological Assessment Impairment. Ann Vasc Surg. 2024;98:68-74. doi:10.1016/j.avsg.2023.05.046.; Jácome F, Oliveira-Pinto J, Dionísio A, Coelho A, Ramos JF, Mansilha A. Mini-skin longitudinal incision versus traditional longitudinal incision for carotid endarterectomy in patients with carotid artery stenosis: a systematic review and meta-analysis. Int Angiol. 2024;43(5):533-540. doi:10.23736/S0392-9590.24.05300-8.; Park S, Kim BJ, Choi HY, Chang DI, Woo HG, Heo SH. Risk factors of in-stent restenosis after carotid angioplasty and stenting: long-term follow-up study. Front Neurol. 2024;15:1411045. doi:10.3389/fneur.2024.1411045.; Kumar R, Batchelder A, Saratzis A, AbuRahma AF, Ringleb P, Lal BK, Mas JL, Steinbauer M, Naylor AR. Restenosis after Carotid Interventions and Its Relationship with Recurrent Ipsilateral Stroke: A Systematic Review and Meta-analysis. Eur J Vasc Endovasc Surg. 2017;53(6):766-775. doi:10.1016/j.ejvs.2017.02.016.; Texakalidis P, Tzoumas A, Giannopoulos S, Jonnalagadda AK, Jabbour P, Rangel-Castilla L, Machinis T, Rivet DJ, Reavey-Cantwell J. Risk Factors for Restenosis After Carotid Revascularization: A Meta-Analysis of Hazard Ratios. World Neurosurg. 2019;125:414-424. doi:10.1016/j.wneu.2019.02.065.; Achim A, Lackó D, Hüttl A, Csobay-Novák C, Csavajda Á, Sótonyi P, Merkely B, Nemes B, Ruzsa Z. Impact of Diabetes Mellitus on Early Clinical Outcome and Stent Restenosis after Carotid Artery Stenting. J Diabetes Res. 2022;2022:4196195. doi:10.1155/2022/4196195.; Déglise S, Bechelli C, Allagnat F. Vascular smooth muscle cells in intimal hyperplasia, an update. Front Physiol. 2023;13:1081881. doi:10.3389/fphys.2022.1081881.; Haybar H, Pezeshki SMS, Saki N. Platelets in In-stent Restenosis: From Fundamental Role to Possible Prognostic Application. Curr Cardiol Rev. 2020;16(4):285-291. doi:10.2174/1573403X15666190620141129.; Datz JC, Steinbrecher I, Meier C, Hagmeyer N, Engel LC, Popp A, Pfaller MR, Schunkert H, Wall WA. Patient-specific coronary angioplasty simulations - A mixed-dimensional finite element modeling approach. Comput Biol Med. 2025;189:109914. doi:10.1016/j.compbiomed.2025.109914.; Gharaibeh Y, Lee J, Zimin VN, Kolluru C, Dallan LAP, Pereira GTR, Vergara-Martel A, Kim JN, Hoori A, Dong P, Gamage PT, Gu L, Bezerra HG, Al-Kindi S, Wilson DL. Prediction of stent under-expansion in calcified coronary arteries using machine learning on intravascular optical coherence tomography images. Sci Rep. 2023;13(1):18110. doi:10.1038/s41598-023-44610-9.; Tan RP, Hung JC, Chan AHP, Grant AJ, Moore MJ, Lam YT, Michael P, Wise SG. Highly reproducible rat arterial injury model of neointimal hyperplasia. PLoS One. 2023; 18(8): e0290342. doi:10.1371/journal.pone.0290342.; Inoue T, Uchida T, Yaguchi I, Sakai Y, Takayanagi K, Morooka S. Stent-induced expression and activation of the leukocyte integrin Mac-1 is associated with neointimal thickening and restenosis. Circulation. 2003;107(13):1757-63. doi:10.1161.; Chakraborty R, Chatterjee P, Dave JM, Ostriker AC, Greif DM, Rzucidlo EM, Martin KA. Targeting smooth muscle cell phenotypic switching in vascular disease. JVS Vasc Sci. 2021;2:79-94. doi:10.1016/j.jvssci.2021.04.001.; Libby P. Inflammation during the life cycle of the atherosclerotic plaque. Cardiovasc Res. 2021;117(13):2525-2536. doi:10.1093/cvr/cvab303.; Kapnisis K, Stylianou A, Kokkinidou D, Martin A, Wang D, Anderson PG, Prokopi M, Papastefanou C, Brott BC, Lemons JE, Anayiotos A. Multilevel Assessment of Stent-Induced Inflammation in the Adjacent Vascular Tissue. ACS Biomater Sci Eng. 2023;9(8):4747-4760. doi:10.1021/acsbiomaterials.3c00540.; Данилович А.И., Тарасов Р.С. Отдаленные исходы реваскуляризации миокарда и мозга при помощи чрескожных коронарных вмешательств и каротидной эндартерэктомии в гибридном и поэтапном режимах. Комплексные проблемы сердечно-сосудистых заболеваний. 2020;9(1):42-51. doi:10.17802/2306-1278-2020-9-1-42-51.

Availability: https://www.nii-kpssz.com/jour/article/view/1719
https://doi.org/10.17802/2306-1278-2025-14-4-216-227

COMPARISON OF MODIFIED ENDOTHELIAL NITRIC OXIDE SYNTHASE FORMS IN HYPERTENSIVE AND NORMOTENSIVE RATS ; СРАВНЕНИЕ ЭКСПРЕССИИ МОДИФИЦИРОВАННЫХ ФОРМ ЭНДОТЕЛИАЛЬНОЙ СИНТАЗЫ МОНООКСИДА АЗОТА У ГИПЕР- И НОРМОТЕНЗИВНЫХ КРЫС

Authors: Leo A. Bogdanov, Egor A. Kondratiev, Vladislav A. Koshelev, Rinat A. Mukhamadiyarov, Anastasia Yu. Kanonykina, Anastasia A. Lazebnaya, Arina E. Tyurina, Anton G. Kutikhin, Лев Александрович Богданов, Егор Андреевич Кондратьев, Владислав Александрович Кошелев, Ринат Авхадиевич Мухамадияров, Анастасия Юрьевна Каноныкина, Анастасия Ивановна Лазебная, Арина Евгеньевна Тюрина, Антон Геннадьевич Кутихин

Contributors: Исследование выполнено при поддержке гранта Российского научного фонда № 24-75-10057 «Идентификация клеточных маркеров дисфункции эндотелия», https://rscf.ru/project/24-75-10057/.

Source: Complex Issues of Cardiovascular Diseases; Том 14, № 2 (2025); 110-126 ; Комплексные проблемы сердечно-сосудистых заболеваний; Том 14, № 2 (2025); 110-126 ; 2587-9537 ; 2306-1278

Subject Terms: Фосфорилирование eNOS, Endothelial cells, Endothelial dysfunction, Hypertensive rats, Normotensive rats, Endothelial nitric oxide synthase, eNOS phosphorylation, Эндотелиальные клетки, Дисфункция эндотелия, Гипертензивные крысы, Нормотензивные крысы, Эндотелиальная NO-синтаза

File Description: application/pdf

Relation: https://www.nii-kpssz.com/jour/article/view/1669/1030; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1669/2051; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1669/2052; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1669/2053; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1669/2054; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1669/2055; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1669/2056; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1669/2057; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1669/2058; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1669/2059; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1669/2060; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1669/2061; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1669/2062; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1669/2063; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1669/2064; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1669/2065; Kutikhin AG, Shishkova DK, Velikanova EA, Sinitsky MY, Sinitskaya AV, Markova VE. Endothelial Dysfunction in the Context of Blood-Brain Barrier Modeling. J Evol Biochem Physiol. 2022;58(3):781-806. doi:10.1134/S0022093022030139.; Gimbrone MA Jr, García-Cardeña G. Endothelial Cell Dysfunction and the Pathobiology of Atherosclerosis. Circ Res. 2016;118(4):620-36. doi:10.1161/CIRCRESAHA.115.306301.; Шишкова Д.К., Фролов А.В., Маркова В.Е., Маркова Ю.О., Каноныкина А.Ю., Лазебная А.И., Матвеева В.Г., Торгунакова Е.А., Кутихин А.Г. Современные подходы к моделированию дисфункции эндотелия и системному поиску ее циркулирующих маркеров. Комплексные проблемы сердечно-сосудистых заболеваний. 2024. Т. 13. № S3. С. 173-190. doi:10.17802/2306-1278-2024-13-3S-173-190.; Богданов Л.А., Кошелев В.А., Мухамадияров Р.А., Каноныкина А.Ю., Лазебная А.И., Кондратьев Е.А., Степанов А.Д., Кутихин А.Г. Современные подходы к идентификации клеточных маркеров дисфункции эндотелия. Комплексные проблемы сердечно-сосудистых заболеваний. 2024. Т. 13. № S3. С. 191-207. doi:10.17802/2306-1278-2024-13-3S-191-207.; da Silva FC, de Araújo BJ, Cordeiro CS, Arruda VM, Faria BQ, Guerra JFDC, Araújo TG, Fürstenau CR. Endothelial dysfunction due to the inhibition of the synthesis of nitric oxide: Proposal and characterization of an in vitro cellular model. Front Physiol. 2022;13:978378. doi:10.3389/fphys.2022.978378.; Ghosh S, Gupta M, Xu W, Mavrakis DA, Janocha AJ, Comhair SA, Haque MM, Stuehr DJ, Yu J, Polgar P, Naga Prasad SV, Erzurum SC. Phosphorylation inactivation of endothelial nitric oxide synthesis in pulmonary arterial hypertension. Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. 2016;310(11):L1199-205. doi:10.1152/ajplung.00092.2016.; Li G, Zhang H, Zhao L, Zhang Y, Yan D, Liu Y. Angiotensin-converting enzyme 2 activation ameliorates pulmonary endothelial dysfunction in rats with pulmonary arterial hypertension through mediating phosphorylation of endothelial nitric oxide synthase. J Am Soc Hypertens. 2017;11(12):842-852. doi:10.1016/j.jash.2017.10.009.; Förstermann U, Xia N, Li H. Roles of Vascular Oxidative Stress and Nitric Oxide in the Pathogenesis of Atherosclerosis. Circ Res. 2017;120(4):713-735. doi:10.1161/CIRCRESAHA.116.309326.; Förstermann U, Sessa WC. Nitric oxide synthases: regulation and function. Eur Heart J. 2012;33(7):829-37, 837a-837d. doi:10.1093/eurheartj/ehr304.; Qian J, Fulton D. Post-translational regulation of endothelial nitric oxide synthase in vascular endothelium. Front Physiol. 2013;4:347. doi:10.3389/fphys.2013.00347.; Heiss EH, Dirsch VM. Regulation of eNOS enzyme activity by posttranslational modification. Curr Pharm Des. 2014;20(22):3503-13. doi:10.2174/13816128113196660745.; Iring A, Jin YJ, Albarrán-Juárez J, Siragusa M, Wang S, Dancs PT, Nakayama A, Tonack S, Chen M, Künne C, Sokol AM, Günther S, Martínez A, Fleming I, Wettschureck N, Graumann J, Weinstein LS, Offermanns S. Shear stress-induced endothelial adrenomedullin signaling regulates vascular tone and blood pressure. J Clin Invest. 2019;129(7):2775-2791. doi:10.1172/JCI123825.; Michell BJ, Chen Zp, Tiganis T, Stapleton D, Katsis F, Power DA, Sim AT, Kemp BE. Coordinated control of endothelial nitric-oxide synthase phosphorylation by protein kinase C and the cAMP-dependent protein kinase. J Biol Chem. 2001;276(21):17625-8. doi:10.1074/jbc.C100122200.; Fleming I, Fisslthaler B, Dimmeler S, Kemp BE, Busse R. Phosphorylation of Thr(495) regulates Ca(2+)/calmodulin-dependent endothelial nitric oxide synthase activity. Circ Res. 2001;88(11):E68-75. doi:10.1161/hh1101.092677.; Lee CH, Wei YW, Huang YT, Lin YT, Lee YC, Lee KH, Lu PJ. CDK5 phosphorylates eNOS at Ser-113 and regulates NO production. J Cell Biochem. 2010;110(1):112-7. doi:10.1002/jcb.22515.; Kennard S, Ruan L, Buffett RJ, Fulton D, Venema RC. TNFα reduces eNOS activity in endothelial cells through serine 116 phosphorylation and Pin1 binding: Confirmation of a direct, inhibitory interaction of Pin1 with eNOS. Vascul Pharmacol. 2016;81:61-8. doi:10.1016/j.vph.2016.04.003.; Li C, Ruan L, Sood SG, Papapetropoulos A, Fulton D, Venema RC. Role of eNOS phosphorylation at Ser-116 in regulation of eNOS activity in endothelial cells. Vascul Pharmacol. 2007;47(5-6):257-64. doi:10.1016/j.vph.2007.07.001.; Shishkova D, Markova V, Markova Y, Sinitsky M, Sinitskaya A, Matveeva V, Torgunakova E, Lazebnaya A, Stepanov A, Kutikhin A. Physiological Concentrations of Calciprotein Particles Trigger Activation and Pro-Inflammatory Response in Endothelial Cells and Monocytes. Biochemistry (Mosc). 2025;90(1):132-160. doi:10.1134/S0006297924604064.; Ku KH, Dubinsky MK, Sukumar AN, Subramaniam N, Feasson MYM, Nair R, Tran E, Steer BM, Knight BJ, Marsden PA. In Vivo Function of Flow-Responsive Cis-DNA Elements of eNOS Gene: A Role for Chromatin-Based Mechanisms. Circulation. 2021;144(5):365-381. doi:10.1161/CIRCULATIONAHA.120.051078.; Jin YJ, Chennupati R, Li R, Liang G, Wang S, Iring A, Graumann J, Wettschureck N, Offermanns S. Protein kinase N2 mediates flow-induced endothelial NOS activation and vascular tone regulation. J Clin Invest. 2021;131(21):e145734. doi:10.1172/JCI145734.; Cattaneo MG, Vanetti C, Decimo I, Di Chio M, Martano G, Garrone G, Bifari F, Vicentini LM. Sex-specific eNOS activity and function in human endothelial cells. Sci Rep. 2017;7(1):9612. doi:10.1038/s41598-017-10139-x.; Smith AR, Visioli F, Frei B, Hagen TM. Age-related changes in endothelial nitric oxide synthase phosphorylation and nitric oxide dependent vasodilation: evidence for a novel mechanism involving sphingomyelinase and ceramide-activated phosphatase 2A. Aging Cell. 2006;5(5):391-400. doi:10.1111/j.1474-9726.2006.00232.x.; Sansbury BE, Cummins TD, Tang Y, Hellmann J, Holden CR, Harbeson MA, Chen Y, Patel RP, Spite M, Bhatnagar A, Hill BG. Overexpression of endothelial nitric oxide synthase prevents diet-induced obesity and regulates adipocyte phenotype. Circ Res. 2012 Oct 12;111(9):1176-89. doi:10.1161/CIRCRESAHA.112.266395.; Bu S, Nguyen HC, Nikfarjam S, Michels DCR, Rasheed B, Maheshkumar S, Singh S, Singh KK. Endothelial cell-specific loss of eNOS differentially affects endothelial function. PLoS One. 2022;17(9):e0274487. doi:10.1371/journal.pone.0274487.; Shu X, Keller TC 4th, Begandt D, Butcher JT, Biwer L, Keller AS, Columbus L, Isakson BE. Endothelial nitric oxide synthase in the microcirculation. Cell Mol Life Sci. 2015;72(23):4561-75. doi:10.1007/s00018-015-2021-0.; Fries DM, Paxinou E, Themistocleous M, Swanberg E, Griendling KK, Salvemini D, Slot JW, Heijnen HF, Hazen SL, Ischiropoulos H. Expression of inducible nitric-oxide synthase and intracellular protein tyrosine nitration in vascular smooth muscle cells: role of reactive oxygen species. J Biol Chem. 2003;278(25):22901-7. doi:10.1074/jbc.M210806200.; Singh A, Sventek P, Larivière R, Thibault G, Schiffrin EL. Inducible nitric oxide synthase in vascular smooth muscle cells from prehypertensive spontaneously hypertensive rats. Am J Hypertens. 1996;9(9):867-77. doi:10.1016/s0895-7061(96)00104-5.; Di Pietro N, Di Tomo P, Di Silvestre S, Giardinelli A, Pipino C, Morabito C, Formoso G, Mariggiò MA, Pandolfi A. Increased iNOS activity in vascular smooth muscle cells from diabetic rats: potential role of Ca(2+)/calmodulin-dependent protein kinase II delta 2 (CaMKIIdelta(2)). Atherosclerosis. 2013;226(1):88-94. doi:10.1016/j.atherosclerosis.2012.10.062.; Preeclampsia is associated with loss of neuronal nitric oxide synthase expression in vascular smooth muscle cells of the human umbilical cord. Schönfelder G, Fuhr N, Hadzidiakos D, John M, Hopp H, Paul M. Histopathology. 2004;44(2):116-28. doi:10.1111/j.1365-2559.2004.01806.x.; Boulanger CM, Heymes C, Benessiano J, Geske RS, Lévy BI, Vanhoutte PM. Neuronal nitric oxide synthase is expressed in rat vascular smooth muscle cells: activation by angiotensin II in hypertension. Circ Res. 1998;83(12):1271-8. doi:10.1161/01.res.83.12.1271.; Gomez-Alamillo C, Juncos LA, Cases A, Haas JA, Romero JC. Interactions between vasoconstrictors and vasodilators in regulating hemodynamics of distinct vascular beds. Hypertension. 2003;42(4):831-6. doi:10.1161/01.HYP.0000088854.04562.DA.; Bruno RM, Ghiadoni L, Seravalle G, Dell'oro R, Taddei S, Grassi G. Sympathetic regulation of vascular function in health and disease. Front Physiol. 2012;3:284. doi:10.3389/fphys.2012.00284.; Sheng Y, Zhu L. The crosstalk between autonomic nervous system and blood vessels. Int J Physiol Pathophysiol Pharmacol. 2018;10(1):17-28.; Durand MJ, Gutterman DD. Diversity in mechanisms of endothelium-dependent vasodilation in health and disease. Microcirculation. 2013;20(3):239-47. doi:10.1111/micc.12040.; Maruhashi T, Kihara Y, Higashi Y. Assessment of endothelium-independent vasodilation: from methodology to clinical perspectives. J Hypertens. 2018;36(7):1460-1467. doi:10.1097/HJH.0000000000001750.

Availability: https://www.nii-kpssz.com/jour/article/view/1669
https://doi.org/10.17802/2306-1278-2025-14-2-110-126

ULTRASTRUCTURAL ANALYSIS OF KEMPERIPLAS-NEO XENOPERICARDIAL PATCH AFTER TRANSANNULAR PATCH REPAIR OF RIGHT VENTRICULAR OUTFLOW TRACT IN PATIENT WITH PULMONARY ATRESIA: 15 YEARS OF FOLLOW-UP ; УЛЬТРАСТРУКТУРНЫЙ АНАЛИЗ КСЕНОПЕРИКАРДИАЛЬНОЙ ЗАПЛАТЫ «КЕМПЕРИПЛАС-НЕО» ЧЕРЕЗ 15 ЛЕТ ПОСЛЕ ТРАНСАННУЛЯРНОЙ ПЛАСТИКИ ПРАВОГО ЖЕЛУДОЧКА ПРИ ВРОЖДЕННОМ ПОРОКЕ СЕРДЦА

Authors: Rinat A. Mukhamadiyarov, Ivan V. Milto, Vladislav A. Koshelev, Anton A. Lyapin, Alexander N. Stasev, Anton G. Kutikhin, Ринат Авхадиевич Мухамадияров, Иван Васильевич Мильто, Владислав Александрович Кошелев, Антон Александрович Ляпин, Александр Николаевич Стасев, Антон Геннадьевич Кутихин

Contributors: Работа выполнена в рамках фундаментального научного исследования № 0419-2022-0001 «Молекулярные, клеточные и биомеханические механизмы патогенеза сердечно-сосудистых заболеваний в разработке новых методов лечения заболеваний сердечно-сосудистой системы на основе персонифицированной фармакотерапии, внедрения малоинвазивных медицинских изделий, биоматериалов и тканеинженерных имплантатов».

Source: Complex Issues of Cardiovascular Diseases; Том 14, № 3 (2025); 163-179 ; Комплексные проблемы сердечно-сосудистых заболеваний; Том 14, № 3 (2025); 163-179 ; 2587-9537 ; 2306-1278 ; undefined

Subject Terms: Ремоделирование, Pulmonary artery, Transannular repair, Patch, Neointima, Xenopericardium, Remodeling, Легочная артерия, Трансаннулярная пластика, Заплата, Неоинтима, Ксеноперикард

File Description: application/pdf

Relation: https://www.nii-kpssz.com/jour/article/view/1647/1048; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1647/1996; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1647/1997; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1647/1998; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1647/1999; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1647/2000; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1647/2001; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1647/2002; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1647/2003; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1647/2004; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1647/2005; Wang X., Bakhuis W., Veen K.M., Bogers A.J.J.C., Etnel J.R.G., van Der Ven C.C.E.M., Roos-Hesselink J.W., Andrinopoulou E.R., Takkenberg J.J.M. Outcomes after right ventricular outflow tract reconstruction with valve substitutes: A systematic review and meta-analysis. Front Cardiovasc Med. 2022;9:897946. doi:10.3389/fcvm.2022.897946.; Carrel T. Past, present, and future options for right ventricular outflow tract reconstruction. Front Surg. 2023;10:1185324. doi:10.3389/fsurg.2023.1185324.; Geva T., Wald R.M., Bucholz E., Cnota J.F., McElhinney D.B., Mercer-Rosa L.M., Mery C.M., Miles A.L., Moore J.; American Heart Association Council on Lifelong Congenital Heart Disease and Heart Health in the Young; Council on Cardiovascular Surgery and Anesthesia; Council on Clinical Cardiology; and Council on Cardiovascular and Stroke Nursing. Long-Term Management of Right Ventricular Outflow Tract Dysfunction in Repaired Tetralogy of Fallot: A Scientific Statement From the American Heart Association. Circulation. 2024;150(25):e689-e707. doi:10.1161/CIR.0000000000001291.; Blais S., Marelli A., Blais S., Marelli A., Vanasse A., Dahdah N., Dancea A., Drolet C., Dallaire F. Comparison of Long-term Outcomes of Valve-Sparing and Transannular Patch Procedures for Correction of Tetralogy of Fallot. JAMA Netw Open. 2021;4(7):e2118141. doi:10.1001/jamanetworkopen.2021.18141.; Wei X., Li T., Ling Y., Chai Z., Cao Z., Chen K., Qian Y. Transannular patch repair of tetralogy of Fallot with or without monocusp valve reconstruction: a meta-analysis. BMC Surg. 2022;22(1):18. doi:10.1186/s12893-022-01474-6.; Martins R.S., Fatimi A.S., Mahmud O., Qureshi S., Nasim M.T., Virani S.S., Tameezuddin A., Yasin F., Malik M.A. Comparing clinical and echocardiographic outcomes following valve-sparing versus transannular patch repair of tetralogy of Fallot: a systematic review and meta-analysis. Interdiscip Cardiovasc Thorac Surg. 2024;39(1):ivae124. doi:10.1093/icvts/ivae124.; Bejleri D., Davis M.E. Decellularized Extracellular Matrix Materials for Cardiac Repair and Regeneration. Adv Healthc Mater. 2019;8(5):e1801217. doi:10.1002/adhm.201801217.; Patukale A., Daley M., Betts K., Justo R., Dhannapuneni R., Venugopal P., Karl T.R., Alphonso N. Outcomes of pulmonary valve leaflet augmentation for transannular repair of tetralogy of Fallot. J Thorac Cardiovasc Surg. 2021;162(5):1313-1320. doi:10.1016/j.jtcvs.2020.12.145.; Шабаев И.Ф., Халивопуло И.К., Сизова И.Н., Шабалдин А.В. Отдалённые результаты хирургического лечения дефекта межжелудочковой перегородки у детей с применением эпоксиобработанного ксеноперикардиального лоскута «КЕМПЕРИПЛАС-НЕО». Комплексные проблемы сердечно-сосудистых заболеваний. 2024;13(4):55-61. doi:10.17802/2306-1278-2024-13-4-55-61.; Севостьянова В.В., Миронов А.В., Антонова Л.В., Тарасов Р.С. Применение сосудистых заплат для артериальной реконструкции, проблемы и перспективные технологии. Комплексные проблемы сердечно-сосудистых заболеваний. 2019;8(3):116-129. doi:10.17802/2306-1278-2019-8-3-116-129.; Мухамадияров Р.А., Халивопуло И.К., Евтушенко А.В., Ляпин А.А., Кутихин А.Г. 11-летняя эффективность ксеноперикардиальной заплаты «КемПериплас» для пластики легочной артерии при радикальной коррекции тетрады Фалло. Клиническая и экспериментальная хирургия. Журнал имени академика Б.В. Петровского. 2023;11(4):145-154. doi:10.33029/2308-1198-2023-11-4-145-154.; Мухамадияров Р.А., Кутихин А.Г. Исследование нормальной и патологической микроскопической анатомии кровеносных сосудов при помощи сканирующей электронной микроскопии в обратно-рассеянных электронах. Фундаментальная и клиническая медицина. 2019;4(1):6-14. doi:10.23946/2500-0764-2019-4-1-6-14. doi:10.23946/2500-0764-2019-4-1-6-14.; Мухамадияров Р.А., Кошелев В.А., Фролов А.В., Миронов А.В., Шабаев А.Р., Евтушенко А.В., Ляпин А.А., Кутихин А.Г. Ультраструктура неоинтимы нативных и искусственных элементов системы кровообращения. Архив патологии. 2022;84(3):14-23. doi:10.17116/patol20228403114.; Мухамадияров Р.А., Евтушенко А.В., Тарасов Р.С., Халивопуло И.К., Ляпин А.А., Кутихин А.Г. Различия структуры неоинтимы на голометаллическом стенте и заплате из политетрафторэтилена у детей после двухэтапной хирургической коррекции тетрады Фалло. Клиническая и экспериментальная хирургия. Журнал имени академика Б.В. Петровского. 2022;10(3):64-75. doi:10.33029/2308-1198-2022-10-3-64-75.; Mukhamadiyarov R.A., Bogdanov L.A., Glushkova T.V., Shishkova D.K., Kostyunin A.E., Koshelev V.A., Shabaev A.R., Frolov A.V., Stasev A.N., Lyapin A.A., Kutikhin A.G. EMbedding and Backscattered Scanning Electron Microscopy: A Detailed Protocol for the Whole-Specimen, High-Resolution Analysis of Cardiovascular Tissues. Front Cardiovasc Med. 2021;8:739549. doi:10.3389/fcvm.2021.739549.; Chen K., Xu M., Lu F., He Y. Development of Matrix Metalloproteinases-Mediated Extracellular Matrix Remodeling in Regenerative Medicine: A Mini Review. Tissue Eng Regen Med. 2023;20(5):661-670. doi:10.1007/s13770-023-00536-x.; Mead T.J., Bhutada S., Martin D.R., Apte S.S. Proteolysis: a key post-translational modification regulating proteoglycans. Am J Physiol Cell Physiol. 2022;323(3):C651-C665. doi:10.1152/ajpcell.00215.2022.; Jariwala N., Ozols M., Bell M., Bradley E., Gilmore A., Debelle L., Sherratt M.J. Matrikines as mediators of tissue remodelling. Adv Drug Deliv Rev. 2022;185:114240. doi:10.1016/j.addr.2022.114240.; Perepletchikova D., Kuchur P., Basovich L., Khvorova I., Lobov A., Azarkina K., Aksenov N., Bozhkova S., Karelkin V., Malashicheva A. Endothelial-mesenchymal crosstalk drives osteogenic differentiation of human osteoblasts through Notch signaling. Cell Commun Signal. 2025;23(1):100. doi:10.1186/s12964-025-02096-0.; Kostina A., Semenova D., Kostina D., Uspensky V., Kostareva A., Malashicheva A. Human aortic endothelial cells have osteogenic Notch-dependent properties in co-culture with aortic smooth muscle cells. Biochem Biophys Res Commun. 2019;514(2):462-468. doi:10.1016/j.bbrc.2019.04.177.; Rutkovskiy A., Lund M., Siamansour T.S., Reine T.M., Kolset S.O., Sand K.L., Ignatieva E., Gordeev M.L., Stensløkken K.O., Valen G., Vaage J., Malashicheva A. Mechanical stress alters the expression of calcification-related genes in vascular interstitial and endothelial cells. Interact Cardiovasc Thorac Surg. 2019;28(5):803-811. doi:10.1093/icvts/ivy339.; Tan Y., Zhang M., Kong Y., Zhang F., Wang Y., Huang Y., Song W., Li Z. et al. Fibroblasts and endothelial cells interplay drives hypertrophic scar formation: Insights from in vitro and in vivo models. Bioeng Transl Med. 2023;9(2):e10630. doi:10.1002/btm2.10630.; Šalingová B., Červenák Z., Adamičková A., Chomanicová N., Valášková S., Gažová A., Kyselovič J. Endothelial-Mesenchymal Transition or Functional Tissue Regeneration - Two Outcomes of Heart Remodeling. Physiol Res. 2021;70(Suppl 1):S13-S20. doi:10.33549/physiolres.934780.; Méndez-Barbero N., Gutiérrez-Muñoz C., Blanco-Colio L.M. Cellular Crosstalk between Endothelial and Smooth Muscle Cells in Vascular Wall Remodeling. Int J Mol Sci. 2021;22(14):7284. doi:10.3390/ijms22147284.; Randles M.J., Humphries M.J., Lennon R. Proteomic definitions of basement membrane composition in health and disease. Matrix Biol. 2017;57-58:12-28. doi:10.1016/j.matbio.2016.08.006.; Lau S., Gossen M., Lendlein A. Designing Cardiovascular Implants Taking in View the Endothelial Basement Membrane. Int J Mol Sci. 2021;22(23):13120. doi:10.3390/ijms222313120.; Lin P.K., Davis G.E. Extracellular Matrix Remodeling in Vascular Disease: Defining Its Regulators and Pathological Influence. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2023;43(9):1599-1616. doi:10.1161/ATVBAHA.123.318237.; Moncla L.M., Briend M., Bossé Y., Mathieu P. Calcific aortic valve disease: mechanisms, prevention and treatment. Nat Rev Cardiol. 2023;20(8):546-559. doi:10.1038/s41569-023-00845-7.; Kostyunin A.E., Glushkova T.V., Lobov A.A., Ovcharenko E.A., Zainullina B.R., Bogdanov L.A., Shishkova D.K., Markova V.E. et al. Proteolytic Degradation Is a Major Contributor to Bioprosthetic Heart Valve Failure. J Am Heart Assoc. 2023;12(1):e028215. doi:10.1161/JAHA.122.028215.; Kostyunin A., Mukhamadiyarov R., Glushkova T., Bogdanov L., Shishkova D., Osyaev N., Ovcharenko E., Kutikhin A. Ultrastructural Pathology of Atherosclerosis, Calcific Aortic Valve Disease, and Bioprosthetic Heart Valve Degeneration: Commonalities and Differences. Int J Mol Sci. 2020;21(20):7434. doi:10.3390/ijms21207434.; Kostyunin A.E., Yuzhalin A.E., Rezvova M.A., Ovcharenko E.A., Glushkova T.V., Kutikhin A.G. Degeneration of Bioprosthetic Heart Valves: Update 2020. J Am Heart Assoc. 2020;9(19):e018506. doi:10.1161/JAHA.120.018506.; Костюнин А.Е., Глушкова Т.В., Шишкова Д.К., Маркова В.Е., Овчаренко Е.А. Скрининговый анализ протеолитических ферментов и их ингибиторов в створках эпоксиобработанных биопротезных клапанов сердца, эксплантированных по причине дисфункций. Биомедицинская химия. 2022;68(1):68-75. doi:10.18097/PBMC20226801068.; Костюнин А.Е., Глушкова Т.В. Первые результаты изучения экспрессии матриксных металлопротеиназ-1/-2/-9/-12 в ксеногенных тканях эпоксиобработанных биопротезов клапанов сердца, эксплантированных по причине дисфункций. Российский кардиологический журнал. 2020;25(10):49-55. doi:10.15829/1560-4071-2020-3978.; Костюнин А.Е., Глушкова Т.В., Богданов Л.А., Кутихин А.Г., Овчаренко Е.А. Особенности экспрессии цистеиновых катепсинов B/K/L/S/V/Z в биопротезах клапанов сердца, эксплантированных по причине дисфункции. Сибирский журнал клинической и экспериментальной медицины. 2023;38(2):166-173. doi:10.29001/2073-8552-2023-38-2-166-173.; Костюнин А.Е., Глушкова Т.В., Богданов Л.А., Овчаренко Е.А. Экспрессия тканевых ингибиторов металлопротеиназ типа 1 и 2 в створках эксплантированных биопротезов клапанов сердца - новая патогенетическая параллель между структурной дегенерацией клапана и кальцинирующим аортальным стенозом. Вестник трансплантологии и искусственных органов. 2021;23(3):115-121. doi:10.15825/1995-1191-2021-3-115-121.

Availability: https://www.nii-kpssz.com/jour/article/view/1647
https://doi.org/10.17802/2306-1278-2025-14-3-163-179

STUDY OF STRUCTURAL, PHYSICAL AND MECHANICAL FEATURES OF COMPOSITE MATRICES BASED ON SILK FIBROIN AND POLYURETHANE ; ИССЛЕДОВАНИЕ СТРУКТУРНЫХ И ФИЗИКО-МЕХАНИЧЕСКИХ ОСОБЕННОСТЕЙ КОМПОЗИТНЫХ МАТРИКСОВ НА ОСНОВЕ ФИБРОИНА ШЕЛКА И ПОЛИУРЕТАНА

Authors: Ekaterina S. Prokudina, Marina Sergeevna Kolomeets, Tatiana Vladimirovna Glushkova, Vladislav Alexandrovich Koshelev, Nikita Alexandrovich Kochergin, Екатерина Сергеевна Прокудина, Марина Сергеевна Коломеец, Татьяна Владимировна Глушкова, Владислав Александрович Кошелев, Никита Александрович Кочергин

Contributors: Работа выполнена при поддержке комплексной программы фундаментальных научных исследований РАН в рамках фундаментальной темы НИИ КПССЗ № 0419-2025-0001 «Разработка тканеинженерных изделий медицинского назначения для сердечно-сосудистой хирургии с использованием методов внутрисосудистой визуализации, машинного обучения и искусственного интеллекта» при финансовой поддержке Министерства науки и высшего образования Российской Федерации в рамках национального проекта «Наука и университеты».

Source: Complex Issues of Cardiovascular Diseases; Том 14, № 3 (2025); 71-80 ; Комплексные проблемы сердечно-сосудистых заболеваний; Том 14, № 3 (2025); 71-80 ; 2587-9537 ; 2306-1278 ; undefined

Subject Terms: Адсорбция белков, Polyurethane, Composite matrix, Electrospinning, Ultrastructure, Hydrophilicity, Protein adsorption, Полиуретан, Композитный матрикс, Электроспиннинг, Ультраструктура, Гидрофильность

File Description: application/pdf

Relation: https://www.nii-kpssz.com/jour/article/view/1634/1044; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1634/1972; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1634/1973; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1634/1974; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1634/1975; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1634/1976; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1634/1977; Zhu Y., Guo S., Ravichandran D., Ramanathan A., Sobczak M.T., Sacco A.F., Patil D., Thummalapalli S.V. et al. 3D-Printed Polymeric Biomaterials for Health Applications. Adv Healthc Mater. 2025; 14(1): e2402571. doi:10.1002/adhm.202402571.; Lai J., Liu Y., Lu G., Yung P., Wang X., Tuan R.S., Li Z.A. 4D bioprinting of programmed dynamic tissues. Bioact Mater. 2024; 37: 348-377. doi:10.1016/j.bioactmat.2024.03.033.; Xu L., Wu C., Lay Yap P., Losic D., Zhu J., Yang Y., Qiao S., Ma L., Zhang Y., Wang H. Recent advances of silk fibroin materials: From molecular modification and matrix enhancement to possible encapsulation-related functional food applications. Food Chem. 2024; 438: 137964. doi:10.1016/j.foodchem.2023.137964.; Walsh T., Hadisi Z., Dabiri S.M.H., Hasanpour S., Samimi S., Azimzadeh M., Akbari M. Facile roll-to-roll production of nanoporous fiber coatings for advanced wound care sutures. Nanoscale. 2024; 16(33): 15615-15628. doi:10.1039/d4nr01432d.; Sahoo J.K., Hasturk O., Falcucci T., Kaplan D.L. Silk chemistry and biomedical material designs. Nat Rev Chem. 2023; 7(5): 302-318. doi:10.1038/s41570-023-00486-x.; Shimada K., Honda T., Kato K., Hori R., Ujike N., Uemura A., Murakami T., Kitpipatkun P., Nakazawa Y., Tanaka R. Silk fibroin-based vascular repairing sheet with angiogenic-promoting activity of SVVYGLR peptide regenerated the damaged vascular in rats. J Biomater Appl. 2022; 37(1): 3-11. doi:10.1177/0885328220928660.; Sultana N., Cole A., Strachan F. Biocomposite Scaffolds for Tissue Engineering: Materials, Fabrication Techniques and Future Directions. Materials (Basel). 2024; 17(22): 5577. doi:10.3390/ma17225577.; Прокудина Е. С., Сенокосова Е. А., Антонова Л. В., Кривкина Е.О., Великанова Е.А., Акентьева Т.Н., Глушкова Т.В., Матвеева В.Г., Кочергин Н.А. Новый тканеинженерный сосудистый матрикс на основе регенерированного фиброина шелка: исследование in vitro. Современные технологии в медицине. 2023; 15(4): 41-49. doi:10.17691/stm2023.15.4.04.; Колесников А.Ю., Прокудина Е.С., Сенокосова Е.А., Арнт А.А., Антонова Л.В., Миронов А.В., Кривкина Е.О., Кочергин Н.А. Результаты долгосрочной проходимости и прижизненной визуализации сосудистых заплат из фиброина шелка. Клиническая и экспериментальная хирургия. Журнал имени академика Б.В. Петровского. 2023; 11 (3(41)): 68-75. doi:10.33029/2308-1198-2023-11-3-68-75.; Прокудина Е.С., Сенокосова Е.А., Антонова Л.В., Мухамадияров Р.А., Кошелев В.А., Кривкина Е.О., Великанова Е.А., Кочергин Н.А. Морфологические особенности ремоделирования биологических и тканеинженерных сосудистых заплат: результаты испытаний на модели овцы. Сибирский журнал клинической и экспериментальной медицины. 2023; 38(4): 250-259. doi:10.29001/2073-8552-2023-38-4-250-259.; Прокудина Е.С., Антонова Л.В., Сенокосова Е.А., Кривкина Е.О., Синицкая А.В., Коломеец М.С., Кочергин Н.А. Исследование особенностей деградации, биосовместимости и кальцификации биоматериалов для сосудистой хирургии. Комплексные проблемы сердечно-сосудистых заболеваний. 2024; 13(S4): 138-149. doi:10.17802/2306-1278-2024-13-4S-138-149.; Сенокосова Е.А., Прокудина Е.С., Матвеева В.Г., Великанова Е.А., Глушкова Т.В., Кошелев В.А., Акентьева Т.Н., Антонова Л.В., Барбараш Л.С. Тканеинженерный матрикс на основе полиуретана: исследование in vitro. Комплексные проблемы сердечно-сосудистых заболеваний. 2023; 12(S4): 120-130. doi:10.17802/2306-1278-2023-12-4S-120-130.; Антонова Л. В., Великанова Е. А., Сенокосова Е. А., Мухамадияров Р.А., Кривкина Е.О., Кошелев В.А., Миронов А.В., Шабаев А.Р., Сардин Е.С., Прокудина Е.С., Ханова М.Ю., Барбараш Л.С. Особенности ремоделирования матриксов из полиуретана в экспериментах на модели овцы. Комплексные проблемы сердечно-сосудистых заболеваний. 2023; 12(S4): 110-119. doi:10.17802/2306-1278-2023-12-4S-110-119.; Chernonosova V.S., Kuzmin I.E., Shundrina I.K., Korobeynikov M.V., Golyshev V.M., Chelobanov B.P., Laktionov P.P. Effect of Sterilization Methods on Electrospun Scaffolds Produced from Blend of Polyurethane with Gelatin. J Funct Biomater. 2023; 14(2):70. doi:10.3390/jfb14020070.; Li X., Li N., Fan Q., Yan K., Zhang Q., Wang D., You R. Silk fibroin scaffolds with stable silk I crystal and tunable properties. Int J Biol Macromol. 2023; 248: 125910. doi:10.1016/j.ijbiomac.2023.125910.; Guo J., Lu S., Zhou Y., Yang Y., Yao X., Wu G. Heat-Insulated Regenerated Fibers with UV Resistance: Silk Fibroin/Al2O3 Nanoparticles. Molecules. 2024; 29(9): 2023. doi:10.3390/molecules29092023.

Availability: https://www.nii-kpssz.com/jour/article/view/1634
https://doi.org/10.17802/2306-1278-2025-14-3-71-80

CURRENT APPROACHES TO THE IDENTIFICATION OF CELLULAR MARKERS OF ENDOTHELIAL DYSFUNCTION ; СОВРЕМЕННЫЕ ПОДХОДЫ К ИДЕНТИФИКАЦИИ КЛЕТОЧНЫХ МАРКЕРОВ ДИСФУНКЦИИ ЭНДОТЕЛИЯ

Authors: Leo A. Bogdanov, Vladislav A. Koshelev, Rinat A. Mukhamadiyarov, Anastasia Yu. Kanonykina, Anastasia I. Lazebnaya, Egor A. Kondratiev, Alexander D. Stepanov, Anton G. Kutikhin, Лев Александрович Богданов, Владислав Александрович Кошелев, Ринат Авхадиевич Мухамадияров, Анастасия Юрьевна Каноныкина, Анастасия Ивановна Лазебная, Егор Андреевич Кондратьев, Александр Денисович Степанов, Антон Геннадьевич Кутихин

Contributors: This research was funded by the Russian Science Foundation, grant number 24-75-10057 “Cellular markers of endothelial dysfunction” (Leo Bogdanov), https://rscf.ru/project/24-75-10057/., Исследование выполнено за счет гранта Российского научного фонда № 24-75-10057 «Идентификация клеточных маркеров дисфункции эндотелия», https://rscf.ru/project/24-75-10057/.

Source: Complex Issues of Cardiovascular Diseases; Том 13, № 3S (2024): приложение; 191-207 ; Комплексные проблемы сердечно-сосудистых заболеваний; Том 13, № 3S (2024): приложение; 191-207 ; 2587-9537 ; 2306-1278

Subject Terms: Электронная микроскопия, Endothelial physiology, Endothelial dysfunction, Inflammation, Cellular markers, Immunohistochemistry, Electron microscopy, Физиология эндотелия, Дисфункция эндотелия, Воспаление, Клеточные маркеры, Иммуногистохимия

File Description: application/pdf

Relation: https://www.nii-kpssz.com/jour/article/view/1526/940; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1526/1769; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1526/1770; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1526/1771; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1526/1772; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1526/1774; Alexander Y., Osto E., Schmidt-Trucksäss A., Shechter M., Trifunovic D., Duncker D.J., Aboyans V., Bäck M., Badimon L., Cosentino F., De Carlo M., Dorobantu M., Harrison D.G., Guzik T.J., Hoefer I., Morris P.D., Norata G.D., Suades R., Taddei S., Vilahur G., Waltenberger J., Weber C., Wilkinson F., Bochaton-Piallat M.L., Evans P.C. Endothelial function in cardiovascular medicine: a consensus paper of the European Society of Cardiology Working Groups on Atherosclerosis and Vascular Biology, Aorta and Peripheral Vascular Diseases, Coronary Pathophysiology and Microcirculation, and Thrombosis. Cardiovasc Res. 2021;117(1):29-42. doi:10.1093/cvr/cvaa085.; Ricard N., Bailly S., Guignabert C., Simons M. The quiescent endothelium: signalling pathways regulating organ-specific endothelial normalcy. Nat Rev Cardiol. 2021;18(8):565-580. doi:10.1038/s41569-021-00517-4.; Gao Y., Galis Z.S. Exploring the Role of Endothelial Cell Resilience in Cardiovascular Health and Disease. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2021;41(1):179-185. doi:10.1161/ATVBAHA.120.314346.; Tombor L.S., Dimmeler S. Why is endothelial resilience key to maintain cardiac health? Basic Res Cardiol. 2022;117(1):35. doi:10.1007/s00395-022-00941-8.; Bloom S.I., Islam M.T., Lesniewski L.A., Donato A.J. Mechanisms and consequences of endothelial cell senescence. Nat Rev Cardiol. 2023;20(1):38-51. doi:10.1038/s41569-022-00739-0.; Tamargo I.A., Baek K.I., Kim Y., Park C., Jo H. Flow-induced reprogramming of endothelial cells in atherosclerosis. Nat Rev Cardiol. 2023;20(11):738-753. doi:10.1038/s41569-023-00883-1.; Violi F., Cammisotto V., Bartimoccia S., Pignatelli P., Carnevale R., Nocella C. Gut-derived low-grade endotoxaemia, atherothrombosis and cardiovascular disease. Nat Rev Cardiol. 2023;20(1):24-37. doi:10.1038/s41569-022-00737-2.; Gu S.X., Tyagi T., Jain K., Gu V.W., Lee S.H., Hwa J.M., Kwan J.M., Krause D.S., Lee A.I., Halene S., Martin K.A., Chun H.J., Hwa J. Thrombocytopathy and endotheliopathy: crucial contributors to COVID-19 thromboinflammation. Nat Rev Cardiol. 2021;18(3):194-209. doi:10.1038/s41569-020-00469-1.; Evans P.C., Rainger G.E., Mason J.C., Guzik T.J., Osto E., Stamataki Z., Neil D., Hoefer I.E., Fragiadaki M., Waltenberger J., Weber C., Bochaton-Piallat M.L., Bäck M. Endothelial dysfunction in COVID-19: a position paper of the ESC Working Group for Atherosclerosis and Vascular Biology, and the ESC Council of Basic Cardiovascular Science. Cardiovasc Res. 2020;116(14):2177-2184. doi:10.1093/cvr/cvaa230.; Souilhol C., Serbanovic-Canic J., Fragiadaki M., Chico T.J., Ridger V., Roddie H., Evans P.C. Endothelial responses to shear stress in atherosclerosis: a novel role for developmental genes. Nat Rev Cardiol. 2020;17(1):52-63. doi:10.1038/s41569-019-0239-5.; Baaten C.C.F.M.J., Vondenhoff S., Noels H. Endothelial Cell Dysfunction and Increased Cardiovascular Risk in Patients With Chronic Kidney Disease. Circ Res. 2023;132(8):970-992. doi:10.1161/CIRCRESAHA.123.321752.; Segers V.F.M., Bringmans T., De Keulenaer G.W. Endothelial dysfunction at the cellular level in three dimensions: severity, acuteness, and distribution. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 2023;325(2):H398-H413. doi:10.1152/ajpheart.00256.2023.; Bonaventura A., Vecchié A., Dagna L., Martinod K., Dixon D.L., Van Tassell B.W., Dentali F., Montecucco F., Massberg S., Levi M., Abbate A. Endothelial dysfunction and immunothrombosis as key pathogenic mechanisms in COVID-19. Nat Rev Immunol. 2021;21(5):319-329. doi:10.1038/s41577-021-00536-9.; Trimm E., Red-Horse K. Vascular endothelial cell development and diversity. Nat Rev Cardiol. 2023;20(3):197-210. doi:10.1038/s41569-022-00770-1.; Becker L.M., Chen S.H., Rodor J., de Rooij L.P.M.H., Baker A.H., Carmeliet P. Deciphering endothelial heterogeneity in health and disease at single-cell resolution: progress and perspectives. Cardiovasc Res. 2023;119(1):6-27. doi:10.1093/cvr/cvac018.; Weatherald J., Boucly A., Peters A., Montani D., Prasad K., Psotka M.A., Zannad F., Gomberg-Maitland M., McLaughlin V., Simonneau G., Humbert M.; Evolving Landscape of Pulmonary Arterial Hypertension and Redesigning Pulmonary Arterial Hypertension Clinical Trials Task Force of the 18th Global CardioVascular Clinical Trialists Forum. The evolving landscape of pulmonary arterial hypertension clinical trials. Lancet. 2022;400(10366):1884-1898. doi:10.1016/S0140-6736(22)01601-4.; Ungvari Z., Tarantini S., Kiss T., Wren J.D., Giles C.B., Griffin C.T., Murfee W.L., Pacher P., Csiszar A. Endothelial dysfunction and angiogenesis impairment in the ageing vasculature. Nat Rev Cardiol. 2018;15(9):555-565. doi:10.1038/s41569-018-0030-z.; Donato A.J., Machin D.R., Lesniewski L.A. Mechanisms of Dysfunction in the Aging Vasculature and Role in Age-Related Disease. Circ Res. 2018;123(7):825-848. doi:10.1161/CIRCRESAHA.118.312563.; Cahill P.A., Redmond E.M. Vascular endothelium - Gatekeeper of vessel health. Atherosclerosis. 2016;248:97-109. doi:10.1016/j.atherosclerosis.2016.03.007.; Gimbrone M.A. Jr., García-Cardeña G. Endothelial Cell Dysfunction and the Pathobiology of Atherosclerosis. Circ Res. 2016;118(4):620-36. doi:10.1161/CIRCRESAHA.115.306301.; Jensen H.A., Mehta J.L. Endothelial cell dysfunction as a novel therapeutic target in atherosclerosis. Expert Rev Cardiovasc Ther. 2016;14(9):1021-33. doi:10.1080/14779072.2016.1207527.; Kozlov S., Okhota S., Avtaeva Y., Melnikov I., Matroze E., Gabbasov Z. Von Willebrand factor in diagnostics and treatment of cardiovascular disease: Recent advances and prospects. Front Cardiovasc Med. 2022;9:1038030. doi:10.3389/fcvm.2022.1038030.; Охота С.Д., Козлов С.Г., Автаева Ю.Н., Мельников И.С., Габбасов З.А. Фактор фон Виллебранда и сердечно-сосудистая патология. Атеросклероз и дислипидемии. 2022; 4 (49):10-24. doi:10.34687/2219-8202.JAD.2022.04.0002.; Авдонин П.П., Цветаева Н.В., Гончаров Н.В., Рыбакова Е.Ю., Труфанов С.К., Цитрина А.А., Авдонин П.В. Фактор Виллебранда в норме и при патологии. Биологические мембраны. 2021; 38(4): 237-256. doi:10.31857/S0233475521040034.; Авдонин П.П., Труфанов С.К., Цитрина А.А., Рыбакова Е.Ю., Гончаров Н.В., Авдонин П.В. Использование конъюгированного с флуоресцентной меткой аптамера ARC1779 для оценки влияния H2O2 на экзоцитоз фактора Виллебранда. Биохимия. 2021. Т. 86. № 2. С. 147-157. doi:10.31857/S0320972521020019.; Kutikhin A.G., Shishkova D.K., Velikanova E.A., Sinitsky M.Y., Sinitskaya A.V., Markova V.E. Endothelial Dysfunction in the Context of Blood-Brain Barrier Modeling. J Evol Biochem Physiol. 2022;58(3):781-806. doi:10.1134/S0022093022030139.; Feenstra L., Kutikhin A.G., Shishkova D.K., Buikema H., Zeper L.W., Bourgonje A.R., Krenning G., Hillebrands J.L. Calciprotein Particles Induce Endothelial Dysfunction by Impairing Endothelial Nitric Oxide Metabolism. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2023;43(3):443-455. doi:10.1161/ATVBAHA.122.318420.; Fleming I., Fisslthaler B., Dimmeler S., Kemp B.E., Busse R. Phosphorylation of Thr(495) regulates Ca(2+)/calmodulin-dependent endothelial nitric oxide synthase activity. Circ Res. 2001;88(11):E68-75. doi:10.1161/hh1101.092677.; Chen C.A., Druhan L.J., Varadharaj S., Chen Y.R., Zweier J.L. Phosphorylation of endothelial nitric-oxide synthase regulates superoxide generation from the enzyme. J Biol Chem. 2008;283(40):27038-47. doi:10.1074/jbc.M802269200.; Watts V.L., Motley E.D. Role of protease-activated receptor-1 in endothelial nitric oxide synthase-Thr495 phosphorylation. Exp Biol Med (Maywood). 2009;234(2):132-9. doi:10.3181/0807-RM-233.; Lee C.H., Wei Y.W., Huang Y.T., Lin Y.T., Lee Y.C., Lee K.H., Lu P.J. CDK5 phosphorylates eNOS at Ser-113 and regulates NO production. J Cell Biochem. 2010;110(1):112-7. doi:10.1002/jcb.22515.; Michell B.J., Chen Z.P., Tiganis T., Stapleton D., Katsis F., Power D.A., Sim A.T., Kemp B.E. Coordinated control of endothelial nitric-oxide synthase phosphorylation by protein kinase C and the cAMP-dependent protein kinase. J Biol Chem. 2001;276(21):17625-8. doi:10.1074/jbc.C100122200.; Iring A., Jin Y.J., Albarrán-Juárez J., Siragusa M., Wang S., Dancs P.T., Nakayama A., Tonack S., Chen M., Künne C., Sokol A.M., Günther S., Martínez A., Fleming I., Wettschureck N., Graumann J., Weinstein L.S., Offermanns S. Shear stress-induced endothelial adrenomedullin signaling regulates vascular tone and blood pressure. J Clin Invest. 2019;129(7):2775-2791. doi:10.1172/JCI123825.; Kennard S., Ruan L., Buffett R.J., Fulton D., Venema R.C. TNFα reduces eNOS activity in endothelial cells through serine 116 phosphorylation and Pin1 binding: Confirmation of a direct, inhibitory interaction of Pin1 with eNOS. Vascul Pharmacol. 2016;81:61-8. doi:10.1016/j.vph.2016.04.003.; Li C., Ruan L., Sood S.G., Papapetropoulos A., Fulton D., Venema R.C. Role of eNOS phosphorylation at Ser-116 in regulation of eNOS activity in endothelial cells. Vascul Pharmacol. 2007;47(5-6):257-64. doi:10.1016/j.vph.2007.07.001.; Coon B.G., Timalsina S., Astone M., Zhuang Z.W., Fang J., Han J., Themen J., Chung M., Yang-Klingler Y.J., Jain M., Hirschi K.K., Yamamato A., Trudeau L.E., Santoro M., Schwartz M.A. A mitochondrial contribution to anti-inflammatory shear stress signaling in vascular endothelial cells. J Cell Biol. 2022;221(7):e202109144. doi:10.1083/jcb.202109144.; Wu W., Geng P., Zhu J., Li J., Zhang L., Chen W., Zhang D., Lu Y., Xu X. KLF2 regulates eNOS uncoupling via Nrf2/HO-1 in endothelial cells under hypoxia and reoxygenation. Chem Biol Interact. 2019;305:105-111. doi:10.1016/j.cbi.2019.03.010.; Lin Z., Kumar A., SenBanerjee S., Staniszewski K., Parmar K., Vaughan D.E., Gimbrone M.A. Jr., Balasubramanian V., García-Cardeña G., Jain M.K. Kruppel-like factor 2 (KLF2) regulates endothelial thrombotic function. Circ Res. 2005;96(5):e48-57. doi:10.1161/01.RES.0000159707.05637.a1.; Chiplunkar A.R., Curtis B.C., Eades G.L., Kane M.S., Fox S.J., Haar J.L., Lloyd J.A. The Krüppel-like factor 2 and Krüppel-like factor 4 genes interact to maintain endothelial integrity in mouse embryonic vasculogenesis. BMC Dev Biol. 2013;13:40. doi:10.1186/1471-213X-13-40.; Shen B., Smith R.S. Jr., Hsu YT., Chao L., Chao J. Kruppel-like factor 4 is a novel mediator of Kallistatin in inhibiting endothelial inflammation via increased endothelial nitric-oxide synthase expression. J Biol Chem. 2009;284(51):35471-8. doi:10.1074/jbc.M109.046813.; Ramprasath T., Vasudevan V., Sasikumar S., Puhari S.S., Saso L., Selvam G.S. Regression of oxidative stress by targeting eNOS and Nrf2/ARE signaling: a guided drug target for cardiovascular diseases. Curr Top Med Chem. 2015;15(9):857-71. doi:10.2174/1568026615666150220114417.; Förstermann U., Xia N., Li H. Roles of Vascular Oxidative Stress and Nitric Oxide in the Pathogenesis of Atherosclerosis. Circ Res. 2017;120(4):713-735. doi:10.1161/CIRCRESAHA.116.309326.; Drummond G.R., Sobey C.G. Endothelial NADPH oxidases: which NOX to target in vascular disease? Trends Endocrinol Metab. 2014;25(9):452-63. doi:10.1016/j.tem.2014.06.012.; Zhang Y., Murugesan P., Huang K., Cai H. NADPH oxidases and oxidase crosstalk in cardiovascular diseases: novel therapeutic targets. Nat Rev Cardiol. 2020;17(3):170-194. doi:10.1038/s41569-019-0260-8.; Lassègue B., San Martín A., Griendling K.K. Biochemistry, physiology, and pathophysiology of NADPH oxidases in the cardiovascular system. Circ Res. 2012;110(10):1364-90. doi:10.1161/CIRCRESAHA.111.243972.; Drummond G.R., Selemidis S., Griendling K.K., Sobey C.G. Combating oxidative stress in vascular disease: NADPH oxidases as therapeutic targets. Nat Rev Drug Discov. 2011;10(6):453-71. doi:10.1038/nrd3403.; Шишкова Д.К., Синицкая А.В., Синицкий М.Ю., Матвеева В.Г., Великанова Е.А., Маркова В.Е., Кутихин А.Г. Случай спонтанного эндотелиально-мезенхимального перехода в культуре первичных эндотелиальных клеток пупочной вены человека. Комплексные проблемы сердечно-сосудистых заболеваний. 2022. Т. 11. № 3. С. 97-114. doi:10.17802/2306-1278-2022-11-3-97-114.; Li Y., Lui K.O., Zhou B. Reassessing endothelial-to-mesenchymal transition in cardiovascular diseases. Nat Rev Cardiol. 2018;15(8):445-456. doi:10.1038/s41569-018-0023-y.; Alvandi Z., Bischoff J. Endothelial-Mesenchymal Transition in Cardiovascular Disease. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2021;41(9):2357-2369. doi:10.1161/ATVBAHA.121.313788.; Shishkova D., Markova V., Sinitsky M., Tsepokina A., Velikanova E., Bogdanov L., Glushkova T., Kutikhin A. Calciprotein Particles Cause Endothelial Dysfunction under Flow. Int J Mol Sci. 2020;21(22):8802. doi:10.3390/ijms21228802.; Shishkova D.K., Velikanova E.A., Bogdanov L.A., Sinitsky M.Y., Kostyunin A.E., Tsepokina A.V., Gruzdeva O.V., Mironov A.V., Mukhamadiyarov R.A., Glushkova T.V., Krivkina E.O., Matveeva V.G., Hryachkova O.N., Markova V.E., Dyleva Y.A., Belik E.V., Frolov A.V., Shabaev A.R., Efimova O.S., Popova A.N., Malysheva V.Y., Kolmykov R.P., Sevostyanov O.G., Russakov D.M., Dolganyuk V.F., Gutakovsky A.K., Zhivodkov Y.A., Kozhukhov A.S., Brusina E.B., Ismagilov Z.R., Barbarash O.L., Yuzhalin A.E., Kutikhin A.G. Calciprotein Particles Link Disturbed Mineral Homeostasis with Cardiovascular Disease by Causing Endothelial Dysfunction and Vascular Inflammation. Int J Mol Sci. 2021;22(22):12458. doi:10.3390/ijms222212458.; Shishkova D., Lobov A., Zainullina B., Matveeva V., Markova V., Sinitskaya A., Velikanova E., Sinitsky M., Kanonykina A., Dyleva Y., Kutikhin A. Calciprotein Particles Cause Physiologically Significant Pro-Inflammatory Response in Endothelial Cells and Systemic Circulation. Int J Mol Sci. 2022;23(23):14941. doi:10.3390/ijms232314941.; Frolov A., Lobov A., Kabilov M., Zainullina B., Tupikin A., Shishkova D., Markova V., Sinitskaya A., Grigoriev E., Markova Y., Kutikhin A. Multi-Omics Profiling of Human Endothelial Cells from the Coronary Artery and Internal Thoracic Artery Reveals Molecular but Not Functional Heterogeneity. Int J Mol Sci. 2023;24(19):15032. doi:10.3390/ijms241915032.; Shishkova D., Lobov A., Repkin E., Markova V., Markova Y., Sinitskaya A., Sinitsky M., Kondratiev E., Torgunakova E., Kutikhin A. Calciprotein Particles Induce Cellular Compartment-Specific Proteome Alterations in Human Arterial Endothelial Cells. J Cardiovasc Dev Dis. 2023;11(1):5. doi:10.3390/jcdd11010005.; Smale S.T., Natoli G. Transcriptional control of inflammatory responses. Cold Spring Harb Perspect Biol. 2014;6(11):a016261. doi:10.1101/cshperspect.a016261.; Peng K., Fan X, Li Q., Wang Y., Chen X., Xiao P., Passerini A.G., Simon S.I., Sun C. IRF-1 mediates the suppressive effects of mTOR inhibition on arterial endothelium. J Mol Cell Cardiol. 2020;140:30-41. doi:10.1016/j.yjmcc.2020.02.006.; Simons K.H., de Vries M.R., de Jong R.C.M., Peters H.A.B., Jukema J.W., Quax P.H.A. IRF3 and IRF7 mediate neovascularization via inflammatory cytokines. J Cell Mol Med. 2019;23(6):3888-3896. doi:10.1111/jcmm.14247.; Cai H., Yao Z., Li W. IRF-5 accelerates leukocyte adhesion to endothelial cells in ischemia-reperfusion injury through regulating the transcription of VCAM-1. Biochem Biophys Res Commun. 2017;492(2):192-198. doi:10.1016/j.bbrc.2017.08.044.; Stafim da Cunha R., Gregório P.C., Maciel R.A.P., Favretto G., Franco C.R.C., Gonçalves J.P., de Azevedo M.L.V., Pecoits-Filho R., Stinghen A.E.M. Uremic toxins activate CREB/ATF1 in endothelial cells related to chronic kidney disease. Biochem Pharmacol. 2022;198:114984. doi:10.1016/j.bcp.2022.114984.; Niwano K., Arai M., Koitabashi N., Hara S., Watanabe A., Sekiguchi K., Tanaka T., Iso T., Kurabayashi M. Competitive binding of CREB and ATF2 to cAMP/ATF responsive element regulates eNOS gene expression in endothelial cells. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2006;26(5):1036-42. doi:10.1161/01.ATV.0000215179.76144.39.; Aung H.H., Lame M.W., Gohil K., An C.I., Wilson D.W., Rutledge J.C. Induction of ATF3 gene network by triglyceride-rich lipoprotein lipolysis products increases vascular apoptosis and inflammation. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2013;33(9):2088-96. doi:10.1161/ATVBAHA.113.301375.; Gargalovic P.S., Gharavi N.M., Clark M.J., Pagnon J., Yang W.P., He A., Truong A., Baruch-Oren T., Berliner J.A., Kirchgessner T.G., Lusis A.J. The unfolded protein response is an important regulator of inflammatory genes in endothelial cells. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2006;26(11):2490-6. doi:10.1161/01.ATV.0000242903.41158.a1.; Zhou AX, Tabas I. The UPR in atherosclerosis. Semin Immunopathol. 2013;35(3):321-32. doi:10.1007/s00281-013-0372-x.; Onat D., Jelic S., Schmidt A.M., Pile-Spellman J., Homma S., Padeletti M., Jin Z., Le Jemtel T.H., Colombo P.C., Feng L. Vascular endothelial sampling and analysis of gene transcripts: a new quantitative approach to monitor vascular inflammation. J Appl Physiol (1985). 2007;103(5):1873-8. doi:10.1152/japplphysiol.00367.2007.; Yan S.F., Fujita T., Lu J., Okada K., Shan Zou Y., Mackman N., Pinsky D.J., Stern D.M. Egr-1, a master switch coordinating upregulation of divergent gene families underlying ischemic stress. Nat Med. 2000;6(12):1355-61. doi:10.1038/82168.; Suehiro J., Hamakubo T., Kodama T., Aird W.C., Minami T. Vascular endothelial growth factor activation of endothelial cells is mediated by early growth response-3. Blood. 2010;115(12):2520-32. doi:10.1182/blood-2009-07-233478.; Wincewicz A., Sulkowska M., Rutkowski R., Sulkowski S., Musiatowicz B., Hirnle T., Famulski W., Koda M., Sokol G., Szarejko P. STAT1 and STAT3 as intracellular regulators of vascular remodeling. Eur J Intern Med. 2007;18(4):267-71. doi:10.1016/j.ejim.2006.12.007.; Yang X.P., Irani K., Mattagajasingh S., Dipaula A., Khanday F., Ozaki M., Fox-Talbot K., Baldwin W.M. 3rd, Becker L.C. Signal transducer and activator of transcription 3alpha and specificity protein 1 interact to upregulate intercellular adhesion molecule-1 in ischemic-reperfused myocardium and vascular endothelium. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2005;25(7):1395-400. doi:10.1161/01.ATV.0000168428.96177.24.; Meng Z.Z., Liu W., Xia Y., Yin H.M., Zhang C.Y., Su D., Yan L.F., Gu A.H., Zhou Y. The pro-inflammatory signalling regulator Stat4 promotes vasculogenesis of great vessels derived from endothelial precursors. Nat Commun. 2017;8:14640. doi:10.1038/ncomms14640.; Guzik T.J., Nosalski R., Maffia P., Drummond G.R. Immune and inflammatory mechanisms in hypertension. Nat Rev Cardiol. 2024 Jan 3. doi:10.1038/s41569-023-00964-1. Online ahead of print.; Vande Walle L., Lamkanfi M. Drugging the NLRP3 inflammasome: from signalling mechanisms to therapeutic targets. Nat Rev Drug Discov. 2024;23(1):43-66. doi:10.1038/s41573-023-00822-2.; Toldo S., Abbate A. The role of the NLRP3 inflammasome and pyroptosis in cardiovascular diseases. Nat Rev Cardiol. 2023 Nov 3. doi:10.1038/s41569-023-00946-3.; Potere N., Garrad E., Kanthi Y., Di Nisio M., Kaplanski G., Bonaventura A., Connors J.M., De Caterina R., Abbate A. NLRP3 inflammasome and interleukin-1 contributions to COVID-19-associated coagulopathy and immunothrombosis. Cardiovasc Res. 2023;119(11):2046-2060. doi:10.1093/cvr/cvad084.; SenBanerjee S., Lin Z., Atkins G.B., Greif D.M., Rao R.M., Kumar A., Feinberg M.W., Chen Z., Simon D.I., Luscinskas F.W., Michel T.M., Gimbrone M.A. Jr., García-Cardeña G., Jain M.K. KLF2 Is a novel transcriptional regulator of endothelial proinflammatory activation. J Exp Med. 2004;199(10):1305-15. doi:10.1084/jem.20031132.; Bhattacharya R., Senbanerjee S., Lin Z., Mir S., Hamik A., Wang P., Mukherjee P., Mukhopadhyay D., Jain M.K. Inhibition of vascular permeability factor/vascular endothelial growth factor-mediated angiogenesis by the Kruppel-like factor KLF2. J Biol Chem. 2005;280(32):28848-51. doi:10.1074/jbc.C500200200.; Parmar K.M., Larman H.B., Dai G., Zhang Y., Wang E.T., Moorthy S.N., Kratz J.R., Lin Z., Jain M.K., Gimbrone M.A. Jr., García-Cardeña G. Integration of flow-dependent endothelial phenotypes by Kruppel-like factor 2. J Clin Invest. 2006;116(1):49-58. doi:10.1172/JCI24787.; Dekker R.J., Boon R.A., Rondaij M.G., Kragt A., Volger O.L., Elderkamp Y.W., Meijers J.C., Voorberg J., Pannekoek H., Horrevoets A.J. KLF2 provokes a gene expression pattern that establishes functional quiescent differentiation of the endothelium. Blood. 2006;107(11):4354-63. doi:10.1182/blood-2005-08-3465.; Hartmann P., Zhou Z., Natarelli L., Wei Y., Nazari-Jahantigh M., Zhu M., Grommes J., Steffens S., Weber C., Schober A. Endothelial Dicer promotes atherosclerosis and vascular inflammation by miRNA-103-mediated suppression of KLF4. Nat Commun. 2016;7:10521. doi:10.1038/ncomms10521.; Yoshida T., Yamashita M., Horimai C., Hayashi M. Deletion of Krüppel-like factor 4 in endothelial and hematopoietic cells enhances neointimal formation following vascular injury. J Am Heart Assoc. 2014;3(1):e000622. doi:10.1161/JAHA.113.000622.; Hamik A., Lin Z., Kumar A., Balcells M., Sinha S., Katz J., Feinberg M.W., Gerzsten R.E., Edelman E.R., Jain M.K. Kruppel-like factor 4 regulates endothelial inflammation. J Biol Chem. 2007;282(18):13769-79. doi:10.1074/jbc.M700078200.; Zakkar M., Van der Heiden K., Luong le A., Chaudhury H., Cuhlmann S., Hamdulay S.S., Krams R., Edirisinghe I., Rahman I., Carlsen H., Haskard D.O., Mason J.C., Evans P.C. Activation of Nrf2 in endothelial cells protects arteries from exhibiting a proinflammatory state. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2009;29(11):1851-7. doi:10.1161/ATVBAHA.109.193375.; Chen X.L., Dodd G., Thomas S., Zhang X., Wasserman M.A., Rovin B.H., Kunsch C. Activation of Nrf2/ARE pathway protects endothelial cells from oxidant injury and inhibits inflammatory gene expression. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 2006;290(5):H1862-70. doi:10.1152/ajpheart.00651.2005.; Chen X.L., Varner S.E., Rao A.S., Grey J.Y., Thomas S., Cook C.K., Wasserman M.A., Medford R.M., Jaiswal A.K., Kunsch C. Laminar flow induction of antioxidant response element-mediated genes in endothelial cells. A novel anti-inflammatory mechanism. J Biol Chem. 2003;278(2):703-11. doi:10.1074/jbc.M203161200.; Vestweber D. How leukocytes cross the vascular endothelium. Nat Rev Immunol. 2015;15(11):692-704. doi:10.1038/nri3908.; Nourshargh S., Alon R. Leukocyte migration into inflamed tissues. Immunity. 2014;41(5):694-707. doi:10.1016/j.immuni.2014.10.008.; Pickett J.R., Wu Y., Zacchi L.F., Ta H.T. Targeting endothelial vascular cell adhesion molecule-1 in atherosclerosis: drug discovery and development of vascular cell adhesion molecule-1-directed novel therapeutics. Cardiovasc Res. 2023;119(13):2278-2293. doi:10.1093/cvr/cvad130.; Singh V., Kaur R., Kumari P., Pasricha C., Singh R. ICAM-1 and VCAM-1: Gatekeepers in various inflammatory and cardiovascular disorders. Clin Chim Acta. 2023;548:117487. doi:10.1016/j.cca.2023.117487.; Lin P.K., Davis G.E. Extracellular Matrix Remodeling in Vascular Disease: Defining Its Regulators and Pathological Influence. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2023;43(9):1599-1616. doi:10.1161/ATVBAHA.123.318237.; Aman J., Margadant C. Integrin-Dependent Cell-Matrix Adhesion in Endothelial Health and Disease. Circ Res. 2023;132(3):355-378. doi:10.1161/CIRCRESAHA.122.322332.; Perico L., Benigni A., Remuzzi G. SARS-CoV-2 and the spike protein in endotheliopathy. Trends Microbiol. 2024;32(1):53-67. doi:10.1016/j.tim.2023.06.004.; Colunga Biancatelli R.M.L., Solopov P.A., Sharlow E.R., Lazo J.S., Marik P.E., Catravas J.D. The SARS-CoV-2 spike protein subunit S1 induces COVID-19-like acute lung injury in Κ18-hACE2 transgenic mice and barrier dysfunction in human endothelial cells. Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. 2021;321(2):L477-L484. doi:10.1152/ajplung.00223.2021.; Biering S.B., Gomes de Sousa F.T., Tjang L.V., Pahmeier F., Zhu C., Ruan R., Blanc S.F., Patel T.S., Worthington C.M., Glasner D.R., Castillo-Rojas B., Servellita V., Lo N.T.N., Wong M.P., Warnes C.M., Sandoval D.R., Clausen T.M., Santos Y.A., Fox D.M., Ortega V., Näär A.M., Baric R.S., Stanley S.A., Aguilar H.C., Esko J.D., Chiu C.Y., Pak J.E., Beatty P.R., Harris E. SARS-CoV-2 Spike triggers barrier dysfunction and vascular leak via integrins and TGF-β signaling. Nat Commun. 2022;13(1):7630. doi:10.1038/s41467-022-34910-5.; Nuovo G.J., Magro C., Shaffer T., Awad H., Suster D., Mikhail S., He B., Michaille J.J., Liechty B., Tili E. Endothelial cell damage is the central part of COVID-19 and a mouse model induced by injection of the S1 subunit of the spike protein. Ann Diagn Pathol. 2021;51:151682. doi:10.1016/j.anndiagpath.2020.151682.; Perico L., Morigi M., Pezzotta A., Locatelli M., Imberti B., Corna D., Cerullo D., Benigni A., Remuzzi G. SARS-CoV-2 spike protein induces lung endothelial cell dysfunction and thrombo-inflammation depending on the C3a/C3a receptor signalling. Sci Rep. 2023;13(1):11392. doi:10.1038/s41598-023-38382-5.; Robles J.P., Zamora M., Adan-Castro E., Siqueiros-Marquez L., Martinez de la Escalera G., Clapp C. The spike protein of SARS-CoV-2 induces endothelial inflammation through integrin α5β1 and NF-κB signaling. J Biol Chem. 2022;298(3):101695. doi:10.1016/j.jbc.2022.101695.; Jourde-Chiche N., Fakhouri F., Dou L., Bellien J., Burtey S., Frimat M., Jarrot P.A., Kaplanski G., Le Quintrec M., Pernin V., Rigothier C., Sallée M., Fremeaux-Bacchi V., Guerrot D., Roumenina L.T. Endothelium structure and function in kidney health and disease. Nat Rev Nephrol. 2019;15(2):87-108. doi:10.1038/s41581-018-0098-z.; Dogné S., Flamion B., Caron N. Endothelial Glycocalyx as a Shield Against Diabetic Vascular Complications: Involvement of Hyaluronan and Hyaluronidases. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2018;38(7):1427-1439. doi:10.1161/ATVBAHA.118.310839.; Drost C.C., Unger A., Linke W.A., Vink H., Kümpers P. The dynamics of the endothelial glycocalyx: a rare snapshot by electron microscopy. Angiogenesis. 2023;26(4):487-491. doi:10.1007/s10456-023-09880-x.; Otsuka F., Finn A.V., Yazdani S.K., Nakano M., Kolodgie F.D., Virmani R. The importance of the endothelium in atherothrombosis and coronary stenting. Nat Rev Cardiol. 2012;9(8):439-53. doi:10.1038/nrcardio.2012.64.; Hong J.K, Waterhouse A. Bioinspired Approaches to Engineer Antithrombogenic Medical Devices for Vascular Intervention. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2023;43(6):797-812. doi:10.1161/ATVBAHA.122.318238.; Yau J.W., Teoh H., Verma S. Endothelial cell control of thrombosis. BMC Cardiovasc Disord. 2015;15:130. doi:10.1186/s12872-015-0124-z.; Johnston-Cox H.A., Ravid K. Adenosine and blood platelets. Purinergic Signal. 2011;7(3):357-65. doi:10.1007/s11302-011-9220-4.; Bhargavan B., Kanmogne G.D. SARS-CoV-2 Spike Proteins and Cell-Cell Communication Inhibits TFPI and Induces Thrombogenic Factors in Human Lung Microvascular Endothelial Cells and Neutrophils: Implications for COVID-19 Coagulopathy Pathogenesis. Int J Mol Sci. 2022;23(18):10436. doi:10.3390/ijms231810436.; Zhou G., Hamik A., Nayak L., Tian H., Shi H., Lu Y., Sharma N., Liao X., Hale A., Boerboom L., Feaver R.E., Gao H., Desai A., Schmaier A., Gerson S.L., Wang Y., Atkins G.B., Blackman B.R., Simon D.I., Jain M.K. Endothelial Kruppel-like factor 4 protects against atherothrombosis in mice. J Clin Invest. 2012;122(12):4727-31. doi:10.1172/JCI66056.; Boon R.A., Horrevoets A.J. Key transcriptional regulators of the vasoprotective effects of shear stress. Hamostaseologie. 2009;29(1):39-40, 41-3.; Mukhamadiyarov R.A., Bogdanov L.A., Glushkova T.V., Shishkova D.K., Kostyunin A.E., Koshelev V.A., Shabaev A.R., Frolov A.V., Stasev A.N., Lyapin A.A., Kutikhin A.G. EMbedding and Backscattered Scanning Electron Microscopy: A Detailed Protocol for the Whole-Specimen, High-Resolution Analysis of Cardiovascular Tissues. Front Cardiovasc Med. 2021;8:739549. doi:10.3389/fcvm.2021.739549.; Мухамадияров Р.А., Кутихин А.Г. Исследование нормальной и патологической микроскопической анатомии кровеносных сосудов при помощи сканирующей электронной микроскопии в обратно-рассеянных электронах. Фундаментальная и клиническая медицина. 2019;4(1):6-14. doi:10.23946/2500-0764-2019-4-1-6-14.; Мухамадияров Р.А., Кутихин А.Г. Оценка сосудов малого диаметра при нормальной микроанатомии и патологической неоваскуляризации с использованием сканирующей электронной микроскопии в обратно-рассеянных электронах. Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 2020;169(4): 514-520.; Мухамадияров Р. А., Клышников К. Ю., Кошелев В. А., Кутихин А. Г. Возможности электронно-микроскопической диагностики кальцификации, патологической неоваскуляризации и эластолиза в сочетании с фенотипированием клеточных популяций в крупных артериях. Российский кардиологический журнал. 2024;29(8):5909. doi:10.15829/1560-4071-2024-5909.

Availability: https://www.nii-kpssz.com/jour/article/view/1526
https://doi.org/10.17802/2306-1278-2024-13-3S-191-207

TISSUE-ENGINEERED VASCULAR GRAFT: ASSESSMENT OF MATERIAL QUALITY AND ACTIVITY OF ANTI-TROMBOGENIC COATING ; ТКАНЕИНЖЕНЕРНЫЙ ПРОТЕЗ КРОВЕНОСНОГО СОСУДА: ОЦЕНКА КАЧЕСТВА МАТЕРИАЛА И ФУНКЦИОНАЛЬНОЙ АКТИВНОСТИ АТРОМБОГЕННОГО ЛЕКАРСТВЕННОГО ПОКРЫТИЯ

Authors: Evgenia A. Senokosova, Evgenia O. Krivkina, Tatiana N. Akentieva, Tatiana V. Glushkova, Vladislav A. Koshelev, Maryam Yu. Khanova, Larisa V. Antonova, Евгения Андреевна Сенокосова, Евгения Олеговна Кривкина, Татьяна Николаевна Акентьева, Татьяна Владимировна Глушкова, Владислав Александрович Кошелев, Марьям Юрисовна Ханова, Лариса Валерьевна Антонова

Contributors: Исследование выполнено при финансовой поддержке Министерства науки и высшего образования Российской Федерации в рамках соглашения о предоставлении из федерального бюджета грантов в форме субсидий в соответствии с пунктом 4 статьи 78.1 Бюджетного кодекса Российской Федерации № 075-15-2022-1202 от 30 сентября 2022 г., заключенного в целях реализации Распоряжения Правительства Российской Федерации от 11 мая 2022 г. № 1144-р.

Source: Complex Issues of Cardiovascular Diseases; Том 13, № 3 (2024); 193-201 ; Комплексные проблемы сердечно-сосудистых заболеваний; Том 13, № 3 (2024); 193-201 ; 2587-9537 ; 2306-1278

Subject Terms: Гемосовместимость, Polycaprolactone, Polyurethane, Electrospinning, Hemocompatibility, Поликапролактон, Полиуретан, Электроспиннинг

File Description: application/pdf

Relation: https://www.nii-kpssz.com/jour/article/view/1490/928; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1490/1668; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1490/1669; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1490/1670; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1490/1672; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1490/1674; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1490/1675; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1490/1676; Fahad M.A.A., Lee H.Y., Park S., Choi M., Shanto P.C., Park M., Bae S.H., Lee B.T. Small-diameter vascular graft composing of core-shell structured micro-nanofibers loaded with heparin and VEGF for endothelialization and prevention of neointimal hyperplasia. Biomaterials. 2024; 306:122507. doi:10.1016/j.biomaterials.2024.122507.; Elliott M.B., Ginn B., Fukunishi T., Bedja D., Suresh A., Chen T., Inoue T., Dietz H.C., Santhanam L., Mao H.Q., Hibino N., Gerecht S. Regenerative and durable small-diameter graft as an arterial conduit. Proc Natl Acad Sci USA. 2019; 116(26):12710-12719. doi:10.1073/pnas.1905966116.; Fang Q., Gu T., Fan J., Zhang Y., Wang Y., Zhao Y., Zhao P. Evaluation of a hybrid small caliber vascular graft in a rabbit model. J Thorac Cardiovasc Surg. 2020; 159(2):461-473. doi:10.1016/j.jtcvs.2019.02.083.; Fusco D., Meissner F., Podesser B.K., Marsano A., Grapow M., Eckstein F., Winkler B. Small-diameter bacterial cellulose-based vascular grafts for coronary artery bypass grafting in a pig model. Front Cardiovasc Med. 2022; 9:881557. doi:10.3389/fcvm.2022.881557.; Кривкина Е.О., Матвеева В.Г., Антонова Л.В. Сосудистые протезы с противомикробным покрытием: экспериментальные разработки и внедрение в клиническую практику. Комплексные проблемы сердечно-сосудистых заболеваний. 2021;10(3):90-102. doi:10.17802/2306-1278-2021-10-3-90-102 [Krivkina E.O., Мatveeva V.G., Antonova L.V. Antimicrobial vascular grafts: experimental development and implementation in clinical practice. Complex Issues of Cardiovascular Diseases. 2021; 10(3):90-102. doi:10.17802/2306-1278-2021-10-3-90-102 (In Russian)]; Obiweluozor F.O., Emechebe G.A., Kim D.W., Cho H.J., Park C.H., Kim C.S., Jeong I.S. Considerations in the Development of Small-Diameter Vascular Graft as an Alternative for Bypass and Reconstructive Surgeries: A Review. Cardiovasc Eng Technol. 2020; 11(5):495-521. doi:10.1007/s13239-020-00482-y.; Awad N.K., Niu H., Ali U., Morsi Y.S., Lin T. Electrospun Fibrous Scaffolds for Small-Diameter Blood Vessels: A Review. Membranes (Basel). 2018; 8(1):15. doi:10.3390/membranes8010015.; Антонова Л.В., Севостьянова В.В., Резвова М.А., Кривкина Е.О., Кудрявцева Ю.А., Барбараш О.Л., Барбараш Л.С. Патентообладатель: Федеральное государственное бюджетное научное учреждение «Научно-исследовательский институт комплексных проблем сердечно-сосудистых заболеваний» (НИИ КПССЗ) Технология изготовления функционально активных биодеградируемых сосудистых протезов малого диаметра с лекарственным покрытием. Патент № 2702239 РФ; МПК A61F 2/06 №2019119912 заявл. 25.06.2019; опубл. 07.10.2019, Бюл. № 28 [Antonova L.V., Sevostyanova V.V., Rezvova M.A., Krivkina E.O., Kudryavtseva Yu.A., Barbarash O.L., Barbarash LS.; Federal State Budgetary Scientific Institution "Scientific Research Institute of Complex Problems of Cardiovascular Diseases" (NII KPSSZ), assignee. Manufacturing technology of functionally active biodegradable vascular prostheses of small diameter with a drug coating. patent 2702239 (RU). 07.10.2019. (In Russian)]; Siddiqui N., Asawa S., Birru B., Baadhe R., Rao S. PCL-Based Composite Scaffold Matrices for Tissue Engineering Applications. Mol Biotechnol. 2018; 60(7):506-532. doi:10.1007/s12033-018-0084-5.; Kucinska-Lipka J., Gubanska I., Janik H., Sienkiewicz M. Fabrication of polyurethane and polyurethane based composite fibres by the electrospinning technique for soft tissue engineering of cardiovascular system. Mater Sci Eng C Mater Biol Appl. 2015; 46:166-176. doi:10.1016/j.msec.2014.10.027.; Tatai L., Moore T.G., Adhikari R., Malherbe F., Jayasekara R., Griffiths I., Gunatillake P.A. Thermoplastic biodegradable polyurethanes: the effect of chain extender structure on properties and in vitro degradation. Biomaterials. 2007; 28(36):5407-5417. doi:10.1016/j.biomaterials.2007.08.035.; Hergenrother R.W., Wabers H.D., Cooper S.L. Effect of hard segment chemistry and strain on the stability of polyurethanes: in vivo biostability. Biomaterials. 1993; 14(6): 449–458. doi:10.1016/0142-9612(93)90148-u.; Antonova L. V., Sevostyanova V. V., Mironov A. V., Krivkina E. O., Velikanova E. A., Matveeva V. G., Glushkova T. V., Elgudin Ya. L., Barbarash L. S. In situ vascular tissue remodeling using biodegradable tubular scaffolds with incorporated growth factors and chemoattractant molecules. Complex Issues of Cardiovascular Diseases. 2018; 7 (2):25–36. doi:10.17802/2306-1278-2018-7-2-25-36; Matsuzaki Y., Miyamoto Sh., Miyachi H., Iwaki R., Shoji T., Blum K., Chang Yu-Ch., Kelly J., Reinhardt J.W., Nakayama H., Breuer C.K., Shinoka T. Improvement of a Novel Small-diameter Tissue-engineered Arterial Graft With Heparin Conjugation. 2021; Ann. Thorac. Surg. 111(4): 1234-1241. doi:10.1016/j.athoracsur.2020.06.112.; Fang J., Li S. End-Point Immobilization of Heparin on Electrospun Polycarbonate-Urethane Vascular Graft. Methods Mol Biol. 2022; 2375:47-59. doi:10.1007/978-1-0716-1708-3_5.; Антонова Л.В., Кривкина Е.О., Резвова М.А., Севостьянова В.В., Ткаченко В.О., Глушкова Т.В., Акентьева Т.Н., Кудрявцева Ю.А., Барбараш Л.С. Разработка технологии формирования атромбогенного лекарственного покрытия для биодеградируемых сосудистых протезов малого диаметра. Современные технологии в медицине. 2021; 12(6):6-12. doi:10.17691/stm2020.12.6.01; Vascular Grafts Market Size, Share & Trends Analysis Report by Product, by Application (Cardiac Aneurysm, Kidney Failure, Coronary Artery Disease, by Raw Material (Polyester, Polyurethane), by Region, and Segment Forecasts, 2021–2028. Available at: https://www.grandviewresearch.com/industry-analysis/vascular-graft-market (accessed 12.05. 2024).; Radke D., Jia W., Sharma D., Fena K., Wang G., Goldman J., Zhao F. Tissue Engineering at the Blood-Contacting Surface: A Review of Challenges and Strategies in Vascular Graft Development. Adv. Healthc. Mater. 2018; 7: e170146. doi:10.1002/adhm.201701461.; Yu J., Wang A., Tang Z., Henry J., Li-Ping Lee B., Zhu Y., Yuan F., Huang F, Li S. The effect of stromal cell-derived factor-1α/heparin coating of biodegradable vascular grafts on the recruitment of both endothelial and smooth muscle progenitor cells for accelerated regeneration. Biomaterials. 2012; 33(32):8062-74. doi:10.1016/j.biomaterials.2012.07.042.; Qiu X., Lee B.L., Ning X., Murthy N., Dong N., Li S. End-point immobilization of heparin on plasma-treated surface of electrospun polycarbonate-urethane vascular graft. Acta Biomater. 2017; 51:138-147. doi:10.1016/j.actbio.2017.01.012.; Lee K.S., Kayumov M., Emechebe G.A., Kim D.W., Cho H.J., Jeong Y.J., Lee D.W., Park J.K., Park C.H., Kim C.S., Obiweluozor F.O., Jeong I.S. A Comparative Study of an Anti-Thrombotic Small-Diameter Vascular Graft with Commercially Available e-PTFE Graft in a Porcine Carotid Model. Tissue Eng Regen Med. 2022; 19(3):537-551. doi:10.1007/s13770-021-00422-4.

Availability: https://www.nii-kpssz.com/jour/article/view/1490
https://doi.org/10.17802/2306-1278-2024-13-3-193-201

FEATURES OF POLYURETHANE MATRIX REMODELING IN SHEEP MODEL EXPERIMENTS ; ОСОБЕННОСТИ РЕМОДЕЛИРОВАНИЯ МАТРИКСОВ ИЗ ПОЛИУРЕТАНА В ЭКСПЕРИМЕНТАХ НА МОДЕЛИ ОВЦЫ

Authors: Larisa V. Antonova, Elena A. Velikanova, Evgeniya A. Senokosova, Rinat A. Mukhamadiyarov, Evgeniya O. Krivkina, Vladislav A. Koshelev, Andrey V. Mironov, Amin R. Shabaev, Egor S. Sardin, Ekaterina S. Prokudina, Maryam Y. Khanova, Leonid S. Barbarash, Лариса Валерьевна Антонова, Елена Анатольевна Великанова, Евгения Андреевна Сенокосова, Ринат Авхадиевич Мухамадияров, Евгения Олеговна Кривкина, Владислав Александрович Кошелев, Андрей Владимирович Миронов, Амин Рашитович Шабаев, Егор Сергеевич Сардин, Екатерина Сергеевна Прокудина, Марьям Юрисовна Ханова, Леонид Семенович Барбараш

Contributors: Результаты получены при поддержке Министерства науки и высшего образования РФ в рамках соглашения о предоставлении из федерального бюджета грантов в форме субсидий от 30 сентября 2022 г. № 075-15-2022-1202, комплексной научно-технической программы полного инновационного цикла «Разработка и внедрение комплекса технологий в областях разведки и добычи твердых полезных ископаемых, обеспечения промышленной безопасности, биоремедиации, создания новых продуктов глубокой переработки из угольного сырья при последовательном снижении экологической нагрузки на окружающую среду и рисков для жизни населения» (утвержденной распоряжением Правительства Российской Федерации от 11 мая 2022 г. № 1144-р).

Source: Complex Issues of Cardiovascular Diseases; Том 12, № 4S (2023): приложение; 110-119 ; Комплексные проблемы сердечно-сосудистых заболеваний; Том 12, № 4S (2023): приложение; 110-119 ; 2587-9537 ; 2306-1278

Subject Terms: Электроспиннинг, Small diameter vascular prosthesis, Electrospinning, Сосудистый протез малого диаметра

File Description: application/pdf

Relation: https://www.nii-kpssz.com/jour/article/view/1357/856; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1357/1380; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1357/1381; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1357/1382; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1357/1383; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1357/1384; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1357/1385; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1357/1386; Radke D., Jia W., Sharma D., Fena K., Wang G., Goldman J., Zhao F. Tissue Engineering at the Blood-Contacting Surface: A Review of Challenges and Strategies in Vascular Graft Development. Adv Healthc Mater. 2018; 7(15): e1701461. doi:10.1002/adhm.201701461.; Bergmeister H., Strobl M., Grasl C., Liska R., Schima H. Tissue engineering of vascular grafts. Eur. Surg. 2013; 45: 187-193. doi:10.1007/s10353-013-0224-x.; van der Slegt J., Steunenberg S.L., Donker J.M. W., Veen E.J., Ho G.H., de Groot H.G., van der Laan L. The current position of precuffed expanded polytetrafluoroethylene bypass grafts in peripheral vascular surgery. J. Vasc. Surg. 2014; 60 (1): 120–128. doi:10.1016/j.jvs.2014.01.062.; Antonova L.V., Sevostyanova V.V., Mironov A.V., Krivkina E.O., Velikanova E.A., Matveeva V.G., Glushkova T.V., Elgudin Ya.L., Barbarash L.S. In situ vascular tissue remodeling using biodegradable tubular scaffolds with incorporated growth factors and chemoattractant molecules. Complex Issues of Cardiovascular Diseases. 2018; 7 (2): 25-36. doi:10.17802/2306-1278-2018-7-2-25-36.; Tan W., Boodagh P., Selvakumar P.P., Keyser S. Strategies to counteract adverse remodeling of vascular graft: A 3D view of current graft innovations. Front. Bioeng. Biotechnol. 2023; 10: 1097334. doi:10.3389/fbioe.2022.1097334.; Xie X., Wu Q., Liu Y., Chen C., Chen Z., Xie C., Song M., Jiang Z., Qi X., Liu S., Tang Z., Wu Z. Vascular endothelial growth factor attenuates neointimal hyperplasia of decellularized smalldiameter vascular grafts by modulating the local inflammatory response. Front. Bioeng. Biotechnol. 2022; 10: 1066266. doi:10.3389/fbioe.2022.1066266.; Zhang Q., Bosch-Rué È., Pérez R. A., Truskey G. A. Biofabrication of tissue engineering vascular systems. Apl. Bioeng. 2021; 5 (2): 021507. doi:10.1063/5.0039628.; Stegmayr B., Willems C., Groth T., Martins A., Neves N. M., Mottaghy K., Remuzzi A., Walpoth B. Arteriovenous access in hemodialysis: A multidisciplinary perspective for future solutions. Int. J. Artif. Organs. 2021; 44 (1): 3–16. doi:10.1177/0391398820922231.; Sassi S., Watanabe T., Shinoka T. Scaffold and Cell-Based Tissue Engineering Approaches as Alternative Therapy for Blood Vessel Disease. Preprints.org. 2023; 2023050712. doi:10.20944/preprints202305.0712.v1.; Walpoth B.H., Bergmeister H., Bowlin G.L., Kong D., Rotmans J.I., Zilla P., editors.Tissue-engineered Vascular Grafts. Cham: Springer International Publishing; 2020. 588 p. doi:10.1007/978-3-030-05336-9.; Eilenberg M., Enayati M., Ehebruster D., Grasl C., Walter I., Messner B., Baudis S., Potzmann P., Kaun C., Podesser B.K., Wojta J., Bergmeister H. Long Term Evaluation of Nanofibrous, Bioabsorbable Polycarbonate Urethane Grafts for Small Diameter Vessel Replacement in Rodents. Eur J Vasc Endovasc Surg. 2020; 59: 643-652.; Grasl C., Bergmeister H., Stoiber M., Schima H., Weigel G. Electrospun polyurethane vascular grafts: In vitro mechanical behavior and endothelial adhesion molecule expression. Journal of Biomedical Materials Research Part A. 2009; 93: 716-723. doi:10.1002/jbm.a.32584.; Kucinska-Lipka J., Gubanska I., Janik H., Sienkiewicz M. Fabrication of polyurethane and polyurethane based composite fibres by the electrospinning technique for soft tissue engineering of cardiovascular system. Mater Sci Eng C Mater Biol Appl. 2015;46:166-76. doi:10.1016/j.msec.2014.10.027.; Grasl C., Stoiber M., Rohrich M., Moscato F., Bergmeister H. Heinrich Schima. Electrospinning of small diameter vascular grafts with preferential fiber directions and comparison of their mechanical behavior with native rat aortas. Mater Sci Eng C Mater Biol Appl. 2021;124:112085. doi:10.1016/j.msec.2021.112085.; Ghanbari E., Solouk A., Aghdam R.М., Nazarpak М.Н., Tafti S.H.А. A novel substrate based on electrospun polyurethane nanofibers and electrosprayed polyvinyl alcohol microparticles for recombinant human erythropoietin delivery. J Biomed Mater Res. 2022; 110: 181–195. doi:10.1002/jbm.a.37275.; Zhen L., Creason S.A., Simonovsky F.I., Snyder J.M., Lindhartsen S.L., Mecwan M. M., Johnson B.W., Himmelfarb J., Ratner B.D. Precision-porous polyurethane elastomers engineered for application in prohealing vascular grafts: Synthesis, fabrication and detailed biocompatibility assessment. Biomaterials. 2021; 279: 121174. doi:10.1016/j.biomaterials.2021.121174.; Fathi-Karkan S., Banimohamad-Shotorbani B., Saghati S., Rahbarghazi R., Davaran S. A critical review of fibrous polyurethane-based vascular tissue engineering scaffolds. J. Biol. Eng. 2022; 16 (1): 6. doi:10.1186/s13036-022-00286-9.

Availability: https://www.nii-kpssz.com/jour/article/view/1357
https://doi.org/10.17802/2306-1278-2023-12-4S-110-119

TISSUE ENGINEERING MATRIX BASED ON POLYURETHANE: IN VITRO RESEARCH ; ТКАНЕИНЖЕНЕРНЫЙ МАТРИКС НА ОСНОВЕ ПОЛИУРЕТАНА: ИССЛЕДОВАНИЕ IN VITRO

Authors: Evgenia A. Senokosova, Ekaterina S. Prokudina, Vera G. Matveeva, Elena A. Velikanova, Tatyana V. Glushkova, Vladislav A. Koshelev, Tatyana N. Akentyeva, Larisa V. Antonova, Leonid S. Barbarash, Евгения Андреевна Сенокосова, Екатерина Сергеевна Прокудина, Вера Геннадьевна Матвеева, Елена Анатольевна Великанова, Татьяна Владимировна Глушкова, Владислав Александрович Кошелев, Татьяна Николаевна Акентьева, Лариса Валерьевна Антонова, Леонид Семёнович Барбараш

Contributors: Результаты получены при поддержке Министерства науки и высшего образования РФ в рамках соглашения о предоставлении из федерального бюджета грантов в форме субсидий от 30 сентября 2022 г. № 075-15-2022-1202, комплексной научно-технической программы полного инновационного цикла «Разработка и внедрение комплекса технологий в областях разведки и добычи твердых полезных ископаемых, обеспечения промышленной безопасности, биоремедиации, создания новых продуктов глубокой переработки из угольного сырья при последовательном снижении экологической нагрузки на окружающую среду и рисков для жизни населения» (утвержденной распоряжением Правительства Российской Федерации от 11 мая 2022 г. № 1144-р).

Source: Complex Issues of Cardiovascular Diseases; Том 12, № 4S (2023): приложение; 120-130 ; Комплексные проблемы сердечно-сосудистых заболеваний; Том 12, № 4S (2023): приложение; 120-130 ; 2587-9537 ; 2306-1278

Subject Terms: Биосовместимость, Polyurethane, Electrospinning, Hemocompatibility, Biocompatibility, Полиуретан, Электроспиннинг, Гемосовместимость

File Description: application/pdf

Relation: https://www.nii-kpssz.com/jour/article/view/1350/859; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1350/1361; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1350/1362; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1350/1363; Pashneh-Tala S., MacNeil S., Claeyssens F. The Tissue-Engineered Vascular Graft-Past, Present, and Future. Tissue Eng Part B Rev. 2016; 22(1): 68–100. doi:10.1089/ten.teb.2015.0100.; Benjamin E.J., Muntner P., Alonso A., Bittencourt M.S., Callaway C.W., Carson A.P., et.al. American Heart Association Council on Epidemiology and Prevention Statistics Committee and Stroke Statistics Subcommittee. Heart Disease and Stroke Statistics-2019 Update: A Report From the American Heart Association. Circulation. 2019; 139(10): 56–528. doi:10.1161/CIR.0000000000000659.; Virani S.S., Alonso A., Benjamin E.J., Bittencourt M.S., Callaway C.W., Carson A.P., et.al. American Heart Association Council on Epidemiology and Prevention Statistics Committee and Stroke Statistics Subcommittee. Heart Disease and Stroke Statistics-2020 Update: A Report From the American Heart Association. Circulation. 2020; 141(9): 139–596. doi:10.1161/CIR.0000000000000757.; Roth G.A., Mensah G.A., Johnson C.O., Addolorato G., Ammirati E., Baddour L.M., et.al. Global Burden of Cardiovascular Diseases Writing Group. Global Burden of Cardiovascular Diseases and Risk Factors, 1990-2019: Update From the GBD 2019 Study. J Am Coll Cardiol. 2020; 76(25):2982–3021. doi:10.1016/j.jacc.2020.11.010.; Taggart D.P. Current status of arterial grafts for coronary artery bypass grafting. Ann. Cardiothorac Surg. 2013; 2(4):427–430. doi:10.3978/j.issn.2225-319X.2013.07.21.; Elliott M.B., Ginn B., Fukunishi T., Bedja D., Suresh A., Chen T., Inoue T., Dietz H.C., Santhanam L., Mao H.Q., Hibino N., Gerecht S. Regenerative and durable small-diameter graft as an arterial conduit. Proc Natl Acad Sci USA. 2019; 116(26):12710-12719. doi:10.1073/pnas.1905966116.; Kimicata M., Swamykumar P., Fisher J.P. Extracellular Matrix for Small-Diameter Vascular Grafts. Tissue Eng Part A. 2020; 26(23-24):1388–1401. doi:10.1089/ten.TEA.2020.0201.; Matsushita H., Inoue T., Abdollahi S., Yeung E., Ong C.S., Lui C., Pitaktong I., Nelson K., Johnson J., Hibino N. Corrugated nanofiber tissue-engineered vascular graft to prevent kinking for arteriovenous shunts in an ovine model. JVS Vasc Sci. 2020; 1:100–108. doi:10.1016/j.jvssci.2020.03.003.; Matsuzaki Y., Ulziibayar A., Shoji T., Shinoka T. Heparin-Eluting Tissue-Engineered Bioabsorbable Vascular Grafts. Applied Sciences. 2021; 11(10): 4563. doi:10.3390/app11104563; Ren X., Feng Y., Guo J., Wang H., Li Q., Yang J., Hao X., Lv J., Ma N., Li W. Surface modification and endothelialization of biomaterials as potential scaffolds for vascular tissue engineering applications. Chem. Soc. Rev. 2015; 44(15): 5680–5742. doi:10.1039/c4cs00483c.; Wissing T.B., Bonito V., Bouten C.V.C., Smits A.I.P.M. Biomaterial-driven in situ cardiovascular tissue engineering-a multi-disciplinary perspective. NPJ Regen Med. 2017; 2:18. doi:10.1038/s41536-017-0023-2.; Shoji T., Shinoka T. Tissue engineered vascular grafts for pediatric cardiac surgery. Translational Pediatrics. 7(2):188–195. doi:10.21037/tp.2018.02.01.; Song H.G., Rumma R.T., Ozaki C.K., Edelman E.R., Chen C.S. Vascular Tissue Engineering: Progress, Challenges, and Clinical Promise. Cell Stem Cell. 2018; 22(3): 340–354. doi:10.1016/j.stem.2018.02.009.; Malik S., Sundarrajan S., Hussain T., Nazir A., Ramakrishna S. Fabrication of Highly Oriented Cylindrical Polyacrylonitrile, Poly(lactide-co-glycolide), Polycaprolactone and Poly(vinyl acetate) Nanofibers for Vascular Graft Applications. Polymers. 2021; 13(13): 2075. doi:10.3390/polym13132075.; Drews J.D., Pepper V.K., Best C.A., Szafron J.M., Cheatham J.P., Yates A.R., et.al. Spontaneous reversal of stenosis in tissue-engineered vascular grafts. Sci Transl Med. 2020; 12(537):eaax6919. doi:10.1126/scitranslmed.aax6919.; Cui H., Zhu W., Huang Y., Liu C., Yu Z.X., Nowicki M., Miao S., Cheng Y., Zhou X., Lee S.J., Zhou Y., Wang S., Mohiuddin M., Horvath K., Zhang L.G. In Vitro and in vivo evaluation of 3D bioprinted small-diameter vasculature with smooth muscle and endothelium. Biofabrication. 2019; 12(1):015004. doi:10.1088/1758-5090/ab402c.; Radke D., Jia W., Sharma D., Fena K., Wang G., Goldman J., Zhao F. Tissue Engineering at the Blood-Contacting Surface: A Review of Challenges and Strategies in Vascular Graft Development. Adv Healthc Mater. 2018; 7(15):e1701461. doi:10.1002/adhm.201701461.; Matsuzaki Y., Miyamoto S., Miyachi H., Iwaki R., Shoji T., Blum K., Chang Y.C., Kelly J., Reinhardt J.W., Nakayama H., Breuer C.K., Shinoka T. Improvement of a Novel Small-diameter Tissue-engineered Arterial Graft With Heparin Conjugation. Ann Thorac Surg. 2021; 111(4):1234–1241. doi:10.1016/j.athoracsur.2020.06.112.; Wang C., Li Z., Zhang L., Sun W., Zhou J. Long-term results of triple-layered small diameter vascular grafts in sheep carotid arteries. Med Eng Phys. 2020; 85:1-6. doi:10.1016/j.medengphy.2020.09.007.; Кривкина Е.О., Антонова Л.В. Результаты долгосрочной проходимости биодеградируемых сосудистых протезов малого диаметра с атромбогенным лекарственным покрытием на модели овцы. Комплексные проблемы сердечно-сосудистых заболеваний. 2021;10(2):36-39. doi:10.17802/2306-1278-2021-10-2S-36-39.; Kucinska-Lipka J., Gubanska I., Janik H., Sienkiewicz M. Fabrication of polyurethane and polyurethane based composite fibres by the electrospinning technique for soft tissue engineering of cardiovascular system. Mater Sci Eng C Mater Biol Appl. 2015;46:166-76. doi:10.1016/j.msec.2014.10.027.; Tatai L., Moore T.G., Adhikari R., Malherbe F., Jayasekara R., Griffiths I., Gunatillake P.A. Thermoplastic biodegradable polyurethanes: the effect of chain extender structure on properties and in-vitro degradation. Biomaterials. 2007; 28 (36): 5407–5417. doi:10.1016/j.biomaterials.2007.08.035.; Hergenrother R.W., Wabers H. D., Cooper S. L. Effect of hard segment chemistry and strain on the stability of polyurethanes: in vivo biostability. Biomaterials. 1993;14(6):449-58. doi:10.1016/0142-9612(93)90148-u.; LaPorte R. J. Hydrophilic polymer coatings for medical; devices. Routledge. Florida:CRC Press LLC; 2017. doi:10.1201/9780203751381.; Kheradvar A., Groves E.M., Dasi L.P., Alavi S.H., Tranquillo R., Grande-Allen K.J., Simmons C.A., Griffith B., Falahatpisheh A., Goergen C.J., Mofrad M.R., Baaijens F., Little S.H., Canic S. Emerging trends in heart valve engineering: part I. Solutions for future. Annals of biomedical engineering. 2015; 43(4): 833–843. doi:10.1007/s10439-014-1209-z.; Bergmeister H., Grasl C., Walter I., Plasenzotti R., Stoiber M., Schreiber C., Losert U., Weigel G., Schima H. Electrospun small‐diameter polyurethane vascular grafts: ingrowth and differentiation of vascular‐specific host cells. Artificial organs. 2012; 36(1): 54-61. doi:10.1111/j.1525-1594.2011.01297.x.; Grasl C., Bergmeister H., Stoiber M., Schima H., Weigel G. Electrospun polyurethane vascular grafts: in vitro mechanical behavior and endothelial adhesion molecule expression. J Biomed Mater Res A. 2010;93(2):716-23. doi:10.1002/jbm.a.32584.; Bergmeister H., Schreiber C., Grasl C., Walter I., Plasenzotti R., Stoiber M., Bernhard D., Schima H. Healing characteristics of electrospun polyurethane grafts with various porosities. Acta biomaterialia. 2013; 9 (4):6032–6040. doi:10.1016/j.actbio.2012.12.009.; Антонова Л.В., Кривкина Е.О., Ханова М.Ю., Великанова Е.А., Матвеева В.Г., Миронов А.В., Шабаев А.Р., Сенокосова Е.А., Глушкова Т.В., Синицкий М.Ю., Мухамадияров Р.А., Барбараш Л.С. Результаты преклинических испытаний биодеградируемых сосудистых протезов малого диаметра на модели овцы. Вестник трансплантологии и искусственных органов. 2022;24(3):80-93. doi:10.15825/1995-1191-2022-3-80-93; Antonova L.V., Mironov A.V., Yuzhalin A.E., Krivkina E.O., Shabaev A.R., Rezvova M.A., Tkachenko V.O., Khanova M.Yu., Sergeeva T.Yu., Krutitskiy S.S., Barbarash L.S. A Brief Report on an Implantation of Small-Caliber Biodegradable Vascular Grafts in a Carotid Artery of the Sheep. Pharmaceuticals (Basel). 2020; 21;13(5):101. doi:10.3390/ph13050101.; Антонова Л.В., Кривкина Е.О., Резвова М.А., Севостьянова В.В., Миронов А.В., Глушкова Т.В., Клышников К.Ю., Овчаренко Е.А., Кудрявцева Ю.А., Барбараш Л.С. Биодеградируемый сосудистый протез с армирующим внешним каркасом. Комплексные проблемы сердечно-сосудистых заболеваний. 2019;8(2):87-97. doi:10.17802/2306-1278-2019-8-2-87-97.; Matsushita H., Hayashi H., Nurminsky K., Dunn T., He Y., Pitaktong I., Koda Y., Xu S., Nguyen V., Inoue T., Rodgers D., Nelson K., Johnson J., Hibino N. Novel reinforcement of corrugated nanofiber tissue-engineered vascular graft to prevent aneurysm formation for arteriovenous shunts in an ovine model. JVS Vasc Sci. 2022; 22;3:182-191. doi:10.1016/j.jvssci.2022.01.002.

Availability: https://www.nii-kpssz.com/jour/article/view/1350
https://doi.org/10.17802/2306-1278-2023-12-4S-120-130