Αποτελέσματα αναζήτησης - "кишечная проницаемость"

1

Academic Journal

Dynamics of Claudin-2 tight junction protein levels in enterocytes of infants during the first months of life ; Динамика уровня белка плотных контактов энтероцитов Claudin-2 у детей первых месяцев жизни

Συγγραφείς: I. A. Bavykina, A. A. Berdnikov, A. A. Zvyagin, A. V. Kubyshkina, L. N. Antakova, И. А. Бавыкина, А. А. Бердников, А. А. Звягин, А. В. Кубышкина, Л. Н. Антакова

Συνεισφορές: To the staff of the Voronezh Regional Children’s Clinical Hospital No. 1, represented by M.L. Zhidkov, and the staff of the Research Institute of Experimental Biology and Medicine, Voronezh Burdenko State Medical University., Коллективу БУЗ ВО ВОДБКБ№1 в лице Жидкова М.Л. и коллективу НИИ ЭБМ ФГБОУ ВО ВГМУ им. Н.Н. Бурденко МЗ России.

Πηγή: Rossiyskiy Vestnik Perinatologii i Pediatrii (Russian Bulletin of Perinatology and Pediatrics); Том 69, № 6 (2024); 59-65 ; Российский вестник перинатологии и педиатрии; Том 69, № 6 (2024); 59-65 ; 2500-2228 ; 1027-4065

Θεματικοί όροι: гестационный возраст, intestinal permeability, Claudin-2, tight junction proteins, gestational age, кишечная проницаемость, белки плотных контактов

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://www.ped-perinatology.ru/jour/article/view/2091/1551; Roberts A.G., Younge N., Greenberg R.G. Neonatal Necrotizing Enterocolitis: An Update on Pathophysiology, Treatment, and Prevention. Paediatr Drugs 2024; 26(3): 259–275. DOI:10.1007/s40272–024–00626-w; Duess J.W., Sampah M.E., Lopez C.M., Tsuboi K., Scheese D.J., Sodhi C.P. et al. Necrotizing enterocolitis, gut microbes, and sepsis. Gut Microbes 2023; 15(1): 2221470. DOI:10.1080/19490976.2023.2221470; Бердников А.А., Бавыкина И.А. Значение клаудина-2 в диагностике некротизирующего энтероколита у детей (краткий обзор). Вестник новых медицинских технологий 2022; 29(4): 65–68.; Cuna A., Morowitz M.J., Ahmed I., Umar S., Sampath V. Dynamics of the preterm gut microbiome in health and disease. Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol 2021; 320(4): G411–G419. DOI:10.1152/ajpgi.00399.2020; Lueschow S.R., McElroy S.J. The Paneth Cell: The Curator and Defender of the Immature Small Intestine. Front Immunol 2020; 11: 587. DOI:10.3389/fimmu.2020.00587; Frazer L.C., Good M. Intestinal epithelium in early life. Mucosal Immunol 2022; 15(6): 1181–1187. DOI:10.1038/s41385–022–00579–8; Hosfield B.D., Shelley W.C., Mesfin F.M., Brokaw J.P., Manohar K., Liu J. et al. Age disparities in intestinal stem cell quantities: a possible explanation for preterm infant susceptibility to necrotizing enterocolitis. Pediatr Surg Int 2022; 38(12): 1971–1979. DOI:10.1007/s00383–022–05257–1; Martin C.A., Markel T.A. Preface: Necrotizing enterocolitis. Semin Pediatr Surg 2023; 32(3): 151303. DOI:10.1016/j.sempedsurg.2023.151303; Лошкова Е.В., Прудникова В.К., Рафикова Ю.С., Ким Л.В., Люлька Т.С., Желев В.А. и др. Некротизирующий энтероколит у недоношенных детей: состояние кишечного барьера, особенности метаболизма витамина D и их генетическая регуляция. Экспериментальная и клиническая гастроэнтерология 2022; 6: 61–75.; Liu X.C., Li L.Q, Ling K.R., Guo L., Hu X.Y., Li C. Fecal HBD-2 and Claudin-3 may be potential biomarkers to predict the deterioration of necrotizing enterocolitis: A prospective study. Front Pediatr 2022; 10: 1062798. DOI:10.3389/fped.2022.1062798; Bergmann K.R., Liu S.X., Tian R., Kushnir A., Turner J.R., Li H.L. et al. Bifidobacteria Stabilize Claudins at Tight Junctions and Prevent Intestinal Barrier Dysfunction in Mouse Necrotizing Enterocolitis. Am J Pathol 2013; 182(5): 1595– 1606. DOI:10.1016/j.ajpath.2013.01.013; Blackwood M.D.B., R. Wood B.S.D., Y. Yuan B.S.C., D. Nicolas J., Griffiths M.D.A., Mestan M.D.K. et al. Urinary Claudin-2 Measurements as a Predictor of Necrotizing Enterocolitis: A Pilot Study. J Neonatal Surg 2015; 4(4): 43.; Roy S.K., Meng Q., Sadowitz B.D., Kollisch-Singule M., Yepuri N., Satalin J. et al. Enteral administration of bacteria fermented formula in newborn piglets: A high fidelity model for necrotizing enterocolitis (NEC). PLoS One 2018; 13(7): e0201172. DOI:10.1371/journal.pone.0201172; Zeissig S., Bürgel N., Günzel D., Richter J., Mankertz J., Wahnschaffe U. et al. Changes in expression and distribution of claudin 2, 5 and 8 lead to discontinuous tight junctions and barrier dysfunction in active Crohn’s disease. Gut 2007; 56(1): 61–72. DOI:10.1136/gut.2006.094375; Szakál D.N., Gyorffy H., Arató A., Cseh A., Molnár K., Papp M. et al. Mucosal expression of claudins 2, 3 and 4 in proximal and distal part of duodenum in children with coeliac disease. Virchows Arch 2010; 456(3): 245–50. DOI:10.1007/s00428–009–0879–7; Ong M.L.D.M., Yeruva S., Sailer A., Nilsen S.P., Turner J.R. Differential regulation of claudin-2 and claudin-15 expression in children and adults with malabsorptive disease. Lab Invest 2020; 100(3): 483–490. DOI:10.1038/s41374–019–0324–8; Ishimoto H., Oshima T., Sei H., Yamasaki T., Kondo T., Tozawa K. et al. Claudin-2 expression is upregulated in the ileum of diarrhea predominant irritable bowel syndrome patients. J Clin Biochem Nutrition 2017; 60(2): 146–150. DOI:10.3164/JCBN.16–92; Beggs M.R., Young K., Pan W., O’Neill D.D., Saurette M., Plain A. et al. Growth Factor Promotes Neonatal Claudin-2 Dependent Increases in Small Intestinal Calcium Permeability. Function (Oxf) 2023; 4(5): zqad033. DOI:10.1093/function/zqad033; Holmes J.L., Van Itallie C.M., Rasmussen J.E., Anderson J.M. Claudin profiling in the mouse during postnatal intestinal development and along the gastrointestinal tract reveals complex expression patterns. Gene Expr Patterns 2006; 6(6): 581–588. DOI:10.1016/j.modgep.2005.12.001; Хавкин А.И., Новикова В.П., Шаповалова Н.С. Перспективные неинвазивные биомаркеры: интестинальные белки в диагностике повреждений слизистой оболочки кишечника. Экспериментальная и клиническая гастроэнтерология 2021; 4: 155–160.; Хавкин А.И., Богданова Н.М., Новикова В.П. Биологическая роль зонулина и эффективность его использования в качестве биомаркера синдрома повышенной кишечной проницаемости. Российский вестник перинатологии и педиатрии 2021; 66(1): 31–38

Διαθεσιμότητα: https://www.ped-perinatology.ru/jour/article/view/2091
https://doi.org/10.21508/1027-4065-2024-69-6-59-65

View record from BASE

2

Academic Journal

Non-alcoholic fatty liver disease and psoriasis: mechanisms of comorbidity and approaches to therapy ; Неалкогольная жировая болезнь печени и псориаз: механизмы коморбидности и подходы к терапии

Συγγραφείς: M. A. Livzan, O. V. Gaus, I. N. Ekimov, М. А. Ливзан, О. В. Гаус, И. Н. Екимов

Πηγή: Meditsinskiy sovet = Medical Council; № 2 (2024); 113-120 ; Медицинский Совет; № 2 (2024); 113-120 ; 2658-5790 ; 2079-701X

Θεματικοί όροι: глицирризиновая кислота, psoriasis, comorbidity, proinflammatory cytokines, adipokines, increased intestinal permeability, essential phospholipids, glycyrrhizic acid, псориаз, коморбидность, провоспалительные цитокины, адипокины, повышенная кишечная проницаемость, эссенциальные фосфолипиды

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://www.med-sovet.pro/jour/article/view/8135/7182; Хайрутдинов ВР, Самцов АВ. Псориаз. Современные представления о дерматозе: руководство для врачей. М.: ГЭОТАР-Медиа; 2021. 260 с. https://doi.org/10.33029/9704-6384-0-PSO-2021-1-260.; Danielsen K, Olsen AO, Wilsgaard T, Furberg AS. Is the prevalence of psoriasis increasing? A 30-year follow-up of a population-based cohort. Br J Dermatol. 2013;168(6):1303–1310 https://doi.org/10.1111/bjd.12230.; Kubota K, Kamijima Y, Sato T, Ooba N, Koide D, Iizuka H, Nakagawa H. Epidemiology of psoriasis and palmoplantar pustulosis: a nationwide study using the Japanese national claims database. BMJ Open. 2015;5(1):e006450. https://doi.org/10.1136/bmjopen-2014-006450.; Green AC. Australian Aborigines and psoriasis. Australas J Dermatol. 1984;25(1):18–24. https://doi.org/10.1111/j.1440-0960.1984.tb00618.x.; Huerta C, Rivero E, Rodríguez LA. Incidence and risk factors for psoriasis in the general population. Arch Dermatol. 2007;143(12):1559–1565. https://doi.org/10.1001/archderm.143.12.1559.; Драпкина ОМ, Ивашкин ВТ. Эпидемиологические особенности неалкогольной жировой болезни печени в России (результаты открытого многоцентрового проспективного исследования наблюдения DIREGL 01903). Российский журнал гастроэнтерологии, гепатологии и колопроктологии. 2014;24(4):32–38. Режим доступа: https://old-gastro-j.ru/article/579-h2-epidemiologicheskie-osobennosti-nealkogolnoy-zhirovoy-bolezni-pecheni-v-rossii-br-h2-i-rezult/show/full/.; Хамаганова ИВ, Алмазова АА, Лебедева ГА, Ермаченко АВ. Проблемы эпидемиологии псориаза. Клиническая дерматология и венерология. 2015;14(1):12–21. https://doi.org/10.17116/klinderma2015112-16.; Денисова Е, Дворянкова Е, Дениева М, Соболев В, Корсунская И. Обоснование применения гепатопротекторов при псориазе. Врач. 2018;29(9):85–88. Режим доступа: https://vrachjournal.ru/ru/25877305-2018-09-20.; Корсакова ЮЛ, Коротаева ТВ. Поражение печени при псориазе и псориатическом артрите: обзор литературы. Научно-практическая ревматология. 2017;55(4):429–435. https://doi.org/10.14412/1995-4484-2017-429-435.; Ganzetti G, Campanati A, Offidani A. Non-alcoholic fatty liver disease and psoriasis: So far, so near. World J Hepatol. 2015;7(3):315–326. https://doi.org/10.4254/wjh.v7.i3.315.; Lonardo A, Loria P, Carulli N. Concurrent non-alcoholic steatohepatitis and psoriasis. Report of three cases from the POLI.ST.E.N.A. study. Dig Liver Dis. 2001;33(1):86–87. https://doi.org/10.1016/s1590-8658(01)80144-4.; Matsumoto T, Suzuki N, Watanabe H, Irie M, Iwata K, Anan A et al. Nonalcoholic steatohepatitis associated with psoriasis vulgaris. J Gastroenterol. 2004;39(11):1102–1105. https://doi.org/10.1007/s00535-004-1451-5.; Gisondi P, Targher G, Zoppini G, Girolomoni G. Non-alcoholic fatty liver disease in patients with chronic plaque psoriasis. J Hepatol. 2009;51(4):758–764. https://doi.org/10.1016/j.jhep.2009.04.020.; Miele L, Vallone S, Cefalo C, La Torre G, Di Stasi C, Vecchio FM et al. Prevalence, characteristics and severity of non-alcoholic fatty liver disease in patients with chronic plaque psoriasis. J Hepatol. 2009;51(4):778–786. https://doi.org/10.1016/j.jhep.2009.06.008.; van der Voort EA, Koehler EM, Dowlatshahi EA, Hofman A, Stricker BH, Janssen HL et al. Psoriasis is independently associated with nonalcoholic fatty liver disease in patients 55 years old or older: Results from a population-based study. J Am Acad Dermatol. 2014;70(3):517–524. https://doi.org/10.1016/j.jaad.2013.10.044.; van der Voort EA, Koehler EM, Nijsten T, Stricker BH, Hofman A, Janssen HL et al. Increased Prevalence of Advanced Liver Fibrosis in Patients with Psoriasis: A Cross-sectional Analysis from the Rotterdam Study. Acta Derm Venereol. 2016;96(2):213–217. https://doi.org/10.2340/00015555-2161.; Roberts KK, Cochet AE, Lamb PB, Brown PJ, Battafarano DF, Brunt EM et al. The prevalence of NAFLD and NASH among patients with psoriasis in a tertiary care dermatology and rheumatology clinic. Aliment Pharmacol Ther. 2015;41(3):293–300. https://doi.org/10.1111/apt.13042.; Candia R, Ruiz A, Torres-Robles R, Chávez-Tapia N, Méndez-Sánchez N, Arrese M. Risk of non-alcoholic fatty liver disease in patients with psoriasis: a systematic review and meta-analysis. J Eur Acad Dermatol Venereol. 2015;29(4):656–662. https://doi.org/10.1111/jdv.12847.; Byrne CD, Targher G. NAFLD: a multisystem disease. J Hepatol. 2015;62(1 Suppl):S47–S64. https://doi.org/10.1016/j.jhep.2014.12.012.; Birkenfeld AL, Shulman GI. Nonalcoholic fatty liver disease, hepatic insulin resistance, and type 2 diabetes. Hepatology. 2014;59(2):713–723. https://doi.org/10.1002/hep.26672.; Coimbra S, Catarino C, Santos-Silva A. The triad psoriasis-obesity-adipokine profile. J Eur Acad Dermatol Venereol. 2016;30(11):1876–1885. https://doi.org/10.1111/jdv.13701.; Campanati A, Ganzetti G, Giuliodori K, Marra M, Bonfigli A, Testa R, Offidani A. Serum levels of adipocytokines in psoriasis patients receiving tumor necrosis factor-α inhibitors: results of a retrospective analysis. Int J Dermatol. 2015;54(7):839–845. https://doi.org/10.1111/ijd.12706.; Гаус ОВ, Ахмедов ВА. Влияние метаболического синдрома на состояние паренхимы печени и билиарной системы у пациентов с желчнокаменной болезнью. Уральский медицинский журнал. 2015;1(124):132–137. Режим доступа: https://elibrary.ru/item.asp?id=23137068.; Stefan N, Häring HU. The role of hepatokines in metabolism. Nat Rev Endocrinol. 2013;9(3):144–152. https://doi.org/10.1038/nrendo.2012.258.; Hunter CA, Jones SA. IL-6 as a keystone cytokine in health and disease. Nat Immunol. 2015;16(5):448–457. https://doi.org/10.1038/ni.3153.; Kiełbowski K, Bakinowska E, Ostrowski P, Pala B, Gromowska E, Gurazda K et al. The Role of Adipokines in the Pathogenesis of Psoriasis. Int J Mol Sci. 2023;24(7):6390. https://doi.org/10.3390/ijms24076390.; Farkhondeh T, Llorens S, Pourbagher-Shahri AM, Ashrafizadeh M, Talebi M, Shakibaei M, Samarghandian S. An Overview of the Role of Adipokines in Cardiometabolic Diseases. Molecules. 2020;25(21):5218. https://doi.org/10.3390/molecules25215218.; Ливзан МА, Лаптева ИВ, Миллер ТС. Роль лептина и лептинорезистентности в формировании неалкогольной жировой болезни печени у лиц с ожирением и избыточной массой тела. Экспериментальная и клиническая гастроэнтерология. 2014;108(8):27–33. Режим доступа: https://elibrary.ru/item.asp?id=22593043.; Kovács D, Fazekas F, Oláh A, Törőcsik D. Adipokines in the Skin and in Dermatological Diseases. Int J Mol Sci. 2020;21(23):9048. https://doi.org/10.3390/ijms21239048.; Gerdes S, Rostami-Yazdi M, Mrowietz U. Adipokines and psoriasis. Exp Dermatol. 2011;20(2):81–87. https://doi.org/10.1111/j.1600-0625.2010.01210.x.; Kaur S, Zilmer K, Kairane C, Kals M, Zilmer M. Clear differences in adiponectin level and glutathione redox status revealed in obese and normal-weight patients with psoriasis. Br J Dermatol. 2008;159(6):1364–1367. https://doi.org/10.1111/j.1365-2133.2008.08759.x.; Kyriakou A, Patsatsi A, Sotiriadis D, Goulis DG. Serum Leptin, Resistin, and Adiponectin Concentrations in Psoriasis: A Meta-Analysis of Observational Studies. Dermatology. 2017;233(5):378–389. https://doi.org/10.1159/000481882.; Lynch M, Ahern T, Sweeney CM, Malara A, Tobin AM, O’Shea D, Kirby B. Adipokines, psoriasis, systemic inflammation, and endothelial dysfunction. Int J Dermatol. 2017;56(11):1103–1118. https://doi.org/10.1111/ijd.13699.; Camilleri M. Leaky gut: mechanisms, measurement and clinical implications in humans. Gut. 2019;68(8):1516–1526. https://doi.org/10.1136/gutjnl-2019-318427.; Gómez-Hurtado I, Gallego-Durán R, Zapater P, Ampuero J, Aller R, Crespo J et al. Bacterial antigen translocation and age as BMI-independent contributing factors on systemic inflammation in NAFLD patients. Liver Int. 2020;40(9):2182–2193. https://doi.org/10.1111/liv.14571.; Ахмедов ВА, Гаус ОВ. Роль кишечной микробиоты в формировании неалкогольной жировой болезни печени. Терапевтический архив. 2019;91(2):143–148. https://doi.org/10.26442/00403660.2019.02.000051.; Tilg H, Zmora N, Adolph TE, Elinav E. The intestinal microbiota fuelling metabolic inflammation. Nat Rev Immunol. 2020;20(1):40–54. https://doi.org/10.1038/s41577-019-0198-4.; Prussick RB, Miele L. Nonalcoholic fatty liver disease in patients with psoriasis: a consequence of systemic inflammatory burden? Br J Dermatol. 2018;179(1):16–29. https://doi.org/10.1111/bjd.16239.; Екимов ИН, Правдина ОВ. Роль повреждения кишечного барьера в развитии псориаза. Медицинский алфавит. 2021;(35):34–37. https://doi.org/10.33667/2078-5631-2021-35-34-37.; Лазебник ЛБ, Голованова ЕВ, Туркина СВ, Райхельсон КЛ, Оковитый СВ, Драпкина ОМ и др. Неалкогольная жировая болезнь печени у взрослых: клиника, диагностика, лечение. Рекомендации для терапевтов, третья версия. Экспериментальная и клиническая гастроэнтерология. 2021;1(1):4–52. https://doi.org/10.31146/1682-8658-ecg-185-1-4-52.; Richetta AG, Grassi S, Moliterni E, Chello C, Calvieri C, Carnevale R et al. Increased intestinal barrier permeability in patients with moderate to severe plaque-type psoriasis. J Dermatol. 2020;47(10):e366–e368. https://doi.org/10.1111/1346-8138.15361.; Sikora M, Chrabąszcz M, Maciejewski C, Zaremba M, Waśkiel A, Olszewska M, Rudnicka L. Intestinal barrier integrity in patients with plaque psoriasis. J Dermatol. 2018;45(12):1468–1470. https://doi.org/10.1111/1346-8138.14647.; Sikora M, Stec A, Chrabaszcz M, Giebultowicz J, Samborowska E, Jazwiec R et al. Clinical Implications of Intestinal Barrier Damage in Psoriasis. J Inflamm Res. 2021;(14):237–243. https://doi.org/10.2147/JIR.S292544.; Nowiński A, Ufnal M. Trimethylamine N-oxide: A harmful, protective or diagnostic marker in lifestyle diseases? Nutrition. 2018;(46):7–12. https://doi.org/10.1016/j.nut.2017.08.001.; Ufnal M, Zadlo A, Ostaszewski R. TMAO: A small molecule of great expectations. Nutrition. 2015;31(11–12):1317–1323. https://doi.org/10.1016/j.nut.2015.05.006 .; Farhangi MA, Vajdi M. Novel findings of the association between gut microbiota-derived metabolite trimethylamine N-oxide and inflammation: results from a systematic review and dose-response meta-analysis. Crit Rev Food Sci Nutr. 2020;60(16):2801–2823. https://doi.org/10.1080/10408398.2020.1770199.; Dehghan P, Farhangi MA, Nikniaz L, Nikniaz Z, Asghari-Jafarabadi M. Gut microbiota-derived metabolite trimethylamine N-oxide (TMAO) potentially increases the risk of obesity in adults: An exploratory systematic review and dose-response meta-analysis. Obes Rev. 2020;21(5):e12993. https://doi.org/10.1111/obr.12993.; León-Mimila P, Villamil-Ramírez H, Li XS, Shih DM, Hui ST, Ocampo-Medina E et al. Trimethylamine N-oxide levels are associated with NASH in obese subjects with type 2 diabetes. Diabetes Metab. 2021;47(2):101183. https://doi.org/10.1016/j.diabet.2020.07.010.; Nast A, Gisondi P, Ormerod AD, Saiag P, Smith C, Spuls PI et al. European S3-Guidelines on the systemic treatment of psoriasis vulgaris – Update 2015 – Short version – EDF in cooperation with EADV and IPC. J Eur Acad Dermatol Venereol. 2015;29(12):2277–2294. https://doi.org/10.1111/jdv.13354.; Ливзан МА, Гаус ОВ, Николаев НА, Кролевец ТС. НАЖБП: коморбидность и ассоциированные заболевания. Экспериментальная и клиническая гастроэнтерология. 2019;1(10):57–65. https://doi.org/10.31146/1682-8658-ecg-170-10-57-65.; Gisondi P, Galvan A, Idolazzi L, Girolomoni G. Management of moderate to severe psoriasis in patients with metabolic comorbidities. Front Med (Lausanne). 2015;(2):1. https://doi.org/10.3389/fmed.2015.00001.; Hardwick RN, Clarke JD, Lake AD, Canet MJ, Anumol T, Street SM et al. Increased susceptibility to methotrexate-induced toxicity in nonalcoholic steatohepatitis. Toxicol Sci. 2014;142(1):45–55. https://doi.org/10.1093/toxsci/kfu156.; Rosenberg P, Urwitz H, Johannesson A, Ros AM, Lindholm J, Kinnman N, Hultcrantz R. Psoriasis patients with diabetes type 2 are at high risk of developing liver fibrosis during methotrexate treatment. J Hepatol. 2007;46(6):1111–1118. https://doi.org/10.1016/j.jhep.2007.01.024.; Rinella ME, Lazarus JV, Ratziu V, Francque SM, Sanyal AJ, Kanwal F et al. A multisociety Delphi consensus statement on new fatty liver disease nomenclature. Hepatology. 2023;78(6):1966–1986. https://doi.org/10.1097/HEP.0000000000000520.; Gisondi P, Cazzaniga S, Chimenti S, Giannetti A, Maccarone M, Picardo M et al. Metabolic abnormalities associated with initiation of systemic treatment for psoriasis: evidence from the Italian Psocare Registry. J Eur Acad Dermatol Venereol. 2013;27(1):e30–e41. https://doi.org/10.1111/j.1468-3083.2012.04450.x.; Neuvonen PJ, Niemi M, Backman JT. Drug interactions with lipid-lowering drugs: mechanisms and clinical relevance. Clin Pharmacol Ther. 2006;80(6):565–581. https://doi.org/10.1016/j.clpt.2006.09.003.; Dunn LK, Gaar LR, Yentzer BA, O’Neill JL, Feldman SR. Acitretin in dermatology: a review. J Drugs Dermatol. 2011;10(7):772–782. Available at: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/21720660/.; Brownstone ND, Hong J, Mosca M, Hadeler E, Liao W, Bhutani T, Koo J. Biologic Treatments of Psoriasis: An Update for the Clinician. Biologics. 2021;(15):39–51. https://doi.org/10.2147/BTT.S252578.; Lestre S, Diamantino F, Veloso L, Fidalgo A, Ferreira A. Effects of etanercept treatment on lipid profile in patients with moderate-to-severe chronic plaque psoriasis: a retrospective cohort study. Eur J Dermatol. 2011;21(6):916–920. https://doi.org/10.1684/ejd.2011.1548.; Tobon GJ, Cañas C, Jaller JJ, Restrepo JC, Anaya JM. Serious liver disease induced by infliximab. Clin Rheumatol. 2007;26(4):578–581. https://doi.org/10.1007/s10067-005-0169-y.; Jingze Z, Wenyuan G, Shufang B, Hong C, Qianqian Q, Zhen L. Glycyrrhizic Acid-Phospholipid Complex: Preparation Process Optimization and Therapeutic and Pharmacokinetic Evaluation in Rats. Lat Am J Pharm. 2011;30(8):1621–1630. Available at: https://www.researchgate.net/publication/285759098_Glycyrrhizic_Acid-Phospholipid_Complex_Preparation_Process_Optimization_and_Therapeutic_and_Pharmacokinetic_Evaluation_in_Rats; Воскресенская АА, Медведева НВ, Прозоровский ВН, Москалева НЕ, Ипатова ОМ. Особенности всасывания глицирризиновой кислоты в составе лекарственного препарата фосфоглив. Биомедицинская химия. 2012;58(5):564–572 https://doi.org/10.18097/PBMC20125805564.; Xiao-peng S, Ran-ran S, Xue-qiang Yu. Effect of glycyrrhizin on expression of TNF-α, IL-1 and IL-6 in adjuvant arthritis rat. Heilongjiang Med Pharm. 2011;34(1). Available at: https://en.cnki.com.cn/Article_en/CJFDTOTALKXJY201101015.htm.; Crance JM, Lévêque F, Biziagos E, van Cuyck-Gandré H, Jouan A, Deloince R. Studies on mechanism of action of glycyrrhizin against hepatitis A virus replication in vitro. Antiviral Res. 1994;23(1):63–76. https://doi.org/10.1016/0166-3542(94)90033-7.; van Rossum TG, Vulto AG, de Man RA, Brouwer JT, Schalm SW. Review article: glycyrrhizin as a potential treatment for chronic hepatitis C. Aliment Pharmacol Ther. 1998;12(3):199–205. https://doi.org/10.1046/j.1365-2036.1998.00309.x.; Honda H, Nagai Y, Matsunaga T, Saitoh S, Akashi-Takamura S, Hayashi H et al. Glycyrrhizin and isoliquiritigenin suppress the LPS sensor toll-like receptor 4/MD-2 complex signaling in a different manner. J Leukoc Biol. 2012;91(6):967–976. https://doi.org/10.1189/jlb.0112038.; Ивашкин ВТ, Бакулин ИГ, Богомолов ПО, Мациевич МВ, Гейвандова НИ, Корой ПВ и др. Результаты многоцентрового двойного слепого рандомизированного плацебоконтролируемого пострегистрационного (IV фаза) клинического исследования «Гепард» (PHG-M2/P02–12), проведенного с целью оценки эффективности и безопасности комбинированного препарата глицирризиновой кислоты и эссенциальных фосфолипидов (Фосфоглив) при неалкогольной жировой болезни печени. Российский журнал гастроэнтерологии, гепатологии, колопроктологии. 2017;27(2):34–43. https://doi.org/10.22416/1382-4376-2017-27-2-34-43.; Mantani N, Oka H, Sahashi Y, Suzuki A, Ayabe M, Suzuki M et al. Relationship between incidence of pseudoaldosteronism and daily dose of Glycyrrhiza: review of the literature. Kampo Med. 2015;(66):197–202. https://doi.org/10.3937/kampomed.66.197.

Διαθεσιμότητα: https://www.med-sovet.pro/jour/article/view/8135
https://doi.org/10.21518/ms2024-045

View record from BASE

3

Academic Journal

Определение межклеточных контактов у больных с синдромом раздраженного кишечника

Συγγραφείς: Stepanov, Yu.M., Budzak, I.Ya., Yu.A. Gaidar, Yu.A. Gaidar

Πηγή: Gastroenterologìa, Vol 53, Iss 2, Pp 128-131 (2019)
GASTROENTEROLOGY; Том 53, № 2 (2019); 128-131
Гастроэнтерология-Gastroenterologìa; Том 53, № 2 (2019); 128-131
Гастроентерологія-Gastroenterologìa; Том 53, № 2 (2019); 128-131

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Σύνδεσμος πρόσβασης: http://gastro.zaslavsky.com.ua/article/download/168987/169825
https://doaj.org/article/e495825221f44a3b8e154ac676881190
http://gastro.zaslavsky.com.ua/article/view/168987
http://gastro.zaslavsky.com.ua/article/download/168987/169825
http://gastro.zaslavsky.com.ua/article/view/168987

View record at OpenAIRE Full Text Finder

4

Academic Journal

Leaky gut syndrome in the general clinical practice

Συγγραφείς: Chernyavskyi, V. V., Pavlovskyi, L. L., Tishchenko, V. V.

Πηγή: Modern Gastroenterology; № 3 (2020); 91—95
Современная гастроэнтерология; № 3 (2020); 91—95
Сучасна гастроентерологія; № 3 (2020); 91—95

Θεματικοί όροι: leaky gut syndrome, intestinal permeability, zonulin, probiotics, prebiotics, синдром кишечника, який протікає, кишкова проникливість, зонулін, пробіотики, пребіотики, синдром протекающего кишечника, кишечная проницаемость, зонулин, пробиотики, пребиотики, 3. Good health

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Σύνδεσμος πρόσβασης: http://sgastro.com.ua/article/view/MG-2020-3-91

5

Academic Journal

Role of lipopolysaccharide in genesis of microvascular complications in type 1 diabetes mellitus ; Роль липополисахарида в формировании микроваскулярных осложнений при сахарном диабете 1-го типа

Συγγραφείς: V. A. Beloglazov, I. A. Yatskov, D. I. Ulyanova, В. А. Белоглазов, И. А. Яцков, Д. И. Ульянова

Πηγή: Medical Immunology (Russia); Том 26, № 6 (2024); 1139-1148 ; Медицинская иммунология; Том 26, № 6 (2024); 1139-1148 ; 2313-741X ; 1563-0625

Θεματικοί όροι: кишечная проницаемость, lipopolysaccharide, endothelial dysfunction, vascular inflammation, fibrosis, intestinal permeability, липополисахарид, эндотелиальная дисфункция, сосудистое воспаление, фиброз

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/2863/1832; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2863/12493; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2863/12494; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2863/12495; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2863/12496; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2863/12497; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2863/12498; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2863/12499; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2863/12507; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2863/13009; Белоглазов В.А., Яцков И.А., Кумельский Е.Д., Половинкина В.В. Метаболическая эндотоксинемия: возможные причины и последствия // Ожирение и метаболизм, 2021. Т. 18, № 3. С. 320-326.; Яковлев М.Ю. Роль кишечной микрофлоры и недостаточность барьерной функции печени в развитии эндотоксинемии и воспаления // Казанский медицинский журнал, 1988. Т. 69, № 5. С. 353-358.; Afroz R., Kumarapperuma H., Nguyen Q.V.N., Mohamed R., Little P.J., Kamato D. Lipopolysaccharide acting via toll-like receptor 4 transactivates the TGF-β receptor in vascular smooth muscle cells. Cell. Mol. Life Sci., 2022, Vol.79, no.2, pp.121. https://doi.org/10.1007/s00018-022-04159-8; Aravindhan V., Mohan V., Arunkumar N., Sandhya S., Babu S. Chronic Endotoxemia in Subjects with Type-1 Diabetes Is Seen Much before the Onset of Microvascular Complications. PLoS ONE, 2015, Vol.10, no.9, p.e0137618. doi:10.1371/journal.pone.0137618; Battson M.L., Lee D.M., Weir T.L., Gentile C.L. The gut microbiota as a novel regulator of cardiovascular function and disease. J. Nutr. Biochem., 2018, Vol.56, pp. 1-15. doi:10.1016/j.jnutbio.2017.12.010; Branger J., Van den Blink B., Weijer S., Gupta A., Van Deventer S.J.H., Hack C.E., Peppelenbosch M.P., Van der Poll T. Inhibition of coagulation, fibrinolysis, and endothelial cell activation by a p38 mitogen-activated protein kinase inhibitor during human endotoxemia. Blood, 2003, Vol.101, pp. 4446-4448. doi:10.1182/blood-2002-11-3338; Cani P.D., Bibiloni R., Knauf C., Waget A., Neyrinck A.M., Delzenne N.M., Burcelin R. Changes in gut microbiota control metabolic endotoxemia-induced inflammation in high-fat diet-induced obesity and diabetes in mice. Diabetes, 2008, Vol.57, no.6, pp.1470-1481. doi:10.2337/db07-1403.; Chen G., Zhao J., Yin Y., Wang B., Liu Q., Li P., Zhao L., Zhou H. C-type natriuretic peptide attenuates LPS-induced endothelial activation: involvement of p38, Akt, and NF-κB pathways. Amino Acids, 2014, Vol.46, no.12, pp.2653-2663. doi:10.1007/s00726-014-1816-x.; Choy K.W., Lau Y.S., Murugan D., Vanhoutte P.M., Mustafa M.R. Paeonol Attenuates LPS-Induced Endothelial Dysfunction and Apoptosis by Inhibiting BMP4 and TLR4 Signaling Simultaneously but Independently. J Pharmacol Exp Ther., 2018, Vol.364, no.3, pp.420-432. doi:10.1124/jpet.117.245217.; Coquerel D., Neviere R., Delile E., Mulder P., Marechal X., Montaigne D., Renet S., Remy-Jouet I., Gomez E., Henry J.P., do Rego J.C., Richard V., Tamion F. Gene deletion of protein tyrosine phosphatase 1B protects against sepsis-induced cardiovascular dysfunction and mortality. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2014, Vol.34, no.5, pp.1032-1044. doi:10.1161/ATVBAHA.114.303450.; Cui S., Tang J., Wang S., Li L. Kaempferol protects lipopolysaccharide-induced inflammatory injury in human aortic endothelial cells (HAECs) by regulation of miR-203. Biomed Pharmacother. 2019, Vol.115, p.108888. doi:10.1016/j.biopha.2019.108888.; Dayang E.Z., Plantinga J., Ter Ellen B., van Meurs M., Molema G., Moser J. Identification of LPS-Activated Endothelial Subpopulations With Distinct Inflammatory Phenotypes and Regulatory Signaling Mechanisms. Front Immunol., 2019, Vol.24, no.10, p.1169. doi:10.3389/fimmu.2019.01169.; de Araújo Farias V., Carrillo-Gálvez A.B., Martín F., Anderson P. TGF-beta and mesenchymal stromal cells in regenerative medicine, autoimmunity and cancer. Cytokine Growth Factor Rev., 2018, Vol.43, pp.25–37. doi:10.1016/j.cytogfr.2018.06.002.; Fan J., Frey R.S., Malik A.B. TLR4 signaling induces TLR2 expression in endothelial cells via neutrophil NADPH oxidase. J Clin Invest. 2003, Vol.112, no.8, pp.1234-1243. doi:10.1172/JCI18696.; Feehley T., Belda-Ferre P., Nagler C. R. What's LPS Got to Do with It? A Role for Gut LPS Variants in Driving Autoimmune and Allergic Disease. Cell Host Microbe., 2016, Vol.19, no.5, pp. 572–574. https://doi.org/10.1016/j.chom.2016.04.025; Frangogiannis N. Transforming growth factor-β in tissue fibrosis. J Exp Med., 2020, Vol.217, no.3, p.e20190103. doi:10.1084/jem.20190103.; Gomes J.M.G., Costa J.A., Alfenas R.C.G. Metabolic endotoxemia and diabetes mellitus: A systematic review. Metabolism, 2017, Vol.68, pp.133-144. doi:10.1016/j.metabol.2016.12.009; Gordin D., Harjutsalo V., Tinsley L., Fickweiler W., Sun J.K., Forsblom C., Amenta P.S., Pober D., D'Eon S., Khatri M., Stillman I.E., Groop P.H., Keenan H.A., King G.L. Differential Association of Microvascular Attributions With Cardiovascular Disease in Patients With Long Duration of Type 1 Diabetes. Diabetes Care, 2018, Vol.41, no.4, pp.815-822. doi:10.2337/dc17-2250.; Groop P.H., Thomas M.C., Moran J.L., Wadèn J., Thorn L.M., Mäkinen V.P., Rosengård-Bärlund M., Saraheimo M., Hietala K., Heikkilä O., Forsblom C., FinnDiane Study Group. The presence and severity of chronic kidney disease predicts all-cause mortality in type 1 diabetes. Diabetes, 2009, Vol. 58, no.7, pp.1651-1658. doi:10.2337/db08-1543.; Groschwitz K.R., Hogan S.P. Intestinal barrier function: molecular regulation and disease pathogenesis. J Allergy Clin Immunol, 2009, Vol.124, pp.3–20. http://dx.doi.org/10.1016/j.jaci.2009.05.038.; Grotendorst G. R., Smale G., Pencev D. Production of transforming growth factor beta by human peripheral blood monocytes and neutrophils. Journal of cellular physiology, 1989, Vol.140, no.2, pp.396–402. https://doi.org/10.1002/jcp.1041400226; Grylls A., Seidler K., Neil J. Link between microbiota and hypertension: Focus on LPS/TLR4 pathway in endothelial dysfunction and vascular inflammation, and therapeutic implication of probiotics. Biomed Pharmacother, 2021, Vol.137, p.111334. doi:10.1016/j.biopha.2021.111334.; Gubern C., López-Bermejo A., Biarnés J., Vendrell J., Ricart W., Fernández-Real J.M. Natural antibiotics and insulin sensitivity: the role of bactericidal/permeability-increasing protein. Diabetes, 2006, Vol.55, no.1, pp.216-24.; He Y., Ou Z., Chen X., Zu X., Liu L., Li Y., Cao Z., Chen M., Chen Z., Chen H., Qi L., Wang L. LPS/TLR4 Signaling Enhances TGF-β Response Through Downregulating BAMBI During Prostatic Hyperplasia. Sci Rep., 2016, Vol.31, no.6, p.27051. doi:10.1038/srep27051.; Heo S.K., Yun H.J., Noh E.K., Park W.H., Park S.D. LPS induces inflammatory responses in human aortic vascular smooth muscle cells via Toll-like receptor 4 expression and nitric oxide production. Immunol Lett., 2008, Vol.120, no.1-2, pp.57-64. doi:10.1016/j.imlet.2008.07.002.; Hippenstiel S., Soeth S., Kellas B., Fuhrmann O., Seybold J., Krüll M., Eichel-Streiber C., Goebeler M., Ludwig S., Suttorp N. Rho proteins and the p38-MAPK pathway are important mediators for LPS-induced interleukin-8 expression in human endothelial cells. Blood, 2000, Vol.95, no.10, pp.3044-3051.; Htay T., Soe K., Lopez-Perez A., Doan A.H., Romagosa M.A., Aung K. Mortality and Cardiovascular Disease in Type 1 and Type 2 Diabetes. Curr Cardiol Rep., 2019, Vol.21, no.6, p.45. doi:10.1007/s11886-019-1133-9.; Jin M., Sun C.Y., Zang B.X. Hydroxysafflor yellow A attenuate lipopolysaccharide-induced endothelium inflammatory injury. Chin J Integr Med., 2016, Vol.22, no.1, pp.36-41. doi:10.1007/s11655-015-1976-x.; Ju H., Behm D.J., Nerurkar S., Eybye M.E., Haimbach R.E., Olzinski A.R., Douglas S.A., Willette R.N. p38 MAPK inhibitors ameliorate target organ damage in hypertension: Part 1. p38 MAPK-dependent endothelial dysfunction and hypertension. J Pharmacol Exp Ther., 2003, Vol.307, no.3, pp.932-938. doi:10.1124/jpet.103.057422.; Kelly A., Houston S.A., Sherwood E., Casulli J., Travis M.A. Regulation of Innate and Adaptive Immunity by TGFβ. Adv Immunol., 2017, Vol.134, pp.137-233. doi:10.1016/bs.ai.2017.01.001.; Khalil M.M., Ali H.A., Al-Hilo M.A.H. Role of Zonulin level as new metabolic biomarker in diabetes mellitus patients and associated complications. AIP Conference Proceedings, 2022, Vol.2386, p.030013. doi:10.1063/5.0066876; Kim E.Y., Kim B.C. Lipopolysaccharide inhibits transforming growth factor-beta1-stimulated Smad6 expression by inducing phosphorylation of the linker region of Smad3 through a TLR4–IRAK1–ERK1/2 pathway. FEBS Letters, 2011, Vol.585, no.5, pp.779-785. doi:10.1016/j.febslet.2011.01.044.; Lassenius M.I., Pietiläinen K.H., Kaartinen K., Pussinen P.J., Syrjänen J., Forsblom C., Pörsti I., Rissanen A., Kaprio J., Mustonen J., Groop P.H., Lehto M., FinnDiane Study Group. Bacterial endotoxin activity in human serum is associated with dyslipidemia, insulin resistance, obesity, and chronic inflammation. Diabetes Care, 2011, Vol.34, no.8, pp.1809-1815. doi:10.2337/dc10-2197.; Li X.Y., He J.L., Liu H.T., Li W.M., Yu C. Tetramethylpyrazine suppresses interleukin-8 expression in LPS-stimulated human umbilical vein endothelial cell by blocking ERK, p38 and nulear factor-kappaB signaling pathways. J Ethnopharmacol., 2009, Vol.125, no.1, pp. 83-89. doi:10.1016/j.jep.2009.06.008.; Liang C.F., Liu J.T., Wang Y., Xu A., Vanhoutte P.M. Toll-like receptor 4 mutation protects obese mice against endothelial dysfunction by decreasing NADPH oxidase isoforms 1 and 4. Arterioscler Thromb Vasc Biol., 2013, Vol.33, no.4, pp. 777-84. doi:10.1161/ATVBAHA.112.301087.; Lind M., Svensson A.M., Kosiborod M., Gudbjörnsdottir S., Pivodic A., Wedel H., Dahlqvist S., Clements M., Rosengren A. Glycemic control and excess mortality in type 1 diabetes. N Engl J Med., 2014, Vol.371, no.21, pp.1972-1982. doi:10.1056/NEJMoa1408214.; Liu H.T., Li W.M., Li X.Y., Xu Q.S., Liu Q.S., Bai X.F., Yu C., Du Y.G. Chitosan oligosaccharides inhibit the expression of interleukin-6 in lipopolysaccharide-induced human umbilical vein endothelial cells through p38 and ERK1/2 protein kinases. Basic Clin Pharmacol Toxicol., 2010, Vol.106, no.5, pp.362-371. doi:10.1111/j.1742-7843.2009.00493.x.; Liu X., Lu L., Yao P., Ma Y., Wang F., Jin Q., Ye X., Li H., Hu F.B., Sun L., Lin X. Lipopolysaccharide binding protein, obesity status and incidence of metabolic syndrome: a prospective study among middle-aged and older Chinese. Diabetologia, 2014, Vol.57, no.9, pp.1834-1841. doi:10.1007/s00125-014-3288-7.; Ma J., Li H. The Role of Gut Microbiota in Atherosclerosis and Hypertension. Front Pharmacol., 2018,Vol.9, p.1082. doi:10.3389/fphar.2018.01082.; Mahmoodpoor F., Rahbar Saadat Y., Barzegari A., Ardalan M., Zununi Vahed S. The impact of gut microbiota on kidney function and pathogenesis. Biomed Pharmacother., 2017, Vol.93, pp.412-419. doi:10.1016/j.biopha.2017.06.066.; Meng X.M., Nikolic-Paterson D.J., Lan H.Y. TGF-β: the master regulator of fibrosis. Nat Rev Nephrol., 2016, Vol.12, no.6, pp.325-38. doi:10.1038/nrneph.2016.48.; Mitchell K., Shah J.P., Tsytsikova L.V., Campbell A.M., Affram K., Symes A.J. LPS antagonism of TGF-β signaling results in prolonged survival and activation of rat primary microglia. J Neurochem., 2014, Vol.129, no.1, pp.155-68. doi:10.1111/jnc.12612.; Mønsted M.Ø., Falck N.D., Pedersen K., Buschard K., Holm L.J., Haupt-Jorgensen M. Intestinal permeability in type 1 diabetes: An updated comprehensive overview. J Autoimmun., 2021, Vol.122, p.102674. doi:10.1016/j.jaut.2021.102674.; Musso G., Gambino R., Cassader M. Interactions between gut microbiota and host metabolism predisposing to obesity and diabetes. Annu Rev Med., 2011, Vol.62, pp.361-380. doi:10.1146/annurev-med-012510-175505.; Okorokov P.L., Anikhovskaia I.A., Volkov I.E., Iakovlev M.Iu. [Intestinal endotoxin in induction of type 1 diabetes]. Fiziol Cheloveka, 2011, Vol.37, no.2, pp,138-141.; Petrie D., Lung T.W., Rawshani A., Palmer A.J., Svensson A.M., Eliasson B., Clarke P. Recent trends in life expectancy for people with type 1 diabetes in Sweden. Diabetologia, 2016, Vol.59, no.6, pp.1167-1176. doi:10.1007/s00125-016-3914-7.; Raetz C.R., Whitfield C. Lipopolysaccharide endotoxins. Annu Rev Biochem., 2002, Vol.71, pp.635-700. doi:10.1146/annurev.biochem.71.110601.135414.; Rawshani A., Rawshani A., Franzén S., Eliasson B., Svensson A.M., Miftaraj M., McGuire D.K., Sattar N., Rosengren A., Gudbjörnsdottir S. Range of Risk Factor Levels: Control, Mortality, and Cardiovascular Outcomes in Type 1 Diabetes Mellitus. Circulation, 2017, Vol.135, no.16, pp.1522-1531. doi:10.1161/CIRCULATIONAHA.116.025961.; Sapone A., de Magistris L., Pietzak M., Clemente M.G., Tripathi A., Cucca F., Lampis R., Kryszak D., Cartenì M., Generoso M., Iafusco D., Prisco F., Laghi F., Riegler G., Carratu R., Counts D., Fasano A. Zonulin upregulation is associated with increased gut permeability in subjects with type 1 diabetes and their relatives. Diabetes, 2006, Vol.55, no.5, pp.1443-1449. doi:10.2337/db05-1593.; Shi Y., Massagué J. Mechanisms of TGF-beta signaling from cell membrane to the nucleus. Cell, 2003, Vol.113, no.6, pp.685-700. doi:10.1016/s0092-8674(03)00432-x.; Sirin F.B., Korkmaz H., Torus B., Bozkurt M., Kumbul D.D. The role of zonulin in the pathogenesis of diabetic retinopathy. Turkish Journal of Biochemistry, 2021, Vol.46, no.3, pp. 317-322. https://doi.org/10.1515/tjb-2020-0575; Soedamah-Muthu S.S., Vergouwe Y., Costacou T., Miller R.G., Zgibor J., Chaturvedi N., Snell-Bergeon J.K., Maahs D.M., Rewers M., Forsblom C., Harjutsalo V., Groop P.H., Fuller J.H., Moons K.G., Orchard T.J. Predicting major outcomes in type 1 diabetes: a model development and validation study. Diabetologia, 2014, Vol.57, no.11, pp.2304-2314. doi:10.1007/s00125-014-3358-x.; Sun L., Xiu M., Wang S., Brigstock D.R., Li H., Qu L., Gao R. Lipopolysaccharide enhances TGF-β1 signalling pathway and rat pancreatic fibrosis. J Cell Mol Med., 2018, Vol.22, no.4, pp.2346-2356. doi:10.1111/jcmm.13526.; Tang W.H.W., Li D.Y., Hazen S.L. Dietary metabolism, the gut microbiome, and heart failure. Nat Rev Cardiol., 2019, Vol.16, no.3, pp.137-154. doi:10.1038/s41569-018-0108-7.; Toral M., Romero M., Jiménez R., Robles-Vera I., Tamargo J., Martínez M.C., Pérez-Vizcaíno F., Duarte J. Role of UCP2 in the protective effects of PPARβ/δ activation on lipopolysaccharide-induced endothelial dysfunction. Biochem Pharmacol., 2016, Vol.110-111, pp.25-36. doi:10.1016/j.bcp.2016.05.004.; van Hecke M.V., Dekker J.M., Stehouwer C.D., Polak B.C., Fuller J.H., Sjolie A.K., Kofinis A., Rottiers R., Porta M., Chaturvedi N., EURODIAB prospective complications study. Diabetic retinopathy is associated with mortality and cardiovascular disease incidence: the EURODIAB prospective complications study. Diabetes Care, 2005, Vol.28, no.6, pp.1383-1389. doi:10.2337/diacare.28.6.1383.; Vatanen T., Kostic A.D., d'Hennezel E., Siljander H., Franzosa E.A., Yassour M., Kolde R., Vlamakis H., Arthur T.D., Hämäläinen A.M., Peet A., Tillmann V., Uibo R., Mokurov S., Dorshakova N., Ilonen J., Virtanen S.M., Szabo S.J., Porter J.A., Lähdesmäki H., Huttenhower C., Gevers D., Cullen T.W., Knip M., DIABIMMUNE Study Group, Xavier R.J. Variation in Microbiome LPS Immunogenicity Contributes to Autoimmunity in Humans. Cell, 2016, Vol.165, no.4, pp.842-853. doi:10.1016/j.cell.2016.04.007.; Vistisen D., Andersen G.S., Hansen C.S., Hulman A., Henriksen J.E., Bech-Nielsen H., Jørgensen M.E. Prediction of First Cardiovascular Disease Event in Type 1 Diabetes Mellitus: The Steno Type 1 Risk Engine. Circulation, 2016, Vol.133, no.11, pp.1058-66. doi:10.1161/CIRCULATIONAHA.115.018844.; Wang Y., Zhang M.X., Meng X., Liu F.Q., Yu G.S., Zhang C., Sun T., Wang X.P., Li L., Wang Y.Y., Ding S.F., Yang J.M., Zhang Y. Atorvastatin suppresses LPS-induced rapid upregulation of Toll-like receptor 4 and its signaling pathway in endothelial cells. Am J Physiol Heart Circ Physiol., 2011, Vol.300, no.5, pp.H1743-52. doi:10.1152/ajpheart.01335.2008.; Wood H.L.K., DeBoer M.D., Fasano A. Zonulin as a potential putative biomarker of risk for shared type 1 diabetes and celiac disease autoimmunity. Diabetes Metab Res Rev., 2020, Vol.36, no.5, p.e3309. doi:10.1002/dmrr.3309.; Yan W., Zhao K., Jiang Y., Huang Q., Wang J., Kan W., Wang S. Role of p38 MAPK in ICAM-1 expression of vascular endothelial cells induced by lipopolysaccharide. Shock, 2002, Vol.17, no.5, pp.433-438. doi:10.1097/00024382-200205000-00016.; Zhao W., Li C., Gao H., Wu Q., Shi J., Chen X. Dihydrotanshinone I Attenuates Atherosclerosis in ApoE-Deficient Mice: Role of NOX4/NF-κB Mediated Lectin-Like Oxidized LDL Receptor-1 (LOX-1) of the Endothelium. Front Pharmacol., 2016, Vol.7, p.418. doi:10.3389/fphar.2016.00418.; Zhao W., Ma G., Chen X. Lipopolysaccharide induced LOX-1 expression via TLR4/MyD88/ROS activated p38MAPK-NF-κB pathway. Vascul Pharmacol., 2014, Vol.63, no.3, pp.162-172.; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/2863

Διαθεσιμότητα: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/2863
https://doi.org/10.15789/1563-0625-ROL-2863

View record from BASE

6

Academic Journal

Intestinal microbiota in liver diseases: current state of the problem

Συγγραφείς: Gubergrits, N. B., Byelyayeva, N. V., Berezhna, E. V., Klochkov, A. Ye., Fomenko, P. G., Tsys, A. V.

Πηγή: Современная гастроэнтерология; № 3 (2019); 79-90
Сучасна гастроентерологія; № 3 (2019); 79-90
Modern Gastroenterology; № 3 (2019); 79-90

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Σύνδεσμος πρόσβασης: http://sgastro.com.ua/article/view/173975

7

Academic Journal

The program of enteral correction of homeostasis disorders and its effect on intestinal permeability in acute poisoning ; Программа энтеральной коррекции нарушений гомеостаза и ее влияние на кишечную проницаемость при острых отравлениях

Συγγραφείς: M. M. Potskhveriya, V. A. Matkevich, Yu. S. Goldfarb, A. Yu. Simonova, N. E. Stolbova, I. A. Tyurin, S. S. Petrikov, М. М. Поцхверия, В. А. Маткевич, Ю. С. Гольдфарб, А. Ю. Симонова, Н. Е. Столбова, И. А. Тюрин, С. С. Петриков

Πηγή: Transplantologiya. The Russian Journal of Transplantation; Том 14, № 1 (2022); 45-57 ; Трансплантология; Том 14, № 1 (2022); 45-57 ; 2542-0909 ; 2074-0506 ; 10.23873/2074-0506-2022-14-1

Θεματικοί όροι: программа энтеральной коррекции, increased intestinal permeability, enteral correction program, повышенная кишечная проницаемость

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://www.jtransplantologiya.ru/jour/article/view/629/667; https://www.jtransplantologiya.ru/jour/article/view/629/675; Mu Q, Kirby J, Reilly CM, Luo XM. Leaky gut as a danger signal for autoimmune diseases. Front immunol. 2017;8:598. PMID: 28588585 https://doi.org/10.3389/fimmu.2017.00598; Костоглод Т.В., Кролевец Т.С., Ливзан М.А. Новый взгляд на патогенез и возможности лечения и профилактики аутоиммунных заболеваний с позиций роли интестинального барьера и синдрома повышенной кишечной проницаемости. Эффективная фармакотерапия. 2021;17(4):82–88. https://doi.org/10.33978/2307-3586-2021-17-4-82-88; Ковалева А.Л., Полуэктова Е.А., Шифрин О.С. Кишечный барьер, кишечная проницаемость, неспецифическое воспаление и их роль в формировании функциональных заболеваний желудочно-кишечного тракта. Российский журнал гастроэнтерологии, гепатологии, колопроктологии. 2020;30(4):52–59. https://doi.org/10.22416/1382-4376-2020-30-4-52-59; Küçükaydin M, Kocaoğlu C, Köksal F, Kontaş O. Detection of intestinal bacterial translocation in subclinical ischemia-reperfusion using the poly merase chain reaction technique. J Pediatr Surg. 2000;35(1):41–43. PMID: 10646771 https://doi.org/10.1016/s0022-3468(00)80010-x; Савельев В.С. (ред.) Синдром кишечной недостаточности в экстренной хирургии органов брюшной полости: усовершенствованная медицинская технология. Москва: МАКС Пресс; 2006.; Swank GM, Deitch EA. Role of the gut in multiple organ failure: bacterial translocation and permeability chan ges. World J Surg. 1996;20(4):411–417. PMID: 8662128 https://doi.org/10.1007/s002689900065; Шендеров Б.А. Медицинская микробная экология и функциональное питание: в 3-х т. Т.I: Микрофлора человека и животных и ее функции. Москва: ГРАНТЪ; 1998.; Морозов И.А., Лысиков Ю.А., Питран Б.В., Хвыля С.И. Всасывание и секреция в тонкой кишке (субмикроскопические аспекты). Москва: Медицина; 1988.; Уголев А.М., Эккерт Л.Г., Громо ва Л.В. Явление двустороннего дыхания энтероцитов млекопитающих в нормальных условиях. Российская Академия наук. Научные откры тия, идеи и гипотезы. Диплом № 129. URL: https://raen.info/activities/registracija-nauchnyh-otkrytii/spisok-otkrytii133-javlenie-dvustoronnego-dyhanija-enterocitov-mlekopitayuschih-v-normalnyh-uslovijah.html [Дата обращения 28 декабря 2021 г.]; Шендеров Б.А. Мишени и эффекты короткоцепочечных жирных кислот. Современная медицинская наука. 2013;(1–2):21–50.; Маткевич В.А., Поцхверия М.М., Симонова А.Ю., Васина Т.А., Пет риков С.С. Коррекция нарушений микробиоценоза кишечника с помо щью кишечного лаважа при острых отравлениях. Журнал им. Н.В. Склифосовского «Неотложная медицинская помощь». 2021;10(2):285–292. https://doi.org/10.23934/2223-9022-2021-10-2-285-292; Волков С.В., Ермолов А.С., Лужников Е.А. Химические ожоги пищевода и желудка. Эндоскопическая диагностика и лазеротерапия. Москва: Медпрактика – М; 2005.; Маткевич В.А. Кишечный лаваж. В кн.: Лужников Е.А. (ред.) Медицинская токсикология: нац. рук-во. Москва: ГЭОТАР-Медиа; 2012. Гл. 4. c. 162–186. (Сер.: Национальные руководства).; Johnston SD, Smye M, Watson RG, McMillan SA, Trimble ER, Love AH. Lactulose-mannitol intestinal permeability test: a useful screening test for adult coeliac disease. Ann Clin Biochem. 2000;37(Pt 4):512–519. PMID: 10902869 https://doi.org/10.1177/000456320003700413; Лейдерман И.Н., Сенцов В.Г., Воронцов С.В. Феномен повышен ной кишечной проницаемости как проявление синдрома кишечной недостаточности (СКН) у больных с отравлениями прижигающими жид костями средней и тяжелой степени. Интенсивная терапия (Intensive Care Journal). 2008;(2). URL: http://icj.ru/journal/number-2-2008/158-fenomen-povyshennoy-kishechnoy-pronicaemosti-kak-proyavlenie-sindroma-kishechnoy-nedostatochnosti-skn-u-bolnyh-s-otravleniyami-prizhigayuschimi-zhidkostyami-sredney-i-tyazheloy-stepeni.html [Дата обращения 29 ноября 2021 г.].; Маткевич В.А., Лужников Е.А., Белова М.В., Евдокимова Н.В., Сыромятникова Е.Д., Курилкин Ю.А. Роль кишечной транслокации в генезе эндотоксемии при острых отравлениях и детоксикационный эффект кишечно го лаважа. Журнал им. Н.В. Склифосовского «Неотложная медицинская помощь». 2015;(4):16–21.; Bannerman DD, Goldblum SE. Direct effects of endotoxin on the endothelium: barrier function and injury. Lab Invest. 1999;79(10):1181–1199. PMID: 10532583; Lemaire LC, van Wagensveld BA, van Gulik TM, Dankert J, van Lanschot JJ, Gouma DJ. Bacterial translocation to the thoracic duct in a setting of ischemia, partial resection and reperfusion of the porcine liver. Dig Surg. 1999;16(3):222–228. PMID: 10436371 https://doi.org/10.1159/000018731; Михайлович В.А., Беляков Н.А., Мирошниченко А.Г., Соломенников А.В., Умеров А.Х. Толстокишечная детоксикация и метаболическая коррекция: учебное пособие для врачей. Санкт-Петербург: Изд-во СПбМАПО; 1995.; O'Boyle CJ, MacFie J, Mitchell CJ, Johnstone D, Sagar PM, Sedman PC. Microbiology of bacterial transloca tion in humans. Gut. 1998;42(1):29–35. PMID: 9505882 https://doi.org/10.1136/gut.42.1.29; Souza AL Jr, Poggetti RS, Fontes B, Birolini D. Gut ischemia/reperfusion activates lung macrophages for tumor necrosis factor and hydrogen peroxide production. J Trauma. 2000;49(2):232–236. PMID: 10963533 https://doi.org/10.1097/00005373-200008000-00008; Медицинский портал для врачей и студентов. Синдром полиорган ной недостаточности. URL: http://doctorspb.ru/articles.php?article_id=674 [Дата обращения 29 ноября 2021 г.].; Рейнюк В.Л., Шефер Т.В., Ивницкий Ю.Ю. Интенсификация диффузии аммиака из пищеварительного тракта крыс при острой барбитуратной интоксикации. Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 2008;145(1):20–23.; Маткевич В.А., Поцхверия М.М., Гольдфарб Ю.С., Симонова А.Ю. Нарушения параметров гомеоста за при острых отравлениях и пути их коррекции. Токсикологический вестник. 2018;(3):18–26. https://doi.org/10.36946/0869-7922-2018-3-18-26; Маткевич В.А., Поцхверия М.М., Симонова А.Ю., Суходолова Г.Н., Белова М.В., Биткова Е.Е. Коррекция нарушений параметров гомеостаза с помощью солевого энтерального раствора при острых отравлениях психофармакологическими препаратами. Журнал им. Н.В. Склифосовского «Неотложная медицинская помощь». 2020;9(4):551–563. https://doi.org/10.23934/2223-9022-2020-9-4-551-563; https://www.jtransplantologiya.ru/jour/article/view/629

Διαθεσιμότητα: https://www.jtransplantologiya.ru/jour/article/view/629
https://doi.org/10.23873/2074-0506-2022-14-1-45-57

View record from BASE

8

Academic Journal

The syndrome of increased intestinal permeability: a focus on microbiota

Συγγραφείς: Anokhina, G. А.

Πηγή: Современная гастроэнтерология; № 4 (2018); 85-89
Сучасна гастроентерологія; № 4 (2018); 85-89
Modern Gastroenterology; № 4 (2018); 85-89

Θεματικοί όροι: підвищена кишкова проникність, мікробіота, пробіотики, «Лінекс®», повышенная кишечная проницаемость, микробиота, пробиотики, «Линекс®», increased intestinal permeability, microbiota, probiotics, Linex, 3. Good health

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Σύνδεσμος πρόσβασης: http://sgastro.com.ua/article/view/142296

9

Academic Journal

Microbiota and intestinal permeability as drivers of gastroenterological manifestations of new coronavirus infection (COVID-19) ; Микробиота и кишечная проницаемость как драйверы гастроэнтерологических проявлений новой коронавирусной инфекции (COVID-19)

Συγγραφείς: K. V. Kozlov, A. K. Ratnikova, V. B. Grinevich, Yu. A. Kravchuk, P. I. Miklush, К. В. Козлов, А. К. Ратникова, В. Б. Гриневич, Ю. А. Кравчук, П. И. Миклуш

Πηγή: Journal Infectology; Том 13, № 4 (2021); 57-65 ; Журнал инфектологии; Том 13, № 4 (2021); 57-65 ; 2072-6732 ; 10.22625/2072-6732-2021-13-4

Θεματικοί όροι: кишечная проницаемость, COVID-19, gastrointestinal tract (GIT), SARS-CoV-2, zonulin, fecal calprotectin, microbiota, endotoxin, intestinal permeability, желудочно-кишечный тракт, зонулин, фекальный кальпротектин, микробиота, эндотоксин

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://journal.niidi.ru/jofin/article/view/1270/937; Яковенко, Э.П. Патология пищеварительного тракта и печени при COVID-19 / Э.П. Яковенко [и др.] // Экспериментальная и клиническая гастроэнтерология. – 2020. – Т. 176, № 4. – С. 19–23.; Huang, C. Clinical features of patients infected with 2019 novel coronavirus in Wuhan, China / C. Huang, Y. Wang , X. Li [et al.] // Lancet. – 2020. – Vol. 395, №10223. – P. 497–506.; Giron, L. Plasma markers of disrupted gut permeability in severe COVID-19 patients / L. Giron, H. Dweep, X. Yin [et al.] // Front. Immunol. – 2021. – Vol. 12, N 686240. – P. 1-16.; Ahlawat, S. Immunological co-ordination between gut and lungs in SARS-CoV-2 infection / S. Ahlawat, Asha, K.K. Sharma // Virus Research. – 2020. – Vol. 286. – P. 1-10.; Troisi, J. COVID-19 and the gastrointestinal tract: Source of infection or merely a target of the inflammatory process following SARS-CoV-2 infection? / J. Troisi, G. Venutolo, M. P. Tanyà [et al.] // World J. Gastroenterol. – 2021. – Vol. 27, N 14. – P. 1406–1418.; Fasano, A. Intestinal permeability and its regulation by zonulin: diagnostic and therapeutic implications /A. Fasano // Clinical Gastroenterol. Hepatol. – 2012. – Vol. 10, N 8. – P. 1096-1100.; Llorens, S. Neurological symptoms of COVID-19: the zonulin hypothesis / S. Llorens, E. Nava, M. Mu oz-L pez [et al.] // Front. Immunol. – 2021. – Vol. 12. – N 665300. – P. 1-9; Di Micco, S. Peptide derivatives of the zonulin inhibitor larazotide (AT1001) as potential anti SARS-CoV-2: molecular modelling, synthesis and bioactivity evaluation / S. Di Micco, S. Musella, M. Sala [et al.] // Intern. J. Molec. Sci. – 2021. – Vol.22, N 17. – P. 9427.; Leffler, D. A. Larazotide acetate for persistent symptoms of celiac disease despite a gluten-free diet: a randomized controlled trial / D.A. Leffler, C.P. Kelly, P.H. Green [et al.] // Gastroenterol. – 2015. – Vol. 148, N 7. – P. 1311–1319.; Oliva, A. Low-grade endotoxemia and thrombosis in COVID-19 / A. Oliva, V. Cammisotto, R. Cangemi [et al.] // Clin. Translat. Gastroenterol. – 2021. – Vol. 12, N 6. – P. 1-6.; Giron, L. B. Severe COVID-19 is fueled by disrupted gut barrier integrity / L. B. Giron; H. Dweep; X. Yin [et al.] // Topics in Antiviral Medicine. – 2021. – Vol. 29, N 1. – P. 29-30.; Guan, W. J. Clinical characteristics of coronavirus disease 2019 in China / W.J. Guan, Z. Ni, Y. Hu [et al.] // J Emerg Med. – 2020. – Vol. 58, N 4. – P. 711-712.; Tao, Z. Alterations in gut microbiota of patients with COVID-19 during time of hospitalization / Z. Tao, F. Zhang, G. Lui [et al.] // Gastroenterol. – 2020. – Vol. 159, N 3. – P. 944–955.; Yeoh, K. Y. Gut microbiota composition reflects disease severity and dysfunctional immune responses in patients with COVID-19 / K. Y. Yeoh, T. Zuo, G. C. Lui [et al.] // Gut. – 2021. – Vol. 70, N 4. – P. 698–706.; Временные методические рекомендации. Профилактика, диагностика и лечение новой коронавирусной инфекции (COVID-19). Версия-7 (03.06.2020). – Москва: МЗ РФ, 2020. – 166 с.; Kordzadeh-Kermani, E. Pathogenesis, clinical manifestations and complications of coronavirus disease 2019 (COVID-19) / E. Kordzadeh-Kermani, H. Khalili, I. Karimzadeh // Future Microbiol. – 2020. – Vol. 15, N 5. – P. 1287-1305.; Zhou, Z. Effect of gastrointestinal symptoms in patients with COVID-19 / Z. Zhou, N. Zhao, Y. Shu [et al.] // Gastroenterology. – 2020. – Vol. 158, N 8. – P. 2294-2297.; Zheng, M. Functional exhaustion of antiviral lymphocytes in COVID-19 patients / M. Zheng, Y. Gao, G. Wang [et al.] // Cell. Mol. Immunol. – 2020. – Vol. 17, N 5. – P. 533–535.; Wang, W. Definition and Risks of Cytokine Release Syndrome in 11 Critically Ill COVID-19 Patients With Pneumonia: Analysis of Disease Characteristics / W. Wang, X. Liu, S. Wu // J Infect Dis. – 2020. – Vol. 222, N 9. – P. 1444-1451.; Gao, Q. Y. 2019 novel coronavirus infection and gastrointestinal tract / Q. Y. Gao, Y. X. Chen, J. Y. Fang // J. Dig. Dis. – 2020. – Vol. 21, N 3. – P. 125–126.; He, Y. Gut–lung axis: the microbial contributions and clinical implications / Y. He, Q. Wen, F. Yao [et al.] // Crit. Rev. Microbiol. – 2017. – Vol. 43, N 1. – P. 81-95.; Симаненков, В.И. Синдром повышенной эпителиальной проницаемости в клинической практике. Мультидисциплинарный национальный консенсус / В.И. Симаненков [и др.] // Кардиоваскулярная терапия и профилактика. – 2021. – Т. 20, №1 – С. 121–278.; Ahlawat, S. Gut–organ axis: a microbial outreach and networking / S. Ahlawat, Asha, K. K. Sharma // Lett. Appl. Microbiol. – 2020. – Vol. 72, N 6. – P. 636-668.; Foster, J. A. Gut-brain axis: how the microbiome influences anxiety and depression / J. A. Foster, K. A. M. Neufeld // Trends Neurosci. – 2013. – Vol. 36, N 5. – P. 305–312.; Carabotti, M. The gut-brain axis: interactions between enteric microbiota, central and enteric nervous systems / M. Carabotti, A. Scirocco, M. A. Maselli [et al.] // Ann. Gastroenterol. – 2015. – Vol. 28, N 2. – P. 203–209.; Hillman, E. T. Microbial ecology along the gastrointestinal tract / E. T. Hillman, H. Lu, T. Yao [et al.] // Microbes Environ. – 2017. – Vol. 32, N 4. – P. 300–313.; Duboc, H. Connecting dysbiosis, bile-acid dysmetabolism and gut inflammation in inflammatory bowel diseases / H. Duboc, S. Rajca, D. Rainteau [et al.] // Gut. – 2013. – Vol. 62, N 4. – P. 531–539.; Dhar, D. Gut microbiota and Covid-19 – possible link and implications / D. Dhar, A. Mohanty // Virus Res. – 2020. – Vol. 285, N 198018. – P. 1-5.; Савушкина, О.И. Функциональные нарушения системы дыхания в период раннего выздоровления после COVID-19 / О.И. Савушкина [и др.] // Медицинский алфавит. – 2020. – № 25. – С. 7–12.; https://journal.niidi.ru/jofin/article/view/1270

Διαθεσιμότητα: https://journal.niidi.ru/jofin/article/view/1270
https://doi.org/10.22625/2072-6732-2021-13-4-57-65

View record from BASE

10

Academic Journal