Εμφανίζονται 1 - 15 Αποτελέσματα από 15 για την αναζήτηση '"иммунохроматографический анализ"', χρόνος αναζήτησης: 0,55δλ Περιορισμός αποτελεσμάτων
  1. 1
  2. 2
    Academic Journal

    Πηγή: Proceedings of the National Academy of Sciences of Belarus, Chemical Series; Том 60, № 4 (2024); 314-325 ; Известия Национальной академии наук Беларуси. Серия химических наук; Том 60, № 4 (2024); 314-325 ; 2524-2342 ; 1561-8331 ; 10.29235/1561-8331-2024-60-4

    Περιγραφή αρχείου: application/pdf

    Relation: https://vestichem.belnauka.by/jour/article/view/917/757; A comparison of standard cultural methods for the detection of foodborne Salmonella / J. Y. D’Aoust [et al.] // Int. J. Food Microbiol. – 1992. – Vol. 16, № 1. – P. 41–50. https://doi.org/10.1016/0168-1605(92)90124-l; Соколов, Д. М. Ускоренные методы выявления бактерий рода Salmonella в пищевых продуктах и сырье. / Д. М. Соколов, М. С. Соколова // Вопр. питания. – 2013. – № 1. – С. 33–40.; Choi, D. Sandwich capture ELISA by a murine monoclonal antibody against a genus-specific LPS epitope for the detection of different common serotypes of Salmonellas / D. Choi, R. S. Tsang, M. H. Ng // J. Appl. Bacteriol. – 1992. – Vol. 72, № 2. – P. 134–138. https://doi.org/10.1111/j.1365-2672.1992.tb01814.x; Monoclonal antibody-based cross-reactive sandwich ELISA for the detection of Salmonella spp. in milk samples / X. Wu [et al.] // Anal. Methods. – 2015. – Vol. 7, № 21. – P. 9047–9053. https://doi.org/10.1039/C5AY01923K; Gold nanoparticle-based strip sensor for multiple detection of twelve Salmonella strains with a genus-specific lipopolysaccharide antibody / W. Wang [et al.] // Sci. China Mater. – 2016. – Vol. 59, № 8. – P. 665–674. https://doi.org/10.1007/s40843-016-5077-0; A review of methods for the detection of pathogenic microorganisms / P. Rajapaksha [et al.] // Analyst. – 2019. – Vol. 144, № 2. – P. 396–411. https://doi.org/10.1039/c8an01488d; An enzyme-linked immunosorbent assay to detect PCR products of the rfbS gene from serogroup D Salmonellae: a rapid screening prototype/ J. M. Luk [et al.] // J. Clin. Microbiol. – 1997. – Vol. 35, № 3. – P. 714–718. https://doi.org/10.1128/jcm.35.3.714-718.1997; Qualitative PCR-ELISA protocol for the detection and typing of viral genomes / M. Musiani [et al.] // Nat. Protoc. – 2007. – Vol. 2, № 10. – P. 2502–2510. https://doi.org/10.1038/nprot.2007.311; Development of an isothermal amplification-based assay for the rapid visual detection of Salmonella bacteria / H.-B. Liu [et al.] // J. Dairy Sci. – 2017. – Vol. 100, № 9. – P. 7016–7025. https://doi.org/10.3168/jds.2017-12566; Sensitive and rapid visual detection of Salmonella Typhimurium in milk based on recombinase polymerase amplification with lateral flow dipsticks / J. Hu [et al.] // J. Microbiol. Methods. – 2019. – Vol. 158. – P. 25–32. https://doi.org/10.1016/j.mimet.2019.01.018; Europium as a label in time-resolved immunofluorometric assays / I. Hemmilä [et al.] // Anal. Biochem. – 1984. – Vol. 137, № 2. – P. 335–343. https://doi.org/10.1016/0003-2697(84)90095-2; Гарбуз, О. С. Лантанидный иммунофлуориметрический анализ: научные основы и технические принципы / О. С. Гарбуз, О. В. Свиридов // ARSmedica. – 2011. – № 13. – С. 51–61.; Функционализированные металлохелаты на основе диэтилентриаминтетрауксусной кислоты для химической модификации белков и малых биомолекул / О. С. Куприенко [и др.] // Биоорг. химия. – 2015. – Т. 41, № 6. – С. 675–685. https://doi.org/10.7868/S013234231506007X; Frens, G. Controlled nucleation for the regulation of the particle size in monodisperse gold suspensions / G. Frens // Nat. Phys. Sci. – 1973. – Vol. 241, № 105. – P. 20–22. https://doi.org/10.1038/physci241020a0; Lateral flow immunoassay for rapid qualitative and quantitative control of the veterinary drug bacitracin in milk / N. A. Byzova [et al.] // Microchem. J. – 2020. – Vol. 156. – Article 104884. https://doi.org/10.1016/j.microc.2020.104884; Hermanson, G. T. Bioconjugate Techniques / G. T. Hermanson. – Elsevier, 1996. – 814 p. https://doi.org/10.1016/0890-8508(92)90002-f; Galán, J. E. Cloning and molecular characterization of genes whose products allow Salmonella Typhimurium to penetrate tissue culture cells / J. E. Galán, R. Curtiss // Proc. Nat. Acad. Sci. USA. – 1989. – Vol. 86, № 16. – P. 6383–6387. https://doi.org/10.1073/pnas.86.16.6383; Amplification of an invA gene sequence of Salmonella Typhimurium by polymerase chain reaction as a specific method of detection of Salmonella / K. Rahn [et al.] // Mol. Cell. Probes. – 1992. – Vol. 6, № 4. – P. 271–279. https://doi.org/10.1016/0890-8508(92)90002-f; Nucleic acid lateral flow assay with recombinase polymerase amplification: solutions for high-sensitive detection of RNA virus // A. V. Ivanov [et al.] // Talanta. – 2020. – Vol. 210. – Article 120616. https://doi.org/10.1016/j.talanta.2019.120616; Moon, Y.-J. A review of isothermal amplification methods and food-origin inhibitors against detecting food-borne pathogens / Y.-J. Moon, S.-Y. Lee, S.-W. Oh // Foods. – 2022. – Vol. 11, № 3. – P. 322–337. https://doi.org/10.3390/foods11030322; An оverview for the nanoparticles-based quantitative lateral flow assay // Z. Wang [et al.] // Small methods. – 2022. – Vol. 6, № 1. – Article 2101143. https://doi.org/10.1002/smtd.202101143; https://vestichem.belnauka.by/jour/article/view/917

  3. 3
  4. 4
  5. 5
    Academic Journal

    Περιγραφή αρχείου: text/html

  6. 6
  7. 7
    Academic Journal

    Πηγή: Journal Infectology; Том 3, № 4 (2011); 102-104 ; Журнал инфектологии; Том 3, № 4 (2011); 102-104 ; 2072-6732 ; 10.22625/2072-6732-2011-3-4

    Περιγραφή αρχείου: application/pdf

    Relation: https://journal.niidi.ru/jofin/article/view/69/64; Бисенова, Н.М. Микробный пейзаж мокроты больных с респираторными инфекциями / Н.М. Бисенова, А.Б. Абжалова // Науч. журн. Национальный приоритеты России, специальный выпуск. – 2009.– № 2. – С. 236–237.; Ряпис, Л.А. Проблема пневмококковых инфекций в России / Л.А. Ряпис, Н.И. Брико // Эпидемиология и инфекционные болезни. – 2010. – № 1. – С. 4–6.; Eller, J. Infective exacerbations of chronic bronchitis: relation between bacteriologic etiology and lung function /J. Eller, A. Ede, T. Schaberg // Chest. – 1998. – № 113. – С. 1542–1548.; Николенко, В.В. Профилактика осложнений острых респираторных заболеваний пневмококковой этиологии у ВИЧ-инфицированных/ В.В. Николенко [и др.] // Материалы 2-го ежегод. конгр. по инфекционным болезням «Инфекционные болезни». – М., 2010. – Т. 8, прил. № 1. – С. 226.; Чучалин, А.Г. Внебольничная пневмония у взрослых : пособие для врачей / А.Г. Чучалин [и др.]. – М., 2010. – 106 с.; Степанищева, Л.А. Распространённость факторов риска развития бронхолёгочных заболеваний в различных социальных группах / Л.А. Степанищева, Г.Л. Игнатова, О.В. Галимова // Современные проблемы медицинской науки и практики. – Челябинск, 2006. – С. 201–202.; Покровский, В.И. Стрептококки и стрептококкозы / В.И. Покровский, Н.И. Брико, Л.А. Ряпис. – М. : ГЭОТАРМЕДИА, 2006. – 544 с.; https://journal.niidi.ru/jofin/article/view/69

  8. 8
  9. 9
  10. 10
  11. 11
  12. 12
  13. 13
  14. 14
  15. 15