Αποτελέσματα αναζήτησης - "иммунофенотипирование"

Συνεισφορές: Работа выполнена при поддержке комплексной программы фундаментальных научных исследований СО РАН в рамках фундаментальной темы НИИ КПССЗ № 0419-2024-0001 «Разработка новых фармакологических подходов к экспериментальной терапии атеросклероза, технологий серийного производства реактивов и расходных материалов для изучения физиологии и патофизиологии сердечно-сосудистой системы и программного обеспечения на основе искусственного интеллекта для автоматизированной диагностики патологий системы кровообращения и автоматизированного расчета сердечно-сосудистого риска» и финансовой поддержке Министерства науки и высшего образования Российской Федерации в рамках национального проекта «Наука и университеты».

Πηγή: Complex Issues of Cardiovascular Diseases; Том 13, № 3 (2024); 118-129 ; Комплексные проблемы сердечно-сосудистых заболеваний; Том 13, № 3 (2024); 118-129 ; 2587-9537 ; 2306-1278

Θεματικοί όροι: Импортозамещение, Proliferation, Angiogenesis, Regenerative medicine, Cell culture medium, Immunophenotyping, Import substitution industrialization, Пролиферация, Ангиогенез, Регенеративная медицина, Питательные среды, Иммунофенотипирование

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://www.nii-kpssz.com/jour/article/view/1523/923; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1523/1751; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1523/1752; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1523/1753; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1523/1754; https://www.nii-kpssz.com/jour/article/downloadSuppFile/1523/1755; Crampton S.P., Davis J., Hughes C.C. Isolation of human umbilical vein endothelial cells (HUVEC). J Vis Exp. 2007;(3):183. doi:10.3791/183.; Lei J., Peng S., Samuel S.B., Zhang S., Wu Y., Wang P., Li Y.F., Liu H. A simple and biosafe method for isolation of human umbilical vein endothelial cells. Anal Biochem. 2016;508:15-8. doi:10.1016/j.ab.2016.06.018.; Chandel S., Kumaragurubaran R., Giri H., Dixit M. Isolation and Culture of Human Umbilical Vein Endothelial Cells (HUVECs). Methods Mol Biol. 2024;2711:147-162. doi:10.1007/978-1-0716-3429-5_12.; Hauser S., Jung F., Pietzsch J. Human Endothelial Cell Models in Biomaterial Research. Trends Biotechnol. 2017;35(3):265-277. doi:10.1016/j.tibtech.2016.09.007.; Medina-Leyte D.J., Domínguez-Pérez M., Mercado I., Villarreal-Molina M.T., Jacobo-Albavera L. Use of Human Umbilical Vein Endothelial Cells (HUVEC) as a Model to Study Cardiovascular Disease: A Review. Appl Sci. 2020;10(3):938. doi:10.3390/app10030938.; Dienemann S., Schmidt V., Fleischhammer T., Mueller J.H., Lavrentieva A. Comparative analysis of hypoxic response of human microvascular and umbilical vein endothelial cells in 2D and 3D cell culture systems. J Cell Physiol. 2023;238(5):1111-1120. doi:10.1002/jcp.31002.; Lau S., Gossen M., Lendlein A., Jung F. Venous and Arterial Endothelial Cells from Human Umbilical Cords: Potential Cell Sources for Cardiovascular Research. Int J Mol Sci. 2021;22(2):978. doi:10.3390/ijms22020978.; Mayani H. Biological differences between neonatal and adult human hematopoietic stem/progenitor cells. Stem Cells Dev. 2010;19(3):285-98. doi:10.1089/scd.2009.0327.; Sun H., Pratt R.E., Dzau V.J., Hodgkinson C.P. Neonatal and adult cardiac fibroblasts exhibit inherent differences in cardiac regenerative capacity. J Biol Chem. 2023;299(5):104694. doi:10.1016/j.jbc.2023.104694.; Legros H., Launay S., Roussel B.D., Marcou-Labarre A., Calbo S., Catteau J., Leroux P., Boyer O., Ali C., Marret S., Vivien D., Laudenbach V. Newborn- and adult-derived brain microvascular endothelial cells show age-related differences in phenotype and glutamate-evoked protease release. J Cereb Blood Flow Metab. 2009;29(6):1146-58. doi:10.1038/jcbfm.2009.39.; Robertson J.O., Erzurum S.C., Asosingh K. Pathological Roles for Endothelial Colony-Forming Cells in Neonatal and Adult Lung Disease. Am J Respir Cell Mol Biol. 2023;68(1):13-22. doi:10.1165/rcmb.2022-0318PS.; Bertagnolli M., Xie L.F., Paquette K., He Y., Cloutier A., Fernandes R.O., Béland C., Sutherland M.R., Delfrate J., Curnier D., Bigras J.L., Rivard A., Thébaud B., Luu T.M., Nuyt A.M. Endothelial Colony-Forming Cells in Young Adults Born Preterm: A Novel Link Between Neonatal Complications and Adult Risks for Cardiovascular Disease. J Am Heart Assoc. 2018;7(14):e009720. doi:10.1161/JAHA.118.009720.; McAleese C. Insights into endothelial metabolic heterogeneity. Nat Rev Cardiol. 2024 Jun 5. doi:10.1038/s41569-024-01049-3. Online ahead of print.; Trimm E., Red-Horse K. Vascular endothelial cell development and diversity. Nat Rev Cardiol. 2023;20(3):197-210. doi:10.1038/s41569-022-00770-1.; Jung R., Trivedi C.M. Unveiling the Spatiotemporal Diversity of the Endothelium in Development: A Multi-Omics Approach. Circ Res. 2024;134(5):547-549. doi:10.1161/CIRCRESAHA.124.324328.; Chen J., Zhang X., DeLaughter D.M., Trembley M.A., Saifee S., Xiao F., Chen J., Zhou P., Seidman C.E., Seidman J.G., Pu W.T. Molecular and Spatial Signatures of Mouse Embryonic Endothelial Cells at Single-Cell Resolution. Circ Res. 2024;134(5):529-546. doi:10.1161/CIRCRESAHA.123.323956.; Becker L.M., Chen S.H., Rodor J., de Rooij L.P.M.H., Baker A.H., Carmeliet P. Deciphering endothelial heterogeneity in health and disease at single-cell resolution: progress and perspectives. Cardiovasc Res. 2023;119(1):6-27. doi:10.1093/cvr/cvac018.; Liu Z., Ruter D.L., Quigley K., Tanke N.T., Jiang Y., Bautch V.L. Single-Cell RNA Sequencing Reveals Endothelial Cell Transcriptome Heterogeneity Under Homeostatic Laminar Flow. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2021;41(10):2575-2584. doi:10.1161/ATVBAHA.121.316797.; Salybekov A.A., Kobayashi S., Asahara T. Characterization of Endothelial Progenitor Cell: Past, Present, and Future. Int J Mol Sci. 2022;23(14):7697. doi:10.3390/ijms23147697.; Zhang Q., Cannavicci A., Kutryk M.J.B. Exploring Endothelial Colony-Forming Cells to Better Understand the Pathophysiology of Disease: An Updated Review. Stem Cells Int. 2022;2022:4460041. doi:10.1155/2022/4460041.; Chambers S.E.J., Pathak V., Pedrini E., Soret L., Gendron N., Guerin C.L., Stitt A.W., Smadja D.M., Medina R.J. Current concepts on endothelial stem cells definition, location, and markers. Stem Cells Transl Med. 2021;10 (Suppl 2):S54-S61. doi:10.1002/sctm.21-0022.; Dight J., Zhao J., Styke C., Khosrotehrani K., Patel J. Resident vascular endothelial progenitor definition and function: the age of reckoning. Angiogenesis. 2022;25(1):15-33. doi:10.1007/s10456-021-09817-2.; Kutikhin A.G., Sinitsky M.Y., Yuzhalin A.E., Velikanova E.A. Shear stress: An essential driver of endothelial progenitor cells. J Mol Cell Cardiol. 2018;118:46-69. doi:10.1016/j.yjmcc.2018.03.007.; Liao G., Zheng K., Shorr R., Allan D.S. Human endothelial colony-forming cells in regenerative therapy: A systematic review of controlled preclinical animal studies. Stem Cells Transl Med. 2020;9(11):1344-1352. doi:10.1002/sctm.20-0141.; Deng D., Zhang Y., Tang B., Zhang Z. Sources and applications of endothelial seed cells: a review. Stem Cell Res Ther. 2024;15(1):175. doi:10.1186/s13287-024-03773-6.; Nguyen H.T., Peirsman A., Tirpakova Z., Mandal K., Vanlauwe F., Maity S., Kawakita S., Khorsandi D., Herculano R., Umemura C., Yilgor C., Bell R., Hanson A., Li S., Nanda H.S., Zhu Y., Najafabadi A.H., Jucaud V., Barros N., Dokmeci M.R., Khademhosseini A. Engineered Vasculature for Cancer Research and Regenerative Medicine. Micromachines (Basel). 2023;14(5):978. doi:10.3390/mi14050978.; Wingo M., Rafii S. Endothelial reprogramming for vascular regeneration: Past milestones and future directions. Semin Cell Dev Biol. 2022;122:50-55. doi:10.1016/j.semcdb.2021.09.003.; Cho S., Aakash P., Lee S., Yoon Y.S. Endothelial cell direct reprogramming: Past, present, and future. J Mol Cell Cardiol. 2023;180:22-32. doi:10.1016/j.yjmcc.2023.04.006.; Loh K.M., Ang L.T. Building human artery and vein endothelial cells from pluripotent stem cells, and enduring mysteries surrounding arteriovenous development. Semin Cell Dev Biol. 2024;155(Pt C):62-75. doi:10.1016/j.semcdb.2023.06.004.; Florido M.H.C., Ziats N.P. Endothelial dysfunction and cardiovascular diseases: The role of human induced pluripotent stem cells and tissue engineering. J Biomed Mater Res A. 2024;112(8):1286-1304. doi:10.1002/jbm.a.37669.; Matveeva V., Khanova M., Sardin E., Antonova L., Barbarash O. Endovascular Interventions Permit Isolation of Endothelial Colony-Forming Cells from Peripheral Blood. Int J Mol Sci. 2018;19(11):3453. doi:10.3390/ijms19113453.; Kutikhin A.G., Tupikin A.E., Matveeva V.G., Shishkova D.K., Antonova L.V., Kabilov M.R., Velikanova E.A. Human Peripheral Blood-Derived Endothelial Colony-Forming Cells Are Highly Similar to Mature Vascular Endothelial Cells yet Demonstrate a Transitional Transcriptomic Signature. Cells. 2020;9(4):876. doi:10.3390/cells9040876.; Malakhova A.A., Grigor'eva E.V., Pavlova S.V., Malankhanova T.B., Valetdinova K.R., Vyatkin Y.V., Khabarova E.A., Rzaev J.A., Zakian S.M., Medvedev S.P. Generation of induced pluripotent stem cell lines ICGi021-A and ICGi022-A from peripheral blood mononuclear cells of two healthy individuals from Siberian population. Stem Cell Res. 2020;48:101952. doi:10.1016/j.scr.2020.101952.; Zakharova I.S., Shevchenko A.I., Tmoyan N.A., Elisaphenko E.A., Zubkova E.S., Sleptcov A.A., Nazarenko M.S., Ezhov M.V., Kukharchuk V.V., Parfyonova Y.V., Zakian S.M. Induced pluripotent stem cell line ICGi036-A generated by reprogramming peripheral blood mononuclear cells from a patient with familial hypercholesterolemia caused due to compound heterozygous p.Ser177Leu/p.Cys352Arg mutations in LDLR. Stem Cell Res. 2022;59:102653. doi:10.1016/j.scr.2022.102653.; Zakharova I.S., Shevchenko A.I., Tmoyan N.A., Elisaphenko E.A., Zubkova E.S., Sleptcov A.A., Nazarenko M.S., Ezhov M.V., Kukharchuk V.V., Parfyonova Y.V., Zakian S.M. Induced pluripotent stem cell line ICGi038-A, obtained by reprogramming peripheral blood mononuclear cells from a patient with familial hypercholesterolemia due to compound heterozygous c.1246C > T/c.940 + 3_940 + 6del mutations in LDLR. Stem Cell Res. 2022;60:102702. doi:10.1016/j.scr.2022.102702.; Zakharova I.S., Shevchenko A.I., Tmoyan N.A., Elisaphenko E.A., Kalinin A.P., Sleptcov A.A., Nazarenko M.S., Ezhov M.V., Kukharchuk V.V., Parfyonova Y.V., Zakian S.M. Induced pluripotent stem cell line ICGi037-A, obtained by reprogramming peripheral blood mononuclear cells from a patient with familial hypercholesterolemia due to heterozygous p.Trp443Arg mutations in LDLR. Stem Cell Res. 2022;60:102703. doi:10.1016/j.scr.2022.102703.; Gimble J.M., Ray S.P., Zanata F., Wu X., Wade J., Khoobehi K., Ferreira L.M., Bunnell B.A. Adipose Derived Cells and Tissues for Regenerative Medicine. ACS Biomater Sci Eng. 2017;3(8):1477-1482. doi:10.1021/acsbiomaterials.6b00261.; Laschke M.W., Seifert M.S., Scheuer C., Kontaxi E., Metzger W., Menger M.D. High glucose exposure promotes proliferation and in vivo network formation of adipose-tissue-derived microvascular fragments. Eur Cell Mater. 2019;38:188-200. doi:10.22203/eCM.v038a13.; Antonyshyn J.A., Mazzoli V., McFadden M.J., Gramolini A.O., Hofer S.O.P., Simmons C.A., Santerre P.J. Immunomagnetic Isolation and Enrichment of Microvascular Endothelial Cells from Human Adipose Tissue. Bio Protoc. 2022;12(10):e4422. doi:10.21769/BioProtoc.4422.; Antonyshyn J.A., MacQuarrie K.D., McFadden M.J., Gramolini A.O., Hofer S.O.P., Santerre J.P. Paracrine cross-talk between human adipose tissue-derived endothelial cells and perivascular cells accelerates the endothelialization of an electrospun ionomeric polyurethane scaffold. Acta Biomater. 2024;175:214-225. doi:10.1016/j.actbio.2023.12.037.; Jonkman J.E., Cathcart J.A., Xu F., Bartolini M.E., Amon J.E., Stevens K.M., Colarusso P. An introduction to the wound healing assay using live-cell microscopy. Cell Adh Migr. 2014;8(5):440-51. doi:10.4161/cam.36224.; Aisenbrey E.A., Murphy W.L. Synthetic alternatives to Matrigel. Nat Rev Mater. 2020;5(7):539-551. doi:10.1038/s41578-020-0199-8.; Passaniti A., Kleinman H.K., Martin G.R. Matrigel: history/background, uses, and future applications. J Cell Commun Signal. 2022;16(4):621-626. doi:10.1007/s12079-021-00643-1.; Gao Y., Galis Z.S. Exploring the Role of Endothelial Cell Resilience in Cardiovascular Health and Disease. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2021;41(1):179-185. doi:10.1161/ATVBAHA.120.314346.; Tombor L.S., Dimmeler S. Why is endothelial resilience key to maintain cardiac health? Basic Res Cardiol. 2022;117(1):35. doi:10.1007/s00395-022-00941-8.; Mühleder S., Fernández-Chacón M., Garcia-Gonzalez I., Benedito R. Endothelial sprouting, proliferation, or senescence: tipping the balance from physiology to pathology. Cell Mol Life Sci. 2021;78(4):1329-1354. doi:10.1007/s00018-020-03664-y.; Jerka D., Bonowicz K., Piekarska K., Gokyer S., Derici U.S., Hindy O.A., Altunay B.B., Yazgan I., Steinbrink K., Kleszczyński K., Yilgor P., Gagat M. Unraveling Endothelial Cell Migration: Insights into Fundamental Forces, Inflammation, Biomaterial Applications, and Tissue Regeneration Strategies. ACS Appl Bio Mater. 2024;7(4):2054-2069. doi:10.1021/acsabm.3c01227.; Qiu J., Hirschi K.K. Endothelial Cell Development and Its Application to Regenerative Medicine. Circ Res. 2019;125(4):489-501. doi:10.1161/CIRCRESAHA.119.311405.; Pérez-Gutiérrez L., Ferrara N. Biology and therapeutic targeting of vascular endothelial growth factor A. Nat Rev Mol Cell Biol. 2023;24(11):816-834. doi:10.1038/s41580-023-00631-w.; Simons M., Gordon E., Claesson-Welsh L. Mechanisms and regulation of endothelial VEGF receptor signalling. Nat Rev Mol Cell Biol. 2016;17(10):611-25. doi:10.1038/nrm.2016.87.

Διαθεσιμότητα: https://www.nii-kpssz.com/jour/article/view/1523
https://doi.org/10.17802/2306-1278-2024-13-3-118-129

View record from BASE

7

Academic Journal

Технические аспекты определения минимальной остаточной болезни методом многоцветной проточной цитометрии у пациентов с острыми миелоидными лейкозами

Πηγή: Клиническая онкогематология, Vol 14, Iss 4 (2021)

Θεματικοί όροι: 03 medical and health sciences, 0302 clinical medicine, минимальная остаточная болезнь, острые миелоидные лейкозы, Neoplasms. Tumors. Oncology. Including cancer and carcinogens, проточная цитометрия, иммунофенотипирование, RC254-282, гейтирование, 3. Good health

Σύνδεσμος πρόσβασης: https://doaj.org/article/4be2fc3a4bc44221b93a05bff505b28d

View record at OpenAIRE Full Text Finder

8

Academic Journal

Significance of Immunophenotypic and Molecular Genetic Markers in Prediction of Myelodysplastic Syndromes

Πηγή: Гематология. Трансфузиология. Восточная Европа. :60-70

Θεματικοί όροι: 0301 basic medicine, 0303 health sciences, prognostic scoring system, прогностическая балльная шкала, цитогенетический анализ, миелодиспластический синдром, 3. Good health, myelodysplastic syndrome, pancytopenia, 03 medical and health sciences, cytogenetic analysis, панцитопения, immunophenotyping, иммунофенотипирование

9

Academic Journal

Prognostic Risk Factors in Myelodysplastic Syndromes in Adults

Πηγή: Гематология. Трансфузиология. Восточная Европа. :347-356

Θεματικοί όροι: 0301 basic medicine, pancytopenia, 03 medical and health sciences, prognostic scoring system, cytogenetic analysis, 0302 clinical medicine, прогностическая балльная шкала, панцитопения, цитогенетический анализ, immuno-phenotyping, миелодиспластический синдром, иммунофенотипирование, myelodysplastic syndrome

10

Report

КЛИНИЧЕСКИЙ СЛУЧАЙ ОСТРОГО МИЕЛОМОНОБЛАСТНОГО ЛЕЙКОЗА

Θεματικοί όροι: blast cell immunophenotyping, лейкограмма, иммунофенотипирование бластных клеток, acute myelomonoblastic leukemia, острый миеломонобластный лейкоз, leukogram

11

Academic Journal

Phenotypic features of dendritic cells when using different modes of their stimulated maturation ; Фенотипические свойства дендритных клеток при различных вариантах стимуляции созревания

Συγγραφείς: F. A. Fadeyev, A. D. Aleksandrova, A. S. Mogilenskikh, Ф. А. Фадеев, А. Д. Александрова, А. С. Могиленских

Πηγή: Medical Immunology (Russia); Том 26, № 2 (2024); 253-262 ; Медицинская иммунология; Том 26, № 2 (2024); 253-262 ; 2313-741X ; 1563-0625

Θεματικοί όροι: секреторный профиль, induced maturation, receptors, cytokines, immunophenotyping, secretion profile, стимуляция созревания, рецепторы, цитокины, иммунофенотипирование

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/2875/1897; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2875/12611; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2875/12612; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2875/12613; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2875/12614; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2875/12615; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2875/12616; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2875/12617; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2875/12618; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2875/12619; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2875/12620; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2875/12621; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2875/12746; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2875/12747; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2875/12748; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2875/12749; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2875/13141; Балдуева И.А., Семиглазов В.Ф., Пипиа Н.П., Нехаева Т.Л., Данилова А.Б., Авдонкина Н.А., Новик А.В., Проценко С.А., Семиглазова Т.Ю., Карицкий А.П., Беляев А.М. Разработка способа иммунотерапии у больных раком молочной железы с исчерпанными возможностями стандартного лечения // Российский биотерапевтический журнал, 2018. Т. 17 (S). С. 5-6.; Нехаева Т.Л. Оптимизация аутологичных дендритно-клеточных вакцин для лечения больных злокачественными новообразованиями // Сибирский онкологический журнал, 2013. Т. 3, № 57. С. 52-56.; Новик А.В., Проценко С.А., Анохина Е.М., Семенова А.И., Нехаева Т.Л., Телетаева Г.М., Данилова А.Б., Латипова Д.Х., Пипиа Н.П., Авдонкина Н.А., Зозуля А.Ю., Оганесян А.П., Балдуева И.А. Тридцатилетний опыт лекарственного лечения меланомы в НМИЦ онкологии им. Н.Н. Петрова: важные уроки для будущих исследований // Эффективная фармакотерапия, 2020. Т. 16, № 18. С. 20-29.; Arya S., Wiatrek-Moumoulidis D., Synowsky S.A., Shirran S.L., Botting C.H., Powis S.J., Stewart A.J. Quantitative proteomic changes in LPS-activated monocyte-derived dendritic cells: A SWATH-MS study. Sci. Rep., 2019, Vol. 9, no. 1, 4343. doi:10.1038/s41598-019-40773-6.; Bellanger A.-P., Pallandre J.-R., Borg C., Loeffert S., Gbaguidi-Haore H., Millon L. Human monocyte-derived dendritic cells exposed to microorganisms involved in hypersensitivity pneumonitis induce a Th1-polarized immune response. Clin. Vaccine Immunol., 2013, Vol. 20, no. 8, pp. 1133-1142.; Bol K.F., Schreibelt G., Gerritsen W.R., de Vries I.J.M., Figdor C.G. Dendritic cell-based immunotherapy: state of the art and beyond. Clin. Cancer Res., 2016, Vol. 22, no. 8, pp. 1897-1906.; Bol K.F., Schreibelt G., Rabold K., Wculek S.K., Schwarze J.K., Dzionek A., Teijeira A., Kandalaft L.E., Romero P., Coukos G., Neyns B., Sancho D., Melero I., de Vries I.J.M. The clinical application of cancer immunotherapy based on naturally circulating dendritic cells. J. Immunother. Cancer, 2019, Vol. 7, no. 1, 109. doi:10.1186/s40425-019-0580-6.; Brandum E.P., Jørgensen A.S., Rosenkilde M.M., Hjortø G.M. Dendritic cells and CCR7 expression: an important factor for autoimmune diseases, chronic inflammation, and cancer. Int J. Mol. Sci., 2021, Vol. 22, no. 15, 8340. doi:10.3390/ijms22158340.; Castiello L., Sabatino M., Jin P., Clayberger C., Marincola F.M., Krensky A.M., Stroncek D.F. Monocyte-derived DC maturation strategies and related pathways: A transcriptional view. Cancer Immunol. Immunother., 2011, Vol. 60, no 4, pp. 457-466.; Cechim G., Chies J.A.B. In vitro generation of human monocyte-derived dendritic cells methodological aspects in a comprehensive review. An. Acad. Bras. Ciênc., 2019, Vol. 91, no. 4, e20190310. doi:10.1590/0001-3765201920190310.; Cernadas M., Lu J., Watts G., Brenner M.B. CD1a expression defines an interleukin-12 producing population of human dendritic cells. Clin. Exp. Immunol., 2009, Vol. 155, no. 3, pp. 523-533.; Couper K.N., Blount D.G., Riley E.M. IL-10: The master regulator of immunity to infection. J. Immunol., 2008, Vol. 180, no. 9, pp. 5771-5777.; Datsi A., Sorg R.V. Dendritic Cell vaccination of glioblastoma: road to success or dead end. Front. Immunol., 2021, Vol. 12, 770390. doi:10.3389/fimmu.2021.770390.; De Winde C.M., Munday C., Acton S.E. Molecular mechanisms of dendritic cell migration in immunity and cancer. Med. Microbiol. Immunol., 2020, Vol. 209, no 4, pp. 515-529.; Delirezh N., Majedi L., Asri Rezaei S., Ranjkeshzadeh H. Generation of mature monocyte-derived dendritic cells in the presence of heparin and monocyte conditioned medium: Phenotypic and functional comparison. Iran. Biomed. J., 2011, Vol. 15, no. 3, pp. 79-84.; Dillman R.O., Nistor G.I., Cornforth A.N. Dendritic cell vaccines for melanoma: Past, present and future. Melanoma Manag., 2016, Vol. 3, no. 4, pp. 273-289.; Filin I.Y., Kitaeva K.V., Rutland C.S., Rizvanov A.A., Solovyeva V.V. Recent advances in experimental dendritic cell vaccines for cancer. Front. Oncol., 2021, Vol. 11, 730824. doi:10.3389/fonc.2021.730824.; Fučíková J., Rožková D., Ulčová H., Budinský V., Sochorová K., Pokorná K., Bartůňková J., Špíšek R. Poly I: C-activated dendritic cells that were generated in CellGro for use in cancer immunotherapy trials. J. Transl. Med., 2011, Vol. 9, no. 1, 223. doi:10.1186/1479-5876-9-223.; Gardner A., de Mingo Pulido Á., Ruffell B. Dendritic cells and their role in immunotherapy. Front. Immunol., 2020, Vol. 11, 924. doi:10.3389/fimmu.2020.00924.; Gelao L., Criscitiello C., Esposito A., Laurentiis M.D., Fumagalli L., Locatelli M.A., Minchella I., Santangelo M., Placido S.D., Goldhirsch A., Curigliano G. Dendritic cell-based vaccines: Clinical applications in breast cancer. Immunotherapy, 2014, Vol. 6, no. 3, pp. 349-360.; Grosche L., Knippertz I., König C., Royzman D., Wild A.B., Zinser E., Sticht H., Muller Y.A., Steinkasserer, A., Lechmann, M. The CD83 Molecule – An Important Immune Checkpoint. Front. Immunol., 2020, Vol. 11, 721. doi:10.3389/fimmu.2020.00721.; Jin P., Han T.H., Ren J., Saunders S., Wang E., Marincola F.M., Stroncek D.F. Molecular signatures of maturing dendritic cells: Implications for testing the quality of dendritic cell therapies. J. Transl. Med., 2010, Vol. 8, no. 1, 4. doi:10.1186/1479-5876-8-4.; Krause P., Singer E., Darley P.I., Klebensberger J., Groettrup M., Legler D.F. Prostaglandin E2 is a key factor for monocyte-derived dendritic cell maturation: Enhanced T cell stimulatory capacity despite IDO. J. Leukoc. Biol., 2007, Vol. 82, no. 5, pp. 1106-1114.; Liu T., Zhang L., Joo D., Sun S.-C. NF-κB signaling in inflammation. Signal Transduct. Target. Ther., 2017, Vol. 2, no. 1, 17023. doi:10.1038/sigtrans.2017.23.; Locy H., Melhaoui S., Maenhout S.K., Thielemans K. Dendritic cells: the tools for cancer treatment. From: dendritic cells. Ed. Chapoval S.P., InTech, 2018. 138 p.; Ma X., Yan W., Zheng H., Du Q., Zhang L., Ban Y., Li N., Wei F. Regulation of IL-10 and IL-12 production and function in macrophages and dendritic cells. F1000Res., 2015, Vol. 4, F1000 Faculty Rev-1465. doi:10.12688/f1000research.7010.1.; Muthuswamy R., Mueller-Berghaus J., Haberkorn U., Reinhart T.A., Schadendorf D., Kalinski P. PGE2 transiently enhances DC expression of CCR7 but inhibits the ability of DCs to produce CCL19 and attract naive T cells. Blood, 2010, Vol. 116, no. 9, pp. 1454-1459.; Nakahara T. Role of c-Jun N-terminal kinase on lipopolysaccharide induced maturation of human monocyte-derived dendritic cells. Int. Immunol., 2004, Vol. 16, no. 12, pp. 1701-1709.; Sutherland S.I.M., Ju X., Horvath L.G., Clark G.J. Moving on from sipuleucel-t: new dendritic cell vaccine strategies for prostate cancer. Front. Immunol., 2021, Vol. 12, 641307. doi:10.3389/fimmu.2021.641307.; van Gulijk M., Dammeijer F., Aerts J.G.J.V., Vroman H. Combination strategies to optimize efficacy of dendritic cell-based immunotherapy. Front. Immunol., 2018, Vol. 9, 2759. doi:10.3389/fimmu.2018.02759.; von Euw E.M., Barrio M.M., Furman D., Bianchini M., Levy E. M., Yee C., Li Y., Wainstok R., Mordoh J. Monocyte-derived dendritic cells loaded with a mixture of apoptotic/necrotic melanoma cells efficiently cross-present gp100 and MART-1 antigens to specific CD8+ T lymphocytes. J. Transl. Med., 2007, Vol. 5, no. 1, 19. doi:10.1186/1479-5876-5-19.; Wimmers F., Schreibelt G., Sköld A.E., Figdor C.G., de Vries I.J.M. Paradigm shift in dendritic cell-based immunotherapy: From in vitro Generated Monocyte-Derived DCs to Naturally Circulating DC Subsets. Front. Immunol., 2014, Vol. 5, 165. doi:10.3389/fimmu.2014.00165.; Zhang S.-Y., Herman M., Ciancanelli M. J., Pérez De Diego R., Sancho-Shimizu V., Abel L., Casanova J.-L. TLR3 immunity to infection in mice and humans. Curr. Opin. Immunol., 2013, Vol. 25, no. 1, pp. 19-33.; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/2875

Διαθεσιμότητα: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/2875
https://doi.org/10.15789/1563-0625-PFO-2875

View record from BASE

12

Academic Journal

The changes of the tubular epithelium phenotype in the contralateral kidney nephrons while developing unilateral ureteral obstruction: an experimental study ; Изменения фенотипа канальцевого эпителия нефрона контрлатеральной почки при односторонней непроходимости мочеточника (экспериментальное исследование)

Συγγραφείς: M. A. Akimenko, O. V. Voronova, T. S. Kolmakova, М. А. Акименко, О. В. Воронова, Т. С. Колмакова

Πηγή: Urology Herald; Том 9, № 3 (2021); 5-11 ; Вестник урологии; Том 9, № 3 (2021); 5-11 ; 2308-6424 ; 10.21886/2308-6424-2021-9-3

Θεματικοί όροι: иммунофенотипирование, unilateral ureteral obstruction, epithelial-mesenchymal transition, immunophenotyping, односторонняя непроходимость мочеточника, эпителиально-мезенхимальный переход

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://www.urovest.ru/jour/article/view/466/333; Funahashi Y, Hattori R, Yamamoto T, Kamihira O, Moriya Y, Gotoh M. Change in contralateral renal parenchymal volume 1 week after unilateral nephrectomy. Urology. 2009;74(3):708-12. DOI:10.1016/j.urology.2008.11.008; Funahashi Y, Hattori R, Yamamoto T, Aoki S, Majima T, Gotoh M. Renal parenchymal volume increases after contralateral nephrectomy: Assessment using three-dimensional ultrasonography. International Journal of Urology. 2011;18(12):857-60. DOI:10.1111/j.1442-2042.2011.02864.x; Yang M, Gao F, Liu H, Pang H, Zuo YP, Yong T. Prospectively estimating the recoverability of renal function after relief of unilateral urinary obstruction by measurement of renal parenchymal volume. Acad Radiol. 2013;20(4):401-6. DOI:10.1016/j.acra.2012.10.007; Евсеев С.В., Гусев А.А. Значение оценки почечной функции при почечно-клеточном раке. Вестник урологии. 2013;(3):39-53. DOI:10.21886/2308-6424-2013-0-3-39-53; Li WQ, Dong ZQ, Zhou XB, Long B, Zhang LS, Yang J, Zhou XG, Zheng RP, Zhang J. Renovascular morphological changes in a rabbit model of hydronephrosis. J Huazhong Univ Sci Technolog Med Sci. 2014;34(4):575-81. DOI:10.1007/s11596-014-1318-9; Li XD, Wu YP, Wei Y, Chen SH, Zheng QS, Cai H, Xue XY, Xu N. Predictors of Recoverability of Renal Function after Pyeloplasty in Adults with Ureteropelvic Junction Obstruction. Urol Int. 2018;100(2):209-215. DOI:10.1159/000486425; Синякова Л.А., Берников Е.В., Лоран О.Б. Функциональное состояние почек у больных, перенёсших гнойный пиелонефрит. Вестник урологии. 2018;6(4):49-59. DOI:10.21886/2308-6424-2018-6-4-49-59; Kramann R, Kusaba T, Humphreys BD. Who regenerates the kidney tubule? Nephrol. Dial. Transplant. 2015; 30(6):903-910. DOI:10.1093/ndt/gfu281; Chevalier RL. Counterbalance in functional adaptation to ureteral obstruction during development. Pediatr Nephrol. 1990;4(4):442-4. DOI:10.1007/BF00862533; Springer A, Kratochwill K, Bergmeister H, Csaicsich D, Huber J, Mayer B, Mühlberger I, Stahlschmidt J, Subramaniam R, Aufricht C. A fetal sheep model for studying compensatory mechanisms in the healthy contralateral kidney after unilateral ureteral obstruction. J Pediatr Urol. 2015;11(6):352.e1-7. DOI:10.1016/j.jpurol.2015.04.041; Chevalier RL, Forbes MS, Thornhill BA. Ureteral obstruction as a model of renal interstitial fibrosis and obstructive nephropathy. Kidney Int. 2009;75(11):1145-52. DOI:10.1038/ki.2009.86; Choi SY, Yoo S, You D, Jeong IG, Song C, Hong B, Hong JH, Ahn H, Kim CS. Adaptive functional change of the contralateral kidney after partial nephrectomy. Am J Physiol Renal Physiol. 2017;313(2):192-8. DOI:10.1152/ajprenal.00058.2017; Bianco M, Lopes JA, Beiral HV, Filho JD, Frankenfeld SP, Fortunato RS, Gattass CR, Vieyra A, Takiya CM. The contralateral kidney presents with impaired mitochondrial functions and disrupted redox homeostasis after 14 days of unilateral ureteral obstruction in mice. PLoS One. 2019;14(6). DOI:10.1371/journal.pone.0218986; Cruz-Solbes A, Youker K. Epithelial to Mesenchymal Transition (EMT) and Endothelial to Mesenchymal Transition (EndMT): Role and Implications in Kidney Fibrosis. Results Probl Cell Differ. 2017;60:345-72. DOI:10.1007/978-3-319-51436-9_13; He J, Xu Y, Koya D, Kanasaki K. Role of the endothelial-tomesenchymal transition in renal fibrosis of chronic kidney disease. Clin Exp Nephrol. 2013;17(4):488-97. DOI:10.1007/s10157-013-0781-0; Jourde-Chiche N, Fakhouri F, Dou L, Bellien J, Burtey S, Frimat M, Jarrot P-A, Kaplanski G, Quintrec M, Pernin V, Rigothier C, Sallée M, Fremeaux-Bacchi V, Guerrot D, Roumenina L. Endothelium structure and function in kidney health and disease. Nat Rev Nephrol. 2019;15(2):87-108. DOI:10.1038/s41581-018-0098-z; Ucero AC, Benito-Martin A, Izquierdo MC, Sanchez-Niño MD, Sanz AB, Ramos AM, Berzal S, Ruiz-Ortega M, Egido J, Ortiz A. Unilateral ureteral obstruction: beyond obstruction. Int Urol Nephrol. 2014;46: 765-76. DOI:10.1007/s11255-013-0520-1; Martínez-Klimova E, Aparicio-Trejo O, Gómez-Sierra T, Jiménez-Uribe A, Bellido B, Pedraza-Chaverri J. Mitochondrial dysfunction and endoplasmic reticulum stress in the promotion of fibrosis in obstructive nephropathy induced by unilateral ureteral obstruction. Biofactors. 2020;46(5):716-33. DOI:10.1002/biof.1673; Giamarellos-Bourboulis EJ, Adamis T, Laoutaris G, Sabracos L, Koussoulas V, Mouktaroudi M, Perrea D, Karayannacos PE, Giamarellou H. Immunomodulatory clarithromycin treatment of experimental sepsis and acute pyelonephritis caused by multidrug-resistant Pseudomonas aeruginosa. Antimicrobial Agents and Chemotherapy. 2004;48(1):93-9. DOI:10.1128/aac.48.1.93-99.2004; Акименко М.А., Тодоров С.С., Колмакова Т.С. Динамика морфологических адаптационно-компенсаторных изменений в ткани контралатеральной почки при обструкции мочеточников в эксперименте. Нефрология. 2017;21(5):80-4. DOI:10.24884/1561-6274-2017-21-5-119-124; Terada N, Karim MR, Izawa T, Kuwamura M, Yamate J. Immunolocalization of β-catenin, E-cadherin and N-cadherin in neonate and adult rat kidney. J Vet Med Sci. 2017;79(11):1785-90. DOI:10.1292/jvms.17-0439; Prozialeck WC, Lamar PC, Appelt DM. Differential expression of E-cadherin, N-cadherin and beta-catenin in proximal and distal segments of the rat nephron. BMC Physiol. 2004;4:10. DOI:10.1186/1472-6793-4-10; Djudjaj, Papasotiriou M, Bülow RD, Wagnerova A, Lindenmeyer MT, Cohen CD, Strnad P, Goumenos DS, Floege J, Boor P. Keratins are novel markers of renal epithelial cell injury. Kidney Int. 2016;89(4):792-808. DOI:10.1016/j.kint.2015.10.015; Snider NT. Kidney keratins: cytoskeletal stress responders with biomarker potential. Kidney Int. 2016;89(4):738-40. DOI:10.1016/j.kint.2015.12.040; Seccia T, Caroccia B, Piazza M, Rossi GP. The Key Role of Epithelial to Mesenchymal Transition (EMT) in Hypertensive Kidney Disease. Int J Mol Sci. 2019;20(14):2-9. DOI:10.3390/ijms20143567; Акименко М.А., Тодоров С.С., Колмакова Т.С. Динамика морфологических адаптационно-компенсаторных изменений в ткани почки при обструкции мочеточников в эксперименте. Нефрология. 2017;5:71-5. DOI:10.24884/1561-6274-2017-21-5-71-75; https://www.urovest.ru/jour/article/view/466

Διαθεσιμότητα: https://www.urovest.ru/jour/article/view/466
https://doi.org/10.21886/2308-6424-2021-9-3-5-11

View record from BASE

13

Academic Journal

IMMUNOPHENOTYPIC AND CYTOGENETIC FEATURES OF ACUTE LEUKEMIA IN CHILDREN OF THE ARKHANGELSK REGION: A RETROSPECTIVE STUDYN: A RETROSPECTIVE STUDY ; ИММУНОФЕНОТИПИЧЕСКИЕ И ЦИТОГЕНЕТИЧЕСКИЕ ОСОБЕННОСТИ ОСТРОГО ЛЕЙКОЗА У ДЕТЕЙ АРХАНГЕЛЬСКОЙ ОБЛАСТИ: РЕТРОСПЕКТИВНОЕ ИССЛЕДОВАНИЕ

Συγγραφείς: A. S. Ulanova, A. V. Kudryavtsev, A. L. Turabova, N. A. Grigorieva, I. A. Turabov, M. Yu. Rykov, А. С. Уланова, А. В. Кудрявцев, А. Л. Турабова, Н. А. Григорьева, И. А. Турабов, М. Ю. Рыков

Πηγή: Siberian journal of oncology; Том 20, № 2 (2021); 13-21 ; Сибирский онкологический журнал; Том 20, № 2 (2021); 13-21 ; 2312-3168 ; 1814-4861 ; 10.21294/1814-4861-2021-20-2

Θεματικοί όροι: транслокации, immunophenotyping, cytogenetic study, translocations, иммунофенотипирование, цитогенетическое исследование

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://www.siboncoj.ru/jour/article/view/1749/842; Каприн А.Д., Старинский В.В., Петрова Г.В. Злокачественные новообразования в России (заболеваемость и смертность) в 2018 году. М., 2019. 250 с.; Турабов И.А. Онкологическая заболеваемость детского населения на европейском севере России. Детская онкология. 2003; 4: 29–36.; Турабов И.А., Кудрявцев В.А., Кустышев И.Г., Денщиков Б.В. Онкологическая заболеваемость детей европейского Севера России (распространённость, структура). Экология человека. 1999; 2: 61–64.; Турабов И.А., Кудрявцев А.В., Рыков М.Ю., Карпунов А.А., Уланова А.С. Онкологическая заболеваемость детей в Архангельской области и Ненецком автономном округе: экологическое исследование. Онкопедиатрия. 2019; 6(2): 70–77.; Рукавицын О.А. Гематология: национальное руководство. М., 2015. 776 с.; Swerdlow S.H., Campo E., Harris N.L., Jaffe E.S., Pileri S.A., Stein H., Thiele J. WHO Classification of Tumours of Haematopoietic and Lymphoid Tissues. 4th ed. Lyon, France: IARC Press, 2008. 439 p.; Менткевич Г.Л., Маяковой С.А. Лейкозы у детей. М., 2009. 384 с.; Маякова С.А., Немировченко В.С., Попа А.В. Клинические рекомендации по диагностике и лечению детей, больных острыми лейкозами. М., 2014. 9 с.; Riley R.S., Massey D., Jackson-Cook C., Idowu M., Romagnoli G. Immunophenotypic analysis of acute lymphocytic leukemia. Hematol Oncol Clin North Am. 2002; 16(2): 245–99, v. doi:10.1016/s0889-8588(02)00004-7.; Amritha Malini G., Rajeevan K., Ajith Kumar V.T., Sathi P.P., Aravindan K.P. Clinical Significance of CD34 & CD10 Expression in Pediatric Acute Lymphoblastic Leukemia. Indian J Pathol Oncol. 2017; 4(4): 564–569.; Масчан М.А., Мякова Н.В. Острый лимфобластный лейкоз у детей. Онкогематология. 2006; 1–2: 50–63.; Мисюрин А.В. Цитогенетические и молекулярно-генетические факторы прогноза острых лимфобластных лейкозов. Клиническая онкогематология. 2017; 10(3): 227–234.; Рыков М.Ю., Байбарина Е.Н., Чумакова О.В., Поляков В.Г. Эпидемиология злокачественных новообразований у детей в Российской Федерации. Анализ основных показателей и пути преодоления дефектов статистических данных. Онкопедиатрия. 2017; 4(3): 159–177.; Xavier A.C., Taub J.W. Acute leukemia in children with Down syndrome. Haematologica. 2010; 95(7): 1043–5. doi:10.3324/haematol.2010.024968.; Зарубина К.И., Паровичникова Е.Н., Гаврилина О.А., Соколов А.Н., Троицкая В.В., Кузьмина Л.А., Мамонов В.Е., Галстян Г.М., Савченко В.Г. Токсичность и эффективность тирозинкиназных ингибиторов в сочетании с химиотерапией при резистентном течении острого Ph-позитивного лимфобластного лейкоза (обзор литературы и клинический случай). Онкогематология. 2017; 3(12): 41–49.; Seibel N.L. Treatment of acute lymphoblastic leukemia in children and adolescents: peaks and pitfalls. Hematology Am Soc Hematol Educ Program. 2008. 374-80. doi:10.1182/asheducation-2008.1.374.; Волкова М.А. Ph-позитивный острый лимфобластный лейкоз. Онкогематология. 2009; 2(1): 103–111.; https://www.siboncoj.ru/jour/article/view/1749

Διαθεσιμότητα: https://www.siboncoj.ru/jour/article/view/1749
https://doi.org/10.21294/1814-4861-2021-20-2-13-21

View record from BASE

14

Academic Journal

Flow cytofluorimetric detection and immunophenotyping of platelet-monocyte complexes in peripheral blood ; Определение и имунофенотипирование тромбоцитарно-моноцитарных комплексов в периферической крови с помощью проточной цитофлуорометрии

Συγγραφείς: O. V. Pavlov, S. V. Chepanov, A. V. Selutin, M. S. Zainulina, D. R. Eremeeva, S. A. Selkov, О. В. Павлов, С В. Чепанов, А. В. Селютин, М. С. Зайнулина, Д. Р. Еремеева, С. А. Сельков

Πηγή: Medical Immunology (Russia); Том 23, № 2 (2021); 401-410 ; Медицинская иммунология; Том 23, № 2 (2021); 401-410 ; 2313-741X ; 1563-0625

Θεματικοί όροι: проточная цитофлуориметрия, platelets, monocytes, peripheral blood, immunophenotyping, flow cytofluorimetry, тромбоциты, моноциты, периферическая кровь, иммунофенотипирование

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/2124/1383; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2124/6925; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2124/6926; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2124/6927; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2124/6928; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2124/6929; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2124/6930; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2124/6931; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2124/6932; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2124/6942; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2124/6943; Aleva F.E., Temba G., de Mast Q., Simons S.O., de Groot P.G., Heijdra Y.F., van der Ven A. Increased plateletmonocyte interaction in stable COPD in the absence of platelet hyper-reactivity. Respiration, 2018, Vol. 95, no. 1, pp. 35-43.; Allen N., Barrett T.J., Guo Y., Nardi M., Ramkhelawon B., Rockman C.B., Hochman J.S., Berger J.S. Circulating monocyte-platelet aggregates are a robust marker of platelet activity in cardiovascular disease. Atherosclerosis, 2019, Vol. 282, pp. 11-18.; Dopheide J.F., Rubrech J., Trumpp A., Geissler P., Zeller G.C., Bock K., Dunschede F., Trinh T.T., Dorweiler B., Munzel T., Radsak M.P., Espinola-Klein C. Leukocyte-platelet aggregates-a phenotypic characterization of different stages of peripheral arterial disease. Platelets, 2016, Vol. 27, no. 7, pp. 658-667.; Finsterbusch M., Schrottmaier W.C., Kral-Pointner J.B., Salzmann M., Assinger A. Measuring and interpreting platelet-leukocyte aggregates. Platelets, 2018, Vol. 29, no. 7, pp. 677-685.; Freedman J.E., Loscalzo J. Platelet-monocyte aggregates: bridging thrombosis and inflammation. Circulation, 2002, Vol. 105, no. 18, pp. 2130-2132.; Gerrits A.J., Frelinger A.L. 3rd, Michelson A.D. Whole blood analysis of leukocyte-platelet aggregates. Curr. Protoc. Cytom., 2016, Vol. 78, pp. 6.15.1-6.15.10.; Granja T., Schad J., Schussel P., Fischer C., Haberle H., Rosenberger P., Straub A. Using six-colour flow cytometry to analyse the activation and interaction of platelets and leukocytes – a new assay suitable for bench and bedside conditions. Thromb. Res., 2015, Vol. 136, no. 4, pp. 786-796.; Harding S.A., Din J.N., Sarma J., Jessop A., Weatherall M., Fox K.A., Newby D.E. Flow cytometric analysis of circulating platelet-monocyte aggregates in whole blood: methodological considerations.Thromb. Haemost., 2007, Vol. 98, no. 2, pp. 451-456.; Hermann A., Rauch B.H., Braun M., Schror K., Weber A.A. Platelet CD40 ligand (CD40L)-subcellular localization, regulation of expression, and inhibition by clopidogrel. Platelets, 2001, Vol. 12, no. 2, pp. 74-82.; Joseph J.E., Harrison P., Mackie I.J., Isenberg D.A., Machin S.J. Increased circulating platelet-leucocyte complexes and platelet activation in patients with antiphospholipid syndrome, systemic lupus erythematosus and rheumatoid arthritis. Br. J. Haematol., 2001, Vol. 115, no. 2, pp. 451-459.; Kullaya V., van der Ven A., Mpagama S., Mmbaga B.T., de Groot P., Kibiki G., de Mast Q. Platelet-monocyte interaction in Mycobacterium tuberculosis infection. Tuberculosis, 2018, Vol. 111, pp. 86-93.; Loguinova M., Pinegina N., Kogan V., Vagida M., Arakelyan A., Shpektor A., Margolis L., Vasilieva E. Monocytes of different subsets in complexes with platelets in patients with myocardial infarction. Thromb. Haemost., 2018, Vol. 118, no. 11, pp. 1969-1981.; Macey M.G., Bevan S., Alam S., Verghese L., Agrawal S., Beski S., Thuraisingham R., MacCallum P.K. Platelet activation and endogenous thrombin potential in pre-eclampsia. Thromb. Res., 2010, Vol. 125, no. 3, pp. e76-e81.; McEver R.P., Selectins: lectins that initiate cell adhesion under flow. Curr. Opin. Cell Biol., 2002, Vol. 14, no. 5, pp. 581-586.; Michelson A.D., Barnard M.R., Krueger L.A., Valeri C.R., Furman M.I. Circulating monocyte-platelet aggregates are a more sensitive marker of in vivo platelet activation than platelet surface P-selectin: studies in baboons, human coronary intervention, and human acute myocardial infarction. Circulation, 2001, Vol. 104, no. 13, pp. 1533-1537.; Passacquale G., Vamadevan P., Pereira L., Hamid C., Corrigall V., Ferro A. Monocyte-platelet interaction induces a pro-inflammatory phenotype in circulating monocytes. PLoS ONE, 2011, Vol. 6, no. 10, e25595. doi:10.1371/journal.pone.0025595.; Shantsila E., Lip G.Y. The role of monocytes in thrombotic disorders. Insights from tissue factor, monocyteplatelet aggregates and novel mechanisms. Thromb. Haemost., 2009, Vol. 102, no. 5, pp. 916-924.; Serebryanaya N.B., Shanin S.N., Fomicheva E.E., Yakutseni P.P. Blood platelets as activators and regulators of inflammatory and immune reactions. Part 2. Thrombocytes as participants of immune reactions. Medical Immunology (Russia), 2019, Vol. 21, no. 1, pp. 9-20. doi:10.15789/1563-0625-2019-1-9-20.; Ziegler-Heitbrock L., Ancuta P., Crowe S., Dalod M., Grau V., Hart D.N., Leenen P.J., Liu Y.J., MacPherson G., Randolph G.J., Scherberich J., Schmitz J., Shortman K., Sozzani S., Strobl H., Zembala M., Austyn J.M., Lutz M.B. Nomenclature of monocytes and dendritic cells in blood. Blood, 2010, Vol. 116, no. 16, pp. e74-e80.; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/2124

Διαθεσιμότητα: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/2124
https://doi.org/10.15789/1563-0625-FCD-2124

View record from BASE

15

Academic Journal

Analysis of the cellular composition of the native auto-transplantation mixture used for plastics of bone tissue defects ; Анализ клеточного состава нативной трансплантационной аутосмеси, используемой для пластики дефектов костной ткани

Συγγραφείς: N. V. Chueshova, I. A. Cheshik, E. A. Nadyrov, V. I. Nikolaev, S. I. Kirilenko, V. V. Rozhin, A. N. Kondrachuk, N. S. Serdyuchenko, Н. В. Чуешова, И. А. Чешик, Э. А. Надыров, В. И. Николаев, С. И. Кириленко, В. В. Рожин, А. Н. Кондрачук, Н. С. Сердюченко

Πηγή: Doklady of the National Academy of Sciences of Belarus; Том 65, № 6 (2021); 715-723 ; Доклады Национальной академии наук Беларуси; Том 65, № 6 (2021); 715-723 ; 2524-2431 ; 1561-8323 ; 10.29235/1561-8323-2021-65-6

Θεματικοί όροι: мультипотентные мезенхимальные стромальные клетки, native bone dust, flow cytometry, apoptosis, immunophenotyping, multipotent mesenchymal stromal cells, нативная трансплантационная аутосмесь, проточная цитометрия, апоптоз, иммунофенотипирование

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://doklady.belnauka.by/jour/article/view/1024/1021; Предеин, Ю. А. Костные и клеточные имплантанты для замещения дефектов кости / Ю. А. Предеин, В. В. Рерих // Современные проблемы науки и образования. – 2016. – № 6. – С. 132.; Результаты трансплантации культуры аутогенных стромальных клеток костного мозга в область краевого дефекта длинных трубчатых костей / Р. В. Деев [и др.] // Травматология и ортопедия России. – 2007. – № 2(44). – С. 57–63.; A novel method for the salvage of bone dust generated by high-speed burrs in spinal surgery / N. Heidari [et al.] // Ann. R. Coll. Surg. Engl. – 2007. – Vol. 89, N 5. – Р. 533–534. https://doi.org/10.1308/rcsann.2007.89.5.533; Histologic evaluation of high speed burr shavings collected during spinal decompression surgery / V. V. Patel [et al.] // Orthopedics. – 2009. – 32. – Vol. 32, N 1. – Р. 23. https://doi.org/10.3928/01477447-20090101-17; Ekanayake J. Use of the novel ANSPACH bone collector for bone autograft in anterior cervical discectomy and cage fusion / J. Ekanayake, A. Shad // Acta Neurochirurgica. – 2009. – Vol. 152, N 4. – P. 651–653. https://doi.org/10.1007/s00701-009-0513-0; Blay, A. Viability of autogenous bone grafts obtained by using bone collectors: histological and microbiological study / A. Blay, S. Tunchel, W. R. Sendyk // Pesqui. Odontol. Bras. – 2003. – Vol. 17, N 3. – P. 234–240. https://doi.org/10.1590/s1517-74912003000300007; Autologous bone graft harvested during implant site preparation: histological study / M. Santagata [et al.] // Plast Aesthet. Res. – 2014. – Vol. 1, N 3. – Р. 94–97. https://doi.org/10.4103/2347-9264.143553; Autografts for spinal fusion: osteogenic potential of laminectomy bone chips and bone shavings collected via high speed drill / C. Eder [et al.] // Eur. Spine J. – 2011. – Vol. 20, N 11. – P. 1791–1795. https://doi.org/10.1007/s00586-011-1736-3; Comparative study between cortical bone grafts versus bone dust for reconstruction of cranial burr holes / V. P. Worm [et al.] // Surg. Neurol. Int. – 2010. – Vol. 1, N 1. – P. 91. https://doi.org/10.4103/2152-7806.74160; Устройство для фильтрации костной стружки / С. И. Кириленко [и др.] // Ортопедия, травматология и протезирование. – 2020. – № 2. – С. 75–79. https://doi.org/10.15674/0030-59872020275-79; Костно-пластические материалы для выполнения спондилодеза / В. В. Рожин [и др.] // Проблемы здоровья и экологии. – 2019. – № 2(60). – С. 13–19.; Mesenchymal stromal/stem cells in regenerative medicine and tissue engineering / R. E. B. Fitzsimmons [et al.] // Stem. Cells International. – 2018. – Vol. 2018. – P. 1–16. https://doi.org/10.1155/2018/8031718; Pittenger, M. F. Mesenchymal stem cells from adult bone marrow / M. F. Pittenger // Mesenchymal stem cells: methods and protocol / eds. D. J. Prockop, D. G. Phinney, B. A. Bunnell. – Humana Press, 2008. – P. 27–44. https://doi.org/10.1007/978-1-60327-169-1_2; Kode, J. Mesenchymal stromal cells and their clinical applications / J. Kode, V. Tanavde // Applications of Flow Cytometry in Stem Cell Research and Tissue Regeneration / ed. A. Krishan, H. Krishnamurthy, S. Totey. – Bangalore, 2010. – Р. 175–188. https://doi.org/10.1002/9780470631119.ch12; Проточная цитометрия в медицине и биологии / А. В. Зурочка [и др.]. – 2-е изд. – Екатеринбург, 2014. – 576 с.; Warnes, G. The multiplexing of assays for the measurement of early stages of apoptosis by polychromatic flow cytometry / G. Warnes // Flow cytometry – Select topics. – London, 2016. – Р. 85–99. https://doi.org/10.5772/60549; Isolation, characterization, differentiation and immunomodulatory capacity of mesenchymal stromal/stem cells from human perirenal adipose tissue / P. C. Baer [et al.] // Cells. – 2019. – Vol. 8, N 11. – Art. 1346. https://doi.org/10.3390/cells8111346; Пулин, А. А. Поверхностные маркеры, характеризующие мультипотентные мезенхимальные стромальные клетки (ММСК) костного мозга человека / А. А. Пулин, И. Н. Сабурина, В. С. Репин // Клеточная трансплантология и тканевая инженерия. – 2008. – Т. 3, № 3. – С. 25–30.; Шахпазян, Н. К. Мезенхимальные стволовые клетки из различных тканей человека: биологические свойства, оценка качества и безопасности для клинического применения / Н. К. Шахпазян, Т. А. Астрелина, М. В. Яковлева // Клеточная трансплантология и тканевая инженерия. – 2012. – Т. 7, № 1. –С. 23–33.; Adult Mesenchymal stem cells and cell surface characterization – A systematic review of the literature / P. Mafi [et al.] // Open Orthopaedics J. – 2011. – Vol. 5, N 1. – Р. 253–260. https://doi.org/10.2174/1874325001105010253; Рылова, Ю. В. Воздействие цисплатина на мультипотентные мезенхимальные стромальные клетки жировой ткани человека при различном уровне кислорода / Ю. В. Рылова, Л. Б. Буравкова, Б. Д. Животовский // Вестн. Рос. акад. мед. наук. – 2016. – Т. 71, № 2. – С. 114–120. https://doi.org/10.15690/vramn614; https://doklady.belnauka.by/jour/article/view/1024

Διαθεσιμότητα: https://doklady.belnauka.by/jour/article/view/1024
https://doi.org/10.29235/1561-8323-2021-65-6-715-723

View record from BASE

16

Academic Journal

Efficiency of human plague vaccination in tuvinian natural plague focus. Message 2: dynamics of immune status indicators after revaccination ; Оценка эффективности вакцинации населения против чумы в тувинском природном очаге. Сообщение 2: динамика показателей иммунного статуса после ревакцинации

Πηγή: Acta Biomedica Scientifica; Том 6, № 5 (2021); 44-56 ; 2587-9596 ; 2541-9420

Θεματικοί όροι: иммунофенотипирование, natural focus, vaccination, blood, immunoglobulin, cytokine, immunophenotyping, природный очаг, вакцинация, кровь, иммуноглобулин, цитокин

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://www.actabiomedica.ru/jour/article/view/3029/2219; Попов Н.В., Ерошенко Г.А., Карнаухов И.Г., Кузнецов А.А., Матросов А.Н., Иванова А.В. и др. Эпидемиологическая и эпизоотическая обстановка по чуме в Российской Федерации и прогноз ее развития на 2020–2025 гг. Проблемы особо опасных инфекций. 2020; (1): 43-50. doi:10.21055/0370-1069-2020-1-43-50; Bertherat E. Plague around the world in 2019. Wkly Epidemiol Rec. 2019; 94(25): 289-292; Кутырев В.В., Попова А.Ю., Ежлова Е.Б., Демина Ю.В., Пакскина Н.Д., Безсмертный В.Е. и др. Обеспечение эпидемиологического благополучия по чуме в условиях обострения эпизоотической обстановки в Прикаспийском песчаном природном очаге в 2014 г. Проблемы особо опасных инфекций. 2015; (4): 22-29.; Попов Н.В., Безсмертный В.Е., Матросов А.Н., Князева Т.В., Кузнецов А.А., Федоров Ю.М. и др. Эпизоотическая активность природных очагов чумы Российской Федерации в 2015 г. и прогноз на 2016 г. Проблемы особо опасных инфекций. 2016; (1): 13-19. doi:10.21055/0370-1069-2016-1-13-19; Попов Н.В., Кузнецов А.А., Матросов А.Н., Корзун В.М., Вержуцкий Д.Б., Вершинин С.А. и др. Эпизоотическая активность природных очагов чумы Российской Федерации в 2008–2017 гг. и прогноз на 2018 г. Проблемы особо опасных инфекций. 2018; (1): 50-55. doi:10.21055/0370-1069-2018-1- 50-55; Балахонов С.В., Вержуцкий Д.Б., Иннокентьева Т.И. Эпидемиологическая оценка современного состояния природных очагов чумы в Сибири. Эпидемиология и вакцинопрофилактика. 2010; 2(51): 34-37.; Холин А.В., Шаракшанов М.Б., Вержуцкий Д.Б., Корзун В.М., Оргилбаяр Л., Ганхуяг Ц. и др. Результаты эпизоотологического обследования приграничной с Россией части Хархира-Тургенского природного очага чумы Монголии в 2019 г. Проблемы особо опасных инфекций. 2020; (2): 129-134. doi:10.21055/0370-1069-2020-2-129-134; Летов Г.С., Абрамова Г.С. Бухмуринская вспышка легочной чумы. Известия Иркутского противочумного института. 1959; (20): 107-110.; Feodorova VA, Sayapina LV, Corbel MJ, Motin VL. Russian vaccines against especially dangerous bacterial pathogens. Emerg Microb Infect. 2014; 3(12): e86. doi:10.1038/emi.2014.82; Зверев В.В., Семенов Б.Ф., Хаитов Р.М. Вакцины и вакцинация: национальное руководство. М.: ГЭОТАР-Медиа; 2011.; Rajerison M, Dartevelle S, Ralafiarisoa LA, Bitam I, Tuyet Dinh Thi Ngoc, Andrianaivoarimanana V, et al. Development and evaluation of two simple, rapid immunochromatographic tests for the detection of Yersinia pestis antibodies in humans and reservoirs. PLoS Negl Trop Dis. 2009; 3(4): e421. doi:10.1371/journal.pntd.0000421; Levy Y, Flashner Y, Tidhar A, Zauberman A, Aftalion M, Lazar S, et al. T cells play an essential role in anti-F1 mediated rapid protection against bubonic plague. Vaccine. 2011; 29(40): 6866-6873. doi:10.1016/j.vaccine.2011.07.059; Philipovskiy AV, Smiley ST. Vaccination with live Yersinia pestis primes CD4 and CD8 T cells that synergistically protect against lethal pulmonary Y. pestis infection. Infect Immun. 2007; 75(2): 878-885. doi:10.1128/IAI.01529-06; Брико Н.И. Оценка качества и эффективности иммунопрофилактики. Лечащий врач. 2012; (10): 57-64.; Корытов К.М., Войткова В.В., Дубровина В.И., Носков А.К., Мищенко А.И., Михайлов Е.П. и др. Оценка иммунологической эффективности вакцинации населения против чумы в Горно-Алтайском высокогорном природном очаге. Эпидемиология и вакцинопрофилактика. 2018; 17(6): 87-97. doi:10.31631/2073-3046-2018-17-87-97; Корытов К.М., Войткова В.В., Дубровина В.И., Пятидесятникова А.Б., Носков А.К., Глушков Э.А. и др. Оценка эффективности вакцинации населения против чумы в Тувинском природном очаге. Acta biomedica scientifica. 2019; 4(5): 31-37. doi:10.29413/ABS.2019-4.5.5; Бугоркова С.А., Щуковская Т.Н., Микшис Н.И., Клюева С.Н., Кудрявцева О.М., Кравцов А.Л. и др. Комплексное иммунологическое исследование вакцинированных живой чумной вакциной лиц, проживающих на территории Прикаспийского песчаного очага чумы в Республике Калмыкия. Эпидемиология и вакцинопрофилактика. 2018; 3(100): 38-49. doi:10.31631/2073-3046-2018-17-3-38-50; https://www.actabiomedica.ru/jour/article/view/3029

Διαθεσιμότητα: https://www.actabiomedica.ru/jour/article/view/3029
https://doi.org/10.29413/ABS.2021-6.5.5

View record from BASE

17

Academic Journal

Intratumoural Effector Cell Subpopulations in Breast Cancer: a Literature Review and Own Data Report

Συγγραφείς: D. A. Ryabchikov, S. V. Chulkova, F. A. Shamilov, N. V. Chanturiya, S. D. Zheltikov, N. N. Tupitsyn

Πηγή: Креативная хирургия и онкология, Vol 11, Iss 4, Pp 328-336 (2021)

Θεματικοί όροι: рак молочной железы, молекулярные подтипы, опухоль-инфильтрирующие лимфоциты, эффекторные лимфоциты, иммунофлюоресцентный анализ, иммунофенотипирование, Surgery, RD1-811, Neoplasms. Tumors. Oncology. Including cancer and carcinogens, RC254-282

Relation: https://www.surgonco.ru/jour/article/view/637; https://doaj.org/toc/2307-0501; https://doaj.org/toc/2076-3093; https://doaj.org/article/43ec252417d44dcba930f228e3da8e29

Διαθεσιμότητα: https://doi.org/10.24060/2076-3093-2021-11-4-328-336
https://doaj.org/article/43ec252417d44dcba930f228e3da8e29

View record from BASE

18

Academic Journal

Identification of T and В lymphocytes in chickens and their subpopulations byflowcytofluorometric analysis using flow cytometer BD FACSVerse™

Συγγραφείς: M. A. Volkova, Ir. A. Chvala

Πηγή: Ветеринария сегодня, Vol 0, Iss 2, Pp 37-43 (2018)

Θεματικοί όροι: проточная цитофлуориметрия, иммунофенотипирование лимфоцитов кур, Veterinary medicine, SF600-1100

Περιγραφή αρχείου: electronic resource

Relation: https://veterinary.arriah.ru/jour/article/view/193; https://doaj.org/toc/2304-196X; https://doaj.org/toc/2658-6959

Σύνδεσμος πρόσβασης: https://doaj.org/article/96ef05b3e001428eb9a444b214c15912

View record in DOAJ Full Text Finder

19

Academic Journal

ИССЛЕДОВАНИЕ КЛОНА КЛЕТОК С ДЕФЕКТОМ НА ПОВЕРХНОСТИ МЕМБРАНЫ ЗАЯКОРЕННЫХ БЕЛКОВ GPI-AP ПРИ ПАРОКСИЗМАЛЬНОЙ НОЧНОЙ ГЕМОГЛОБИНУРИИ

Συγγραφείς: Орумбаева, У.Р., Наурызбаева, Г.

Θεματικοί όροι: пароксизмальная ночная гемоглобинурия, проточная цитометрия, иммунофенотипирование, Research Subject Categories::MEDICINE

Relation: http://nur.nu.edu.kz/handle/123456789/5105

Διαθεσιμότητα: http://nur.nu.edu.kz/handle/123456789/5105

View record from BASE

20

Academic Journal

Subsets of cerebrospinal fluid lymphocytes in acute pediatric respiratory viral infection with meningeal syndrome ; Субпопуляционный состав лимфоцитов цереброспинальной жидкости детей с острой респираторной вирусной инфекцией, протекающей с синдромом менингизма

Συγγραφείς: A. A. Zhirkov, L. A. Alekseeva, G. F. Zheleznikova, N. E. Monakhova, T. V. Bessonova, А. А. Жирков, Л. А. Алексеева, Г. Ф. Железникова, Н. Е. Монахова, Т. В. Бессонова

Συνεισφορές: Работа выполнена при частичной поддержке гранта Комитета по науке и высшей школе правительства Санкт-Петербурга в 2017 году

Πηγή: Medical Immunology (Russia); Том 21, № 6 (2019); 1033-1042 ; Медицинская иммунология; Том 21, № 6 (2019); 1033-1042 ; 2313-741X ; 1563-0625 ; 10.15789/1563-0625-2019-6

Θεματικοί όροι: дети, immunophenotyping, lymphocytes, cerebrospinal fluid, respiratory viral infections, meningism, children, иммунофенотипирование, лимфоциты, цереброспинальная жидкость, ОРВИ, менингизм

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/1753/1218; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/1753/4847; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/1753/4848; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/1753/4849; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/1753/4850; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/1753/4851; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/1753/4852; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/1753/4853; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/1753/4854; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/1753/4855; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/1753/4856; Алексеева Л.А., Железникова Г.Ф., Жирков А.А., Скрипченко Н.В., Вильниц А.А., Монахова Н.Е., Бессонова Т.В. Субпопуляции лимфоцитов и цитокины в крови и цереброспинальной жидкости при вирусных и бактериальных менингитах у детей // Инфекция и иммунитет, 2016. Т. 6, № 1. С. 33-44. doi:10.15789/2220-7619-2016-1-33-44.; Балмасова И.П., Венгеров Ю.Я., Раздобарина С.Е, Нагибина М.В. Иммунопатогенетические особенности бактериальных гнойных менингитов // Эпидемиология и инфекционные болезни, 2014. Т. 19, № 5. С. 17-22.; Скрипченко Н.В., Алексеева Л.А., Железникова Г.Ф. Ликвор и его клиническое значение при инфекционных заболеваниях нервной системы // Педиатр, 2011. Т. 2, № 3. С. 21-31.; Хайдуков С.В., Байдун Л.В. Современные подходы к оценке клеточной составляющей иммунного статуса // Медицинский алфавит, 2015. Т. 2, № 8. С. 44-51.; Alvermann S., Hennig C., Olaf S., Heinz W., Stangel M. Immunophenotyping of cerebrospinal fluid cells in multiple sclerosis in search of biomarkers. JAMA Neurology, 2014, Vol. 71, no. 7, pp. 905-912.; Campbell J.P., Guy K., Cosgrove C., Florida-James G.D., Simpson R.J. Total lymphocyte CD8 expression is not a reliable marker of cytotoxic T-cell populations in human peripheral blood following an acute bout of high-intensity exercise. Brain. Behav. Immun., 2008, Vol. 22, no. 3, pp. 375-380.; d’Acquisto F., Crompton T. CD3+CD4-CD8- (double negative) T cells: saviours or villains of the immune response? Biochem. Pharmacol., 2011, Vol. 82, no. 4, pp. 333-340.; Das G., Augustine M. M., Das J., Bottomly K., Ray P., Ray A. An important regulatory role for CD4+CD8aa T cells in the intestinal epithelial layer in the prevention of inflammatory bowel disease. PNAS, 2003, Vol. 100, no. 9, pp. 5324-5329.; de Graaf M.T., Smitt P.A., Luitwieler R.L., van Velzen C., van den Broek P.D., Kraan J., Gratama J.W. Central memory CD4+T cells dominate the normal cerebrospinal fluid. Cytometry Part B (Clinical Cytometry), 2011, Vol. 80, no. 1, pp. 43-50.; Eller M.A., Goonetilleke N., Tassaneetrithep B., Eller L.A., Costanzo C., Johnson S., Betts M.R., Krebs S.J., Slike B.M., Nitayaphan S., Rono K., Tovanabutra S., Maganga L., Kibuuka H., Jagodzinski L., Peel S., Rolland M., Marovich M.A., Kim J.H., Michael N.L., Robb M.L., Streeck H. Expansion of inefficient HIV-specific CD8+ T cells during acute infection. J. Virol., 2016, Vol. 90, no. 8, pp. 4005-4016.; Ichiyama T., Kajimoto M., Matsushige T., Shiraishi M., Suzuki Y., Furukawa S. Mononuclear cell subpopulations in CSF and blood of children with bacterial meningitis. J. Infect., 2009, Vol. 58, no. 1, pp. 28-31.; Kitchen S.G., Jones N.R., LaForge S., Whitmire J.K., Vu B.A., Galic Z., Brooks D.G., Brown S.J., Kitchen C.M., Zack J.A. CD4 on CD8+ T cells directly enhances effector function and is a target for HIV infection. PNAS, 2004, Vol. 101, no. 23, pp. 8727-8732.; Subira D., Castanon S., Aceituno E., Hernandez J., Jimenez-garofano C., Jimenez A., Jimenez A.M., Roman A., Orfao A. Flow cytometric analysis of cerebrospinal fluid samples and its usefulness in routine clinical practice. Am. J. Clin. Pathol., 2002, Vol. 117, no. 6, pp. 952-958.; Svenningsson A., Andersen O., Edsbagge M., Stemme S. Lymphocyte phenotype and subset distribution in normal cerebrospinal fluid. J. Neuroimmunol., 1995, Vol. 63, no 1, pp. 39-46.; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/1753

Διαθεσιμότητα: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/1753
https://doi.org/10.15789/1563-0625-2019-6-1033-1042

View record from BASE

Εργαλεία αναζήτησης:

Περιορισμός αποτελεσμάτων

Μορφή

Θέμα

Εκδότης

Τόπος έκδοσης

Πηγή

Συλλογή

Έτος έκδοσης