Субпопуляционный состав T-хелперов у больных острыми лейкозами после трансплантации аллогенных гемопоэтических стволовых клеток

Πηγή: Клиническая онкогематология, Vol 16, Iss 2 (2024)

Θεματικοί όροι: субпопуляции лимфоцитов, Т-клетки, Neoplasms. Tumors. Oncology. Including cancer and carcinogens, доноры крови, проточная цитометрия, Т-хелперы, RC254-282, 3. Good health

Σύνδεσμος πρόσβασης: https://doaj.org/article/27c19fcab186433f9a190bae734a7f4c

Neuroimmunoendocrine dysfunctions in case of bacterial purulent meningitis in children ; Нейроиммуноэндокринные дисфункции при бактериальном гнойном менингите у детей

Συγγραφείς: L. A. Alekseeva, T. V. Bessonova, A. A. Zhirkov, A. A. Vilnits, G. F. Zheleznikova, K. V. Zhdanov, Л. А. Алексеева, Т. В. Бессонова, А. А. Жирков, А. A. Вильниц, Г. Ф. Железникова, К. В. Жданов

Πηγή: Journal Infectology; Том 17, № 1 (2025); 46-52 ; Журнал инфектологии; Том 17, № 1 (2025); 46-52 ; 2072-6732

Θεματικοί όροι: дети, S-100 protein, neurospecific enolase, hormones, cytokines, subpopulations of lymphocytes, immunoglobulins, children, белок S-100, нейронспецифическая енолаза, гормоны, цитокины, субпопуляции лимфоцитов, иммуноглобулины

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://journal.niidi.ru/jofin/article/view/1745/1193; Жданов К.В., Иванов К.С., Захаренко С.М. и др. Менингококковая инфекция: ранняя клиническая диагностика и неотложная помощь. // Военно-медицинский журнал. – 2015. – Т. 336, № 1. – С. 29-35. https://www.elibrary.ru/item.asp?id=26169005.; Вильниц А.А., Скрипченко Н.В., Горелик Е.Ю. и др. Бактериальные гнойные менингиты у детей: есть ли свет в конце туннеля? // Детские инфекции. – 2021. – Т. 20, № 4. – С. 28–34. DOI:10.22627/2072-8107-2021-20-4-28-34.; Скрипченко Н.В., Широкова А.С. Нейронспецифическая енолаза и белок S100 – биомаркеры повреждений головного мозга. Состояние вопроса и клиническое применение // Нейрохирургия и неврология детского возраста. – 2016. – Т. 50, № 4. – С. 16-25. https://elibrary.ru/item.asp?id=29423702.; Sokhan A., Zots Y., Gavrylov A.et al. Levels of neurospecific markers in cerebrospinal fluid of adult patients with bacterial meningitis. // Georgian Med News. – 2017. – Vol. 270. – P. 65-69. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/28972486/.; Алексеева Л.А., Скрипченко Н.В., Бессонова Т.В., Монахова Н.Е., Григорьев С.Г. Маркеры повреждения нейронов и глии в цереброспинальной жидкости при менингитах у детей // Клиническая лабораторная диагностика. – 2017. – Т. 62, № 4. – С. 204 – 210. DOI:10.18821/0869-2084-2017-62-4-204-210.; Малюгина Т.Н., Захарова И.С. Изучение уровня адренокортикотропного гормона и кортизола у детей с нейроинфекциями // Журнал инфектологии. – 2016. – Т.8, №4. – С. 50–57. DOI:10.22625/2072-6732-2016-8-4-50-57.; Козько В.Н., Зоц Я.В., Соломенник А.О. и др. Состояние гормонального профиля в сыворотке крови у больных с острыми бактериальными менингитами. // Медицинские новости. – 2018. – №11. – С. 87–90. – https://elibrary.ru/item.asp?id=36517286.; Алексеева Л.А., Бессонова Т.В., Макаренкова Е.В., Жирков А.А. и др. Кортизол и лабораторные показатели системного воспаления при бактериальных гнойных менингитах и вирусных энцефалитах у детей // Педиатр. – 2020. – Т. 11, № 4. – С. 21–28. – DOI:10.17816/PED11421-28.; Скрипченко Н.В., Железникова Г.Ф., Алексеева Л.А., Макаренкова Е.В., Бессонова Т.В. Гормоны и цитокины как биомаркеры тяжелых инфекций у детей // Инфекционные болезни. – 2022. – Т. 20. – № 1. – С. 107–119. – DOI:10.20953/1729-9225-2022-1-107-119.; Балмасова И.П., Венгеров Ю.Я., Раздобарина С.Е., Нагибина М.В. Иммунопатогенетические особенности бактериальных гнойных менингитов // Эпидемиология и инфекционные болезни. – 2014. – Т. 19, № 5. – С. 4–9. – https://www.elibrary.ru/item.asp?id=22491030.; Алексеева Л.А., Мазаева Е.М., Скрипченко Н.В., Монахова Н.Е., Бессонова Т.В. Цитокины цереброспинальной жидкости при менингитах у детей // Журнал инфектологии. – 2014. – Т. 6, № 1. – С. 54–59.; Perdomo-Celis F., Torres M.A., Ostos H., Gutierrez-Achury J. et. al. Patterns of Local and Systemic Cytokines in Bacterial Meningitis and its Relation with Severity and Long-Term Sequelae. // Biomarker insights. – 2015. – №10. – P. 125–131. DOI:10.4137/BMI.S35005.; Жирков А.А., Алексеева Л.А., Железникова Г.Ф., Скрипченко Н.В., Монахова Н.Е., Бессонова Т.В. Основные и малые субпопуляции лимфоцитов крови и цереброспинальной жидкости при менингитах у детей // Инфекция и иммунитет. – 2021. – Т. 11, №1. – С. 111–122. – DOI:10.15789/2220-7619-MAM-1255.; Caragheorgheopol R., Țucureanu C., Lazăr V., Caraș I. Serum cytokine and chemokine profiles of patients with confirmed bacterial and viral meningitis. Revista Romana de Medicina de Laborator. – 2023. – Vol. 31. – №4. – Р.315-324. DOI:10.2478/rrlm-2023-0023.; Руководство по инфекционным болезням / Е.С. Белозеров, Ю.И. Буланьков, В.В. Васильев [и др.]. – Кн. 2. – 4-е изд., перераб. и доп. – СПб.: ООО «Издательство Фолиант», 2011. – 743 с. – ISBN 978-5-93929-219-1.; Руководство по инфекционным болезням / Е.С. Белозеров, Ю.И. Буланьков, В.В. Васильев [и др.]. – Кн. 1. – 4-е изд., перераб. и доп. – СПб.: ООО «Издательство Фолиант», 2011. – 660 с. – ISBN 978-5-93929-218-4.; https://journal.niidi.ru/jofin/article/view/1745

Διαθεσιμότητα: https://journal.niidi.ru/jofin/article/view/1745
https://doi.org/10.22625/2072-6732-2025-17-1-46-52

Реактивация герпесвирусов у пациентов с лимфомами во время и после выполнения трансплантации аутологичных гемопоэтических стволовых клеток

Πηγή: Клиническая онкогематология, Vol 15, Iss 3 (2022)

Θεματικοί όροι: герпесвирусные инфекции, 03 medical and health sciences, субпопуляции лимфоцитов, 0302 clinical medicine, Neoplasms. Tumors. Oncology. Including cancer and carcinogens, трансплантация, лимфома, RC254-282, 3. Good health

Σύνδεσμος πρόσβασης: https://doaj.org/article/ea477e82a6d94c62b97de8308098f836

Analysis of the lymphoid tumor microenvironment (TILs) in breast cancer by flow cytometry ; Оценка лимфоидного микроокружения опухоли (TILs) при раке молочной железы методом проточной цитометрии

Συγγραφείς: T. N. Zabotina, A. A. Borunova, A. I. Сhertkova, I. B. Shoua, Z. G. Kadagidze, Т. Н. Заботина, А. А. Борунова, А. И. Черткова, И. Б. Шоуа, З. Г. Кадагидзе

Πηγή: Medical Immunology (Russia); Том 26, № 4 (2024); 819-826 ; Медицинская иммунология; Том 26, № 4 (2024); 819-826 ; 2313-741X ; 1563-0625

Θεματικοί όροι: иммунофенотип, lymphocyte subpopulations, tumor microenvironment, TILs, breast cancer, immunophenotype, субпопуляции лимфоцитов, микроокружение опухоли, рак молочной железы

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/3055/1982; Состояние онкологической помощи населению России в 2022 году / Под ред. А.Д. Каприна, В.В. Старинского, А.О. Шахзадовой. М.: МНИОИ им. П.А. Герцена – филиал ФГБУ «НМИЦ радиологии» Минздрава России, 2022. 239 с.; Blok E.J., Engels C.C., Dekker-Ensink G. Exploration of tumour-infiltrating lymphocytes as a predictive biomarker for adjuvant endocrine therapy in early breast cancer. Breast Cancer Res. Treat., 2018, Vol. 171, pp. 65-74.; Goff S.L., Danforth D.N. The role of immune cells in breast tissue and immunotherapy for the treatment of breast cancer. Clin. Breast Cancer, 2021, Vol. 21, no. 1, pp. e63-e73.; Lan H.R., Du W.L., Liu Y., Mao C.S., Jin K.T., Yang X. Role of immune regulatory cells in breast cancer: Foe or friend? Int. Immunopharmacol., 2021, Vol. 96, 107627. doi:10.1016/j.intimp.2021.107627.; Levy E.M., Roberti M.P., Mordoh J. Natural killer cells in human cancer: from biological functions to clinical applications. J. Biomed. Biotechnol., 2011, Vol. 2011, 676198. doi:10.1155/2011/676198.; Lundgren C., Bendahl P.O., Ekholm M. Tumour-infiltrating lymphocytes as a prognostic and tamoxifen predictive marker in premenopausal breast cancer: data from a randomised trial with long-term follow-up. Breast Cancer Res., 2020, Vol. 22, 140. doi:10.1186/s13058-020-01364-w.; Usman A.N., Ahmad M., Sinrang A.W., Natsir S., Takko A.B., Ariyandy A., Ilhamuddin I., Eragradini A.R., Hasan I.I., Hasyim S. Regulatory T cells on prognosis of breast cancer. Breast Dis., 2023, Vol. 42, no. 1, pp. 213-218. doi:10.3233/BD-239002.; Virassamy B., Caramia F., Savas P., Sant S., Wang J., Christo S.N., Byrne A., Clarke K., Brown E., Teo Z.L., von Scheidt B., Freestone D., Gandolfo L.C., Weber K., Teply-Szymanski J., Li R., Luen S.J., Denkert C., Loibl S., Lucas O., Swanton C., Speed T.P., Darcy P.K., Neeson P.J., Mackay L.K., Loi S. Intratumoral CD8(+) T cells with a tissue-resident memory phenotype mediate local immunity and immune checkpoint responses in breast cancer. Cancer Cell, 2023, Vol. 41, no. 3, pp. 585-601.; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/3055

Διαθεσιμότητα: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/3055
https://doi.org/10.15789/1563-0625-AOT-16855

Визначення рівня субпопуляцій лімфоцитів периферичної крові для діагностики хронічної реакції відторгнення ниркових алотрансплантатів

Συγγραφείς: Zohrabyan, R.O., Shelest, V.V., Kubashko, A.V.

Πηγή: Počki, Vol 6, Iss 4, Pp 200-205 (2017)
KIDNEYS; Том 6, № 4 (2017); 200-205
Почки-Počki; Том 6, № 4 (2017); 200-205
Нирки-Počki; Том 6, № 4 (2017); 200-205

Θεματικοί όροι: 0301 basic medicine, 03 medical and health sciences, 0302 clinical medicine, почечный аллотрансплантат, субпопуляции лимфоцитов, хроническая реакция отторжения, нирковий алотрансплантат, субпопуляції лімфоцитів, хронічна реакція відторгнення, renal allograft, lymphocyte subpopulations, chronic rejection, RC870-923, Diseases of the genitourinary system. Urology, 3. Good health

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Σύνδεσμος πρόσβασης: http://kidneys.zaslavsky.com.ua/article/download/114057/109535
https://doaj.org/article/5f18e33ee67d4b118dad7a6594333cc1
http://kidneys.zaslavsky.com.ua/article/view/114057
http://kidneys.zaslavsky.com.ua/article/download/114057/109535
https://core.ac.uk/display/127552208
http://kidneys.zaslavsky.com.ua/article/view/114057

Субпопуляционный состав иммунокомпетентных клеток периферической крови при В-клеточном хроническом лимфолейкозе/лимфоме из малых лимфоцитов

Συγγραφείς: T.V. Konstantinova, T.Yu. Mushkarina, E.G. Kuzmina, N. A. Falaleeva, A.Yu. Terekhova, Svetlana Valer’evna Zatsarenko, S.V. Shakhtarina, L. Yu. Grivtsova

Πηγή: Клиническая онкогематология, Vol 13, Iss 4 (2020)

Θεματικοί όροι: 0301 basic medicine, 03 medical and health sciences, 0302 clinical medicine, хронический лимфоцитарный лейкоз/лимфома из малых лимфоцитов, Neoplasms. Tumors. Oncology. Including cancer and carcinogens, клон опухолевых В-клеток, субпопуляции лимфоцитов периферической крови, проточная цитометрия, RC254-282, 3. Good health

Σύνδεσμος πρόσβασης: https://doaj.org/article/4f63cdc08dcc4074a4b9c25437529f5d

Prediction and Diagnostics of Burn Sepsis on the Base of Subpopulations of Lymphocytes and Monocytes

Πηγή: Хирургия. Восточная Европа. :133-143

Θεματικοί όροι: sepsis, 03 medical and health sciences, 0302 clinical medicine, сепсис, subpopulations of lymphocytes and monocytes, CD-маркеры, ожоговая болезнь, субпопуляции лимфоцитов и моноцитов, CD markers, 3. Good health, burn disease

Clinical and immunological characteristics of children with primary hypogammaglobulinemiae

Συγγραφείς: T. Marunchyn, A. Volokha

Πηγή: Modern Pediatrics. Ukraine; № 2(106) (2020): Modern pediatrics. Ukraine; 25-32
Современная педиатрия. Украина; № 2(106) (2020): Современная педиатрия. Украина; 25-32
Сучасна педіатрія. Україна; № 2(106) (2020): Сучасна педіатрія. Україна; 25-32

Θεματικοί όροι: первинна гіпогаммаглобулінемія, діти, бактеріальні інфекції, хронічний бронхіт, сироваткові імуноглобуліни, субпопуляції лімфоцитів, бронхоектази, первичная гипогаммаглобулинемия, дети, бактериальные инфекции, хронический бронхит, сывороточные иммуноглобулины, субпопуляции лимфоцитов, бронхоэктазы, 16. Peace & justice, primary hypohammaglobulinemia, children, bacterial infections, chronic bronchitis, serum immunoglobulins, subpopulations of lymphocytes, bronchiectasis, 3. Good health

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Σύνδεσμος πρόσβασης: https://med-expert.com.ua/journals/wp-content/uploads/2020/05/07.pdf
http://mpu.med-expert.com.ua/article/view/SP.2020.106.25

Vitamin D status and features of the immune status in women with autoimmune thyroiditis in the postmenopausal period

Συγγραφείς: Goncharova, O. A., Arkhipkina, T. L., Bondarenko, V. О., Lyubimova, L. P.

Πηγή: Clinical Endocrinology and Endocrine Surgery. Клінічна ендокринологія та ендокринна хірургія; № 1 (2020); 51-56
Clinical Endocrinology and Endocrine Surgery; № 1 (2020); 51-56
Clinical Endocrinology and Endocrine Surgery. Клиническая эндокринология и эндокринная хирургия; № 1 (2020); 51-56

Θεματικοί όροι: аутоиммунный тиреоидит, витамин D, субпопуляции лимфоцитов, постменопау­зальный и репродуктивный периоды, autoimmune thyroiditis, vitamin D, subpopulations of lymphocytes, postmenopausal and reproductive period, автоімунний тиреоїдит, вітамін D, субпопуляції лімфоцитів, постменопаузальний і репродуктивний періоди, 616.441-002-097]:[616.391:577.162.1]-055.2-053.87, 3. Good health

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Σύνδεσμος πρόσβασης: http://jcees.endocenter.kiev.ua/article/download/199617/199816
http://jcees.endocenter.kiev.ua/article/view/199617

Может ли организм излечить себя от рака? Основные звенья иммунной системы и их роль в противоопухолевой защите

Συγγραφείς: Т. Н. Заботина, А. И. Черткова, А. А. Борунова, И. Б. Шоуа, З. Г. Кадагидзе

Πηγή: Malignant tumours; Том 13, № 3s1 (2023); 100-103 ; Злокачественные опухоли; Том 13, № 3s1 (2023); 100-103 ; 2587-6813 ; 2224-5057

Θεματικοί όροι: субпопуляции лимфоцитов, микроокружение опухоли

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://www.malignanttumors.org/jour/article/view/1192/829; Dunn GP, Old LJ, Schreiber RD. The immunobiology of cancer immunosurveillance and immunoediting. Immunity. 2004 Aug;21(2):137–48. doi:10.1016/j.immuni.2004.07.017.; Dunn GP, Old LJ, Schreiber RD. The three Es of cancer immunoediting. Annu Rev Immunol. 2004;22:329–60. doi:10.1146/annurev.immunol.22.012703.104803.; Corthay A. Does the immune system naturally protect against cancer? Front Immunol. 2014 May 12;5:197. doi:10.3389/fimmu.2014.00197. eCollection 2014.; Everson, T. C. & Cole, W. H. (1966) Spontaneous Regression of Cancer: Philadelphia, PA: Saunders W. B.; Papac RJ. Spontaneous regression of cancer. Cancer Treat Rev. 1996 Nov;22(6):395–423. doi:10.1016/s0305–7372(96)90023–7.; Hoption Cann SA, van Netten JP, van Netten C, Glover DW. Spontaneous regression: a hidden treasure buried in time. Med Hypotheses. 2002 Feb;58(2):115–9. doi:10.1054/mehy.2001.1469.; Shuttleworth PW, Ullah S, Scott M, Sabri S, Solkar M. Complete Spontaneous Regression of Colorectal Cancer: A Report of Two Cases. Cureus. 2023 May 17;15(5):e39128. doi:10.7759/cureus.39128. eCollection 2023 May.; Carlson RD, Flickinger JC Jr, Snook AE. Talkin’ Toxins: From Coley’s to Modern Cancer Immunotherapy. Toxins (Basel). 2020 Apr 9;12(4):241. doi:10.3390/toxins12040241; Minacapelli CD, Leuszkiewicz P, Patel A, Catalano C, Abdelsayed G, Lalos A et al. The Spontaneous Regression of Primary Gastrointestinal Malignancies: An Observational Review. Cureus. 2022 Dec 26;14(12):e32970. doi:10.7759/cureus.32970. eCollection 2022 Dec.; Кадагидзе З.Г., Черткова Иммунная А. И. система и рак. Практическая онкология. 2016; 17(2):62–73.; St Paul M, Ohashi PS. The Roles of CD8+ T Cell Subsets in Antitumor Immunity. Trends Cell Biol. 2020 Sep;30(9):695–704. doi:10.1016/j.tcb.2020.06.003. Epub 2020 Jul 2.; Yu Y, Ma X, Gong R, Zhu J, Wei L, Yao J. Recent advances in CD8+ regulatory T cell research. Oncol Lett. 2018 Jun;15(6):8187–8194. doi:10.3892/ol.2018.8378. Epub 2018 Mar 29.; Yu D, Ye L.A Portrait of CXCR5+ Follicular Cytotoxic CD8+ T cells. Trends Immunol. 2018 Dec;39(12):965–979. doi:10.1016/j.it.2018.10.002. Epub 2018 Oct 28.; Tokunaga R, Naseem M, Lo JH, Battaglin F, Soni S, Puccini A, B cell and B cell-related pathways for novel cancer treatments. Cancer Treat Rev. 2019 Feb;73:10–19. doi:10.1016/j.ctrv.2018.12.001. Epub 2018 Dec 3.; Zander R, Schauder D, Xin G, Nguyen C, Wu X, Zajac A, Cui W. CD4+ T Cell Help Is Required for the Formation of a Cytolytic CD8+ T Cell Subset that Protects against Chronic Infection and Cancer. Immunity. 2019 Dec 17;51(6):1028–1042.e4. doi:10.1016/j.immuni.2019.10.009. Epub 2019 Dec 3.; Tanaka A, Sakaguchi S Regulatory T cells in cancer immunotherapy. Cell Res. 2017 Jan;27(1):109–118. doi:10.1038/cr.2016.151. Epub 2016 Dec 20.; Chiossone L, Dumas PY, Vienne M, Vivier E. Natural killer cells and other innate lymphoid cells in cancer. Nat Rev Immunol. 2018 Nov;18(11):671–688. doi:10.1038/s41577–018–0061-z.; Li K, Shi H, Zhang B, Ou X, Ma Q, Chen Y Myeloid-derived suppressor cells as immunosuppressive regulators and therapeutic targets in cancer. Signal Transduct Target Ther. 2021 Oct 7;6(1):362. doi:10.1038/s41392–021–00670–9.; https://www.malignanttumors.org/jour/article/view/1192

Διαθεσιμότητα: https://www.malignanttumors.org/jour/article/view/1192
https://doi.org/10.18027/2224-5057-2023-13-3s1-100-103

Features of lymphocyte subset composition in neonates born to mothers suffered from COVID-19 at different stages of pregnancy ; Особенности субпопуляционного состава лимфоцитов новорожденных детей, рожденных у матерей, перенесших COVID-19 на разных сроках беременности

Συγγραφείς: Inviyaeva E.V., Kosolapova J.A., Krechetova L.V., Vtorushina V.V., Makieva M.I., Zubkov V.V.

Συνεισφορές: 1

Πηγή: Russian Journal of Infection and Immunity; Vol 13, No 1 (2023); 46-54 ; Инфекция и иммунитет; Vol 13, No 1 (2023); 46-54 ; 2313-7398 ; 2220-7619

Θεματικοί όροι: subpopulations of lymphocytes, NK-cells, newborns, pregnancy, SARS-CoV-2, COVID-19, субпопуляции лимфоцитов, NK-клетки, новорожденные, беременность

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://iimmun.ru/iimm/article/view/2098/1659; https://iimmun.ru/iimm/article/view/2098/1682; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/2098/9336; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/2098/9337; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/2098/9338; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/2098/9339; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/2098/9340; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/2098/9341; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/2098/9342; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/2098/9343; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/2098/9443; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/2098/9444; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/2098/9445; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/2098/9448; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/2098/43150; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/2098/61997; https://iimmun.ru/iimm/article/view/2098

Διαθεσιμότητα: https://iimmun.ru/iimm/article/view/2098
https://doi.org/10.15789/2220-7619-FOL-2098

Покозатели иммуный системы при хроническом гематогенном остеомиелите у детей

Συγγραφείς: Анвар Комилович Рахимов

Πηγή: Science and Education, Vol 4, Iss 4, Pp 83-93 (2023)

Θεματικοί όροι: гематогенный остеомиелит, субпопуляции лимфоцитов, фагоцитоз, кислород, хронический остеомиелит, Science (General), Q1-390, Education (General), L7-991

Relation: https://openscience.uz/index.php/sciedu/article/view/5491; https://doaj.org/toc/2181-0842; https://doaj.org/article/c72d2573085241f4b6ea1867025705a6

Διαθεσιμότητα: https://doaj.org/article/c72d2573085241f4b6ea1867025705a6

Клинико-иммунологическая характеристика детей с первичными гипогаммаглобулинемиями

Συγγραφείς: T. Marunchyn, A. Volokha

Πηγή: Сучасна педіатрія: Україна, Iss 2(106), Pp 25-32 (2020)

Θεματικοί όροι: первичная гипогаммаглобулинемия, дети, бактериальные инфекции, хронический бронхит, сывороточные иммуноглобулины, субпопуляции лимфоцитов, бронхоэктазы, Pediatrics, RJ1-570

Περιγραφή αρχείου: electronic resource

Relation: http://mpu.med-expert.com.ua/article/view/205594; https://doaj.org/toc/2663-7553; https://doaj.org/toc/2706-6134

Σύνδεσμος πρόσβασης: https://doaj.org/article/13155e03196540eaa26ce44f35355717

Immunohistochemical study of uveal melanoma and its cellular microenvironment ; Иммуногистохимическое исследование увеальной меланомы и ее клеточного микроокружения

Συγγραφείς: Saakyan S.V., Katargina L.A., Myakoshina E.B., Zakharova G.P., Khoroshilova–Maslova I.P., Maibogin A.M.

Πηγή: Advances in Molecular Oncology; Vol 9, No 2 (2022); 97-104 ; Успехи молекулярной онкологии; Vol 9, No 2 (2022); 97-104 ; 2413-3787 ; 2313-805X

Θεματικοί όροι: uveal melanoma, immunohistochemical study, lymphocyte subpopulations, macrophage antigens, proliferation index, увеальная меланома, иммуногистохимическое исследование, субпопуляции лимфоцитов, антигены макрофагов, индекс пролиферации

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://umo.abvpress.ru/jour/article/view/443/265; https://umo.abvpress.ru/jour/article/view/443

Διαθεσιμότητα: https://umo.abvpress.ru/jour/article/view/443
https://doi.org/10.17650/2313-805X-2022-9-2-97-104

Quantitative and qualitative composition of lymphocyte populations and subpopulations in patients with varying severity of a new coronavirus infection ; Количественный и качественный состав популяций и субпопуляций лимфоцитов у перенесших новую коронавирусную инфекцию разной степени тяжести

Συγγραφείς: Ivanova I.A., Trufanova A.A., Filippenko A.V., Omelchenko N.D., Noskov A.K., Chemisova O.S.

Συνεισφορές: 1

Πηγή: Russian Journal of Infection and Immunity; Vol 12, No 3 (2022); 505-510 ; Инфекция и иммунитет; Vol 12, No 3 (2022); 505-510 ; 2313-7398 ; 2220-7619

Θεματικοί όροι: COVID-19, populations and subpopulations of lymphocytes, T-lymphocytes, cytotoxic lymphocytes, natural killers, популяции и субпопуляции лимфоцитов, Т-лимфоциты, цитотоксические лимфоциты, натуральные киллеры

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://iimmun.ru/iimm/article/view/1818/1451; https://iimmun.ru/iimm/article/view/1818/1515; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/1818/7268; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/1818/7269; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/1818/7270; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/1818/7271; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/1818/7272; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/1818/7335; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/1818/7336; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/1818/7646; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/1818/7647; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/1818/7648; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/1818/7649; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/1818/7650; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/1818/7837; https://iimmun.ru/iimm/article/view/1818

Διαθεσιμότητα: https://iimmun.ru/iimm/article/view/1818
https://doi.org/10.15789/2220-7619-QAQ-1818

Features of the immunoreactivity T and B lymphocytes subpopulations and cytokine imbalance in patients with hepatosplenomegaly of different etiology ; Особенности иммунореактивности субпопуляций T- и B-лимфоцитов и цитокиновый дисбаланс у пациентов с гепатоспленомегалией различной этиологии ; Особливості імунореактивності субпопуляцій T- і B-лімфоцитів і цитокіновий дисбаланс у пацієнтів із гепатоспленомегалією різної етіології

Συγγραφείς: Клімова, О. М., Кордон, T. I., Сушков, С. В., Дроздова, Л. А., Лавінська, О. В., Мережко, О. С., Биченко, К. О.

Πηγή: Pathologia; Vol. 18 No. 2 (2021): Pathologia; 174 - 182 ; Патология; Том 18 № 2 (2021): Патология; 174 - 182 ; Патологія; Том 18 № 2 (2021): Патологія; 174 - 182 ; 2310-1237 ; 2306-8027

Θεματικοί όροι: гепатоспленомегалія, тригерний фактор, імунореактивність, цитокіни, субпопуляція лімфоцитів, B-лімфоцити, T-лімфоцити, hepatosplenomegaly, trigger factor, immunoreactivity, cytokines, lymphocyte subpopulations, B lymphocytes, T lymphocytes, гепатоспленомегалия, триггерный фактор, иммунореактивность, цитокины, субпопуляции лимфоцитов, В-лимфоциты, Т-лимфоциты

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: http://pat.zsmu.edu.ua/article/view/229454/238837; http://pat.zsmu.edu.ua/article/view/229454

Διαθεσιμότητα: http://pat.zsmu.edu.ua/article/view/229454

Features of T lymphocyte subpopulation profile in patients with ankylosing spondylitis undergoing genetically engineered biological therapy ; Особенности субпопуляционного состава Т-лимфоцитов у больных анкилозирующим спондилитом на фоне генно-инженерной биологической терапии

Συγγραφείς: A. A. Savchenko, O. D. Gritsenko, A. G. Borisov, I. V. Kudryavtsev, M. K. Serebriakova, A. A. Masterova, P. A. Shesternya, А. А. Савченко, О. Д. Гриценко, А. Г. Борисов, И. В. Кудрявцев, М. К. Серебрякова, А. А. Мастерова, П. А. Шестерня

Πηγή: Medical Immunology (Russia); Том 23, № 6 (2021); 1319-1332 ; Медицинская иммунология; Том 23, № 6 (2021); 1319-1332 ; 2313-741X ; 1563-0625

Θεματικοί όροι: цитотоксические Т-лимфоциты, T cells, subsets, phenotype, T helpers, cytotoxic T cells, больные анкилозирующим спондилитом, субпопуляции лимфоцитов, фенотип, Т-хелперы

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/2349/1487; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2349/8251; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2349/8252; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2349/8253; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2349/8254; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2349/8255; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2349/8256; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2349/8257; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2349/8258; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2349/8259; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2349/8260; Ахунова Р.Р., Ахунова Г.Р. Комплексный подход к терапии анкилозирующего спондилита с позиции международной классификации функционирования // Архивъ внутренней медицины, 2020. Т. 10, № 1. С. 5-9.; Воронина Е.В., Лобанова Н.В., Яхин И.Р., Романова Н.А., Серегин Ю.А. Роль фактора некроза опухолей-альфа в иммунопатогенезе заболеваний различной этиологии и его значимость в развитии антицитокиновой терапии моноклональными антителами // Медицинская иммунология, 2018. Т. 20, № 6. С. 797-806. doi:10.15789/1563-0625-2018-6-797-806.; Зурочка А.В., Хайдуков С.В., Кудрявцев И.В., Черешнев В.А. Проточная цитометрия в биомедицинских исследованиях. Екатеринбург: Уральское отделение РАН, 2018. 720 с.; Козлов В.А., Савченко А.А., Кудрявцев И.В., Козлов И.Г., Кудлай Д.А., Продеус А.П., Борисов А.Г. Клиническая иммунология: практическое пособие для врачей. Красноярск: Поликор, 2020. 386 с.; Кудрявцев И.В., Борисов А.Г., Васильева Е.В., Кробинец И.И., Савченко А.А., Серебрякова М.К., Тотолян Арег А. Фенотипическая характеристика цитотоксических Т-лимфоцитов: регуляторные и эффекторные молекулы» // Медицинская иммунология, 2018. Т. 20, № 2. С. 227-240. doi:10.15789/1563-0625-2018-2-227-240.; Кудрявцев И.В., Борисов А.Г., Кробинец И.И., Савченко А.А., Серебрякова М.К. Определение основных субпопуляций цитотоксических Т-лимфоцитов методом многоцветной проточной цитометрии // Медицинская иммунология, 2015. Т. 17, № 6. С. 525-538. doi:10.15789/1563-0625-2015-6-525-538.; Насонов Е.Л., Коротаева Т.В., Дубинина Т.В., Лила А.М. Ингибиторы ИЛ23/ИЛ17 при иммуновоспалительных ревматических заболеваниях: новые горизонты // Научно-практическая ревматология, 2019. Т. 57, № 4. С. 400-406.; Эрдес Ш.Ф. Интерлейкин 17А – новая мишень антицитокиновой терапии анкилозирующего спондилита // Научно-практическая ревматология, 2016. Т. 54, № 1S. С. 60-66.; Abdal S.J., Yesmin S., Shazzad M.N., Azad M.A.K., Shahin M.A., Choudhury M.R., Islam M.N., Haq S.A. Development of a Bangla version of the Bath Ankylosing Spondylitis Disease Activity Index (BASDAI) and the Bath Ankylosing Spondylitis Functional Index (BASFI). Int. J. Rheum. Dis., 2021, Vol. 24, no. 1, pp. 74-80.; Ahmadi M., Hajialilo M., Dolati S., Eghbal-Fard S., Heydarlou H., Ghaebi M., Ghassembaglou A., AghebatiMaleki L., Samadi Kafil H., Kamrani A., Rahnama B., Rikhtegar R., Yousefi M. The effects of nanocurcumin on Treg cell responses and treatment of ankylosing spondylitis patients: A randomized, double-blind, placebo-controlled clinical trial. J. Cell. Biochem., 2020, Vol. 121, no. 1, pp. 103-110.; Al-Mossawi M.H., Chen L., Fang H., Ridley A., de Wit J., Yager N., Hammitzsch A., Pulyakhina I., Fairfax B.P., Simone D., Yi Y., Bandyopadhyay S., Doig K., Gundle R., Kendrick B., Powrie F., Knight J.C., Bowness P. Unique transcriptome signatures and GM-CSF expression in lymphocytes from patients with spondyloarthritis. Nat. Commun., 2017, Vol. 8, no. 1, 1510. doi:10.1038/s41467-017-01771-2.; Chen B., Li J., He C., Li D., Tong W., Zou Y., Xu W. Role of HLA-B27 in the pathogenesis of ankylosing spondylitis (Review). Mol. Med. Rep., 2017, Vol. 15, no. 4, pp. 1943-1951.; Chen L., Liu L., Xie Z.Y., Wang F., Sinkemani A., Zhang C., Wang X.H., Wang K., Hong X., Wu X.T. Endoplasmic reticulum stress facilitates the survival and proliferation of nucleus pulposus cells in TNF-α Stimulus by activating unfolded protein response. DNA Cell Biol., 2018, Vol. 37, no. 4, pp. 347-358.; Faist B., Schlott F., Stemberger C., Dennehy K.M., Krackhardt A., Verbeek M., Grigoleit G.U., Schiemann M., Hoffmann D., Dick A., Martin K., Hildebrandt M., Busch D.H., Neuenhahn M. Targeted in-vitro-stimulation reveals highly proliferative multi-virus-specific human central memory T cells as candidates for prophylactic T cell therapy. PLoS One, 2019, Vol. 14, no. 9, e0223258. doi:10.1371/journal.pone.0223258.; Feng X., Yang Q., Wang C., Tong W., Xu W. Punicalagin exerts protective effects against ankylosing spondylitis by regulating NF-κB-TH17/JAK2/STAT3 signaling and oxidative stress. Biomed. Res. Int., 2020, Vol. 2020, 4918239. doi:10.1155/2020/4918239.; Gupta S., Su H., Narsai T., Agrawal S. SARS-CoV-2-Associated T-Cell responses in the presence of humoral immunodeficiency. Int. Arch. Allergy Immunol., 2021, Vol. 182, no. 3, pp. 195-209.; Koch S., Larbi A., Derhovanessian E., Ozcelik D., Naumova E., Pawelec G. Multiparameter flow cytometric analysis of CD4 and CD8 T cell subsets in young and old people. Immun. Ageing, 2008, Vol. 5, 6. doi:10.1186/1742-4933-5-6.; Lee S., Eun Y., Kim H., Cha H.S., Koh E.M., Lee J. Machine learning to predict early TNF inhibitor users in patients with ankylosing spondylitis. Sci. Rep., 2020, Vol. 10, no. 1, 20299. doi:10.1038/s41598-020-75352-7.; Libri V., Azevedo R.I., Jackson S.E., Di Mitri D., Lachmann R., Fuhrmann S., Vukmanovic-Stejic M., Yong K., Battistini L., Kern F., Soares M.V., Akbar A.N. Cytomegalovirus infection induces the accumulation of short-lived, multifunctional CD4+CD45RA+CD27+ T cells: the potential involvement of interleukin-7 in this process. Immunology, 2011, Vol. 132, no. 3, pp. 326-339.; Lovšin N., Marc J. Glucocorticoid receptor regulates TNFSF11 transcription by binding to glucocorticoid responsive element in TNFSF11 proximal promoter region. Int. J. Mol. Sci., 2021, Vol. 22, no. 3, 1054. doi:10.3390/ijms22031054.; Ma S.Y., Wang Y., Xu J.Q., Zheng L. Cupping therapy for treating ankylosing spondylitis: The evidence from systematic review and meta-analysis. Complement Ther. Clin. Pract., 2018, Vol. 32, pp. 187-194.; Machado P.M., Landewé R., Heijde D.V.; Assessment of SpondyloArthritis international Society (ASAS). Ankylosing Spondylitis Disease Activity Score (ASDAS): 2018 update of the nomenclature for disease activity states. Ann. Rheum. Dis., 2018, Vol. 77, no. 10, pp. 1539-1540.; Maneiro J.R., Souto A., Salgado E., Mera A., Gomez-Reino J.J. Predictors of response to TNF antagonists in patients with ankylosing spondylitis and psoriatic arthritis: systematic review and meta-analysis. RMD Open, 2015, Vol. 1, no. 1, e000017. doi:10.1136/rmdopen-2014-000017.; Miao J., Zhu P. Functional defects of treg cells: new targets in rheumatic diseases, including ankylosing spondylitis. Curr. Rheumatol. Rep., 2018, Vol. 20, no. 5, 30. doi:10.1007/s11926-018-0729-1.; Miossec P. Local and systemic effects of IL-17 in joint inflammation: a historical perspective from discovery to targeting. Cell Mol. Immunol., 2021, Vol. 18, no. 4, pp. 860-865.; Nagai S., Azuma M. The CD28-B7 family of co-signaling molecules. Adv. Exp. Med. Biol., 2019, Vol. 1189, pp. 25-51.; Nam E.J., Lee W.K. Early achievement of ASDAS clinical response is associated with long-term improvements in metrological outcomes in patients with ankylosing spondylitis treated with TNF-α blockers. Medicine (Baltimore), 2020, Vol. 99, no. 41, e22668. doi:10.1097/MD.0000000000022668.; Ortolan A., Ramiro S., van Gaalen F., Kvien T.K., Landewe R.B.M., Machado P.M., Ruyssen-Witrand A., van Tubergen A., Bastiaenen C., van der Heijde D. Development and validation of an alternative ankylosing spondylitis disease activity score when patient global assessment is unavailable. Rheumatology (Oxford), 2021, Vol. 60, no. 2, pp. 638-648.; Pedersen S.J., Maksymowych W.P. The Pathogenesis of ankylosing spondylitis: an update. Curr. Rheumatol. Rep., 2019, Vol. 21, no. 10, 58. doi:10.1007/s11926-019-0856-3.; Qiu J., Zhou F., Li X., Zhang S., Chen Z., Xu Z., Lu G., Zhu Z., Ding N., Lou J., Ye Z., Qian Q. Changes and clinical significance of detailed peripheral lymphocyte subsets in evaluating the immunity for cancer patients. Cancer Manag. Res., 2020, Vol. 12, pp. 209-219.; Russell T., Bridgewood C., Rowe H., Altaie A., Jones E., McGonagle D. Cytokine “fine tuning” of enthesis tissue homeostasis as a pointer to spondyloarthritis pathogenesis with a focus on relevant TNF and IL-17 targeted therapies. Semin. Immunopathol., 2021, Vol. 43, no. 2, pp. 193-206.; Shimizu Y., Tsukada T., Sakata-Haga H., Sakai D., Shoji H., Saikawa Y., Hatta T. Exposure to maternal immune activation causes congenital unfolded protein response defects and increases the susceptibility to postnatal inflammatory stimulation in offspring. J. Inflamm. Res., 2021, Vol. 14, pp. 355-365.; Tahir H., Moorthy A., Chan A. Impact of secukinumab on patient-reported outcomes in the treatment of ankylosing spondylitis: current perspectives. Open Access Rheumatol., 2020, Vol. 12, pp. 277-292.; van der Linden S., Valkenburg H.A., Cats A. Evaluation of diagnostic criteria for ankylosing spondylitis. A proposal for modification of the New York criteria. Arthritis Rheum., 1984, Vol. 27, no. 4, pp. 361-368.; Vargas-Franco J.W., Castaneda B., Gama A., Mueller C.G., Heymann D., Rédini F., Lézot F. Geneticallyachieved disturbances to the expression levels of TNFSF11 receptors modulate the effects of zoledronic acid on growing mouse skeletons. Biochem. Pharmacol., 2019, Vol. 168, pp. 133-148.; Walsh M.C., Choi Y. Regulation of T cell-associated tissues and T cell activation by RANKL-RANK-OPG. J. Bone Miner. Metab., 2021, Vol. 39, no. 1, pp. 54-63.; Watad A., Bridgewood C., Russell T., Marzo-Ortega H., Cuthbert R., McGonagle D. The early phases of ankylosing spondylitis: emerging insights from clinical and basic science. Front. Immunol., 2018, Vol. 9, 2668. doi:10.3389/fimmu.2018.02668.; Xu F., Guanghao C., Liang Y., Jun W., Wei W., Baorong H. Treg-promoted new bone formation through suppressing TH17 by secreting Interleukin-10 in ankylosing spondylitis. Spine (Phila Pa 1976), 2019, Vol. 44, no. 23, pp. E1349-E1355.; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/2349

Διαθεσιμότητα: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/2349
https://doi.org/10.15789/1563-0625-FOT-2349

Features of the immunoreactivity T and B lymphocytes subpopulations and cytokine imbalance in patients with hepatosplenomegaly of different etiology

Συγγραφείς: Кордон, T. I.

Πηγή: Pathologia; Vol. 18 No. 2 (2021): Pathologia; 174-182
Патология; Том 18 № 2 (2021): Патология; 174-182
Патологія; Том 18 № 2 (2021): Патологія; 174-182

Θεματικοί όροι: гепатоспленомегалия, субпопуляции лимфоцитов, гепатоспленомегалія, тригерний фактор, цитокины, lymphocyte subpopulations, T lymphocytes, B-лімфоцити, цитокіни, иммунореактивность, cytokines, 3. Good health, trigger factor, субпопуляція лімфоцитів, Т-лимфоциты, hepatosplenomegaly, триггерный фактор, імунореактивність, T-лімфоцити, immunoreactivity, В-лимфоциты, B lymphocytes

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Σύνδεσμος πρόσβασης: http://pat.zsmu.edu.ua/article/view/229454

Serologic status, lymphocyte subsets and the system of TNF-receptors in CMV-infected pregnant women

Συγγραφείς: V.P. Chernyshov, T.V. Radysh, S.M. Тоlkach, S.P. Pisareva

Πηγή: Перинатологія і педіатрія; № 1(69) (2017): Перинатологія та педіатрія; 39-45
Перинатология и педиатрия; № 1(69) (2017): Перинатология и Педиатрия; 39-45
Perinatologiya i pediatriya; № 1(69) (2017): Perenatologiya i pediatriya; 39-45

Θεματικοί όροι: cytomegalovirus infection, pregnancy, serologic status, avidity, lymphocytes subsets, natural killer, NK-like T-cells, tumours necrosis factor, цитомегаловирусная инфекция, беременность, серологический статус, авидность, субпопуляции лимфоцитов, натуральные киллеры, НК-подобные Т-лимфоциты, фактор некроза опухолей, цитомегаловірусна інфекція, вагітність, серологічний статус, авідність, субпопуляції лімфоцитів, природні кілери, ПК-подібні Т-лімфоцити, фактор некрозу пухлин, 3. Good health

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Σύνδεσμος πρόσβασης: http://pip.med-expert.com.ua/article/view/PP.2017.69.39

Age-related features of the pattern of lymphocyte subpopulations and functional activity of peripheral blood mononuclear cells in patients with chronic kidney disease before and after transplantation ; Возрастные особенности субпопуляционного состава лимфоцитов и функциональной активности мононуклеаров периферической крови у больных хронической болезнью почек до и после трансплантации

Συγγραφείς: D. V. Artemov, A. B. Zulkarnaev, A. V. Vatazin, Д. В. Артемов, А. Б. Зулькарнаев, А. В. Ватазин

Πηγή: Russian Journal of Transplantology and Artificial Organs; Том 22, № 1 (2020); 40-49 ; Вестник трансплантологии и искусственных органов; Том 22, № 1 (2020); 40-49 ; 1995-1191 ; 10.15825/1995-1191-2020-1

Θεματικοί όροι: функциональная активность клеток, kidney transplantation, lymphocyte subpopulations, cell functional activity, трансплантация почки, субпопуляции лимфоцитов

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://journal.transpl.ru/vtio/article/view/1142/904; https://journal.transpl.ru/vtio/article/view/1142/951; USRDS.org [Internet]. United States Renal Data System. 2016 USRDS annual data report. Volume 2 – End-stage Renal Disease (ESRD) in the United States: 1 · Incidence, Prevalence, Patient Characteristics, and Treatment Modalities 2016; Available at: https://www. usrds.org/2016/view/Default.aspx.; Томилина НА, Андрусев АМ, Перегудова НГ, Шинкарев МБ. Заместительная терапия терминальной хронической почечной недостаточности в Российской Федерации В 2010–2015 гг. Отчет по данным общероссийского регистра заместительной почечной терапии Российского диализного общества, часть первая. Нефрология и диализ. 2017; 19 (4, приложение): 1–95. doi:10.28996/1680-4422-2017-4suppl-1-95.; ERA-EDTA-reg.org [Internet]. European Renal Association – European Dialysis and Transplant Association (ERA-EDTA) Registry Annual Report 2015. 2017; Available at: https://www.era-edta-reg.org/files/annualreports/pdf/AnnRep2015.pdf.; Chopra B, Sureshkumar KK. Changing organ allocation policy for kidney transplantation in the United States. World J Transplant. 2015; 5 (2): 38–43. doi:10.5500/wjt.v5.i2.38.; Нестеренко ИВ, Ватазин АВ, Филипцев ПЯ, Янковой АГ. Новый подход в оценке почечных трансплантатов, полученных от возрастных маргинальных доноров. Медицинский альманах. 2008; 5: 23–24.; Нестеренко ИВ, Ватазин АВ, Филипцев ПЯ, Янковой АГ. Трансплантация почки от маргинальных доноров, получающих в процессе кондиционирования высокие дозы инотропной поддержки. Медицинский альманах. 2008; 5: 25–27.; Нестеренко ИВ, Филипцев ПЯ, Ватазин АВ. Новые аспекты использования маргинальных доноров с сопутствующими заболеваниями. Альманах клинической медицины. 2008; 18: 29–34.; Meier-Kriesche HU, Kaplan B. Immunosuppression in elderly renal transplant recipients: are current regimens too aggressive? Drugs Aging. 2001; 18 (10): 751–759. doi:10.2165/00002512-200118100-00004.; Meier-Kriesche HU, Ojo AO, Hanson JA, Kaplan B. Exponentially increased risk of infectious death in older renal transplant recipients. Kidney Int. 2001; 59 (4): 1539– 1543. doi:10.1046/j.1523-1755.2001.0590041539.x.; de Fijter JW. The impact of age on rejection in kidney transplantation. Drugs Aging. 2005; 22 (5): 433–449. doi:10.2165/00002512-200522050-00007.; Danovitch GM., Gill J, Bunnapradist S. Immunosuppression of the elderly kidney transplant recipient. Transplantation. 2007; 84 (3): 285–291. doi:10.1097/01.tp.0000275423.69689.dc.; Miller MD, Paradis CF, Houck PR, Mazumdar S, Stack JA, Rifai AH. Rating chronic medical illness burden in geropsychiatric practice and research: application of the Cumulative Illness Rating Scale. Psychiatry Res. 1992; 41: 237–248.; Singh P, Ng YH, Unruh M. Kidney Transplantation Among the Elderly: Challenges and Opportunities to Improve Outcomes. Adv Chronic Kidney Dis. 2016; 23 (1): 44–50. doi:10.1053/j.ackd.2015.11.002.; Nikodimopoulou M, Karakasi K, Daoudaki M, Fouza A, Vagiotas L, Myserlis G et al. Kidney Transplantation in Old Recipients From Old Donors: A Single-Center Experience. Transplant Proc. 2019; 51 (2): 405–407. doi:10.1016/j.transproceed.2019.01.019.; Geraci PM, Sepe V. Non-heart-beating organ donation in Italy. Minerva Anestesiol. 2011; 77 (6): 613–623.; Трансплантология. 2-е изд., испр. и доп. Под ред. В.И. Шумакова. М.: МИА, 2006.; Трансплантология. Фармакотерапия без ошибок. Под ред. С.В. Готье, Я.Г. Мойсюка. М.: Е-ното, 2014: 122–179.; Jagger A, Shimojima Y, Goronzy JJ, Weyand CM. Regulatory T cells and the immune aging process: a mini-review. Gerontology. 2014; 60 (2): 130–137. doi:10.1159/000355303.; Valdiglesias V, Sánchez-Flores M, Maseda A, Marcos-Pérez D, Millán-Calenti JC, Pásaro E et al. Lymphocyte Subsets in a Population of Nonfrail Elderly Individuals. J Toxicol Environ Health A. 2015; 78 (13–14): 790–804. doi:10.1080/15287394.2015.1051170.; Pinti M, Appay V, Campisi J, Frasca D, Fülöp T, Sauce D et al. Aging of the immune system: Focus on inflammation and vaccination. Eur J Immunol. 2016; 46 (10): 2286–2301. doi:10.1002/eji.201546178.; Gill Z, Nieuwoudt M, Ndifon W. The Hayflick Limit and Age-Related Adaptive Immune Deficiency. Gerontology. 2018; 64 (2): 135–139. doi:10.1159/000478091.; Betjes MG. Immune cell dysfunction and inflammation in end-stage renal disease. Nat Rev Nephrol. 2013; 9 (5): 255–265. doi:10.1038/nrneph.2013.44.; Vogelzang JL, van Stralen KJ, Noordzij M, Diez JA, Carrero JJ, Couchoud C et al. Mortality from infections and malignancies in patients treated with renal replacement therapy: data from the ERA-EDTA registry. Nephrol Dial Transplant. 2015; 30 (6): 1028–1037. doi:10.1093/ndt/gfv007.; Navaneethan SD, Schold JD, Arrigain S, Jolly SE, Nally JV Jr. Cause-Specific Deaths in Non-Dialysis-Dependent CKD. J Am Soc Nephrol. 2015; 26 (10): 2512– 2520. doi:10.1681/ASN.2014101034.; Cheung CY, Chan GC, Chan SK, Ng F, Lam MF, Wong SS et al. Cancer Incidence and Mortality in Chronic Dialysis Population: A Multicenter Cohort Study. Am J Nephrol. 2016; 43 (3): 153–159. doi:10.1159/000445362.; Litjens NH, Huisman M, van den Dorpel M, Betjes MG. Impaired immune responses and antigen-specific memory CD4+ T cells in hemodialysis patients. J Am Soc Nephrol. 2008; 19 (8): 1483–1490. doi:10.1681/ASN.2007090971.; Kim JU, Kim M, Kim S, Nguyen TT, Kim E, Lee S, Kim S, Kim H. Dendritic Cell Dysfunction in Patients with Endstage Renal Disease. Immune Netw. 2017; 17 (3): 152– 162. doi:10.4110/in.2017.17.3.152.; Litjens NH, van Druningen CJ, Betjes MG. Progressive loss of renal function is associated with activation and depletion of naive T lymphocytes. Clin Immunol. 2006; 118 (1): 83–91. doi:10.1016/j.clim.2005.09.007.; Yoon JW, Gollapudi S, Pahl MV, Vaziri ND. Naïve and central memory T-cell lymphopenia in end-stage renal disease. Kidney Int. 2006; 70 (2): 371–376. doi:10.1038/sj.ki.5001550.; Betjes MG, Langerak AW, van der Spek A, de Wit EA, Litjens NH. Premature aging of circulating T cells in patients with end-stage renal disease. Kidney Int. 2011; 80 (2): 208–217. doi:10.1038/ki.2011.110.; Lisowska KA, Dębska-Ślizień A, Jasiulewicz A, Heleniak Z, Bryl E, Witkowski JM. Hemodialysis affects phenotype and proliferation of CD4-positive T lymphocytes. J Clin Immunol. 2012; 32 (1): 189–200. doi:10.1007/s10875-011-9603-x.; Meijers RW, Litjens NH, de Wit EA, Langerak AW, Baan CC, Betjes MG. Uremia-associated immunological aging is stably imprinted in the T-cell system and not reversed by kidney transplantation. Transpl Int. 2014; 27 (12): 1272–1284. doi:10.1111/tri.12416.; Meier P, Dayer E, Blanc E, Wauters JP. Early T cell activation correlates with expression of apoptosis markers in patients with end-stage renal disease. J Am Soc Nephrol. 2002; 13 (1): 204–212.; Xie DQ, Gan H, Du XG, Li ZR, Wu J. The characterization of Th1/Th2 profile in end-stage renal disease patients and the correlation with the apoptosis of T lymphocyte. Xi Bao Yu Fen Zi Mian Yi Xue Za Zhi. 2006; 22 (6): 763–766.; Winterberg PD, Ford ML. The effect of chronic kidney disease on T cell alloimmunity. Curr Opin Organ Transplant. 2017; 22 (1): 22–28. doi:10.1097/MOT.0000000000000375.; Lisowska KA, Debska-Slizien A, Radzka M, Witkowski JM, Rutkowski B, Bryl E. Recombinant human erythropoietin treatment of chronic renal failure patients normalizes altered phenotype and proliferation of CD4- positive T lymphocytes. Artif Organs. 2010; 34 (3): E77–84. doi:10.1111/j.1525-1594.2009.00942.x.; Betjes MG, Litjens NH. Chronic kidney disease and premature ageing of the adaptive immune response. Curr Urol Rep. 2015; 16 (1): 471. doi:10.1007/s11934-014-0471-9.; Augustine JJ, Poggio ED, Clemente M, Aeder MI, Bodziak KA, Schulak JA et al. Hemodialysis vintage, black ethnicity, and pretransplantation antidonor cellular immunity in kidney transplant recipients. J Am Soc Nephrol. 2007; 18 (5): 1602–1606. doi:10.1681/ASN.2006101105.; Crespo E, Lucia M, Cruzado JM, Luque S, Melilli E, Manonelles A et al. Pre-transplant donor-specific T-cell alloreactivity is strongly associated with early acute cellular rejection in kidney transplant recipients not receiving Tcell depleting induction therapy. PLoS One. 2015; 10 (2): e0117618. doi:10.1371/journal.pone.0117618.; Hart A, Salkowski N, Snyder JJ, Israni AK, Kasiske BL. Beyond «Median Waiting Time»: Development and Validation of a Competing Risk Model to Predict Outcomes on the Kidney Transplant Waiting List. Transplantation. 2016; 100 (7): 1564–1570. doi:10.1097/TP.0000000000001185.; Gritane K, Jusinskis J, Malcevs A, Suhorukovs V, Amerika D, Puide I et al. Influence of Pretransplant Dialysis Vintage on Repeated Kidney Transplantation Outcomes. Transplant Proc. 2018; 50 (5): 1249–1257. doi:10.1016/j.transproceed.2018.01.056.; Ватазин АВ, Зулькарнаев АБ, Степанов ВА. Анализ выживаемости пациентов в листе ожидания трансплантации почки с позиции конкурирующих рисков. Вестник трансплантологии и искусственных органов. 2019; 21 (1): 35–45. doi:10.15825/1995-1191-2019-1-35-45.; Crepin T, Carron C, Roubiou C, Gaugler B, Gaiffe E, Simula-Faivre D et al. ATG-induced accelerated immune senescence: clinical implications in renal transplant recipients. Am J Transplant. 2015; 15 (4): 1028–1038. doi:10.1111/ajt.13092.; Luque Y, Jamme M, Rabant M, DeWolf S, Noël LH, Thervet E et al. Long-term CD4 lymphopenia is associated with accelerated decline of kidney allograft function. Nephrol Dial Transplant. 2016; 31 (3): 487–495. doi:10.1093/ndt/gfv362.; Björkström NK, Ljunggren HG, Michaëlsson J. Emerging insights into natural killer cells in human peripheral tissues. Nat Rev Immunol. 2016; 16 (5): 310–320. doi:10.1038/nri.2016.34.; Abel AM, Yang C, Thakar MS, Malarkannan S. Natural Killer Cells: Development, Maturation, and Clinical Utilization. Front Immunol. 2018; 9: 1869. doi:10.3389/fimmu.2018.01869.; Xiang FF, Zhu JM, Cao XS, Shen B, Zou JZ, Liu ZH et al. Lymphocyte depletion and subset alteration correlate to renal function in chronic kidney disease patients. Ren Fail. 2016; 38 (1): 7–14. doi:10.3109/0886022X.2015.1106871.; Schmaderer C, Heemann U. Blocking innate immunity to slow the progression of chronic kidney disease. Naunyn Schmiedebergs Arch Pharmacol. 2014; 387 (10): 905–907. doi:10.1007/s00210-014-1031-z.; Spada R, Rojas JM, Pérez-Yagüe S, Mulens V, Cannata- Ortiz P, Bragado R et al. NKG2D ligand overexpression in lupus nephritis correlates with increased NK cell activity and differentiation in kidneys but not in the periphery. J Leukoc Biol. 2015; 97 (3): 583–598. doi:10.1189/jlb.4A0714-326R.; Law BMP, Wilkinson R, Wang X, Kildey K, Lindner M, Rist MJ et al. Interferon-γ production by tubulointerstitial human CD56 bright natural killer cells contributes to renal fibrosis and chronic kidney disease progression. Kidney Int. 2017; 92 (1): 79–88. doi:10.1016/j.kint.2017.02.006.; Turner JE. Natural killers: the bad guys in fibrosis? Kidney Int. 2017; 92 (1): 9–11. doi:10.1016/j.kint.2017.03.011.; Hamze M, Desmetz C, Guglielmi P. B cell-derived cytokines in disease. Eur Cytokine Netw. 2013; 24 (1): 20–26. doi:10.1684/ecn.2013.0327.; Couser WG. Primary Membranous Nephropathy. Clin J Am Soc Nephrol. 2017; 12 (6): 983–997. doi:10.2215/CJN.11761116.; Caravaca-Fontán F, Gutiérrez E, Delgado Lillo R, Praga M. Monoclonal gammopathies of renal significance. Nefrologia. 2017; 37 (5): 465–477. doi:10.1016/j.nefro.2017.03.012.; Kattah AG, Fervenza FC, Roccatello D. Rituximabbased novel strategies for the treatment of immune-mediated glomerular diseases. Autoimmun Rev. 2013; 12 (8): 854–859. doi:10.1016/j.autrev.2012.09.002.; Pahl MV, Gollapudi S, Sepassi L, Gollapudi P, Elahimehr R, Vaziri ND. Effect of end-stage renal disease on B-lymphocyte subpopulations, IL-7, BAFF and BAFF receptor expression. Nephrol Dial Transplant. 2010; 25 (1): 205–212. doi:10.1093/ndt/gfp397.; Kim KW, Chung BH, Jeon EJ, Kim BM, Choi BS, Park CW et al. B cell-associated immune profiles in patients with end-stage renal disease (ESRD). Exp Mol Med. 2012; 44 (8): 465–472. doi:10.3858/emm.2012.44.8.053.; Malinowski K, Tsukuda K, Terashima T, Rapaport FT. Effects of end-stage renal disease on the expression of differentiation and HLA-DR markers on the surface of T and B lymphocytes. Transplant Proc. 1997; 29 (1–2): 1020–1024.; Naicker SD, Cormican S, Griffin TP, Maretto S, Martin WP, Ferguson JP et al. Chronic Kidney Disease Severity Is Associated With Selective Expansion of a Distinctive Intermediate Monocyte Subpopulation. Front Immunol. 2018; 9: 2845. doi:10.3389/fimmu.2018.02845.; Shimaoka M, Hosotsubo K, Sugimoto M, Sakaue G, Taenaka N, Yoshiya I et al. The influence of surgical stress on T cells: enhancement of early phase lymphocyte activation. Anesth Analg. 1998; 87 (6): 1431–1435.; Buunen M, Gholghesaei M, Veldkamp R, Meijer DW, Bonjer HJ, Bouvy ND. Stress response to laparoscopic surgery: a review. Surg Endosc. 2004; 18 (7): 1022– 1028. doi:10.1007/s00464-003-9169-7.; Bartal I, Melamed R, Greenfeld K, Atzil S, Glasner A, Domankevich V et al. Immune perturbations in patients along the perioperative period: alterations in cell surface markers and leukocyte subtypes before and after surgery. Brain Behav Immun. 2010; 24 (3): 376–386. doi:10.1016/j.bbi.2009.02.010.; Caprara GV, Nisini R, Castellani V, Vittorio P, Alessandri G, Vincenzo Z et al. Lymphocyte subsets are influenced by positivity levels in healthy subjects before and after mild acute stress. Immunol Lett. 2017; 188: 13–20. doi:10.1016/j.imlet.2017.05.012.; Nankivell BJ, Borrows RJ, Fung CL, O’Connell PJ, Allen RD, Chapman JR. The natural history of chronic allograft nephropathy. N Engl J Med. 2003; 349 (24): 2326–2333. doi:10.1056/NEJMoa020009.; Martín-Fontecha A, Thomsen LL, Brett S, Gerard C, Lipp M, Lanzavecchia A et al. Induced recruitment of NK cells to lymph nodes provides IFN-gamma for T(H)1 priming. Nat Immunol. 2004; 5 (12): 1260–1265. doi:10.1038/ni1138.; Zingoni A, Sornasse T, Cocks BG, Tanaka Y, Santoni A, Lanier LL. Cross-talk between activated human NK cells and CD4+ T cells via OX40-OX40 ligand interactions. J Immunol. 2004; 173 (6): 3716–3724. doi:10.4049/jimmunol. 173.6.3716.; Noval Rivas M, Hazzan M, Weatherly K, Gaudray F, Salmon I, Braun MY. NK cell regulation of CD4 T cellmediated graft-versus-host disease. J Immunol. 2010; 184 (12): 6790–6798. doi:10.4049/jimmunol.0902598.; Zecher D, Li Q, Oberbarnscheidt MH, Demetris AJ, Shlomchik WD, Rothstein DM, Lakkis FG. NK cells delay allograft rejection in lymphopenic hosts by downregulating the homeostatic proliferation of CD8+ T cells. J Immunol. 2010; 184 (12): 6649–6657. doi:10.4049/jimmunol.0903729.; Garrod KR, Liu FC, Forrest LE, Parker I, Kang SM, Cahalan MD. NK cell patrolling and elimination of donor- derived dendritic cells favor indirect alloreactivity. J Immunol. 2010; 184 (5): 2329–2336. doi:10.4049/jimmunol.0902748.; Meier-Kriesche H, Ojo AO, Arndorfer JA, Leichtman AB, Lake K, Cibrik DM et al. Need for individualized immunosuppression in elderly renal transplant recipients. Transplant Proc. 2001; 33 (1–2): 1190–1191. Jacobson PA, Schladt D, Oetting WS, Leduc R, Guan W, Matas AJ, Israni A. Lower calcineurin inhibitor doses in older compared to younger kidney transplant recipients yield similar troughs. Am J Transplant. 2012; 12 (12): 3326–3336. doi:10.1111/j.1600-6143.2012.04232.x.; https://journal.transpl.ru/vtio/article/view/1142

Διαθεσιμότητα: https://journal.transpl.ru/vtio/article/view/1142
https://doi.org/10.15825/1995-1191-2020-1-40-49